PL244646B1 - Pojemniki do przetrzymywania i transportu ektopasożytów, zwłaszcza muchówek z rodziny Hippoboscidae ze środowiska naturalnego - Google Patents
Pojemniki do przetrzymywania i transportu ektopasożytów, zwłaszcza muchówek z rodziny Hippoboscidae ze środowiska naturalnego Download PDFInfo
- Publication number
- PL244646B1 PL244646B1 PL439910A PL43991021A PL244646B1 PL 244646 B1 PL244646 B1 PL 244646B1 PL 439910 A PL439910 A PL 439910A PL 43991021 A PL43991021 A PL 43991021A PL 244646 B1 PL244646 B1 PL 244646B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- insects
- containers
- anticoagulant
- blood
- container
- Prior art date
Links
- 244000078703 ectoparasite Species 0.000 title claims abstract description 11
- 241001608644 Hippoboscidae Species 0.000 title claims abstract description 7
- 239000008280 blood Substances 0.000 claims abstract description 22
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 claims abstract description 22
- 239000003146 anticoagulant agent Substances 0.000 claims abstract description 16
- 229940127219 anticoagulant drug Drugs 0.000 claims abstract description 16
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 claims abstract description 5
- 239000000463 material Substances 0.000 claims abstract description 4
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 claims abstract description 4
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 8
- PUZPDOWCWNUUKD-UHFFFAOYSA-M sodium fluoride Chemical compound [F-].[Na+] PUZPDOWCWNUUKD-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 4
- HTTJABKRGRZYRN-UHFFFAOYSA-N Heparin Chemical compound OC1C(NC(=O)C)C(O)OC(COS(O)(=O)=O)C1OC1C(OS(O)(=O)=O)C(O)C(OC2C(C(OS(O)(=O)=O)C(OC3C(C(O)C(O)C(O3)C(O)=O)OS(O)(=O)=O)C(CO)O2)NS(O)(=O)=O)C(C(O)=O)O1 HTTJABKRGRZYRN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- MFGSTSNUMVXOHJ-UHFFFAOYSA-M [I+].CC([O-])=O Chemical compound [I+].CC([O-])=O MFGSTSNUMVXOHJ-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 2
- IRXRGVFLQOSHOH-UHFFFAOYSA-L dipotassium;oxalate Chemical compound [K+].[K+].[O-]C(=O)C([O-])=O IRXRGVFLQOSHOH-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 2
- 229960002897 heparin Drugs 0.000 claims description 2
- 229920000669 heparin Polymers 0.000 claims description 2
- 235000013024 sodium fluoride Nutrition 0.000 claims description 2
- 239000011775 sodium fluoride Substances 0.000 claims description 2
- 241000238631 Hexapoda Species 0.000 description 31
- 238000011160 research Methods 0.000 description 8
- 229920000742 Cotton Polymers 0.000 description 7
- 241000692237 Lipoptena Species 0.000 description 6
- 241000894007 species Species 0.000 description 6
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 6
- 241000255925 Diptera Species 0.000 description 5
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 5
- 238000000034 method Methods 0.000 description 4
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 3
- 241000692235 Lipoptena cervi Species 0.000 description 3
- 241001126565 Lipoptena fortisetosa Species 0.000 description 3
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 3
- 229920000297 Rayon Polymers 0.000 description 3
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 3
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 3
- 241000271566 Aves Species 0.000 description 2
- 241000282994 Cervidae Species 0.000 description 2
- 241000771999 Hippobosca Species 0.000 description 2
- 230000006399 behavior Effects 0.000 description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 2
- 238000013508 migration Methods 0.000 description 2
- 230000005012 migration Effects 0.000 description 2
- 239000013598 vector Substances 0.000 description 2
- AZSNMRSAGSSBNP-UHFFFAOYSA-N 22,23-dihydroavermectin B1a Natural products C1CC(C)C(C(C)CC)OC21OC(CC=C(C)C(OC1OC(C)C(OC3OC(C)C(O)C(OC)C3)C(OC)C1)C(C)C=CC=C1C3(C(C(=O)O4)C=C(C)C(O)C3OC1)O)CC4C2 AZSNMRSAGSSBNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- SPBDXSGPUHCETR-JFUDTMANSA-N 8883yp2r6d Chemical compound O1[C@@H](C)[C@H](O)[C@@H](OC)C[C@@H]1O[C@@H]1[C@@H](OC)C[C@H](O[C@@H]2C(=C/C[C@@H]3C[C@@H](C[C@@]4(O[C@@H]([C@@H](C)CC4)C(C)C)O3)OC(=O)[C@@H]3C=C(C)[C@@H](O)[C@H]4OC\C([C@@]34O)=C/C=C/[C@@H]2C)/C)O[C@H]1C.C1C[C@H](C)[C@@H]([C@@H](C)CC)O[C@@]21O[C@H](C\C=C(C)\[C@@H](O[C@@H]1O[C@@H](C)[C@H](O[C@@H]3O[C@@H](C)[C@H](O)[C@@H](OC)C3)[C@@H](OC)C1)[C@@H](C)\C=C\C=C/1[C@]3([C@H](C(=O)O4)C=C(C)[C@@H](O)[C@H]3OC\1)O)C[C@H]4C2 SPBDXSGPUHCETR-JFUDTMANSA-N 0.000 description 1
- 208000035473 Communicable disease Diseases 0.000 description 1
- 241000237858 Gastropoda Species 0.000 description 1
- 241000771993 Hippobosca equina Species 0.000 description 1
- 241000270322 Lepidosauria Species 0.000 description 1
- 241000786150 Lipoptena capreoli Species 0.000 description 1
- 241000772200 Lipoptena depressa Species 0.000 description 1
- 241000772006 Lipoptena mazamae Species 0.000 description 1
- 241001502500 Trichomonadida Species 0.000 description 1
- 241000984695 Troglodytinae Species 0.000 description 1
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 1
- 230000004075 alteration Effects 0.000 description 1
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 1
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 230000010006 flight Effects 0.000 description 1
- 239000003292 glue Substances 0.000 description 1
- 230000036541 health Effects 0.000 description 1
- 230000001489 hematophagic effect Effects 0.000 description 1
- 244000144980 herd Species 0.000 description 1
- 229960002418 ivermectin Drugs 0.000 description 1
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 1
- 230000029052 metamorphosis Effects 0.000 description 1
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 1
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 1
- 230000035479 physiological effects, processes and functions Effects 0.000 description 1
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 description 1
- 230000002940 repellent Effects 0.000 description 1
- 239000005871 repellent Substances 0.000 description 1
- 230000009329 sexual behaviour Effects 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 1
- 210000002268 wool Anatomy 0.000 description 1
Classifications
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
- B01L3/50—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
- B01L3/502—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
- B01L3/5023—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures with a sample being transported to, and subsequently stored in an absorbent for analysis
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01M—CATCHING, TRAPPING OR SCARING OF ANIMALS; APPARATUS FOR THE DESTRUCTION OF NOXIOUS ANIMALS OR NOXIOUS PLANTS
- A01M1/00—Stationary means for catching or killing insects
- A01M1/02—Stationary means for catching or killing insects with devices or substances, e.g. food, pheronones attracting the insects
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01M—CATCHING, TRAPPING OR SCARING OF ANIMALS; APPARATUS FOR THE DESTRUCTION OF NOXIOUS ANIMALS OR NOXIOUS PLANTS
- A01M5/00—Catching insects in fields, gardens, or forests by movable appliances
- A01M5/02—Portable appliances
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Pest Control & Pesticides (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Insects & Arthropods (AREA)
- Clinical Laboratory Science (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Hematology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
- Ecology (AREA)
- Forests & Forestry (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Medical Preparation Storing Or Oral Administration Devices (AREA)
- Bakery Products And Manufacturing Methods Therefor (AREA)
Abstract
Pojemniki do przetrzymywania i transportu ektopasożytów, zwłaszcza muchówek z rodziny Hippoboscidae ze środowiska naturalnego charakteryzuje się tym, że zakrętka (2) pojemnika (1) posiada co najmniej jeden otwór (3) powietrzny o wielkości od 0,5 mm, a w środku pojemnik (1) posiada materiał sorpcyjny (5) nasączony antykoagulantem (6), na który naniesiona jest krew ssaka lub ptaka, przy czym stężenie antykoagulantu we krwi wynosi od 0,001 mg/ml do 1000 mg/ml.
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku są pojemniki do przetrzymywania i transportu ektopasożytów, zwłaszcza muchówek z rodziny Hippoboscidae ze środowiska naturalnego do celów badawczych w dziedzinie medycyny weterynaryjnej, entomologii, parazytologii, badaniach środowiskowych, diagnostyce laboratoryjnej i zoologii.
Muchówki z rodziny Hippoboscidae (Narzępikowate) są obligatoryjnymi hematofagicznymi ektopasożytami ptaków i ssaków. Rodzina ta obejmuje 21 rodzajów, z których 4 (w tym Hippobosca spp. i Lipoptena spp.) pasożytują na ssakach, a 17 bytuje na ptakach lub w ich gniazdach. Rodzaj Lipoptena spp. (strzyżaki) składa się z 32 gatunków. Gatunki budzące największe obawy w medycynie weterynaryjnej to L. cervi, L. capreoli i L. fortisetosa, które są powszechnie spotykane w Europie, Syberii, Chinach i Ameryce Północnej, a także L. depressa, L. mazamae i Neolipoptena ferrisi, które można znaleźć w Ameryce Północnej i Południowej. Muchówki z rodzajów Lipoptena spp. i Neolipoptena spp. zrzucają skrzydła po znalezieniu żywiciela ostatecznego. Dorosłe narzępikowate muszą znaleźć żywiciela wkrótce po przeobrażeniu, aby pobrać krew. Jest im ona potrzebna do przeżycia i rozrodu. Muchówki poszukujące żywicieli są w stanie przelecieć ok 50 m, a ich loty są zwykle obserwowane między majem a listopadem.
Obserwowane obecnie zmiany klimatyczne doprowadziły do zmian w dynamice rozwoju populacji zwierząt, a także pojawienia się nowych gatunków w miejscach, gdzie dotąd nie występowały. Aberracje klimatyczne oraz migracje zwierząt zwiększyły populację opisywanych ektopasożytów w Europie. Z biegiem lat obserwowane jest powiększenie populacji muchówek z rodziny Hippoboscidae. Co więcej na terenie Centralnej Europy zaczęto obserwować gatunek inwazyjny - L. fortisetosa. Badania wskazują także na nowe wzorce migracji tych owadów, na przykład na tereny Europy Północnej.
Narzępikowate są potencjalnymi wektorami chorób zakaźnych. Wektory są częścią koncepcji „One Health”, ponieważ są odpowiedzialne za przenoszenie patogenów między ludźmi i zwierzętami dzikimi, gospodarskimi, towarzyszącymi i ludźmi. Pomimo licznych badań skupiających się na tych owadach, dotychczasowa wiedza na ich temat jest powierzchowna, a ich znaczenie weterynaryjne jest enigmatyczne. Jednym z powodów takiego stanu rzeczy jest luka metodyczna, która uniemożliwia badanie narzępikowatych w zamkniętych układach laboratoryjnych jak i potrzeba ciągłego pozyskiwania owadów ze środowiska.
Warunki środowiskowe odgrywają dużą rolę w liczebności i przeżywalności narzępikowatych. Należy zauważyć, że warunki pogodowe mogą również znacząco wpływać na zachowanie i fizjologię tych owadów. Badania wskazują, że te ektopasożyty wykształciły silne mechanizmy adaptacyjne do niskich temperatur. Wykazano, że L. cervi może przetrwać w niekorzystnych warunkach nawet bez okresu aklimatyzacji. Pomimo wysokiej odporności na warunki środowiskowe, wiele gatunków wchodzących w skład tej rodziny nie przetrwa bez pożywienia. Skutkuje to utrudnionym transportem żywych owadów do laboratorium w celu zbadania ich behawioru czy założenia hodowli laboratoryjnej. Średni czas przeżywalności tych owadów bez dodatkowych zabiegów protekcyjnych wynosi 2-6 h w zależności od temperatury. Z uwagi, że muchówki te, żyją czasem w ciężko dostępnych biotopach, śmiertelność wśród pozyskanych owadów jest duża. Problematyczne staje się też przewiezienie owadów do laboratorium z terenów odległych.
Celem wynalazku było opracowanie pojemników, które pozwalają na nieinwazyjne przenoszenie żywych owadów do laboratorium czy hodowli. Na podstawie przeprowadzonych obserwacji wynika, że można przedłużyć żywotność muchówek z rodziny narzępikowatych nawet do 96 h. Obserwację przeprowadzono na przykładzie gatunków L. cervi i L. fortisetosa.
Według wynalazku pojemniki do przetrzymywania i transportu ektopasożytów, zwłaszcza muchówek z rodziny Hippoboscidae ze środowiska naturalnego charakteryzuje się tym, że zakrętka pojemnika posiada co najmniej jeden otwór powietrzny o wielkości od 0,5 mm, a w środku pojemnik posiada materiał sorpcyjny nasączony antykoagulantem, na który naniesiona jest krew ssaka lub ptaka. Stężenie antykoagulantu we krwi wynosi od 0,001 mg/ml do 1000 mg/ml.
Korzystnie gdy antykoagulantem jest 0,1% - 99% roztwór K2 lub K3 EDTA.
Korzystnie gdy antykoagulantem jest heparyna, fluorek sodu, szczawian potasu, octan jodu.
Jest to rozwiązanie pozwalające na wydłużenie czasu życia muchówek utrzymywanych w warunkach sztucznych. Opisywana technika jest szczególnie skuteczna wobec gatunków z rodziny Hippobosca spp. i Lipoptena spp. Pojemnik daje możliwość sztucznego karmienia ektopasożytów, a przez to zwiększa przeżywalność pozyskanych osobników.
Pojemniki transportowe mogą być wykorzystywane także do utrzymywania owadów np. w laboratorium.
Ponadto pojemniki zgodne z wynalazkiem:
- umożliwiają transport żywych owadów.
- są proste do wykonania
- wydłużają czas przeżycia owadów bez żywiciela specyficznego
- zmniejszają śmiertelność wyłapanych owadów ze środowiska
- pozwalają na dostarczenie największego odsetka żywych narzępikowatych do laboratorium.
Przedmiot wynalazku zostanie przedstawiony w przykładach wykonania na rysunku, na którym fig. 1 przedstawia pojemnik w postaci probówki, fig. 2 - pojemnik w kształcie prostopadłościanu z siatką w zakrętce, fig. 3 - pojemnik w kształcie prostopadłościanu z łopatką.
Przykład 1
W laboratorium prowadzone są badania na temat przeżywalności Lipoptena spp. po ekspozycji na iwermektynę. Najbliższe znane stanowisko występowania strzyżaków znajduje się 100 km od jednostki. Na miejsce udały się 3 osoby ubrane w ciemnobrązowe ubrania z bawełny i zamszu. Zbieracze podążali po tropach stada jeleni. Czas marszu wynosił około 30 min, z 10 minutowymi przerwami na wyłapanie owadów ze swoich ubrań. Pozyskane owady zostały umieszczone w pojemnikach transportowych przygotowanych na początku procedury. Pojemniki transportowe zostały przedstawione na fig. 1.
Opis pojemnika transportowego:
Do stworzenia pojemnika wykorzystano sterylne probówki 1 wymazowe. W zatyczce 2 probówki 1 wykonano cztery otwory 3 powietrzne co 90° o średnicy 1 mm. Wymazówka składała się z plastikowej pałeczki 4 zakończonej wyjałowioną bawełną 5. Bawełna 5 została nasączony krwią z antykoagulantem 6. Krew została pozyskana od bydła i została pobrana do probówki morfologicznej z K3 EDTA. Stężenie EDTA we krwi wynosiło 1,8 mg/ml. Bawełna została nasączona przy użyciu 0,25 ml krwi z antykoagulantem.
Zbieracze w przygotowanych pojemnikach transportowych umieścili po 5 owadów. Łącznie pozyskano 60 owadów 7 umieszczonych w 12 probówkach transportowych. Probówki zostały umieszczone w pojemniku utrzymującym temperaturę w zakresie od 20°C do 25°C. Natężenie światła w pojemniku wynosiło 2nx. Owady transportowane były przez 2h do jednostki badawczej. Po 10h od pobrania wymieniona została bawełna z krwią. Owady były utrzymywane przez 26 h w pojemnikach transportowych, aż do rozpoczęcia eksperymentu.
Przykład 2
W jednostce badawczej tworzony jest nowy repelent przeciwko Hippobosca equina. Do przeprowadzenia tych badań należy wykorzystać żywe owady. Muchówka może być pozyskana na przykład w trakcie pobierania krwi od bydła. Naukowcom znane jest 7 potencjalnych miejsc w których można pobrać tego owada. Łączny czas potrzebny na monitoring, złapanie i transport wynosi około 10 h. Pozyskane owady zostały umieszczone w pojemnikach transportowych przygotowanych na początku procedury. Wykorzystane pojemniki transportowe zostały przedstawione na fig. 2.
Opis pojemnika transportowego:
Pojemnik 1 ma kształt prostopadłościanu o pojemności 100 ml. W zakrętce 2 wycięto otwór 3 i przymocowano szczelnie siatkę (wielkość oczek 1 mm) przy użyciu pistoletu klejowego. Do dna pojemnika przymocowany jest płatek wiskozowy 5. Płatek wiskozowy 5 został nasączony krwią z antykoagulantem 6. Krew została pozyskana od bydła, pobrana do probówki morfologicznej z K2 EDTA. Stężenie EDTA we krwi wynosiło 2 mg/ml. Wiskoza została nasączona przy użyciu 1 ml krwi z antykoagulantem bezpośrednio przed pozyskaniem owadów.
Zbieracze w przygotowanych pojemnikach transportowych umieścili od trzech do sześciu owadów 7, które zostały pozyskane z różnych lokalizacji. Owady 7 z różnych lokalizacji transportowano w innych pojemnikach. Transport odbywał się w temperaturze 15°C ± 3°C. Natężenie światła w pojemniku wynosiło 100001 x. Owady 7 transportowane były przez 2 h do jednostki badawczej. Po 24 h od pobrania owady zostały przeniesione do nowych pojemników wraz ze świeżą krwią i były utrzymywane aż do użycia.
Przykład 3
W celu wykazania różnic w behawiorze płciowym muchówek z rodzaju Lipoptena spp. przynależących do różnych populacji geograficznych należy pozyskać owady z różnych, czasem odległych miejsc. W tym celu wybrano populacje oddalone od siebie o 1000 km. Czas pozyskania owadów i ich przetransportowania do laboratorium szacowany jest na około 20 h. Na miejsce wybrała się jedna osoba. Zbieracz ubrany był w wykonany z wełny czarny strój zakrywający całe ciało. Droga jaką poruszał się zbieracz wiodła przez siedliska jeleniowatych. Czas marszu wynosił od 15 min, z 5 minutowymi przerwami na wyłapanie owadów ze swoich ubrań. Pozyskane owady zostały umieszczone w pojemnikach transportowych przygotowanych na początku procedury. Pojemniki transportowe zostały przedstawione na fig. 3.
Pojemnik 1 w kształcie prostopadłościanu o pojemności 20 ml. W zakrętce 2 wykonano dwa otwory 3 powietrzne co 180°. Zakrętka 2 posiadała łopatkę 4, na której przymocowana została bawełna 5 jako materiał sorpcyjny. Został on nasączony krwią z antykoagulantem 6. Krew została pozyskana od człowieka i została pobrana do probówki morfologicznej z K3 EDTA. Stężenie EDTA we krwi wynosiło 1,5 mg/ml. Bawełna 5 została nasączona przy użyciu 0,2 ml krwi z antykoagulantem 6.
Zbieracz w przygotowanych pojemnikach transportowych umieścił po 7 ektopasożytów. Łącznie pozyskano 35 strzyżaków umieszczonych w 5 pojemnikach transportowych. Zostały one umieszczone w pojemniku utrzymującym temperaturę w zakresie od 16°C do 22°C. Natężenie światła w pojemniku wynosiło 1001x. Ektopasożyty po 20 h podróży docierają do laboratorium. Pozyskane osobniki następnie zostają przeniesione do nowych identycznych pojemników. Przy stałej temperaturze 20°C i natężeniu światła na poziomie 501x były utrzymywane 24 h aż do użycia
Claims (3)
1. Pojemniki do przetrzymywania i transportu ektopasożytów, zwłaszcza muchówek z rodziny Hippoboscidae ze środowiska naturalnego znamienny tym, że zakrętka (2) pojemnika (1) posiada co najmniej jeden otwór (3) powietrzny o wielkości od 0,5 mm, a w środku pojemnik (1) posiada materiał sorpcyjny (5) nasączony antykoagulantem (6), na który naniesiona jest krew ssaka lub ptaka, przy czym stężenie antykoagulantu we krwi wynosi od 0,001 mg/ml do 1000 mg/ml.
2. Pojemnik wg zastrz. 1 znamienny tym, że antykoagulantem (6) jest 0,1% - 99% roztwór K2 lub K3 EDTA.
3. Pojemnik wg zastrz. 1 znamienny tym, że antykoagulantem (6) jest heparyna, fluorek sodu, szczawian potasu, octan jodu.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL439910A PL244646B1 (pl) | 2021-12-20 | 2021-12-20 | Pojemniki do przetrzymywania i transportu ektopasożytów, zwłaszcza muchówek z rodziny Hippoboscidae ze środowiska naturalnego |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL439910A PL244646B1 (pl) | 2021-12-20 | 2021-12-20 | Pojemniki do przetrzymywania i transportu ektopasożytów, zwłaszcza muchówek z rodziny Hippoboscidae ze środowiska naturalnego |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL439910A1 PL439910A1 (pl) | 2023-06-26 |
| PL244646B1 true PL244646B1 (pl) | 2024-02-19 |
Family
ID=86945221
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL439910A PL244646B1 (pl) | 2021-12-20 | 2021-12-20 | Pojemniki do przetrzymywania i transportu ektopasożytów, zwłaszcza muchówek z rodziny Hippoboscidae ze środowiska naturalnego |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL244646B1 (pl) |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7378054B2 (en) * | 2004-04-16 | 2008-05-27 | Savvipharm Inc | Specimen collecting, processing and analytical assembly |
| ES1071576U (es) * | 2009-11-18 | 2010-03-12 | Ecologia Y Proteccion Agricola, S.L. | Dispositivo para la exterminacion de insectos. |
| MX354396B (es) * | 2014-02-06 | 2018-02-21 | Univ Veracruzana | Trampa para control y monitoreo de moscas de la fruta de la familia tephritidae. |
| ES1247524Y (es) * | 2019-12-20 | 2020-08-28 | Probodelt S L | Dispositivo atrayente para dipteros |
-
2021
- 2021-12-20 PL PL439910A patent/PL244646B1/pl unknown
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7378054B2 (en) * | 2004-04-16 | 2008-05-27 | Savvipharm Inc | Specimen collecting, processing and analytical assembly |
| ES1071576U (es) * | 2009-11-18 | 2010-03-12 | Ecologia Y Proteccion Agricola, S.L. | Dispositivo para la exterminacion de insectos. |
| MX354396B (es) * | 2014-02-06 | 2018-02-21 | Univ Veracruzana | Trampa para control y monitoreo de moscas de la fruta de la familia tephritidae. |
| ES1247524Y (es) * | 2019-12-20 | 2020-08-28 | Probodelt S L | Dispositivo atrayente para dipteros |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL439910A1 (pl) | 2023-06-26 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Andersen et al. | Effect of desiccation on survival of the free-living stages of Trichostrongylus colubriformis | |
| Overal | Host-relations of the batfly Megistopoda aranea (Diptera: Streblidae) in Panama | |
| Smith et al. | Blackfly-induced mortality of nestling red-tailed hawks | |
| Attia et al. | Morphological and molecular characterization of Pseudolynchia canariensis (Diptera: Hippoboscidae) infesting domestic pigeons | |
| Uhuo et al. | Common gastrointestinal parasites of local chicken (Gallus domesticus) slaughtered in some selected eatery centres in Abakaliki, Ebonyi State: Implication for meat quality | |
| Mirzaei et al. | Prevalence of ectoparasites of indigenous chickens from Dalahu region, Kermanshah province, Iran | |
| Ramalingam | The epidemiology of filarial transmission in Samoa and Tonga | |
| Bahrami et al. | Pathological study of parasitism in racing pigeons: An indication of its effects on community health | |
| Tompkins et al. | Effect of vertically transmitted ectoparasites on the reproductive success of swifts (Apus apus) | |
| Martínez-de La Puente et al. | Nest ectoparasites increase physiological stress in breeding birds: an experiment | |
| Waage et al. | Cryptoses choloepi: a coprophagous moth that lives on a sloth | |
| PL244646B1 (pl) | Pojemniki do przetrzymywania i transportu ektopasożytów, zwłaszcza muchówek z rodziny Hippoboscidae ze środowiska naturalnego | |
| Brown et al. | Do bats use scent cues from guano and urine to find roosts? | |
| Thomas | Behavioral aspects of screwworm ecology | |
| Srbek-Araujo et al. | Predation by centipede Scolopendra viridicornis (Scolopendromorpha, Scolopendridae) on roof-roosting bats in the Atlantic Forest of southeastern Brazil | |
| ENRIGHT et al. | Q-fever Antibodies in Birds 1 | |
| Pavel et al. | Blow fly Trypocalliphora braueri parasitism on Meadow Pipit and Bluethroat nestlings in Central Europe | |
| Satchell et al. | II. Experimental observations on the possibility of transmission of yaws by wound-feeding Diptera, in Western Samoa | |
| Oyerinde | The role of the house fly (Musca domestica) in the dissemination of hookworm | |
| CELIÃO DE OLIVEIRA et al. | PHILODRYAS OLFERSII (Green Snake). ENDOPARASITES. | |
| Bahrami et al. | Theileriosis in grazing sheep and its interrelation with the reptiles ticks | |
| Edosomwan et al. | A survey of helminth parasites of wild birds in the university of Benin, Benin-city, Nigeria | |
| Gilardi et al. | Epidermoptid mange in Laysan Albatross fledglings in Hawaii | |
| Pavlićević et al. | A contribution to information on starvation survival capacity of poultry red mite Dermanyssus gallinae | |
| Kalavský et al. | Arthropods in the nests of the Common Kestrel (Falco tinnunculus) |