PL167763B1 - Sposób oznaczania glikozydów, zwłaszcza lanatozydu C w mieszankach recepturowych i preparatach roślinnych - Google Patents
Sposób oznaczania glikozydów, zwłaszcza lanatozydu C w mieszankach recepturowych i preparatach roślinnychInfo
- Publication number
- PL167763B1 PL167763B1 PL29391592A PL29391592A PL167763B1 PL 167763 B1 PL167763 B1 PL 167763B1 PL 29391592 A PL29391592 A PL 29391592A PL 29391592 A PL29391592 A PL 29391592A PL 167763 B1 PL167763 B1 PL 167763B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- mixture
- lanatoside
- chromatogram
- glycosides
- determination
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
Abstract
1 · Sposób oznaczania glikozydów, zwłaszcza lanatozydu C w mieszankach recepturowychi preparatach roślinnychmetodą chromatografu cienkowarstwowej przez naniesienie na powierzchnię adsorbentu umieszczonego na płytce chromatograficznej w komorze płaskiej z dystrybutorem, substancji wzorcowej oraz substancji badanej i rozwijanie chromatogramu, znamienny tym, że chromatogramrozwija się na dystansie 8-10 cm metodą elucji gradientowej stosując 8-10 porcji eluentu będącego mieszaniną co najmniej 2 rozpuszczalników o zróżnicowanej polarności, zawierających wzrastające ilości, uprzednio dobrane eksperymentalnie, odpowiednio od 1 do 100% rozpuszczalnika bardziej polarnego, a po zakończeniu procesu płytkę suszy się w strumieniu suchego powietrza i w znany sposób identyfikuje się substancje na chromatogramie·
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób oznaczania glikozydów, zawartych zwłaszcza w mieszankach recepturowych i preparatach roślinnych, szczególnie przydatny do oznaczania lanatozydu C występującego w niewielkich ilościach, na przykład w lekach recepturowych. Występowanie lanatozydu C obok innych składników często o podobnych właściwościach fizyko-chemicznych nastręcza duże trudności analityczne w jego oznaczaniu (Stahl E., Kaltenbach U.-J. Chromatogr. 5, 458 (1961); Sobiczewska M. Mucharska A. - Acta. Polon. Pharm. 41/2, 229 (1984)).
Opracowano wiele metod chromatograficznego badania lanatozydu C. Oznaczenia lanatozydu C łącznie z innymi glikozydami można dokonać kalorymetrycznie.
Związek ten oznacza się również metodą kalorymetryczną, po rozdzieleniu chromatograficznym na bibule lub za pomocą chromatografii cienkowarstwowej.
Sam lanatozyd C można oznaczać bezpośrednio na chromatogramach densytometrycznie w zakresie ultrafioletu lub przy wykorzystaniu wysokosprawnej chromatogramach densytometrycznie w zakresie ultrafioletu lub przy wykorzystaniu wysokosprawnej chromatografii cieczowej (Karting T. H., Kolbosil P. - J. Chromatogr. 138,238 (1977); Frei R. W. - Planta Med. 38,1 (1980)).
Metody podane z Farmakopei Polskiej IV (14) opierają się na bezpośrednim kolorymetryczynym oznaczeniu lanatozydu C wraz z innymi glikozydami, natomiast sam lanatozyd C jest oznaczony po oddzieleniu go na chromatogramach bibułowych. Norma Polska dla preparatu „lanatozyd C“ w kroplach przewiduje tylko kolorymetryczne oznaczanie sumy glikozydów, natomiast oznaczanie innych glikozydów opiera się na wizualnym określeniu wielkości intensywności plam na chromatogramach.
Dotychczasowe metody oznaczania lanatozydu C są bardzo praco i czasochłonne. Na przykład, oznaczanie metodą kolorymetryczną według Farmakopei Polskiej trwa około 24 godzin. Ponadto kolorymetryczne oznaczenia lanatozydu C zwykle zawodzą ze względu na małą ich wybiórczość, jak również z powodu jego małych stężeń w lekach recepturowych.
Wynalazek rozwiązuje zagadnienie oznaczania glikozydów, zwłaszcza lanatozydu C w sposób prosty z dużą dokładnością i w krótkim czasie oraz nawet dla niskich stężeń w roztworze badanym.
Podany efekt osiągnięto według wynalazku przez zastosowanie wysokosprawnej chromatografii cienkowarstwowej z elucją gradientową.
167 763
Istota sposobu według wynalazku polega na tym, że na powierzchnię adsorbentu umieszczonego na płytce w komorze chromatograficznej poziomej z dystrybutorem eluentu, nanosi się w znany sposób próbkę substancji wzorcowej oraz na tym samym poziomie próbkę substancji badanej, po czym rozwija się chromatogram na dystansie 8-10 cm metodą elucji gradientowej stosując 8-10 porcji eluentu będącego mieszaniną co najmniej 2 rozpuszczalników o zróżnicowanej polarności, zawierających wzrastające ilości, uprzednio dobrane eksperymentalnie, odpowiednio od 1 do 100% rozpuszczalnika bardziej polarnego. Po zakończeniu procesu płytkę suszy się w strumieniu suchego powietrza i w znany sposób identyfikuje się substancję na chromatogramie.
Jako eluentu stosuje się, korzystnie mieszaninę octanu etylu w metanolu, mieszaninę octanu etylu, metanolu i wody, przy czym wody w ilości maksymalnie do 10%, mieszaninę ketonu metylowo-etylowego z metanolem.
Wynalazek jest dodatkowo objaśniony na przykładach oznaczania lanatozydu C obok siedmiu innych glikozydów w ekstraktach roślinnych z Digitalis lanata i Digitalis orientalis.
Przykład . Do doświadczeń zastosowano komorę sandwicz według polskiego opisu patentowego nr 165 698. Badania chromatograficzne wykonano na płytkach szklanych typu HPTLC pokrytych żelazem krzemionkowym (Kieselgel 60) firmy Merck-Darmstadt RFN, o wymiarach 10X 10 cm.
Wzorcowe roztwory glikozydów: lanatozydu C, digitoksyny, digitaliny, desacetylolanatozydu C, strofantyny G, acetylodigitoksyny, konwalatoksyny, digoksyny przygotowano przez rozcieńczenie odważki metanolem do otrzymania roztworów o stężeniu 0,01%. Przygotowano jednocześnie wyciągi z Digitalis lanata i Digitalis orientalis. W tym celu odważono dokładnie 10 g sproszkowanego surowca do kolby stożkowej o pojemności 250 cm3, dodano 1000 cm3 roztworu metanolu w wodzie w stosunku 1:1 i wytrząsano 2 godziny. Dodano 25 cm3 30% roztworu octanu ołowiawego, zmieszano i nie przesączając wytrącono Pb2+ 15% roztworem fosforanu sodowego (NaHzPO4). Obecność jonów Pb2+ kontrolowano 2% roztworem KJ. Po przesączeniu osad przemywano trzykrotnie 50% roztworem wodno-metanolowym. Połączone przesącze wytrząsano 5krotnie chloroformem po 50 cm3. Zebrane wyciągi chloroformowe suszono bezwodnym Ńa2SO4, po przesączeniu wyciągi odparowano do sucha pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze 30-35°C. Suchą pozostałość rozpuszczono w 1 cm3 roztworu metanolu + chloroform w stosunku 1:1.
Roztwór wzorcowy glikozydów i ekstrakty roślinne nanoszono na linię startową płytki w postaci cienkich pasm o długości 1,5μ! każdego roztworu wzorcowego glikozydów i badanych ekstraktów i chromatografowano w układzie octanu etylu i metanol według gradientu podanego w tabeli. Płytki rozwijano na dystansie 8 cm. Rozwinięte chromatogramy suszono w temperaturze pokojowej, po czym spryskiwano dokładnie 10 ml 3% roztworem chloraminy w kwasie trójchlorooctowym. Chromatogramy ogrzewano w temperaturze 100-110°C przez 10 minut i obserwowano w świetle nadfioletowym UV 366 nm. Densytogramy wykonywano densytometrem firmy Shimadzu CS-930 przy długości fali 360 nm.
Uzyskane wyniki obrazują załączone rysunki, gdzie fig. 1 przedstawia densytogram mieszaniny glikozydów chromatografowanych według gradientu podanego w tabeli. Na fig. 1 pik 1 oznacza acetylodigitoksynę, pik 2 oznacza strofantynę, pik 3 oznacza digitalinę, pik 4 desacetyloanatozyd C, pik 5 lanatozyd C, pik 6 konwalatoksynę, pik 7 digoksym, pik 8 digitoksynę.
Figura 2 przedstawia densytogram ekstraktu z Digitalis Orientalis w układzie podanym w tabeli, przy czym pik 5 oznacza lanatozyd C. Pik 5 na fig. 3 oznacza lanatozyd C analizowany z ekstraktu Digitalis Lanata.
Tabela
Rozpuszczalnik
I II III IV V VI VII VIII IX
100 100 80 70 98 90 65 — — — — 20 30 2 10 35 100 100
Objętość jednego skoku 0,11 ml
Octan etylu % N
Metanol % N
167 763
f^2
-O. 200. 6.4
a,, ooo
1.600
1.200
Ο-βΟβ
O. 400
0.000
0.200
2.000
1.600
t.200
O. 400
- 0.200
S. 7
o. βοο
o.ooo
90. 2
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz. Cena 1,50 zł
Claims (2)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób oznaczania glikozydów, zwłaszcza lanatozydu C w mieszankach recepturowych i preparatach roślinnych metodą chromatografii cienkowarstwowej przez naniesienie na powierzchnię adsorbentu umieszczonego na płytce chromatograficznej w komorze płaskiej z dystrybutorem, substancji wzorcowej oraz substancji badanej i rozwijanie chromatogramu, znamienny tym, że chromatogram rozwija się na dystansie 8-10 cm metodą elucji gradientowej stosując 8-10 porcji eluentu będącego mieszaniną co najmniej 2 rozpuszczalników o zróżnicowanej polarności, zawierających wzrastające ilości, uprzednio dobrane eksperymentalnie, odpowiednio od 1 do 100% rozpuszczalnika bardziej polarnego, a po zakończeniu procesu płytkę suszy się w strumieniu suchego powietrza i w znany sposób identyfikuje się substancje na chromatogramie.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako rozpuszczalniki o zróżnicowanej polarności, stosuje się, korzystnie mieszaninę octanu etylu w metanolu, mieszaninę octanu etylu, metanolu i wody, przy czym wody w ilości maksymalnie do 10% objętościowych w odniesieniu do mieszaniny, mieszaninę ketonu metylowo-etylowego w metanolu.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL29391592A PL167763B1 (pl) | 1992-03-19 | 1992-03-19 | Sposób oznaczania glikozydów, zwłaszcza lanatozydu C w mieszankach recepturowych i preparatach roślinnych |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL29391592A PL167763B1 (pl) | 1992-03-19 | 1992-03-19 | Sposób oznaczania glikozydów, zwłaszcza lanatozydu C w mieszankach recepturowych i preparatach roślinnych |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL293915A1 PL293915A1 (en) | 1993-09-20 |
| PL167763B1 true PL167763B1 (pl) | 1995-10-31 |
Family
ID=20057141
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL29391592A PL167763B1 (pl) | 1992-03-19 | 1992-03-19 | Sposób oznaczania glikozydów, zwłaszcza lanatozydu C w mieszankach recepturowych i preparatach roślinnych |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL167763B1 (pl) |
-
1992
- 1992-03-19 PL PL29391592A patent/PL167763B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL293915A1 (en) | 1993-09-20 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Kritchevsky et al. | Detection of bile acids in thin-layer chromatography | |
| Chen et al. | Isolation of acidic, neutral, and basic drugs from whole blood using a single mixed-mode solid-phase extraction column | |
| Heftmann | Chromatography | |
| Głowniak et al. | Solid-phase extraction and reversed-phase high-performance liquid chromatography of free phenolic acids in some Echinacea species | |
| Zakaria et al. | Applications of two-dimensional thin-layer chromatography | |
| Roda et al. | Determination of free and amidated bile acids by high-performance liquid chromatography with evaporative light-scattering mass detection. | |
| SAKANO et al. | Measurement of K vitamins in human and animal feces by high-performance liquid chromatography with fluorometric detection | |
| Schulz et al. | High-performance liquid chromatographic characterization of some medical plant extracts used in cosmetic formulas | |
| PL167763B1 (pl) | Sposób oznaczania glikozydów, zwłaszcza lanatozydu C w mieszankach recepturowych i preparatach roślinnych | |
| Kesselmeier et al. | High Perform ance Liquid Chrom atographie Analysis of Steroidal Saponins from Avena sativa L | |
| Yao et al. | A precolumn derivatization high-performance liquid chromatographic method with improved sensitivity and specificity for the determination of astragaloside IV in Radix Astragali | |
| Oka et al. | Extraction-monitoring and rapid flow fractionation for determination of serum corticosteroids | |
| Mao et al. | Determination of triazine residues in herbal plants using molecularly imprinted polymer extraction followed by UPLC-MS/MS | |
| Matysik et al. | Computer-aided optimization of stepwise gradient profiles in thin-layer chromatography | |
| Blunden et al. | Quantitative estimation of monohydroxy saturated steroidal sapogenins in plant materials by densitometric thin-layer chromatography | |
| Musial et al. | Quantitative assay of conjugated and free bile acids as heptafluorobutyrate derivatives by gas-liquid chromatography. | |
| Johri et al. | Determination of Ge (IV), Sn (II), Pb (II) and Zn (II), Cd (II), Hg (II) by ring colorimetry after separation by thin-layer chromatography | |
| Shellard et al. | The quantitative determination of some mitragyna oxindole alkaloids after separation by thin-layer chromatography: Part IV. Comparison of ultra-violet spectrophotometry, colorimetry and densitometry as methods for the quantitative determination of oxindole alkaloids in plant material | |
| Das et al. | Lipid composition of beef heart ventricle | |
| Sackett | High-performance thin-layer chromatography of gibberellins in fermentation broths | |
| Hara et al. | Thin-layer chromatography of steroidal pharmaceuticals | |
| Lugt | Quantitative determination of digitoxin, gitaloxin, gitoxin, verodoxin and strospesid in the leaves of Digitalis purpurea by means of fluorescence | |
| Uematsu et al. | Use of amberlite XAD-2 for isolation and detection ofa water-soluble acid dyes | |
| Teuchy et al. | Quantitative thin-layer chromatographic determination of hippuric acid in rat urine | |
| Matysik | Gradient thin-layer chromatography of extracts from Digitalis lanata and Digitalis purpurea |