PL238301B1 - Sposób stymulacji wzrostu grzybów owadobójczych oraz ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin - Google Patents
Sposób stymulacji wzrostu grzybów owadobójczych oraz ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin Download PDFInfo
- Publication number
- PL238301B1 PL238301B1 PL422899A PL42289917A PL238301B1 PL 238301 B1 PL238301 B1 PL 238301B1 PL 422899 A PL422899 A PL 422899A PL 42289917 A PL42289917 A PL 42289917A PL 238301 B1 PL238301 B1 PL 238301B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- plasma
- water
- fungi
- insecticidal
- minutes
- Prior art date
Links
- 241000233866 Fungi Species 0.000 title claims description 35
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims description 27
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 13
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 title description 7
- 239000002917 insecticide Substances 0.000 title description 2
- 230000000749 insecticidal effect Effects 0.000 claims description 24
- 241000607479 Yersinia pestis Species 0.000 claims description 10
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims description 9
- 230000007918 pathogenicity Effects 0.000 claims description 7
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 claims description 7
- 239000008399 tap water Substances 0.000 claims description 6
- 235000020679 tap water Nutrition 0.000 claims description 6
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims description 4
- 239000012530 fluid Substances 0.000 claims description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 2
- 230000002538 fungal effect Effects 0.000 claims 1
- 239000002689 soil Substances 0.000 description 9
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 8
- 241000238631 Hexapoda Species 0.000 description 8
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 6
- 230000000967 entomopathogenic effect Effects 0.000 description 6
- 235000001674 Agaricus brunnescens Nutrition 0.000 description 5
- 241000254109 Tenebrio molitor Species 0.000 description 4
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 4
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 4
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 4
- 241000751139 Beauveria bassiana Species 0.000 description 3
- 241000244206 Nematoda Species 0.000 description 3
- 230000005058 diapause Effects 0.000 description 3
- 238000011160 research Methods 0.000 description 3
- 230000003068 static effect Effects 0.000 description 3
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 3
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 3
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 3
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 3
- 241000188153 Isaria fumosorosea Species 0.000 description 2
- 241000223250 Metarhizium anisopliae Species 0.000 description 2
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 2
- 238000010170 biological method Methods 0.000 description 2
- 230000000853 biopesticidal effect Effects 0.000 description 2
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 2
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 2
- 229910001385 heavy metal Inorganic materials 0.000 description 2
- 229910021645 metal ion Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000000575 pesticide Substances 0.000 description 2
- 241000239223 Arachnida Species 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 description 1
- MYMOFIZGZYHOMD-UHFFFAOYSA-N Dioxygen Chemical compound O=O MYMOFIZGZYHOMD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N Magnesium Chemical compound [Mg] FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- JLVVSXFLKOJNIY-UHFFFAOYSA-N Magnesium ion Chemical compound [Mg+2] JLVVSXFLKOJNIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241001168723 Sitona lineatus Species 0.000 description 1
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- 230000008485 antagonism Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- 235000020188 drinking water Nutrition 0.000 description 1
- 239000003651 drinking water Substances 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 230000005284 excitation Effects 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 235000021374 legumes Nutrition 0.000 description 1
- 229910052749 magnesium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011777 magnesium Substances 0.000 description 1
- 229910001425 magnesium ion Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 244000000010 microbial pathogen Species 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 239000002420 orchard Substances 0.000 description 1
- 230000003071 parasitic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 230000017363 positive regulation of growth Effects 0.000 description 1
- 230000019617 pupation Effects 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 210000004243 sweat Anatomy 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 238000004457 water analysis Methods 0.000 description 1
Landscapes
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
- Mushroom Cultivation (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób stymulacji wzrostu grzybów owadobójczych oraz ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin.
Zwalczanie szkodników i chorób roślin wyłącznie preparatami chemicznymi jest od lat 70-tych XX wieku stopniowo zastępowane integrowanymi programami ochrony roślin łączącymi metody agrotechniczne, biologiczne, fizyczne i chemiczne. Stosowanie chemicznych pestycydów spowodowało kumulowanie ich w plonach i potem w żywności, przedostawanie się ich do źródeł wody pitnej oraz powstawanie ras zwalczanych szkodników odpornych na stosowane pestycydy. Te okoliczności zwróciły uwagę zwłaszcza na metody biologiczne. Metody biologiczne polegają na czynnym wykorzystaniu naturalnych wrogów mikroorganizmów chorobotwórczych (wirusów, bakterii, grzybów, nicieni) oraz pasożytniczych i drapieżnych owadów i pajęczaków, a także naturalnych sprzymierzeńców jakimi są owadożerne zwierzęta.
Obok owadobójczych nicieni poczesne miejsce wśród biopestycydów zajmują owadobójcze grzyby działające samodzielnie lub wraz z innymi biopestycydami oraz naturalnymi sprzymierzeńcami jakimi są owadożerne zwierzęta. Najlepiej jest aplikować grzyby do ich naturalnego środowiska jakim jest gleba, gdyż większość szkodników roślin dłużej lub krócej diapauzuje w glebie. W Polsce w warunkach polowych stosowano owadobójcze grzyby do gleby w stosunku do szkodnika sadów, jakimi są larwy owocnicy jabłkowej (Hoplocampate studinea Klg.) przed ich diapauzą, larw już diapauzujących w oprzędach oraz larw spasożytowanych przez gąsieniczniki (Ichneumonida).
Stwierdzono, że larwy owocnicy łatwo ulegają infekcji przed diapauzą, a w czasie diapauzy i po niej są infekowane już tylko w niewielkim stopniu. Larwy owocnicy spasożytowane przez gąsieniczniki niestety ulegają również infekcji, zanim owocnica zdoła wytworzyć oprzęd dla przepoczwarczenia.
Badania poletkowe nad wykorzystaniem grzybów owadobójczych do zwalczania szkodników w uprawach roślin motylkowych wykazały, że zastosowanie grzybów owadobójczych może się przyczynić w istotny sposób do ograniczania uszkodzeń brodawek asymilujących azot przez larwy oprzędzików. Najskuteczniejszy okazał się grzyb Beauveria bassiana, co opisano w pracy „Microbialcontrol of Sitona lineatus in the semi field trials” opublikowanej w 1998 roku w czasopiśmie IOBC/WPRS Bulletin, w tomie 21, zeszycie 4, na stronach 105-108. Entomopatogenne grzyby są bezpieczne dla środowiska, mogą być namnażane na skalę techniczną na owadach laboratoryjnych lub pożywkach sztucznych i prostymi metodami aplikowane przeciw szkodnikom żerującym na korzeniach roślin lub tylko okresowo przebywającym w glebie. Polowa efektywność grzybów owadobójczych może być ograniczana niesprzyjającymi warunkami środowiska takimi jak pH gleby oraz kumulujące się w glebie wskutek antropogenicznych zanieczyszczeń jony metali ciężkich. W zależności od rodzaju jonu i ich stężenia, a także od gatunku a nawet szczepu grzyba, jony metali mogą działać stymulująco lub hamująco na wzrost i rozwój mikroorganizmów. Ogólnie można stwierdzić, ze owadobójcze grzyby wykazują wysoką, ale nie nieograniczoną tolerancję na jony metali ciężkich. Owadobójczy grzyb Metarrhizium anisopliae okazał się całkowicie odporny na działanie jonów metali w stężeniach średnich dla gleb polskich i nawet dziesięciokrotnie wyższych od średnich. Prawdopodobnie synergizm i antagonizm między jonami może zmieniać granice tej tolerancji. Grzyby owadobójcze znajdują w glebach zazwyczaj dogodne warunki dla swej aktywności - grzyb Metarhizium anisopliae wprowadzony do gleby zachowuje zdolności patogenne przez 3 lata.
W związku z powyższym, prowadzone są badania nad możliwością stymulacji patogeniczności grzybów, a tym samym nad poprawą ich funkcjonowania w środowisku.
Z publikacji Magdaleny Jaworskiej pod tytułem, „Magnez w biologicznej ochronie roślin przed szkodnikami” znane są metody stymulacji przyrostu biomasy grzybów z użyciem jonów magnezu.
Efekty badań w zakresie poprawy namnażania i patogeniczności grzybów owadobójczych zostały również opisane w pracy M. Jaworskiej i D. Ropka „Stymulacja chemiczna aktywności owadobójczej grzybów i nicieni aplikowanych łącznie na owady testowe”. W roku 2014 M. Jaworska, J. Domański, P. Tomasik i K. Znój opatentowali w Polsce pod numerem 223 412 od dnia 28.01 2014 sposób stymulacji wzrostu grzybów owadobójczych oraz ich patogeniczności dla owadów w biologicznej ochronie roślin, a następnie w roku 2016 opisali tę metodę w pracy M. Jaworska, J. Domański, P. Tomasik, K. Znój, Stimulation of entomopathogenic fungi with static magnetic field, która ukazała się w czasopiśmie Journal of Plant Diseases and Protection w tomie 12 na stronach 295 do 300. W patencie tym oraz w publikacji autorzy opisali stymulowanie wzrostu oraz owadobójczości entomopatogennych grzybów za pomocą statycznego pola magnetycznego. Opisany sposób jest skuteczny, niemniej posiada ograniczenie
PL 238 301 B1 wynikające z rozmiarów magnesów, a stąd pozyskiwania dużych objętości wody poddawanej działaniu pola magnetycznego lub też poddawania dużych objętości grzybów bezpośredniemu działaniu tego pola.
Znana jest ze zgłoszenia P.403613 lampa plazmowa z zasilaczem zaś patentem Pat.216025 chronione jest urządzenie do obróbki plazmowej wody.
Jak wykazały badania opublikowane w 2016 roku przez T. Białopiotrowicza, W. Ciesielskiego, J. Domańskiego, M. Doskocza, M. Fiedorowicza, K. Grąż, K. Khachatryana, H. Kołoczka, A. Kozaka, Z. Oszczędę i P. Tomasika w pracy pod tytułem Structure and physicochemical properties of water treated with low-temperature low-frequency plasma, która ukazała się w czasopiśmie Current Physical Chemistry w tomie 6 na stronach 312 do 320, woda taka ma strukturę klatratów zbudowanych z 12 i więcej cząsteczek wody, wewnątrz których znajdują się zamknięte cząsteczki reaktywnego tlenu singletowego. Niektóre zmierzone przez autorów tej pracy właściwości fizykochemiczne wskazują na podobieństwo strukturalne wody poddanej działaniu plazmy do wody poddanej działaniu statycznego pola magnetycznego.
W osobnych, dotąd nieopublikowanych badaniach wykazano, że woda poddawana działaniu plazmy jarzeniowej działa stymulująco na wzrost i owadobójczość entomopatogennych grzybów. Zastosowany sposób umożliwia produkcję stymulowanych grzybów stymulacji na skalę przemysłową
Istota rozwiązania polega na tym, że grzyby owadobójcze szczepi się na stosownej pożywce na przykład, glukozowo-ziemniaczanej i przechowuje w temperaturze od 3 do 6 stopni C przez dowolny okres czasu, po czym poddaje się działaniu plazmy generowanej w zakresie 10-2 do 10-4 mbar (ciśnienie w lampie), od 200 do 1200 V (napięcie przyłożone do elektrod, pomiędzy którymi powstaje plazma), od 10 do 500 mA (natężenie prądu przepływające przez elektrody) i od 20 do 1200 GHz (częstotliwości prądu wzbudzenia plazmy) w czasie od 1 sekundy do 5;0 minut (okres kontaktu z działającą plazmą) w temperaturze od 0 do 40 stopni. Parametry dopierane są empirycznie na podstawie badań pilotażowych oraz analizy wody.
Zaletą rozwiązania według wynalazku jest zwiększenie wzrostu liniowego kolonii grzyba nawet o kilkanaście procent w porównaniu z koloniami nie poddanymi działaniu plazmy i co najmniej kilkunastoprocentowe zwiększenie patogeniczności w stosunku do owadów przy równoczesnym przyspieszeniu śmiertelności szkodników o co najmniej 24 godziny.
Przedmiot wynalazku został bliżej przedstawiony przykładami wykonania.
P r z y k ł a d I
W przykładzie wykonania przeprowadza się procedurę stymulacji grzybów owadobójczych Isaria fumosorosea (dawniej Paecliomyces fumosoroseus) na odpowiedniej pożywce na przykład pożywce glukozowo-ziemniaczanej zakupionej w firmie Biocorp z Warszawy. Pożywkę tę przygotowuje się z dodatkiem wody kranowej poddawanej działaniu plazmy w opisanym powyżej urządzeniu przez okres od 1 do 90 min. Stymuluje się grzyby przechowywane w zawiesinie wody destylowanej w lodówce w temperaturze 4 stopni Celsjusza, przy czym czas ich przechowywania nie ma żadnego wpływu na wynik oddziaływania na nie wody poddawanej działaniu plazmy o parametrach temp. 38°C,5x10-3 mbar, 600 V, 50 mA i 280 GHz przez 30 minut w temperaturze pokojowej.
Po wysokotemperaturowej sterylizacji tej pożywki zaszczepia się na niej grzyby owadobójcze, które po okresie 15 minut do 2 godzin gotowe są do zwalczania szkodliwych owadów i ich larw w uprawach szklarniowych, polowych i leśnych.
PL 238 301 Β1
Tabela: Śmiertelność larw Tenebrio molitor powodowana przez grzyby entomopatogenne w różnych ośrodkach wodnych w ciągu 8 dniowych eksperymentówab.
| Grzyb Isario fumosoroseus Dzień | ||||||
| 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | |
| Kontrola - woda destylowana | Oa | 20a | 64a | 92a | 96a | lOOa |
| Kontrola - woda wodociągowa | Oa | 16a | 48a | 96a | lOOa | lOOa |
| Woda destylowana pod działaniem plazmy | 4a | 40ab | 64a | 96a | lOOa | lOOa |
| Woda wodociągowa pod działaniem plazmy | 8a | 64b | 96b | lOOa | lOOa | lOOa |
a) oznacza pięć powtórzeń z pięcioma larwami w każdym eksperymencie. Przedstawione dane dotyczą śmiertelności 100 larw Tenebrio molitor.
b) środki, po których te same litery w poszczególnych kolumnach nie różnią się istotnie przy p = 0,05.
Przykład II
W przykładzie wykonania przeprowadza się procedurę stymulacji grzybów owadobójczych Beauveria bassiana na odpowiedniej pożywce, na przykład, pożywce glukozowo-ziemniaczanej zakupionej w firmie Biocorporation z Warszawy. Pożywkę tę przygotowuje się z dodatkiem wody destylowanej poddawanej działaniu plazmy w opisanym powyżej urządzeniu przez okres od 1 do 90 min. Stymuluje się grzyby przechowywane w zawiesinie wody destylowanej w lodówce w temperaturze 4 stopni Celsjusza, przy czym czas ich przechowywania nie ma żadnego wpływu na wynik oddziaływania na nie wody poddawanej działaniu plazmy plazmy o parametrach: temperatura 38 stopni Celsjusza, 1x10-3 mbar, 500 V, 55 mA and 380 GHz przez 30 minut w temperaturze pokojowej.
Po wysokotemperaturowej sterylizacji tej pożywki zaszczepia się na niej grzyby owadobójcze, które po okresie 15 minut do 2 godzin gotowe są do zwalczania szkodliwych owadów i ich larw w uprawach szklarniowych, polowych i leśnych.
Tabela: Śmiertelność larw Tenebrio molitor powodowana przez grzyby entomopatogenne w różnych ośrodkach wodnych w ciągu 8 dniowych eksperymentówa b
| Woda | Grzyb Beauveria bassiana | |||||
| Dzień | ||||||
| 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | |
| Kontrola - woda destylowana | Oa | Oa | Oa | 20a | 52a | 76a |
| Kontrola - woda wodociągowa | Oa | Oa | 8 ab | 35a | 56a | 72a |
| Woda destylowana pod działaniem plazmy | Oa | 4a | 20b | 48a | 75a | 81 ab |
| Woda wodociągowa pod działaniem plazmy | Oa | 4a | 4ab | 51a | 84a | lOOa |
PL 238 301 B1
a) oznacza piec powtórzeń z pięcioma larwami w każdym eksperymencie. Przedstawione dane dotyczą śmiertelności 100 larw Tenebrio molitor.
b) środki, po których te same litery w poszczególnych kolumnach nie różnią się przy p = 0.05.
P r z y k ł a d III
W przykładzie wykonania przeprowadza się procedurę stymulacji grzybów owadobójczych Bauveria lub Isaria fumosoroseus na odpowiedniej pożywce na przykład pożywce glukozowo-ziemniaczanej zakupionej w firmie Biocorp z Warszawy. Pożywkę tę przygotowuje się z dodatkiem wody o składzie płynu fizjologicznego poddawanej działaniu plazmy o parametrach temperatura 38°C, 5x10-3 mbar, 600 V, 50 mA i 280 GHz przez przez okres od 1 do 90 min. Stymuluje się grzyby przechowywane w zawiesinie wody destylowanej w lodówce w temperaturze 4°C przy czym czas ich przechowywania nie mu żadnego wpływu na wynik oddziaływania na nie wody poddawane] działaniu plazmy jarzeniowej.
Po wysokotemperaturowej sterylizacji tej pożywki zaszczepia się na niej grzyby owadobójcze, które po okresie 15 minut do 2 godzin gotowe są do zwalczania szkodliwych owadów i ich larw w uprawach szklarniowych polowych i leśnych.
Claims (4)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób stymulacji wzrostu grzybów owadobójczych oraz ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin, znamienny tym, że grzyby owadobójcze zaszczepia się na 15 do 120 minut na pożywce przygotowanej w wodzie poddanej uprzednio działaniu plazmy generowanej w zakresie 10-2 do i 10-4 mbar, od 200 do 1200 V, od 10 do 500 mA i 20 do 1200 GHz częstotliwości w czasie od 1 sekundy do 50 minut w temperaturze od 0 do 40°C przy czym stosuje się wodę destylowana, kranowa albo płyn fizjologiczny tej plazmy przez co najmniej 1 minutę.
- 2. Zastosowanie wody poddanej działaniu plazmy o parametrach: w zakresie10-2 do i 10-4 mbar. od 200 do 1200 V, od 10 do 500 mA i 20 do 1200 GHz częstotliwości w czasie od 1 sekundy do 50 minut do przygotowania pożywki stymulującej wzrost grzybów owadobójczych.
- 3. Zastosowanie wody według zastrz. 2, do stymulacji wzrostu grzybów.
- 4. Zastosowanie wody według zastrz. 2, do stymulacji patogeniczności grzybów.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL422899A PL238301B1 (pl) | 2017-09-19 | 2017-09-19 | Sposób stymulacji wzrostu grzybów owadobójczych oraz ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL422899A PL238301B1 (pl) | 2017-09-19 | 2017-09-19 | Sposób stymulacji wzrostu grzybów owadobójczych oraz ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL422899A1 PL422899A1 (pl) | 2019-03-25 |
| PL238301B1 true PL238301B1 (pl) | 2021-08-09 |
Family
ID=65799879
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL422899A PL238301B1 (pl) | 2017-09-19 | 2017-09-19 | Sposób stymulacji wzrostu grzybów owadobójczych oraz ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL238301B1 (pl) |
Family Cites Families (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| PL216025B1 (pl) * | 2009-11-20 | 2014-02-28 | Oszczeda Zdzislaw Stomadent | Urządzenie do obróbki plazmowej wody |
| PL227530B1 (pl) * | 2013-04-19 | 2017-12-29 | Oszczęda Zdzisław Stomadent | Lampa plazmowa z zasilaczem |
-
2017
- 2017-09-19 PL PL422899A patent/PL238301B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL422899A1 (pl) | 2019-03-25 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN101808525B (zh) | Bacillus velezensis ah2菌株的纯培养物以及用于植物致病真菌的生物防治的产品 | |
| Mitsugi et al. | Influence of ozone generated by surface barrier discharge on nematode and plant growth | |
| Ujjan et al. | Efficiency of Metarhizium spp.(Sorokin) strains and insecticides against cotton mealybug Phenacoccus solenopsis (Tinsley) | |
| Okoroafor | Microbial contamination in plant tissue culture and elimination strategies | |
| Kanfra et al. | Ozonated water electrolytically generated by diamond-coated electrodes controlled phytonematodes in replanted soil | |
| Maslova et al. | The effect of laser irradiation on the activity of the bacteria bacillus subtilis and pseudomonas fluorescens | |
| Ujjan et al. | Insecticidal potential of Beauveria bassiana strain PDRL1187 and imidacloprid to mustard aphid (Lipaphis erysimi) under field conditions | |
| PL238301B1 (pl) | Sposób stymulacji wzrostu grzybów owadobójczych oraz ich patogeniczności dla szkodników w biologicznej ochronie roślin | |
| KR101089318B1 (ko) | 식물기생선충 방제용 제제 및 그 제조방법 | |
| Gveroska | Relationships of Trichoderma spp. quantity in soil to reducing the dampingoff in tobacco seedlings | |
| Bhattarai et al. | Efficacy of entomopathogens for control of blue pumpkin beetle (Aulacophora nigripennis Motschulsky, 1857) in sponge gourd (Luffa cylindrica) under laboratory condition at Paklihawa, Nepal | |
| Raziq et al. | The integrated control of Armillaria mellea 2. Field experiments | |
| PL223412B1 (pl) | Sposób stymulacji wzrostu grzybów owadobójczych oraz ich patogeniczności dla owadów w biologicznej ochronie roślin | |
| Merjan et al. | Pseudomonas fluorescence Bio-compatibility with chemical fungicide Carboxin 75 and Raxil 2DS to control corn seedling blight causing by Fusarium graminearum, F. moniliforme and F. poliferatum | |
| Tahir et al. | Utilization of Pseudomonas fluorescens and Baclillus subtilis for the root knot nematode management of chili and their effect on chili growth. | |
| CN102657164A (zh) | 桃小食心虫防治方法及专用触杀液和熏蒸液 | |
| Terefe | Evaluation of nematicidal action of some bio-agents and botanicals for eco-friendly management of root-knot nematodes, Meloidogyne incognita on tomato | |
| Tripathi et al. | Integrated eco-friendly management of Fusarium corm rot and yellows by sowing hot water, UV-C and/or essential oil treated gladiolus corms in soil solarized and/or essential oil fumigated experimental fields | |
| Bhatia | Entomopathogenic Fungi as an Alternative to Harmful Commercial Pesticides | |
| Ghanney | Management of fungal plants diseases | |
| Godeanu-Matei et al. | Antifungal activity of Lentinula edodes extracts against Phytophthora infestans phytopathogenic fungi | |
| Thirupathi | Survival, Biofilm Formation, and Control of Foodborne Pathogens in Hydroponic Systems | |
| Kothur Thirupathi | Survival, Biofilm Formation, and Control of Foodborne Pathogens in Hydroponic Systems | |
| Nandini et al. | Compatibility of different insecticides USD in turmeric cultivation with combination of bio-control agents under in-vitro conditions | |
| Gveroska | Trichoderma harzianum in tobacco seedlings with the use of a herbicide. |