PL235253B1 - Method for differentiation, diagnostic test for the differentiation of the rabies vaccine strains from its field strains and application of the diagnostic test - Google Patents

Method for differentiation, diagnostic test for the differentiation of the rabies vaccine strains from its field strains and application of the diagnostic test Download PDF

Info

Publication number
PL235253B1
PL235253B1 PL410409A PL41040914A PL235253B1 PL 235253 B1 PL235253 B1 PL 235253B1 PL 410409 A PL410409 A PL 410409A PL 41040914 A PL41040914 A PL 41040914A PL 235253 B1 PL235253 B1 PL 235253B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
strains
differentiation
rabies
restriction
vaccine
Prior art date
Application number
PL410409A
Other languages
Polish (pl)
Other versions
PL410409A1 (en
Inventor
Anna Orłowska
Marcin Smreczak
Jan F. Żmudziński
Original Assignee
Panstwowy Inst Weterynaryjny Panstwowy Inst Badawczy
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Panstwowy Inst Weterynaryjny Panstwowy Inst Badawczy filed Critical Panstwowy Inst Weterynaryjny Panstwowy Inst Badawczy
Priority to PL410409A priority Critical patent/PL235253B1/en
Publication of PL410409A1 publication Critical patent/PL410409A1/en
Publication of PL235253B1 publication Critical patent/PL235253B1/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Opis wynalazkuDescription of the invention

Przedmiotem wynalazku jest sposób różnicowania, test diagnostyczny do różnicowania szczepów „szczepionkowych” od szczepów terenowych wirusa wścieklizny oraz zastosowanie testu diagnostycznego. Bardziej szczegółowo rozwiązanie dotyczy sposobu różnicowania i identyfikacji szczepów terenowych wirusa wścieklizny od szczepów wirusa wścieklizny zawartych w doustnych szczepionkach dla lisów przeciwko wściekliźnie zwanych szczepami „szczepionkowymi”.The invention relates to a method of differentiation, a diagnostic test for differentiating between "vaccine" strains from rabies virus field strains, and the use of the diagnostic test. More specifically, the solution relates to a method of differentiating and identifying rabies virus field strains from rabies virus strains contained in oral vaccines for foxes against rabies called "vaccine" strains.

Różnicowanie szczepów wirusa wścieklizny na „szczepionkowe” i terenowe jest ważnym elementem monitoringu akcji doustnego uodparniania lisów przeciwko wściekliźnie. Ponieważ doustne szczepionki przeciwko wściekliźnie zawierają żywe, atenuowane (pozbawione właściwości patogennych) szczepy wirusa wścieklizny istnieje ryzyko, że szczepy te mogą ulec rewersji do formy patogennej. Dlatego też wszystkie dodatnie przypadki wścieklizny diagnozowane na obszarze, gdzie wykładana jest szczepionka powinny być poddane różnicowaniu w celu sprawdzenia, czy przypadek wścieklizny nie jest spowodowany przez szczepy wirusa wścieklizny zawarte w doustnych szczepionkach wykładanych w terenie.Differentiation of rabies virus strains into "vaccine" and field strains is an important element in the monitoring of the action of oral immunization of foxes against rabies. Since oral rabies vaccines contain live, attenuated (devoid of pathogenic properties) strains of rabies virus, there is a risk that these strains may revert to the pathogenic form. Therefore, all positive rabies cases diagnosed in the area where the vaccine is distributed should be differentiated to verify that the rabies case is not caused by rabies virus strains contained in the oral vaccines delivered in the field.

W publikacji A. Orłowska et al. (on-line, 19 listopada 2014), „Genetic characterisation of the rabies virus vaccine strains used for oral immunization of foxes in Poland to estimate the effectiveness of vaccination” ujawnia wyniki badań, które potwierdziły podobieństwo szczepów szczepionkowych i szczepów wirusa wścieklizny krążące w środowisku. Badania różnicujące były oparte o analizy RFLP.In the publication of A. Orłowska et al. (on-line, November 19, 2014), "Genetic characterization of the rabies virus vaccine strains used for oral immunization of foxes in Poland to estimate the effectiveness of vaccination" reveals the results of research that confirmed the similarity of vaccine strains and rabies virus strains circulating in the environment . The differential studies were based on RFLP analyzes.

Ponadto, w publikacji A. Metlin et al., 2008 r., „Restriction enzyme technique for rapid discrimination of attenuated and field rabies viruses in the Russian Federation” ujawnia szybką i prostą technikę opartą na trawieniu produktów RT-PCR enzymami restrykcyjnymi, którą przetestowano w celu odróżnienia wirusów terenowych od szczepów szczepionkowych.Moreover, in A. Metlin et al., 2008, "Restriction enzyme technique for rapid discrimination of attenuated and field rabies viruses in the Russian Federation" discloses a quick and simple technique based on restriction enzyme digestion of RT-PCR products that has been tested to distinguish field viruses from vaccine strains.

W zgłoszeniu patentowym WO2011062537 (opubl. 2011-05-26) opisano sposób detekcji metodami biologii molekularnej oraz sposób identyfikacji szczepów wirusa klasycznego pomoru świń (CSFV). Wynalazek dotyczy sposobu detekcji obecności co najmniej jednego szczepu szczepionkowego wirusa klasycznego pomoru świń (CSFV) w próbce biologicznej i obejmuje etapy: a) sporządzenie mieszaniny reakcyjnej zawierającej wirusowe RNA z próbki biologicznej; b) dostarczenie co najmniej jednej sondy specyficznej wobec szczepionki, zaprojektowanej tak by hybrydyzowała do nukleotydów w N-końcowym regionie kodującym autoproteazy (Npro) CSFV genomu (-ów) szczepu szczepionkowego w ostrych warunkach; c) przeprowadzania reakcji amplifikacji kwasu nukleinowego w ostrych warunkach, w wyniku czego otrzymuje się produkt; i d) wyznaczanie z produktu z etapu c) czy nastąpiła hybrydyzacja sondy specyficznej wobec szczepionki z amplifikowanym wirusowym DNA szczepionki, i jeśli tak to wskazanie obecności szczepu(-ów) szczepionkowych CSFV w próbce. Ponadto wynalazek dotyczy starterów, sond i zestawów przeznaczonych do detekcji oraz identyfikacji metodami biologii molekularnej szczepów szczepionkowych CSFV i ich różnicowania od szczepów terenowych.The patent application WO2011062537 (published 2011-05-26) describes a detection method using molecular biology methods and a method of identifying classical swine fever virus (CSFV) strains. The invention relates to a method of detecting the presence of at least one classical swine fever virus (CSFV) vaccine strain in a biological sample and comprises the steps of: a) preparing a reaction mixture containing viral RNA from the biological sample; b) providing at least one vaccine specific probe designed to hybridize to nucleotides in the N-terminal coding region of the CSFV autoprotease (N pro) of the genome (s) of the vaccine strain under stringent conditions; c) performing a nucleic acid amplification reaction under stringent conditions, yielding a product; and d) determining from the product of step c) whether hybridization of the vaccine specific probe has occurred with the amplified viral vaccine DNA, and if so, indicating the presence of the CSFV vaccine strain (s) in the sample. The invention furthermore relates to primers, probes and kits for the detection and identification by molecular biology of CSFV vaccine strains and their differentiation from field strains.

W zgłoszeniu patentowym UA69088 (opubl. 2004-08-16) ujawniono sposób różnicowania szczepów i izolatów wirusa choroby Mareka z wykorzystaniem szczepów FC-126 (serotyp III), SBG (serotyp II) oraz izolatów szczepu CVI/Rispens (serotyp I). Zgodnie z wynalazkiem rejestrowana jest obecność i zmiany morfologiczne komórek i porównywane w procesie działania cytopatycznego w hodowli fibroblastów embrionów różnych gatunków drobiu.Patent application UA69088 (published 2004-08-16) discloses a method of differentiating Marek's disease virus strains and isolates using strains FC-126 (serotype III), SBG (serotype II) and isolates of strain CVI / Rispens (serotype I). According to the invention, the presence and morphological changes of cells are recorded and compared in the process of cytopathic action in the culture of embryonic fibroblasts of different species of poultry.

W opisie patentowym RU2360252 (opubl. 2009-06-27) opisano zestaw diagnostyczny i test do określenia aktywności surowic przeciwko wściekliźnie oraz sposób przygotowania in vitro heterologicznych immunoglobulin przeciwko wściekliźnie. Test przeznaczony do określenia swoistej aktywności surowic przeciwko wściekliźnie oraz immunoglobulin obejmuje nitrocelulozową membranę z nałożonymi na powierzchni pozytywnymi (standardowe próbki immunoglobulin przeciwko wściekliźnie o swoistej aktywności) i negatywnymi (surowica normalna końska) próbami kontrolnymi, dejonizowaną wodę do przemywania, roztwór do rozcieńczania próbek, koniugat i układ do rozwijania (wizualizacji). Wynalazek ma poszerzyć możliwość określenia swoistości surowic i immunoglobulin w przypadku wytwarzania heterologicznych immunoglobulin przeciw wściekliźnie.Patent description RU2360252 (published 2009-06-27) describes a diagnostic kit and test for determining the activity of anti-rabies sera and a method of in vitro preparation of heterologous anti-rabies immunoglobulins. The test designed to determine the specific activity of anti-rabies sera and immunoglobulins includes a nitrocellulose membrane with superimposed positive (standard anti-rabies immunoglobulin samples with specific activity) and negative (normal horse serum) controls, deionized wash water, sample dilution solution, conjugate and layout for development (visualization). The invention aims to broaden the possibility of determining the specificity of sera and immunoglobulins for the production of heterologous anti-rabies immunoglobulins.

W zgłoszeniu patentowym KR20100006868 (opubl. 2010-01-22) zestaw diagnostyczny oraz sposób szybkiego wykrywania przeciwciał skierowanych przeciwko wściekliźnie z wykorzystaniem immunochromatografii. Zestaw obejmuje membranę nitrocelulozową zawierającą linię badaną i linię kontrolną. Podkładka z koniugatem zachodzi z jednej strony na membranę nitrocelulozową. Podkładka z próbką zachodzi na podkładkę z koniugatem. Podkładka z adsorbentem absorbującym surowicę krwi, jest umieszczona na drugiej stronie membrany nitrocelulozowej.In the patent application KR20100006868 (published 2010-01-22), a diagnostic kit and a method for the rapid detection of anti-rabies antibodies using immunochromatography. The kit includes a nitrocellulose membrane containing a test line and a control line. The conjugate pad overlaps the nitrocellulose membrane on one side. The sample pad overlaps the conjugate pad. A pad with an adsorbent absorbing blood serum is placed on the other side of the nitrocellulose membrane.

PL 235 253 B1PL 235 253 B1

W zgłoszeniu patentowym CN102721816 (opubl. 2012-10-10) opisano zestaw diagnostyczny do diagnostyki wirusa wścieklizny. Warunki robocze zestawu diagnostycznego są zoptymalizowane tak, że roztwór powlekający stanowi 50 mmol/L buforu węglanowego o wartości pH 9,4; optymalne stężenie graniczne BSA-PBS wynosi 1%; optymalne stężenie antygenu powlekającego wynosi 8g/mL; optymalne rozcieńczenie surowicy 1:300; optymalny czas działania surowicy 1 godzina; optymalne rozcieńczenie drugiego przeciwciała 1:5000; optymalny czas działania drugiego przeciwciała 1 godzina; optymalne rozwinięcie wybarwienia substratu - 25 minut. Zestaw odczynników ma wysoką czułość, wysoką dokładność i niskie koszty produkcji, jest prosty, szybki i wygodny w obsłudze.The patent application CN102721816 (published 2012-10-10) describes a diagnostic kit for the diagnosis of rabies virus. The operating conditions of the diagnostic kit are optimized such that the coating solution is 50 mmol / L carbonate buffer, pH 9.4; the optimal BSA-PBS breakpoint is 1%; the optimal concentration of the coating antigen is 8g / mL; optimal serum dilution 1: 300; optimal duration of action of the serum 1 hour; optimal dilution of the second antibody 1: 5000; optimal duration of action of the second antibody 1 hour; optimal development of the substrate color - 25 minutes. The reagent kit has high sensitivity, high accuracy and low production cost, is simple, fast and convenient to operate.

W zgłoszeniu patentowym CN102492042 (opubl. 2012-06-13) opisano rekombinowane białko fuzyjne 3F3Rmg i sposób jego wytwarzania, a także zastosowanie do detekcji psich przeciwciał skierowanych przeciwko wściekliźnie. Rekombinowane białko fuzyjne jest kodowane przez gen fuzyjny 3F3Rmg otrzymywany w wyniku splicingu genu 3F3ScFv i genu Rmg, i ma sekwencję bazową określoną jako SEQ. ID. No. 1. W związku z dwufunkcyjną charakterystyką rekombinowanego białka fuzyjnego 3F3Rmg, białko fuzyjne może być łączone z ludzkimi czerwonymi ciałkami krwi bez aglutynacji, może wchodzić w reakcje z przeciwciałami G skierowanymi przeciwko wściekliźnie, i podlega zjawisku aglutynacji, które można zaobserwować gołym okiem. Zestaw diagnostyczny cechuje się łatwością w obsłudze, wysoką czułością i swoistością. W szczególności jest przeznaczony do detekcji psich przeciwciał skierowanych przeciwko wściekliźnie i spełnia kryteria dotyczące szybkości, łatwości i wygody obsługi.Patent application CN102492042 (published 2012-06-13) describes the recombinant fusion protein 3F3Rmg and the method of its production, as well as the use for the detection of canine anti-rabies antibodies. The recombinant fusion protein is encoded by the 3F3Rmg fusion gene obtained by splicing the 3F3ScFv gene and the Rmg gene, and has the base sequence specified as SEQ. ID. Well. 1. Due to the bifunctional characteristics of the recombinant 3F3Rmg fusion protein, the fusion protein can bind to human red blood cells without agglutination, it can react with anti-rabies G antibodies and is subject to an agglutination phenomenon that can be observed with the naked eye. The diagnostic kit is easy to use, highly sensitive and specific. In particular, it is designed for the detection of canine anti-rabies antibodies and meets the criteria of speed, ease and convenience of handling.

W zgłoszeniu patentowym US6015663 (opubl. 2000-01-18) opisano test oparty na enzymatycznej analizie restrykcyjnej do różnicowania szczepów wirusa zespołu rozrodczo-oddechowego świń (PRRSV). Zamplifikowany cDNA z regionu 5 ORF genomu wirusa był analizowany pod względem identyfikacji unikalnych obszarów restrykcyjnych, które umożliwiają różnicowanie szczepów szczepionkowych od szczepów terenowych, poprzez zastosowanie wybranych enzymów restrykcyjnych. Testy te mają zastosowanie zarówno w diagnostyce klinicznej wirusów terenowych PRRSV, jak i w badaniach epidemiologicznych w ocenie źródła i rozprzestrzeniania wirusów terenowych PRRS.Patent application US6015663 (published 2000-01-18) describes an enzymatic restriction test for the differentiation of porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) strains. The amplified cDNA from the ORF region 5 of the viral genome was analyzed for the identification of unique restriction regions that allow the differentiation of vaccine strains from field strains by using selected restriction enzymes. These tests are applicable to both clinical diagnosis of PRRSV field viruses and epidemiological studies to assess the source and spread of PRRS field viruses.

W opisie patentowym RU2196992 (opubl. 2003-01-20) opisano sposób wskazania i różnicowania szczepów szczepionkowych i terenowych wirusa cholery Hoga. Sposób obejmuje syntezę niespecyficznych i specyficznych względem CHCV starterów oligonukleotydowych, wyizolowanie wirusowego RNA ze szczepionki lub materiału patologicznego, syntezę cDNA na podstawie wirusowego RNA jako matrycy w reakcji odwrotnej transkrypcji. Przeprowadza się PCR i następuje pierwszy etap amplifikacji fragmentu genomu wirusowego poprzez zastosowanie niespecyficznych starterów oligonukleotydowych. Drugi etap amplifikacji powinien być prowadzony przy zastosowaniu PCR i wykorzystaniu specyficznych względem CHCV starterów oligonukleotydowych. Następnie należy przeprowadzić cięcie otrzymanych amplifikowanych fragmentów cDNA za pomocą endonukleazy Taq I. Różnicowanie izolatów szczepów szczepionkowych i terenowych CHCV powinno być prowadzone na podstawie danych ilości i masy otrzymanych fragmentów restrykcyjnych po elektroforezie na żelu poliakrylamidowym. Sposób według wynalazku umożliwia uzyskanie wyższej swoistości i czułości stosowanych technik, w efekcie czego uzyskuje się wyższą wydajność.Patent RU2196992 (Published 2003-01-20) describes a method for identifying and differentiating vaccine and field strains of Hog's cholera virus. The method comprises synthesizing non-specific and CHCV-specific oligonucleotide primers, isolating viral RNA from vaccine or pathological material, synthesizing cDNA from viral RNA as a template by a reverse transcription reaction. PCR is performed and the first step is to amplify a fragment of the viral genome by using non-specific oligonucleotide primers. The second step of amplification should be performed using PCR and using CHCV-specific oligonucleotide primers. Subsequently, cleavage of the obtained amplified cDNA fragments should be performed with Taq I endonuclease. Differentiation of vaccine strain isolates and CHCV field strains should be performed on the basis of the data of the number and mass of the obtained restriction fragments after polyacrylamide gel electrophoresis. The method according to the invention makes it possible to obtain higher specificity and sensitivity of the techniques used, as a result of which a higher yield is obtained.

Dotychczasowy sposób różnicowania szczepów „szczepionkowych” i terenowych wirusa wścieklizny polegał na wykorzystaniu przeciwciał monoklonalnych oraz techniki immunofluorescencji pośredniej. Utrwalone odciski z badanych mózgowi na szkiełkach podstawowych poddawane były reakcjom z panelem przeciwciał monoklonalnych umożliwiających różnicowanie szczepów terenowych od szczepów zawartych w szczepionkach doustnych.The method of differentiating rabies virus 'vaccine' strains to date has been based on the use of monoclonal antibodies and the technique of indirect immunofluorescence. The fixed impressions from the brain examined on the slides were reacted with a panel of monoclonal antibodies allowing for the differentiation of field strains from strains contained in oral vaccines.

Pomimo istniejących do tej pory rozwiązań istnieje ciągła potrzeba znalezienia skutecznej metody różnicowania szczepów terenowych wirusa wścieklizny od szczepów wirusa wścieklizny zawartych w doustnych szczepionkach dla lisów. Metoda immunofluorescencji pośredniej sprawia trudności przy odczycie wyników, gdyż świecenia są często niespecyficzne i dlatego odczyt preparatów sprawia trudności diagnostyczne oraz wymaga dużego doświadczenia. Z tego względu bardzo często metoda ta wymaga wcześniejszego namnożenia wirusa w hodowli komórek. Jeżeli miano wirusa w badanym materiale jest bardzo niskie, a dodatkowo rozmieszczenie wirusa w tkance mózgowej nierównomierne, często wirus może występować poniżej progu wykrywalności, co może skutkować otrzymaniem fałszywie ujemnego wyniku.Despite existing solutions, there is a continuing need to find an effective method of differentiating rabies virus field strains from rabies virus strains contained in oral vaccines for foxes. The indirect immunofluorescence method makes it difficult to read the results, as the lights are often non-specific and therefore the reading of the preparations causes diagnostic difficulties and requires a lot of experience. For this reason, very often this method requires prior virus multiplication in cell culture. If the viral load in the test material is very low, and in addition, the distribution of the virus in the brain tissue is uneven, often the virus may be below the detection limit, which may result in a false-negative result.

PL 235 253 Β1PL 235 253 Β1

Celem niniejszego wynalazku jest opracowanie skutecznej metody różnicowania oraz opracowanie testu diagnostycznego do różnicowania szczepów terenowych wirusa wścieklizny od szczepów wirusa wścieklizny zawartych w doustnych szczepionkach dla lisów przeciwko wściekliźnie zwanych szczepami „szczepionkowymi”.The object of the present invention is to develop an efficient differentiation method and to develop a diagnostic test for differentiating rabies virus field strains from rabies virus strains contained in oral vaccines for fox against rabies called "vaccine" strains.

Realizacja tak określonego celu i rozwiązanie opisanych w stanie techniki problemów związanych z opracowaniem wynalazku umożliwiającego różnicowanie szczepów terenowych od szczepionkowych wirusa wścieklizny, zostało osiągnięte w niniejszym wynalazku. Z powyższych względów opracowano szybką, tanią i prostą w interpretacji metodę PCR-RFLP do różnicowania szczepów „szczepionkowych” i terenowych za pomocą enzymów restrykcyjnych.The present invention has achieved the accomplishment of the objective so defined and the solution of the problems described in the prior art related to the development of the invention, which enables the differentiation of field strains from rabies virus vaccine strains. For the above reasons, a fast, cheap and easy to interpret PCR-RFLP method was developed to differentiate between "vaccine" and field strains using restriction enzymes.

Zgodnie z wynalazkiem produkty amplifikacji wirusowego RNA (odcinka genu kodującego fragment białka nukleoproteiny wirusa wścieklizny, charakteryzującego się wysoką konserwatywnością sekwencji nukleotydowej) poddawane są cięciu przez enzymy restrykcyjne. Za pomocą programu komputerowego NebCutter 2, wybrano enzymy restrykcyjne, które w łatwy sposób pozwalają na różnicowanie szczepów poprzez rozpoznanie miejsca restrykcyjnego, krótkiej, specyficznej sekwencji nukleotydowej, a następnie jej strawienie w wyniku czego uzyskuje się fragmenty DNA o różnej długości. Identyfikacja i różnicowanie szczepów wirusa wścieklizny na szczepy terenowe i „szczepionkowe” odbywa się poprzez porównanie długości uzyskanych fragmentów DNA wobec szablonu restrykcyjnego powstałego z trawienia DNA szczepów terenowych i „szczepionkowych”.According to the invention, the amplification products of viral RNA (a segment of the gene encoding a fragment of the rabies virus nucleoprotein protein characterized by high conservation of the nucleotide sequence) are cleaved by restriction enzymes. With the help of the NebCutter 2 computer program, restriction enzymes were selected that allow easy strain differentiation by recognizing a restriction site, a short, specific nucleotide sequence, and then digesting it, resulting in DNA fragments of various lengths. The identification and differentiation of rabies virus strains into field and "vaccine" strains is done by comparing the lengths of the DNA fragments obtained against the restriction template obtained from digesting the DNA of the field and "vaccine" strains.

Wyizolowany RNA wirusa wścieklizny (za pomocą zestawu komercyjnego, np. firmy Qiagen: „Qiamp Viral RNA Mini Kit”, bądź metodą Chomczyńskiego) z 20% homogenatów mózgowi chorych zwierząt lub z zawartości blistrów doustnych szczepionek przeciwko wściekliźnie w pierwszym etapie poddaje się reakcji amplifikacji poprzedzonej odwrotną transkrypcją (RT-PCR). Amplifikacji ulega fragment genu kodującego nukleoproteinę wirusa wścieklizny odpowiadający pozycji 55-660 nt genomu referencyjnego szczepu PV (Acc. No. M 13215). Do amplifikacji wykorzystuje się startery JW12 o sekwencji SEQ. ID No. 1 (ATGTAACACCYC TACAATG) i JW6DPL o sekwencji SEQ. ID No. 2 (CAA TTC GCA CAC ATT TTG TG) zaprojektowane przez Heaton i wsp. (1997). RT-PCR przeprowadza się przy użyciu komercyjnego zestawu np. firmy lnvitrogen („Superscript® III One-Step RT-PCR System with Platinum® Taq DNA Polymerase”). 2 μΙ RNA dodaje się do mieszaniny reakcyjnej zawierającej 7 μΙ wody wolnej od DNaz/RNaz; 12,5 μΙ 2x bufor reaction mix; 1 μΙ mieszaniny enzymów Superscriptlll / Platinum Taq oraz 1 μΙ startera JW12 (20 μΜ) i 1 μΙ JW6DPL (20 μΜ). Reakcję przeprowadza się w termocyklerze w następujących warunkach czasowo-temperaturowych:Isolated rabies virus RNA (using a commercial kit, e.g. from Qiagen: "Qiamp Viral RNA Mini Kit", or by Chomczyński's method) from 20% of homogenates in the brain of sick animals or from the contents of oral rabies vaccine blisters, in the first stage, the amplification reaction is preceded by reverse transcription (RT-PCR). The fragment of the gene encoding the rabies virus nucleoprotein corresponding to position 55-660 nt of the genome of the reference PV strain (Acc. No. M 13215) is amplified. JW12 primers with the sequence SEQ are used for amplification. ID No. 1 (ATGTAACACCYC TACAATG) and JW6DPL with the sequence SEQ. ID No. 2 (CAA TTC GCA CAC ATT TTG TG) designed by Heaton et al. (1997). RT-PCR is performed using a commercial kit, for example from Invitrogen ("Superscript® III One-Step RT-PCR System with Platinum® Taq DNA Polymerase"). 2 μΙ RNA is added to the reaction mixture containing 7 μΙ DNase / RNase free water; 12.5 μΙ 2x buffer reaction mix; 1 μΙ of Superscriptlll / Platinum Taq enzyme mixture and 1 μΙ of JW12 primer (20 μΜ) and 1 μΙ JW6DPL (20 μΜ). The reaction is performed in a thermocycler under the following time-temperature conditions:

Profil czasowo-temperaturowy RT-PCR RT-PCR time-temperature profile Temperatura Temperature Czas Time Liczba cykli Number of cycles 50°C 50 ° C 30 minut 30 minutes 1 1 95°C 95 ° C 15 minut 15 minutes 1 1 95°C 95 ° C 30 sekund 30 seconds 35 cykli 35 cycles 49°C 49 ° C 30 sekund 30 seconds 72°C 72 ° C 1 minuta 1 minute 72°C 72 ° C 10 minut 10 minutes 1 1 4°C 4 ° C Do etapu rozdziału elektroforetycznego Up to the electrophoretic separation step

W następnym etapie produkty amplifikacji RT-PCR poddawane są cięciu przez enzymy restrykcyjne. W tym celu 2 μΙ produktu RT-PCR dodawane jest do mieszaniny zawierającej enzym restrykcyjny, bufor reakcyjny odpowiedni dla enzymu oraz wodę. Warunki cięcia zgodne są z zaleceniami producenta enzymów, najczęściej w temperaturze 37°C przez 2 godziny.In the next step, the products of RT-PCR amplification are cut by restriction enzymes. For this purpose, 2 μΙ of RT-PCR product is added to the mixture containing the restriction enzyme, the reaction buffer appropriate for the enzyme and water. Cutting conditions are as recommended by the enzyme manufacturer, most often at 37 ° C for 2 hours.

Przedmiotem wynalazku jest sposób różnicowania szczepów „szczepionkowych” od terenowych wirusa wścieklizny, charakteryzujący się tym, że produkty amplifikacji wirusowego RNA poddaje się cięciu przez enzymy restrykcyjne, wybrane spośród endonukleaz restrykcyjnych, po czym porównuje się długości uzyskanych fragmentów DNA wobec szablonu restrykcyjnego powstałego z trawienia DNA szczepów terenowych i „szczepionkowych”, w którym do amplifikacji wykorzystuje się starter JW12 określony sekwencją SEQ. No. 1 i starter JW6DPL określony sekwencją SEQ. No. 2, przy czym amplifikacji ulega fragment genu kodującego nukleoproteinę wirusa wścieklizny odpowiadający pozycji 55-660 nt.The subject of the invention is a method of differentiating "vaccine" strains from rabies field virus, characterized in that the amplification products of viral RNA are cleaved by restriction enzymes selected from restriction endonuclease, and then the lengths of the obtained DNA fragments are compared against the restriction template resulting from digesting DNA field and "vaccine" strains, in which a JW12 primer defined by SEQ is used for amplification. Well. 1 and the JW6DPL primer identified by the sequence SEQ. Well. 2, wherein the fragment of the gene encoding the rabies virus nucleoprotein corresponding to position 55-660 nt is amplified.

PL 235 253 B1 genomu referencyjnego szczepu PV (Acc. No. M 13215), i gdzie enzymy restrykcyjne stanowią Dra I, Msp I lub Nla IV.From the genome of the reference PV strain (Acc. No. M 13215), and wherein the restriction enzymes are Dra I, Msp I or Nla IV.

Korzystnie, gdy sposób obejmuje następujące etapy:Preferably, the method comprises the following steps:

a) wyizolowany RNA wirusa wścieklizny z homogenatów mózgowi chorych zwierząt lub z doustnych szczepionek przeciwko wściekliźnie poddaje się reakcji amplifikacji poprzedzonej odwrotną transkrypcją;(a) the isolated rabies virus RNA from homogenates in the brain of diseased animals or from oral rabies vaccines is subjected to a reverse transcription preceded amplification reaction;

b) produkty amplifikacji RT-PCR poddaje się cięciu przez enzymy restrykcyjne, wybrane spośród endonukleaz restrykcyjnych;b) the RT-PCR amplification products are cleaved by restriction enzymes selected from among the restriction endonuclease;

c) po trawieniu amplikonu restryktazami i rozdziale elektroforetycznym uzyskuje się fragmenty DNA o różnej długości, po czym prowadzi się identyfikację i różnicowanie szczepów wirusa wścieklizny na szczepy terenowe i „szczepionkowe” poprzez porównanie długości uzyskanych fragmentów DNA wobec szablonu restrykcyjnego powstałego z trawienia DNA szczepów terenowych i „szczepionkowych”.c) after digestion of the amplicon with restrictionases and electrophoretic separation, DNA fragments of different lengths are obtained, and then the identification and differentiation of rabies virus strains into field and "vaccine" strains by comparing the length of the obtained DNA fragments against the restriction template resulting from the digestion of DNA of the field strains and "Vaccines".

Korzystnie, gdy stosuje się enzym Dra I, rozpoznający sekwencję TTT/AAA. Korzystnie, gdy stosuje się enzym Msp I, posiadający miejsce restrykcyjne dla sekwencji C/CGG.Preferably, the Dra I enzyme which recognizes the TTT / AAA sequence is used. Preferably the enzyme Msp I is used which has a restriction site for the C / CGG sequence.

Korzystnie, gdy stosuje się enzym Nla IV, posiadający miejsce restrykcyjne dla sekwencji GGN/NCC.Preferably the enzyme Nla IV having a restriction site for the GGN / NCC sequence is used.

Korzystnie, gdy dodaje się 2 pl RNA do mieszaniny reakcyjnej zawierającej 7 pl wody wolnej od DNaz/RNaz; 12,5 pl 2x bufor reaction mix; 1 pl mieszaniny enzymów SuperscriptIII / Platinum Taq oraz 1 pl startera JW12 (20 pM) określonego sekwencją SEQ. No. 1 i 1 pl JW6DPL (20 pM) określonego sekwencją SEQ. No. 2, gdzie reakcję przeprowadza się w termocyklerze.Preferably 2 µl RNA is added to the reaction mixture containing 7 µl DNase / RNase free water; 12.5 pl 2x buffer reaction mix; 1 µl of the SuperscriptIII / Platinum Taq enzyme mixture and 1 µl of a JW12 primer (20 µM) determined by the sequence SEQ. Well. 1 and 1 pl JW6DPL (20 pM) determined by the sequence SEQ. Well. 2, where the reaction is performed in a thermocycler.

Korzystnie, gdy stosuje się go do różnicowania szczepów terenowych wirusa wścieklizny od szczepów „szczepionkowych” wirusa wścieklizny zawartych w doustnych szczepionkach przeciwko wściekliźnie dla lisów.Preferably it is used to differentiate rabies virus field strains from rabies virus "vaccine" strains contained in oral rabies vaccines for foxes.

Korzystnie, gdy sposób obejmuje doustne szczepionki przeciwko wściekliźnie dla lisów rudych.Preferably, the method comprises oral rabies vaccines for red foxes.

Kolejnym przedmiotem wynalazku jest test diagnostyczny do różnicowania i identyfikacji szczepów „szczepionkowych” od terenowych wirusa wścieklizny, charakteryzujący się tym, że produkty amplifikacji wirusowego RNA poddawane są cięciu przez enzymy restrykcyjne, wybrane spośród endonukleaz restrykcyjnych, po czym porównywane są długości uzyskanych fragmentów DNA wobec szablonu restrykcyjnego powstałego z trawienia DNA szczepów terenowych i „szczepionkowych” wirusa wścieklizny, w którym do amplifikacji wykorzystywane są starter JW12 określony sekwencją SEQ. No. 1 i starter JW6DPL określony sekwencją SEQ. No. 2, przy czym amplifikacji ulega fragment genu kodującego nukleoproteinę wirusa wścieklizny odpowiadający pozycji 55-660 nt. genomu referencyjnego szczepu PV (Acc. No. M 13215), i gdzie enzymy restrykcyjne stanowią Dra I, Msp 1 lub Nla IV.Another object of the invention is a diagnostic test for the differentiation and identification of "vaccine" strains from rabies field virus, characterized in that the amplification products of viral RNA are cleaved by restriction enzymes selected from restriction endonuclease, and the lengths of the obtained DNA fragments are compared against the template restriction digestion derived from DNA digestion of rabies virus field and "vaccine" strains, in which a JW12 primer defined by SEQ is used for amplification. Well. 1 and the JW6DPL primer identified by the sequence SEQ. Well. 2, wherein the fragment of the gene encoding the rabies virus nucleoprotein corresponding to position 55-660 nt of the genome of the reference PV strain (Acc. No. M 13215) is amplified, and wherein the restriction enzymes are Dra I, Msp 1 or Nla IV.

Korzystnie, gdy enzym Dra I, rozpoznaje sekwencję TTT/AAA.Preferably, the Dra I enzyme recognizes the TTT / AAA sequence.

Korzystnie, gdy enzym Msp I, posiada miejsce restrykcyjne dla sekwencji C/CGG.Preferably, the Msp I enzyme has a restriction site for the C / CGG sequence.

Korzystnie, gdy enzym Nla IV, posiada miejsce restrykcyjne dla sekwencji GGN/NCC.Preferably, the Nla IV enzyme has a restriction site for the GGN / NCC sequence.

Kolejnym przedmiotem wynalazku jest zastosowanie testu diagnostycznego określonego powyżej do różnicowania i identyfikacji szczepów „szczepionkowych” zawartych w doustnych szczepionkach przeciwko wściekliźnie dla lisów rudych używanych w akcjach doustnego uodparniania lisów oraz szczepów wirusa wścieklizny izolowanych od wściekłych zwierząt z terenu.Another object of the invention is the use of the diagnostic test as defined above for the differentiation and identification of "vaccine" strains contained in oral rabies vaccines for red foxes used in oral immunization of foxes and rabies virus strains isolated from rabid field animals.

Załączone figury pozwalają na lepsze wyjaśnienie istoty wynalazku, gdzie:The attached figures allow for a better explanation of the essence of the invention, where:

figura 1 przedstawia wyniki analizy RFLP 17 szczepów terenowych wirusa wścieklizny (ścieżki 1-17) oraz szczepów „szczepionkowych” SAD B19 (ścieżka 18) i SAD Bem (ścieżka 19) po trawieniu enzymem restrykcyjnym Dra I. M - marker wielkości mas DNA;Figure 1 shows the results of RFLP analysis of 17 rabies virus field strains (lanes 1-17) and the "vaccine" strains of SAD B19 (lane 18) and SAD Bem (lane 19) after digestion with the restriction enzyme Dra I. M - DNA mass size marker;

figura 2 przedstawia wyniki analizy RFLP 17 szczepów terenowych wirusa wścieklizny (ścieżki 1-17) oraz szczepów „szczepionkowych” (ścieżki 18-19) po trawieniu restryktazą Msp I. M - marker wielkości mas DNA;Figure 2 shows the results of RFLP analysis of 17 rabies virus field strains (lanes 1-17) and "vaccine" strains (lanes 18-19) after digestion with Msp I. M - DNA mass size marker;

figura 3 przedstawia wyniki analizy RFLP 17 szczepów terenowych wirusa wścieklizny (ścieżki 1-17) oraz szczepów „szczepionkowych” (ścieżki 18-19) po trawieniu enzymem restrykcyjnym Nla IV. M - marker wielkości mas DNA.Figure 3 shows the results of RFLP analysis of 17 rabies virus field strains (lanes 1-17) and "vaccine" strains (lanes 18-19) after digestion with the restriction enzyme Nla IV. M - DNA mass size marker.

W celu lepszego zrozumienia wynalazku poniżej przedstawiono przykładowe rozwiązania. Podane poniżej opisy cięcia produktów amplifikacji RT-PCR poszczególnymi restryktazami ilustrują wynalazek.For a better understanding of the invention, exemplary solutions are presented below. The following descriptions for the cleavage of RT-PCR amplification products with the respective restrictionases illustrate the invention.

PL 235 253 B1PL 235 253 B1

PrzykładyExamples

P r z y k ł a d IP r z k ł a d I

Najbardziej obrazowo różnicującym enzymem jest restryktaza Dra I. Enzym ten rozpoznaje miejsce restrykcyjne, sześcionukleotydową sekwencję TTT/AAA, gdzie następuje cięcie DNA. 2 μΙ produktu RT-PCR dodawane jest do mieszaniny reakcyjnej zawierającej 1 μl enzymu restrykcyjnego, 8 μl buforu reakcyjnego Tango oraz 71 μl wody do biologii molekularnej. Inkubacja z enzymem trwa 2 godziny w temperaturze 37°C. W efekcie amplikony szczepów „szczepionkowych” wirusa wścieklizny (600 pz) zostają przecięte na dwa fragmenty wielkości 450 pz i 150 pz (fig. 1, ścieżki 18-19). Produkty restrykcji rozdzielane są w 1,5 - 2% żelu agarozowym z dodatkiem 5 μl bromku etydyny o stężeniu 10 mg/ml. W tym celu w kuchence mikrofalowej rozpuszcza się 1,5-2 g agarozy w 100 ml 1x stężonego buforu do elektroforezy np. TAE. Rozpuszczoną agarozę wylewa się na stolik z grzebieniem i pozostawia na 20-30 minut do zastygnięcia. 8 μl produktu cięcia enzymem Dra I miesza się z 1 μl buforu obciążającego 6x Loading Buffer, a następnie całość nanosi się do dołków w zastygniętym żelu. Elektroforezę prowadzi się przez 40 minut przy napięciu 90-100 V. Po zakończeniu elektroforezy żel ogląda się w świetle UV na transiluminatorze lub w kamerze do analizy obrazu. Ponieważ amplikony szczepów terenowych nie posiadają miejsca restrykcyjnego dla Dra I w wyniku tego na żelu po rozdziale elektroforetycznym produktów cięcia widoczny jest jeden prążek wielkości 600 pz (fig. 1, ścieżki 1-17).The most vividly differentiating enzyme is Dra I restrictionase. This enzyme recognizes a restriction site, TTT / AAA six nucleotide sequence, where DNA cleavage occurs. 2 μΙ of RT-PCR product is added to the reaction mixture containing 1 μL of restriction enzyme, 8 μL of Tango reaction buffer, and 71 μL of molecular biology water. Incubation with the enzyme lasts 2 hours at 37 ° C. As a result, amplicons of rabies virus "vaccine" strains (600 bp) are cleaved into two fragments of 450 bp and 150 bp (Fig. 1, lanes 18-19). The restriction products are separated in a 1.5 - 2% agarose gel with the addition of 5 μl of ethidium bromide at a concentration of 10 mg / ml. For this purpose, 1.5-2 g of agarose are dissolved in 100 ml of 1x concentrated electrophoresis buffer, eg TAE, in a microwave oven. The dissolved agarose is poured onto a comb table and allowed to set for 20-30 minutes. 8 µl of Dra I cleavage product is mixed with 1 µl of 6x Loading Buffer and then the whole is applied to the wells of the solidified gel. The electrophoresis is performed for 40 minutes at a voltage of 90-100 V. After completion of the electrophoresis, the gel is viewed under UV light on a transilluminator or in an image analysis camera. As the amplicons of the field strains lack a Dra I restriction site, as a result, the gel shows one 600 bp band after electrophoretic separation of the cleavage products (Figure 1, lanes 1-17).

P r z y k ł a d IIP r z x l a d II

Enzymem pozwalającym na zróżnicowanie szczepów „szczepionkowych” i terenowych jest również Msp I, dla którego miejsce restrykcyjne stanowi sekwencja C/CGG. Produkt amplifikacji RT-PCR (2 μΓ) dodawany jest do mieszaniny reakcyjnej zawierającej 0,8 μl enzymu Msp I; 2,2 μl buforu oraz 5 μl wody do biologii molekularnej. Trawienie prowadzi się przez 2 godziny w temperaturze 37°C. Następnie produkty cięcia rozdziela się w żelu agarozowym i ogląda w świetle UV analogicznie jak w poprzednim przykładzie. Uzyskane w wyniku trawienia fragmenty DNA (amplikony) tworzą wzorce charakterystyczne dla określonego szczepu wirusa wścieklizny. Szczepy „szczepionkowe” (fig. 2, ścieżki 18-19) charakteryzują się innym szablonem elektroforetycznym w analizie RFLP niż szczepy terenowe (fig. 2, ścieżki 1-17).The enzyme allowing for the differentiation of "vaccine" and field strains is also Msp I, for which the restriction site is the C / CGG sequence. The RT-PCR amplification product (2 μΓ) is added to the reaction mixture containing 0.8 μL of the Msp I enzyme; 2.2 μl of buffer and 5 μl of water for molecular biology. Digestion is carried out for 2 hours at 37 ° C. The cut products are then separated on an agarose gel and viewed under UV light analogously to the previous example. The DNA fragments (amplicons) obtained as a result of digestion create patterns characteristic of a specific rabies virus strain. The "vaccine" strains (Figure 2, lanes 18-19) have a different electrophoretic pattern in RFLP analysis than the field strains (Figure 2, lanes 1-17).

P r z y k ł a d IIIP r x l a d III

Do różnicowania szczepów „szczepionkowych” i terenowych można również użyć enzymu Nla IV. Enzym ten posiada miejsce cięcia w sekwencji GGN/NCC. Analogicznie jak w przykładach I i II cięciu poddaje się 2 μl produktu amplifikacji. DNA dodaje się do 8 μl mieszaniny reakcyjnej zawierającej 0,1 μl enzymu; 0,8 μl buforu i 7,1 μl wody do biologii molekularnej. Cięcie prowadzi się przez 2 godziny w 37°C. Następnie produkty rozdziela się elektroforetycznie i analizuje w kamerze w świetle UV. Szczepy „szczepionkowe” posiadają inny szablon (wzór) cięcia niż szczepy terenowe (fig. 3).The enzyme Nla IV can also be used to differentiate between "vaccine" and field strains. This enzyme has a cleavage site in the GGN / NCC sequence. 2 μl of the amplification product are cut analogously to the examples I and II. DNA is added to 8 µl of reaction mixture containing 0.1 µl of enzyme; 0.8 μl buffer and 7.1 μl molecular biology water. Cutting is carried out for 2 hours at 37 ° C. The products are then separated by electrophoresis and analyzed in a camera under UV light. The "vaccine" strains have a different cutting pattern (pattern) than the field strains (Figure 3).

Test według wynalazku niezależnie od użytego enzymu restrykcyjnego umożliwia w szybki, łatwy i przede wszystkim tani sposób zróżnicować szczepy „szczepionkowe” i terenowe wirusa wścieklizny. Stosownie od użytego enzymu restrykcyjnego przedstawionego w przykładach I do III szczepy „szczepionkowe” charakteryzują się innym szablonem elektroforetycznym w analizie RFLP amplikonu fragmentu genu nukleoproteiny niż szczepy terenowe.The test according to the invention, regardless of the restriction enzyme used, enables a quick, easy and, above all, cheap way to differentiate between "vaccine" and field strains of rabies virus. According to the restriction enzyme used in Examples 1 to 3, the "vaccine" strains have a different electrophoretic pattern in RFLP analysis of the nucleoprotein gene fragment gene fragment than the field strains.

Bibliografia:Bibliography:

1. Heaton P.R., Johnstone P„ McElhinney L.M., Cowley R., O’sullivan E., Whitby J.E.: Heminested PCR Assay for Detection of Six Genotypes of Rabies and Rabies-Related Viruses. J. Clin. Microbiol. 1997, 35,2762-2766.1. Heaton P.R., Johnstone P "McElhinney L.M., Cowley R., O'sullivan E., Whitby J.E .: Heminested PCR Assay for Detection of Six Genotypes of Rabies and Rabies-Related Viruses. J. Clin. Microbiol. 1997, 35, 2762-2766.

PL 235 253 Β1PL 235 253 Β1

Wykaz sekwencjiSequence Listing

SEQ. ID No. 1 starter JW12SEQ. ID No. 1 starter JW12

ATGTAACACCYC TACAATGATGTAACACCYC TACAATG

SEQ. ID No. 2 starter JW6DPLSEQ. ID No. 2 starter JW6DPL

CAA TTC GCA CAC ATT TTG TGCAA TTC GCA CAC ATT TTG TG

Claims (13)

1. Sposób różnicowania szczepów „szczepionkowych” od terenowych wirusa wścieklizny, znamienny tym, że produkty amplifikacji wirusowego RNA poddaje się cięciu przez enzymy restrykcyjne, wybrane spośród endonukleaz restrykcyjnych, po czym porównuje się długości uzyskanych fragmentów DNA wobec szablonu restrykcyjnego powstałego z trawienia DNA szczepów terenowych i „szczepionkowych”, w którym do amplifikacji wykorzystuje się starter JW12 określony sekwencją SEQ. No. 1 i starter JW6DPL określony sekwencją SEQ. No. 2, przy czym amplifikacji ulega fragment genu kodującego nukleoproteinę wirusa wścieklizny odpowiadający pozycji 55-660 nt genomu referencyjnego szczepu PV (Acc. No. M 13215), i gdzie enzymy restrykcyjne stanowią Dra I, Msp I lub Nla IV.1. A method of differentiating "vaccine" strains from rabies field virus, characterized in that the amplification products of the viral RNA are cleaved by restriction enzymes selected from among the restriction endonuclease, and the lengths of the obtained DNA fragments are compared against the restriction template obtained from digesting the DNA of the field strains and "vaccines", which use a JW12 primer defined by SEQ for amplification. Well. 1 and the JW6DPL primer identified by the sequence SEQ. Well. 2, wherein the fragment of the gene encoding the rabies virus nucleoprotein corresponding to position 55-660 nt of the genome of the reference PV strain (Acc. No. M 13215) is amplified, and wherein the restriction enzymes are Dra I, Msp I or Nla IV. 2. Sposób różnicowania według zastrz. 1, znamienny tym, że obejmuje następujące etapy:2. The differentiation method according to claim The process of claim 1, comprising the following steps: a) wyizolowany RNA wirusa wścieklizny z homogenatów mózgowi chorych zwierząt lub z doustnych szczepionek przeciwko wściekliźnie poddaje się reakcji amplifikacji poprzedzonej odwrotną transkrypcją;(a) the isolated rabies virus RNA from homogenates in the brain of diseased animals or from oral rabies vaccines is subjected to a reverse transcription preceded amplification reaction; b) produkty amplifikacji RT-PCR poddaje się cięciu przez enzymy restrykcyjne, wybrane spośród endonukleaz restrykcyjnych;b) the RT-PCR amplification products are cleaved by restriction enzymes selected from among the restriction endonuclease; c) po trawieniu amplikonu restryktazami i rozdziale elektroforetycznym uzyskuje się fragmenty DNA o różnej długości, po czym prowadzi się identyfikację i różnicowanie szczepów wirusa wścieklizny na szczepy terenowe i „szczepionkowe” poprzez porównanie długości uzyskanych fragmentów DNA wobec szablonu restrykcyjnego powstałego z trawienia DNA szczepów terenowych i „szczepionkowych”.c) after digestion of the amplicon with restrictionases and electrophoretic separation, DNA fragments of different lengths are obtained, and then the identification and differentiation of rabies virus strains into field and "vaccine" strains by comparing the length of the obtained DNA fragments against the restriction template resulting from the digestion of DNA of the field strains and "Vaccines". 3. Sposób różnicowania według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się enzym Dra I, rozpoznający sekwencję TTT/AAA.3. The differentiation method according to claim The process of claim 1, wherein the Dra I enzyme recognizes the TTT / AAA sequence. 4. Sposób różnicowania według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się enzym Msp I, posiadający miejsce restrykcyjne dla sekwencji C/CGG.4. The differentiation method according to claim The process of claim 1, wherein the enzyme Msp I has a restriction site for the C / CGG sequence. 5. Sposób różnicowania według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się enzym Nla IV, posiadający miejsce restrykcyjne dla sekwencji GGN/NCC.5. The method of differentiation according to claim The method of claim 1, wherein the enzyme Nla IV has a restriction site for the GGN / NCC sequence. 6. Sposób różnicowania według zastrz. 2, znamienny tym, że dodaje się 2 μΙ RNA do mieszaniny reakcyjnej zawierającej 7 μΙ wody wolnej od DNaz/RNaz; 12,5 μΙ 2x bufor reaction mix; 1 μΙ mieszaniny enzymów SuperscriptllI / Platinum Taq oraz 1 μΙ startera JW12 (20 μΜ) określonego sekwencja SEQ. No. 1 i 1 μΙ JW6DP1, (20 μΜ) określonego sekwencją SEQ, No. 2, gdzie reakcję przeprowadza się w termocyklerze.6. The differentiation method according to claim The method of claim 2, wherein 2 µ RNA is added to the 7 µΙ DNase / RNase free water reaction mixture; 12.5 μΙ 2x buffer reaction mix; 1 μΙ of the SuperscriptII / Platinum Taq enzyme mixture and 1 μΙ of JW12 primer (20 μΜ) of the specified SEQ sequence. Well. 1 and 1 μΙ JW6DP1, (20 μΜ) determined by the sequence SEQ, No. 2, where the reaction is performed in a thermocycler. 7. Sposób różnicowania według zastrz. 2, znamienny tym, że stosuje się go do różnicowania szczepów terenowych wirusa wścieklizny od szczepów „szczepionkowych” wirusa wścieklizny zawartych w doustnych szczepionkach przeciwko wściekliźnie dla lisów.7. The method of differentiation according to claim The method of claim 2, which is used to differentiate rabies virus field strains from rabies virus "vaccine" strains contained in oral rabies vaccines for foxes. 8. Sposób różnicowania według zastrz. 2, znamienny tym, że obejmuje doustne szczepionki przeciwko wściekliźnie dla lisów rudych.8. The method of differentiation according to claim A method according to claim 2, comprising oral rabies vaccines for red foxes. PL 235 253 B1PL 235 253 B1 9. Test diagnostyczny do różnicowania i identyfikacji szczepów „szczepionkowych od terenowych wirusa wścieklizny, znamienny tym, że produkty amplifikacji wirusowego RNA poddawane są cieciu przez enzymy restrykcyjne, wybrane spośród endonukleaz restrykcyjnych, po czym porównywane są długości uzyskanych fragmentów DNA wobec szablonu restrykcyjnego powstałego z trawienia DNA szczepów terenowych i „szczepionkowych” wirusa wścieklizny, w którym do amplifikacji wykorzystywane są starter JW12 określony sekwencją SEQ, No. 1 i starter JW6DPL określony sekwencją SEQ. No. 2, przy czym amplifikacji ulega fragment genu kodującego nukleoproteinę wirusa wścieklizny odpowiadający pozycji 55-660 nt. genomu referencyjnego szczepu PV (Acc. No. M 13215), i gdzie enzymy restrykcyjne stanowią Dra I, Msp 1 lub Nla IV.9. A diagnostic test for the differentiation and identification of vaccine strains from rabies field virus, characterized in that the amplification products of viral RNA are cleaved by restriction enzymes selected from among the restriction endonuclease, and the lengths of the obtained DNA fragments are compared against the restriction template resulting from digestion DNA of rabies virus field and "vaccine" strains in which the JW12 primer is used for amplification as defined by SEQ, No. 1 and the JW6DPL primer identified by the sequence SEQ. Well. 2, wherein the fragment of the gene encoding the rabies virus nucleoprotein corresponding to position 55-660 nt of the genome of the reference PV strain (Acc. No. M 13215) is amplified, and wherein the restriction enzymes are Dra I, Msp 1 or Nla IV. 10. Test diagnostyczny według zastrz. 6, znamienny tym, że enzym Dra I, rozpoznaje sekwencję TTT/AAA.10. A diagnostic test according to claim 1, The method of claim 6, wherein the Dra I enzyme recognizes the TTT / AAA sequence. 11. Test diagnostyczny według zastrz. 9, znamienny tym, że enzym Msp I, posiada miejsce restrykcyjne dla sekwencji C/CGG.11. A diagnostic test according to claim 1, The method of claim 9, wherein the enzyme Msp I has a restriction site for the C / CGG sequence. 12. Test diagnostyczny według zastrz. 9, znamienny tym, że enzym Nla IV, posiada miejsce restrykcyjne dla sekwencji GGN/NCC.12. A diagnostic test according to claim 1, 9. The process of claim 9, wherein the Nla IV enzyme has a restriction site for the GGN / NCC sequence. 13. Zastosowanie testu diagnostycznego określonego zastrzeżeniami 9 do 12 do różnicowania i identyfikacji szczepów „szczepionkowych” zawartych w doustnych szczepionkach przeciwko wściekliźnie dla lisów rudych używanych w akcjach doustnego uodparniania lisów oraz szczepów wirusa wścieklizny izolowanych od wściekłych zwierząt z terenu.13. Use of a diagnostic test as defined in claims 9 to 12 for the differentiation and identification of "vaccine" strains contained in oral rabies vaccines for red foxes used in the oral immunization of foxes and rabies virus strains isolated from rabid animals from the field.
PL410409A 2014-12-05 2014-12-05 Method for differentiation, diagnostic test for the differentiation of the rabies vaccine strains from its field strains and application of the diagnostic test PL235253B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL410409A PL235253B1 (en) 2014-12-05 2014-12-05 Method for differentiation, diagnostic test for the differentiation of the rabies vaccine strains from its field strains and application of the diagnostic test

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL410409A PL235253B1 (en) 2014-12-05 2014-12-05 Method for differentiation, diagnostic test for the differentiation of the rabies vaccine strains from its field strains and application of the diagnostic test

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL410409A1 PL410409A1 (en) 2016-06-06
PL235253B1 true PL235253B1 (en) 2020-06-15

Family

ID=56086985

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL410409A PL235253B1 (en) 2014-12-05 2014-12-05 Method for differentiation, diagnostic test for the differentiation of the rabies vaccine strains from its field strains and application of the diagnostic test

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL235253B1 (en)

Also Published As

Publication number Publication date
PL410409A1 (en) 2016-06-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Oura et al. Virological diagnosis of African swine fever—comparative study of available tests
US10100368B2 (en) Methods, kits, and compositions for detection of MRSA
US20030162197A1 (en) Method of detecting neoplastic or non-neoplastic cells
US10161005B2 (en) Method for detecting telomerase via washing-free anchored-extension and telomeric-binding amplification, and kit
JP6830087B2 (en) Methods for detecting CPV2A, 2B and 2C and methods for identifying wild type from vaccine type
CN102037140A (en) Method for determination of DNA methylation
WO2014019275A1 (en) Noninvasive detection of fetal health status
CN110438260B (en) African swine fever virus nucleic acid test strip detection kit
Halecker et al. Comparative evaluation of different antigen detection methods for the detection of peste des petits ruminants virus
CN101376909B (en) A segment of sequence and a restriction enzyme site for differentiating canine distemper viral vaccine strain and wild strain
AU2021103861A4 (en) Method and kit for differentially detecting porcine pseudorabies vaccine virus and wild virus
Gill et al. Comparative prevalence and molecular characterization of group A rotavirus in cow calves of Punjab, India
KR101236197B1 (en) Differential detection of West nile virus and Japanese encephalitis virus
CN102586485B (en) Real time-loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) detection primers for performing differential diagnosis on canine distemper virus wild strains and vaccine strains and application of primers
PL235253B1 (en) Method for differentiation, diagnostic test for the differentiation of the rabies vaccine strains from its field strains and application of the diagnostic test
US10227655B2 (en) Method for analyzing body fluid samples
KR20140024411A (en) Torque teno virus diagnostics
US20060210966A1 (en) Kits and methods for detecting bovine ephemeral fever virus
Hussin et al. An Overview of Laboratory Diagnosis of Central Nervous System Viral Infections
CA2865541A1 (en) Nucleic acid detection method
KR20200004267A (en) A composition and RT-qPCR based chip for detecting avian influenza viruses and method for detecting avian influenza viruses using the same
RU2241751C2 (en) Synthetic oligonucleotide-primers used for detection of dna of cattle infectious rhinotracheitis and pustular vulvovaginitis herpes virus type 1
RU2762759C1 (en) METHOD FOR SAMPLE PREPARATION OF SARS-CoV-2 CORONAVIRUS ISOLATES AND OLIGONUCLEOTIDE PRIMERS FOR ITS IMPLEMENTATION
CN110656190B (en) Multiple PCR detection kit for common bacterial disease pathogens of cattle
EP4056718B1 (en) Composition for detection of sars-cov-2 virus gene and covid-19 diagnosismethod using real-time rt-pcr