PL88532B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL88532B1
PL88532B1 PL16638172A PL16638172A PL88532B1 PL 88532 B1 PL88532 B1 PL 88532B1 PL 16638172 A PL16638172 A PL 16638172A PL 16638172 A PL16638172 A PL 16638172A PL 88532 B1 PL88532 B1 PL 88532B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
value
concentration
bacitracin
separation
proteases
Prior art date
Application number
PL16638172A
Other languages
English (en)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Priority to PL16638172A priority Critical patent/PL88532B1/pl
Publication of PL88532B1 publication Critical patent/PL88532B1/pl

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób izolacji proteaz z przesaczy hodowlanych po oddzieleniu Zn-bacytra- cyny.
Znany jest sposób jednoczesnego wytwarzania bacytracyny i proteaz w procesie hodowli np. Bacillus subtilis w warunkach konwencjonalnych. Z otrzymanej tym sposobem brzeczki hodowlanej izoluje sie bacytracy- ne w postaci kompleksu z cynkiem przy wartosci pH 5-7, a nastepnie wyodrebnia sie proteazy przez zageszczenie supernatantu i ewentualnie frakcjonowane wytracanie enzymu.
Stwierdzono, ze proteazy mozna izolowac z przesaczy hodowlanych po oddzieleniu Zn-bacytracyny zwiekszajac stezenie jonów cynku przez dodanie tych samych soli, które stosuje sie przy wytracaniu antybiotyku, przy jednoczesnej zmianie wartosci pH srodowiska. Sposób ten pozwala uniknac klopotliwego procesu oddzielania zwiazków drobnoczasteczkowych oraz odparowywania roztworów wodnych enzymów pod zmniejszonym cisnieniem i otrzymac wytracony preparat enzymatyczny w prosty sposób, w zmniejszonej objetosci i pozbawiony innych zanieczyszczen bialkowych, z roztworów o róznej zawartosci proteaz i aktywnos¬ ci proteolitycznej.
Wedlug wynalazku sposób izolacji proteaz polega na tym, ze przesacz hodowlany po odzieleniu Zn-bacytracyny alkalizuje sie do wartosci pH 7-10, korzystnie do wartosci pH 8-8,5, dodaje sie do niego soli cynkowej do stezenia jonów cynku do 180 mM, korzystnie do stezenia 60—90 mM, wytracony osad ekstrahuje sie wodnym roztworem fosforanu jednosodowego o stezeniu 0,1-0,25 M, a nastepnie wytraca sie enzymy przez frakcjonowane wysalanie ekstraktu siarczanem amonowym przy wartosci pH 6—10, korzystnie przy wartosci pH okolo 8, oraz suszy.
Przyklad I. Przesacz po oddzieleniu Zn-bacytracyny zawierajacy 4040 j proteazy/ml alkalizowano do wartosci pH 10 przy uzyciu 10 n NaOH i dodawano 20% ZnS04*7H20 w takiej ilosci, aby doprowadzic stezenie ZnnS04 w roztworze do wartosci 1,5%, przy ciaglym mieszaniu. Mieszanine o wartosci pH 7,8 pozostawiono na okres 1 godziny, osad oddzielono przez dekantowanie i wirowanie i ekstrahowano 0,25 M roztworem NaH2P04- 1/5 objetosci roztworu wyjsciowego przez godzine i ponownie 1/8 objetosci roztworu wyjsciowego wciagu 12 godzin w temperaturze 0-4°C. Wydajnosc ekstrakcji wynosi 87% aktywnosci proteolitycznej w odniesieniu2 88 532 do roztworu wyjsciowego. Z polaczonych ekstraktów wysalano enzym przy 60% nasyceniu siarczanem amono¬ wym, przez 12 godzin w temperaturze 0-4°C i oddzielony osad liofilizowano. Z1 litra wyjsciowego roztworu uzyskano 4,9 g preparatu o aktywnosci 680 j proteazy/mg suchej masy, co stanowi 81% wydajnosci. Aktywnosc' wlasciwa preparatu jest okolo 10-krotnie wyzsza w stosunku do roztworu wyjsciowego.
Przyklad II. Proteazy wytracono jak w przykladzie I z przesaczu zawierajacego, po oddzieleniu Zn-bacytracyny, 8100 j/ml aktywnosci proteazowej. Wytracanie przeprowadzano przy wartosci pH 8,15.
Ekstrakcje przeprowadzono dwukrotnie 1/3 objetosci roztworu wyjsciowego za pomoca 0,25 M NaH2P04.
Z polaczonych ekstraktów proteazy wysolono enzym za pomoca siarczanu amonowego jak w przykladzie I.
Z1 litra wyjsciowego roztworu uzyskano 6g preparatu oaktywrosci 1140 j/mg suchej masy, co stanowi 84% wydajnosci. Aktywnosc wlasciwa preparatu jest okolo 5-krotnie wyzsza w stosunku do roztworu wyjsciowego.
Przykladlll. Z przesaczu zawierajacego po oddzieleniu Zn-bacytracyny proteazy w stezeniu 12500 j/ml wytracono enzym za pomoca 20% roztworu ZnS04 * 7H20 doprowadzajac stezenie ZnS04 do wartosci 2,0% przy ciaglym mieszaniu, przy wartosci pH 8,5. Ekstrakcje i wysalanie przeprowadzono jak w przykladzie MII, uzyskujac z 1 litra roztworu wyjsciowego 9,8 g preparatu o aktywnosci proteazowej 850 j/ml, co stanowi 68% wydajnosci. Aktywnosc wlasciwa preparatu jest okolo czterokrotnie wyzsza * w stosunku do roztworu wyjsciowego.

Claims (1)

1. Zastrzezenie patentowe Sposób izolacji proteaz z przesaczy hodowlanych po oddzieleniu Zn-bacytracyny, znamienny tym, ze przesacz alkalizuje sie do wartosci PH 7—10, korzystnie do wartosci pH 8—8,5, dodaje sie do niego soli cynkowej do stezenia jonów cynku 180 mM, korzystnie do stezenia 60—90 mM, wytracony osad ekstrahuje sie wodnym roztworem jednosodowego fosforanu o stezeniu 0,1—0,25 M, a nastepnie wytraca sie enzymy przez frakcjonowane wysalanie ekstraktu siarczanem amonowym przy wartosci pH 6—10, korzystnie przy wartosci pH okolo 8 i suszy. Prac. Poligraf. UP PRL naklad 120+18 Cena 45 zl
PL16638172A 1972-03-04 1972-03-04 PL88532B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL16638172A PL88532B1 (pl) 1972-03-04 1972-03-04

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL16638172A PL88532B1 (pl) 1972-03-04 1972-03-04

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL88532B1 true PL88532B1 (pl) 1976-09-30

Family

ID=19964735

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL16638172A PL88532B1 (pl) 1972-03-04 1972-03-04

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL88532B1 (pl)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Malathi et al. Production of alkaline protease by a new Aspergillus flavus isolate under solid-substrate fermentation conditions for use as a depilation agent
Revah‐Moiseev et al. Conversion of the enzymatic hydrolysate of shellfish waste chitin to single‐cell protein
Ishida Physiological studies on evolution of dimethyl sulfide from unicellular marine algae
TWI558722B (zh) 酵母萃取物萃取殘渣之利用方法
US3677898A (en) Acid protease and method of preparing the same
Hayashida et al. Production and purification of thermostable cellulases from Humicola insolens YH-8
Elgammal et al. Enhanced production, partial purification, and characterization of alkaline thermophilic protease from the endophytic fungus BT21
CN110547458A (zh) 一种酶解珍珠粉的制备方法
DK143164B (da) Fremgangsmaade til fremstilling af sur protease
Sakaguchi et al. Studies on toxin production of Clostridium botulinum type E III: Characterization of toxin precursor
Fries The nutrition of fungi from the aspect of growth factor requirements
DOI et al. Joint action of two glucanases produced by Arthrobacter in spheroplast formation from baker's yeast
Horikoshi et al. Studies on autolysis of Aspergillus oryzae. The lytic phenomenon of Aspergillus oryzae caused by Bacillus circulans.
PL88532B1 (pl)
US3475276A (en) Method of producing uricase from yeast
CA1047303A (en) Process for preparing from a microbial cell mass a protein concentrate having a low nucleic acid content, and the protein concentrate thus obtained
OSMUNDSVAG et al. Cellulases from Sporocytophaga myxococcoides: Purification and properties
Perrino et al. Betaine aldehyde dehydrogenase kinetics partially account for oyster population differences in glycine betaine synthesis
Kameda et al. Occurrence of D-acylase in soil bacteria
JPS60217894A (ja) 新規プロテア−ゼ及びその製造方法
US3862109A (en) Method for obtaining a protein isolate from hydrocarbon assimilating microbial cells
US2102315A (en) Process of preparing an enzyme from mold
US3772152A (en) Process for manufacturing enzymes from hydrocarbons
Hebert Phenotypic variability of lactate dehydrogenase in Daphnia magna
CN109295138B (zh) 一种安康鱼皮肽的制备方法及所制备的安康鱼皮肽的免疫调节应用