PL225776B1 - Biosensor hybrydowy do wykrywania katecholu - Google Patents
Biosensor hybrydowy do wykrywania katecholuInfo
- Publication number
- PL225776B1 PL225776B1 PL409070A PL40907014A PL225776B1 PL 225776 B1 PL225776 B1 PL 225776B1 PL 409070 A PL409070 A PL 409070A PL 40907014 A PL40907014 A PL 40907014A PL 225776 B1 PL225776 B1 PL 225776B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- catechol
- biosensor
- detection
- benzofurazan
- carbazole
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Description
Przedmiotem wynalazku jest biosensor hybrydowy przeznaczony do wykrywania katecholu w roztworach wodnych.
Znane są bioczujniki hybrydowe wytwarzane z wykorzystaniem różnych technik samoorganizacji cząstek na powierzchni z kwasów tłuszczowych, fosfolipidów, porfiryn oraz makrostruktur przew odzących.
Powszechnie znane są biosensory, których czułe elementy stanowią: acetylcholinoesteraza, ureaza, oksydaza glukozowa, oraz mutarotaza i inwertaza. Biokatalizatory te zostały unieruchomione w membranach, wytworzonych z albumin oraz innych białek wołowych. Enzymy zostały związane kowalencyjnie w porowatych membranach co zostało np. ujawnione w opisie nr UA27284 (U).
Z innego zgłoszenia patentowego nr KR20130135707 (A) znany jest immunobiosensor, w którym część biologiczna układu immobilizowana jest na cienkim filmie otrzymanym z parylenu (poli-p-ksylilen).
Z opisu wzoru użytkowego nr CN203231995 (U) znany jest biosensor do wykrywania jonów metali szlachetnych i metali ciężkich. Urządzenie tego typu posiada elektrodę pracującą wytworzoną z politetrafluoroetylenu.
Innym bioczujnikiem znanym ze zgłoszenia nr US2010116655 (A1) jest warstwowy sensor do wykrywania katecholamin w organizmie ludzkim, który zbudowany jest z warstwy detekcyjnej w post aci cyklodekstryn oraz elementów biologicznych.
Amerykańskie zgłoszenie patentowe nr US2003236448 (A1) dotyczy wytwarzania i aplikacji elektrochemicznego sensora biologicznego do wykrywania obecności acetoaminofenonu, kwasu m oczowego i askorbinowego oraz katecholoamin w zakresie potencjału +0,3 do -0,25V.
Polimerowe matryce służące do pułapkowania białek enzymatycznych ujawniono w europejskim opisie patentowym nr EP1826564 (B1).
W ostatnich latach coraz częściej warstwy Langmuira-Schaefera wykorzystywane są w konstrukcji szczególnie selektywnych urządzeń diagnozujących różne substancje w środowisku natura lnym oraz diagnostyce medycznej.
Biosensor hybrydowy do wykrywania katecholu według wynalazku ma warstwę aktywną w postaci tyrozynazy zimmobilizowanej adsorpcyjnie na powierzchni filmu Langmuira-Schaefera zawierającego W-heksylo-3,6-bis(5-benzofurazano)karbazol.
Korzystnie biosensor utworzony jest z równomolowej mieszaniny W-heksylo-3,6-bis(5-benzofurazano)karbazolu oraz tyrozynazy.
Biosensor według wynalazku wytworzony jest z ultracienkiej warstwy i nadaje się do wykrywania katecholu i jego pochodnych w roztworach wodnych. Zaletą biosensora jest jego duża czułość i fakt, że nadaje się do wykrywania małych stężeń katecholu. Nie bez znaczenia jest również dość długa żywotność zimmobilizowanego białka, które zachowuje swoją katalityczną aktywność w ciągu kolejnych 25 cykli reakcyjnych (2 miesiące). Warstwa Langmuira-Schaefera według wynalazku i powtarzalność otrzymanych wyników oraz różne odpowiedzi czujnika zbudowanego z W-heksylo-3,6-bis(5-benzofurazano)karbazolu oraz tyrozynazy na różne stężenia katecholu, typują ten materiał do budowy czujników stosowanych w diagnostyce medycznej.
Przedmiot wynalazku jest wyjaśniony w przykładzie realizacji i na rysunku, na którym fig. 1 przedstawia schemat pracy biosensora białkowego, fig. 2 - wykres zależności relatywnej aktywności białka unieruchomionego w filmie LS od kolejnego cyklu reakcyjnego, fig. 3 ilustruje aktywność tyroz ynazy zimmobilizowanej w filmie zbudowanym z dodatkiem W-heksylo-3,6-bis(5-benzofurazano)karbazolu.
P r z y k ł a d
Biosensor hybrydowy zawierający tyrozynazę unieruchomioną adsorpcyjnie w filmach Langmuira-Schaefera, otrzymano z równomolowej mieszaniny W-heksylo-3,6-bis(5-benzofurazano)karbazolu oraz tyrozynazy.
Następnie biosensor białkowy B według wynalazku wprowadzono do reaktora mieszalnikowego, o pojemności 25 ml zawierającego 0,2 mM katecholu S jako substratu, a następnie prowadzono reakcję do momentu otrzymania produktu P. Proces i pomiar aktywności zimmobilizowanego białka (tyrozynazy) prowadzono w temperaturze 30°C, w 0,1 molowym buforze fosforanowym o pH 7,0. Zmianę absorbancji notowano przy użyciu spektrofotometru PR typu UNICAM HELIOS-α. Spektrofotometr UNICAM HELIOS-a w trakcie prowadzonego procesu zmieniał sygnał chemiczny na mierzalny
PL 225 776 B1 sygnał optyczny SY. W trakcie prowadzonego procesu, pomiary absorpcyjne rejestrowano przy długości fali równej 400 nm.
Aktywność białek zimmobilizowanych, przedstawiono na fig. 2 jako funkcję liczby jednostek aktywności U na 1 cm otrzymanego filmu LS w czasie kolejnych reakcji. Za 1 U przyjęto taką ilość białka, która w warunkach testu powoduje zmianę absorbancji o 0,0001 w ciągu jednej minuty. Omawiane badania nad aktywnością tyrozynazy były wykonywane przy zastosowaniu katecholu.
W przedstawionym na fig. 3 wykresie uwidaczniającym porównanie aktywności danych jednoznacznie wynika, że wprowadzenie do filmu Langmuira-Schaefera W-heksylo-3,6-bis(5-benzofurazano)karbazolu powoduje wzrost aktywności zimmobilizowanego białka o około 40%. Z przeprowadzonych badań wynika, że obecność W-heksylo-3,6-bis(5-benzofurazano)karbazolu w filmach LS ze względu na mediacyjny charakter elektroprzewodzącego układu, usprawnia transport elektronów, przez co znacznie poprawia aktywność katalityczną unieruchomionego białka.
Zaobserwowano duże różnice w aktywności tyrozynazy pułapkowanej w filmie LS otrzymanym z dodatkiem lub bez W-heksylo-3,6-bis(5-benzofurazano)karbazolu. Efekt ten związany jest z rolą W-heksylo-3,6-bis(5-benzofurazano)karbazolu jako elektronowego mediatora procesu.
Długość życia zimmobilizowanego białka według wynalazku wynosi co najmniej 2 miesiące. Stała, wysoka zdolność utleniania substratu zachowana jest przez kolejne 25 cykli reakcyjnych.
Claims (2)
1. Biosensor hybrydowy do wykrywania katecholu, znamienny tym, że ma warstwę aktywną w postaci tyrozynazy zimmobilizowanej adsorpcyjnie na powierzchni filmu Langmuira-Schaefera zawierającego W-heksylo-3,6-bis(5-benzofurazano)karbazol.
2. Biosensor według zastrz. 1, znamienny tym, że utworzony jest z równomolowej mieszaniny W-heksylo-3,6-bis(5-benzofurazano)karbazolu oraz tyrozynazy.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL409070A PL225776B1 (pl) | 2014-08-04 | 2014-08-04 | Biosensor hybrydowy do wykrywania katecholu |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL409070A PL225776B1 (pl) | 2014-08-04 | 2014-08-04 | Biosensor hybrydowy do wykrywania katecholu |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL409070A1 PL409070A1 (pl) | 2015-03-02 |
| PL225776B1 true PL225776B1 (pl) | 2017-05-31 |
Family
ID=52574577
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL409070A PL225776B1 (pl) | 2014-08-04 | 2014-08-04 | Biosensor hybrydowy do wykrywania katecholu |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL225776B1 (pl) |
-
2014
- 2014-08-04 PL PL409070A patent/PL225776B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL409070A1 (pl) | 2015-03-02 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Hu et al. | Ultrasensitive detection of bacteria using a 2D MOF nanozyme-amplified electrochemical detector | |
| Pundir et al. | Biosensing methods for xanthine determination: A review | |
| Singh et al. | Urea biosensors | |
| Brahman et al. | DNA-functionalized electrochemical biosensor for detection of vitamin B1 using electrochemically treated multiwalled carbon nanotube paste electrode by voltammetric methods | |
| Omar et al. | Electrochemical detection of uric acid via uricase-immobilized graphene oxide | |
| Ahmad et al. | Wide linear-range detecting high sensitivity cholesterol biosensors based on aspect-ratio controlled ZnO nanorods grown on silver electrodes | |
| Temoçin | Modification of glassy carbon electrode in basic medium by electrochemical treatment for simultaneous determination of dopamine, ascorbic acid and uric acid | |
| Kucherenko et al. | A highly selective amperometric biosensor array for the simultaneous determination of glutamate, glucose, choline, acetylcholine, lactate and pyruvate | |
| Chauhan et al. | Immobilization of lysine oxidase on a gold–platinum nanoparticles modified Au electrode for detection of lysine | |
| Devi et al. | A method for determination of xanthine in meat by amperometric biosensor based on silver nanoparticles/cysteine modified Au electrode | |
| Kemmegne-Mbouguen et al. | Simultaneous quantification of dopamine, acetaminophen and tyrosine at carbon paste electrodes modified with porphyrin and clay | |
| Granero et al. | Simultaneous determination of ascorbic and uric acids and dopamine in human serum samples using three-way calibration with data from square wave voltammetry | |
| Lupu et al. | Development of a potentiometric biosensor based on nanostructured surface for lactate determination | |
| Lebogang et al. | Development of a real-time capacitive biosensor for cyclic cyanotoxic peptides based on Adda-specific antibodies | |
| Wang et al. | Discriminative intracellular and extracellular ATP detection based on magnetically controlled antimicrobial peptide | |
| Sanz et al. | Disposable superoxide dismutase biosensors based on gold covered polycaprolactone fibers for the detection of superoxide in cell culture media | |
| Akyilmaz et al. | Voltammetric determination of epinephrine by White rot fungi (Phanerochaete chrysosporium ME446) cells based microbial biosensor | |
| Paimard et al. | Fabrication of a highly sensitive amperometric sensor using 1, 4-phenylene-N, N′-bis (O, O-diphenylphoramidate)/CdS quantum dots/multi-walled carbon nanotubes for nanomolar detection of captopril | |
| Li et al. | Dual signal output detection of acetamiprid residues in medicine and food homology products via nanopore biosensor | |
| JP2009058232A (ja) | 分子鋳型を有するポリマーを備えたセンサー | |
| Pan et al. | Determination of carbamazepine: a comparison of the differential pulse voltammetry (DPV) method and the immunoassay method in a clinical trial | |
| JP2007333714A (ja) | 超微量ヒスタミン計測用電気化学バイオセンサ | |
| Guo et al. | Biohybrid hydrogen-bonded organic framework sandwiched between nanoporous membranes: Novel structure for ultrasensitive electrochemical detection of urea | |
| PL225776B1 (pl) | Biosensor hybrydowy do wykrywania katecholu | |
| Medyantseva et al. | An amperometric monoamine oxidase biosensor for determining some antidepressants |