PL244793B1 - Sposób zapobiegania rozwojowi mikroflory zanieczyszczającej podczas fermentacji moszczu z miazgą owocową - Google Patents
Sposób zapobiegania rozwojowi mikroflory zanieczyszczającej podczas fermentacji moszczu z miazgą owocową Download PDFInfo
- Publication number
- PL244793B1 PL244793B1 PL437993A PL43799321A PL244793B1 PL 244793 B1 PL244793 B1 PL 244793B1 PL 437993 A PL437993 A PL 437993A PL 43799321 A PL43799321 A PL 43799321A PL 244793 B1 PL244793 B1 PL 244793B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- fermentation
- fruit pulp
- yeast
- cfu
- pulp
- Prior art date
Links
- 235000013399 edible fruits Nutrition 0.000 title claims abstract description 46
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 title claims abstract description 39
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 title claims abstract description 39
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 14
- 244000005706 microflora Species 0.000 title claims abstract description 14
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 claims abstract description 34
- 241001123676 Metschnikowia pulcherrima Species 0.000 claims abstract description 13
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims abstract description 12
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 claims abstract description 5
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 13
- 210000005253 yeast cell Anatomy 0.000 claims description 5
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 19
- 235000014680 Saccharomyces cerevisiae Nutrition 0.000 description 18
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 9
- 241000187747 Streptomyces Species 0.000 description 8
- 235000014101 wine Nutrition 0.000 description 8
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 6
- ZRWPUFFVAOMMNM-UHFFFAOYSA-N Patulin Chemical group OC1OCC=C2OC(=O)C=C12 ZRWPUFFVAOMMNM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 229920001864 tannin Polymers 0.000 description 6
- 239000001648 tannin Substances 0.000 description 6
- 235000018553 tannin Nutrition 0.000 description 6
- 231100000678 Mycotoxin Toxicity 0.000 description 5
- 241001123663 Penicillium expansum Species 0.000 description 5
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 5
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 5
- 239000002636 mycotoxin Substances 0.000 description 5
- 241000186361 Actinobacteria <class> Species 0.000 description 4
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 4
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 4
- 241001444063 Aronia Species 0.000 description 3
- 241000123650 Botrytis cinerea Species 0.000 description 3
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 3
- 241001505523 Gekko gecko Species 0.000 description 3
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 3
- 239000000463 material Substances 0.000 description 3
- 230000008569 process Effects 0.000 description 3
- LSNNMFCWUKXFEE-UHFFFAOYSA-L sulfite Chemical class [O-]S([O-])=O LSNNMFCWUKXFEE-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 3
- 241000228212 Aspergillus Species 0.000 description 2
- 241001513358 Billardiera scandens Species 0.000 description 2
- 235000016623 Fragaria vesca Nutrition 0.000 description 2
- 240000009088 Fragaria x ananassa Species 0.000 description 2
- 235000011363 Fragaria x ananassa Nutrition 0.000 description 2
- 208000006673 asthma Diseases 0.000 description 2
- 239000000049 pigment Substances 0.000 description 2
- 235000010241 potassium sorbate Nutrition 0.000 description 2
- 239000004302 potassium sorbate Substances 0.000 description 2
- 235000020095 red wine Nutrition 0.000 description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 2
- 239000003053 toxin Substances 0.000 description 2
- 231100000765 toxin Toxicity 0.000 description 2
- 108700012359 toxins Proteins 0.000 description 2
- 235000020097 white wine Nutrition 0.000 description 2
- CHHHXKFHOYLYRE-UHFFFAOYSA-M 2,4-Hexadienoic acid, potassium salt (1:1), (2E,4E)- Chemical compound [K+].CC=CC=CC([O-])=O CHHHXKFHOYLYRE-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- UHPMCKVQTMMPCG-UHFFFAOYSA-N 5,8-dihydroxy-2-methoxy-6-methyl-7-(2-oxopropyl)naphthalene-1,4-dione Chemical compound CC1=C(CC(C)=O)C(O)=C2C(=O)C(OC)=CC(=O)C2=C1O UHPMCKVQTMMPCG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000223600 Alternaria Species 0.000 description 1
- 241000228337 Byssochlamys Species 0.000 description 1
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000223218 Fusarium Species 0.000 description 1
- 241000715926 Metschnikowia sp. Species 0.000 description 1
- 241000228143 Penicillium Species 0.000 description 1
- 239000004285 Potassium sulphite Substances 0.000 description 1
- 244000007021 Prunus avium Species 0.000 description 1
- 235000010401 Prunus avium Nutrition 0.000 description 1
- 241001290151 Prunus avium subsp. avium Species 0.000 description 1
- 235000013992 Prunus padus Nutrition 0.000 description 1
- 235000013647 Prunus pensylvanica Nutrition 0.000 description 1
- 235000010829 Prunus spinosa Nutrition 0.000 description 1
- 240000004350 Prunus spinosa Species 0.000 description 1
- 235000016954 Ribes hudsonianum Nutrition 0.000 description 1
- 240000001890 Ribes hudsonianum Species 0.000 description 1
- 235000001466 Ribes nigrum Nutrition 0.000 description 1
- LSNNMFCWUKXFEE-UHFFFAOYSA-N Sulfurous acid Chemical class OS(O)=O LSNNMFCWUKXFEE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000219094 Vitaceae Species 0.000 description 1
- 230000001476 alcoholic effect Effects 0.000 description 1
- 230000003042 antagnostic effect Effects 0.000 description 1
- 230000000845 anti-microbial effect Effects 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 235000019693 cherries Nutrition 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 230000001076 estrogenic effect Effects 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 235000015203 fruit juice Nutrition 0.000 description 1
- 235000012055 fruits and vegetables Nutrition 0.000 description 1
- 230000002538 fungal effect Effects 0.000 description 1
- 235000021021 grapes Nutrition 0.000 description 1
- 230000036541 health Effects 0.000 description 1
- 239000004009 herbicide Substances 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 1
- 230000005764 inhibitory process Effects 0.000 description 1
- 150000002596 lactones Chemical class 0.000 description 1
- 230000002045 lasting effect Effects 0.000 description 1
- 239000002207 metabolite Substances 0.000 description 1
- 231100000219 mutagenic Toxicity 0.000 description 1
- 230000003505 mutagenic effect Effects 0.000 description 1
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 1
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 1
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 description 1
- 230000003647 oxidation Effects 0.000 description 1
- 238000007254 oxidation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000035515 penetration Effects 0.000 description 1
- 239000000575 pesticide Substances 0.000 description 1
- 235000021018 plums Nutrition 0.000 description 1
- 229940069338 potassium sorbate Drugs 0.000 description 1
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 1
- 239000003755 preservative agent Substances 0.000 description 1
- 230000002335 preservative effect Effects 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 230000009257 reactivity Effects 0.000 description 1
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 1
- 210000002345 respiratory system Anatomy 0.000 description 1
- 235000020096 rose wine Nutrition 0.000 description 1
- 229930000044 secondary metabolite Natural products 0.000 description 1
- 230000001953 sensory effect Effects 0.000 description 1
- GEHJYWRUCIMESM-UHFFFAOYSA-L sodium sulphite Substances [Na+].[Na+].[O-]S([O-])=O GEHJYWRUCIMESM-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 1
- 230000000087 stabilizing effect Effects 0.000 description 1
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 description 1
- 238000005987 sulfurization reaction Methods 0.000 description 1
- 231100000378 teratogenic Toxicity 0.000 description 1
- 230000003390 teratogenic effect Effects 0.000 description 1
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 1
- 239000003440 toxic substance Substances 0.000 description 1
- 231100000925 very toxic Toxicity 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12G—WINE; PREPARATION THEREOF; ALCOHOLIC BEVERAGES; PREPARATION OF ALCOHOLIC BEVERAGES NOT PROVIDED FOR IN SUBCLASSES C12C OR C12H
- C12G1/00—Preparation of wine or sparkling wine
- C12G1/02—Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation
- C12G1/0203—Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation by microbiological or enzymatic treatment
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12G—WINE; PREPARATION THEREOF; ALCOHOLIC BEVERAGES; PREPARATION OF ALCOHOLIC BEVERAGES NOT PROVIDED FOR IN SUBCLASSES C12C OR C12H
- C12G3/00—Preparation of other alcoholic beverages
- C12G3/02—Preparation of other alcoholic beverages by fermentation
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
- C12N1/16—Yeasts; Culture media therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12G—WINE; PREPARATION THEREOF; ALCOHOLIC BEVERAGES; PREPARATION OF ALCOHOLIC BEVERAGES NOT PROVIDED FOR IN SUBCLASSES C12C OR C12H
- C12G2200/00—Special features
- C12G2200/05—Use of particular microorganisms in the preparation of wine
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/645—Fungi ; Processes using fungi
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Mycology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Botany (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Virology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Przedmiotem zgłoszenia jest sposób zapobiegania rozwojowi mikroflory zanieczyszczającej podczas fermentacji moszczu z miazgą owocową, który polega na tym, że przed właściwym procesem fermentacji moszcz z miazgą owocową miesza się z biomasą szczepu drożdży należącego do kladu Metschnikowia pulcherrima, w postaci zawiesiny, lub też do moszczu z miazgą owocową, przed właściwym procesem fermentacji, dodaje się szczep drożdży należący do kladu Metschnikowia pulcherrima, w postaci pasty. Proces fermentacji prowadzi się spontanicznie lub z udziałem kultur drożdży szlachetnych stosowanych w ilości 10<sup>6</sup> – 10<sup>9</sup> jtk/ml w temperaturze 15 - 30° w czasie 5-7 dni.
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób zapobiegania rozwojowi mikroflory zanieczyszczającej podczas fermentacji moszczu z miazgą owocową.
Technologia produkcji winiarskiej jest odmienna dla win białych, czerwonych i różowych. Przy produkcji win białych fermentuje się oddzielony od miazgi moszcz z jasnych winogron, natomiast przy produkcji win czerwonych poddaje się fermentacji moszcz z miazgą owocową.
Fermentację moszczu z miazgą owocową stosuje się do owoców kolorowych, szczególnie do wiśni, porzeczek czarnych, śliwek węgierek, aronii, czeremchy czy tarniny. W czasie tego procesu dochodzi do ekstrakcji barwników i tanin, głównie ze skórek owoców. Taninę ze skórek owocowych jest stosunkowo łatwo uwolnić, gdyż już niewielka ilość alkoholu wyzwala ich ekstrakcję. Jednak w przypadku słabszych jakościowo owoców, uszkodzonych mechanicznie lub nadpsutych, lub też kiedy skórki zawierają mniej barwników i tanin, należy ten proces znacząco skrócić, aby do nastawu nie wprowadzić zbyt wiele tanin gorszej jakości, pochodzących na przykład z pestek owoców. Większość barwników i tanin przechodzi do wina w ciągu pierwszych kilku dni. Proces ekstrakcji jest wspierany przez temperaturę - im jest ona wyższa tym ekstrakcja następuje szybciej. Jednak wówczas szybciej przechodzą do nastawu również gorzkie taniny z pestek.
Zatem dobierając czas fermentacji moszczu z miazgą owocową należy wziąć pod uwagę temperaturę fermentacji, rodzaj i stopień dojrzałości owoców oraz szczep drożdży użyty do fermentacji.
Fermentacja moszczu z miazgą owocową przynosi wiele korzyści, m.in. łatwiejszą obróbkę owoców i więcej pozyskanego moszczu. Niestety, w czasie przechowywania i fermentacji trwającym nawet do 7 dni, moszcz z miazgą owocową jest szczególnie narażona na zainfekowanie drobnoustrojami, w tym bakteriami i grzybami pleśniowymi. Podatność moszczu z miazgą owocową zwłaszcza na wzrost mikroflory grzybowej, w tym pleśni toksynotwórczych z rodzajów Aspergillus, Penicillium, Fusarium lub Alternaria stanowi istotny problem technologiczny. Toksyny (mikotoksyny) wytwarzane przez niektóre szczepy pleśni jako wtórne metabolity wykazują różnorodne działania toksyczne (mutagenne, teratogenne i estrogenne). Szczególnie niebezpieczną mikotoksyną w tym środowisku jest patulina - metabolit niektórych gatunków pleśni z rodzaju Penicillum, Aspergillus oraz Byssochlamys, często występujących jako mikroflora zanieczyszczająca w przetwórniach owocowo-warzywnych. Z chemicznego punktu widzenia patulina jest dwupierścieniowym laktonem, związkiem o bardzo dużej toksyczności wynikającej z wysokiej reaktywności z białkami oraz kwasami nukleinowymi. Patulina wykrywana jest dość często w krajowych owocach, sokach owocowych i innych przetworach. Uszkodzenia mechaniczne skórki owoców i wilgotne środowisko stymulują wniknięcie grzybów do miąższu owoców oraz ich wzrost i tworzenie mikotoksyn. (czasopismo Mycotoxin Research 2008, 24, 135-139).
Obecność mikotoksyn w produktach winiarskich niesie ze sobą potencjalne zagrożenie dla zdrowia konsumentów (czasopismo Food Research International 2018, 103, 478-491). Należy więc bezwzględnie nie dopuszczać do rozwoju grzybów w przerabianym materiale roślinnym.
W celu zapobiegania rozwojowi pleśni w czasie fermentacji moszczu z miazgą owocową zaleca się stosowanie dobrych jakościowo owoców, maksymalne skrócenie procesu nawet do 3 dni, a w niezbędnych przypadkach stosowanie związków chemicznych jako sztucznych stabilizatorów.
Często w celu zapobiegania rozwojowi pleśni w środowisku o pH poniżej 6,5 stosowany jest sorbinian potasu (E202). Jest to łagodnie działający konserwant, zwykle stosowany w stężeniach 0,025-0,10%.
Inną metodę chemiczną może stanowić tzw. siarkowanie. Siarczyny (E221, E225) są często stosowane przez winiarzy, aby zahamować rozwój szkodliwej mikroflory oraz zminimalizować utlenianie związków barwnych. Większość populacji konsumenckiej może bezpiecznie spożywać siarczyny znajdujące się w winie przy minimalnym ryzyku wystąpienia niepożądanych skutków ubocznych. Jednak według amerykańskiej agencji Food and Drug Administration (FDA) szacunkowo 1% populacji jest wrażliwa na siarczyny, a około 5% z tych osób cierpi na astmę. W przypadku osób z astmą, które są wrażliwe na te związki, spożywanie ich może podrażniać drogi oddechowe (czasopismo Consumer 1987, 20, 10-13).
Nie zawsze wyżej wymienione sposoby konserwacji można zastosować w produkcji winiarskiej, na przykład w produkcji tak zwanych win organicznych. Są to wyroby produkowane z upraw owoców nie traktowanych herbicydami i pestycydami. Poza tym w tego typu winach istnieje ograniczenie regulujące użycie siarczynów o około 30%.
Znane są drożdże z kładu Metschnikowia sp. wykazujące wysoką aktywność anty- drobnoustrojową.
Niniejszy wynalazek rozwiązuje problem zahamowania rozwoju mikroflory zanieczyszczającej podczas fermentacji moszczu z miazgą owocową, bez konieczności stosowania związków chemicznych, mogących zaburzać procesy fermentacyjne oraz wpływać negatywnie na cechy organoleptyczne wina.
Sposób zapobiegania rozwojowi mikroflory zanieczyszczającej podczas fermentacji moszczu z miazgą owocową, według wynalazku polega tym, że przed właściwym procesem fermentacji moszcz z miazgą owocową miesza się z biomasą szczepu drożdży należącego do kładu Metschnikowia pulcherrima, w postaci zawiesiny o stężeniu komórek 105 - 108 jtk/ml stosując biomasę drożdży w ilości 1-10% v/w, lub też do moszczu z miazgą owocową, przed właściwym procesem fermentacji, dodaje się szczep drożdży należący do kładu Metschnikowia pulcherrima, w postaci pasty o stężeniu komórek drożdży 109 - 1010 jtk/g stosując pastę drożdży w ilości 1-10% w/w. Proces fermentacji prowadzi się spontanicznie lub z udziałem kultur drożdży szlachetnych stosowanych w ilości 106 - 109 jtk/ml w temperaturze 15-30°C w czasie 5-7 dni.
Sposób według wynalazku znajduje zastosowanie w procesie fermentacji materiału roślinnego świeżego lub po rozmrożeniu. Sposób według wynalazku zapewnia skuteczne zahamowanie rozwoju grzybów strzępkowych i promieniowców w miazdze z jednoczesną stymulacją procesów fermentacyjnych. Produkt fermentowany uzyskany po zastosowaniu sposobu według wynalazku posiada korzystne cechy organoleptyczne, a obecność drożdży antagonistycznych w stosunku do grzybów strzępkowych i promieniowców działa stabilizująco podczas pierwszych kilku dni fermentacji.
Sposób według wynalazku ilustrują poniższe przykłady z powołaniem się na rysunek, na którym Fig. 1B i Fig. 2B przedstawiają wykresy ilustrujące wzrost drożdży winiarskich Saccharomyces cerevisiae rasy Tokay oraz mikroorganizmów zanieczyszczających moszcz z miazgą owocową, bez dodatku drożdży z kladu Metschnikowia pulcherrima, zaś Fig. 1A, Fig. 2A przedstawiają wykresy ilustrujące wzrost drożdży winiarskich Saccharomyces cerevisiae rasy Tokay oraz mikroorganizmów zanieczyszczających moszcz z miazgą owocową, z dodatkiem drożdży należących do kladu Metschnikowia pulcherrima w postaci zawiesiny (dawka 5% v/w ), zaś Fig. 3 przedstawia wykresy ilustrujące wzrost drożdży winiarskich Saccharomyces cerevisiae rasy Tokay oraz mikroorganizmów zanieczyszczających moszcz z miazgą owocową, z dodatkiem drożdży z kladu Metschnikowia pulcherrima w postaci pasty (dawka 1% w/w).
Przykład 1
Do kolby o pojemności 1 l wprowadzono 500 g moszczu z miazgą truskawkową. Mieszanina moszczu i miazgi zawierała mikroflorę niepożądaną, jak grzyby strzępkowe Botrytis cinerea w liczbie 102 jtk/g, oraz bakterie z rodzaju Streptomyces w liczbie 102 jtk/g. Do mieszaniny moszczu i miazgi dodano zawiesinę drożdży z kładu Metschnikowia pulcherrima, o stężeniu komórek 5 x 106 jtk/ml, w ilości 5% (v/w). Następnie mieszaninę moszczu i miazgi owocowej oraz drożdży zaszczepiono czystą kulturą drożdży winiarskich Saccharomyces cerevisiae Tokay w postaci zawiesiny o stężeniu komórek 2 x 108 jtk/ml, użytej w ilości 2% v/v. Następnie kolbę zamknięto czopem i prowadzono fermentację w temperaturze 25°C w czasie 5 dni.
Po 5 dniach fermentacji, w mieszaninie moszczu i miazgi nie stwierdzono komórek pleśni oraz promieniowców na poziomie większym niż 10 jtk/g. Mieszanina moszczu miazgi po 5 dniach charakteryzowała się korzystnymi cechami organoleptycznymi (orzeźwiający, przyjemny owocowy zapach). Jednocześnie odnotowano znaczący wzrost liczby komórek drożdży (2 x 107 jtk/g) (Fig. 1A rysunku).
Równolegle do kolby o pojemności 1 l wprowadzono 500 g takiej samej mieszaniny moszczu i miazgi truskawkowej. Mieszanina zawierała mikroflorę niepożądaną jak grzyby strzępkowe Botrytis cinerea w liczbie 102 jtk/g, oraz bakterie z rodzaju Streptomyces w liczbie 102 jtk/g. Materiał owocowy zaszczepiono czystą kulturą drożdży winiarskich Saccharomyces cerevisiae rasy Tokay użytych w postaci zawiesiny o stężeniu komórek 2 x 108 jtk/ml, w ilości 2% v/w. Kolbę zamknięto czopem i prowadzono fermentację w temperaturze 25°C w czasie 5 dni.
Po 5 dniach fermentacji, w moszczu z miazgą stwierdzono obecność grzybów strzępkowych Botrytis cinerea w liczbie 6 x 103 jtk/g i bakterii z rodzaju Streptomyces w liczbie 6 x 104 jtk/g (Fig. 1B rysunku). Uzyskana po fermentacji mieszanina charakteryzowała się zdecydowanie mniej korzystnymi cechami organoleptycznymi (woń alkoholowa z domieszką stęchłego, piwnicznego zapachu).
Przykład 2
Do kolby o pojemności 1 l wprowadzono 500 g moszczu z miazgą owocową z jabłek i aronii (1:1). Mieszanina moszczu i miazgi zawierała mikroflorę niepożądaną, jak grzyby strzępkowe Penicillium expansum w liczbie 102 jtk/g, oraz bakterie z rodzaju Streptomyces w liczbie 102 jtk/g. Do mieszaniny moszczu z miazgą owocową dodano zawiesinę drożdży z kładu Metschnikowia pulcherrima o stężeniu komórek 2 x 107 jtk/ml, w ilości 5% (v/w). Mieszaninę moszczu z miazgą owocową oraz drożdży zaszczepiono czystą kulturą drożdży winiarskich Saccharomyces cerevisiae Tokay w postaci zawiesiny o stężeniu komórek 2 x 108 jtk/ml, użytej w ilości 2% v/w. Następnie kolbę zamknięto czopem i prowadzono fermentację w temperaturze 25°C w czasie 5 dni.
Po 5 dniach fermentacji nie odnotowano obecności grzybów strzępkowych Penicillium expansum i bakterii z rodzaju Streptomyces na poziomie większym niż 10 jtk/g. Mieszanina moszczu z miazgą owocową charakteryzowała się korzystnymi cechami organoleptycznymi (orzeźwiający, kwaśny zapach). Jednocześnie odnotowano znaczący wzrost liczby komórek drożdży (Fig. 2A rysunku).
Równolegle do kolby o pojemności 1 l wprowadzono 500 g takiej samej mieszaniny moszczu z miazgą jabłkowo-aroniową (1:1) z mikroflorą niepożądaną. Mieszaninę zaszczepiono czystą kulturą drożdży Saccharomyces cerevisiae rasy Tokay użytą w postaci zawiesiny o stężeniu komórek 2 x 108 jtk/ml, w ilości 2% v/w. Następnie prowadzono fermentację w temperaturze 25°C w czasie 5 dni.
Po 5 dniach fermentacji moszczu z miazgą owocową stwierdzono obecność grzybów strzępkowych Penicillium expansum w liczbie1 x 103 jtk/g i bakterii z rodzaju Streptomyces w ilości 3 x 104 jtk/g (Fig. 2B rysunku). Podobnie, jak w przykładzie 1, mieszanina po fermentacji wykazywała niekorzystne cechy organoleptyczne (kwaśno-stęchły zapach).
Przykład 3
Do kolby o pojemności 1 l wprowadzono 500 g moszczu z miazgą owocową z jabłek i aronii (1:1). Mieszanina moszczu i miazgi zawierał mikroflorę niepożądaną, jak grzyby strzępkowe Penicillium expansum w liczbie 102 jtk/g, oraz bakterie z rodzaju Streptomyces w liczbie 102 jtk/g. Do mieszaniny moszczu z miazgą owocową dodano drożdże z kladu Metschnikowia pulcherrima w postaci pasty o stężeniu komórek 5 x 109 jtk/g, w ilości 1% (w/w). Mieszaninę moszczu z miazgą owocową oraz drożdży zaszczepiono czystą kulturą drożdży winiarskich Saccharomyces cerevisiae Tokay w postaci zawiesiny o stężeniu komórek 5 x 107 jtk/ml, użytej w ilości 2% v/w. Następnie kolbę zamknięto czopem i prowadzono fermentację w temperaturze 25°C w czasie 5 dni.
Po 5 dniach fermentacji nie odnotowano obecności grzybów strzępkowych Penicillium expansum i bakterii z rodzaju Streptomyces na poziomie większym niż 10 jtk/g. Mieszanina moszczu i miazgi owocowej po fermentacji charakteryzowała się korzystnymi cechami organoleptycznymi (orzeźwiający, kwaśny zapach). Jednocześnie odnotowano znaczący wzrost liczby komórek drożdży (Fig. 3 rysunku).
W trzech opisanych powyżej przykładach wykazano, że zastosowanie dawki 5% v/w drożdży z kladu Metschnikowia pulcherrima w postaci zawiesiny o stężeniu komórek 5 x 106 - 2 x 107 jtk/ml lub w postaci pasty w dawce 1% w/w o stężeniu komórek 5 x 109 jtk/g do fermentacji moszczu z miazgą powoduje zahamowanie rozwój grzybów strzępkowych i promieniowców z jednoczesnym zachowaniem korzystnych walorów sensorycznych miazgi poddanej fermentacji.
Claims (1)
1. Sposób zapobiegania rozwojowi mikroflory zanieczyszczającej podczas fermentacji moszczu z miazgą owocową, znamienny tym, że przed właściwym procesem fermentacji moszcz z miazgą owocową miesza się z biomasą szczepu drożdży należącego do kladu Metschnikowia pulcherrima, w postaci zawiesiny o stężeniu komórek 105 - 108 jtk/ml, stosując biomasę drożdży w ilości 1-10% v/w, lub też do moszczu z miazgą owocową, przed właściwym procesem fermentacji, dodaje się szczep drożdży należący do kładu Metschnikowia pulcherrima, w postaci pasty o stężeniu komórek drożdży 109-1010 jtk/g, stosując pastę drożdży w ilości 1-10% w/w, przy czym proces fermentacji prowadzi się spontanicznie lub z udziałem kultur drożdży szlachetnych stosowanych w ilości 106 - 109 jtk/ml w temperaturze 15-30°C w czasie 5-7 dni.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL437993A PL244793B1 (pl) | 2021-05-28 | 2021-05-28 | Sposób zapobiegania rozwojowi mikroflory zanieczyszczającej podczas fermentacji moszczu z miazgą owocową |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL437993A PL244793B1 (pl) | 2021-05-28 | 2021-05-28 | Sposób zapobiegania rozwojowi mikroflory zanieczyszczającej podczas fermentacji moszczu z miazgą owocową |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL437993A1 PL437993A1 (pl) | 2022-12-05 |
| PL244793B1 true PL244793B1 (pl) | 2024-03-04 |
Family
ID=84426746
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL437993A PL244793B1 (pl) | 2021-05-28 | 2021-05-28 | Sposób zapobiegania rozwojowi mikroflory zanieczyszczającej podczas fermentacji moszczu z miazgą owocową |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL244793B1 (pl) |
-
2021
- 2021-05-28 PL PL437993A patent/PL244793B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL437993A1 (pl) | 2022-12-05 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Covarelli et al. | A review on the occurrence and control of ochratoxigenic fungal species and ochratoxin A in dehydrated grapes, non-fortified dessert wines and dried vine fruit in the Mediterranean area | |
| Taniwaki et al. | Aspergillus species and mycotoxins: occurrence and importance in major food commodities | |
| Bisiach et al. | Possible integrated control of grape-vine sour-rot | |
| Schwan et al. | Microbial activities during cocoa fermentation | |
| Heperkan et al. | Toxigenic fungi and mycotoxin associated with figs in the Mediterranean area | |
| Caboni et al. | Pesticides' influence on wine fermentation | |
| Cravero et al. | Control of Brettanomyces bruxellensis on wine grapes by post-harvest treatments with electrolyzed water, ozonated water and gaseous ozone | |
| de Souza et al. | Yeasts prevent ochratoxin A contamination in coffee by displacing Aspergillus carbonarius | |
| Gonçalves et al. | The route of mycotoxins in the grape food chain | |
| Cravero et al. | Post-harvest control of wine-grape mycobiota using electrolyzed water | |
| Peeran et al. | Water in oil based PGPR formulation of Pseudomonas fluorescens (FP7) showed enhanced resistance against Colletotrichum musae | |
| Pereira et al. | Relationship between coffee processing and fermentation | |
| Shahkoomahally et al. | Postharvest nitric oxide treatment of persimmon (Diospyros kaki L.) improves fruit quality during storage | |
| Lugauskas et al. | Micromycetes, producers of toxins, detected on stored vegetables | |
| Thakur et al. | Botrytized wines: A review | |
| Oliva et al. | Effect of fungicides on the yeast population during spontaneous fermentation in the vinification of Monastrell grapes | |
| PL244793B1 (pl) | Sposób zapobiegania rozwojowi mikroflory zanieczyszczającej podczas fermentacji moszczu z miazgą owocową | |
| Gimenes et al. | Aspergillus ochraceus biocontrol by Hanseniaspora opuntiae in vitro and on coffee fruits | |
| Kunová et al. | Microscopic fungi isolated from different Slovak grape varieties. | |
| Akbar | Growth and ochratoxin a production by aspergillus species in coffee beans: impact of climate change and control using o3 [Triatomic oxygen (ozone)] | |
| Tryfinopoulou et al. | Antifungal activity of Saccharomyces cerevisiae and assessment of ochratoxigenic load on currants by means of Real Time PCR | |
| US5843434A (en) | Strain of the yeast Candida sake (saito and ota) van uden and buckley and its use as a biological control agent for post-harvest funga l diseases in fruits | |
| Genchev et al. | Mycoflora of fresh chokeberry (Aronia melanocarpa) and ochratoxin-producing ability of Penicillium isolates | |
| Liu et al. | Evaluation of the application of wild yeasts in inhibiting germination of ochratoxin-producing Fungi during coffee fermentation process | |
| Cioch et al. | Botrytis and wine production |