PL234915B1 - Sposób wykrywania zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki oraz zastosowania genotypowych wariantów genów GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3 - Google Patents

Sposób wykrywania zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki oraz zastosowania genotypowych wariantów genów GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3 Download PDF

Info

Publication number
PL234915B1
PL234915B1 PL414469A PL41446915A PL234915B1 PL 234915 B1 PL234915 B1 PL 234915B1 PL 414469 A PL414469 A PL 414469A PL 41446915 A PL41446915 A PL 41446915A PL 234915 B1 PL234915 B1 PL 234915B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
grhl2
grhl3
cancer
kidney cancer
grhl1
Prior art date
Application number
PL414469A
Other languages
English (en)
Other versions
PL414469A1 (pl
Inventor
Magdalena PAWLAK
K Mag Dalena Pawla
Agnieszka KIKULSKA
Agn Ieszka Kikulska
Tomasz Wilanowski
Owski Tomasz Wilan
Bartosz WILCZYŃSKI
Bartosz Wilczyński
Joanna WESOŁY
Joanna Wesoły
Original Assignee
Inst Biologii Doswiadczalnej Im M Nenckiego Polskiej Akademii Nauk
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Inst Biologii Doswiadczalnej Im M Nenckiego Polskiej Akademii Nauk filed Critical Inst Biologii Doswiadczalnej Im M Nenckiego Polskiej Akademii Nauk
Priority to PL414469A priority Critical patent/PL234915B1/pl
Priority to PCT/IB2015/059225 priority patent/WO2017068402A1/en
Publication of PL414469A1 publication Critical patent/PL414469A1/pl
Publication of PL234915B1 publication Critical patent/PL234915B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6883Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material
    • C12Q1/6886Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material for cancer
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/156Polymorphic or mutational markers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/158Expression markers

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Hospice & Palliative Care (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Zgłoszenie dotyczy metod identyfikacji polimorfizmów pojedynczego nukleotydu (ang. single nucleotide polymorphism - SNP) w genach GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3 oraz wykorzystania tych polimorfizmów jako markerów do określenia zwiększonej podatności pacjentów na zachorowanie na raka nerki.

Description

Opis wynalazku
Wynalazek dotyczy diagnostyki chorób nowotworowych, a w szczególności - wykrywania zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki u ludzi. Dokładniej, niniejszy wynalazek dotyczy metod identyfikacji osób ze zwiększonym ryzykiem zachorowania na raka nerki w oparciu o polimorfizmy pojedynczych nukleotydów występujące w genach Grainyhead-like 1 (GRHL1), Grainyhead-Iike 2 (GRHL2) i Grainyhead-like 3 (GRHL3). Niniejszy wynalazek może znaleźć zastosowanie w prognostycznych badaniach genetycznych, mających na celu wskazanie pacjentów ze zwiększonym ryzykiem zachorowania na raka nerki oraz w diagnostyce medycznej.
Rak jest chorobą, na którą każdego roku umiera ponad 8 milionów ludzi (dane Światowej Organizacji Zdrowia). Według American Cancer Society, rak nerki jest jednym z 10 najczęściej występujących rodzajów raka. Ryzyko zachorowania na raka nerki ocenia się na 1/63, czyli 1,6% ludzi (16 osób na 1000) w ciągu swojego życia zachoruje na raka nerki. Najczęściej występującą odmianą raka nerki jest rak jasnokomórkowy (ang. clear cell renal cell carcinoma - ccRCC). Stanowi on około 70% przypadków raka nerki.
W leczeniu raka jasnokomórkowego nerki dotychczas stosowana chemio- i radioterapia okazuje się nieskuteczna, a zaaprobowane związki o działaniu immunoterapeutycznym często wykazują szereg efektów ubocznych. Jeśli po chirurgicznym usunięciu zmiany nowotworowej następuje nawrót choroby, rokowania pacjentów nie są pomyślne. Gdy dochodzi do rozprzestrzenienia się nowotworu do węzłów chłonnych, szanse 5-letniego przeżycia chorych wynoszą od 5 do 15%. Jeżeli przerzuty dotyczą innych narządów, szanse przeżycia są mniejsze niż 5%. Pełną remisję udaje się uzyskać tylko w 12-20% przypadków (źródło: News-Medical.net). Istnieje zatem ogromna potrzeba poszukiwania nowych metod zwalczania tego typu nowotworu. Jak dotąd zidentyfikowano wiele potencjalnych markerów molekularnych raka RCC, żaden jednak nie został jak dotąd zwalidowany i wdrożony do praktyki klinicznej (Audenet et al, 2012).
Należy podkreślić, że rak nerki we wczesnych stadiach rozwoju może nie wywoływać żadnych objawów, dlatego wczesna diagnoza raka nerki jest bardzo trudna. W późniejszych etapach jego objawy są podobne do objawów innych chorób, takich jak kamienie nerkowe lub infekcje dróg moczowych. Te objawy to między innymi:
• zmęczenie • utrata apetytu • utrata wagi nie spowodowana odchudzaniem • podwyższona temperatura ciała nie spowodowana infekcją • anemia • obecność krwi w moczu (krwiomocz) • ból w dolnej części pleców nie spowodowany urazem • wyczuwalny guz w dolnej części pleców lub w boku
Świadomość zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki będzie bardzo pomocna we wczesnym diagnozowaniu tej choroby i może się przyczynić do ratowania życia wielu chorych. Identyfikacja polimorfizmów pojedynczego nukleotydu (ang. single nucleotide polymorphism - SNP) w regulatorowych sekwencjach genów GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3 może być użyteczna do określenia podwyższonego ryzyka rozwoju raka nerki.
Czynniki ryzyka zachorowania na raka nerki to między innymi:
• palenie papierosów • otyłość • narażenia w miejscu pracy na kontakt z niektórymi substancjami (kadm, niektóre herbicydy i rozpuszczalniki organiczne, takie jak trichloroeten) • czynniki genetyczne
Występowanie u danej osoby nietypowych wariantów genów, odpowiedzialnych za prawidłowe funkcjonowanie nerek, może przyczynić się do zwiększenia ryzyka rozwoju raka nerki. Przykładem tego jest gen VHL. Mutacje w tym genie wywołują chorobę von Hippla-Lindaua, zwaną też naczyniakowatością siatkówkowo-móżdżkową. Gen VHL jest supresorem nowotworów, który kontroluje tempo rozmnażania się komórek. Mutacje w tym genie mogą być dziedziczone od rodziców. Gdy gen VHL jest zmutowany, nie jest on już w stanie tłumić nieprawidłowego wzrostu komórek, co zwiększa ryzyko zachorowania na nowotwory nerki. Z ryzykiem zachorowania na raka nerki są także związane mutacje w innych genach, takich jak MET, FH, FLCN, SDHB i SDHC (Clague et al, 2009). Te mutacje charak
PL 234 915 B1 teryzują się wysokim stopniem penetracji co oznacza, że spośród osób z tymi mutacjami wysoki odsetek zapada na raka. Jednakże takie mutacje są rzadkie, więc prawdopodobnie większość przypadków raka nerki nie jest z nimi związana. Inne mutacje o niższej penetracji mogą występować z większą częstością w populacji ludzkiej i to one mogą być odpowiedzialne za większość przypadków raka nerki (Hemminki & Li, 2004). Do tej kategorii mogą należeć mutacje w genach GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3.
Czynniki transkrypcyjne z rodziny GRHL (Grainyhead-like) uczestniczą w wielu procesach biologicznych, takich jak:
• rozwój i funkcjonowanie naskórka;
• rozwój i funkcjonowanie różnych nabłonków;
• rozwój ośrodkowego układu nerwowego;
• rozwój ektodermy;
• pozytywna regulacja transkrypcji przez polimerazę RNA typu II.
Zmiany w poziomie ekspresji genów z rodziny GRHL są związane z rozwojem wielu nowotworów u ludzi, takich jak rak piersi (Werner et al, 2013), skóry (Darido et al, 2011), wątroby (Tanaka et al, 2008), żołądka (Xiang et al, 2013), jelita grubego (Quan et al, 2014) oraz w nerwiaku płodowym (Fabian et al, 2014). W większości przypadków rozwojowi nowotworu towarzyszy spadek ekspresji genów GRHL. Badania przy użyciu kultur tkankowych pokazały, że w wielu nowotworowych liniach komórkowych poziom ekspresji genów GRHL jest niższy niż w nienowotworowych liniach komórkowych otrzymanych z analogicznych tkanek. Wyciszenie ekspresji genów GRHL w nienowotworowych liniach komórkowych prowadzi często do nabierania przez komórki cech nowotworowych, zaś zwiększenie ekspresji genów GRHL w nowotworowych liniach komórkowych powoduje utratę przez komórki cech nowotworowych. Pokazały to badania dotyczące roli genu GRHL1 w nerwiaku płodowym (Fabian et al, 2014), genu GRHL2 w raku żołądka (Xiang et al, 2013) oraz genu GRHL2 w raku jelita grubego (Quan et al, 2014). Ponadto za pomocą modeli zwierzęcych wykazano, że geny z rodziny GRHL pełnią funkcje ochronne przed zachorowaniem na choroby nowotworowe. W modelach mysich wyciszenie ekspresji genów Grhll i Grhl3 zwiększa ryzyko zachorowania na raka skóry (Darido et al, 2011; Mlacki et al, 2014). Uzasadniona jest zatem hipoteza, że ludzie z obniżonym poziomem ekspresji genów z rodziny GRHL mogą mieć zwiększone ryzyko zachorowania na choroby nowotworowe.
W przypadku raka jasnokomórkowego nerki poniżej przedstawione przykłady wskazują na związek genów GRHL1, GRHL2 i GRHL3 z powstawaniem i rozwojem tego typu nowotworów u ludzi.
Publikacja Peyrard-Janvid i wsp. „Dominant Mutations in GRHL3 Cause Van der Woude Syndrome and Disrupt Oral Periderm Development” The American Journal of Human Genetics 2014; 94(1):23-32, dotyczy mutacji w genie GRHL3 u pacjentów z zespołem Van der Woude (rozszczep wargi i podniebienia) i nie odnosi się do raka nerki.
Publikacja Petrof i wsp. „Mutations in GRHL2 Result in an Autosomal-Recessive Ectodermal Dysplasia Syndrome” AJGH 2014; 95(3):308-314 dotyczy mutacji w genie GRHL2 u pacjentów z dysplazją ektodermalną i nie odnosi się do raka nerki.
Publikacja Lin i wsp. „The grainyhead-like 2 gene (GRHL2) single nucleotide polymorphism is not associated with age-related hearing impairment in Han Chinese” The Laryngoscope 2011; 121 (6):1303-1307 odnosi się do SNP w genie GRHL2 w kontekście utraty słuchu i nie odnosi się do raka nerki.
Publikacja Van Laer i wsp. „The grainyhead like 2 gene (GRHL2), alias TFCP2L3, is associated with age-related hearing impairment” Human Molecular Genetics 2008; 17(2):159-169, dotyczy SNP w genie GRHL2, ale wyłącznie w odniesieniu do głuchoty i nie odnosi się do raka.
Publikacja Peters i wsp. „Mutation of a transcription factor, TFCP2L3, causes progressive autosomal dominant hearing loss, DFNA28” Human Molecular Genetics 2002; 11 (23):2877-2885 dotyczy SNP w genie GRHL2, ale wyłącznie w odniesieniu do głuchoty i nie odnosi się do raka.
Publikacja Kamiyama i wsp. „Polymorphisms in the 3'UTR in the neurocalcin δ gene affect mRNA stability, and confer susceptibility to diabetic nephropathy”
Human Genetics 2007; 122(3-4):397-407 dotyczy SNP, ale tylko w odniesieniu do cukrzycy i nie odnosi się do raka.
Publikacja Bhandari i wsp. „The Grainyhead transcription factor Grhl3/Get1 suppresses miR-21 expression and tumorigenesis in skin: modulation of the miR-21 target MSH2 by RNA-binding protein DND1” Oncogene 32:1497-1507 dotyczy funkcjonalnej roli GRHL3 w raku skóry, ale bez odniesienia do SNP.
PL 234 915 B1
Publikacja Darido i wsp. „Targeting of the Tumor Suppressor GRHL3 by a miR-21-Dependent Proto-Oncogenic Network Results in PTEN Loss and Tumorigenesis” Cancer Cell 2011; 20(5):635-648 odnosi się do funkcjonalnej roli GRHL3 w raku skóry, ale bez odniesienia do SNP.
Publikacja Panis i wsp. „Putative circulating markers of the early and advanced stages of breast cancer identified by high-resolution label-free proteomics” Cancer Letters 2013 330(1 ):57-66 wspomina o GRHL3 w nowotworach, ale odnosi się wyłącznie do raka piersi i nie wspomina o SNP.
Międzynarodowy wniosek patentowy WO2013029116A1 dotyczy między innymi funkcjonalnej roli GRHL3 w raku skóry, ale nie odnosi się do SNP ani do raka nerki.
Celem wynalazku jest dostarczenie sposobu i narzędzi nadających się do wykorzystania w prewencyjnej diagnostyce dotyczącej chorób nowotworowych, a w szczególności - wykrywaniu zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki u ludzi. Szczególnym celem wynalazku jest umożliwienie identyfikacji osób ze zwiększonym ryzykiem zachorowania na raka nerki w oparciu o polimorfizmy pojedynczych nukleotydów. Nieoczekiwanie powyższy cel został osiągnięty w niniejszym wynalazku.
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest sposób wykrywania zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki u ludzi charakteryzujący się tym, że obejmuje:
a) badanie próbki biologicznej pobranej od pacjenta w celu określenia struktury co najmniej jednego genu wybranego spośród: GRHL1, GRHL2 oraz GRHL3, obejmujące ustalanie obecności polimorfizmów pojedynczego nukleotydu (SNP), metody identyfikacji osób ze zwiększonym ryzykiem zachorowania na raka nerki w oparciu o polimorfizmy pojedynczych nukleotydów występujące w genach GRHL1, GRHL2 i GRHL3. Metody wykrywania zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki charakteryzują się tym, że zawierają:
A) stwierdzenie zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki u ludzi w przypadku identyfikacji co najmniej jednego polimorfizmu pojedynczego nukleotydu (SNP) w obszarze regulatorowym genu GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3, występującego homozygotycznie lub heterozygotycznie w pozycji wymienionej w Tabeli 1 lub w Tabeli 2 lub w Tabeli 3.
PL 234 915 Β1
Tabela 1
Wykaz SNPów w sekwencjach promotorowych i regulatorowych genów GRHL u pacjentów z rakiem jasnokomórkowym nerki
chromosom gen pozycja rs liczba pacjenta w liczba alleli częstość w populacji EUR(1000 Genomes DB) £zę>fctśćw populacji badanej kienmek imianf częstości wartość P
1 GRHL3 24634151 rs4648973 16 18 0,17 0,310 + 0,00790
1 GRHL3 24636200 ra1O99285 18 23 0,53 0,397 - 0,0481
1 GRHL3 24641130 ra2763209 13 21 0,001 0,362 3,23x1043
1 GRHL3 24641134 8 12 0,001 0,207 8,55x10’27
1 GRHL3 24641157 rs368879958 3 3 0,001 0,0517 4- 2,96x105
1 GRHL3 24641169 rs150363797 8 13 0,001 0,224 + 3,03x10’27
1 GRHL3 24645854 rs115551059 3 3 0,01 0,0517 4- 0,0205
1 GRHL3 24663822 rs151171718 2 2 0,0013 0,0345 * 0,00266
1 GRHL3 24669794 rs3887581 8 9 0,3 0,155 - 0,0146
1 GRHL3 24671482 rs28722749 4 4 0,001 0,0690 + 4,06x107
1 GRHL3 24671485 rs28565954 2 3 0,001 0,0517 4* 2,96x105
1 GRHL3 24680665 rs12029270 8 9 0,3 0,155 - 0,0146
2 GRHŁ1 10085067 17 22 0,001 0,379 4- 5.43Χ10-51
2 GRHL1 10085217 6 6 0,001 0,103 4- 3,87x10'11
2 GRHL1 10086732 5 5 0,001 0,0862 4- 4,38χΐσ®
2 GRHL1 10087414 r$72784421 5 5 0,03 0,0862 4- 0,0299
2 GRHL1 10091422 rs115898376 1 1 0,23 0,0172 - 6,64x10®
2 GRHL1 10091465 rs533381656 3 5 0,001 0,0862 + 4,38x10®
2 GRHL1 10091472 rs4630741 24 41 0,52 0,707 4- 0,00534
2 GRHL1 10101945 rs4669512 23 45 0,91 0,776 - 0,00166
2 GRHL1 10126416 rs16867274 24 34 0,42 0,586 0,0114
2 GRHL1 10131078 rs1430621 5 5 0,23 0,0862 0,00734
2 GRHŁ1 10131094 r$ 1367388 4 4 0,23 0,0690 - 0,00254
2 GRHL1 10131122 rs 1367389 5 5 0,23 0,0862 0,00734
2 GRHL1 10138927 rs142706233 1 2 0,55 0,0345 1.96x10-17
2 GRHL1 10139017 rs2O1584869 3 6 0,001 0,103 3,87x1011
8 GRHL2 102494964 rs541189 29 48 0,65 0,828 0,00365
8 GRHŁ2 102495233 rs518898 29 50 0,73 0,862 0,0255
8 GRHL2 102495862 rs492289 29 50 0,73 0,862 + 0.0255
8 GRHL2 102495873 rs137856798 3 3 0,01 0,0517 + 0,0205
8 GRHL2 102497612 2 2 0,001 0,0345 4* 0,00159
8 GRHL2 102498493 rs60538573 3 3 0,001 0,0517 2,96x10-®
8 GRHL2 102499855 rs665572 10 11 0,33 0,190 - 0,0248
8 GRHL2 102501160 rs525132 8 8 0,29 0,138 0,00891
8 GRHL2 102501729 rs74764975 4 4 0,01 0,0690 4- 0,00276
8 GRHi-2 102502836 18 1B 0,001 0,310 + 4,33x1040
8 GRHL2 102503717 rs611419 8 8 0,26 0,138 0,0354
8 GRHL2 102506074 rs688324 25 46 0,92 0,793 0,00188
8 GRHL2 102508080 17 17 0,001 0,293 4- 1.90Χ10-37
8 GRHL2 102511670 rs554509 22 41 0,92 0,707 - 1,81x10-®
8 GRHL2 102512007 5 5 0,001 0,0862 4- 4,38x10®
8 GRHL2 102648952 6 6 0,001 0,103 4- 3,87χ10τ1
8 GRHL2 102649525 rs7017592 1 2 0,24 0,0345 - 3,84x10'5
Polimorfizmy oznaczone „+” występują w populacji pacjentów częściej niż w populacji europejskiej zaś rzadziej. Numeracja pozycji w kolumnie „pozycja” jest zgodna z annotacją GRCh37/hg19.
W jednym z korzystnych przykładów realizacji, rak jest jasnokomórkowym rakiem nerki.
W drugim z przykładów realizacji, rak jest innym typem raka nerki.
Korzystnie, w sposobie według wynalazku, obecność wariantu genotypowego wykrywana jest na podstawie analizy DNA, RNA lub białek.
Badania DNA, RNA lub białka mogą być przeprowadzone przy użyciu dowolnych metod pozwalających na identyfikację homozygotycznych lub heterozygotycznych SNP w sekwencji genomowej, genetycznej lub białkowej, w tym metodą Western biot za pomocą specyficznych przeciwciał, mikromacierzy SNP, SNP-RFLP (restriction fragment length polymorphism), dynamicznej hybrydyzacji spe
PL 234 915 B1 cyficznej dla alleli (dynamie allele-specific hybridization - DASH), latarni molekularnych (molecular beacons), sond typu TaqMan, wydłużania starterów (primer extension), spektrometria masowa typu MALDI-TOF (matrix-assisted laser desorption/ionization - time of flight), metody ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay) i podobne, test ligacji oligonukleotydów, polimorfizm konformacji pojedynczej nici DNA (single-strand conformation polymorphism), elektroforezę żelową w gradiencie temperaturowym (temperature gradient gel electrophoresis - TGGE), denaturującej wysokosprawnej chromatografii cieczowej (high performance liquid chromatography - HPLC), wysokorozdzielcze topnienie całego amplikonu (high resolution melting polymerase chain reaction - HRM PCR), SNPlex i/lub sekwencjonowanie nowej generacji (new generation sequencing - NGS) w materiale wyizolowanym z próbki tkanki lub krwi pobranej od pacjenta, przy czym co najmniej jeden z takich SNP obecny na statystycznie znaczącym poziomie wskazuje na zaburzenie funkcjonowania procesów zależnych od działania GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3.
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest zastosowanie co najmniej jednego polimorfizmu pojedynczego nukleotydu (SNP) wybranego spośród SNP wymienionych w Tabeli 1, Tabeli 2 lub Tabeli 3 jako markerów do określania in vitro zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki u ludzi.
Korzystnie, warianty genetyczne, zawierające polimorfizmy pojedynczych nukleotydów (SNP), zarówno homozygotyczne jak i heterozygotyczne, związane z rakiem nerki w genach Grainyhead-like 1 (GRHL1) i/lub Grainyhead-like 2 (GRHL2) i/lub Grainyhead-like 3 (GRHL3) lub ich produktach są wykrywane za pomocą analizy DNA, RNA lub białek.
W przykładowych realizacjach prowadzi się analizę próbek tkanki lub krwi pobranych od ludzkiego dawcy, w których co najmniej jeden z takich SNP jest obecny na statystycznie znaczącym poziomie co wskazuje na zaburzenie funkcjonowania procesów zależnych od działania GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3.
W jednym z przykładów realizacji, rak jest jasnokomórkowym rakiem nerki.
W drugim z przykładów realizacji, rak jest rakiem nerki innego typu.
Szczegółowy opis
Ujawniono polimorfizmy pojedynczych nukleotydów zidentyfikowane w sekwencjach regulatorowych oraz w sekwencjach kodujących genów GRHL1, GRHL2 i GRHL3 specyficzne dla pacjentów z rakiem jasnokomórkowym nerki. Ich obecność w sekwencji DNA może prowadzić do upośledzenia ekspresji genów GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3, i/lub funkcjonowania kodowanych przez nie białek GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3, a zatem może wywoływać zaburzenia w funkcjonowaniu ścieżek i szlaków przekazywania sygnału, w których uczestniczą produkty genów GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3.
Ujawniono metody służące do określania u pacjentów zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki, zwłaszcza typu jasnokomórkowego, w oparciu o identyfikację co najmniej jednego z wymienionych polimorfizmów pojedynczych nukleotydów w genach GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3.
Ponadto ujawniono zastosowanie metod określania u pacjentów zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki, w szczególności typu jasnokomórkowego, w oparciu o identyfikację co najmniej jednego z wymienionych polimorfizmów pojedynczych nukleotydów w genach GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3, w badaniach przesiewowych populacji ludzkiej w celu wykrywania osób ze zwiększonym ryzykiem zachorowania na raka nerki.
Opisano także sposób określania u pacjentów zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki, w szczególności typu jasnokomórkowego, w oparciu o identyfikację co najmniej jednego z wymienionych polimorfizmów pojedynczych nukleotydów w genach GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3 w populacyjnych programach profilaktyki i wczesnego wykrywania zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki.
Istota niniejszego wynalazku została zilustrowana przykładami, które nie wyczerpują wszystkich możliwości realizacji wynalazku. W ramach rutynowych prac laboratoryjnych można wprowadzić liczne zmiany lub warianty stosowanych procedur, które mieszczą się jednak w zakresie niniejszego wynalazku, zdefiniowanym w załączonych zastrzeżeniach.
P r z y k ł a d 1
Identyfikacja polimorfizmów pojedynczych nukleotydów charakterystycznych dla pacjentów z rakiem nerki.
Rakowe zmiany nerki wraz z marginesem zdrowej tkanki zostały usunięte chirurgicznie i poddane wstępnej ocenie patologicznej. Fragmenty tkanki nowotworowej oraz tkanki zdrowej z marginesu wyciętej zmiany zostały pobrane od 29 pacjentów z jasnokomórkowym rakiem nerki. Tkanki przecho
PL 234 915 B1 wywano w temperaturze -80°C do czasu przeprowadzenia analizy. Następnie, za pomocą zestawu do izolacji DNA (DNeasy Blood & Tissue Kit, Qiagen) wyizolowano genomowe DNA. Wzbogacenie próbek w wybrane sekwencje docelowe przeprowadzono za pomocą indywidualnie zaprojektowanego zestawu HaloPlex (Agilent) i tak przygotowaną bibliotekę DNA zawierającą fragmenty genów GRHL1, GRHL2 i GRHL3 poddano ukierunkowanemu głębokiemu sekwencjonowaniu nowej generacji w systemie MiSeq (Illumina).
Inne znane metody, które mogą zostać wykorzystane do wykrywania obecności polimorfizmów w sekwencji genów GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3 z tkanek bądź płynów ustrojowych pobranych od pacjentów obejmują, ale nie są ograniczone do: Western blot za pomocą specyficznych przeciwciał, mikromacierze SNP, SNP-RFLP (restriction fragment length polymorphism), dynamiczna hybrydyzacja specyficzna dla alleli (dynamic allele-specific hybridization - DASH), latarnie molekularne (molecular beacons), sondy typu TaqMan, wydłużanie starterów (primer extension), spektrometria mas typu MALDI-TOF (matrix-assisted laser desorption/ionization - time of flight), metody ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay) i podobne, test ligacji oligonukleotydów, polimorfizm konformacji pojedynczej nici DNA (single-strand conformation polymorphism), elektroforeza żelowa w gradiencie temperaturowym (temperature gradient gel electrophoresis - TGGE), denaturująca wysokosprawna chromatografia cieczowa (high performance liquid chromatography - HPLC), wysokorozdzielcze topnienie całego amplikonu (high resolution melting polymerase chain reaction - HRM PCR), SNPlex i/lub sekwencjonowanie nowej generacji (new generation sequencing - NGS) oraz trawienie restrykcyjne poprzedzone reakcją PCR.
P r z y k ł a d 2
Analiza częstości i korelacja występowania alleli w badanej populacji
Częstość występowania polimorfizmów pojedynczych nukleotydów w grupie pacjentów z rakiem nerki porównano do częstości ich występowania w populacji europejskiej na podstawie danych z bazy 1000Genomes. Do określenia statystycznej istotności odchyleń (przy poziomie istotności p < 0,05) dla częstości występowania SNP w badanej populacji zastosowano test dwumianowy. Rozkład SNP o odmiennej częstości występowania w badanej grupie pacjentów przedstawia Manhattan Plot (Fig. 1).
Na podstawie wyżej opisanej analizy wytypowano polimorfizmy pojedynczych nukleotydów w sekwencjach regulatorowych genów GRHL1, GRHL2 i GRHL3, które występują w populacji badanych pacjentów z rakiem nerki ze statystycznie istotnie zmienioną częstością niż w populacji europejskiej. Opisywane polimorfizmy pojedynczych nukleotydów pokazano w Tabeli 1, Tabeli 2 oraz w Tabeli 3.
P r z y k ł a d 3
Zmiany poziomu ekspresji genów GRHL w jasnokomórkowych rakach nerki
Czynniki transkrypcyjne z rodziny GRHL są ewolucyjnie zachowaną, tkankowo-specyficzną grupą białek. Ich rola sprowadza się do regulacji transkrypcji (poprzez aktywację lub represję) genów istotnych dla utrzymania właściwej struktury i funkcji nabłonka. Kontrolują one ekspresję m.in. takic h genów jak: DSG1, CDH1, RAB25, CLDN3 i CLDN4, geny z kompleksu EDC, hTERT oraz PCNA. Zaburzenia w poziomie ekspresji genów GRHL mogą być pośrednio powiązane z wieloma chorobami nerki i mogą sprzyjać nowotworzeniu.
RNA wyizolowano z tkanki nowotworowej oraz tkanki zdrowej pobranej z marginesu wyciętej zmiany, przy użyciu moździerza oraz zestawu GeneMATRIX Universal RNA Purification Kit (Euryx). Odwrotną transkrypcję przeprowadzono dla 250 ng mRNA z pomocą RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit (Thermo Scientific). Detekcję zmian poziomu ekspresji w tkance nowotworowej w odniesieniu do tkanki zdrowej danego pacjenta przeprowadzono za pomocą odczynników Thermo Scientific: Maxima™ SYBR Green/ROX qPCR Master Mix:
PL 234 915 Β1
Gen Sekwencje starterów PCR
GRHL1 Forward: CAGCGACCAAAGCGATGATGA Reverse: GGGGAAGGACAATGTTAAATGGC
GRHL2 Forward: TCAATACCCGAAGAGCCTACA Reverse: CTTGGCTGTCACTTGCTTTGC
GRHL3 Forward: CAGAGACTGACCTGGAGACG Reverse: AGGCTCAAACTCCTCAGTGAA
HPRT Forward: ACCAGTCAACAGGGGACATAA Reverse: CTTCGTGGGGTCCI I IICACC
Reakcję ilościowego PGR w czasie rzeczywistym (ang. Quantitative Real-Time POR - O-RT-PCR) przeprowadzono w systemie Eco lllumina. W próbkach jasnokomórkowego raka nerki zaobserwowano spadek poziomu ekspresji genów GRHL1 i GRHL2, w porównaniu z okalającą guzy zdrową tkanką (Fig. 2).
Zastosowanie: Spadek poziomu ekspresji genów GRHL molekularnym znacznikiem raka nerki.
Wpływ polimorfizmów pojedynczych nukleotydów na poziom ekspresji genów GRHL w rakach nerki
Regulacja ekspresji genów jest procesem złożonym i zależy od wielu czynników. Co więcej, każdy z etapów ekspresji genów może być regulowany za pomocą różnych mechanizmów. Ekspresja genów GRHL w komórkach nerki zależy od rodzaju komórek oraz od ich stanu metabolicznego i fizjologicznego.
a) Polimorfizmy pojedynczych nukleotydów w sekwencjach promotorowych i regulatorowych
Sekwencjonowanie nowej generacji genów GRHL pozwoliło na wskazanie polimorfizmów pojedynczych nukleotydów w regionach promotorowych i regulatorowych genów GRHL u pacjentów z rakiem nerki (Tabela 1). Na podstawie przygotowanej analizy Manhattan Plot (opisano wcześniej) wskazano polimorfizmy pojedynczych nukleotydów, które mogą być powiązane ze zwiększonym ryzykiem zachorowania na raka nerki. Zmiana częstości ich występowania w populacji badanych pacjentów z jasnokomórkowym rakiem nerki w porównaniu z populacją europejską była statystycznie istotna.
Sens biologiczny
Obecność polimorfizmów pojedynczych nukleotydów w sekwencji rozpoznawanej przez czynniki transkrypcyjne może prowadzić do utraty, osłabienia, wzmocnienia lub utworzenia miejsca wiązania białko/DNA, co w konsekwencji prowadzi do zmian w poziomie ekspresji genów.
b) Polimorfizmy pojedynczych nukleotydów w regionach 3’UTR genów GRHL
U pacjentów z jasnokomórkowym rakiem nerki zaobserwowano spadek poziomu ekspresji genów GRHL1 i GRHL2. Poziom ekspresji genów może zależeć od regulacji przez mikroRNA (miRNA). Cząsteczki miRNA regulują poziom ekspresji genów poprzez wiązanie się do specyficznych 7-nukleotydowych sekwencji w obszarze 3’UTR (ang. UnTranslated Region - region nie ulegający translacji) cząsteczek mRNA. Poprzez obniżenie efektywności translacji informacji genetycznej do białka, dochodzi do wyciszenia poziomu ekspresji genu. Zaburzenie regulacji poziomu ekspresji genów może mieć kluczowe znaczenie w procesie nowotworżenia. Jedną z przyczyn zaburzenia interakcji miRNA/mRNA może być obecność polimorfizmów pojedynczych nukleotydów w sekwencji 3’UTR. W efekcie może dochodzić do likwidacji istniejących lub tworzenia nowych specyficznych 6-8-nukleotydowych sekwencji rozpoznawanych przez miRNA i w efekcie do niepożądanego podwyższenia lub obniżenia poziomu ekspresji danego genu. Sekwencjonowanie nowej generacji genów GRHL pozwoliło na wskazanie polimorfizmów pojedynczych nukleotydów u pacjentów z rakiem nerki w regionach 3’UTR genów GRHL. Na podstawie przygotowanej analizy Manhattan Plot wskazano polimorfizmy pojedynczych nukleotydów, które mogą być powiązane ze zwiększonym ryzykiem zachorowania na raka nerki. Zmiana częstości ich występowania w populacji badanych pacjentów z jasnokomórkowym rakiem nerki w porównaniu z populacją europejską była statystycznie istotna.
PL 234 915 Β1
Tabela 2
Wykaz SNPów w sekwencjach 3’UTR genów GRHL u pacjentów z rakiem jasnokomórkowym nerki
chromosom ęen pozycja rs liczba pacjentów liczba alleli częstość w populacji EUR (1000 Genomes OB) częstość* populacji badanej kierunek zmiany częstości wartość P
8 GRHL2 102681482 rs7820879 12 12 0,001 0,207 8,54x10’25
8 GRHL2 102681820 rs11342848 4 4 0,001 0,0690 + 4,06x10'7
8 GRHL2 102681857 13 15 0,001 0,259 + 2,86x10'32
Polimorfizmy oznaczone „+” występują w populacji pacjentów częściej niż w populacji europejskiej zaś rzadziej. Numeracja pozycji w kolumnie „pozycja” jest zgodna z annotacją GRCh37/hg19.
Sens biologiczny
Obecność polimorfizmów pojedynczych nukleotydów w sekwencji rozpoznawanej przez miRNA może prowadzić do utraty, osłabienia, wzmocnienia lub utworzenia miejsca wiązania miRNA/mRNA.
c) Polimorfizmy pojedynczych nukleotydów w obszarach kodujących genów GRHL
Czynnik transkrypcyjny GRHL3 bezpośrednio pozytywnie reguluje ekspresję genu PTEN, którego produkt białkowy jest inhibitorem szlaku PI3K/AKT/mTOR (Darido et al, 2011). Jednym z przedmiotów niniejszego zgłoszenia jest polimorfizm pojedynczego nukleotydu zidentyfikowany w sekwencji kodującej genu GRHL3 i specyficzny dla pacjentów z rakiem jasnokomórkowym nerki. Jego obecność w sekwencji DNA może prowadzić do upośledzenia funkcji białka GRHL3, a zatem może wpływać na obniżanie aktywności białka PTEN i aktywację szlaku PI3K/AKT/mTOR, który sprzyja proliferacji komórek i rozwojowi nowotworów. Według bazy danych UCSC ten polimorfizm znajduje się we wszystkich wariantach alternatywnego składania transkryptu GRHL3, które kodują białko (http://genome.ucsc.edu). Zatem obecność tego polimorfizmu prowadzi do zmiany sekwencji aminokwasowej i potencjalnie może wpływać na prawidłowe funkcjonowanie wszystkich izoform białka GRHL3. Co więcej, reszta aminokwasowa, w kodonie której zlokalizowany jest ten polimorfizm, znajduje się w motywie potencjalnie rozpoznawanym przez kinazy białkowe takie jak GSK-33, ERK1, ERK2 oraz CDK5 (http://kinasephos.mbc.nctu.edu.tw/). Jest bardzo wysoce prawdopodobne, że fosforylacja białka GRHL3 przez te kinazy jest kluczowa dla jego prawidłowego funkcjonowania.
Tabela 3
Wykaz SNPów w sekwencjach kodujących genów GRHL u pacjentów z rakiem jasnokomórkowym nerki
chromosom gen pozycja rs liczba pacjentów liczba alleli częstość w populacji EUR (1000 Genomes DB) częstość w populacji badanej kierunek zmiany częstości wartość P
1 GRHL3 24669457 rs41268753 5 5 0,03 0,0862 0,0299
Polimorfizmy oznaczone „+” występują w populacji pacjentów częściej niż w populacji europejskiej zaś rzadziej. Numeracja pozycji w kolumnie „pozycja” jest zgodna z annotacją GRCh37/hg19.
Sens biologiczny
Obecność polimorfizmu rs41268753 powoduje utratę miejsca fosforylacji białka GRHL3. Konsekwencje molekularne opisywanego polimorfizmu pojedynczego nukleotydu na modyfikacje potranslacyjne i funkcjonowanie białka GRHL3 są przedmiotem dalszych badań autorów patentu.
PL 234 915 B1
Literatura:
Audenet F, Yates DR, Cancel-Tassin G, Cussenot O, Roupret M (2012) Genetic pathways involved in carcinogenesis of clear cell renal cell carcinoma: genomics towards personalized medicine. BJU international 109: 1864-1870
Clague J, Lin J, Cassidy A, Matin S, Tannir NM, Tamboli P, Wood CG, Wu X (2009) Family history and risk of renal cell carcinoma: results from a case-control study and systematic meta-analysis. Cancer epidemiology, biomarkers & prevention: a publication of the American Association for Cancer Research, cosponsored by the American Society of Preventive Oncology 18: 801-807
Darido C, Georgy SR, Wilanowski T, Dworkin S, Auden A, Zhao Q, Rank G, Srivastava S, Finlay MJ, Papenfuss AT, Pandolfi PP, Pearson RB, Jane SM (2011) Targeting of the Tumor Suppressor GRHL3 by a miR-21 -Dependent Proto-Oncogenic Network Results in PTEN Loss and Tumorigenesis. Cancer Cell 20: 635-648
Fabian J, Lodrini M, Oehme I, Schier MC, Thole TM, Hielscher T, Kopp-Schneider A, Opitz L, Capper D, von Deimling A, Wiegand I, Milde T, Mahlknecht U, Westermann F, Popanda O, Roels F, Hero B, Berthold F, Fischer M, Kulozik AE, Witt O, Deubzer HE (2014) GRHL1 Acts as Tumor Suppressor in Neuroblastoma and Is Negatively Regulated by MYCN and HDAC3. Cancer Res 74: 2604-2616
Hemminki K, Li X (2004) Familial renal cell cancer appears to have a recessive component. Journal of medical genetics 41: e58
Mlacki M, Darido C, Jane SM, Wilanowski T (2014) Loss of Grainy head-like 1 is associated with disruption of the epidermal barrier and squamous cell carcinoma of the skin. PloS one 9: e89247
Quan Y, Jin R, Huang A, Zhao H, Feng B, Zang L, Zheng M (2014) Downregulation of GRHL2 inhibits the proliferation of colorectal cancer cells by targeting ZEB1. Cancer biology & therapy 15: 878-887
Tanaka Y, Kanai F, Tada M, Tateishi R, Sanada M, Nannya Y, Ohta M, Asaoka Y, Seto M, Shiina S, Yoshida H, Kawabe T, Yokosuka O, Ogawa S, Omata M (2008) Gain of GRHL2 is associated with early recurrence of hepatocellular carcinoma. J Hepatol 49: 746-757
Werner S, Frey S, Riethdorf S, Schulze C, Alawi M, Kling L, Vafaizadeh V, Sauter G, Terracciano L, Schumacher U, Pantel K, Assmann V (2013) Dual roles of the transcription factor grainyhead-like 2 (GRHL2) in breast cancer. J Biol Chem 288: 22993-23008
Xiang J, Fu X, Ran W, Chen X, Hang Z, Mao H, Wang Z (2013) Expression and role of grainyhead-like 2 in gastric cancer. Medical oncology 30: 714

Claims (6)

1. Sposób wykrywania zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki u ludzi, znamienny tym, że obejmuje:
a) badanie próbki biologicznej pobranej od pacjenta w celu określenia struktury co najmniej jednego genu wybranego spośród: GRHL1, GRHL2 oraz GRHL3, obejmujące ustalanie obecności polimorfizmów pojedynczego nukleotydu (SNP),
b) stwierdzenie zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki u ludzi w przypadku identyfikacji co najmniej jednego polimorfizmu pojedynczego nukleotydu (SNP) wybranego spośród SNP wymienionych w Tabeli 1, Tabeli 2 lub Tabeli 3.
2. Sposób według zastrzeżenia 1, w którym rak jest jasnokomórkowym rakiem nerki.
3. Sposób według zastrzeżenia 1, w którym obecność SNP jest wykrywana za pomocą analizy DNA, RNA lub białek.
4. Zastosowanie co najmniej jednego polimorfizmu pojedynczego nukleotydu (SNP) wybranego spośród SNP wymienionych w Tabeli 1, Tabeli 2 lub Tabeli 3 jako markera do określania in vitro zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki u ludzi.
5. Zastosowanie według zastrzeżenia 4, w którym warianty genetyczne, zawierające polimorfizmy pojedynczych nukleotydów (SNP), zarówno homozygotyczne jak i heterozygotyczne, związane z rakiem nerki w genach Grainyhead-like 1 (GRHL1) i/lub Grainyhead-like 2 (GRHL2) i/lub Grainyhead-like 3 (GRHL3) lub ich produktach są wykrywane za pomocą analizy DNA, RNA lub białek.
6. Zastosowanie według zastrzeżenia 4, w którym rak jest jasnokomórkowym rakiem nerki.
PL414469A 2015-10-23 2015-10-23 Sposób wykrywania zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki oraz zastosowania genotypowych wariantów genów GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3 PL234915B1 (pl)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL414469A PL234915B1 (pl) 2015-10-23 2015-10-23 Sposób wykrywania zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki oraz zastosowania genotypowych wariantów genów GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3
PCT/IB2015/059225 WO2017068402A1 (en) 2015-10-23 2015-11-30 A method for detecting an increased risk of kidney cancer and the use of genotype variants of genes grhl1 and / or grhl2 and / or grhl3

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL414469A PL234915B1 (pl) 2015-10-23 2015-10-23 Sposób wykrywania zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki oraz zastosowania genotypowych wariantów genów GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL414469A1 PL414469A1 (pl) 2017-04-24
PL234915B1 true PL234915B1 (pl) 2020-05-18

Family

ID=55359545

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL414469A PL234915B1 (pl) 2015-10-23 2015-10-23 Sposób wykrywania zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki oraz zastosowania genotypowych wariantów genów GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3

Country Status (2)

Country Link
PL (1) PL234915B1 (pl)
WO (1) WO2017068402A1 (pl)

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2005024603A2 (en) * 2003-09-10 2005-03-17 The Board Of Regents Of The University Of Texas System Methods for detecting, diagnosing and treating human renal cell carcinoma
WO2013029116A1 (en) 2011-08-31 2013-03-07 Monash University Method for predicting treatment responsiveness
WO2015093998A1 (en) * 2013-12-19 2015-06-25 Instytut Biologii Doświadczalnej Im. M. Nenckiego Polskiej Akademii Nauk A method for detecting an increased risk of developing skin cancer and a use of a genotype variant of the grhl3 gene

Also Published As

Publication number Publication date
PL414469A1 (pl) 2017-04-24
WO2017068402A1 (en) 2017-04-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Danielsen et al. Portrait of the PI3K/AKT pathway in colorectal cancer
Shih et al. Promoter methylation of the secreted frizzled‐related protein 1 gene SFRP1 is frequent in hepatocellular carcinoma
Pavlidou et al. Diagnostic significance and prognostic role of the ARID1A gene in cancer outcomes
Catanzaro et al. The miR‐139‐5p regulates proliferation of supratentorial paediatric low‐grade gliomas by targeting the PI3K/AKT/mTORC1 signalling
Ibragimova et al. A global profile of gene promoter methylation in treatment-naive urothelial cancer
Molnár et al. Circulating cell-free nucleic acids as biomarkers in colorectal cancer screening and diagnosis-an update
Zhao et al. The rs6983267 SNP and long non‐coding RNA CARLo‐5 are associated with endometrial carcinoma
Yan et al. RUNX3 methylation as a predictor for disease progression in patients with non‐muscle‐invasive bladder cancer
Barros-Filho et al. Oncogenic drivers in 11q13 associated with prognosis and response to therapy in advanced oropharyngeal carcinomas
Vashist et al. Heme oxygenase‐1 germ line GTn promoter polymorphism is an independent prognosticator of tumor recurrence and survival in pancreatic cancer
Jia et al. CeRNA expression profiling identifies KIT-related circRNA-miRNA-mRNA networks in gastrointestinal stromal tumour
Wang et al. Effects of KRAS mutation and polymorphism on the risk and prognosis of oral squamous cell carcinoma
Thomas et al. Molecular heterogeneity in malignant peripheral nerve sheath tumors associated with neurofibromatosis type 1
Zhang et al. Up-regulation of CRKL by microRNA-335 methylation is associated with poor prognosis in gastric cancer
US20210238696A1 (en) Biomarkers for the Identification of Prostate Cancer and Methods of Use
Li et al. Promoter hypermethylation of DNA damage response genes in hepatocellular carcinoma
Sung et al. Integrative analysis of copy number alteration and gene expression profiling in ovarian clear cell adenocarcinoma
Yu et al. Application of RUNX3 gene promoter methylation in the diagnosis of non-small cell lung cancer
Park et al. TAGLN expression is upregulated in NF1-associated malignant peripheral nerve sheath tumors by hypomethylation in its promoter and subpromoter regions
KR20180108820A (ko) 암 후생유전적 프로파일링
Kutilin Regulation of gene expression of cancer/testis antigens in colorectal cancer patients
US10000816B2 (en) Method for detecting an increased risk of developing skin cancer and a use of a genotype variant of the GRHL3 gene
Chiacchiarini et al. Role of tissue and circulating microRNAs and DNA as biomarkers in medullary thyroid cancer
Kanabe et al. Expression patterns of LncRNA-GAS5 and its target APOBEC3C gene through miR-103 in breast cancer patients
Samir et al. Competing endogenous RNA network crosstalk reveals novel molecular markers in colorectal cancer