PL241759B1 - Hydrolizat α-(1→3)-glukanów wyizolowanych z owocników żółciaka siarkowego Laetiporus sulphureus do zastosowania jako oligosacharydowy prebiotyk - Google Patents
Hydrolizat α-(1→3)-glukanów wyizolowanych z owocników żółciaka siarkowego Laetiporus sulphureus do zastosowania jako oligosacharydowy prebiotyk Download PDFInfo
- Publication number
- PL241759B1 PL241759B1 PL434201A PL43420120A PL241759B1 PL 241759 B1 PL241759 B1 PL 241759B1 PL 434201 A PL434201 A PL 434201A PL 43420120 A PL43420120 A PL 43420120A PL 241759 B1 PL241759 B1 PL 241759B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- hydrolyzate
- glucans
- prebiotic
- isolated
- fruiting bodies
- Prior art date
Links
- 229920001503 Glucan Polymers 0.000 title claims abstract description 32
- 235000013406 prebiotics Nutrition 0.000 title claims abstract description 22
- 240000005995 Laetiporus sulphureus Species 0.000 title claims abstract description 8
- 235000007714 Laetiporus sulphureus Nutrition 0.000 title claims abstract description 7
- 229920001542 oligosaccharide Polymers 0.000 title claims description 17
- 150000002482 oligosaccharides Chemical class 0.000 title claims description 17
- 239000000413 hydrolysate Substances 0.000 title 1
- 241000186000 Bifidobacterium Species 0.000 abstract description 6
- 239000000203 mixture Substances 0.000 abstract description 6
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 5
- 241000186660 Lactobacillus Species 0.000 abstract description 4
- 238000006116 polymerization reaction Methods 0.000 abstract description 4
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 abstract description 3
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 abstract description 3
- 244000005709 gut microbiome Species 0.000 abstract description 3
- 229940039696 lactobacillus Drugs 0.000 abstract description 3
- 239000002994 raw material Substances 0.000 abstract description 3
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 abstract description 3
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 abstract description 2
- 235000005911 diet Nutrition 0.000 abstract description 2
- 230000037213 diet Effects 0.000 abstract description 2
- 229920001202 Inulin Polymers 0.000 description 16
- JYJIGFIDKWBXDU-MNNPPOADSA-N inulin Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)OC[C@]1(OC[C@]2(OC[C@]3(OC[C@]4(OC[C@]5(OC[C@]6(OC[C@]7(OC[C@]8(OC[C@]9(OC[C@]%10(OC[C@]%11(OC[C@]%12(OC[C@]%13(OC[C@]%14(OC[C@]%15(OC[C@]%16(OC[C@]%17(OC[C@]%18(OC[C@]%19(OC[C@]%20(OC[C@]%21(OC[C@]%22(OC[C@]%23(OC[C@]%24(OC[C@]%25(OC[C@]%26(OC[C@]%27(OC[C@]%28(OC[C@]%29(OC[C@]%30(OC[C@]%31(OC[C@]%32(OC[C@]%33(OC[C@]%34(OC[C@]%35(OC[C@]%36(O[C@@H]%37[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O%37)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%36)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%35)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%34)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%33)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%32)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%31)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%30)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%29)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%28)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%27)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%26)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%25)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%24)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%23)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%22)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%21)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%20)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%19)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%18)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%17)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%16)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%15)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%14)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%13)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%12)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%11)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O%10)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O9)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O8)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O7)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O6)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O5)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O4)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O3)O)[C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O2)O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 JYJIGFIDKWBXDU-MNNPPOADSA-N 0.000 description 16
- 229940029339 inulin Drugs 0.000 description 16
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 12
- JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N lactic acid Chemical compound CC(O)C(O)=O JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 12
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 8
- 240000001046 Lactobacillus acidophilus Species 0.000 description 7
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 7
- 235000014655 lactic acid Nutrition 0.000 description 6
- 239000004310 lactic acid Substances 0.000 description 6
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 5
- NINIDFKCEFEMDL-UHFFFAOYSA-N Sulfur Chemical compound [S] NINIDFKCEFEMDL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 5
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 5
- 238000000034 method Methods 0.000 description 5
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 5
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 5
- 229910052717 sulfur Inorganic materials 0.000 description 5
- 239000011593 sulfur Substances 0.000 description 5
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 4
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 4
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 4
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 4
- 241000186016 Bifidobacterium bifidum Species 0.000 description 3
- 241000186015 Bifidobacterium longum subsp. infantis Species 0.000 description 3
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 3
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 3
- RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N Fructose Chemical class OC[C@H]1O[C@](O)(CO)[C@@H](O)[C@@H]1O RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N 0.000 description 3
- 240000006024 Lactobacillus plantarum Species 0.000 description 3
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 238000005903 acid hydrolysis reaction Methods 0.000 description 3
- 150000001720 carbohydrates Chemical class 0.000 description 3
- 235000014633 carbohydrates Nutrition 0.000 description 3
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 3
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 3
- 230000002538 fungal effect Effects 0.000 description 3
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 3
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 3
- OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 100676-05-9 Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OCC1C(O)C(O)C(O)C(OC2C(OC(O)C(O)C2O)CO)O1 OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- QIGJYVCQYDKYDW-UHFFFAOYSA-N 3-O-alpha-D-mannopyranosyl-D-mannopyranose Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OC1C(O)C(CO)OC(O)C1O QIGJYVCQYDKYDW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 2
- 235000013956 Lactobacillus acidophilus Nutrition 0.000 description 2
- 102100024295 Maltase-glucoamylase Human genes 0.000 description 2
- GUBGYTABKSRVRQ-PICCSMPSSA-N Maltose Natural products O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)OC(O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-PICCSMPSSA-N 0.000 description 2
- 241000222350 Pleurotus Species 0.000 description 2
- 108010028144 alpha-Glucosidases Proteins 0.000 description 2
- 230000004071 biological effect Effects 0.000 description 2
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 2
- HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N cholesterol Chemical compound C1C=C2C[C@@H](O)CC[C@]2(C)[C@@H]2[C@@H]1[C@@H]1CC[C@H]([C@H](C)CCCC(C)C)[C@@]1(C)CC2 HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N 0.000 description 2
- 235000013365 dairy product Nutrition 0.000 description 2
- 210000002249 digestive system Anatomy 0.000 description 2
- 238000006047 enzymatic hydrolysis reaction Methods 0.000 description 2
- 235000013373 food additive Nutrition 0.000 description 2
- 239000002778 food additive Substances 0.000 description 2
- 235000021255 galacto-oligosaccharides Nutrition 0.000 description 2
- 150000003271 galactooligosaccharides Chemical class 0.000 description 2
- 125000002791 glucosyl group Chemical group C1([C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O1)CO)* 0.000 description 2
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 2
- 229940039695 lactobacillus acidophilus Drugs 0.000 description 2
- JCQLYHFGKNRPGE-FCVZTGTOSA-N lactulose Chemical compound OC[C@H]1O[C@](O)(CO)[C@@H](O)[C@@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 JCQLYHFGKNRPGE-FCVZTGTOSA-N 0.000 description 2
- 229960000511 lactulose Drugs 0.000 description 2
- PFCRQPBOOFTZGQ-UHFFFAOYSA-N lactulose keto form Natural products OCC(=O)C(O)C(C(O)CO)OC1OC(CO)C(O)C(O)C1O PFCRQPBOOFTZGQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- QIGJYVCQYDKYDW-NSYYTRPSSA-N nigerose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)OC(O)[C@@H]1O QIGJYVCQYDKYDW-NSYYTRPSSA-N 0.000 description 2
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 2
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 2
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 2
- HDTRYLNUVZCQOY-UHFFFAOYSA-N α-D-glucopyranosyl-α-D-glucopyranoside Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OC1C(O)C(O)C(O)C(CO)O1 HDTRYLNUVZCQOY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ODDPRQJTYDIWJU-UHFFFAOYSA-N 3'-beta-D-galactopyranosyl-lactose Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OC1C(O)C(OC2C(OC(O)C(O)C2O)CO)OC(CO)C1O ODDPRQJTYDIWJU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- PVXPPJIGRGXGCY-TZLCEDOOSA-N 6-O-alpha-D-glucopyranosyl-D-fructofuranose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1OC[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)C(O)(CO)O1 PVXPPJIGRGXGCY-TZLCEDOOSA-N 0.000 description 1
- 241001019659 Acremonium <Plectosphaerellaceae> Species 0.000 description 1
- 241000228212 Aspergillus Species 0.000 description 1
- 208000024172 Cardiovascular disease Diseases 0.000 description 1
- 229920000858 Cyclodextrin Polymers 0.000 description 1
- 108010025880 Cyclomaltodextrin glucanotransferase Proteins 0.000 description 1
- 125000003535 D-glucopyranosyl group Chemical group [H]OC([H])([H])[C@@]1([H])OC([H])(*)[C@]([H])(O[H])[C@@]([H])(O[H])[C@]1([H])O[H] 0.000 description 1
- 229920001353 Dextrin Polymers 0.000 description 1
- 239000004375 Dextrin Substances 0.000 description 1
- 241001480537 Fomitopsis Species 0.000 description 1
- 108010055629 Glucosyltransferases Proteins 0.000 description 1
- 102000000340 Glucosyltransferases Human genes 0.000 description 1
- 102000003814 Interleukin-10 Human genes 0.000 description 1
- 108090000174 Interleukin-10 Proteins 0.000 description 1
- 241000192130 Leuconostoc mesenteroides Species 0.000 description 1
- 229920002774 Maltodextrin Polymers 0.000 description 1
- 229920000881 Modified starch Polymers 0.000 description 1
- 244000252132 Pleurotus eryngii Species 0.000 description 1
- 235000001681 Pleurotus eryngii Nutrition 0.000 description 1
- MUPFEKGTMRGPLJ-RMMQSMQOSA-N Raffinose Natural products O(C[C@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O[C@@]2(CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O1)[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 MUPFEKGTMRGPLJ-RMMQSMQOSA-N 0.000 description 1
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 1
- 241000120754 Sarocladium implicatum Species 0.000 description 1
- 241000235346 Schizosaccharomyces Species 0.000 description 1
- UQZIYBXSHAGNOE-USOSMYMVSA-N Stachyose Natural products O(C[C@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O[C@@]2(CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O1)[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO[C@@H]2[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O2)O1 UQZIYBXSHAGNOE-USOSMYMVSA-N 0.000 description 1
- 229920002472 Starch Polymers 0.000 description 1
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 1
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 1
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N Sulfuric acid Chemical compound OS(O)(=O)=O QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- HDTRYLNUVZCQOY-WSWWMNSNSA-N Trehalose Natural products O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 HDTRYLNUVZCQOY-WSWWMNSNSA-N 0.000 description 1
- MUPFEKGTMRGPLJ-UHFFFAOYSA-N UNPD196149 Natural products OC1C(O)C(CO)OC1(CO)OC1C(O)C(O)C(O)C(COC2C(C(O)C(O)C(CO)O2)O)O1 MUPFEKGTMRGPLJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- VLSOAXRVHARBEQ-UHFFFAOYSA-N [4-fluoro-2-(hydroxymethyl)phenyl]methanol Chemical compound OCC1=CC=C(F)C=C1CO VLSOAXRVHARBEQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 239000000370 acceptor Substances 0.000 description 1
- -1 acetic Chemical class 0.000 description 1
- 239000003513 alkali Substances 0.000 description 1
- HDTRYLNUVZCQOY-LIZSDCNHSA-N alpha,alpha-trehalose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 HDTRYLNUVZCQOY-LIZSDCNHSA-N 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 description 1
- 235000013361 beverage Nutrition 0.000 description 1
- 229920001222 biopolymer Polymers 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 244000309464 bull Species 0.000 description 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000002421 cell wall Anatomy 0.000 description 1
- 230000007073 chemical hydrolysis Effects 0.000 description 1
- 235000012000 cholesterol Nutrition 0.000 description 1
- 238000009833 condensation Methods 0.000 description 1
- 230000005494 condensation Effects 0.000 description 1
- 235000009508 confectionery Nutrition 0.000 description 1
- 238000013527 convolutional neural network Methods 0.000 description 1
- 125000004122 cyclic group Chemical group 0.000 description 1
- 229940097362 cyclodextrins Drugs 0.000 description 1
- 230000000593 degrading effect Effects 0.000 description 1
- 235000019425 dextrin Nutrition 0.000 description 1
- 239000000539 dimer Substances 0.000 description 1
- 150000002016 disaccharides Chemical class 0.000 description 1
- 230000006806 disease prevention Effects 0.000 description 1
- 235000013399 edible fruits Nutrition 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- 230000007071 enzymatic hydrolysis Effects 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 239000003925 fat Substances 0.000 description 1
- 210000001035 gastrointestinal tract Anatomy 0.000 description 1
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 1
- 238000004128 high performance liquid chromatography Methods 0.000 description 1
- 229920001519 homopolymer Polymers 0.000 description 1
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 1
- 230000002519 immonomodulatory effect Effects 0.000 description 1
- 230000036737 immune function Effects 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 229940076144 interleukin-10 Drugs 0.000 description 1
- 210000000936 intestine Anatomy 0.000 description 1
- VQHSOMBJVWLPSR-JVCRWLNRSA-N lactitol Chemical compound OC[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]([C@H](O)CO)O[C@@H]1O[C@H](CO)[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O VQHSOMBJVWLPSR-JVCRWLNRSA-N 0.000 description 1
- 229960003451 lactitol Drugs 0.000 description 1
- 239000000832 lactitol Substances 0.000 description 1
- 235000010448 lactitol Nutrition 0.000 description 1
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 235000019426 modified starch Nutrition 0.000 description 1
- 239000000178 monomer Substances 0.000 description 1
- 150000002772 monosaccharides Chemical group 0.000 description 1
- 239000006872 mrs medium Substances 0.000 description 1
- 230000000242 pagocytic effect Effects 0.000 description 1
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 1
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 1
- 239000013641 positive control Substances 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- 150000004672 propanoic acids Chemical class 0.000 description 1
- 235000019260 propionic acid Nutrition 0.000 description 1
- MUPFEKGTMRGPLJ-ZQSKZDJDSA-N raffinose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO[C@@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O)O1 MUPFEKGTMRGPLJ-ZQSKZDJDSA-N 0.000 description 1
- 150000004666 short chain fatty acids Chemical class 0.000 description 1
- 235000021391 short chain fatty acids Nutrition 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- UQZIYBXSHAGNOE-XNSRJBNMSA-N stachyose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO[C@@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO[C@@H]3[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O3)O)O2)O)O1 UQZIYBXSHAGNOE-XNSRJBNMSA-N 0.000 description 1
- 235000019698 starch Nutrition 0.000 description 1
- 239000008107 starch Substances 0.000 description 1
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 1
- 150000003445 sucroses Chemical class 0.000 description 1
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 1
- 235000011149 sulphuric acid Nutrition 0.000 description 1
- 230000006098 transglycosylation Effects 0.000 description 1
- 238000005918 transglycosylation reaction Methods 0.000 description 1
- 239000013638 trimer Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
Przedmiotem wynalazku jest hydrolizat α-(1 → 3)-glukanów wyizolowanych z owocników żółciaka siarkowego Laetiporus sulphureus, znajdujący zastosowanie jako prebiotyk dla ludzi i zwierząt wspomagający namnażanie i wzrost dobroczynnej mikroflory jelitowej, zaburzonej np. na skutek przebytej antybiotykoterapii, stresu lub nieprawidłowej diety. Hydrolizat według wynalazku, wyizolowany z powszechnie dostępnego o stosunkowo niskiej cennie surowca, zawiera mieszaninę α-(1 → 3)-glukooligosacharydów o stopniu polimeryzacji od 2 do 10 i jest substancją o wysokim stopniu bifidogennym, na przykład, w stosunku do bakterii mlekowych Bifidobacterium i Lactobacillus.
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest hydrolizat a-(1^3)-glukanów wyizolowanych z owocników żółciaka siarkowego Laeliporus sulphureus, znajdujący zastosowanie jako prebiotyk dla ludzi i zwierząt wspomagający namnażanie i wzrost dobroczynnej mikroflory jelitowej, zaburzonej np. na skutek przebytej antybiotykoterapii, stresu lub nieprawidłowej diety.
Do znanych i wymienionych przykładowo w publikacji J. Appl Glycosci, 2005, 52, 267-271; Adv. Exp. Med. Biol., 2016, 902, 119-142; World J. Microbiol. Biotechnol., 2011, 27, 1119-1128, prebiotyków zalicza się, m.in. oligosacharydy czyli węglowodany o niskiej masie cząsteczkowej, zawierające od dwóch do kilkunastu jednostek monosacharydowych. Przykładem oligosacharydów są pochodne skrobi, jak np., maltooligosacharydy, izomaltooligosacharydy, nigerooligosacharydy, cyklodekstryny, trehaloza, gentiooiigosacharydy, kojooligosacharydy; pochodne sacharozy, takie jak, fruktooligosacharydy, izomaltuloza, rafinoza, stachioza; czy też pochodne laktozy typu, galaktooligosacharydy, laktuloza, laktitol i inne.
Oligosacharydy takie mogą być otrzymywane poprzez bezpośrednią ekstrakcję z nieprzetworzonych surowców roślinnych lub zwierzęcych, np. oligosacharydy sojowe; syntezę chemiczną z disacharydów, np: oporne dekstryny, laktuloza; syntezę z użyciem enzymów, np. ksylo- i galaktooligosacharydy czy też kontrolowaną hydrolizę chemiczną lub enzymatyczną różnego rodzaju polisacharydów, np. fruktooligosacharydy z inuliny.
Ze względu na cenne z punktu widzenia technologii produkcji żywności własności fizykochemiczne, takie jak dobra rozpuszczalność w wodzie, brak zapachu, umiarkowana zawartość sacharozy, wysoka zdolność do utrzymywania wilgotności bez zwiększania aktywności wody, stabilność w szerokim przedziale pH, czy też zdolność do stabilizacji różnych substancji aktywnych, wiele z wymienionych oligosacharydów stosowanych jest jako dodatki do żywności, szczególnie napojów, wyrobów cukierniczych i mleczarskich (Food Res. Int., 2009, 42, 8-12; Carbohydr. Pol., 2007, 68, 587-597). Najważniejszą jednak przyczyną zainteresowania oligosacharydami jako dodatkami do żywności są ich właściwości biologiczne. Układ pokarmowy zasiedlony jest przez bardzo liczną i złożoną populację bakterii, głównie beztlenowych. Oligosacharydy w znacznym stopniu modyfikują skład tej mikroflory jelitowej, ponieważ służą jako substraty dla wzrostu i namnażania się bakterii z rodzaju Bifidobacterium i Lactobacillus, które uważane są za korzystnie wpływające na organizm gospodarza (Ann. Rev. Nutr., 2002, 22, 104-138; Int. Dairy J., 1999,9.69-80; Adv. Exp. MedBiol., 2016, 902, doi 10.1007/978-3-319-31248-4-9). Oligosacharydy fermentowane są przez te mikroorganizmy do kwasu mlekowego oraz krótkołańcuchowych kwasów tłuszczowych, takich jak kwas octowy, masłowy czy propionowy. Dowiedziono, że prebiotyczne oligosacharydy mają udział w terapii i profilaktyce schorzeń układu pokarmowego, zapewniając właściwe funkcjonowanie jelit, wpływają na poprawę funkcji immunologicznych organizmu poprzez zwiększanie produkcji IgA, interleukiny 10 oraz liczebności i aktywności fagocytarnej leukocytów, a także są stosowane w profilaktyce chorób krążenia, ponieważ ograniczają wchłanianie glukozy, cholesterolu i tłuszczów ze światła przewodu pokarmowego.
Prebiotyczne oligosacharydy zawierające jedno lub wiele wiązań a-(1^3)-glukozydowych znane są jako nigerooligosacharydy i charakteryzują się stopniem polimeryzacji od 2 do 10. Poza wiązaniami a-(1^3)-glukozydowymi, mogą zawierać wiązania α-(1^1), α-(1^2), α-(1^4) lub a-(1^6)-glukozydowe, w różnej proporcji (M. Stacey and J. M. Webber: Methods in Carbohydrate Chemistry, I, 339-341, AcademicPress, 1962).
Dotychczas opisano (Biosci. Biotechnol. Biochem. 2002, 66, 1806-1818; J. Biosci. Bioeng. 2002, 94, 336-342) cykliczne nigerooligosacharydy (CN N) zawierające cztery reszty D-glukopiranozowe połączone naprzemiennie występującymi wiązaniami α-(1^3)- i α-(1 ^6)-glukozydowymi. CNN są syntetyzowane z dekstranopodobnego polisacharydu z użyciem degradującego go enzymu (Eur. J. Biochem., 1994, 226, 633-639 i 641-648) lub z maltodekstryn poprzez łączne działanie 6-α-glukozylotransferazy i 3-a-izomaltozylotransferazy (J. Biosci. Bioeng., 2003, 95, 215-224; Trends Glycosci. Glycotechnol., 2002, 14, 321-333). Jak doniesiono w J. Agricultural Food Chem. 2005, 53, 5911-5916; Lett. Appl. Microbiol. 2005, 40, 385-390, również liniowe oligosacharydy zawierające reszty glukozowe połączone wiązaniami α-(1 ^3)-, a-(1^6)-glukozydowymi mają właściwości prebiotyczne. Są one wytwarzane przez enzym alternanosacharazę z Leuconostoc mesenteroides w obecności akceptorów cukrowych o niskiej masie cząsteczkowej. Nigerooligosacharydy będące mieszanką nigerozy (dimer), nigerozyloglukozy (trimer) i nigerozylomaltozy (tetramer) są produkowane na dużą skalę z maltozy przy użyciu α-glukozydazy wytwarzanej przez Acremonium implicatum S4G13, co ujawniono w opisie
PL 241 759 B1 patentowym JP 59559 i publikacji Biosci. Biotechnol. Biochem. 1997, 61, 439-442. Z opisu patentowego JP 322958 znana jest też metoda otrzymywania nigerozy w reakcji hydrolizatów skrobi z glukanotransferazą cyklodekstrynową. Nigerooligosacharydy mogą być otrzymywane także w procesach hydrolizy enzymatycznej lub kwasowej, takich polimerów produkowanych przez mikroorganizmy, jak nigeran lub elsinan (M Stacey and J. M. Webber: Methods in Carbohydrate Chemistry, I, 339-341, AcademicPress, 1962). Ponadto, jak opisano w publikacji Agric. Biol. Chem., 1988, 52, 1345-135, otrzymywane są także w procesie katalizowanej przez α-glukozydazę, transglikozylacji czy kondensacji. Z opisu patentowego JP 759559 znana jest również metoda produkcji nigerooligosacharydów w reakcji polisacharydów lub oligosacharydów zawierających wiązania α-(1^4)-glukozydowe z glukozylotransferazą pochodzącą z hodowli grzyba z rodzaju Acremonium sp., która syntetyzuje wiązania α-(1^3)-glukozydowe. (1^3)-α-D-glukan może pochodzić z różnych źródeł, m.in. roślin, bakterii, a szczególnie grzybów. Polisacharydy izolowane z grzybów, w tym z owocników grzybów wielkoowocnikowych, mają zróżnicowaną budowę chemiczną, składają się z różnych monomerów połączonych wiązaniami (1^3), (1^4), (1^6)-glikozydowymi. Najlepiej poznane pod względem właściwości biologicznych są homopolimery glukozy, głównie e-glukanv np, lentinian, schiozofylan czy grifolan, natomiast słabo zbadane pod tym względem są α-(1^3)-glukany. Wiadomo, że biopolimery zbudowane z jednostek glukozy połączonych wiązaniami α-(1^3)-glukozydowymi, których obecność stwierdzono w ścianie komórkowej takich gatunków grzybów jak, drożdże Schizosaccharomyces, grzyby nitkowate z rodzaju Aspergillus, grzyby wielkoowocnikowe, jak np., Pleurotus, Fomitopsis czy Laeliporus, są nierozpuszczalne w wodzie, natomiast rozpuszczają się w alkaliach. Do tej pory w publikacjach Appl. Microbiol Biotechnol, 2002, 60, 258-274; Carbohydr. Res., 2001, 336, 127-140; Biotechnol. Lett., 2011, 33, 787-795; Biol. Pharmaceutical Bull, 1996, 19, 114-121; Int. J. Biol. Macromol, 2012, 51, 1014-1023, opisano głównie właściwości immunomodulacyjne tych polisacharydów. Z publikacji w Carbohydr. Pol., 2009. 56, 548-556, znany jest jako prebiotyk w stosunku do bakterii Bifidobacterium i Lactobacillus, liniowy α-(1^3)-glukan pochodzący jedynie z grzyba Pleurotus ostreatus i Pleurotus eryngii.
Jak dotąd, w znanym stanie techniki, nie ujawniono źródła otrzymywania oligosacharydów o właściwościach prebiotycznych w wyniku hydrolizy grzybowych α-(1^3)-glukanów, a duże zapotrzebowanie na takie składniki sprawia, że wciąż poszukuje się nowych, relatywnie tanich i łatwo dostępnych źródeł prebiotyków, co było celem niniejszego wynalazku.
Nieoczekiwanie okazało się. że hydrolizat α-(1^3)-glukanów, wyizolowanych z powszechnie dostępnego o stosunkowo niskiej cennie surowca, jakim są owocniki żółciaka siarkowego Laetiporus sulphureus, w efekcie daje substancję o wysokim stopniu bifidogennym.
Istotą wynalazku jest hydrolizat α-(1 ^3)-glukanów otrzymany poprzez częściową hydrolizę kwasową grzybowego α-(1^3)-glukanu, z owocników żółciaka siarkowego Laetiporus sulphureus, zawierający α-(1 ^3)-glukooligosacharydy do zastosowania jako prebiotyk.
Otrzymanie oligosacharydów z α-(1 ^3)-glukanów wyizolowanych z owocników żółciaka siarkowego, z użyciem częściowej hydrolizy kwasowej, umożliwia pozyskanie mieszaniny α-(1^·3)-glukooligosacharydów o stopniu polimeryzacji od 2 do 10, co przedkłada się na ich wysokie właściwości prebiotyczne, na przykład, w stosunku do bakterii mlekowych Bifidobacterium i Lactobacillus, wyrażone poprzez wartości gęstości optycznej (ODsoo) hodowli tych bakterii, odczytywane w hodowlach in vitro, co opisano w poniższych przykładach.
Przykład 1. Otrzymywanie hydrolizatu α-(1^3)-glukanów wyizolowanych z żółciaka siarkowego Laetiporus sulphureus.
g wysuszonych i zmielonych owocników żółciaka siarkowego Laetiporus sulphureus, zawieszano w 2 dm3 wody destylowanej i gotowano przez 60 min w autoklawie w temp. 121 °C, po czym pozostawiono na 12 godz. w temperaturze pokojowej. Po odwirowaniu i przepłukaniu wodą destylowaną, czynność tę powtarzano jeszcze 2-krotnie. Przepłukany i odwirowany osad zawieszano w 2 dm3 1M NaOH i mieszano przy użyciu mieszadła magnetycznego (300 obr/min) przez 24 godziny. Po tym czasie, uzyskany po odwirowaniu supernatant, neutralizowano przy użyciu 1M HCl. Wtrącony biały, amorficzny precypitat (α-(1^3)-glukany) przepłukiwano 3-krotnie wodą destylowaną, zamrażano i suszono w liofilizatorze. 40 g otrzymanych α-(1^3)-glukanów poddano hydrolizie przy użyciu 100 ml 0,1 M H2SO4 w ciągu 1 godz. w temp. 100°C. Pozostałości usunięto przez odwirowanie w ciągu 20 min, przy 12000 obr/min. Otrzymany supernatant zneutralizowano za pomocą CaCO 3. Po ponownym odwirowaniu w warunkach jak wyżej, supernatant poddano odsoleniu, a odsolony roztwór zawierający α-(1^3)-glukooligosacharydy zagęszczono za pomocą wyparki próżniowej i zliofilizowano. Analizę składu otrzymanego
PL 241 759 Β1 hydrolizatu przeprowadzono techniką HPLC. Otrzymany hydrolizat zawierał glukozę oraz a-(1^3)-glukooligosacharydy o stopniu polimeryzacji DP od 2 do 10. Skład otrzymanego hydrolizatu przedstawiono na rysunku w tabeli 1.
Przykład 2. Badanie potencjalnego efektu prebiotycznego hydrolizatu według wynalazku na bakterie Lactobacillus acidophilus.
100 ml podłoża hodowlanego MRS pozbawionego źródeł węgla BTL, zawierającego 0,05% (w/v) dodatek chlorowodorku L-cysteiny, uzupełniono do wartości 0,5% (w./v) hydrolizatem a-(1^3)-glukanów izolowanych z żółciaka siarkowego L. sulphureus, jak opisano w przykładzie 1. Równolegle w sposób tożsamy przygotowano powyższe podłoże MRS zawierające 0,5% (w/v) komercyjnych prebiotyków: inulinę (Raftiline HP) orazfruktooligosacharydy- FOS (Raftilose P95) Podłoża zawierające komercyjne prebiotyki wykorzystano jako kontrolę pozytywną efektu prebiotycznego hydrolizatu a-(1^3)-glukanów izolowanych z żółciaka siarkowego.
Tak przygotowane podłoża zaszczepiono szczepem bakterii kwasu mlekowego Lactobacillus acidophilus PGM 2499 i inkubowano warunkach beztlenowych, w temperaturze 37°C, w czasie 72 godzin. W czasie trwania hodowli, prowadzonej w automatycznym czytniku wzrostu mikroorganizmów, monitorowano co dwie godziny jej gęstość optyczną ODsoo Każdy pomiar wykonano trzykrotnie a wynik przedstawiono jako wartość średnią. Uzyskane w czasie hodowli wartości gęstości optycznej ODsoo bakterii L. acidophilus PGM 2499 rosnących odpowiednio na hydrolizacie a-(1^3)-glukanów, FOS i inulinie przedstawiono w tabeli 2.
Przykład 3. Badanie potencjalnego efektu prebiotycznego hydrolizatu według wynalazku na bakterie Lactobacillus plantarum.
W warunkach jak w przykładzie 2 przeprowadzono hodowlę bakterii kwasu mlekowego L. plantarum ATTC 14917 na pożywkach zawierających hydrolizat a-(1^3)-glukanów, FOS i inulinie jako jedynym źródle węgla. Uzyskane w czasie hodowli wartości gęstości optycznej ODsoo bakterii L. plantarum ATTC 14917 rosnących odpowiednio na hydrolizacie a-(1^3)-glukanów, FOS i inulinie przedstawiono w tabeli 2.
Przykład 4. Badanie potencjalnego efektu prebiotycznego hydrolizatu według wynalazku na bakterie Lactobacillus acidophilus.
W warunkach jak w przykładzie 2 przeprowadzono hodowlę bakterii kwasu mlekowego L. acidophilus ATTC 20079 na pożywkach zawierających hydrolizat a-(1^3)-glukanów, FOS i inulinie jako jedynym źródle węgla. Uzyskane w czasie hodowli wartości gęstości optycznej ODsoo bakterii L. acidophilus ATTC 20079 rosnących odpowiednio na hydrolizacie a-(1^3)-glukanów, FOS i inulinie przedstawiono w tabeli 2.
Przykład 5. Badanie potencjalnego efektu prebiotycznego hydrolizatu według wynalazku na bakterie Bifidobacterium infantis.
W warunkach jak w przykładzie 2 przeprowadzono hodowlę bakterii kwasu mlekowego B. infantis ATTC 1567 na pożywkach zawierających hydrolizat a-(1^3)-glukanów, FOS i inulinie jako jedynym źródle węgla. Uzyskane w czasie hodowli wartości gęstości optycznej ODsoo bakterii B. infantis ATTC 1567 rosnących odpowiednio na hydrolizacie a-(1^3)-glukanów, FOS i inulinie przedstawiono w tabeli 2.
Przykład 6. Badanie potencjalnego efektu prebiotycznego hydrolizatu według wynalazku na bakterie Bifidobacterium bifidum.
W warunkachjak w przykładzie 2 przeprowadzono hodowlę bakterii kwasu mlekowego B. bifidum ATTC 41410 na pożywkach zawierających hydrolizat a-(1^3)-glukanów. FOS i inulinie jako jedynym źródle węgla. Uzyskane w czasie hodowli wartości gęstości optycznej ODsoo bakterii B. bifidum ATTC 41410 rosnących odpowiednio na hydrolizacie a-(1^3)-glukanów, FOS i inulinie przedstawiono w tabeli 2.
Tabela 1.
| Cukry (%) | |||||||||
| G1 | G2 | G3 | G4 | G5 | G6 | G7 | G8 | G9 | G10 |
| 14,4 | 17,5 | 16,8 | 14,8 | 12,0 | 9,1 | 6,7 | 4,4 | 2,9 | 1,4 |
| Gl - glukoza, G2-G10 -a-(l—>3)-glukooligosacharydy |
PL 241 759 Β1
Tabela 2
| Przykład | Mikroorganizm | Prebiotyk | Wartość gęstości optycznej komórek [ODsoo] po czasie hodowli 72 godz. |
| 2. | Laciobacillus acidophilus PCM 2499 | Inulina | 0,025 |
| FOS | 0,05 | ||
| hydrolizat a-(l ->3)-glukanów | 0,32 | ||
| 3. | Lactobaciilus plan tar urn ATTC 14917 | Inulina | 0 |
| FOS | 0,08 | ||
| hydrolizat a-(l ->3)-glukanów | 0,35 | ||
| 4. | Lactobaciilus acidophilus ATTC 20079 | Inulina | 0 |
| FOS | 0.11 | ||
| hydrolizat α-( 1 ->3)-gIukanów | 0,42 | ||
| 5. | Bifidobacterium infanlis ATTC 1567 | Inulina | 0,05 |
| FOS | 0,2 | ||
| hydrolizat Q-( 1 —>3)-glukanów | 1,05 | ||
| 6. | Bifidobacterium bijidum ATTC 41410 | Inulina | 0,05 |
| FOS | 0,18 | ||
| hydrolizat α-( 1 ->3)-glukanów | 0,92 |
Zastrzeżenie patentowe
Claims (1)
1. Hydrolizat a-(1^3)-glukanów wyizolowanych z owocników żółciaka siarkowego Laetiporus sulphureus do zastosowania jako oligosacharydowy prebiotyk zawierający a-( 1 ->3)-glukooligosacharydy.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL434201A PL241759B1 (pl) | 2020-06-04 | 2020-06-04 | Hydrolizat α-(1→3)-glukanów wyizolowanych z owocników żółciaka siarkowego Laetiporus sulphureus do zastosowania jako oligosacharydowy prebiotyk |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL434201A PL241759B1 (pl) | 2020-06-04 | 2020-06-04 | Hydrolizat α-(1→3)-glukanów wyizolowanych z owocników żółciaka siarkowego Laetiporus sulphureus do zastosowania jako oligosacharydowy prebiotyk |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL434201A1 PL434201A1 (pl) | 2021-12-06 |
| PL241759B1 true PL241759B1 (pl) | 2022-12-05 |
Family
ID=80002086
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL434201A PL241759B1 (pl) | 2020-06-04 | 2020-06-04 | Hydrolizat α-(1→3)-glukanów wyizolowanych z owocników żółciaka siarkowego Laetiporus sulphureus do zastosowania jako oligosacharydowy prebiotyk |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL241759B1 (pl) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| PL248026B1 (pl) * | 2023-06-16 | 2025-10-06 | Univ Marii Curie Sklodowskiej W Lublinie | Preparat oligosacharydowy pozyskiwany z owocników żółciaka siarkowego (Laetiporus sulphureus) do zastosowania w zapobieganiu i zwalczaniu nosemozy u pszczół |
-
2020
- 2020-06-04 PL PL434201A patent/PL241759B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL434201A1 (pl) | 2021-12-06 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Patel et al. | Potentials of exopolysaccharides from lactic acid bacteria | |
| Monsan et al. | Homopolysaccharides from lactic acid bacteria | |
| Zannini et al. | Production, properties, and industrial food application of lactic acid bacteria-derived exopolysaccharides | |
| Badel et al. | New perspectives for Lactobacilli exopolysaccharides | |
| US10076130B2 (en) | Branched alpha-glucan, alpha-glucosyltransferase which forms the glucan, their preparation and uses | |
| Werning et al. | Biosynthesis, purification and biotechnological use of exopolysaccharides produced by lactic acid bacteria | |
| AU2010245378A1 (en) | Glucooligosaccharides comprising (alpha 1->4) and (alpha 1->6) glycosidic bonds, use thereof, and methods for producing them | |
| Harada et al. | Curdlan and succinoglycan | |
| Pérez-Ramos et al. | Current and future applications of bacterial extracellular polysaccharides | |
| EP3443110B1 (en) | Fermentative process for the manufacture of maltosyl-isomaltooligosaccharides (mimo) | |
| Hernández-Rosas et al. | The importance of carbon and nitrogen sources on exopolysaccharide synthesis by lactic acid bacteria and their industrial importance | |
| Ateş et al. | Microbial xanthan, levan, gellan, and curdlan as food additives | |
| Al-Rmedh et al. | Curdlan gum, properties, benefits and applications | |
| PL241759B1 (pl) | Hydrolizat α-(1→3)-glukanów wyizolowanych z owocników żółciaka siarkowego Laetiporus sulphureus do zastosowania jako oligosacharydowy prebiotyk | |
| Ballesteros et al. | 17 Enzymatic Synthesis of Sugar Esters and Oligosaccharides from Renewable Resources | |
| Nishimura | Probiotic characteristics and carbohydrate metabolism of Lactobacillus reuteri | |
| Jaswal et al. | Prebiotic Oligosaccharide Production in Microbial Cells | |
| Malekpour et al. | Recent findings in production and health benefits of prebiotics; a review of literatures | |
| TWI809853B (zh) | 可生成玻尿酸的益生菌及其相關應用 | |
| Tingirikari et al. | Dextransucrase: A Microbial Enzyme with Wide Industrial Applications | |
| BINDHUMOL ISMAIL et al. | Structural and Functional Diversities of Lactic Acid Bacterial Polysaccharide | |
| Delattre et al. | Production of bacterial and fungal polysaccharides | |
| Ismail et al. | Structural and Functional Diversities of Lactic Acid Bacterial Polysaccharide | |
| Harutoshi | Exploitation of Exopolysaccharides from Lactic Acid Bacteria | |
| Inthanavong | Production and characterization of the fructosyltransferase (levansucrase) from Geobacillus stearothermophilus and its application in the synthesis of novel fructooligosaccharides |