PL226841B1 - Membrana polielektrolitowa do izolacji mikroorganizmów, Gram (-) iGram (+) oraz sposób jejwytwarzania - Google Patents
Membrana polielektrolitowa do izolacji mikroorganizmów, Gram (-) iGram (+) oraz sposób jejwytwarzaniaInfo
- Publication number
- PL226841B1 PL226841B1 PL402667A PL40266713A PL226841B1 PL 226841 B1 PL226841 B1 PL 226841B1 PL 402667 A PL402667 A PL 402667A PL 40266713 A PL40266713 A PL 40266713A PL 226841 B1 PL226841 B1 PL 226841B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- concentration
- volume
- solution
- gram
- fulerenol
- Prior art date
Links
- 239000012528 membrane Substances 0.000 title claims description 25
- 244000005700 microbiome Species 0.000 title claims description 19
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 17
- 238000002955 isolation Methods 0.000 title claims description 15
- 229920000098 polyolefin Polymers 0.000 title description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title description 2
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 37
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 34
- YBJHBAHKTGYVGT-ZKWXMUAHSA-N (+)-Biotin Chemical compound N1C(=O)N[C@@H]2[C@H](CCCCC(=O)O)SC[C@@H]21 YBJHBAHKTGYVGT-ZKWXMUAHSA-N 0.000 claims description 28
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims description 18
- 229960002685 biotin Drugs 0.000 claims description 14
- 235000020958 biotin Nutrition 0.000 claims description 14
- 239000011616 biotin Substances 0.000 claims description 14
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 claims description 14
- 239000012620 biological material Substances 0.000 claims description 13
- -1 aliphatic amino acids Chemical class 0.000 claims description 11
- 150000001412 amines Chemical class 0.000 claims description 10
- 229920000867 polyelectrolyte Polymers 0.000 claims description 8
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims description 7
- 229920000729 poly(L-lysine) polymer Polymers 0.000 claims description 7
- 125000001495 ethyl group Chemical group [H]C([H])([H])C([H])([H])* 0.000 claims description 6
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 6
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 6
- 229920002873 Polyethylenimine Polymers 0.000 claims description 5
- 239000012980 RPMI-1640 medium Substances 0.000 claims description 5
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 claims description 5
- 125000002496 methyl group Chemical group [H]C([H])([H])* 0.000 claims description 5
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 claims description 5
- 229920000724 poly(L-arginine) polymer Polymers 0.000 claims description 5
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims description 5
- 238000000576 coating method Methods 0.000 claims description 4
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 claims description 3
- 125000001931 aliphatic group Chemical group 0.000 claims description 2
- 238000003287 bathing Methods 0.000 claims description 2
- 150000003956 methylamines Chemical class 0.000 claims description 2
- 238000002791 soaking Methods 0.000 claims description 2
- QUSNBJAOOMFDIB-UHFFFAOYSA-N Ethylamine Chemical compound CCN QUSNBJAOOMFDIB-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims 1
- 150000003335 secondary amines Chemical class 0.000 claims 1
- 150000003512 tertiary amines Chemical class 0.000 claims 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 14
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 5
- 238000005538 encapsulation Methods 0.000 description 4
- 210000003527 eukaryotic cell Anatomy 0.000 description 3
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 3
- 229920001467 poly(styrenesulfonates) Polymers 0.000 description 3
- 229960002796 polystyrene sulfonate Drugs 0.000 description 3
- 239000011970 polystyrene sulfonate Substances 0.000 description 3
- 244000063299 Bacillus subtilis Species 0.000 description 2
- 108010039918 Polylysine Proteins 0.000 description 2
- 239000007943 implant Substances 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 229920000656 polylysine Polymers 0.000 description 2
- 241000206602 Eukaryota Species 0.000 description 1
- 206010062016 Immunosuppression Diseases 0.000 description 1
- 108700027766 Listeria monocytogenes hlyA Proteins 0.000 description 1
- 239000006146 Roswell Park Memorial Institute medium Substances 0.000 description 1
- 210000001744 T-lymphocyte Anatomy 0.000 description 1
- 239000011149 active material Substances 0.000 description 1
- 239000013543 active substance Substances 0.000 description 1
- 230000003466 anti-cipated effect Effects 0.000 description 1
- 238000011319 anticancer therapy Methods 0.000 description 1
- 229940034982 antineoplastic agent Drugs 0.000 description 1
- 239000002246 antineoplastic agent Substances 0.000 description 1
- 230000006907 apoptotic process Effects 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 230000031018 biological processes and functions Effects 0.000 description 1
- 210000000170 cell membrane Anatomy 0.000 description 1
- 230000003833 cell viability Effects 0.000 description 1
- 238000005253 cladding Methods 0.000 description 1
- 230000001461 cytolytic effect Effects 0.000 description 1
- 230000009982 effect on human Effects 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 150000003947 ethylamines Chemical class 0.000 description 1
- 230000002949 hemolytic effect Effects 0.000 description 1
- 210000000987 immune system Anatomy 0.000 description 1
- 230000001506 immunosuppresive effect Effects 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 230000017074 necrotic cell death Effects 0.000 description 1
- 239000013642 negative control Substances 0.000 description 1
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 1
- 230000035699 permeability Effects 0.000 description 1
- 229920000768 polyamine Polymers 0.000 description 1
- 229920000447 polyanionic polymer Polymers 0.000 description 1
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 238000004611 spectroscopical analysis Methods 0.000 description 1
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 1
- 230000009466 transformation Effects 0.000 description 1
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 1
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest membrana polielektrolitowa, zwłaszcza nałożona bezpośrednio na grupę izolowanych komórek, do izolacji mikroorganizmów zarówno Gram (-), jak i Gram (+) oraz sposób jej przygotowania.
Membrany polielektrolitowe są przedmiotem zainteresowania od lat 90-tych, przy czym dla zwiększenia użyteczności membran dla celów biotechnologicznych stosuje się membrany funkcjonalne, zawierające grupy zmieniające/modyfikujące ich właściwości w kierunku przewidywanych zastosowań.
Enkapsulacja materiału biologicznego w membranie półprzepuszczalnej, pozwalająca na odseparowanie tego materiału od wytwarzanych przezeń produktów może znaleźć bezpośrednie zastosowanie biotechnologiczne, bądź umożliwić immunoizolację, która jest ważnym czynnikiem w oddzieleniu materiału biologicznie aktywnego od układu immunologicznego organizmu bez potrzeby stosowania immunosupresji. Układ materiału biologicznego, produkującego substancje biologicznie czynne, enkapsulowanego w membranie i wszczepionego biorcy, może spełniać rolę terapeutyczną.
Przykładowo, układ enkapsulowanych mikroorganizmów zmodyfikowanych genetycznie, jako źródło czynników przeciwnowotworowych może modyfikować procesy biologiczne w organizmach eukariotycznych.
Skonstruowano membranę do enkapsulacji mikroorganizmów Gram (+).
Aby ocenić przydatność membrany do enkapsulacji mikroorganizmów Gram (+), poddawano ją badaniu in vitro, sprawdzając stabilność membrany przy użyciu spektroskopii FTIR (Fourier Transformation Infrared), jakość enkapsulacji oraz funkcjonowanie enkapsulowanych w membranie mikroorganizmów.
W celu zbadania funkcjonowania enkapsulowanych w opracowanej membranie mikroorganizmów Gramm (+), enkapsulowano bakterie Bacillus subtilis transfekowane genem białka produkującego listeriolizynę, która wykazuje aktywność hemolityczną i cytolityczną, mogąc działać na błonę komórkową komórek eukariotycznych i indukować w komórkach apoptozę oraz nekrozę, co może znaleźć potencjalne zastosowanie w terapii przeciwnowotworowej.
Badano czynność enkapsulowanych w membranie bakterii Bacillus subtilis poprzez określenie ich wpływu na ludzkie limfocyty T linii komórkowej Jurkat, hodowane w ich obecności. Żywotność komórek Jurkat badano w cytometrze przepływowym. Stwierdzono spadek żywotności komórek Jurkat hodowanych w obecności opłaszczonych bakterii o średnio 75% w porównaniu z kontrolą ujemną, którą stanowiła hodowla Jurkat bez obecności opłaszczonych bakterii. Badając stabilność opracowanej membrany, wykorzystując widmo promieniowania podczerwonego (FTIR), nie stwierdzono zmian w składzie cząsteczkowym membran inkubowanych przez 1 miesiąc w środowisku symulującym fizjologiczne. Badano przepuszczalność membran wytworzonych sposobem według wynalazku i stwierdzono, że pozwalają one na transport wszelkich substancji odżywczych, niezbędnych do życia opłaszczonemu materiałowi biologicznemu, jednocześnie nie pozwalając na wydostawanie się na zewnątrz mikroorganizmów.
Podczas badań nad przydatnością różnego rodzaju membran do izolacji mikroorganizmów, stwierdzono, że nie zapewniają dostępu substancji odżywczych do materiału biologicznego lub stwarzają one kłopoty z izolacją bakterii Gram (+) od środowiska zewnętrznego, pomimo odpowiedniego punktu odcięcia gwarantującego izolację i funkcjonowanie bakterii Gram (-) nie gwarantując nie wydostawania się bakterii na zewnątrz.
Badano między innymi membrany z polilizyny (PLL) i sulfonianu polistyrenu (PSS) oraz z poliaminy i sulfonianu polistyrenu. Okazało się, że nadają się one do enkapsulacji komórek eukariotycznych, ale nie zapewniają spełnienia wyżej wymienionych warunków jeśli chodzi o izolację mikroorganizmów Gram (+).
Z opisu patentowego PL 212 620 znana jest także membrana poliolefinowa, do izolacji mikroorganizmów, charakteryzująca się tym, że na podłożu z materiału poliolefinowego ma naniesioną, co najmniej jedną biwarstwę, utworzoną kolejno z warstwy polikationu, obejmującego aminokwasy alifatyczne, zwłaszcza białkowe, a następnie warstwy z polianionu, wybranego z grupy obejmującej aminy II lub III rzędowe, jakkolwiek zapewniająca izolację mikroorganizmów Gram (+), to zważywszy na jej formę - makrokapsuły, zwiększająca objętość ewentualnego wszczepu. W związku z przewid ywanym działaniem układu dla celów lokalnego dostarczania produkowanego czynnika, korzystna byłaby minimalizacja objętości wszczepu bez pogorszenia jakości izolacji materiału biologicznego.
PL 226 841 B1
Można to uzyskać stosując metodę dopasowanego opłaszczania, nakładając opracowaną membranę warstwa po warstwie.
Nieoczekiwanie okazało się, że sposobem według wynalazku można otrzymać membrany modyfikowane, zwłaszcza nałożone bezpośrednio na grupę izolowanych komórek, pozwalające na izolację nie tylko komórek Eukariota i mikroorganizmów Gram (-), ale również mikroorganizmów Gram (+), nie ograniczające transportu substancji odżywczych przez membranę, pozwalające na ich normalne funkcjonowanie, zapobiegające wydostawaniu się mikroorganizmów Gram dodatnich na zewnątrz.
Membrana polielektrolitowa, do izolacji mikroorganizmów, według wynalazku charakteryzuje się tym, że bezpośrednio na materiał biologiczny, na grupę izolowanych komórek bakteryjnych Gram (+) lub Gram (-), ma naniesioną co najmniej jedną biwarstwę, obejmującą aminokwasy alifatyczne, poli-L-argininę i/lub poli-L-lizynę, o grubości od 4 nm do 2 pm oraz powłokę z polietylenoiminy lub polimetylenoiminy, z inkorporowanym fulerenolem o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych oraz biotynę o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych o grubości od 2 pm, na której umieszczone jest medium hodowlane, RPMI-1640 oraz na nim, ewentualnie, ponownie warstwę z aminokwasów alifatycznych, poli-L-argininy lub poli-L-lizyny, a następnie warstwę polimerową z amin II lub III rzędowych, polietylenoiminy lub polimetylenoiminy, zawierających w swej strukturze inkorporowany fulerenol o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych oraz biotynę o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych.
Sposób wytwarzania półprzepuszczalnych powłok, zwłaszcza bezpośrednio na materiale biologicznym do izolacji mikroorganizmów Gram (+) lub Gram (-), według wynalazku polega na tym, że na materiał biologiczny wprowadza się przez moczenie lub kąpiel, roztwór polimeru białkowego aminokwasu, wybranego z grupy obejmującej aminokwasy alifatyczne, polarne, rozpuszczone w roztworze NaCl - 0,05-0,5 M, o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych, a następnie w strukturę membrany wprowadza się przez moczenie, roztwór polimeru aminy II lub III rzędowej, wybranej z grupy obejmującej aminy alifatyczne, metyloaminy i/lub etyloaminy, zawierające 100% grup metylowych lub etylowych, w roztworze o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych, zawierającym fulerenol o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych oraz biotynę o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych, przy pH 7,0-7,6 zawierających w swej strukturze fulerenol w stężeniu 0,03-0,5% objętościowych oraz biotynę w stężeniu 0,03-0,5% objętościowych, rozpuszczone w roztworze NaCI, przy czym, materiał biologiczny poddaje się kąpieli w roztworze polimeru aminokwasu alifatycznego pod ciśnieniem 0,09-0,1 MPa - atmosferycznym, w temperaturze 15-37°C, w czasie do 10 minut, a przygotowany w ten sposób układ, ewentualnie, moczy się w soli fizjologicznej.
W sposobie według wynalazku korzystnie poddaje się układ kąpieli w roztworze polimeru aminy II lub III rzędowej zawierającego grupy etylowe pod ciśnieniem 0,9-1 MPa w temperaturze 15-37°C, w czasie do 10 minut, a przygotowany układ płucze się w soli fizjologicznej.
Sposób według wynalazku polega na utworzeniu, co najmniej jednej biwarstwy polielektrolitów na powierzchni materiału biologicznego - komórki bakteryjnej Gram (+) lub Gram (-). Polielektrolity przygotowuje się przez rozpuszczenie polimerów w roztworze NaCl o odpowiednim pH. Procedurę tworzenia biwarstwy można powtórzyć kilkakrotnie. Tak przygotowany układ płucze się jeszcze ewentualnie w soli fizjologicznej.
Najkorzystniejsza wersja sposobu polega na tym, że peletę komórek bakteryjnych Gram (+) lub Gram (-) w probówce zalewa się roztworem polimeru białkowego aminokwasu polarnego w roztworze NaCI na okres 5-6 minut w komorze ciśnieniowej przy odpowiednim ciśnieniu i w temperaturze od 20-37°C. Następnie, układ zanurza się w pojemniku z roztworem polimeru aminy II lub III rzędowej w roztworze NaCl, zawierającego grupy etylowe, fulerenol o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych oraz biotynę o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych, korzystnie przy pH 7,0-7,6, na okres 5-10 minut, w komorze ciśnieniowej przy atmosferycznym ciśnieniu i w temperaturze od 15-37°C. Następnie układ poddaje się płukaniu w soli fizjologicznej. Procedurę korzystnie jest powtórzyć.
Poniżej przedstawiono przykłady wykonania wynalazku, nie ograniczające jego zakresu.
P r z y k ł a d 1
W celu przygotowania masy komórek bakteryjnych zalewa się je roztworem poli-L-lizyny w NaCI 0,5 M w roztworze NaCI 0,5 M, o stężeniu 0,3% obj., po czym układ umieszcza się w kąpieli z soli fizjologicznej w 20°C na 5 minut, a następnie powtarza się procedurę.
P r z y k ł a d 2
Masę komórek bakteryjnych zalaną roztworem poli-L-argininy w roztworze NaCl 0,1M o stężeniu 0,05% obj., na 5 min., płukano w soli fizjologicznej w 20°C przez 3 minuty. Następnie, układ komórek z nałożoną powłoką poddaje się moczeniu w roztworze polietylenoiminy (100% grup etylowych)
PL 226 841 B1 z inkorporowanym fulerenolem i biotyną o stężeniu odpowiednio 0,200 mg/ml oraz 0,1 mg/ml w roztworze NaCl 0,1 M o stężeniu 0,05% obj., po czym układ umieszcza się w kąpieli z medium hodowlanego RPMI-1640 w 25°C na 4 minuty.
P r z y k ł a d 3
Masę komórek bakteryjnych zalewa się roztworem poli-L-lizyny w roztworze NaCl 0,3 M, o stężeniu 0,5% objętościowych, po czym wymoczone komórki umieszcza się w kąpieli z medium hodowlanego RPMI-1640 w 25°C na 4 minuty.
Następnie, komórki poddaje się moczeniu w roztworze polimetyloiminy (100% grup metylowych) w roztworze NaCl 0,01 M, o stężeniu 0,4% obj., Następnie, układ poddaje się kąpieli w roztworze poli-L-lizyny w roztworze NaCI 0,1 M, o stężeniu 0,5% objętościowych, po czym płucze się w soli filologicznej przez 3 minuty. Następnie, układ poddaje się moczeniu w roztworze polimetyloiminy (100% grup metylowych) z inkorporowanym fulerenolem oraz biotyną w roztworze NaCI 0,3 M, o stężeniu 0,4% obj., po czym układ umieszcza się w kąpieli z medium hodowlanego RPMI-1640 w 25°C na 4 minuty.
Claims (5)
1. Membrana polielektrolitowa, do izolacji mikroorganizmów Gram (-) oraz Gram (+), posiadająca co najmniej jedną biwarstwę, utworzoną kolejno z warstwy polielektrolitowej, obejmującej aminokwasy alifatyczne, oraz warstwy amin II lub III rzędowych, znamienna tym, że bezpośrednio na materiale biologicznym, na grupie izolowanych komórek bakteryjnych Gram (+) lub Gram (-), ma naniesioną co najmniej jedną biwarstwę, obejmującą aminokwasy alifatyczne, poli-L-argininę i/lub poli-L-lizynę, o grubości od 4 nm do 2 μm oraz powłokę z polietylenoiminy lub polimetylenoiminy, z inkorporowanym fulerenolem o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych oraz biotynę o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych o grubości od 2 μm, na której umieszczone jest medium hodowlane, RPMI-1640 oraz na nim, ewentualnie, ponownie warstwę z aminokwasów alifatycznych, poli-L-argininy lub poli-L-lizyny, a następnie warstwę polimerową z amin II lub III rzędowych, polietylenoiminy lub polimetylenoiminy, zawierających w swej strukturze inkorporowany fulerenol o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych oraz biotynę o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych.
2. Sposób wytwarzania mikroporowatych membran polielektroiitowych do izolacji mikroorganizmów Gram (-) oraz (+), znamienny tym, że na materiał biologiczny wprowadza się przez moczenie lub kąpiel, roztwór polimeru białkowego aminokwasu, wybranego z grupy obejmującej aminokwasy alifatyczne, polarne, rozpuszczone w roztworze NaCI - 0,05-0,5 M, o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych, a następnie w strukturę membrany wprowadza się przez moczenie, roztwór polimeru aminy II lub III rzędowej, wybranej z grupy obejmującej aminy alifatyczne, metyloaminy i/lub etyloaminy, zawierające 100% grup metylowych lub etylowych, w roztworze o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych, zawierającym fulerenol o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych oraz biotynę o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych, przy pH 7,0-7,6 zawierających w swej strukturze fulerenol w stężeniu 0,03-0,5% objętościowych oraz biotynę w stężeniu 0,03-0,5% objętościowych, rozpuszczone w roztworze NaCI, przy czym, materiał biologiczny poddaje się kąpieli w roztworze polimeru aminokwasu alifatycznego pod ciśnieniem 0,09-0,1 MPa - atmosferycznym, w temperaturze 15-37°C, w czasie do 10 minut, a przygotowany w ten sposób układ, ewentualnie, moczy się w soli fizjologicznej.
3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że poddaje się układ kąpieli w roztworze polimeru aminy II lub III rzędowej zawierającego grupy metylowe lub etylowe oraz fulerenol o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych oraz biotynę o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych, pod ciśnieniem 0,09-0,1 MPa w temperaturze 20-37°C, w czasie 2 minut, a przygotowany w ten sposób układ, ewentualnie, moczy się w medium hodowlanym, RPMI-1640.
4. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że wprowadza się roztwór polimeru aminy II lub III rzędowej zawierający fulerenol oraz biotynę w roztworze NaCl, o stężeniu 0,03-0,5% objętościowych, przy pH 7,0-7,6.
5. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że wprowadza się roztwór polimeru aminy II lub III rzędowej zawierający fulerenol oraz biotynę w roztworze NaCI 0,05-0,5 M, o stężeniu 0,01-0,2% objętościowych.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL402667A PL226841B1 (pl) | 2013-02-04 | 2013-02-04 | Membrana polielektrolitowa do izolacji mikroorganizmów, Gram (-) iGram (+) oraz sposób jejwytwarzania |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL402667A PL226841B1 (pl) | 2013-02-04 | 2013-02-04 | Membrana polielektrolitowa do izolacji mikroorganizmów, Gram (-) iGram (+) oraz sposób jejwytwarzania |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL402667A1 PL402667A1 (pl) | 2014-08-18 |
| PL226841B1 true PL226841B1 (pl) | 2017-09-29 |
Family
ID=51302417
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL402667A PL226841B1 (pl) | 2013-02-04 | 2013-02-04 | Membrana polielektrolitowa do izolacji mikroorganizmów, Gram (-) iGram (+) oraz sposób jejwytwarzania |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL226841B1 (pl) |
-
2013
- 2013-02-04 PL PL402667A patent/PL226841B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL402667A1 (pl) | 2014-08-18 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Rodrigo-Navarro et al. | Engineered living biomaterials | |
| Drachuk et al. | Biomimetic coatings to control cellular function through cell surface engineering | |
| Lee et al. | Hydrogel‐based three‐dimensional cell culture for organ‐on‐a‐chip applications | |
| Monge et al. | Spatio‐temporal control of LbL films for biomedical applications: from 2D to 3D | |
| Blanco et al. | The development of a three-dimensional scaffold for ex vivo biomimicry of human acute myeloid leukaemia | |
| Zhou et al. | Functional electrospun fibrous scaffolds with dextran-g-poly (l-lysine)-VAPG/microRNA-145 to specially modulate vascular SMCs | |
| Jonas et al. | Controlling the growth of Staphylococcus epidermidis by layer-by-layer encapsulation | |
| Lima et al. | Microbubbles as biocompatible porogens for hydrogel scaffolds | |
| CN108473632B (zh) | 聚合组合物 | |
| Khoshnood et al. | The potential impact of polyethylenimine on biological behavior of 3D-printed alginate scaffolds | |
| Srivastava et al. | Enhanced encapsulation efficiency and controlled release of co-encapsulated Bacillus coagulans spores and vitamin B9 in gellan/κ-carrageenan/chitosan tri-composite hydrogel | |
| CN107142228A (zh) | 一种大肠杆菌外膜囊泡的制备、载药方法与其在抗肿瘤中的应用 | |
| WO2014171842A1 (en) | Biocompatible encapsulation system | |
| WO2016184872A1 (en) | Functionalized membranes for bioartificial organs | |
| WO2013006683A2 (en) | Bio-mimetic ultrathin hydrogel coatings for pancreatic islet transplantation | |
| Yu et al. | Dual-peptide-modified alginate hydrogels for the promotion of angiogenesis | |
| Vargas-Alfredo et al. | Fabrication of biocompatible and efficient antimicrobial porous polymer surfaces by the Breath Figures approach | |
| Park et al. | Cell-adhesive double network self-healing hydrogel capable of cell and drug encapsulation: New platform to construct biomimetic environment with bottom-up approach | |
| US11421106B2 (en) | Vesicle incorporating transmembrane protein | |
| Sun et al. | Polyurethane scaffold-based 3D lung cancer model recapitulates in vivo tumor biological behavior for nanoparticulate drug screening | |
| EP3315601A1 (en) | Method for culturing animal cell composition, method for producing animal cell composition using same, and animal cell composition | |
| PL226841B1 (pl) | Membrana polielektrolitowa do izolacji mikroorganizmów, Gram (-) iGram (+) oraz sposób jejwytwarzania | |
| US12291701B2 (en) | Cell culture container having minute volume | |
| Hastings et al. | Crosslinked hydrogel capsules for cell encapsulation formed using amino/betaine dual-functional semibatch copolymers | |
| Aleixandre et al. | Engineered living biomaterials |