PL226445B1 - Podłoże, sposób przygotowania podłoża oraz zastosowanie podłoża do namnażania grzyba z rodzaju Trichoderma i ograniczania populacji grzybów patogenicznych Sclerotinia sclerotiorum - Google Patents
Podłoże, sposób przygotowania podłoża oraz zastosowanie podłoża do namnażania grzyba z rodzaju Trichoderma i ograniczania populacji grzybów patogenicznych Sclerotinia sclerotiorumInfo
- Publication number
- PL226445B1 PL226445B1 PL409340A PL40934014A PL226445B1 PL 226445 B1 PL226445 B1 PL 226445B1 PL 409340 A PL409340 A PL 409340A PL 40934014 A PL40934014 A PL 40934014A PL 226445 B1 PL226445 B1 PL 226445B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- pomace
- dried
- substrate
- trichoderma
- fungus
- Prior art date
Links
- 239000000758 substrate Substances 0.000 title claims description 52
- 241000223259 Trichoderma Species 0.000 title claims description 49
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 17
- 241000233866 Fungi Species 0.000 title description 24
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title description 2
- 241000221662 Sclerotinia Species 0.000 title 1
- 241000221696 Sclerotinia sclerotiorum Species 0.000 claims description 28
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 20
- 235000016623 Fragaria vesca Nutrition 0.000 claims description 12
- 235000011363 Fragaria x ananassa Nutrition 0.000 claims description 12
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 11
- 241001444063 Aronia Species 0.000 claims description 10
- 235000001537 Ribes X gardonianum Nutrition 0.000 claims description 10
- 235000001535 Ribes X utile Nutrition 0.000 claims description 10
- 235000016919 Ribes petraeum Nutrition 0.000 claims description 10
- 244000281247 Ribes rubrum Species 0.000 claims description 10
- 235000002355 Ribes spicatum Nutrition 0.000 claims description 10
- 244000235659 Rubus idaeus Species 0.000 claims description 10
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 9
- 235000011034 Rubus glaucus Nutrition 0.000 claims description 9
- 235000009122 Rubus idaeus Nutrition 0.000 claims description 9
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 8
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 8
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims description 6
- 239000008187 granular material Substances 0.000 claims description 6
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 6
- 244000061456 Solanum tuberosum Species 0.000 claims description 5
- 235000002595 Solanum tuberosum Nutrition 0.000 claims description 5
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims description 5
- 235000001674 Agaricus brunnescens Nutrition 0.000 claims description 4
- 238000005469 granulation Methods 0.000 claims description 4
- 230000003179 granulation Effects 0.000 claims description 4
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims description 4
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 claims description 3
- 244000053095 fungal pathogen Species 0.000 claims description 2
- 241000220223 Fragaria Species 0.000 claims 4
- 241000576755 Sclerotia Species 0.000 description 38
- 239000002689 soil Substances 0.000 description 37
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 21
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 13
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 11
- 240000009088 Fragaria x ananassa Species 0.000 description 10
- 239000002699 waste material Substances 0.000 description 9
- 241000220225 Malus Species 0.000 description 8
- 239000011575 calcium Substances 0.000 description 8
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 8
- 239000011777 magnesium Substances 0.000 description 8
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 8
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 7
- 235000013399 edible fruits Nutrition 0.000 description 6
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 6
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 6
- 241000894007 species Species 0.000 description 6
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 5
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 5
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 5
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 5
- 244000291564 Allium cepa Species 0.000 description 4
- 235000002732 Allium cepa var. cepa Nutrition 0.000 description 4
- 244000000626 Daucus carota Species 0.000 description 4
- 235000002767 Daucus carota Nutrition 0.000 description 4
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 4
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 4
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 4
- 230000003042 antagnostic effect Effects 0.000 description 4
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 description 4
- 238000011161 development Methods 0.000 description 4
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 4
- HYBBIBNJHNGZAN-UHFFFAOYSA-N furfural Chemical compound O=CC1=CC=CO1 HYBBIBNJHNGZAN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 239000010903 husk Substances 0.000 description 4
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 4
- XEEYBQQBJWHFJM-UHFFFAOYSA-N iron Substances [Fe] XEEYBQQBJWHFJM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 229910052749 magnesium Inorganic materials 0.000 description 4
- 229910052698 phosphorus Inorganic materials 0.000 description 4
- 229910052700 potassium Inorganic materials 0.000 description 4
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 4
- 235000013311 vegetables Nutrition 0.000 description 4
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 229910002651 NO3 Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000010949 copper Substances 0.000 description 3
- 235000021186 dishes Nutrition 0.000 description 3
- 239000011572 manganese Substances 0.000 description 3
- 239000011368 organic material Substances 0.000 description 3
- 238000011160 research Methods 0.000 description 3
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 3
- 239000011701 zinc Substances 0.000 description 3
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N Ammonia Chemical compound N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 240000002791 Brassica napus Species 0.000 description 2
- 235000004977 Brassica sinapistrum Nutrition 0.000 description 2
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N Calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N Magnesium Chemical compound [Mg] FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- OAICVXFJPJFONN-UHFFFAOYSA-N Phosphorus Chemical compound [P] OAICVXFJPJFONN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- ZLMJMSJWJFRBEC-UHFFFAOYSA-N Potassium Chemical compound [K] ZLMJMSJWJFRBEC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 241000894120 Trichoderma atroviride Species 0.000 description 2
- 241000944293 Trichoderma gamsii Species 0.000 description 2
- 241001149558 Trichoderma virens Species 0.000 description 2
- 230000033558 biomineral tissue development Effects 0.000 description 2
- 229910052796 boron Inorganic materials 0.000 description 2
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 2
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 2
- 210000002421 cell wall Anatomy 0.000 description 2
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 2
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 2
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 2
- 229910052802 copper Inorganic materials 0.000 description 2
- 238000000354 decomposition reaction Methods 0.000 description 2
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 2
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 2
- 229910052742 iron Inorganic materials 0.000 description 2
- 235000021073 macronutrients Nutrition 0.000 description 2
- 229910052748 manganese Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 2
- 235000010755 mineral Nutrition 0.000 description 2
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000011574 phosphorus Substances 0.000 description 2
- 230000000704 physical effect Effects 0.000 description 2
- 239000011591 potassium Substances 0.000 description 2
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 2
- PMZURENOXWZQFD-UHFFFAOYSA-L sodium sulphate Substances [Na+].[Na+].[O-]S([O-])(=O)=O PMZURENOXWZQFD-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 235000021012 strawberries Nutrition 0.000 description 2
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N streptomycin Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 description 2
- 229910052717 sulfur Inorganic materials 0.000 description 2
- 229910052725 zinc Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000005995 Aluminium silicate Substances 0.000 description 1
- 235000016068 Berberis vulgaris Nutrition 0.000 description 1
- 241000335053 Beta vulgaris Species 0.000 description 1
- ZOXJGFHDIHLPTG-UHFFFAOYSA-N Boron Chemical compound [B] ZOXJGFHDIHLPTG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000219193 Brassicaceae Species 0.000 description 1
- 235000002566 Capsicum Nutrition 0.000 description 1
- 102000005575 Cellulases Human genes 0.000 description 1
- 108010084185 Cellulases Proteins 0.000 description 1
- 102000012286 Chitinases Human genes 0.000 description 1
- 108010022172 Chitinases Proteins 0.000 description 1
- RYGMFSIKBFXOCR-UHFFFAOYSA-N Copper Chemical compound [Cu] RYGMFSIKBFXOCR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 description 1
- 240000008415 Lactuca sativa Species 0.000 description 1
- 235000003228 Lactuca sativa Nutrition 0.000 description 1
- PWHULOQIROXLJO-UHFFFAOYSA-N Manganese Chemical compound [Mn] PWHULOQIROXLJO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- GRYLNZFGIOXLOG-UHFFFAOYSA-N Nitric acid Chemical compound O[N+]([O-])=O GRYLNZFGIOXLOG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004677 Nylon Substances 0.000 description 1
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 description 1
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 description 1
- 240000009164 Petroselinum crispum Species 0.000 description 1
- 244000046052 Phaseolus vulgaris Species 0.000 description 1
- 235000010627 Phaseolus vulgaris Nutrition 0.000 description 1
- 241000758706 Piperaceae Species 0.000 description 1
- 239000004743 Polypropylene Substances 0.000 description 1
- 208000034189 Sclerosis Diseases 0.000 description 1
- 241001518615 Sclerotium cepivorum Species 0.000 description 1
- NINIDFKCEFEMDL-UHFFFAOYSA-N Sulfur Chemical compound [S] NINIDFKCEFEMDL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000499912 Trichoderma reesei Species 0.000 description 1
- 241001123668 Verticillium dahliae Species 0.000 description 1
- IXKSXJFAGXLQOQ-XISFHERQSA-N WHWLQLKPGQPMY Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H](CC=1C2=CC=CC=C2NC=1)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CCC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N1CCC[C@H]1C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CCC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)N1CCC[C@H]1C(=O)N[C@@H](CCSC)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)C(O)=O)NC(=O)[C@@H](N)CC=1C2=CC=CC=C2NC=1)C1=CNC=N1 IXKSXJFAGXLQOQ-XISFHERQSA-N 0.000 description 1
- HCHKCACWOHOZIP-UHFFFAOYSA-N Zinc Chemical compound [Zn] HCHKCACWOHOZIP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- MMDJDBSEMBIJBB-UHFFFAOYSA-N [O-][N+]([O-])=O.[O-][N+]([O-])=O.[O-][N+]([O-])=O.[NH6+3] Chemical compound [O-][N+]([O-])=O.[O-][N+]([O-])=O.[O-][N+]([O-])=O.[NH6+3] MMDJDBSEMBIJBB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- 238000012271 agricultural production Methods 0.000 description 1
- 235000012211 aluminium silicate Nutrition 0.000 description 1
- 229910021529 ammonia Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 239000005557 antagonist Substances 0.000 description 1
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 1
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 1
- 235000015197 apple juice Nutrition 0.000 description 1
- 235000021016 apples Nutrition 0.000 description 1
- 239000007900 aqueous suspension Substances 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 235000013361 beverage Nutrition 0.000 description 1
- 238000010170 biological method Methods 0.000 description 1
- 239000003054 catalyst Substances 0.000 description 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000001794 chitinolytic effect Effects 0.000 description 1
- 229910052801 chlorine Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000000460 chlorine Substances 0.000 description 1
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 description 1
- 238000000576 coating method Methods 0.000 description 1
- 230000001332 colony forming effect Effects 0.000 description 1
- 238000004737 colorimetric analysis Methods 0.000 description 1
- 230000002860 competitive effect Effects 0.000 description 1
- 238000012364 cultivation method Methods 0.000 description 1
- 230000001461 cytolytic effect Effects 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 1
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 229930003935 flavonoid Natural products 0.000 description 1
- 235000017173 flavonoids Nutrition 0.000 description 1
- 150000002215 flavonoids Chemical class 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 238000013467 fragmentation Methods 0.000 description 1
- 238000006062 fragmentation reaction Methods 0.000 description 1
- 235000011389 fruit/vegetable juice Nutrition 0.000 description 1
- 238000003958 fumigation Methods 0.000 description 1
- 238000010348 incorporation Methods 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- NLYAJNPCOHFWQQ-UHFFFAOYSA-N kaolin Chemical compound O.O.O=[Al]O[Si](=O)O[Si](=O)O[Al]=O NLYAJNPCOHFWQQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000009533 lab test Methods 0.000 description 1
- 229920005610 lignin Polymers 0.000 description 1
- 229910052750 molybdenum Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910017604 nitric acid Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 229920001778 nylon Polymers 0.000 description 1
- 150000007524 organic acids Chemical class 0.000 description 1
- 235000005985 organic acids Nutrition 0.000 description 1
- 239000005416 organic matter Substances 0.000 description 1
- 230000003071 parasitic effect Effects 0.000 description 1
- 230000036961 partial effect Effects 0.000 description 1
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 1
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 description 1
- 235000011197 perejil Nutrition 0.000 description 1
- 230000002085 persistent effect Effects 0.000 description 1
- 235000009048 phenolic acids Nutrition 0.000 description 1
- 150000002989 phenols Chemical class 0.000 description 1
- 150000008442 polyphenolic compounds Chemical class 0.000 description 1
- 235000013824 polyphenols Nutrition 0.000 description 1
- -1 polypropylene Polymers 0.000 description 1
- 229920001155 polypropylene Polymers 0.000 description 1
- 235000012015 potatoes Nutrition 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 239000013587 production medium Substances 0.000 description 1
- 235000021013 raspberries Nutrition 0.000 description 1
- JQXXHWHPUNPDRT-WLSIYKJHSA-N rifampicin Chemical compound O([C@](C1=O)(C)O/C=C/[C@@H]([C@H]([C@@H](OC(C)=O)[C@H](C)[C@H](O)[C@H](C)[C@@H](O)[C@@H](C)\C=C\C=C(C)/C(=O)NC=2C(O)=C3C([O-])=C4C)C)OC)C4=C1C3=C(O)C=2\C=N\N1CC[NH+](C)CC1 JQXXHWHPUNPDRT-WLSIYKJHSA-N 0.000 description 1
- 229960001225 rifampicin Drugs 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000004576 sand Substances 0.000 description 1
- 235000011121 sodium hydroxide Nutrition 0.000 description 1
- 229910052938 sodium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- GEHJYWRUCIMESM-UHFFFAOYSA-L sodium sulfite Chemical class [Na+].[Na+].[O-]S([O-])=O GEHJYWRUCIMESM-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 235000011152 sodium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 235000010265 sodium sulphite Nutrition 0.000 description 1
- 238000004611 spectroscopical analysis Methods 0.000 description 1
- 230000028070 sporulation Effects 0.000 description 1
- 238000007619 statistical method Methods 0.000 description 1
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 1
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 description 1
- 239000011593 sulfur Substances 0.000 description 1
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N sulfuric acid Substances OS(O)(=O)=O QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000018553 tannin Nutrition 0.000 description 1
- 229920001864 tannin Polymers 0.000 description 1
- 239000001648 tannin Substances 0.000 description 1
- 239000008399 tap water Substances 0.000 description 1
- 235000020679 tap water Nutrition 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 1
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 description 1
Landscapes
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest podłoże, sposób przygotowania podłoża oraz zastosowanie podłoża do namnażania grzyba z rodzaju Trichoderma i ograniczania populacji grzybów patogenicznych Sclerotinia sclerotiorum.
Znane jest z polskiego zgłoszenia patentowego nr P.402840 Podłoże, sposób przygotowania podłoża oraz zastosowanie podłoża do namnażania grzyba z rodzaju Trichoderma i uprawy roślin.
Podłoże zawiera wysuszone łuski cebuli, wysuszone wytłoczyny z jabłka, wysuszone wytłoczyny z truskawki oraz wysuszone wytłoczyny z rzepaku zmieszane ze sobą w stosunku 1:1:1:1, przy czym łuski cebuli są rozdrobnione na cząstki o długości od 0,2 do 0,5 cm, przy czym wysuszone łuski cebuli, wysuszone wytłoczyny z jabłka, wysuszone wytłoczyny z truskawki oraz wysuszone wytłoczyny z rze33 paku są zmieszane ze sobą z dodatkiem wody w stosunku 1 dm3 wody na 40 dm3 mieszanki oraz poddane granulacji. Sposób przygotowania podłoża polega na tym, że wysuszone łuski cebuli, wysuszone wytłoczyny z jabłka, wysuszone wytłoczyny z truskawki oraz wysuszone wytłoczyny z rzepaku miesza się ze sobą, korzystnie w stosunku 1:1:1:1, następnie dodaje się wodę, korzystnie w ilości 33 dm3 wody na 40 dm3 mieszanki, miesza się wszystkie składniki do uzyskania masy o jednolitej konsystencji, następnie w czasie korzystnie do 3 godzin po wymieszaniu uzyskaną masę poddaje się granulacji, po czym uzyskany granulat suszy się w temperaturze 20-25°C przez okres do 10 dni. Zastosowanie podłoża do namnażania grzyba z rodzaju Trichoderma, przy czym namnażanie grzyba z rodzaju Trichoderma przeprowadza się na podłożu umieszczonym w perforowanych workach, korzystnie polipropylenowych, podłoże w workach zwilża się wodą, do zwilżonego podłoża dodaje się uzyskaną w dowolny sposób wodną zawiesinę zarodników grzyba z rodzaju Trichoderma, a ponadto podłoże zawierające zawiesinę zarodników grzyba Trichoderma inkubuje się w temperaturze 18-26°C przez okres 12-16 dni. Zastosowanie podłoża do uprawy roślin poprzez dodawanie określonej ilości podłoża przerośniętego izolatami grzyba z rodzaju Trichoderma do podłoża uprawowego.
Znany jest z polskiego opisu patentowego nr PL 168032 Sposób otrzymywania enzymów celulolitycznych charakteryzujący się tym, że hodowlę prowadzi się przy użyciu wyselekcjonowanego szczepu Trichoderma reesei Tch. r. 12 lub jego kolejnych mutantów, korzystnie metodą dolewową, w czasie od 192 do 360 godzin, stosując jako źródło węgla w podłożu produkcyjnym 1,5-4% wagowych celulozy pochodzącej z surowca roślinnego pozbawionego pentozanów poprzez przeprowadzenie ich w lotne pochodne, korzystnie furfural, oraz ewentualnie częściowo zdelignifikowanego, przy czym od 40. do 60. godziny hodowli podłoże uzupełnia się nowymi składnikami pokarmowymi zawierającymi surowiec celulozowy, sole mineralne, pepton i mikroelementy, z częstotliwością od 3 do 8 godzin, a ponadto surowiec roślinny stanowią odpady z roślin jednorocznych lub wieloletnich pozbawione pentozanów, korzystnie odpady po produkcji furfuralu, a ponadto częściową delignifikację surowca roślinnego pozbawionego pentozanów prowadzi się metodą parowania, korzystnie w temperaturze od 110 do 120°C, z dodatkiem katalizatorów, korzystnie ługu sodowego lub siarczanów sodu lub siarczynów sodu.
Produkcja warzyw wysokiej jakości wymaga odpowiednich metod ochrony przed patogenami. Systematycznie zmniejszający się asortyment dostępnych środków utrudnia właściwą ochronę i powoduje, że coraz trudniej uzyskać wysokie plony i odpowiednią jakość warzyw, a także zapewnić przemienność stosowania środków (zapobiegającą uodparnianiu się patogenów). Szczególne znaczenie mają metody umożliwiające ograniczenie występowania chorób roślin uprawnych przy jak najmniejszym zużyciu syntetycznych środków chemicznych.
W wyniku stosowania intensywnych metod uprawy w wielu rejonach kraju następuje nagromadzenie w glebach form przetrwalnych patogenów atakujących wiele ważnych gospodarczo gatunków roślin np. grzybów z gatunku Sclerotinia sclerotiorum. Obecność tych patogenów w glebie w wielu wypadkach uniemożliwia uprawę roślin przez kilka lat. Ograniczenia te przy wysokiej specjalizacji produkcji są ogromnym utrudnieniem i powodują duże straty ekonomiczne. Stosowanie chemicznej lub termicznej dezynfekcji gleby jest kosztowne, szkodliwe dla środowiska i nie we wszystkich warunkach możliwe do przeprowadzenia. Nie ma obecnie żadnych całkowicie skutecznych i ekonomicznie opłacalnych metod mogących wyeliminować te mikroorganizmy z pól uprawnych. Z tego powodu opracowanie skutecznych metod umożliwiających obniżenie populacji tych patogenów w glebie i skrócenie okresu przerwy w uprawie jest bardzo ważne.
Grzyb Sclerotinia sclerotiorum jest patogenem polifagicznym występującym powszechnie na wielu gatunkach roślin uprawnych, warzywach, na roślinach przemysłowych. Wywołuje chorobę zwaną zgnilizną twardzikową. Części roślin zaatakowane przez ten patogen brunatnieją i przedwcześnie
PL 226 445 B1 zamierają. Zgnilizna rozwija się bardzo szybko. Wewnątrz porażonych roślin, a w warunkach wysokiej wilgotności także na zewnątrz, pojawia się biały nalot, który zawiera formy przetrwaIne grzyba, czyli sklerocja. Początkowo sklerocja są szare, a następnie czarne o średnicy ok 0,5-1 cm i nieregularnych kształtach. Szkodliwość tej choroby jest wysoka, ponieważ patogen może przetrwać w glebie wiele lat. Rozprzestrzenianie się choroby odbywa się przez fragmentację grzybni i sklerocja (Kora, 2003; Dwayne, 2005). Sklerocja zbudowane są ze zwartej plektenchymy, mają obniżoną zawartość wody i zgromadzone substancje zapasowe. Formy te są odporne na niekorzystne warunki, np. suszę. W warunkach sprzyjających rozwojowi wyrasta z nich grzybnia lub tworzą się na nich owocniki.
S. sclerotiorum zimuje w postaci sklerocjów. W ostatnich latach z powodu specjalizacji produkcji rolniczej i braku metod fumigacji gleby występuje coraz większy problem z tym patogenem. Powoduje ogromne straty w produkcji wielu gatunków roślin uprawnych, m.in. sałaty, fasoli, marchwi, pietruszki, papryki. Na przestrzeni ostatnich lat coraz częściej można zaobserwować zgniliznę twardzikową na ziemniakach.
W zwalczaniu chorób wywoływanych przez S. sclerotiorum stosowane są metody biologiczne z wykorzystaniem grzybów z rodzaju Trichoderma (Elad Y., 2000; Howell 2004; Vinale 2006; Marcinkowska 2003; Chaverr P., 2003, Huang i in. 2005; Zaher i in. 2013; Teixeira i in. 2013). Grzyby z rodzaju Trichoderma często wykazują właściwości korzystne dla roślin uprawnych i wyselekcjonowane izolaty są stosowane w biologicznej ochronie. Cecha tych grzybów, która jest powodem zainteresowania w przypadku tych badań, to zdolności pasożytnicze w stosunku do wielu innych gatunków grzybów (Chet i in. 1998, Kaur 2005, Zeilinger i Omann 2007). Pasożytowanie różnych form rozwojowych grzybów patogenicznych przez antagonistyczne Trichoderma wykazali także w swoich badaniach Benitez (1998), Monte (2001), Limón (2004) i inni. Trichoderma powoduje rozpad ściany komórkowej patogenów, co związane jest m.in. z właściwościami chitynolitycznymi enzymów syntetyzowanych przez te grzyby. Potwierdzają to w swoich badaniach również Sivan i Chet (1988), którzy badali enzymy produkowane przez Trichoderma powodujące degradację ścian komórkowych innych grzybów. El-Katatny (2001) oraz Benitez (2004) wśród enzymów Trichoderma rozkładających ściany patogenów zidentyfikowali m.in. chitynazy, glukanazy i celulazy. Ekspansywność tych grzybów wynika także z faktu, że są one silnie konkurencyjne w stosunku do innych mikroorganizmów zasiedlających środowisko glebowe. Zdolność do wydzielania różnorodnych związków aktywnych przez grzyby z rodzaju Trichoderma jest bardzo zróżnicowana w zależności od gatunku, a także różnych izolatów w obrębie gatunku. Dlatego na całym świecie trwają badania nad poszukiwaniem najbardziej efektywnych szczepów.
Aby mikroorganizm antagonistyczny był skuteczny, musi być wprowadzany do środowiska w odpowiednio dużej ilości. Niestety ich skuteczność często jest niewielka ze względu na stosunkowo małą liczebność wprowadzanego antagonisty w porównaniu do całej masy drobnoustrojów zasiedlających glebę. Mikroorganizmy wprowadzane w postaci szczepionek zwykle nie przeżywają długo ze względu na intensywną konkurencję o pokarm ze strony rodzimych drobnoustrojów. Korzystne jest wprowadzenie mikroorganizmów antagonistycznych do gleby na substancji organicznej, która odpowiednio skomponowana będzie dodatkowo, w dłuższym czasie po wprowadzeniu na pole, stymulowała rozwój grzyba.
Przemysł przetwórstwa rolno-spożywczego wytwarza bardzo dużo odpadów. Ze względu na charakter odpadu nie zawsze jest możliwe ich bezpośrednie wykorzystanie. Część z nich wywożona jest bezpośrednio na wysypiska. Problemem są ogromne ilości odpadów powstających po sezonie produkcyjnym. Główną masę odpadową z procesów technologicznych przy produkcji soków i napojów stanowią wytłoki, których ilość może dochodzić do 25% przerabianego surowca (Frąc i Nawirska 1994). Polska jest dużym producentem owoców, zwłaszcza jabłek. Spośród krajów europejskich jest największym producentem zagęszczonego soku jabłkowego. Przy tak intensywnej produkcji powstaje znaczna ilość wytłoczyn. Polska jest na drugim miejscu w Europie pod względem produkcji truskawek. W zakładach produkujących przetwory z owoców miękkich dostępne są także odpady z innych owoców (truskawek, malin, porzeczki, aronii), których ilość także jest znacząca.
W wyniku przeprowadzonych badań stwierdzono, że wytłoki owocowe odpowiednio przygotowane, o odpowiednim składzie i zgranulowane są doskonałym podłożem do namnażania grzybów Trichoderma. Stwierdzono także, że wprowadzone na nich do gleby wyselekcjonowane izolaty Trichoderma w istotny sposób ograniczają przeżywalność S. sclerotiorum w glebie.
Przedmiotem wynalazku jest podłoże służące do namnażania grzyba z rodzaju Trichoderma, charakteryzujące się tym, że zawiera wytłoczyny z aronii, wytłoczyny z jabłek, wytłoczyny z malin, wytłoczyny z porzeczki i wytłoczyny z truskawek.
PL 226 445 B1
Korzystnie, gdy podłoże zawiera wysuszone wytłoczyny z aronii, wysuszone wytłoczyny z jabłek, wysuszone wytłoczyny z malin, wysuszone wytłoczyny z porzeczki i wysuszone wytłoczyny z truskawek zmieszane ze sobą w stosunku 1:1:1:1:1.
Korzystnie, gdy wysuszone wytłoczyny z aronii, wysuszone wytłoczyny z jabłek, wysuszone wytłoczyny z malin, wysuszone wytłoczyny z porzeczki i wysuszone wytłoczyny z truskawek są zmiesza33 ne ze sobą z dodatkiem wody w stosunku 1 dm3 wody na 25 dm3 mieszanki oraz poddane granulacji.
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest sposób przygotowania podłoża służącego do namnażania grzyba z rodzaju Trichoderma, polegający na tym, że wysuszone wytłoczyny z aronii, wysuszone wytłoczyny z jabłek, wysuszone wytłoczyny z malin, wysuszone wytłoczyny z porzeczki i wysuszone wytłoczyny z truskawek miesza się ze sobą w stosunku 1:1:1:1:1, następnie dodaje się wodę, korzystnie w ilości 1 dm3 wody na 25 dm3 mieszanki, miesza się wszystkie składniki do uzyskania masy o jednolitej konsystencji, następnie w czasie korzystnie do 2-3 godzin po wymieszaniu uzyskaną masę poddaje się granulacji, po czym uzyskany granulat suszy się w temperaturze 20-25°C przez okres do 10 dni.
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest zastosowanie podłoża do namnażania grzyba z rodzaju Trichoderma i ograniczania populacji grzybów patogenicznych Sclerotinia sclerotiorum.
Korzystnie namnażanie grzyba z rodzaju Trichoderma przeprowadza się w ten sposób, że wcześniej zamrożone fragmenty grzybni przechowywane w glicerolu przekłada się na przygotowaną na szalkach Petriego pożywkę ziemniaczaną (PDA), następnie świeży fragment kolonii namnaża się na pożywce MEA, a szalki inkubuje się przez okres do 7 dni w temp. 25°C, po czym grzybnię z szalki porośniętej izolatem Trichoderma miksuje się z dodatkiem 50 ml NaCI (0,85%) i inokuluje podłoże, ko33 rzystnie w stosunku 25 ml zawiesiny na 5 dm3 podłoża, z dodatkiem wody w ilości 150 ml na 1 dm3 podłoża, a następnie podłoże inkubuje się w temperaturze pokojowej, na świetle, przez okres do 18 dni.
Poniżej przedstawiono przykład realizacji wynalazku.
Przykład 1
Etap 1. Przygotowanie podłoża
Wysuszone wytłoczyny z aronii, wysuszone wytłoczyny z jabłek, wysuszone wytłoczyny z malin, wysuszone wytłoczyny z porzeczki i wysuszone wytłoczyny z truskawek zmieszano ze sobą w stosun33 ku 1:1:1:1:1, następnie dodano wody w ilości 1 dm3 wody na 25 dm3 mieszanki, zmieszano wszystkie składniki do uzyskania masy o jednolitej konsystencji, następnie w ciągu 3 godzin po wymieszaniu uzyskaną masę poddano granulacji, po czym uzyskany granulat suszono w temperaturze 20-25°C przez okres 10 dni.
Zbadano skład chemiczny uzyskanego podłoża. Wyniki przedstawiono w tabeli 1.
Tabela 1
Skład chemiczny podłoża
| Badana cecha (makroskładniki, formy łatwo rozpuszczalne) | Jednostka | Wynik |
| 1 | 2 | 3 |
| N-NO3 (azot-azotanowy) | mg/kg s.m. | <10 |
| P-PO4 (fosfor) | mg/kg s.m. | 1900 |
| K (potas) | mg/kg s.m. | 5832 |
| Ca (wapń) | mg/kg s.m. | 3430 |
| Mg (magnez) | mg/kg s.m. | 1509 |
| Badana cecha (zawartości ogólne) | Jednostka | Wynik |
| N (azot) | % s.m. | 2,23 |
| P (fosfor) | % s.m. | 0,31 |
| K (potas) | % s.m. | 0,62 |
| Ca (wapń) | % s.m. | 0,4 |
| Mg (magnez) | % s.m. | 0,15 |
| Na (sód) | % s.m. | 0,01 |
| S-SO4 (siarka) | % s.m. | 0,13 |
PL 226 445 B1 cd. tabeli 1
| 1 | 2 | 3 |
| Fe (żelazo) | mg/kg s.m. | 859 |
| Mn (mangan) | mg/kg s.m. | 50,9 |
| Cu (miedź) | mg/kg s.m. | 12,4 |
| Zn (cynk) | mg/kg s.m. | 33,2 |
| B (bor) | mg/kg s.m. | 4,09 |
| Badana cecha (właściwości fizyczne) | Jednostka | Wynik |
| Sucha masa | % | 87,8 |
| Zawartość substancji organicznej | % m/m | 78,4 |
| Zawartość popiołu | % m/m | 21,6 |
| C (węgiel ogólny) | % m/m | 39,2 |
Analizy chemiczne materiałów organicznych przeprowadzono dwiema metodami: ekstrakcji makroskładników rozpuszczalnych w 2% kwasie octowym (N, P, K, Ca, Mg); mineralizacji mikrofalowej w stężonym kwasie azotowym w układzie zamkniętym (P, K, Ca, Mg, Na, S, Cl, Fe, Mn, Cu, Zn, B, Mo) i mineralizacji w stężonym kwasie siarkowym (N ogólny). Analizowane składniki mineralne oznaczano metodami spektrometrii plazmowej, absorpcji atomowej oraz metodami kolorymetrycznymi tzw. segmented flow system. Właściwości fizyczne materiałów organicznych określano zgodnie z procedurami wg norm PN-EN 1339, PN-EN 1340, PN-EN 1341 przy wykorzystaniu aparatu piaskowo/kaolinowego firmy Eijkelkamp, suszarki i pieca do spalań (C, zawartość popiołu).
Etap 2. Namnażanie szczepów grzyba Trichoderma na podłożu
Do namnażania zastosowano następujące izolaty grzybów Trichoderma: T. virens (izolat TRS 114), T. atroviride (izolat TRS 25), T. gamsii (izolat TRS 123). Grzyby te w doświadczeniach laboratoryjnych wykazywały właściwości antagonistyczne w stosunku do S. sclerotiorum, pasożytując sklerocja tego grzyba.
W celu namnożenia grzybów wyjęto zamrożone fragmenty grzybni z glicerolu i przełożono na przygotowaną na szalkach Petriego pożywkę ziemniaczaną (PDA). Następnie świeży fragment kolonii namnażano na pożywce MEA. Szalki inkubowano przez 5-7 dni w temp. 25°C w termostatach.
Następnie grzybnię z szalki porośniętej izolatem Trichoderma zeskrobano z powierzchni i zmiksowano z 50 ml NaCI (0,85%). Zawiesina grzybni i zarodników w ilości 25 ml wystarczała do inokulacji 5 litrów granulatu. W celu zapewnienia odpowiednich warunków do rozwoju grzybów Trichoderma, do wysu3 szonego granulatu dodawano wodę wodociągową w ilości 150 ml/dm3 podłoża. Podłoża inkubowano w temperaturze pokojowej, na świetle, przez 10-18 dni. Po tym czasie uzyskiwano całkowite przerośnięcie grzybnią podłoża i intensywne zarodnikowanie. Metodą posiewów na pożywkę Martina określano liczebność grzybów Trichoderma w podłożu. Stwierdzono, że w 1 g podłoża znajdowało się ok. 109 jednostek propagacyjnych grzyba Trichoderma, przedstawionych jako jednostki tworzące kolonie (jtk).
Etap 3. Wytwarzanie sklerocjów S. sclerotiorum 3
Grzyby S. sclerotiorum namnażano w kolbach (poj. 1 dm3) na podłożu z marchwią. Świeżą marchew umyto, obrano, pokrojono i umieszczono w kolbach (0,25 objętości) z 50 ml wody destylowanej. Następnie autoklawowano dwukrotnie w temp. 121°C przez 20 minut. Potem w każdej kolbie umieszczono po 3 krążki (śr. 0,5 cm) wycięte z pożywki porośniętej grzybnią S. sclerotiorum. Po 4-tygodniowej inkubacji w temperaturze 25°C w kolbach wytworzyły się sklerocja S. sclerotiorum. Pożywkę wraz z grzybnią i sklerocjami przemywano przez sito o średnicy oczek 1,25 mm i izolowano sklerocja. Sklerocja suszono przez kilka dni w temperaturze pokojowej, a następnie przechowywano w zamkniętym pojemniku w temperaturze ok. 5-8°C.
Etap 4. Ocena wpływu podłoża przerośniętego grzybami Trichoderma na przeżywalność sklerocjów S. sclerotiorum
Doświadczenie 1
Przeprowadzono doświadczenie w 3-litrowych pojemnikach wypełnionych glebą o następujących właściwościach: pH 6,6; zasolenie 0,18 g NaCI/litr gleby; N-NO3 - 21; P - 3331; K - 226; Mg - 73; Ca - 1040; N-NH4 - 2,30 mg/litr gleby. Do gleby dodano podłoże przerośnięte izolatami
PL 226 445 B1
Trichoderma: TRS 25, TRS 114, TRS 123 w ilości 1%. W każdej doniczce umieszczono woreczki z siatki nylonowej (6x4 cm), podzielonej na kieszonki zawierające po 5 sklerocjów S. sclerotiorum (każde sklerocjum w oddzielnej kieszonce - schemat 1). W każdej doniczce umieszczono po 3 takie woreczki (3x5 = 15 sklerocjów). Przygotowano po 3 doniczki dla każdego powtórzenia. Kontrolę stanowiła gleba bez dodatków. Przygotowano także kombinacje z podłożem nieprzerośniętym grzybami
Trichoderma.
Zbadano następujące kombinacje:
1) kontrola - gleba bez dodatków;
2) gleba + podłoże;
3) gleba + podłoże + TRS 25;
4) gleba + podłoże + TRS 123;
5) gleba + podłoże + TRS 114.
Schemat 1. Woreczek ze sklerocjami
Doświadczenie 2
W celu weryfikacji poprzednich obserwacji dotyczących toksycznego wpływu podłoża przerośniętego grzybem Trichoderma na S. sclerotiorum przeprowadzono doświadczenie w 10-litrowych pojemnikach wypełnionych glebą o następujących właściwościach: pH 7,4; zasolenie 0,16 g NaCI/litr gleby; N-NO3 - 18; P - 56; K - 57; Mg - 81, Ca - 1180 mg/litr gleby. Do gleby dodano podłoże przerośnięte i nieprzerośnięte izolatem Trichoderma TRS 25 w ilości 1%. W kombinacji 4, bez podłoża, izolat Trichoderma TRS 25 dodano w postaci zawiesiny w ilości odpowiadającej wprowadzeniu tego grzyba wraz z podłożem. W każdym pojemniku umieszczono po 3 woreczki, zawierające po 5 sklerocjów S. sclerotiorum. Po wymieszaniu gleby z poszczególnymi składnikami i doprowadzeniu do jednakowej wilgotności ok. 60% pojemniki przykryto zapewniając dopływ powietrza. Wilgotność utrzymywano na podobnym poziomie w trakcie całego okresu inkubacji w temp. pokojowej ok. 20-22°C. Dla każdej kombinacji przygotowano po 3 pojemniki.
Zbadano następujące kombinacje:
1) kontrola - gleba bez dodatków + sklerocja S. sclerotiorum;
2) gleba + podłoże + sklerocja S. sclerotiorum;
3) gleba + podłoże + TRS 25 + sklerocja S. sclerotiorum;
4) gleba + TRS 25 + sklerocja S. sclerotiorum.
Etap 5. Ocena przeżywalności sklerocjów S. sclerotiorum w glebie z dodatkiem podłoża i izolatów Trichoderma
Po okresie inkubacji woreczki wyjęto z gleby i określono liczbę pozostałych sklerocjów (sklerocja „odzyskane”). Następnie sklerocja wysterylizowano w 70% etanolu przez 3 minuty, dwukrotnie wypłukano w sterylnej wodzie destylowanej i wyłożono na szalki z pożywką ziemniaczaną (PDA-Merck) z dodatkiem antybiotyków: streptomycyny i rifampicyny. Sklerocja wyłożono po 2 lub 3 sztuki na szalkę w doświadczeniu 1 i po 1 sztuce na szalkę w doświadczeniu 2. Po 10 dniach inkubacji w temperaturze 25°C zaobserwowano wyrastającą ze sklerocjów grzybnię. Identyfikacja grzybów S. sclerotiorum była stosunkowo łatwa, ponieważ na wyrastającej z żywych sklerocjów grzybni bardzo szybko, w ciągu ok. 6-10 dni, wytworzyły się nowe, bardzo charakterystyczne sklerocja.
Analizę statystyczną wyników wykonano na podstawie analizy wariancji. Porównano średnie w poszczególnych seriach doświadczeń przy wykorzystaniu testu Newmana-Keu ls'a o czynniku alfa<0,05.
Wyniki uzyskane w doświadczeniu 1 wykazały, że zastosowane w doświadczeniach izolaty Trichoderma (TRS 123, TRS 25, TRS 114), wniesione wraz z podłożem, zmniejszyły przeżywalność
PL 226 445 B1 sklerocjów patogena S. sclerotiorum. Liczby sklerocjów spasożytowanych przez grzyby Trichoderma były nieco zróżnicowane w zależności od zastosowanego izolatu i doświadczenia, jednak we wszystkich przypadkach obserwowano obniżenie przeżywalności patogena. Zastosowano 3 różne gatunki grzybów Trichoderma: T. atroviridae, T. virens i T. gamsii. Istotne jest, że opracowane podłoże jest dobre dla różnych gatunków Trichoderma i jest skuteczne w zwalczaniu patogena bez względu na gatunek Trichoderma.
Wyniki uzyskane w doświadczeniu 2 wykazały, że wzbogacenie gleby o podłoże oraz podłoże z izolatem Trichoderma obniżało przeżywalność sklerocjów patogena S. sclerotiorum o 26-35% w stosunku do gleby kontrolnej bez dodatków. Zaobserwowano także, że obecność podłoża znacznie obniżała kondycję sklerocjów, które „przeżyły”. W wielu przypadkach sklerocja te wytwarzały bardzo delikatną grzybnię, a następnie, znacznie później, sklerocja w śladowej ilości. Dodatek samego izolatu Trichoderma był w tym przypadku znacznie mniej skuteczny.
Przeżywalność sklerocjów S. sclerotiorum obniżała się także w kombinacjach wzbogaconych w samo podłoże. Należy jednak podkreślić, że podłoża zawierające izolaty Trichoderma były skuteczniejsze. Obydwa te czynniki: podłoże z wytłoków i grzyby Trichoderma pasożytujące sklerocja, działały synergistycznie Wytłoki owocowe zawierają w swoim składzie związki biologicznie aktywne, np. związki fenolowe - kwasy fenolowe, flawonoidy, ligniny, polimeryczne taniny i inne (Alberto i in. 2006; Velicanski i in, 2012; Kosmala i in. 2013). Wg Tarko i in. (2012) zawartość polifenoli w odpadach owocowych jest ok. 5 razy większa niż w wytłokach buraczanych czy marchwiowych. Związki zawarte w wytłokach, wchodzących w skład podłoża, wraz z powstającymi w trakcie jego rozkładu w glebie innymi związkami działającymi allelopatycznie (kwasy organiczne, amoniak i inne) mogą uszkadzać zewnętrzne komórki sklerocjum S. sclerotiorum i ułatwiać ich pasożytowanie przez grzyby Trichoderma. Ekspozycja patogena S. sclerotiorum na związki wydzielające się z rozkładu materiału organicznego najprawdopodobniej zwiększała także efektywność ich zasiedlania przez inne grzyby glebowe. Podobne zjawisko zostało opisane w przypadku innego grzyba tworzącego sklerocja Sclerotium cepivorum (Smolińska 2004) oraz microsklerocjów Verticillium dahliae (Smolińska i in. 2010) po dodaniu do gleby materiału z roślin Brassicaceae.
Claims (6)
1. Podłoże, zawierające substancje organiczne, służące do namnażania grzyba z rodzaju Trichoderma, znamienne tym, źe zawiera wytłoczyny z aronii, wytłoczyny z jabłek, wytłoczyny z malin, wytłoczyny z porzeczki i wytłoczyny z truskawek.
2. Podłoże według zastrz. 1, znamienne tym, że zawiera wysuszone wytłoczyny z aronii, wysuszone wytłoczyny z jabłek, wysuszone wytłoczyny z malin, wysuszone wytłoczyny z porzeczki i wysuszone wytłoczyny z truskawek zmieszane ze sobą w stosunku 1:1:1:1:1.
3. Podłoże według zastrz. 2, znamienne tym, że wysuszone wytłoczyny z aronii, wysuszone wytłoczyny z jabłek, wysuszone wytłoczyny z malin, wysuszone wytłoczyny z porzeczki i wy3 suszone wytłoczyny z truskawek są zmieszane ze sobą z dodatkiem wody w stosunku 1 dm3 3 wody na 25 dm3 mieszanki oraz poddane granulacji.
4. Sposób przygotowania podłoża, jak zdefiniowano w zastrz. 1, polegający na mieszaniu składników organicznych, znamienny tym, że wysuszone wytłoczyny z aronii, wysuszone wytłoczyny z jabłek, wysuszone wytłoczyny z malin, wysuszone wytłoczyny z porzeczki i wysuszone wytłoczyny z truskawek miesza się ze sobą w stosunku 1:1:1:1:1, następnie dodaje się wodę, korzystnie w ilości 1 dm3 wody na 25 dm3 mieszanki, miesza się wszystkie składniki do uzyskania masy o jednolitej konsystencji, następnie w czasie korzystnie do 2-3 godzin po wymieszaniu uzyskaną masę poddaje się granulacji, po czym uzyskany granulat suszy się w temperaturze 20-25°C przez okres do 10 dni.
5. Zastosowanie podłoża, jak zdefiniowano w zastrz. 1, do namnażania grzyba z rodzaju Trichoderma i ograniczania populacji grzybów patogenicznych, w szczególności Sclerotinia sclerotiorum.
6. Zastosowanie według zastrz. 5, w którym zamrożone fragmenty grzyba z rodzaju Trichoderma przechowywane w glicerolu przekłada się na pożywkę ziemniaczaną (PDA), następnie świeży fragment grzyba namnaża się na pożywce MEA i inkubuje się przez okres do
7 dni w temp. 25°C, po czym uzyskany grzyb Trichoderma miksuje się z dodatkiem 50 ml
PL 226 445 B1 3
NaCI (0,85%) i wprowadza do podłoża, korzystnie w ilości 25 ml zawiesiny na 5 dm3 podło3 ża, z dodatkiem wody w ilości 150 ml na 1 dm3 podłoża, następnie podłoże zawierające zawiesinę inkubuje się w temperaturze 18-26°C przez okres do 18 dni.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL409340A PL226445B1 (pl) | 2014-09-01 | 2014-09-01 | Podłoże, sposób przygotowania podłoża oraz zastosowanie podłoża do namnażania grzyba z rodzaju Trichoderma i ograniczania populacji grzybów patogenicznych Sclerotinia sclerotiorum |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL409340A PL226445B1 (pl) | 2014-09-01 | 2014-09-01 | Podłoże, sposób przygotowania podłoża oraz zastosowanie podłoża do namnażania grzyba z rodzaju Trichoderma i ograniczania populacji grzybów patogenicznych Sclerotinia sclerotiorum |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL409340A1 PL409340A1 (pl) | 2016-03-14 |
| PL226445B1 true PL226445B1 (pl) | 2017-07-31 |
Family
ID=55450763
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL409340A PL226445B1 (pl) | 2014-09-01 | 2014-09-01 | Podłoże, sposób przygotowania podłoża oraz zastosowanie podłoża do namnażania grzyba z rodzaju Trichoderma i ograniczania populacji grzybów patogenicznych Sclerotinia sclerotiorum |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL226445B1 (pl) |
-
2014
- 2014-09-01 PL PL409340A patent/PL226445B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL409340A1 (pl) | 2016-03-14 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Saxena et al. | Impact of addition of biochar along with Bacillus sp. on growth and yield of French beans | |
| El-Tarabily et al. | Potential of yeasts as biocontrol agents of soil-borne fungal plant pathogens and as plant growth promoters | |
| Mengesha et al. | Diverse microbial communities in non-aerated compost teas suppress bacterial wilt | |
| Pugliese et al. | Microbial enrichment of compost with biological control agents to enhance suppressiveness to four soil-borne diseases in greenhouse | |
| Jambhulkar et al. | Natural mechanisms of soil suppressiveness against diseases caused by Fusarium, Rhizoctonia, Pythium, and Phytophthora | |
| Smolinska et al. | The use of agro-industrial wastes as carriers of Trichoderma fungi in the parsley cultivation | |
| Derkowska et al. | Influence of biofertilizers on plant growth and rhizosphere microbiology of greenhouse-grown strawberry cultivars | |
| Smolińska et al. | Eradication of Sclerotinia sclerotiorum sclerotia from soil using organic waste materials as Trichoderma fungi carriers | |
| Sinha et al. | Organic farming by vermiculture: producing safe, nutritive and protective foods by earthworms (Charles Darwin's friends of farmers) | |
| Kamel et al. | Potentiality of some yeast species as biocontrol agents against Fusarium oxysporum f. sp. cucumerinum the causal agent of cucumber wilt | |
| El Hage et al. | Harvest and postharvest technologies | |
| Hernandes et al. | Biological products in association with organic matter to control Meloidogyne javanica in tomato | |
| PL226445B1 (pl) | Podłoże, sposób przygotowania podłoża oraz zastosowanie podłoża do namnażania grzyba z rodzaju Trichoderma i ograniczania populacji grzybów patogenicznych Sclerotinia sclerotiorum | |
| Siddiqui et al. | Bio-intensive management of fungal diseases of fruits and vegetables utilizing compost and compost teas | |
| ZALĂ et al. | PRELIMINARY RESEARCH ON SOIL MICROFLORA AND MACROFAUNA IN THE EXPERIMENTAL FIELD MOARA DOMNEASCĂ. | |
| Grzyb et al. | Effect of fertilization in organic nursery for later growth and fruiting of apple trees in the orchard | |
| Liu et al. | Biocontrol of Fusarium crown and root rot of tomato and growth-promoting effect of bacteria isolated from recycled substrates of soilless crops | |
| Bakr et al. | Potential of different compost types in enhancement of physiological, biochemical parameters and control of Meloidogyne javanica in tomato plants | |
| Raviv | Compost as a tool to suppress plant diseases: Established and putative mechanisms | |
| Lopez et al. | Isolation of Trichoderma species from carabao manure and evaluation of its beneficial uses | |
| Seneviratne et al. | Microbial biofertilizer application versus compost use in agriculture: soil health implications | |
| Khalil | Influence of electrical conductivity on biological activity of Pythium ultimum and Binab T in a closed soilless system | |
| Seymen et al. | Effects of bacteria inoculation on yield, yield components and mineral composition in eggplant (Solanum melongena L.) | |
| Yatoo et al. | Compost and Vermicompost: Eco-friendly Farming Practices to Promote Sustainable Agriculture | |
| Rahman et al. | Trichoderma-fortified compost in controlling diseases and increasing yield of tomato |