PL213395B1 - Sensor białkowy do wykrywania związków fenolowych - Google Patents

Sensor białkowy do wykrywania związków fenolowych

Info

Publication number
PL213395B1
PL213395B1 PL390929A PL39092910A PL213395B1 PL 213395 B1 PL213395 B1 PL 213395B1 PL 390929 A PL390929 A PL 390929A PL 39092910 A PL39092910 A PL 39092910A PL 213395 B1 PL213395 B1 PL 213395B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
immobilized
protein
detection
phenolic compounds
laccase
Prior art date
Application number
PL390929A
Other languages
English (en)
Other versions
PL390929A1 (pl
Inventor
Joanna Cabaj
Jadwiga Sołoducho
Agnieszka Świst
Original Assignee
Politechnika Wroclawska
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Politechnika Wroclawska filed Critical Politechnika Wroclawska
Priority to PL390929A priority Critical patent/PL213395B1/pl
Publication of PL390929A1 publication Critical patent/PL390929A1/pl
Publication of PL213395B1 publication Critical patent/PL213395B1/pl

Links

Landscapes

  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Opis patentowy
Przedmiotem wynalazku jest sensor białkowy, przeznaczony do wykrywania związków fenolowych i fenolu w przemyśle spożywczym oraz w środowisku wodnym.
Biosensory są powszechnie stosowane w technologiach przemysłowych, spożywczych i w ochronie środowiska. Składają się z części biologicznej i części aparaturowej przetwarzającej sygnał odebrany przez element biologiczny. Bioczujniki mogą być oparte na receptorach chemicznych, immunologicznych lub biokatalitycznych. W bioczujnikach starego typu w części biologicznej stosowano często żywą tkankę roślinną lub zwierzęcą obecnie zmierza się do immobilizowania białek na powierzchniach transduktora.
Znane są bioczujniki warstwowe otrzymane z wykorzystaniem różnych technik samoorganizacji cząstek na powierzchni z kwasów tłuszczowych, fosfolipidów lub porfiryn. Tego typu systemy stanowią podstawę do budowy biosensorów oraz biologicznych sensorów optycznych. Znane są innego rodzaju czujniki enzymatyczne, których konstrukcja oparta jest na modyfikacji elektrod (np. platynowe) za pomocą polimerów przewodzących oraz odpowiednich enzymów.
Z europejskiego zgłoszenia patentowego nr EP2083015 znane są biosensory, których część biologicznie aktywna wiązana jest kowalencyjnie w porowatych polipeptydach tworząc charakterystyczne układy poro-sensorowe. Z amerykańskiego patentu nr US7572356, znany jest jednoelektrodowy biosensor zbudowany z użyciem membrany do dializ. Bioczujnik tego typu posiada elektrodę pokrytą filmem otrzymanym z mieszaniny hydrofitowego polimeru przewodzącego oraz enzymu. Z międzynarodowego zgłoszenia patentowego nr WO2009140343 znany jest elektrochemiczny biosensor do oznaczania stężenia hemoglobiny we krwi. Kolejnym elektrochemicznym biosensorem, dającym odpowiedź amperometryczną jest układ elektrod modyfikowanych ureazą i iminohydrolazą kreatyninową opisany w amerykańskim zgłoszeniu patentowym nr US 2010025265.
Z europejskiego zgłoszenia nr EP2082038 znany jest sensor biologiczny do wykrywania toluenu i ksylenu zbudowany z transformowanych szczepów Acinetobacter baylyi adp1. Innym bioczujnikiem znanym ze zgłoszenia nr EP1672353 jest biosensor do wykrywania toksyn w żywych tkankach, którego działanie opiera się na detekcji różnicy stężeń soli, zmian pH i polaryzacji między błonami zbudowanymi z ciekłych kryształów. Urządzenie to ma charakter fluorescencyjny. Z kolejnego europejskiego zgłoszenia patentowego nr EP1790984 znany jest bioczujnik, stabilny w warunkach utleniania. Urządzenie to zbudowane jest z białek kowalencyjnie immobilizowanych do grup w karboksylowych w hydrożelu modyfikowanym epichlorohydryną lub polisacharydami. W wynalazku według europejskiego zgłoszenia patentowego nr EP1828759 mediacyjny charakter rutynowych kompleksów został wykorzystany w konstrukcji warstwowych biosensorów, w których białka enzymatyczne były unieruchamiane w przewodnikowych względnie półprzewodnikowych warstwach węglowych. Z polskiego zgłoszenia patentowego nr P381953 znany jest warstwowy bioczujnik do wykrywania związków fenolowych w środowisku wodnym. Czujnik ma warstwę aktywną w postaci białka-lakazy zimmobilizowanej w filmie Langmuira-Blodgett (LB) otrzymanym z N-heptylo-3,6-bis(tiofeno)karbazolu, kwasu 22-trikozenowego i aldehydu glutarowego. Zimmobilizowane, korzystnie kowalencyjnie, białko - lakaza wykazuje dużą czułość na obecność fenolu oraz sól sodową kwasu 2,2'-azyno-bis-3-etylobenzenotiazolo-6-sulfonowego w roztworze wodnym.
W ostatnich latach coraz częściej elektrochemiczne elektrody modyfikowane są za pomocą białek enzymatycznych w celu konstrukcji selektywnych urządzeń diagnozujących substancje toksyczne w środowisku. W systemie tego typu białka są kowalencyjnie wiązane do układów kopolimerowych pokrywających elektrodę.
Istotę sensora białkowego do wykrywania związków fenolowych według wynalazku stanowi sensor zawierający warstwę aktywną w postaci lakazy zimmobilizowanej kowalencyjnie na powierzchni elektrochemicznego filmu, otrzymanego z kopolimeru w skład którego wchodzi kwas tiofenokarboksylowy, 3-metylotiofen i N-heptylo-3,6-bis(tiofeno)karbazol.
Korzystnie sensor utworzony jest w równomolowej mieszaniny kwasu tiofenokarboksylowego, 3-metylotiofenu i N-heptylo-3,6-bis(tiofeno)karbazolu oraz lakazy.
Sensor białkowy według wynalazku wytworzony jest z ultracienkiego filmu elektrochemicznego i nadaje się do wykrywania fenolu i jego toksycznych pochodnych w środowiskach wodnych oraz w przemyśle spożywczym. Zaletą biosensora jest jego bardzo duża czułość oraz fakt, że nadaje się do wykrywania różnych stężeń, a także jego szeroka aktywność substratowa. Nie bez znaczenia jest również dość długa żywotność zimmobilizowanego białka, które zachowuje swoją katalityczną
PL 213 395 B1 aktywność w ciągu kolejnych trzydziestu cykli reakcyjnych tj. około 4 miesiące. Warstwa elektrochemicznego filmu z immobilizowaną lakazą według wynalazku i powtarzalność otrzymanych wyników oraz różne odpowiedzi czujnika zbudowanego z kopolimeru w skład którego wchodzi kwas tiofenokarboksylowy, 3-metylotiofen oraz N-heptyIo-3,6-bis(tiofeno)karbazoI. na różne stężenia związków fenolowych, typują ten materiał do budowy czujników stosowanych w diagnostyce środowiska.
Przedmiot wynalazku jest wyjaśniony w przykładzie realizacji i na rysunku, na którym fig. 1 przedstawia schemat pracy sensora białkowego, fig. 2 - wykres zależności aktywności lakazy unieruchomionej w elektrochemicznym filmie mierzonej wzrostem natężenia płynącego prądu od zmiany przyłożonego napięcia, a fig. 3 - wykres zależności aktywności lakazy unieruchomionej w elektrochemicznym filmie mierzonej wzrostem natężenia płynącego prądu od zmiany przyłożonego napięcia w obecności tlenu.
P r z y k ł a d
Sensor białkowy zawierający lakazę zimmobilizowaną kowalencyjnie w elektrochemicznym filmie otrzymano z kopolimeru wytworzonego z równomolowej mieszaniny kwasu tiofenokarboksylowego, 3-metylotiofenu oraz N-heptylo-3,6-bis(tiofeno)karbazolu P w wyniku elektrodepozycji lakazy na platynowej elektrodzie Pt modyfikowanej polimerem przewodzącym P. Proces elektrodepozycji białka B na modyfikowanej elektrodzie pracującej prowadzono galwanostatycznie przy napięciu równym 200 μΑ w 0,1 M roztworze elektrolitu - LiCIO4 w buforze octanowym o pH 5,0. Następnie sensor białkowy według wynalazku wprowadzono do naczynia pomiarowego, o pojemności 50 ml zaopatrzonego w układ dwóch elektrod: elektrodę kalomelową (SCE) jako elektrodę odniesienia Eo oraz cylindryczną elektrodę platynową jako elektrodę pomocniczą Ep. Do pomiaru aktywności zimmobilizowanego białka użyto 0,2 mM hydrochinonu jako substratu, reakcję katalityczną prowadzono w warunkach beztlenowych i utlenionych, przepuszczając przez roztwór prąd w zakresie napięć -200 - 1000 mV. Proces i pomiar aktywności zimmobilizowanego białka prowadzono w temperaturze pokojowej w 0,1 molowym buforze octanowym o pH 5,0. Zmianę natężenia prądu notowano przy użyciu galwanostatu/potencjostatu ELECTROCHEMA. Układ pomiarowy w trakcie prowadzonego procesu zmieniał sygnał chemiczny na mierzalny sygnał amperometryczny.
Aktywność lakazy zimmobilizowanej, przedstawiono na fig. 2 jako funkcję natężenia prądu w zależności od wzrastającego napięcia, w obecności hydrochinonu jako substratu. Omawiane badania nad aktywnością lakazy były wykonywane przy zastosowaniu hydrochinonu, soli sodowej kwasu 2,2'-azyno-bis-3-etylobenzeno-tiazolo-6-sulfonowego (ABTS-u) oraz syringaldazyny jako substratów. Przedstawiony na fig. 3 wykres uwidacznia istotny wpływ tlenu na katalityczne właściwości białka.
Z przeprowadzonych badań wynika, że obecność kopolimeru zbudowanego z kwasu tiofenokarboksylowego, 3-metylotiofenu oraz N-heptylo-3,6-bis(tiofeno)karbazolu ze względu na mediacyjny charakter elektroprzewodzącego układu, usprawnia transport elektronów, przez co znacznie poprawia aktywność katalityczną unieruchomionego białka.
Długość życia zimmobilizowanego białka według wynalazku wynosi co najmniej 4 miesiące. Stała, wysoka zdolność utleniania substratu zachowana jest przez kolejnych 30 cykli reakcyjnych. Aktywność białka zimmobilizowanego w filmie stanowi około 80 % aktywności użytego do immobilizacji białka natywnego.

Claims (2)

1. Sensor białkowy do wykrywania związków fenolowych, zawierający warstwę aktywną - lakazę zimmobilizowaną w elektrochemicznym filmie osadzoną na podłożu stałym, znamienny tym, że lakaza zimmobilizowana jest kowalencyjnie na powierzchni elektrochemicznego filmu otrzymanego z kopolimeru w skład którego wchodzi kwas tiofenokarboksylowy, 3-metylotiofen i N-heptylo-3,6-bis(tiofeno)karbazol.
2. Sensor według zastrz. 1, znamienny tym, że utworzony jest z równomolowej mieszaniny kwasu tiofenokarboksylowego, 3-metylotiofenu N-heptylo-3,6-bis(tiofeno)karbazolu oraz lakazy.
PL390929A 2010-04-07 2010-04-07 Sensor białkowy do wykrywania związków fenolowych PL213395B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL390929A PL213395B1 (pl) 2010-04-07 2010-04-07 Sensor białkowy do wykrywania związków fenolowych

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL390929A PL213395B1 (pl) 2010-04-07 2010-04-07 Sensor białkowy do wykrywania związków fenolowych

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL390929A1 PL390929A1 (pl) 2011-10-10
PL213395B1 true PL213395B1 (pl) 2013-02-28

Family

ID=44838381

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL390929A PL213395B1 (pl) 2010-04-07 2010-04-07 Sensor białkowy do wykrywania związków fenolowych

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL213395B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL390929A1 (pl) 2011-10-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Yazdanparast et al. Enzyme-based ultrasensitive electrochemical biosensor using poly (l-aspartic acid)/MWCNT bio-nanocomposite for xanthine detection: A meat freshness marker
Ali et al. A fast and sensitive potentiometric glucose microsensor based on glucose oxidase coated ZnO nanowires grown on a thin silver wire
Aini et al. Development of glucose biosensor based on ZnO nanoparticles film and glucose oxidase-immobilized eggshell membrane
Pundir et al. Biosensing methods for xanthine determination: A review
Tyagi et al. Glad assisted synthesis of NiO nanorods for realization of enzymatic reagentless urea biosensor
Ambrózy et al. Protective membranes at electrochemical biosensors
Gabrovska et al. Immobilization of urease on nanostructured polymer membrane and preparation of urea amperometric biosensor
Govindarajan et al. Highly selective and stable microdisc biosensors for l-glutamate monitoring
Cho et al. Streamlining the interface between electronics and neural systems for bidirectional electrochemical communication
Lebègue et al. An optimal surface concentration of pure cardiolipin deposited onto glassy carbon electrode promoting the direct electron transfer of cytochrome-c
Herrera et al. A biosensor for the detection of acetylcholine and diazinon
Kafi et al. Development of a peroxide biosensor made of a thiolated-viologen and hemoglobin-modified gold electrode
Chauhan et al. Development of amperometric lysine biosensors based on Au nanoparticles/multiwalled carbon nanotubes/polymers modified Au electrodes
Arya et al. Dithiobissuccinimidyl propionate self assembled monolayer based cholesterol biosensor
Singh et al. Polyaniline based catalase biosensor for the detection of hydrogen peroxide and azide
Tan et al. Amperometric biosensor for catechol using electrochemical template process
Arora et al. Reagentless uric acid biosensor based on Ni microdiscs-loaded NiO thin film matrix
Lee et al. Determination of cytochrome c with cellulose–DNA modified carbon paste electrodes
PL213395B1 (pl) Sensor białkowy do wykrywania związków fenolowych
Bracamonte et al. Quaternized chitosan as support for the assembly of gold nanoparticles and glucose oxidase: Physicochemical characterization of the platform and evaluation of its biocatalytic activity
Manjunatha et al. Current progress in materials, device fabrication, and biomedical applications of potentiometric sensor devices: a short review
PL213396B1 (pl) Bioczujnik do wykrywania związków fenolowych
Aidil et al. Electrochemical detection of tributyrin using gold nanoparticle functionalized screen-printed electrode
PL231777B1 (pl) Biosensor enzymatyczny do wykrywania epinefryny
PL212346B1 (pl) Biosensor warstwowy do wykrywania związków fenolowych

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20130407