PL237206B1 - Sposób otrzymywania ekstraktu z Cochlospermum angolense o aktywności przeciwnowotworowej oraz zastosowanie ekstraktu z Cochlospermum angolense w leczeniu szpiczaka - Google Patents

Sposób otrzymywania ekstraktu z Cochlospermum angolense o aktywności przeciwnowotworowej oraz zastosowanie ekstraktu z Cochlospermum angolense w leczeniu szpiczaka Download PDF

Info

Publication number
PL237206B1
PL237206B1 PL424802A PL42480218A PL237206B1 PL 237206 B1 PL237206 B1 PL 237206B1 PL 424802 A PL424802 A PL 424802A PL 42480218 A PL42480218 A PL 42480218A PL 237206 B1 PL237206 B1 PL 237206B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
extract
cells
myeloma
cochlospermum
angolense
Prior art date
Application number
PL424802A
Other languages
English (en)
Other versions
PL424802A1 (pl
Inventor
Jarosław Dudka
Dariusz Matosiuk
Agnieszka Korga
Tomasz Baj
Marta Ostrowska
Magdalena Iwan
Elwira Sieniawska
Original Assignee
Univ Medyczny W Lublinie
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Medyczny W Lublinie filed Critical Univ Medyczny W Lublinie
Priority to PL424802A priority Critical patent/PL237206B1/pl
Publication of PL424802A1 publication Critical patent/PL424802A1/pl
Publication of PL237206B1 publication Critical patent/PL237206B1/pl

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)
  • Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania ekstraktu z Cochlospermum angolense Welw. ex Oliv. o aktywności przeciwnowotworowej oraz zastosowanie ekstraktu z Cochlospermum angolense Welw. ex Oliv. syn. Maximilianea angolensis (Welw. ex Oliv.) Kuntze w leczeniu szpiczaka oraz do wytwarzania preparatu farmaceutycznego do leczenia szpiczaka.
Cochlospermum angolense, zwane potocznie Borututu, występuje w środowisku naturalnym w południowo-zachodniej Afryce. Napar z kory korzenia borututu znalazł zastosowanie w suplementacji diety u osób z zaburzeniami czynności wątroby, niestrawności i zmęczenia. Znany jest również hamujący wpływ naparu z korzenia Cochlospermum angolense na rozwój Plasmodium falciparum, zarodźca sierpowatego - pierwotniaka będącego jednym z głównych patogenów, wywołujących malarię u ludzi, co udokumentowali Presber, Hegenscheid (ACTA TROP, 1992, 50(4):331-8). Z ich publikacji z 1987 roku (Presber W, Hegenscheid B i in., PHARMAZIE, 1987, 42(10):707-8.) znane są również właściwości przeciwwirusowe naparu z korzenia tej rośliny. Pereira, Barros, Calhelha i in. w publikacjach z lat 2013-2015 (Pereira C, Calhelha R i in, IND CROP PROD, 2013; 49:61-5; Pereira C, Barros L i in., IND CROP PROD, 2015, 74:412-6; Pereira C, Calhelha R i in., IND CROP PROD, 2014, 52:709-13) wykazali aktywność antyoksydacyjną, antybakteryjną oraz cytotoksyczną w stosunku do komórek raka wątroby różnych suplementów diety na bazie ekstraktów wodnych z korzenia borututu. Z kolei z opisów patentowych DE 4021428, DE 4021427 i DE4021426, znane jest zastosowanie ekstraktu karotenoidowego z korzenia Cochlospermum angolense do terapii infekcji pasożytniczych, a także jako inhibitora polimerazy, związku o właściwościach antymalarycznych czy antywirusowych.
Dotychczas jednak nie znana jest aktywność przeciwnowotworowa ekstraktu z Cochlospermum angolense w stosunku do komórek szpiczaka. W literaturze brak jest informacji dotyczącej stosowania tego surowca lub przetworów z tego surowca w leczeniu szpiczaka.
Wynalazek rozwiązuje zagadnienie zastosowania ekstraktu z Cochlospermum angolense o wysokiej aktywności w stosunku do komórek szpiczaka, przy jednoczesnej bardzo niskiej toksyczności w stosunku do komórek ludzkich fibroblastów.
W wyniku badań, okazało się nieoczekiwanie, że ekstrakt z Cochlospermum angolense otrzymany na drodze dwustopniowej ekstrakcji: maceracji chloroformem oraz ekstrakcji heksanem lub octanem etylu i/lub ich mieszaniną (Ex2), wykazuje wysoką aktywność przeciwnowotworową w stosunku do komórek ludzkiego szpiczaka (Fig. 1-3), przy jednocześnie nieznacznej toksyczności komórek prawidłowych w najwyższym badanym stężeniu (Fig. 4-5).
Istotą wynalazku jest sposób otrzymywania ekstraktu z Cochlospermum angolensis (Borututu), o aktywności przeciwnowotworowej polegający na tym, że sproszkowaną substancję roślinną Borututu maceruje się chloroformem, korzystnie dwukrotnie, każdorazowo przez 12-72 godzin korzystnie 48, stosując korzystnie ilości najpierw 1:20, a następnie 1:10, po czym macerat chloroformowy lub połączone maceraty odparowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze nie przekraczającej 40°C i suchą pozostałość (SP) miesza się z żelem krzemionkowym w proporcjach wagowych od 1:1 do 1:100 korzystnie 1:10 i poddaje się dalszej ekstrakcji w układzie ciecz/ciało stałe przy użyciu heksanu lub octanu etylu i/lub ich mieszaniną korzystnie w proporcji 1:1, po czym po odparowaniu eluentu otrzymuje się ekstrakt o wysokiej aktywności przeciwnowotworowej. Korzystnie, gdy sproszkowaną substancję roślinną stanowi korzeń Borututu.
Korzystnie, gdy dalszą ekstrakcję prowadzi się najpierw pojedynczym rozpuszczalnikiem korzystnie heksanem lub octanem etylu w ilości odpowiednio od 1:40 do 1:120 korzystnie 1:80, a następnie mieszaniną heksan - octan etylu korzystnie w proporcji 1:1, w ilości od 1:100 do 1:400, korzystnie 1:240.
Przedmiotem wynalazku jest także ekstrakt z Cochlospermum angolense Welw. Ex Oliv. syn. Maximilianea angolensis (Welw. ex Oliv.); Kuntze otrzymany na drodze dwustopniowej ekstrakcji: maceracji chloroformem oraz ekstrakcji heksanem lub octanem etylu i/lub ich mieszaniną (Ex2), do zastosowania w leczeniu szpiczaka.
Ekstrakt roślinny według wynalazku wykazujący wysoką aktywność w stosunku do komórek szpiczaka, przy jednoczesnej bardzo niskiej toksyczności w stosunku do komórek ludzkich fibroblastów stanowi lepszą alternatywę w leczeniu szpiczaka w stosunku do leków syntetycznych.
Wynalazek przedstawiono w poniższych przykładach wykonania.
PL 237 206 B1
P r z y k ł a d 1
Sproszkowaną substancję roślinną (kora korzenia Cochlospermum angolense) poddano procesowi 48-godzinnej maceracji chloroformem (1:20 w/w), następnie czynność powtórzono dodając do surowca kolejną porcję czystego rozpuszczalnika w czasie jak poprzednio stosując proporcje surowiec rozpuszczalnik (1:10 w/w). Z maceratów chloroformowych odparowano rozpuszczalnik pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze nie przekraczającej 40°C do suchej pozostałości, którą otrzymując odpowiednio w ilości 2000 mg i 326 mg suchej pozostałości (SP), następnie zmieszano z żelem krzemionkowym w proporcjach wagowych 1:10 i umieszczono w lejku typu Schott. Gradientową elucję prowadzono pod zmniejszonym ciśnieniem rozpuszczalnikami: heksan (200 mL), heksan-octan etylu (300:300 mL v/v). Otrzymano ekstrakt, który oznaczono Ex.2 o masie osadu: 14 mg. Ponadto prowadzono elucję przy użyciu rozpuszczalników octan etylu-metanol (200:200 mL v/v), metanol (400 mL), woda (100 mL). Wszystkie otrzymane ekstrakty poddano badaniu w kierunku aktywności przeciwnowotworowej wobec komórek szpiczaka linii RPMI 8226 oraz toksyczności wobec prawidłowych ludzkich fibroblastów linii BJ. Ekstrakt oznaczony jako Ex.2 otrzymany przy użyciu rozpuszczalników hek san, heksan-octan etylu wykazał istotną statystycznie aktywność przeciwnowotworową w stosunku do komórek szpiczaka (Fig. 1-3).
P r z y k ł a d 2
W badaniach in vitro oceniono aktywność przeciwnowotworową ekstraktu chloroformowego Cochlospermum angolense oznaczonego jako Ex.2 na komórki ludzkiego szpiczaka (linia RPMI 8226). Hodowle komórkowe prowadzono w butelkach 75 cm2 w odpowiednich dla linii komórkowej medium wzbogaconym 10% inaktywowaną termicznie płodową surowicą bydlęcą FBS i antybiotykami (penicyliną, streptomycyną) w inkubatorze w temperaturze 37°C w atmosferze zawierającej 95% powietrza, 5% CO2 i stałej wilgotności. Po osiągnięciu właściwego stanu konfluencji komórki wysiewano na płytki 96-dołkowe w ilości 5 x 104. Ekstrakt (Ex2) rozpuszczono w DMSO sporządzając stok wyjściowy o stężeniu 20 mg/ml, następnie w celu wyznaczenia wartości IC50 dodawano do komórek w rosnącym szeregu stężeń, tak, że stężenie w pożywce hodowlanej wynosiło 0,01; 0,05; 0,1; 0,2 mg/ml. Najwyższe stężenie badanego Ekstraktu (Ex2) użyte do badań wynosiło 0,2 mg/ml, zawartość DMSO wynosiła wtedy 1% (dla zbadania czy nie jest to zbyt wysokie stężenie wykonano kontrolę z samym DMSO). Po 24 godzinach inkubacji oceniono aktywność przeciwnowotworową badanego Ekstraktu (Ex2) na komórki szpiczaka poprzez analizę ich morfologii w mikroskopie kontrastowo-fazowym z odwróconą optyką Nikon Eclipse Ti. Uwzględniono zmiany morfologiczne komórek tj. obecność odklejonych i martwych komórek, obkurczenie komórek, zahamowanie wzrostu kolonii i proliferacji. Obserwację porównywano z kontrolą, którą stanowiły komórki szpiczaka hodowane bez dodatku badanego Ekstraktu (Ex2), co pokazano na rysunku Fig. 3. Następnie na podstawie testu MTT określano żywotność komórek poprzez pomiar aktywności metabolicznej badanych komórek. Test MTT jest oparty na zdolności enzymu - mitochondrialnej dehydrogenazy bursztynianowej do przekształcania pomarańczowej, rozpuszczalnej w wodzie soli tetrazolowej [bromek 3-(4,5-dimetylotiazol-2-yl)-2,5-difenylotetrazoliowy] do nierozpuszczalnego formazanu będącego ciemnoniebieskim produktem powyższej reakcji. Po rozpuszczeniu kryształów formazanu w DMSO, powstaje barwny roztwór, którego intensywność zabarwienia mierzona jest spektrofotometrycznie w zakresie długości fal 490-570 nm. Ilość barwnego zredukowanego MTT jest proporcjonalna do liczby aktywnych metabolicznie (żywych) komórek w populacji. Test MTT jest obecnie najczęściej stosowany do oceny działania cytotoksycznego i zalecany jako referencyjny przez międzynarodowe organizacje normotwórcze, Z otrzymanych w teście odczytów absorbancji wyliczono % żywotność komórek w obecności badanego związku, przyjmując absorbancję roztworu komórek kontrolnych za 100%. Wyniki uzyskane w teście MTT analizowano statystycznie w aplikacji STATISTICA v. 12.0 (StaftSof t, Kraków) przy użyciu średnich i standardowych wartości odchylenia. Statystyczną istotność różnic między grupą kontrolną a grupami badan ymi oceniono za pomocą testu t-Studenta. Różnice dla p<0,05 przyjęto za istotne statystycznie. Analizę wykonano dla 9 powtórzeń (Fig. 1 oraz 2), gdzie Fig. 1 przedstawia ocenę żywotności komórek fibroblastów (BJ po lewej) oraz szpiczaka (RPMI 8226 - po prawej) po 24 godz. ekspozycji na ekstrakt otrzymany na drodze maceracji chloroformem oraz ekstrakty otrzymane poprzez ekstrakcje ciecz-ciało stałe (Ex1Ex5) w stężeniach 0,005; 0,01; 0,05; 0,1; 0,2 mg/mL wykonana przy użyciu testu MTT. Fig. 2 przedstawia wyniki testu MTT i ocenę żywotności ludzkich komórek szpiczaka linia CRL1619 poddanych działaniu badanego Ekstraktu Ex2 w stężeniach 0,01; 0,05; 0,1; 0,2 mg/mL w porównaniu do komórek grupy kontrolnej.
PL 237 206 B1
Wyniki:
Po 24 godzinnej ekspozycji komórek szpiczaka na działanie badanego Ekstraktu Ex2 nieoczekiwanie zaobserwowano istotny statystycznie spadek żywotności komórek w porównaniu do komórek grupy kontrolnej (Fig. 1,2). Nasilenie zmian było wprost proporcjonalne do użytego stężenia badanego Ekstraktu Ex2. Przy najwyższym badanym stężeniu 0,2 mg/mL żywotność komórek wynosiła 28%. Wyznaczone IC50 dla ekstraktu Ex2 wynosiło IC50 = 0,128 mg/mL.
Wraz ze wzrostem stężenia badanej substancji nasilały się także zmiany w morfologii komórek szpiczaka. Fig. 3, Tab. 1 przedstawia morfologię ludzkich komórek szpiczaka po 24 h inkubacji ze stężeniami 0,01; 0,05; 0,1; 0,2 mg/mL badanego Ekstraktu Ex2 w porównaniu do komórek grupy kontrolnej. Obraz z mikroskopu kontrastowo-fazowego, powiększenie x300. Przy stężeniu odpowiadającym wartości IC50 komórki traciły typowy kulisty kształt, ulegały obkurczeniu, a w podłożu hodowlanym obs erwowano liczne ziarnistości świadczące o ich rozpadzie.
Kolejnym etapem badań in vitro była ocena aktywności badanego Ekstraktu Ex2 na komórki prawidłowe - ludzkie fibroblasty linii BJ. Badanie przeprowadzono w sposób analogiczny jak w przypadku komórek szpiczaka. Po osiągnięciu właściwego stanu konfluencji komórki wysiewano na płytki 96-dołkowe w ilości 3x104 komórek/dołek i hodowano do uzyskania pojedynczej, adherentnej warstwy komórek w każdym dołku. Następnie do poszczególnych dołków z komórkami dodawano pożywkę hodowlaną z wybranymi na podstawie wcześniejszych badań na szpiczaku stężeniami badanego Ekstraktu Ex2 (0,01; 0,05; 0,1; 0,2 mg/mL). Najwyższe stężenie badanego Ekstraktu Ex2 użyte do badań wynosiło 0,2 mg/mL, zawartość DMSO wynosiła wtedy 1% (dla zbadania czy nie jest to zbyt wysokie stężenie wykonano kontrolę z samym DMSO).
Po 24 godzinach inkubacji oceniono wpływ badanego Ekstraktu Ex2 na komórki fibroblastów poprzez analizę morfologii komórek w mikroskopie kontrastowo-fazowym z odwróconą optyką Nikon Eclipse Ti oraz wyniki testu MTT. Wyniki porównywano z kontrolą, którą stanowiły komórki fibroblastów hodowane w identycznych warunkach, ale bez dodatku badanego Ekstraktu (Ex2), co pokazano na rysunku Fig. 4 i 5, gdzie na fig. 4 pokazano wyniki testu MTT oraz ocenę żywotności prawidłowych ludzkich komórek fibroblastów linii BJ poddanych działaniu badanego Ekstraktu Ex2 w stężeniach 0,01; 0,05; 0,1; 0,2 mg/mL w porównaniu do komórek grupy kontrolnej. Zaś Fig. 5 przedstawia morfologię prawidłowych ludzkich komórek fibroblastów linii BJ po 24 h inkubacji ze stężeniami 0,01; 0,05; 0,1; 0,2 mg/ml badanego Ekstraktu (Ex2) w porównaniu do komórek grupy kontrolnej - obraz z mikroskopu kontrastowo-fazowego, powiększenie x200. Uzyskane za pomocą testu (MTT) wyniki wskazują na brak znaczącego działania toksycznego badanego Ekstraktu (Ex2) w stosunku do prawidłowych komórek ludzkich fibroblastów. Badany Ekstrakt (Ex2) w stężeniach 0,1, 0,05 i 0,01 mg/mL nie powodował widocznych zmian morfologii komórek fibroblastów w porównaniu z kontrolą. W najwyższym stężeniu 0,2 mg/mL widocznie zmniejszyło się zagęszczenie hodowli fibroblastów, jednakże nie zaobserwowano martwych, odklejonych komórek pływających w podłożu hodowlanym.

Claims (3)

1. Sposób otrzymywania ekstraktu z Cochlospermum angolensis (Borututu) o aktywności przeciwnowotworowej polegający na maceracji sproszkowanej substancji roślinnej Borututu rozpuszczalnikiem, znamienny tym, że sproszkowaną substancję roślinną Borututu maceruje się chloroformem, korzystnie dwukrotnie, każdorazowo przez 12-72 godzin korzystnie 48 godzin, stosując korzystnie ilości najpierw 1:20, a następnie 1:10, po czym macerat chloroformowy lub połączone maceraty odparowuje się w temperaturze nie przekraczającej 40°C i suchą pozostałość (SP) miesza się z żelem krzemionkowym w proporcjach wagowych od 1:1 do.1:100 korzystnie 1:10 i poddaje się dalszej ekstrakcji w układzie ciecz/ciało stałe przy użyciu heksanu lub octanu etylu i/lub ich mieszaniną korzystnie w proporcji 1:1, po czym po odparowaniu eluentu otrzymuje się ekstrakt o dużej aktywności przeciwnowotworowej.
2. Sposób według zastrzeż. 1, znamienny tym, że sproszkowaną substancję roślinną stanowi korzeń Borututu.
3. Ekstrakt z Cochlospermum angolense Welw. ex Oliv. syn. Maximilianea angolensis (Welw. ex Oliv.) Kuntze otrzymany na drodze dwustopniowej ekstrakcji: maceracji chloroformem oraz ekstrakcji heksanem lub octanem etylu i/lub ich mieszaniną, do zastosowania w leczeniu szpiczaka.
PL424802A 2018-03-08 2018-03-08 Sposób otrzymywania ekstraktu z Cochlospermum angolense o aktywności przeciwnowotworowej oraz zastosowanie ekstraktu z Cochlospermum angolense w leczeniu szpiczaka PL237206B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL424802A PL237206B1 (pl) 2018-03-08 2018-03-08 Sposób otrzymywania ekstraktu z Cochlospermum angolense o aktywności przeciwnowotworowej oraz zastosowanie ekstraktu z Cochlospermum angolense w leczeniu szpiczaka

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL424802A PL237206B1 (pl) 2018-03-08 2018-03-08 Sposób otrzymywania ekstraktu z Cochlospermum angolense o aktywności przeciwnowotworowej oraz zastosowanie ekstraktu z Cochlospermum angolense w leczeniu szpiczaka

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL424802A1 PL424802A1 (pl) 2019-09-09
PL237206B1 true PL237206B1 (pl) 2021-03-22

Family

ID=67844677

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL424802A PL237206B1 (pl) 2018-03-08 2018-03-08 Sposób otrzymywania ekstraktu z Cochlospermum angolense o aktywności przeciwnowotworowej oraz zastosowanie ekstraktu z Cochlospermum angolense w leczeniu szpiczaka

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL237206B1 (pl)

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DD293963A5 (de) * 1989-07-14 1991-09-19 ��������`������������@��@������k�������@�������@M�������]k�� Verfahren zur herstellung eines anthelminthikums

Also Published As

Publication number Publication date
PL424802A1 (pl) 2019-09-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Al Amri et al. Comparison of total phenols, flavonoids and antioxidant potential of local and imported ripe bananas
Saha et al. Evaluation of antioxidant and nitric oxide inhibitory activities of selected Malaysian medicinal plants
Vittaya et al. Comparative analyses of saponin, phenolic, and flavonoid contents in various parts of Rhizophora mucronata and Rhizophora apiculata and their growth inhibition of aquatic pathogenic bacteria
Valizadeh et al. Cytotoxicity, antioxidant activity and phenolic content of eight fern species, from north of Iran
Badami et al. Antioxidant activity of Aporosa lindleyana root
Et-Touys et al. In vitro antileishmanial activity of extracts from endemic Moroccan medicinal plant Salvia verbenaca (L.) Briq. ssp verbenaca Maire (S. clandestina Batt. non L)
Howlader et al. Characterization of chemical groups and study of antioxidant, antidiarrhoeal, antimicrobial and cytotoxic activities of ethanolic extract of Diospyros blancoi (Family: Ebenaceae) leaves
Turker et al. Free radical scavenging activity and phenolic content of edible wild fruits from Kazdagi (Ida Mountains), Turkey
Sudeep et al. Evaluation of In Vitro Cytotoxic Effects of Three Medicinal Plants on Peripheral Blood Mononuclear Cells (PBMC).
Poeaim et al. Evaluation of antioxidant, cytotoxic activities and total phenolic content from leaf extracts of Phlogacanthus pulcherrimus
Lenora et al. Anticancer activity of water hyacinth [Eichhornia crassipes (Mart.) Solms] on human cervical cancer cell line
Barbouchi et al. The effect of solvent extracts on the measurement of total polyphenol, flavonoid and tannin contents and its relation to antioxidant capacities from various parts of Terebinth (Pistacia terebinthus L.)
PL237206B1 (pl) Sposób otrzymywania ekstraktu z Cochlospermum angolense o aktywności przeciwnowotworowej oraz zastosowanie ekstraktu z Cochlospermum angolense w leczeniu szpiczaka
PL237410B1 (pl) Sposób otrzymywania ekstraktu z Cochlospermum angolense o aktywności przeciwnowotworowej oraz zastosowanie ekstraktu z Cochlospermum angolense w leczeniu czerniaka
PL236370B1 (pl) Sposób otrzymywania ekstraktu z Cochlospermum angolense o aktywności przeciwnowotworowej oraz zastosowanie ekstraktu z Cochlospermum angolense w leczeniu raka żołądka
PL237408B1 (pl) Sposób otrzymywania ekstraktu z Cochlospermum angolense o aktywności przeciwnowotworowej oraz zastosowanie ekstraktu z Cochlospermum angolense w leczeniu raka wątrobowokomórkowego
Rummun et al. Pluripharmacological potential of Mascarene endemic plant leaf extracts
Thayyil et al. Comparative Evaluation of in vitro antioxidant activities of various extracts from Chomelia asiatica (Linn) and Pavetta indica (Linn)
Setu et al. Study on antioxidant and cytotoxic activities of methanolic and ethyl acetate extracts of peel and seed of Diospyros blancoi
Alidadi et al. Antioxidant potential and total phenolic compounds of extracts and fractions of Pistasia atlantica
Thiruchelvi et al. Preliminary Phytochemical analysis of the crude extract of marine red and brown seaweeds
Ogechukwu et al. In vivo antimalarial activity and phytochemical screening of tree bark extract of ficus elastica
Choudhari et al. In Vitro Evaluation of Berberis aristata for Cytotoxic Activity
Wang et al. Antibacterial effects of chebulagic acid and chebulinic acid isolated from Terminalia chebula against Vibrio parahaemolyticus
Gümüşok et al. A preliminary Study on the Antioxidant and Anti-inflammatory Activities of Opopanax hispidus