PL245264B1 - Sposób wytwarzania biodegradowalnego materiału polimerowego, w postaci folii lub filamentu nadającego się do druku 3D metodą FDM lub FFF, do zastosowań w chirurgii urologicznej - Google Patents
Sposób wytwarzania biodegradowalnego materiału polimerowego, w postaci folii lub filamentu nadającego się do druku 3D metodą FDM lub FFF, do zastosowań w chirurgii urologicznej Download PDFInfo
- Publication number
- PL245264B1 PL245264B1 PL441909A PL44190922A PL245264B1 PL 245264 B1 PL245264 B1 PL 245264B1 PL 441909 A PL441909 A PL 441909A PL 44190922 A PL44190922 A PL 44190922A PL 245264 B1 PL245264 B1 PL 245264B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- polymer
- copolymer
- lactide
- temperature
- filament
- Prior art date
Links
- 239000000463 material Substances 0.000 title claims abstract description 45
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 44
- 229920002988 biodegradable polymer Polymers 0.000 title claims abstract description 20
- 239000004621 biodegradable polymer Substances 0.000 title claims abstract description 20
- 239000011888 foil Substances 0.000 title claims abstract description 19
- 238000010146 3D printing Methods 0.000 title claims abstract description 13
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 title claims abstract description 10
- 229920001610 polycaprolactone Polymers 0.000 claims abstract description 65
- 239000004632 polycaprolactone Substances 0.000 claims abstract description 60
- YMWUJEATGCHHMB-UHFFFAOYSA-N Dichloromethane Chemical compound ClCCl YMWUJEATGCHHMB-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 54
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 claims abstract description 53
- 229920001577 copolymer Polymers 0.000 claims abstract description 49
- 239000008187 granular material Substances 0.000 claims abstract description 45
- JJTUDXZGHPGLLC-UHFFFAOYSA-N lactide Chemical compound CC1OC(=O)C(C)OC1=O JJTUDXZGHPGLLC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 32
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 32
- RKDVKSZUMVYZHH-UHFFFAOYSA-N 1,4-dioxane-2,5-dione Chemical compound O=C1COC(=O)CO1 RKDVKSZUMVYZHH-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 22
- 239000008188 pellet Substances 0.000 claims abstract description 22
- 230000008569 process Effects 0.000 claims abstract description 14
- 239000002904 solvent Substances 0.000 claims abstract description 11
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims abstract description 10
- 238000005303 weighing Methods 0.000 claims abstract description 8
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 claims abstract description 3
- 238000000265 homogenisation Methods 0.000 claims abstract description 3
- 238000007872 degassing Methods 0.000 claims description 6
- 230000001331 thermoregulatory effect Effects 0.000 claims description 3
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 abstract description 9
- LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N Ethylene glycol Chemical compound OCCO LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract 6
- WGCNASOHLSPBMP-UHFFFAOYSA-N hydroxyacetaldehyde Natural products OCC=O WGCNASOHLSPBMP-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract 3
- -1 poly(glycolide) Polymers 0.000 description 24
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 16
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 11
- PAPBSGBWRJIAAV-UHFFFAOYSA-N ε-Caprolactone Chemical compound O=C1CCCCCO1 PAPBSGBWRJIAAV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 11
- JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N lactic acid Chemical compound CC(O)C(O)=O JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 8
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 8
- 229920000954 Polyglycolide Polymers 0.000 description 7
- AEMRFAOFKBGASW-UHFFFAOYSA-N Glycolic acid Chemical compound OCC(O)=O AEMRFAOFKBGASW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 238000002844 melting Methods 0.000 description 6
- 230000008018 melting Effects 0.000 description 6
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 6
- 229920000728 polyester Polymers 0.000 description 6
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 6
- JJTUDXZGHPGLLC-IMJSIDKUSA-N 4511-42-6 Chemical compound C[C@@H]1OC(=O)[C@H](C)OC1=O JJTUDXZGHPGLLC-IMJSIDKUSA-N 0.000 description 5
- 239000004310 lactic acid Substances 0.000 description 5
- 235000014655 lactic acid Nutrition 0.000 description 5
- 229920000747 poly(lactic acid) Polymers 0.000 description 5
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 4
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 4
- 229920000515 polycarbonate Polymers 0.000 description 4
- 239000004417 polycarbonate Substances 0.000 description 4
- 239000002861 polymer material Substances 0.000 description 4
- 230000003068 static effect Effects 0.000 description 4
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 4
- 229920001169 thermoplastic Polymers 0.000 description 4
- 239000004416 thermosoftening plastic Substances 0.000 description 4
- 239000004372 Polyvinyl alcohol Substances 0.000 description 3
- 125000001931 aliphatic group Chemical group 0.000 description 3
- 238000001125 extrusion Methods 0.000 description 3
- 239000004633 polyglycolic acid Substances 0.000 description 3
- 239000004626 polylactic acid Substances 0.000 description 3
- 229920002451 polyvinyl alcohol Polymers 0.000 description 3
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 3
- 238000007639 printing Methods 0.000 description 3
- 238000009864 tensile test Methods 0.000 description 3
- YFHICDDUDORKJB-UHFFFAOYSA-N trimethylene carbonate Chemical compound O=C1OCCCO1 YFHICDDUDORKJB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 210000003708 urethra Anatomy 0.000 description 3
- 230000002792 vascular Effects 0.000 description 3
- WHBMMWSBFZVSSR-UHFFFAOYSA-N 3-hydroxybutyric acid Chemical compound CC(O)CC(O)=O WHBMMWSBFZVSSR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000010834 Extracellular Matrix Proteins Human genes 0.000 description 2
- 108010037362 Extracellular Matrix Proteins Proteins 0.000 description 2
- 238000005033 Fourier transform infrared spectroscopy Methods 0.000 description 2
- 229930182556 Polyacetal Natural products 0.000 description 2
- 239000004952 Polyamide Substances 0.000 description 2
- 229920000331 Polyhydroxybutyrate Polymers 0.000 description 2
- 229920001710 Polyorthoester Polymers 0.000 description 2
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 2
- 229920001400 block copolymer Polymers 0.000 description 2
- 239000002872 contrast media Substances 0.000 description 2
- 150000002148 esters Chemical class 0.000 description 2
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 description 2
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 2
- 210000002744 extracellular matrix Anatomy 0.000 description 2
- 239000003517 fume Substances 0.000 description 2
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 2
- 229920001519 homopolymer Polymers 0.000 description 2
- 210000000987 immune system Anatomy 0.000 description 2
- 239000000178 monomer Substances 0.000 description 2
- 239000005015 poly(hydroxybutyrate) Substances 0.000 description 2
- 229920000218 poly(hydroxyvalerate) Polymers 0.000 description 2
- 239000002745 poly(ortho ester) Substances 0.000 description 2
- 229920002463 poly(p-dioxanone) polymer Polymers 0.000 description 2
- 229920001281 polyalkylene Polymers 0.000 description 2
- 229920002647 polyamide Polymers 0.000 description 2
- 229920002643 polyglutamic acid Polymers 0.000 description 2
- 229920006324 polyoxymethylene Polymers 0.000 description 2
- 239000000047 product Substances 0.000 description 2
- 238000005096 rolling process Methods 0.000 description 2
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 2
- 125000003258 trimethylene group Chemical group [H]C([H])([*:2])C([H])([H])C([H])([H])[*:1] 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- WSLDOOZREJYCGB-UHFFFAOYSA-N 1,2-Dichloroethane Chemical compound ClCCCl WSLDOOZREJYCGB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- VPVXHAANQNHFSF-UHFFFAOYSA-N 1,4-dioxan-2-one Chemical compound O=C1COCCO1 VPVXHAANQNHFSF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- CWYKVHKSRMEAKA-UHFFFAOYSA-N 1-hydroxysulfanyl-4-methylbenzene Chemical compound CC1=CC=C(SO)C=C1 CWYKVHKSRMEAKA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010004446 Benign prostatic hyperplasia Diseases 0.000 description 1
- 229920002101 Chitin Polymers 0.000 description 1
- 229920001661 Chitosan Polymers 0.000 description 1
- 229920001634 Copolyester Polymers 0.000 description 1
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000004566 IR spectroscopy Methods 0.000 description 1
- OUYCCCASQSFEME-QMMMGPOBSA-N L-tyrosine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CC1=CC=C(O)C=C1 OUYCCCASQSFEME-QMMMGPOBSA-N 0.000 description 1
- MUBZPKHOEPUJKR-UHFFFAOYSA-N Oxalic acid Chemical compound OC(=O)C(O)=O MUBZPKHOEPUJKR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000002202 Polyethylene glycol Substances 0.000 description 1
- 229920000388 Polyphosphate Polymers 0.000 description 1
- 208000004403 Prostatic Hyperplasia Diseases 0.000 description 1
- DOOTYTYQINUNNV-UHFFFAOYSA-N Triethyl citrate Chemical compound CCOC(=O)CC(O)(C(=O)OCC)CC(=O)OCC DOOTYTYQINUNNV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004480 active ingredient Substances 0.000 description 1
- 229920003232 aliphatic polyester Polymers 0.000 description 1
- 125000005907 alkyl ester group Chemical group 0.000 description 1
- 125000002947 alkylene group Chemical group 0.000 description 1
- 229920006125 amorphous polymer Polymers 0.000 description 1
- 230000003872 anastomosis Effects 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 1
- 239000006227 byproduct Substances 0.000 description 1
- 150000001732 carboxylic acid derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 239000003054 catalyst Substances 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 238000007334 copolymerization reaction Methods 0.000 description 1
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 1
- 229920006237 degradable polymer Polymers 0.000 description 1
- 230000008021 deposition Effects 0.000 description 1
- 238000002059 diagnostic imaging Methods 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N ether Substances CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000001815 facial effect Effects 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 230000009477 glass transition Effects 0.000 description 1
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 1
- 208000013403 hyperactivity Diseases 0.000 description 1
- 238000007654 immersion Methods 0.000 description 1
- 239000007943 implant Substances 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 1
- 238000001746 injection moulding Methods 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 239000007769 metal material Substances 0.000 description 1
- 230000003278 mimic effect Effects 0.000 description 1
- 229920000071 poly(4-hydroxybutyrate) Polymers 0.000 description 1
- 229920001434 poly(D-lactide) Polymers 0.000 description 1
- 229920001432 poly(L-lactide) Polymers 0.000 description 1
- 229920001308 poly(aminoacid) Polymers 0.000 description 1
- 229920000117 poly(dioxanone) Polymers 0.000 description 1
- 239000005014 poly(hydroxyalkanoate) Substances 0.000 description 1
- 229920002627 poly(phosphazenes) Polymers 0.000 description 1
- 229920002791 poly-4-hydroxybutyrate Polymers 0.000 description 1
- 229920000058 polyacrylate Polymers 0.000 description 1
- 239000000622 polydioxanone Substances 0.000 description 1
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 description 1
- 229920000903 polyhydroxyalkanoate Polymers 0.000 description 1
- 229920001855 polyketal Polymers 0.000 description 1
- 229920001444 polymaleic acid Polymers 0.000 description 1
- 229920002959 polymer blend Polymers 0.000 description 1
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 description 1
- 239000001205 polyphosphate Substances 0.000 description 1
- 235000011176 polyphosphates Nutrition 0.000 description 1
- 229920005606 polypropylene copolymer Polymers 0.000 description 1
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 1
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 1
- 229920000166 polytrimethylene carbonate Polymers 0.000 description 1
- 229920002635 polyurethane Polymers 0.000 description 1
- 239000004814 polyurethane Substances 0.000 description 1
- 229920000036 polyvinylpyrrolidone Polymers 0.000 description 1
- 239000001267 polyvinylpyrrolidone Substances 0.000 description 1
- 235000013855 polyvinylpyrrolidone Nutrition 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 1
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 1
- 238000003672 processing method Methods 0.000 description 1
- 201000004240 prostatic hypertrophy Diseases 0.000 description 1
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 1
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 1
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 1
- 229920006126 semicrystalline polymer Polymers 0.000 description 1
- 239000002195 soluble material Substances 0.000 description 1
- 238000000807 solvent casting Methods 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- KDYFGRWQOYBRFD-UHFFFAOYSA-L succinate(2-) Chemical compound [O-]C(=O)CCC([O-])=O KDYFGRWQOYBRFD-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- 229920001059 synthetic polymer Polymers 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 1
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 1
- 230000009466 transformation Effects 0.000 description 1
- 239000001069 triethyl citrate Substances 0.000 description 1
- VMYFZRTXGLUXMZ-UHFFFAOYSA-N triethyl citrate Natural products CCOC(=O)C(O)(C(=O)OCC)C(=O)OCC VMYFZRTXGLUXMZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000013769 triethyl citrate Nutrition 0.000 description 1
- OUYCCCASQSFEME-UHFFFAOYSA-N tyrosine Natural products OC(=O)C(N)CC1=CC=C(O)C=C1 OUYCCCASQSFEME-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000002485 urinary effect Effects 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
- C08L—COMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
- C08L67/00—Compositions of polyesters obtained by reactions forming a carboxylic ester link in the main chain; Compositions of derivatives of such polymers
- C08L67/04—Polyesters derived from hydroxycarboxylic acids, e.g. lactones
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
- A61F2/00—Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
- A61F2/82—Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B33—ADDITIVE MANUFACTURING TECHNOLOGY
- B33Y—ADDITIVE MANUFACTURING, i.e. MANUFACTURING OF THREE-DIMENSIONAL [3-D] OBJECTS BY ADDITIVE DEPOSITION, ADDITIVE AGGLOMERATION OR ADDITIVE LAYERING, e.g. BY 3-D PRINTING, STEREOLITHOGRAPHY OR SELECTIVE LASER SINTERING
- B33Y70/00—Materials specially adapted for additive manufacturing
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B33—ADDITIVE MANUFACTURING TECHNOLOGY
- B33Y—ADDITIVE MANUFACTURING, i.e. MANUFACTURING OF THREE-DIMENSIONAL [3-D] OBJECTS BY ADDITIVE DEPOSITION, ADDITIVE AGGLOMERATION OR ADDITIVE LAYERING, e.g. BY 3-D PRINTING, STEREOLITHOGRAPHY OR SELECTIVE LASER SINTERING
- B33Y80/00—Products made by additive manufacturing
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
- C08J—WORKING-UP; GENERAL PROCESSES OF COMPOUNDING; AFTER-TREATMENT NOT COVERED BY SUBCLASSES C08B, C08C, C08F, C08G or C08H
- C08J5/00—Manufacture of articles or shaped materials containing macromolecular substances
- C08J5/18—Manufacture of films or sheets
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Manufacturing & Machinery (AREA)
- Materials Engineering (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Polymers & Plastics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Transplantation (AREA)
- Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
- Cardiology (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Processing And Handling Of Plastics And Other Materials For Molding In General (AREA)
Abstract
Przedmiotem zgłoszenia jest sposób wytwarzania biodegradowalnego materiału polimerowego, w postaci folii lub filamentu nadającego się do druku 3D metodą FDM lub FFF, do zastosowań w chirurgii urologicznej, z kopolimeru laktydu z glikolem oraz polimeru w postaci polikaprolaktonu, użytych w postaci pelletu lub granulatu o średnicy ziaren 1 - 5 mm, który polega na tym, że stosuje się kopolimer laktydu z glikolem, w którym laktyd stanowi mieszaninę form racemicznych L i D, o udziale procentowym komonomerów laktydu i glikolidu od 50/50 do 75/25, masie cząsteczkowej 90000 — 170000 g/mol oraz polimer polikaprolakton o masie cząsteczkowej nie większej niż 50000 g/mol, przy czym najpierw suszy się granulaty lub pellet kopolimeru i polimeru aż do uzyskania różnicy między wynikami kolejnych ważeń nie większej niż ±0,0003 g, po czym sporządza się roztwór kopolimeru w dichlorometanie oraz roztwór polimeru w dichlorometanie, miesza się oba roztwory i po ich połączeniu miesza się przez kolejne 6 godzin, odparowuje z mieszaniny rozpuszczalnik dwuetapowo, 24 godziny pod ciśnieniem atmosferycznym i następnie 24 godziny pod próżnią, po czym uzyskany w ten sposób materiał, po pocięciu na pellet, stapia się w temperaturze 150 - 190°C i po zhomogenizowaniu poddaje walcowaniu do otrzymania folii o grubości 0,1 - 1,0 mm, którą następnie chłodzi się w powietrzu, lub materiał pocięty na pellet poddaje wytłaczaniu w jednoślimakowej wytłaczarce do uzyskania filamentu o średnicy 1,75 lub 2,85 mm, który następnie chłodzi się w powietrzu. Zgłoszenie obejmuje także sposób wytwarzania biodegradowalnego materiału polimerowego, w postaci filamentu nadającego się do druku 3D metodą FDM lub FFF, do zastosowań w chirurgii urologicznej, z kopolimeru laktydu z glikolem oraz polimeru w postaci polikaprolaktonu, użytych w postaci pelletu lub granulatu o średnicy ziaren 1 - 5 mm, który polega na tym, że stosuje się kopolimer laktydu z glikolem oraz polimer polikaprolakton, o właściwościach jak opisano powyżej, przy czym najpierw suszy się granulaty lub pellet kopolimeru i polimeru aż do uzyskania różnicy między wynikami kolejnych ważeń nie większej niż ±0,0003 g i po ich ewentualnym wymieszaniu w temperaturze pokojowej, poddaje się następnie mieszaniu i wytłaczaniu w jednym procesie w jednoślimakowej wytłaczarko-mieszarce lub w dwuślimakowej wytłaczarce, a materiał wytłoczony w postaci filamentu chłodzi się w powietrzu.
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania biodegradowalnego materiału polimerowego, w postaci folii lub filamentu nadającego się do druku 3D metodą FDM (ang. Fused Deposition Modeling) lub lub FFF (ang. Fused Filament Fabrication), do zastosowań w chirurgii urologicznej, głównie jako stent urologiczny lub rusztowanie do odbudowania/budowania/nadbudowania fragmentów cewki moczowej.
Idea inżynierii tkankowej związana jest bezpośrednio z problemami, z którymi od wielu lat boryka się współczesna implantologia oraz transplantologia. Jej głównym zadaniem jest wytwarzanie przestrzennych struktur, które zapewnią odpowiednie środowisko do regeneracji uszkodzonych lub niewykształconych tkanek. Niezmiernie ważnym zagadnieniem jest dostosowanie właściwości takiego materiału do właściwości regenerowanej tkanki. Dąży się do tego, aby syntetyczna macierz zewnątrzkomórkowa naśladowała pewne korzystne cechy oraz spełniała niektóre funkcje naturalnej macierzy zewnątrzkomórkowej. Rusztowania w inżynierii tkankowej odgrywają kluczową rolę podporową, pozwalając ponadto zapewnić odpowiednie środowisko do odbudowy funkcjonalnej tkanki. Coraz częściej dąży się do tego, aby te układy degradowały się w z góry założonym czasie do nieszkodliwych produktów ubocznych. Każda, nawet najmniejsza ingerencja ciał obcych, wprowadzonych w celach leczniczych do organizmu człowieka, związana jest z reakcją układu immunologicznego.
Z tego powodu dąży się do ograniczenia stosowania trwałych materiałów metalowych na rzecz materiałów zdolnych do degradacji po określonym czasie - polimerów biodegradowalnych. Dzięki temu nie ma konieczności usuwania po okresie rekonwalescencji zbędnego implantu dodatkowo obciążającego organizm pacjenta.
W tym zakresie znajdują szerokie zastosowanie biodegradowalne polimery. Termoplastyczne polimery biodegradowalne można przetwarzać takimi samymi metodami jak polimery syntetyczne. W zależności od budowy chemicznej i masy cząsteczkowej cechują się one różnymi właściwościami fizykomechanicznymi oraz fizykochemicznymi. Do najważniejszych w grupie polimerów biodegradowalnych cechujących się odpowiednią sztywnością, a zarazem wysoką wytrzymałością na uwagę zasługują alifatyczne α-poliestry, a w szczególności polilaktyd (PLA), poliglikolid (PGA), polikaprolakton (PCL) oraz kopolimer glikolidu i laktydu (PLGA). Szybkość degradacji alifatycznych poliestrów kształtuje się w następującej kolejności: najszybciej degraduje PGA, następnie PLA, a najdłużej - PCL, nawet do 4 lat. Czynnikami wpływającymi na kinetykę degradacji są między innymi: skład chemiczny, konfiguracja struktury, sposób przetwarzania materiału, masa molowa, czynniki środowiskowe, naprężenia, odkształcenia oraz krystaliczność.
Obecnie wymienione powyżej biodegradowalne materiały polimerowe znajdują głównie szerokie zastosowanie w produkcji nici chirurgicznych, stentów lub graftów naczyniowych, płytek do zespoleń w obrębie twarzoczaszki oraz w osteosyntezie.
W opisie zgłoszenia patentowego US20130150943A1 ujawniono sposób wytwarzania biodegradowalnego stentu, z biodegradowalnego materiału polimerowego amorficznego, semik rystalicznego lub krystalicznego, poddawanego dodatkowej obróbce w celu kontroli stopnia krystaliczności (od 0 do 45%) oraz temperatury zeszklenia (poniżej 50°C). Materiałem polimerowym stosowanym w tym sposobie jest polimer kwasu mlekowego, kwasu poliglikolowego, kwasu polimlekowego glikolowego, kopolimer laktydu i glikolidu, laktydu i kaprolaktonu, laktydu, glikolidu i kaprolaktonu, mieszanina laktydu i glikolidu, laktydu i kaprolaktonu, laktydu, glikolidu i kaprolaktonu, kopolimer glikolidu i kaprolaktonu lub mieszanina glikolidu i kaprolaktonu. Szczególnie preferowanym polimerem jest kopolimer L-laktydu i glikolidu.
W opisie zgłoszenia patentowego WO2015023077A1 ujawniono sposób trójwymiarowego drukowania stentu do naczyń krwionośnych, na obrotowym wałku ze stałą lub zmienną prędkością. Sten wykonuje się z polikaprolaktonu, kwasu poliglikolowego, mlekowego, mlekowo-glikolowego lub ich mieszaniny. Sposób polega na stopieniu materiału polimerowego, który następnie poddawany jest w postaci płynnej przez dyszę na odpowiednie sekcje obracającego się wałka, na którym materiał zestala się w wyniku studzenia i następnie jest usuwany z wałka.
W opisie patentowym US9855371B2 ujawniono sposób wytwarzania bioresorbowalnego stentu stosowanego jako stent tchawicy, moczowodu, stent do cewki moczowej, stent moczowy, stent naczyniowy o dużej wytrzymałości, poprzez odlewanie rozpuszczalnikowe. Biodegradowalny materiał polimerowy o masie cząsteczkowej od ponad 500 000 do 2 682 000 g/mol lub mieszankę materiałów, w którym co najmniej jeden ma masę cząsteczkową 500 000-2 682 000 g/mol rozpuszcza się w rozpuszczalnikach organicznych, w których tworzone są filmy, nawijane następnie na urządzenie o kołowym przekroju w celu wytworzenia stentu. Materiałem do przygotowania stentu jest jeden polimer lub mieszanka wielu polimerów z grupy obejmującej: polimery amorficzne, spolimeryzowany kwas mlekowy, polimery i/lub kopolimery ulegające hydrolizie, poliestry i/lub ich kopolimery ulegające hydrolizie, polimery półkrystaliczne, homopolimery L-laktydu, poli(L-laktyd), poli(glikolid), poli(kaprolakton), poli(D-laktyd), poli(DL-laktyd), kopolimery L-laktydu i glikolidu, L-laktydu i D-laktydu, L-laktydu i kaprolaktonu, poli(dioksanon), pli(hydroksyalkanian), poli(ortoester), poli(4-hydroksymaślan), poli(bezwodnik), poli(węglan trimetylenu), poli(bursztynian butylenu), polimery z zakończeniem estrowym, polimery z grupą końcową zawierającą wolny kwas karboksylowy, ester alkilowy, ester decylowy, ester docecyIowy, polimery lub kopolimery krystaliczne, polimer zawierający grupę kwasową lub tworzywa termoplastyczne. Ponadto stosowana jest dodatkowa druga folia zawierająca co najmniej jeden składnik aktywny i poli(DL-laktyd) lub kopolimer DL-laktydu i glikolidu.
Z opisu zgłoszenia patentowego PL424990A1 jest znany sposób wytwarzania biodegradowalnego stentu naczyniowego poprzez formowanie za pomocą wtrysku z wykorzystaniem mieszaniny biodegradowalnych i biokomatybilnych termoplastycznych homopolimerów i polimerów, charakteryzujących się średnią liczbowo masą cząsteczkową 15000-150000 g/mol. Mieszanina materiałów składa się do 99,9% wagowych z kopoliestrów alifatycznych (laktyd, glikolid, ε-kaprolakton) i/lub do 99,9% wagowych kopoliestrowęglanów alifatycznych, otrzymywanych w wyniku reakcji kopolimeryzacji węglanu trimetylenu z monomerami z grupy obejmującej : laktyd, glikolid, i ε-kaprolakton i/lub do 40% wagowych poliwęglanu trimetylenu. Ponadto mieszanka materiałów zawiera również 0,1-4% wagowych monomerów laktydu, glikolidu, ε-kaprolaktonu i poliwęglanu trimetylenu nieprzereagowanych w procesie syntezy i ewentualnie od 0,5% do 25% wagowych biokompatybilnych i biodegradowalnych oligomerów z grupy: oligo(laktyd), oligofe-kaprolakton), oligo(węglan trimetylenu), o ligo-(bursztynian butylenu) lub ich mieszanin. Stent wytwarzany jest w następujący sposób: tworzywo poddaje się granulacji, a otrzymany granulat poddaje się następnie uplastycznieniu w temperaturze 90-200°C i wtryskuje się uplastyczniony granulat w temperaturze 150-210°C do ogrzanej do temperatury 40-70°C formy, przy ciśnieniu 27003000 bar. Tak uzyskany stent jest chłodzony, usuwany z formy i poddawany obróbce końcowej.
Z opisie zgłoszenia patentowego WO2021076716A1 jest znany sposób wytwarzania spersonalizowanych bioresorbowalnych polimerowych stentów, wykonywanych z polimeru składającego się z jednego lub więcej składników, takich jak kwas glikolowy, mlekowy, 1,4-dioksanon, węglan trimetylenu, kwas 3-hydroksymasłowy, ε-kaprolakton poliglikolowy, kwas polimlekowy, polidioksanon, polikaprolakton, poli(Iaktyd-koka-prolakton), poli(ortoester); poli(bezwodnik), poli(fosfazen), polihydroksyalkaniany, poliester, poliwęglan, poliwęglan tyrozynowy, poliamid, polipeptyd, poli(aminokwas); poliester, poliamid, poli(alkilan alkilenu), poliester, glikol polietylenowy, poliwinylopirolidon, poliuretan, polieterester, poliacetal, poliakrylan, kopolimer poli(oksyetylen)/polipropylen), poliacetal, poliketal, polifosforan, polifosfoester, szczawian polialkilenu, bursztynian polialkilenu, poli(kwas maleinowy), jedwab, chityna, chitozan, polisacharyd oraz poli-4-hydroksymaślan. Stent można wydrukować w technologii 3D.
Znany jest także, z opisu zgłoszenia patentowego WO2019132463A1 sposób wytwarzania biodegradowalnego stentu zawierającego biodegradowalny polimer i środek kontrastowy, który może być wizualizowany w czasie rzeczywistym w celu śledzenia stentu in vivo. Biodegradowalny polimer może być wybrany z grupy składającej się z: kwasu polimlekowego (PLA), poliglikolidu (PGA), polimlekowego-co-glikolidu (PLGA), polikaprolaktonu (PCL) i ich pochodnych. Średnia masa cząsteczkowa polimeru biodegradowalnego mieści się w zakresie 5000-300 000. Stent wytwarzany jest w wieloetapowym procesie, który polega na stopieniu biodegradowalnego polimeru w temperaturze wyższej o 5-20°C od temperatury topnienia, mieszaniu stopionego polimeru z środkiem kontrastowym w postaci proszku w temperaturze o 5 do 20°C wyższej od temperatury topnienia, ale nie jest to ograniczone, w 10-30 minut.
Z opisu zgłoszenia patentowego KR20180001191A jest znany filament o średnicy 0,5-3,0 mm do drukowania 3D o temperaturze topnienia w zakresie 80-190°C, o twardości Shore A 30-90. Filament składa się z części degradowalnej i niedegradowalnej. Preferowanym biodegradowalnym polimerem, zawartym w ilości 30-70% wagowych w stosunku do całkowitej masy kompozycji, jest : kwas polimlekowy (PLA), poli(kwas glikolowy) (PGA), polilaktyd-co-glikolid (PLGA), polikaprolakton (PCL) i co najmniej jeden polimer ulegający biodegradacji wybrany z grupy składającej się z: alkoholu poliwinylowego (PVA), poliwalerolaktonu (PVL), polihydroksymaślanu (PHB) i polihydroksywalerianu (PHV). Niedegradowalnym polimerem, zawartym w ilości 30-70% wagowych w stosunku do całkowitej masy kompozycji, jest polimer wybrany, z grupy: kopolimer blokowy poliuretan-węglan, kopolimer blokowy poliamid-eter, poliamid-ester, poliamid-węglan i ich mieszaniny.
W opisie zgłoszenia patentowego CN107234806A ujawniono sposób drukowania 3D z prętów wykonanych z biomateriałów polimerowych. Pręty formowane są z proszków następujących polimerów: kwas poliglikolowy (PGA), polikaprolakton (PCL), PLA, PLGA, PPDO i podobne. W celu wytworzenia pręta materiał polimerowy jest mielony i następnie przesiewany, sproszkowaną próbkę dodaje się do specjalnej formy proszkowej i pod ciśnieniem formuje w pręty, które poddawane są następnie sterylizacji. Proces druku z takich prętów przebiega w następujący sposób: wytworzone pręty montuje się w dedykowanej głowicy drukującej, następnie materiał doprowadza się do temperatury topnienia i kolejno wytłacza zgodnie z przygotowanym modelem.
Z opisu zgłoszenia patentowego CN111450317A jest znany sposób wytwarzania biodegradowalnego stentu cewki moczowej do inżynierii tkankowej z mieszaniny PLGA (z kwasem mlekowym i kwasem glikolowym w stosunku wagowym 1-9:1), PCL i solubilizatora (cytrynian trietylu) w stosunku wagowym 70:30:2: W celu przygotowania materiału wszystkie jego składniki oraz katalizator (kwas p-toluenosulfenowy) rozpuszcza się w rozpuszczalniku organicznym (1,2-dichloroetan) w temperaturze 50-70°C, następnie podnosi się temperaturę roztworu do 100-120°C, po czym roztwór schładza się do temperatury pokojowej przez 4,5 h i prowadzi się strącanie alkoholem z energicznym mieszaniem, a wytworzony biały kłaczkowaty osad odsącza się, przefiltrowuje i przepłukuje. W kolejnym etapie na podstawie obrazowania medycznego przygotowuje się szablon ubytku cewki, który wytwarza się z wykorzystaniem druku 3D z materiału rozpuszczalnego w wodzie (PVA). Szablon ten następnie poleruje się do gładkiej powierzchni, płucze i suszy. Tak przygotowany szablon/wzór zanurza się w roztworze PLGA/PCL/solubizator przygotowanym z wykorzystaniem rozpuszczalników organicznych (chlorek metylenu) przez 5-15 s, a następnie wyciąga ze stałą prędkością. Po całkowitym odparowaniu rozpuszczalnika organicznego wykonuje się kolejne zanurzenie przez 5-15 s i całkowite odparowanie. Proces ten powtarza się do uzyskania stentu o grubości ścianki 180-220 μm. Następnie wytworzony stent wraz z szablonem umieszcza się w łaźni wodnej o temperaturze 35-55°C z ciągłym mieszaniem i wymianą wody w celu rozpuszczenia szablonu.
Celem wynalazku jest opracowanie sposobu wytwarzania materiału w postaci mieszaniny dwóch termoplastycznych, biodegradowalnych, biokompatybilnych poliestrów o ściśle określonej strukturze chemicznej, stopniu krystaliczności, czasie degradacji, nie wywołujących reakcji toksycznych, ani nadaktywności układu odpornościowego, w postaci folii lub filamentu nadającego się do druku 3D metodą FDM, do zastosowań w chirurgii urologicznej.
Sposób wytwarzania biodegradowalnego materiału polimerowego, w postaci folii lub filamentu nadającego się do druku 3D metodą FDM lub FFF, do zastosowań w chirurgii urologicznej, z kopolimeru laktydu z glikolidem (PLGA) oraz polimeru w postaci polikaprolaktonu (PCL), użytych w postaci pelletu lub granulatu o średnicy ziaren 1-5 mm, według wynalazku charakteryzuje się tym, że stosuje się kopolimer PLGA, w którym laktyd stanowi mieszaninę form racemicznych L i D o udziale procentowym obu form 50/50, o udziale procentowym komonomerów laktydu i glikolidu od 50/50 do 75/25, masie cząsteczkowej 90000-170000 g/mol i lepkości właściwej 0,6-1,4 dl/g, oraz polimer PCL o masie cząsteczkowej nie większej niż 50000 g/mol i lepkości właściwej 0,2-1,0 dl/g, zachowując stosunek ilości polimeru PCL do ilości kopolimeru PLGA od 10:90 do 50:50% wagowych, przy czym najpierw suszy się granulaty lub pellet kopolimeru PLGA i polimeru PCL aż do uzyskania różnicy między wynikami kolej nych ważeń nie większej niż ± 0,0003 g, po czym sporządza się roztwór kopolimeru PLGA w dichlorometanie, o stężeniu 10-20% oraz roztwór polimeru PCL w dichlorometanie, o stężeniu 10-20%, miesza się oba roztwory w temperaturze 20°C w czasie 12 godzin i po ich połączeniu miesza się przez kolejne 6 godzin w temperaturze 20°C, odparowuje z mieszaniny rozpuszczalnik dwuetapowo, 24 godziny pod ciśnieniem atmosferycznym i następnie 24 godziny pod próżnią. Uzyskany w ten sposób materiał, po pocięciu na pellet, stapia się w temperaturze 150-190°C i po zhomogenizowaniu poddaje walcowaniu w temperaturze 150-190°C do otrzymania folii o grubości 0,1-1,0 mm, którą następnie chłodzi się w powietrzu w temperaturze 20-25°C, lub materiał pocięty na pellet poddaje wytłaczaniu w jednoślimakowej wytłaczarce w temperaturze 140-190° przy szybkości obrotów ślimaka 10-00 m/s do uzyskania filamentu o średnicy 1,75 lub 2,85 mm, który następnie chłodzi się w powietrzu w temperaturze 2-25°C.
Sposób wytwarzania biodegradowalnego materiału polimerowego w postaci filamentu nadającego się do druku 3D metodą FDM lub FFF, do zastosowań w chirurgii urologicznej, z kopolimeru laktydu z glikolidem (PLGA) oraz polimeru w postaci polikaprolaktonu (PCL), użytych w postaci pelletu lub granulatu o średnicy ziaren 1-5 mm, według wynalazku polega także na tym, że stosuje się kopolimer PLGA, w którym laktyd stanowi mieszaninę form racemicznych L i D o udziale procentowym obu form
50/50, o udziale procentowym komonomerów laktydu i glikolidu od 50/50 do 75/25, masie cząsteczkowej 90000-370000 g/mol i lepkości właściwej 0,6-1,4 dl/g, oraz polimer PCL o masie cząsteczkowej nie większej niż 50000 g/mol i lepkości właściwej 0,2-1,0 dl/g, zachowując stosunek polimeru PCL do kopolimeru PLGA od 10:90 do 50:50% wagowych, przy czym najpierw suszy się granulaty lub pellet kopolimeru PLGA i polimeru PCL aż do uzyskania różnicy między wynikami kolejnych ważeń nie większej niż ± 0,0003 g, postępując jak opisano powyżej i po ich ewentualnym wymieszaniu w temperaturze pokojowej, poddaje się następnie mieszaniu i wytłaczaniu w jednym procesie w jednoślimakowej wytłaczarko-mieszarce w temperaturze 140-190°C przy szybkości obrotów ślimaka 10-100 m/s lub w dwuślimakowej wytłaczarce, w temperaturze 120-160°C przy szybkości obrotów ślimaka 50-200 m/s, a materiał wytłoczony w postaci filamentu chłodzi się w powietrzu w temperaturze 20-25°C. Stosuje się wytłaczarkę dwuślimakową o budowie segmentowej, dzielonej w poziomie, składającą się z chłodzonej wodą strefy zasypowej oraz 5-7 stref termoregulacyjnych, zawierającą główny port dozujący, co najmniej trzy dodatkowe porty wielofunkcyjne odgazowująco-dozujące oraz adapter do odgazowania atmosferycznego, przy czym mieszaninę polimeru i kopolimeru dozuje się do dwuślimakowej wytłaczarki za pomocą dwu- lub jednoślimakowego dozownika wolumetrycznego, bądź dwuślimakowego dozownika grawimetrycznego.
Granulat lub pellet polimeru PCL suszy się jednoetapowo w temperaturze 20°C pod próżnią 5-10 Pa w czasie 48 godzin, zaś granulat lub pellet kopolimeru PLGA trójetapowo, w I-szym etapie pod ciśnieniem atmosferycznym w temperaturze 40°C przez 6 godzin, w drugim etapie pod ciśnieniem atmosferycznym w temperaturze 30°C przez 18 godzin i w trzecim etapie pod próżnią 5-10 Pa temperaturze 20°C przez 24 godziny.
Materiał otrzymany sposobem według wynalazku znajduje zastosowanie w chirurgii urologicznej, głównie jako rusztowanie/stent służące do odbudowania/budowania/nadbudowania fragmentów cewki moczowej. Materiał ten może stanowić zewnętrzną warstwę wielowarstwowego płaszcza cewki moczowej, który ma zadanie utrzymywanie odpowiedniej sztywności konstrukcji. Sztywność jego jest zbliżona do sztywności naturalnej cewki moczowej. Parametry wytrzymałościowe i czas degradacji produktów otrzymanych sposobem według wynalazku mogą być swobodnie zmieniane i dostosowane do zapotrzebowania odbiorcy, moduł Younga tych wyrobów w próbie na rozciąganie mieści się w przedziale 100-900 MPa, a czas degradacji w przedziale 3-12 miesięcy. Folia otrzymana sposobem według wynalazku może być formowana w różne kształty, w tym preferencyjnie w kształt stentu urologicznego. Zastosowanie materiału polimer PCL/kopolimer PLGA o ściśle określonym składzie chemicznym pozwala na uzyskanie bardzo precyzyjnej wymiarowo ścieżki druku o wysokości od 80 μm. Dzięki temu możliwe będzie wydrukowanie różnych elementów, w tym także stentu urologicznego stosowanego przy zwężeniach cewki na skutek przerostu prostaty, wykorzystując do tego technikę druku na poziomej obrotowej platformie roboczej.
Sposób według wynalazku ilustrują poniższe przykłady z powołaniem się na rysunek, na którym Fig. 1 przedstawia zdjęcie folii otrzymanej w przykładzie 1, Fig. 2 zdjęcie folii otrzymanej w przykładzie 2, Fig. 3 zdjęcie filamentu otrzymanego w przykładzie 3, Fig. 4 zdjęcie filamentu otrzymanego w przykładzie 3 wykonane z mikroskopu optycznego, z użyciem światła widzialnego i z filtrem polaryzacyjnym, Fig. 5 zdjęcie filamentu otrzymanego w przykładzie 4, Fig. 6 zdjęcia filamentu otrzymanego w przykładzie 4 z mikroskopu optycznego, z użyciem światła widzialnego i z filtrem polaryzacyjnym, zaś Fig. 7 geometrie stentów wydrukowanych z filamentu otrzymanego w przykładzie 4.
Przykład 1
Przygotowano granulat kopolimeru PLGA, o średnicy ziaren 1-5 mm, o udziale każdego ze składników równym 50% wagowych, w którym laktyd był mieszaniną racemiczną formy L i D o udziale każdej z form 50%, oraz granulaty polimeru PCL o masie cząsteczkowej 25000 g/mol oraz masie cząsteczkowej 37000 g/mol. Granulat kopolimeru PLGA oraz granulaty polimeru PCL o masie cząsteczkowej 25:000 g/mol i lepkości właściwej 0,2-0,5 dl/g oraz o masie cząsteczkowej 37000 g/mol i lepkości właściwej 0,5-0,7 dl/g przygotowano w ilościach takich, aby ilości granulatów polimeru PCL stanowiły 10% wagowych masy ich mieszanek z kopolimerem PLGA. Przed sporządzeniem roztworów PCL oraz PLGA przeprowadzono proces suszenia PCL oraz PLGA.
Suszenie granulatu PCL o masie cząsteczkowej 25000 oraz 37000 g/mol prowadzono w temperaturze 20°C pod próżnią 7 Pa w czasie 48 godzin w próżniowy m reaktorze rurowym. Za kryterium zakończenia procesu suszenia przyjęto różnicę w wynikach pomiędzy kolejnymi ważeniami nie większą niż ± 0,0003 g.
Suszenia granulatu PLGA prowadzono w trzech etapach:
etap 1 - pod ciśnieniem atmosferycznym w temperaturze 40°C przez 6 godzin, etap 2 - pod ciśnieniem atmosferycznym w temperaturze 30°C przez 18 godzin, etap 3 - suszenie w suszarce próżniowej pod obniżonym ciśnieniem 7 Pa, w temperaturze 20°C przez 24 godziny.
Za kryterium zakończenia procesu suszenia przyjęto różnicę w wynikach pomiędzy kolejnymi ważeniami nie większą niż ± 0,0003 g.
Po wysuszeniu próbek granulaty PLGA i PCL rozpuszczono w oddzielnych kolbach płaskodennych o pojemności 250 ml w dichlorometanie (DCM) stosując 18 g granulatu PLGA w 180 ml DCM (10% roztwór PLGA w DCM) oraz 2 g granulatu PCI w 20 ml DCM (10% roztwór PCL w DCM). Następnie sporządzone roztwory polimerów mieszano 12 godzin na mieszadle magnetycznym w temperaturze 20°C. Po upływie tego czasu zlano oba roztwory i mieszano przez kolejne 6 godzin, po czym wylano na szklane szalki Petriego, pozostawiono je na 24 godziny pod dygestorium w celu odparowania rozpuszczalnika. Grubość powstałej folii wynosiła 200 ± 20 μm. Następnie powstały film oderwano od dna szklanego naczynia i pozostawiono na kolejne 24 godziny w suszarce próżniowej w celu odparowania rozpuszczalnika. Tak przeprowadzona procedura pozwoliła na całkowite usunięcie rozpuszczalnika z przygotowanej próbki folii, co potwierdziły badania wykonane za pomocą spektroskopii FTIR (ang. Fourier Transformation Infrared Scpectroscopy). Otrzymany materiał został pocięty na pellet, a następnie stopiony w temperaturze 190°C i intensywnie homogenizowany przez okres czasu 10 minut. Po upływie tego czasu stopioną masę umieszczono na formującej ławie grzejnej o temperaturze 190°C, na której formowano ją w folię w wyniku jej walcowania.
W wyniku tego procesu technologicznego otrzymano folię o grubości 500 ± 50 μm, której przykładowe zdjęcie przedstawiono na Fig. 1 rysunku.
Na otrzymanych próbkach folii przeprowadzono badania statycznej próby na rozciąganie. Moduł Younga dla próbki PLGA z dodatkiem 10% wagowych PGL o masie cząsteczkowej 25000 g/mol wynosił 825 MPa, dla próbki PLGA z dodatkiem 10% wagowych PCL o masie cząsteczkowej 37000 g/mol wynosił 760 MPa. Materiały te zostały poddane badaniom degradacyjnym w r-rze PBS w temperaturze 37°C w warunkach statycznych. Obydwa materiały mogą pełnić funkcje podporowe przez okres 2 tygodni od momentu umieszczenie ich w r-rze PBS. Nastąpił tylko niewielki wzrost modułu Younga o około 30-40 MPa. Po miesiącu obie próbki straciły spójność, a po 3 miesiącach przechowywania uległy one całkowitej degradacji.
Przykład 2
Przygotowano granulaty kopolimeru PLGA i polimeru PCL takich jak w przykładzie 1, z tym, że granulat kopolimeru PLGA oraz granulaty polimeru PCL przygotowano w ilościach takich, aby ilości granulatów polimeru PCL stanowiły 30% wagowych masy ich mieszanek z kopolimerem PLGA. Przed sporządzeniem roztworów PLGA i PCL przeprowadzono suszenie granulatów PCL oraz PLGA postępując jak w przykładzie 1.
Po wysuszeniu próbki granulatów PLGA i PCL rozpuszczono w kolbach płaskodennych o pojemności 250 ml w DCM w ilości: 14 g granulatu PLGA w 140 ml DCM (10% roztwór PLGA w DCM) oraz 6 g PCL w ilości 60 ml DCM (10% roztwór PCI w DCM). Następnie każdy z roztworów polimerów mieszano w czasie 12 godzin na mieszadle magnetycznym w temperaturze 20 °C. Po upływie tego czasu zlano oba roztwory i mieszano przez kolejne 6 godzin, po czym całość wylano na szklane szalki Pe triego, pozostawiono na czas 24 godzin pod dygestorium w celu odparowania rozpuszczalnika. Grubość powstałej folii wynosiła 180 ± 20 μm. Następnie powstały film oderwano od dna szklanego naczynia i pozostawiono na kolejne 24 godziny w suszarce- próżniowej w celu odparowania rozpuszczalnika. Tak przeprowadzona procedura pozwoliła na całkowite usunięcie rozpuszczalnika z przygotowanej pró bki folii, co potwierdziły badania wykonane za pomocą spektroskopii FTIR. Otrzymany materiał został pocięty na pellet, a następnie stopiony w temperaturze 170°C i intensywnie homogenizowany przez okres 7 minut. Po upływie tego czasu stopioną masę umieszczono na formującej ławie grzejnej o temperaturze 170°C, na której formowana ją w folię w wyniku jej walcowania. W wyniku tego procesu otrzymano folię o grubości 400 ± 50 μm, której przykładowe zdjęcie przedstawiono na Fig. 2 rysunku.
Na otrzymanych próbkach folii przeprowadzono badania statycznej próby na rozciąganie. Otrzymany moduł Younga dla próbki PLGA z dodatkiem 30% wagowych PCL o masie cząsteczkowej 25000 g/mol wynosił 370 MPa oraz dla próbki PLGA z dodatkiem 30% wagowych PCL o masie cząsteczkowej 37000 g/mol - 450 MPa. Materiały te zostały poddane badaniom degradacyjnym w r-rze PBS w temperaturze 37°C w warunkach statycznych. Obydwa materiały mogą pełnić funkcje podporowe przez okres tygodni od momentu umieszczenie ich w r-rze PBS. Nastąpił tylko niewielki wzrost modułu Younga o około 30-60 MPa. Po miesiącu moduł Younga osiągnął wartość odpowiednio o 10 MPa wyższą dla PCL o masie cząsteczkowej 25000 g/mol oraz o 110 MPa wyższą dla PCL o masie cząsteczkowej 37000 g/mol, a po 7 miesiącach przechowywania oba materiały uległy całkowitej degradacji.
Przykład 3
Przygotowano granulat kopolimeru PLGA o średnicy ziaren 1-5 mm, o udziale każdego ze składników równym 50% wagowych, w którym laktyd był mieszaniną racemiczną formy L i D o udziale każdej z form 50%, oraz granulat polimeru PCL o masie cząsteczkowej 37000 g/mol. Granulat kopolimeru PLGA oraz granulat polimeru PCL przygotowano w ilościach-takich, aby ilość granulatu polimeru PCL stanowiła 30% wagowych masy jego mieszanki z kopolimerem PLGA. Proces wytworzenia materiału rozpoczęto od procesu suszenia granulatów PCL oraz PLGA, który przeprowadzono jak w przykładzie 1. Po wysuszeniu, próbki granulatów PLGA i PCL mieszano mechanicznie w temperaturze pokojowej. Proces wytłaczania filamentu z mieszanki przeprowadzono na mieszarko-mikrowytłaczarce, która składała się z dwóch sekcji. Proces mieszania przeprowadzono w temperaturze 170°C. Prędkość obrotowa ślimaka wynosiła 20 rpm. Proces mieszania termicznego odbywał się w ciągu 3 minut. Po upływie tego czasu materiał przechodził do sekcji wytłaczania. Temperatura w tej sekcji wynosiła 170°C. Wytłoczony filament był chłodzony suchym powietrzem w temperaturze 20-25°C. Zdjęcie otrzymanego filamentu w postaci żyłki przedstawiono na Fig. 3 rysunku. Otrzymany filament został poddany badaniom morfologii powierzchni ścianki oraz przekroju poprzecznego, z wykorzystaniem mikroskopu optycznego, zarówno z użyciem światła widzialnego jak i z filtrem polaryzacyjnym. Zdjęcia filamentu z mikroskopu optycznego przedstawiono na Fig. 4 rysunku. Zarówno bok jak i przełom filamentu były gładkie, nie są widoczne obszary odznaczające się różną budową fazową, co świadczy o homogenicznym wymieszaniu tych dwóch składników.
Przykład 4.
Przygotowano granulaty kopolimeru PLGA i polimeru PCL takich jak w przykładzie 3. Granulat kopolimeru PLGA oraz granulat polimeru PCL przygotowano w ilościach takich, aby ilość granulatu polimeru PCL stanowiła 30% wagowych masy jego mieszanki z kopolimerem PLGA. Proces wytworzenia materiału w postaci filamentu rozpoczęto od procesu suszenia granulatów PCL oraz PLGA według procedury opisanej w przykładzie 1. Do wytłaczania materiału w postaci filamentu o średnicy 1,75 mm użyto odpowiednio 30 g PCL i 70 g PLGA oraz wytłaczarki dwuślimakowej o budowie segmentowej, dzielonej w poziomie, składającej się z chłodzonej wodą strefy zasypowej oraz 5 stref termoregulacyjnych, zawierającej główny port dozujący, trzy dodatkowe porty wielofunkcyjne odgazowująco-dozujące oraz adapter do odgazowania atmosferycznego, z jednoślimakowym dozownikiem wolumetrycznym. Temperatura wytłaczania wynosiła 140°C. W każdej kolejnej sekcji wytłaczania temperatura była wyższa o kolejne 5°C. Prędkość obrotową ślimaka ustalono na 140 rpm. Przy tak ustalonych parametrach szybkość odbioru filamentu ustawiono na 0,4-0,6 m/min. Wytłoczony filament suszono w strugach powietrza w temperaturze powietrza 20-25°C. Na Fig. 5 rysunku przedstawiono zdjęcie otrzymanego filamentu.
Otrzymany filament został także poddany badaniom morfologii powierzchni ścianki ora z przekroju poprzecznego z wykorzystaniem mikroskopu optycznego zarówno z użyciem światła widzialnego jak i z filtrem polaryzacyjnym. Zdjęcia filamentu z mikroskopu optycznego przedstawiono na Fig. 6 rysunku. Zarówno bok jak i przełom filamentu są gładkie, nie są widoczne obszary odznaczające się różną budową fazową, co świadczy o homogenicznym wymieszaniu dwóch składników.
Filament został wykorzystany do wydrukowania metodą FDM rusztowania w kształcie walca (stenty) w dwóch geometriach o średnicy zewnętrznej wynoszącej 3 mm, które zostały przedstawione ha Fig. 7 rysunku. Temperatura druku wynosiła 140°C. Struga ścieżki wychodząca z dyszy drukarki była chłodzona w strumieniu powietrza o temperaturze 20-25°C. Otrzymana ścieżka o szerokości 180 μm wykazywała stałość wymiarową.
Claims (2)
1. Sposób wytwarzania biodegradowalnego materiału polimerowego, w postaci folii lub filamentu nadającego się do druku 3D metodą FDM lub FFF, do zastosowań w chirurgii urologicznej, z kopolimeru laktydu z glikolidem oraz polimeru w postaci polikaprolaktonu, użytych w postaci pelletu lub granulatu o średnicy ziaren 1-5 mm, znamienny tym, że stosuje się kopolimer laktydu z glikolidem, w którym laktyd stanowi mieszaninę form racemicznych L i D o udziale procentowym obu form 50/50, o udziale procentowym komonomerów laktydu i glikolidu od 50/50 do 75/25, masie cząsteczkowej 90000-170000 g/mol i lepkości właściwej 0,6-1,4 dl/g, oraz polimer polikaprolakton o masie cząsteczkowej nie większej niż 50000 g/mol i lepkości właściwej 0,2-,0 dl/g, zachowując stosunek ilości polimeru do ilości kopolimeru od 10:90 do 50:50% wagowych, przy czym najpierw suszy się granulaty lub pellet kopolimeru polimeru aż do uzyskania różnicy między wynikami kolejnych ważeń nie większej niż ± 0,0003 g, po czym sporządza się roztwór kopolimeru w dichlorometanie, o stężeniu 10-20% oraz roztwór polimeru w dichlorometanie, o stężeniu 10-20%, miesza się oba roztwory w temperaturze 20°C w czasie 12 godzin i po ich połączeniu miesza się przez kolejne 6 godzin w temperaturze 20°C, odparowuje z mieszaniny rozpuszczalnik dwuetapowo, 24 godziny pod ciśnieniem atmosferycznym i następnie 24 godziny pod próżnią, po czym uzyskany w ten sposób materiał, po pocięciu na pellet, stapia się w temperaturze 150-190°C i po zhomogenizowaniu poddaje walcowaniu w temperaturze 150-190°C do otrzymania folii o grubości 0,1-1,0 mm, którą następnie chłodzi się w powietrzu w temperaturze 20-25°C, lub materiał pocięty na pellet poddaje wytłaczaniu w jednoślimakowej wytłaczarce w temperaturze 140-190° przy szybkości obrotów ślimaka 10-100 m/s do uzyskania filamentu o średnicy 1,75 lub 2,85 mm, który następnie chłodzi się w powietrzu w temperaturze 20-25°C.
2. Sposób wytwarzania biodegradowalnego materiału polimerowego, w postaci filamentu nadającego się do druku 3D metodą FDM lub FFF, do zastosowań w chirurgii urologicznej, z kopolimeru laktydu z glikolidem oraz polimeru w postaci polikaprolaktonu, użytych w postaci pelletu lub granulatu o średnicy ziaren 1-5 mm, znamienny tym, że stosuje się kopolimer laktydu z glikolidem, w którym laktyd stanowi mieszaninę form racemicznych L i D o udziale procentowym obu form 50/50, o udziale procentowym komonomerów laktydu i glikolidu od 50/50 do 75/25, masie cząsteczkowej 90000-170000 g/mol i lepkości właściwej 0,6-1,4 dl/g, oraz polimer polikaprolakton o masie cząsteczkowej nie większej niż 50000 g/mol i lepkości właściwej 0,2-1,0 dl/g, zachowując stosunek polimeru do kopolimeru od 10:90 do 50:50% wagowych, przy czym najpierw suszy się granulaty lub pellet kopolimeru i polimeru aż do uzyskania różnicy między wynikami kolejnych ważeń nie większej niż ± 0,0003 g i po ich ewentualnym wymieszaniu w temperaturze pokojowej, poddaje się następnie mieszaniu i wytłaczaniu w jednym procesie w jednoślimakowej wytłaczarko-mieszarce w temperaturze 140-190°C przy szybkości obrotów ślimaka 10-100 m/s lub w dwuślimakowej wytłaczarce, w temperaturze 120-160°C przy szybkości obrotów ślimaka 50-200 m/s, a materiał wytłoczony w postaci filamentu chłodzi się w powietrzu w temperaturze 20-25°C, nadto stosuje się wytłaczarkę dwuślimakową o budowie segmentowej, dzielonej w poziomie, składającą się z chłodzonej wodą strefy zasypowej oraz 5-7 stref termoregulacyjnych, zawierającą główny port dozujący, co najmniej trzy dodatkowe porty/wielofunkcyjne odgazowująco-dozujące oraz z adapter do odgazowania atmosferycznego i mieszaninę polimeru i kopolimeru dozuje się do dwuślimakowej wytłaczarki za pomocą dwu- lub jednoślimakowego dozownika wolumetrycznego, bądź dwuślimakowego dozownika grawimetrycznego.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL441909A PL245264B1 (pl) | 2022-08-02 | 2022-08-02 | Sposób wytwarzania biodegradowalnego materiału polimerowego, w postaci folii lub filamentu nadającego się do druku 3D metodą FDM lub FFF, do zastosowań w chirurgii urologicznej |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL441909A PL245264B1 (pl) | 2022-08-02 | 2022-08-02 | Sposób wytwarzania biodegradowalnego materiału polimerowego, w postaci folii lub filamentu nadającego się do druku 3D metodą FDM lub FFF, do zastosowań w chirurgii urologicznej |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL441909A1 PL441909A1 (pl) | 2024-02-05 |
| PL245264B1 true PL245264B1 (pl) | 2024-06-10 |
Family
ID=89808307
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL441909A PL245264B1 (pl) | 2022-08-02 | 2022-08-02 | Sposób wytwarzania biodegradowalnego materiału polimerowego, w postaci folii lub filamentu nadającego się do druku 3D metodą FDM lub FFF, do zastosowań w chirurgii urologicznej |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL245264B1 (pl) |
-
2022
- 2022-08-02 PL PL441909A patent/PL245264B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL441909A1 (pl) | 2024-02-05 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Budak et al. | A review on synthesis and biomedical applications of polyglycolic acid | |
| Azimi et al. | Poly (lactide-co-glycolide) fiber: an overview | |
| Vert et al. | More about the degradation of LA/GA-derived matrices in aqueous media | |
| Chen et al. | The effect of surface area on the degradation rate of nano-fibrous poly (L-lactic acid) foams | |
| Woodard et al. | Hydrolytic degradation of PCL–PLLA semi-IPNs exhibiting rapid, tunable degradation | |
| TWI412384B (zh) | 可吸收性聚醚酯及其於製備藥用植入體之用途 | |
| US7968656B2 (en) | Absorbable copolyesters of poly(ethoxyethylene diglycolate) and glycolide | |
| Cama et al. | Synthetic biodegradable medical polyesters: Poly-ε-caprolactone | |
| Dong et al. | Enzyme-catalyzed degradation behavior of L-lactide/trimethylene carbonate/glycolide terpolymers and their composites with poly (L-lactide-co-glycolide) fibers | |
| JP7737981B2 (ja) | 生分解性の相分離した熱可塑性マルチブロックコポリマー | |
| Ashour et al. | Unlocking the print of poly (L-lactic acid) by melt electrowriting for medical application | |
| Liao et al. | In vitro degradation behavior of l-lactide/trimethylene carbonate/glycolide terpolymers and a composite with poly (l-lactide-co-glycolide) fibers | |
| ES2999807T3 (en) | Multi-block shape memory bioresorbable polymers | |
| Pecorini et al. | 3D printing of bacterial poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate)/poly (lactide-co-glycolide) blend loaded with β-tricalcium phosphate for the development of scaffolds to support human mesenchymal stromal cell proliferation | |
| PL245264B1 (pl) | Sposób wytwarzania biodegradowalnego materiału polimerowego, w postaci folii lub filamentu nadającego się do druku 3D metodą FDM lub FFF, do zastosowań w chirurgii urologicznej | |
| Muehlenfeld et al. | Polymers for pharmaceutical 3D printing: printability and critical insight into material properties | |
| EP2084229B1 (en) | Absorbable copolyesters of poly(ethoxyethylene diglycolate) and glycolide | |
| Puppi et al. | Additive manufacturing of PHA | |
| Wang | New biomaterials derived from poly (lactic acids): novel approaches to combine biodegradation, x-ray contrast and controlled local drug release | |
| Puppi et al. | of PHA | |
| Andrade-Guel et al. | Plastics Technology | |
| HK40065145B (en) | Multi-block shape memory bioresorbable polymers | |
| HK40065145A (en) | Multi-block shape memory bioresorbable polymers | |
| Zeinali | Development of Scaffolds by Thermally-Induced Phase Separation from Biodegradable Poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) and Poly (butylene succinate) | |
| Manandhar | Bioresorbable polymer blend scaffold for tissue engineering |