PL214784B1 - Sposób identyfikacji odmian miodu - Google Patents

Sposób identyfikacji odmian miodu

Info

Publication number
PL214784B1
PL214784B1 PL386031A PL38603108A PL214784B1 PL 214784 B1 PL214784 B1 PL 214784B1 PL 386031 A PL386031 A PL 386031A PL 38603108 A PL38603108 A PL 38603108A PL 214784 B1 PL214784 B1 PL 214784B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
honey
wavelength
light
sample
fluorescent light
Prior art date
Application number
PL386031A
Other languages
English (en)
Other versions
PL386031A1 (pl
Inventor
Stefan Gebala
Piotr Przybyłowski
Original Assignee
Akademia Morska
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Akademia Morska filed Critical Akademia Morska
Priority to PL386031A priority Critical patent/PL214784B1/pl
Priority to PCT/PL2009/000006 priority patent/WO2010027286A1/en
Publication of PL386031A1 publication Critical patent/PL386031A1/pl
Publication of PL214784B1 publication Critical patent/PL214784B1/pl

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/62Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
    • G01N21/63Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
    • G01N21/64Fluorescence; Phosphorescence
    • G01N21/6486Measuring fluorescence of biological material, e.g. DNA, RNA, cells
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/02Food

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
  • Investigating Or Analysing Materials By Optical Means (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób identyfikacji odmian miodu.
Obecnie do identyfikacji odmian miodu stosowana jest metoda melitopalynologiczna. Metoda ta polega na badaniu zawartej w miodzie nierozpuszczalnej frakcji, której część stanowi pyłek kwiatowy, zarodniki grzybów i zielone glony. Wzajemny stosunek tych trzech składników jest różny w różnych typach miodu. Do identyfikacji odmiany danego miodu tym sposobem, należy wykonać preparat mikroskopowy z odwirowanego osadu miodowego, rozpoznać występujące w nim pyłki roślin miododajnych a następnie określić ich liczebności. Doświadczalnie wyznaczone współczynniki zaproszeń pyłkami poszczególnych gatunków nektarów mają pozwalać na wyliczenie ilościowych proporcji pomiędzy tymi surowcami użytymi przez pszczoły do wytworzenia danego miodu. Przynależność danego miodu do jakiejś odmiany określa się na podstawie przyjętych kryteriów.
Metoda melitopalynologiczna jest skomplikowana, czasochłonna i wymaga wykwalifikowanego personelu. Ponadto jej wyniki nie są w pełni zadowalające. W związku z tym stosuje się ją sporadycznie i raczej jako metodę referencyjną dla badań naukowych, a nie w celu określenia odmiany miodu jako towaru handlowego.
Znane są z publikacji Popek S. „Studium identyfikacji miodów odmianowych i metodologii oceny właściwości fizykochemicznych determinujących ich jakość”, Monografie 147, Wydawnictwo AE w Krakowie, oraz z publikacji Krauze A, Zalewski R., 1999 „ Classfication of Honeys by Principial Component Analysis on the Basis of Chemical and Phisical Parameters, Zeitschrift fur LebensMittel Untersung und Forschung” 192, 19-23, metody identyfikacji odmian miodu na podstawie analizy pojedynczych parametrów fizykochemicznych lub na podstawie stworzonych funkcji matematycznych obejmujących kilka cech miodu.
Znana jest także z publikacji Bogdanov S., 1989 „Determination of Pinocembrin in Honey Using HPLC, Journal of Apicultural Research 28 (1), 55-57, metoda identyfikacji odmian miodu, oparta na zawartości barwników w miodach.
Znana jest z publikacji Giemza M 1999 „Znaczenie barwy w ocenie jakości produktów na przykładzie miodów odmianowych” AE w Krakowie, dysertacja, metoda identyfikacji odmian miodu w oparciu o barwę określaną sensorycznie.
Znana jest także z publikacji Latorre M i inni 1999 „Chemometric classification of honeys according to their type. II. Metal content data, Food Chemistry 66, 263-268, oraz 2000„ Autentication of Galician (N.W. Spain) honeys by multivariante techniques based on metal content data, The Analyst 125, 307-312, metoda identyfikacji, oparta o skład minerałów w miodzie.
Dla uzyskania zadowalających rezultatów identyfikacji odmian miodów próbowano łączyć pomiar różnych parametrów, takich jak zawartość wody, kwasowość, zawartość popiołu, przewodność elektryczną, zawartość cukrów, parametry barwy.
Opieranie metody identyfikacji na tak rozbudowanych kompilacjach wielu parametrów stwarza niebezpieczeństwo, że mogą pojawić się odmiany, dla których odróżnienia będzie trzeba wprowadzić jeszcze inne parametry, znacznie komplikujące i tak już skomplikowaną metodę.
Niewielka liczba oficjalnych odmian miodu wynika z trudności w ich identyfikacji.
Znany jest z patentu PL 206606 sposób pomiaru fluorescencji ze swobodnej powierzchni płynnej próbki miodu, w którym ujawniono geometrię pomiaru fluorescencji warstwy powierzchniowej płynnej próbki miodu, polegający na tym, że badaną próbkę miodu umieszcza się w otwartym od góry obszarze pomiarowym i kieruje światło wzbudzania na otwartą powierzchnię tej próbki a następnie dokonuje się pomiaru natężenia powstałej fluorescencji o wybranej długości fali.
Celem wynalazku jest opracowanie sposobu identyfikacji odmian miodu w oparciu o parametr ściśle związany z ich autentycznością dla konsumentów, charakterystyczny dla danej odmiany, który umożliwiłby w sposób obiektywny, niezawodny, dostępny, tani i szybki, zidentyfikować odmianę badanego miodu.
Istotą wynalazku jest wykorzystanie zjawiska koncentracji barwników pochodzenia roślinnego na swobodnej powierzchni miodu w postaci naturalnej, a przede wszystkim karotenoidów i flawonoidów. W zależności od swojego pochodzenia botanicznego miody różnią się zawartością i rodzajem tych barwników. W cząsteczkach barwników występują zawsze pary elektronowych wiązań podwójnych π współdziałających często z elektronami π pierścieni aromatycznych. Z budowy tych związków wynika możliwość specyficznej absorpcji i emisji światła. Cząsteczki flawonoPL 214 784 B1 idów są amfofilne. Ich pierścień na jednym końcu wykazuje właściwości hydrofobowe, natomiast grupy hydroksylowe na drugim końcu cząsteczki są hydrofilowe. Z tego powodu cząsteczki te pokrywają powierzchnię miodu i ponadto, jako barwniki mogą fluoryzować.
Zgodnie z wynalazkiem, sposób identyfikacji odmian miodu, polegający na wzbudzeniu swobodnej powierzchni próbki miodu światłem białym skierowanym z góry na tę powierzchnię a następnie rejestrowaniu natężenia światła fluorescencji i tworzeniu ich uporządkowanego zbioru oraz porównaniu go z wzorcowym zbiorem natężeń dla danych odmian miodów, według wynalazku charakteryzuje się tym, że swobodną powierzchnię próbki miodu wzbudza się światłem o długościach fal z zakresu 200 * 500 nm a natężenie światła fluorescencji rejestruje się dla długości fal z zakresu 250 * 650 nm emitowanego w kierunku przeciwnym do kierunku wzbudzenia.
W celu skoncentrowania informacji spektralnej, rejestruje się natężenia światła fluorescencji, dla których różnica pomiędzy długością fali światła fluorescencji (yF) a długością fali światła wzbudzania (yw) jest stała.
Różnica pomiędzy długością fali światła fluorescencji (yF) a długością fali światła wzbudzania (yw), korzystnie wynosi 100 nm.
Korzystnie, wzorcowy zbiór natężeń światła fluorescencji dla danych odmian miodu oraz zbiór natężeń badanej próbki przedstawia się w postaci wektorów w przestrzeni wielowymiarowej i określa się przynależność badanej próbki miodu do danej odmiany w oparciu o algebraiczną analizę wektorową.
Pomiar fluorescencji próbki miodu według wynalazku pozwala na jednoznaczne i szybkie zidentyfikowanie jej botanicznego pochodzenia. Zastosowanie sposobu według wynalazku pozwoliło na otrzymanie widm fluorescencyjnych, różniących się istotnie dla różnych odmian miodu i istotnie podobnych dla miodu tej samej odmiany. Tak więc poszczególnym odmianom miodu można przyporządkować określone typy widm fluorescencji pochodzącej z tej warstwy oraz poszczególnym widmom fluorescencji warstwy powierzchniowej można przyporządkować odmiany miodu. Sposobem według wynalazku można zidentyfikować pododmiany znanej odmiany miodu oraz odmiany miodu dotychczas nieznane. Analiza próbki trwa mniej niż 5 minut. Miód przed analizą nie jest poddawany żadnej obróbce, co eliminuje koszty zakupu odczynników chemicznych oraz skraca czas procedury analitycznej.
Przykładowe widma synchroniczne dla różnych odmian miodu, uzyskane sposobem według wynalazku są zilustrowane na rysunku, na którym fig. 1 przedstawia widma miodów akacjowych, fig 2 - rzepakowych, fig. 3 - gryczanych, fig. 4 - wrzosowych, fig. 5 - lipowych i odpowiednio fig. 1a-5a przedstawiają wzorcowe widma średnie tych odmian.
Zgodnie z wynalazkiem, wielokrotnie wybierano wiązkę światła wzbudzającego o wybranej długości fali z zakresu 200 * 500 nm i kierowano na swobodną powierzchnię próbki miodu, z góry na tę powierzchnię, z odległości 1 mm, po czym rejestrowano natężenie światła fluorescencji o długościach fal z zakresu 250 * 650 nm, emitowanego w kierunku przeciwnym do kierunku wzbudzenia. W celu skoncentrowania informacji spektralnej, rejestrowano natężenie światła fluorescencji, dla których różnica pomiędzy długością fali światła fluorescencji (yF) a długością fali światła wzbudzania (yw) jest stała i korzystnie wynosiła 100 nm. Zbiór tych natężeń uporządkowano względem długości światła wzbudzenia (yw) i otrzymano obraz widma synchronicznego, charakterystycznego dla danej odmiany.
W ten sposób przeanalizowano kilkanaście próbek jednej odmiany uzyskując zbiór widm synchronicznych. Uśredniając wyniki w zakresie danych odmian, otrzymano widma wzorcowe.
Dla odmiany akacjowej występują charakterystyczne maksima przy wzbudzeniach o długości fali 220 nm, 280 nm i 335 mn, - fig. 1 i fig 1a. Dla odmiany rzepakowej, charakterystyczne maksima występują przy wzbudzeniach o długości fali 224 nm, 276 nm i 334 nm - fig. 2 i fig. 2a. Dla miodu gryczanego występują dwa maksima przy wzbudzeniach o długości fali 219 nm i 350 nm - fig. 3 i fig.3a.
Miody wrzosowe wykazują dwa maksima przy wzbudzeniach o długości fali 220 nm i 344 nm - fig. 4 i fig. 4a.
Miody lipowe wykazują jedno maksimum przy wzbudzeniu o długości fali 366 nm - fig. 5 i fig. 5a.
Postępując identycznie z nieznaną odmianą miodu, otrzymuje się jej widmo synchroniczne, które porównuje się z widmami wzorcowymi i na podstawie podobieństwa kształtów widm, określa się przynależność badanej próbki do danej odmiany.
PL 214 784 B1
Dokładną analizę podobieństwa badanej próbki miodu do wzorcowego zbioru widm i ustalenia jej przynależności do danej odmiany, można przeprowadzić w oparciu o algebraiczną analizę wektorową widm. Wykorzystanie komputera do sterowania pomiarami oraz zastosowanie obróbki cyfrowej wyników, pozwala na wykonanie ogromnej ilości pomiarów i ich szybkiej analizy.

Claims (3)

1. Sposób identyfikacji odmian miodu polegający na wzbudzeniu swobodnej powierzchni próbki miodu światłem białym skierowanym z góry na tę powierzchnię a następnie rejestrowaniu natężenia światła fluorescencji i tworzeniu ich uporządkowanego zbioru oraz porównaniu go z wzorcowym zbiorem natężeń dla danych odmian miodów, znamienny tym, że swobodną powierzchnię próbki miodu wzbudza się światłem o długościach fal z zakresu 200 * 500 nm a natężenie światła fluorescencji rejestruje się dla długości fal z zakresu 250 * 650 nm emitowanego w kierunku przeciwnym do kierunku wzbudzenia, dla których różnica pomiędzy długością fali światła fluorescencji (yF) a długością fali światła wzbudzania (yw) jest stała.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że różnica pomiędzy długością fali światła fluorescencji (yF) a długością fali światła wzbudzania (yw) wynosi 100 nm.
3. Sposób według zastrz. 1 do 2, znamienny tym, że wzorcowy zbiór natężeń światła fluorescencji dla danych odmian miodów oraz zbiór natężeń badanej próbki przedstawia się w postaci wektorowej w przestrzeni wielowymiarowej i określa się przynależność badanej próbki miodu do danej odmiany w oparciu o algebraiczną analizę wektorową.
PL386031A 2008-09-05 2008-09-05 Sposób identyfikacji odmian miodu PL214784B1 (pl)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL386031A PL214784B1 (pl) 2008-09-05 2008-09-05 Sposób identyfikacji odmian miodu
PCT/PL2009/000006 WO2010027286A1 (en) 2008-09-05 2009-01-22 Method for honey type authentication

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL386031A PL214784B1 (pl) 2008-09-05 2008-09-05 Sposób identyfikacji odmian miodu

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL386031A1 PL386031A1 (pl) 2010-03-15
PL214784B1 true PL214784B1 (pl) 2013-09-30

Family

ID=40833601

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL386031A PL214784B1 (pl) 2008-09-05 2008-09-05 Sposób identyfikacji odmian miodu

Country Status (2)

Country Link
PL (1) PL214784B1 (pl)
WO (1) WO2010027286A1 (pl)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NZ589582A (en) 2010-11-29 2013-03-28 Comvita Ltd Method and Apparatus For Honey Measurement
RU2506813C2 (ru) * 2012-03-12 2014-02-20 Сергей Викторович Афанасьев Способ получения водного раствора меда и способ проверки его подлинности
CN108645829B (zh) * 2018-05-15 2021-01-15 中国农业科学院蜜蜂研究所 一种快速识别蜂蜜品种和掺假蜂蜜的方法
CN111024637B (zh) * 2019-11-04 2022-03-08 营口市食品药品检验检测中心 一种利用紫外光谱扫描快速鉴别真假蜂蜜的方法

Also Published As

Publication number Publication date
PL386031A1 (pl) 2010-03-15
WO2010027286A1 (en) 2010-03-11

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Cho et al. Detection of cuticle defects on cherry tomatoes using hyperspectral fluorescence imagery
da Silva Medeiros et al. Assessment oil composition and species discrimination of Brassicas seeds based on hyperspectral imaging and portable near infrared (NIR) spectroscopy tools and chemometrics
Edelman et al. Identification and age estimation of blood stains on colored backgrounds by near infrared spectroscopy
ElMasry et al. Principles of hyperspectral imaging technology
Gowen et al. Recent applications of hyperspectral imaging in microbiology
Mounier et al. Hyperspectral imaging, spectrofluorimetry, FORS and XRF for the non-invasive study of medieval miniatures materials
Bağcıoğlu et al. A multiscale vibrational spectroscopic approach for identification and biochemical characterization of pollen
Bogomolov et al. Scatter-based quantitative spectroscopic analysis of milk fat and total protein in the region 400–1100 nm in the presence of fat globule size variability
Lu et al. Identification of Chinese red wine origins based on Raman spectroscopy and deep learning
Lohumi et al. Raman hyperspectral imaging and spectral similarity analysis for quantitative detection of multiple adulterants in wheat flour
Bonifazi et al. Modeling color and chemical changes on normal and red heart beech wood by reflectance spectrophotometry, Fourier Transform Infrared spectroscopy and hyperspectral imaging
Wu et al. Application of multiplexing fiber optic laser induced fluorescence spectroscopy for detection of aflatoxin B1 contaminated pistachio kernels
Nevin et al. The analysis of naturally and artificially aged protein‐based paint media using Raman spectroscopy combined with Principal Component Analysis
Kasampalis et al. Nutritional composition changes in bell pepper as affected by the ripening stage of fruits at harvest or postharvest storage and assessed non‐destructively
EP2828643A2 (fr) Procede et appareil de caracterisation d'echantillons par mesure de la diffusion lumineuse et de la fluorescence.
Mehretie et al. Classification of raw Ethiopian honeys using front face fluorescence spectra with multivariate analysis
PL214784B1 (pl) Sposób identyfikacji odmian miodu
Trivittayasil et al. Classification of 1-methylcyclopropene treated apples by fluorescence fingerprint using partial least squares discriminant analysis with stepwise selectivity ratio variable selection method
Echard et al. Synchrotron DUV luminescence micro-imaging to identify and map historical organic coatings on wood
Bavali et al. Quantitative detection of adulteration in avocado oil using laser-induced fluorescence and machine learning models
Aredo et al. Predicting of the quality attributes of orange fruit using hyperspectral images.
Pereira et al. Testing the Raman parameters of pollen spectra in automatic identification
Yao et al. Hyperspectral bright greenish-yellow fluorescence (BGYF) imaging of aflatoxin contaminated corn kernels
Xing et al. Wavelength selection for surface defects detection on tomatoes by means of a hyperspectral imaging system
Kim et al. Visible to SWIR hyperspectral imaging for produce safety and quality evaluation