PL233335B1 - Sposób stymulacji roślin zdrewniałych - Google Patents
Sposób stymulacji roślin zdrewniałychInfo
- Publication number
- PL233335B1 PL233335B1 PL428466A PL42846618A PL233335B1 PL 233335 B1 PL233335 B1 PL 233335B1 PL 428466 A PL428466 A PL 428466A PL 42846618 A PL42846618 A PL 42846618A PL 233335 B1 PL233335 B1 PL 233335B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- shoots
- plasma
- reactor
- roots
- woody plants
- Prior art date
Links
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02P—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
- Y02P60/00—Technologies relating to agriculture, livestock or agroalimentary industries
- Y02P60/14—Measures for saving energy, e.g. in green houses
Landscapes
- Electrotherapy Devices (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
Sposób stymulacji roślin zdrewniałych charakteryzuje się tym, że do reaktora typu glidearc o częstotliwości od 10 do 200 Hz i o napięciu od 3,7 do 18 kV podaje się gaz procesowy i po przejściu przez łuk elektryczny kieruje się strumień gazu opuszczający reaktor na pędy roślin zdrewniałych umieszczone na podajniku przez okres od 60 do 300 s.
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób stymulacji roślin zdrewniałych, który to sposób poprawia przyrost korzeni i tworzenie kallusa.
W dokumencie patentowym nr RU2016122792 (A) pt. METHOD FOR ROOT FORMATION STIMULATION OF VITIS AMURENSIS GRAPE CUTTINGS opisano stymulację ukorzeniania winorośli dzięki zanurzeniu obciętych pędów w roztworze, w którym zanurzono elektrody bimetaliczne, zawierającym jony srebra i miedzi.
Zastosowanie elektrod stałego napięcia umieszczonych w ziemi w celu poprawy wzrostu korzeni przedstawiono w dokumencie patentowym nr DE2841933 (A1) pt. ELECTRICAL STIMULATION FOR CELL GROWTH PROMOTION - BY APPLYING DIRECT CURRENT IN PULSES OR WITH CONTINUOUS POLARITY CHANGES, TO ROOT AREA OR TO MEDIA CONTG. NUTRIENTS.
Wykorzystywano emulsje zawierające wyciągi z Abies Sibirica w celu ochrony przed grzybami oraz stymulacji ukorzeniania w dokumencie patentowym nr RU2010124306 (A) pt. SIBERIA FIR EMULSIVE AGENT FOR DISEASE CONTROL, GROWTH STIMULATION AND ROOTFORMATION OF GRAIN, VEGETABLE AND ORNAMENTAL PLANTS ON OPEN AND CLOSED GROUND.
Użyto oprysków nasion oraz roślin roztworem zawierającym glicynę do stymulacji wzrostu korzenia buraka cukrowego w dokumencie patentowym nr RU2337544 (C1) pt. METHOD OF STIMULATION OF SUGAR BEET ROOT GROWTH AND DEVELOPMENT.
W dokumencie patentowym nr US5883048 (A) pt. THIOL STIMULATION OF ROOT FORMATION oraz w dokumencie patentowym nr AU4344199 (A) pt. THIOL ACTIVATION OF CYTOTOXIC AGENTS AND ROOT FORMATION STIMULATION zastosowano tiol do zwiększenia przyrostu korzeni.
W dokumencie patentowym nr BG50628(A1) pt. DEVICE FOR ROOT - FORMATION STIMULATION zastosowano mieszankę zawierającą kwasy tłuszczowe zawierające idol oraz witaminę K3 do rozmnażania wegetatywnego drzew wiśni i moreli.
Znany jest reaktor plazmowy typu glidarc pracujący pod ciśnieniem atmosferycznym z użyciem gazu procesowego w postaci azotu lub powietrza opisany w publikacji Mazurek P., Pawłat J., Kwiatkowski M., Badanie zaburzeń przewodzących w torze zasilania reaktorów DBD i GlidArc, Przegląd Elektrotechniczny 2015, 11, strony 50-53.
Celem wynalazku jest stymulacja roślin zdrewniałych zwiększająca przyrost korzeni i tworzenie kallusa metodą elektrotechniczną przy użyciu nietermicznej plazmy atmosferycznej.
Istotą sposobu stymulacji roślin zdrewniałych jest to, że do reaktora typu glidearc o częstotliwości od 10 do 200 Hz i o napięciu od 3,7 do 18 kV podaje się gaz procesowy i po przejściu przez łuk elektryczny kieruje się strumień gazu opuszczający reaktor na pędy roślin zdrewniałych umieszczone na podajniku przez okres od 60 do 300 s.
Korzystnie gazem procesowym jest azot albo powietrze.
Korzystnym skutkiem sposobu według wynalazku wykorzystującego jest poprawa procesu ukorzeniania wynikająca ze zwiększenia masy oraz długości wytworzonych korzeni a także zwiększenie przyrostu kallusa wpływające pozytywnie na proces gojenia ran roślin po zabiegach pielęgnacyjnych. Dodatkowym korzystnym skutkiem jest dekontaminacja mikrobiologiczna wpływająca na redukcję chorobotwórczej mikroflory, co w konsekwencji ogranicza infekcje roślin. Stymulacja plazmowa pozwala na ograniczenie ilości stosowanych w rolnictwie środków chemicznych, przez co jest przyjazna dla środowiska. Proponowany sposób obróbki plazmowej daje w perspektywie realne oszczędności ekonomiczne oraz przyczynia się do poprawy jakości oferowanych na rynku produktów roślinnych.
P r z y k ł a d 1
Stymulację młodych pędów zdrewniałych Salix babylonica cv. Tortuosa pobranych wiosną, naciętych i przygotowanych zgodnie z praktyką szkółkarską przeprowadzono w następujący sposób: do reaktora typu glidarc zasilanego prądem o zadanej częstotliwości i zadanym napięciu podano azot o przepływie od 1 do 30 l/min i skierowano strumień gazu opuszczającego reaktor na powierzchnię boczną pędów zdrewniałych umieszczonych na podajniku przez zadany czas. Następnie pędy stymulowane plazmą oraz kombinacja kontrolna zostały poddane ukorzenianiu w szklanych naczyniach z wodą w warunkach fitotronowych w temperaturze pokojowej. Przed stymulacją plazmową oraz po okresie 4 tygodni od zastosowania plazmy zważono pędy zaś długość powstających korzeni została zmierzona po okresie kontrolnym. Wykonano 4 powtórzenia.
Zadane parametry oraz dane biometryczne korzeni i pędów Salix babylonica cv. Tortuosa dla azotu podano w Tabeli 1.
PL 233 335 B1
P r z y k ł a d 2
Stymulację młodych pędów zdrewniałych Salix babylonica cv. Tortuosa pobranych wiosną, naciętych i przygotowanych zgodnie z praktyką szkółkarską przeprowadzono w następujący sposób: do reaktora typu glidarc zasilanego prądem o zadanej częstotliwości i zadanym napięciu podano powietrze o przepływie od 1 do 30 l/min i skierowano strumień gazu opuszczającego reaktor na powierzchnię boczną pędów zdrewniałych umieszczonych na podajniku przez zadany czas. Następnie pędy stymulowane plazmą oraz kombinacja kontrolna zostały poddane ukorzenianiu w szklanych naczyniach z wodą w warunkach fitotronowych w temperaturze pokojowej. Przed stymulacją plazmową oraz po okresie 4 tygodni od zastosowania plazmy zważono pędy zaś długość powstających korzeni została zmierzona po okresie kontrolnym. Wykonano 4 powtórzenia.
Zadane parametry oraz dane biometryczne korzeni i pędów Salix babylonica cv. Tortuosa dla powietrza podano w Tabeli 2.
P r z y k ł a d 3
Stymulację młodych pędów zdrewniałych Salix phyllicifolia pobranych wiosną, naciętych i przygotowanych zgodnie z praktyką szkółkarską przeprowadzono w następujący sposób: do reaktora typu glidarc zasilanego prądem o zadanej częstotliwości i zadanym napięciu podano azot o przepływie od 1 do 30 l/min i skierowano strumień gazu opuszczającego reaktor na powierzchnię boczną pędów zdrewniałych umieszczonych na podajniku przez zadany czas. Następnie pędy stymulowane plazmą oraz kombinacja kontrolna zostały poddane ukorzenianiu w szklanych naczyniach z wodą w warunkach fitotronowych w temperaturze pokojowej. Przed stymulacją plazmową oraz po okresie 4 tygodni od zastosowania plazmy zważono pędy zaś długość powstających korzeni została zmierzona po okresie kontrolnym. Wykonano 4 powtórzenia.
Zadane parametry oraz dane biometryczne korzeni i pędów Salix phyllicifolia dla azotu podano w Tabeli 3.
P r z y k ł a d 4
Stymulację młodych pędów zdrewniałych Salix phyllicifolia pobranych wiosną, naciętych i przygotowanych zgodnie z praktyką szkółkarską przeprowadzono w następujący sposób: do reaktora typu glidarc zasilanego prądem o zadanej częstotliwości i zadanym napięciu podano powietrze o przepływie od 1 do 30 l/min i skierowano strumień gazu opuszczającego reaktor na powierzchnię boczną pędów zdrewniałych umieszczonych na podajniku przez zadany czas. Następnie pędy stymulowane plazmą oraz kombinacja kontrolna zostały poddane ukorzenianiu w szklanych naczyniach z wodą w warunkach fitotronowych w temperaturze pokojowej. Przed stymulacją plazmową oraz po okresie 4 tygodni od zastosowania plazmy zważono pędy zaś długość powstających korzeni została zmierzona po okresie kontrolnym. Wykonano 4 powtórzenia.
Zadane parametry oraz dane biometryczne korzeni i pędów Salix phyllicifolia dla powietrza podano w Tabeli 4.
PL 233 335 Β1
| Tabela 1. Parametry oraz dane biometryczne korzeni i pędów dla pierwszego przykładu wykonania. | Średnia masa sadzonek 28 dni po plazmowaniu [g] | 4,63 | 4,43 | 4,65 | |
| Średnia masa sadzonek przed plazmowaniem [g] | 3,85 | C\J | CM | ||
| Średnia suma długości korzeni z 1 sadzonki [mm] | 28,43 | 41,12 | 43,88 | 32,66 | |
| Średnia liczba wytworzonych korzeni po 28 dniach [szt.] | 5,2 | 10 | 7,65 | ||
| Częstotliwość [kHz] | O | O i— | 50 | 200 | |
| Napięcie [kV] | o | 18,00 | CO co | 3,70 | |
| Czas [s] | o | 09 | 120 | 300 |
| Tabela 2. Parametry oraz dane biometryczne korzeni i pędów dla drugiego przykładu wykonania. | Średnia masa sadzonek 28 dni po plazmowaniu [g] | 4,43 | ε‘9 | 5,84 | |
| Średnia masa sadzonek przed plazmowaniem [g] | L0 00 CO | 4,31 | 10 σ> 10 | 5,36 | |
| Średnia suma długości korzeni z 1 sadzonki [mm] | 28,43 | 40,2 | 48,83 | 48,04 | |
| Średnia liczba wytworzonych korzeni po 28 dniach [szt.] | 6‘S | 7,62 | 10 | ||
| Częstotliwość [kHz] | O | O i— | 50 | 200 | |
| Napięcie [kV] | o | 18,00 | 3,74 | 3,70 | |
| Czas [s] | o | 60 | 120 | 300 |
PL 233 335 Β1
| Tabela 3. Parametry oraz dane biometryczne korzeni i pędów dla trzeciego przykładu wykonania. | Średnia masa sadzonek 28 dni po plazmowaniu [g] | 6,35 | 7,49 | t/8 | 8,36 |
| Średnia masa sadzonek przed plazmowaniem [g] | 6,21 | 6,85 | 6,72 | ||
| Średnia suma długości korzeni z 1 sadzonki [mm] | 28,28 | 61,9 | 67,43 | 58,83 | |
| Średnia liczba wytworzonych korzeni po 28 dniach [szt.] | 8,75 | 9,85 | LO | c\i | |
| Częstotliwość [kHz] | O | O 1— | 50 | 200 | |
| Napięcie [kV] | o | oo‘e l | 3,76 | 3,70 | |
| Czas [s] | o | 09 | 120 | 300 |
| Tabela 4. Parametry oraz dane biometryczne korzeni i pędów dla czwartego przykładu wykonania. | Średnia masa sadzonek 28 dni po plazmowaniu [g] | 6,35 | CM CM_ | CO O | 9,3 |
| Średnia masa sadzonek przed plazmowaniem [g] | 98‘9 | 6,51 | 8,65 | 7,53 | |
| Średnia suma długości korzeni z 1 sadzonki [mm] | 28,28 | 41,6 | 44,95 | 52,18 | |
| Średnia liczba wytworzonych korzeni po 28 dniach [szt.] | 8,75 | T- | 12,5 | 12,13 | |
| Częstotliwość [kHz] | O | O i— | 50 | 200 | |
| Napięcie [kV] | o | 18,00 | 3,74 | 3,70 | |
| Czas [s] | o | 09 | 120 | 300 |
Claims (3)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób stymulacji roślin zdrewniałych znamienny tym, że do reaktora typu glidarc o częstotliwości od 10 do 200 Hz i o napięciu od 3,7 do 18 kV podaje się gaz procesowy i po przejściu przez łuk elektryczny kieruje się strumień gazu opuszczający reaktor na pędy roślin zdrewniałych umieszczone na podajniku przez czas od 60 do 300 s.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że gazem procesowym jest azot.
- 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że gazem procesowym jest powietrze
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL428466A PL233335B1 (pl) | 2018-12-31 | 2018-12-31 | Sposób stymulacji roślin zdrewniałych |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL428466A PL233335B1 (pl) | 2018-12-31 | 2018-12-31 | Sposób stymulacji roślin zdrewniałych |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL428466A1 PL428466A1 (pl) | 2019-05-06 |
| PL233335B1 true PL233335B1 (pl) | 2019-09-30 |
Family
ID=66341935
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL428466A PL233335B1 (pl) | 2018-12-31 | 2018-12-31 | Sposób stymulacji roślin zdrewniałych |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL233335B1 (pl) |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20160102025A1 (en) * | 2014-10-13 | 2016-04-14 | Advanced Plasma Solutions, Inc. | Apparatus for the production of plasma-catalytic enhanced water and method of using the same |
| PL420981A1 (pl) * | 2017-03-24 | 2018-02-26 | Politechnika Lubelska | Sposób stymulacji kiełkowania nasion |
-
2018
- 2018-12-31 PL PL428466A patent/PL233335B1/pl unknown
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20160102025A1 (en) * | 2014-10-13 | 2016-04-14 | Advanced Plasma Solutions, Inc. | Apparatus for the production of plasma-catalytic enhanced water and method of using the same |
| PL420981A1 (pl) * | 2017-03-24 | 2018-02-26 | Politechnika Lubelska | Sposób stymulacji kiełkowania nasion |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| A PAWEŁ A. MAZUREK: "201511", BADANIE ZABURZEŃ PRZEWODZONYCH W TORZE ZASILANIA REAKTORÓW BDB I GLIDARC * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL428466A1 (pl) | 2019-05-06 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Kokare et al. | Effect of plant growth regulators on growth, yield and quality of okra {Abelmoschus Esculentus (L.) Moench} | |
| CN105900818A (zh) | 一种缓解甜瓜幼苗盐胁迫的方法 | |
| KR20190097741A (ko) | 성장률 및 설포라판 함량이 증가된 브로콜리 새싹 및 이의 생산방법 | |
| Figas et al. | Improvement of in vitro propagation and acclimation of Helichrysum arenarium L. Moench | |
| Dilip et al. | Influence of gibberellic acid (GA3) on seed germination and seedling growth of Kagzi Lime | |
| Qadri et al. | Response of guava (Psidium guajava L.) softwood cuttings to paclobutrazol application in different rooting media | |
| PL233335B1 (pl) | Sposób stymulacji roślin zdrewniałych | |
| CN105960968A (zh) | 利用机能水进行小麦种植的方法 | |
| PL234074B1 (pl) | Sposób stymulacji roślin zdrewniałych | |
| PL234073B1 (pl) | Sposób stymulacji roślin zielnych | |
| PL234711B1 (pl) | Sposób stymulacji roślin | |
| PL234072B1 (pl) | Sposób stymulacji roślin zielnych | |
| JP2014045664A (ja) | 植物体内での特定物質の産生の高効率化と生育促進方法 | |
| PL233334B1 (pl) | Sposób stymulacji roślin zdrewniałych | |
| PL234710B1 (pl) | Sposób stymulacji roślin zielnych | |
| Yongan et al. | Control of sex expression in summer squash (Cucurbita pepo L.) | |
| KR20170031417A (ko) | 제라니올을 포함하는 식물생장 촉진용 조성물 및 이를 이용한 식물의 재배 방법 | |
| RU2626722C2 (ru) | Способ и устройство для борьбы с botrytis cinerea при выращивании привитых саженцев винограда | |
| EP3005872B1 (en) | Product for regulating plant health, method for obtaining said product and use thereof | |
| KR101383319B1 (ko) | 고농도 산소수를 이용한 아이스플랜트 씨앗의 발아법 | |
| RU2480977C2 (ru) | Способ стимулирования роста и развития овощных культур | |
| CN107771811A (zh) | 一种苦瓜种子处理剂及其用于处理苦瓜种子的方法 | |
| Hill et al. | Bioprotection of Acacia mangium using Trichoderma in Malaysia | |
| RU2839858C1 (ru) | Способ выращивания посадочного материала клоновых подвоев мелкокосточковых культур в условиях закрытого грунта | |
| Hermayani et al. | Optimising Sterilisation Techniques and Callus Induction of Nodes Durio Zibethinus Murr in Vitro Method with Various Media |