PL118433B1 - Process for preparing 2,5-diketogluconic acid - Google Patents

Process for preparing 2,5-diketogluconic acid Download PDF

Info

Publication number
PL118433B1
PL118433B1 PL1978210683A PL21068378A PL118433B1 PL 118433 B1 PL118433 B1 PL 118433B1 PL 1978210683 A PL1978210683 A PL 1978210683A PL 21068378 A PL21068378 A PL 21068378A PL 118433 B1 PL118433 B1 PL 118433B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
acid
glucose
acetobacter
carried out
ifo
Prior art date
Application number
PL1978210683A
Other languages
Polish (pl)
Other versions
PL210683A1 (en
Original Assignee
Pfizer
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Pfizer filed Critical Pfizer
Publication of PL210683A1 publication Critical patent/PL210683A1/en
Publication of PL118433B1 publication Critical patent/PL118433B1/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/40Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
    • C12P7/58Aldonic, ketoaldonic or saccharic acids

Landscapes

  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania kwasu 2,5-dwuketoglikonowego.Kwas 2,5-dwuketoglikonowy jest uzytecznym pólpro¬ duktem w syntezie witaminy C. Z tego wzgledu wytwarza sie go przy pomocy wielu róznych rodzajów bakterii takich 5 jak Acetobacter melanogenum, Acetobacter aurantium, Gluconoacetobacter rubiginosus, Gluconoacetobacter li- auifaciens i Pseudomonas sesami. Jednakze zastosowanie tych drobnoustrojów jest niepozadane z przemyslowego punktu widzenia z powodu powstawania duzych ilosci 10 brunatnych lub zólto-brunatnych pigmentów jako produk¬ tów ubocznych hodowli przez co zmniejsza sie czystosc wytwarzanego kwasu 2,5-dwuketoglikonowego.W opisie patentowym St. Zjedn. Amer. nr 3 790 444 ujawniono sposób wytwarzania kwasu. 2,5-dwuketogliko- 15 nowego bez tworzenia sie towarzyszacych brunatnych pigmentów przez nowy szczep oznaczony jako Acetobacter fragum w hodowli zawierajacej jako pozywke glikoze oraz substancje bedaca zródlem azotu. W sposobie tym stosuje sie poczatkowe pH 5,8 i po 32 godzinach otrzymuje kwas 20 2,5-dwuketoglikonowy z wydajnoscia 87% w przeliczeniu na glikoze.Wynalazek dotyczy ekonomicznego procesu wytwarzania kwasu 2,5-dwuketoglikonowego przy zastosowaniu latwo dostepnego szczepu Acetobacter cerinus. Korzystnymi 25 z tych szczepftw sa dwa: IFO 3263 i 3266, które wytwarzaja kwas 2,5-dwuketoglikonowy z wydajnoscia ponad 95% (w przeliczeniu na glikoze).Kwas 2,5-dwuketoglikonowy jest stosowany jako pól¬ produkt przy wytwarzaniu kwasu askorbinowego. Wodny 30 roztwór kwasu 2,5-dwuketoglikonowego mozna selektywnie redukowac w celu uzyskania mieszaniny 2-ketogulonianu i 2-ketoglikonianu, które mozna przeprowadzic w kwasy askorbinowy i erytorbowy.Sposobem wedlug wynalazku kwas 2,5-dwuketoglikono¬ wy otrzymuje sie latwo przez dzialanie bakterii na glikoze, stosujac znany, latwo dostepny szczep Acetobacter cerinus.Przebadano wszystkie dostepne powszechnie szczepy Acetobacter cerinus. W badaniach tych wydajnosc otrzy¬ mywanych ketokwasów wynosila 50—95 % (w przeliczeniu na glikoze). Gdy stosuje sie Acetobacter cerinus korzystnie IFO 3263 lub 3266, wytwarzanymketokwasem jest wylacznie pozadany kwas 2,5-dwuketoglikonowy a proces przebiega z wydajnoscia ponad 95 % (w przeliczeniu na glikoze).Dostepnymi powszechnie szczepami Acetobacter cerinus sa: IFO 3262 (ATCC 12303), 3263, 3264, 3265, 3266, 3267, 3268, 3269.. Szczepy te sa znane i zarejestrowane w katalogu ATCC, wyd, 11, 1974jako ATCC 12303 oraz w rejestrze prowadzo¬ nym przez Institute for Fermentation w Osace jako Gluco- nobacter cerinus IFO 3262 — IFO 3270 (róznica w nazwie szczepu wynika z odmiennej nomenklatury stosowanej przez Instytut w Osace).Wspomniane szczepy Acetobacter cerinus hoduje sie w srodowisku, w którym glówne zródlo wegla stanowi glikoza. Drobnoustroje te nie wymagaja kosztownych zródel azotu takich jak pepton lub ekstrakt miesny.Zwykle hodowle prowadzi sie na pozywce zawierajacej 2,5—20 % glikozy oraz tanie zródlo azotu takie jak mocznik i nieorganiczne zródla azotu takie jak sole amonowe, 118 433118 433 zwlaszcza siarczan amonu, azotan amonu lub fosforan amo¬ nu, a jako wskaznik wzrostu do pozywki dodaje sie kwas nikotynowy. Pozywka zawiera takze sole mineralne, oraz zródlo fosforu.Stezenie glikozy w srodowisku zmienia sie w granicach 2,5 — 20 % korzystnie 10—12 % w celu najbardziej ekono¬ micznego otrzymania kwasu 2,5-dwuketoglikonowego.Temperatura fermentacji wynosi 20—35 °C. korzystnie 25—30°C a zwlaszcza okolo 28 °C. Poczatkowe pH srodo¬ wiska hodowli wynosi 3,5—7,5, korzystnie 5—6. Podczas przebiegu fermentacji wartosc pH utrzymuje sie na pozio- •mie okolo, 5,5 przez dodawanie roztworu wodorotlenku sodu.' Do regulowania wartosci pH mozna tez stosowac weglan wapnia. Dodaje sie go, do hodowli po sterylizacji para pod zwiekszonym cisnieniem w ilosci okolo 30 g na 110 g glikozy.Po inokulacji, srodowisko fermentacyjne miesza sie przy pomocy mieszadla mechanicznego o szybkosci 1700 obro¬ tów/min i napowietrza z szybkoscia 0,5—1 objetosci po¬ wietrza (objetosc brzeczki) minute..Stosujac Acetobacfer cerinus IfO 3263 lub 3266 fermen¬ tacje prowadzi sie az do uzyskania wydajnosci kwasu 2,5-dwuketoglikonowego co najmniej 90 % (w przeliczeniu na glikoze) (36—40 godzin).Za pomoca chromatografii bibulowej stwierdzono, ze konwersja glikozy do lcwasu 2,5-dwuketoglikonowego przebiega w nastepujacy sposób: glikoza^*" kwas 2-ketoglikonowy -£ kwas 2,5-dwuketogIi- konowy glikoza - kwas 5-ketoglikonowjr -+ kwas 2,5 -dwuketo- glikonowy.Zastosowano bibule Whatman nr 1 i nr 4 i uklad roz¬ puszczalników keton metyloetylowy:aceton:kwas mrów¬ kowy:woda (80:6:2:12). Plamki kwasu identyfikowano przez spryskiwanie 0,2 % roztworem etanolowym o-fenyle- nodwuaminy zawierajacym 1 % kwasu azotowego i ogrzewa¬ nie do temperatury okolo 70 °C (kwas 5-ketoglikonowy- niebieski; kwas 2-ketoglikonowy — zólty; kwas 2,5-dwu- ketoglikonowy — zielony).W celach identyfikacyjnych mozna stosowac równiez ciekla chromatografie wysokocisnieniowa.Kwas 2,5-dwuketoglikonowy mozna oddzielic i odzyskac z koncowej brzeczki fermentacyjnej wjakikolwiekkonwencjo¬ nalny, znany sposób. Odsaczona brzeczke fermentacyjna mozna potraktowac borowodorkiem a otrzymana miesza¬ nine kwasów 2-ketoglikonowego i 2-ketogulonowego poddac hydrolizie, uzyskujac,kwasy askorbinowy i erytorbowy.Przyklad I. Przygotowano nastepujace wodne sro¬ dowisko inoculum.; Skladnik g/litr Glikoza, 25 Roztwór namoczonej kukurydzy 5 KH2PO4 0,5 K2HP04 0,5 MgS04 —7H20 0,2 CaCOs ' '" • 6,3 pH 6,2 Wytrzasana kolbe zawierajaca 1 litr srodowiska poddaje sie sterylizacji pare pod zwiekszonym cisnieniem w ciagu 30 minut w temperaturze 121°C. Wartosc pH oziebionego srodowiska wynosi 5,0. Do kolby dodaje sie komórki Aceto- 5 bacter cerinus IFO 3263 pochodzace ze skosu' agarowego jako pozywki (5 ml z 20 ml sterylnej wodnej zawiesiny) i nastepnie kolbe wytrzasa sie na wytrzasarce obrotowej w temperaturze 28 °C w ciagu 24 godzin.Przyklad II. Czesc hodowli kultury dostateczna 10 do wytworzenia 5%. objetosc/objetosc inoculum dodaje sie do 4-litrowego fermentatora z mieszadlem, zawierajacego 2-litry nastepujacej pozywki produkcyjnej: Skladnik g/litr Glikoza 110 15 Roztwór namoczonej kukurydzy 0,5 (NH4)2HP04 0,58 KH2P04 1,5 MgS04-7H20 0,5 mocznik 0,5 20 CuS04-5H20 1 mg _ kwasnikotynowy 300 r pH 6,0 Fermentacje przeprowadza sie w temperaturze okolo 28 °C, przy mieszaniu z szybkoscia 1700 obrotów/jninute 25 i napowietrzaniu z szybkoscia 0,75 objetosc/objetosc brzeczki/minute. Po okresie fermentacji trwajacym okolo 20 godzin, dodaje sie sterylnej glikozy (55 g/litr). Wartosc pH utrzymuje sie na poziomie 5,5 przez dodanie roztworu wodorotlenku sodu. Fermentacje prowadzi sie az do uzys- 30 kania wydajnosci kwasu 2,5-dwuketoglikonowego powyzej 95% (w przeliczeniu na glikoze). Otrzymany produkt wydziela sie, poddajac surowa brzeczke fermentacyjna chromatografii.Postepujac jak opisano wyzej, lecz stosujac Acetobacter 35 cerinus IFO 3266, otrzymuje sie kwas 2,5-dwuketogliko¬ nowy z wydajnoscia powyzej 95 %. (w przeliczeniu na gliko¬ ze). -40 Zastrzezenia patentowe 1. Sposób wytwarzania kwasu 2,5-dwuketoglikonowego w hodowli Acetobacter prowadzonej w warunkach aerobo- 45 wych, znamienny tym, ze prowadzi sie hodowle Aceto¬ bacter cerinus, w temperaturze 20—35 °C i poczatkowym pH 3,5—7,5 na pozywce zawierajacej 2,5—20% glikozy i zródlo azotu, zwlaszcza mocznik lub sole amonowe, sole mineralne i zródlo fosforu, w obecnosci kwasu nikotyno- 50 wego, a nastepnie wyosabnia sie zadany kwas w znany sposób. 2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze hodowle prowadzi sie w temperaturze 25—30 °C, przy poczatkowym pH5—6. 55 3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako Acetobacter cerinus stosuje sie szczep IFO 3263. 4. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako Acetobacter cerinus stosuje sie szczep IFO 3266.LDD Z-d 2, z. 1075/1400/82, n. 95+20 egz.Cena 100 zl PL PL PL The subject of the invention is a method for producing 2,5-diaketoglyconic acid. 2,5-Diketoglyconic acid is a useful intermediate in the synthesis of vitamin C. Therefore, it is produced using many different types of bacteria such as Acetobacter melanogenum, Acetobacter aurantium, Gluconoacetobacter rubiginosus, Gluconoacetobacter liauifaciens and Pseudomonas sesami. However, the use of these microorganisms is undesirable from an industrial point of view due to the formation of large amounts of brown or yellow-brown pigments as culture by-products, thereby reducing the purity of the produced 2,5-diaketoglyconic acid. United American No. 3,790,444 discloses a method for preparing the acid. 2,5-Diketoglycolyte without the formation of associated brown pigments by a new strain designated as Acetobacter fragum in a culture containing glucose as a medium and a nitrogen source substance. This method uses an initial pH of 5.8 and after 32 hours 2,5-diaketoglyconic acid is obtained with a yield of 87% based on glucose. The invention concerns an economic process for the production of 2,5-diaketoglyconic acid using an easily available strain of Acetobacter cerinus. The preferred 25 of these strains are two: IFO 3263 and 3266, which produce 2,5-diaketoglyconic acid with an efficiency of over 95% (based on glucose). 2,5-Diketoglyconic acid is used as an intermediate in the production of ascorbic acid. An aqueous solution of 2,5-diketoglyconic acid can be selectively reduced to obtain a mixture of 2-ketogulonate and 2-ketoglyconate, which can be converted into ascorbic and erythorbic acids. In the method of the invention, 2,5-diketoglyconic acid is easily obtained by the action of bacteria on glucose, using a well-known, easily available strain of Acetobacter cerinus. All commonly available strains of Acetobacter cerinus were tested. In these studies, the yield of the obtained keto acids was 50-95% (calculated as glucose). When Acetobacter cerinus is used, preferably IFO 3263 or 3266, the ketoacid produced is only the desired 2,5-dioketoglyconic acid and the process is performed with an efficiency of over 95% (calculated as glucose). Commonly available strains of Acetobacter cerinus are: IFO 3262 (ATCC 12303), 3263, 3264, 3265, 3266, 3267, 3268, 3269. These strains are known and registered in the ATCC catalog, 11th edition, 1974 as ATCC 12303 and in the register kept by the Institute for Fermentation in Osaka as Gluconobacter cerinus IFO 3262 - IFO 3270 (the difference in the name of the strain results from the different nomenclature used by the Institute in Osaka). The mentioned strains of Acetobacter cerinus are grown in an environment where the main source of carbon is glucose. These microorganisms do not require expensive nitrogen sources such as peptone or meat extract. Typically, cultivation is carried out on a medium containing 2.5-20% glucose and a cheap nitrogen source such as urea and inorganic nitrogen sources such as ammonium salts, especially ammonium sulfate. , ammonium nitrate or ammonium phosphate, and nicotinic acid is added to the medium as a growth indicator. The medium also contains mineral salts and a source of phosphorus. The glucose concentration in the environment ranges from 2.5 to 20%, preferably 10 to 12% in order to obtain 2,5-diaketoglyconic acid in the most economical manner. The fermentation temperature is 20 to 35°C. C preferably 25-30°C and especially about 28°C. The initial pH of the culture medium is 3.5-7.5, preferably 5-6. During fermentation, the pH value is maintained at approximately 5.5 by adding sodium hydroxide solution. Calcium carbonate can also be used to adjust the pH value. It is added to the culture after sterilization by steam under increased pressure in an amount of approximately 30 g per 110 g of glucose. After inoculation, the fermentation medium is mixed using a mechanical mixer at a speed of 1700 rpm and aeration at a rate of 0.5-1 volume of air (volume of wort) per minute. Using Acetobacfer cerinus IfO 3263 or 3266, fermentation is carried out until the yield of 2,5-diaketoglyconic acid is at least 90% (calculated as glucose) (36-40 hours). Using paper chromatography, it was found that the conversion of glucose to 2,5-diaketoglyconic acid takes place as follows: glucose - 2-ketoglyconic acid - 2,5-diketoglyconic acid - glucose - 5-ketoglyconic acid -+ acid 2, 5-Diketoglyconic acid. Whatman No. 1 and No. 4 papers were used and the solvent system was methyl ethyl ketone: acetone: formic acid: water (80: 6: 2: 12). Acid spots were identified by spraying with a 0.2% solution o-phenylenediamine ethanol containing 1% nitric acid and heating to a temperature of about 70°C (5-ketoglyconic acid-blue; 2-ketoglyconic acid - yellow; 2,5-Di-ketoglyconic acid - green). High-pressure liquid chromatography may also be used for identification purposes. 2,5-Diketoglyconic acid may be separated and recovered from the final fermentation broth by any conventional known method. The drained fermentation broth can be treated with borohydride and the resulting mixture of 2-ketoglyconic and 2-ketogulonic acids hydrolyzed to obtain ascorbic and erythorbic acids. Example I. The following aqueous inoculum medium was prepared; Ingredient g/liter Glucose, 25 Soaked corn solution 5 KH2PO4 0.5 K2HP04 0.5 MgS04 —7H20 0.2 CaCOs ' '" • 6.3 pH 6.2 A shaken flask containing 1 liter of medium is sterilized with steam under increased pressure for 30 minutes at 121° C. The pH of the cooled environment is 5.0. Acetobacter cerinus IFO 3263 cells from an agar slant are added to the flask as a medium (5 ml with 20 ml of sterile aqueous suspension) and then the flask is shaken on a rotary shaker at 28°C for 24 hours.Example 2. A portion of the culture sufficient to produce 5% volume/inoculum is added to a 4 liter stirred fermenter containing 2 liters of the following production medium : Ingredient g/liter Glucose 110 15 Soaked corn solution 0.5 (NH4)2HP04 0.58 KH2P04 1.5 MgS04-7H20 0.5 urea 0.5 20 CuS04-5H20 1 mg _ tinic acid 300 r pH 6.0 Fermentations is carried out at a temperature of about 28 °C, with mixing at a speed of 1700 rpm and aeration at a rate of 0.75 volume/volume of wort/minute. After a fermentation period of approximately 20 hours, sterile glucose (55 g/liter) is added. The pH value is maintained at 5.5 by adding sodium hydroxide solution. Fermentation is carried out until the yield of 2,5-diaketoglyconic acid exceeds 95% (calculated as glucose). The product obtained is isolated by subjecting the crude fermentation broth to chromatography. Proceeding as described above, but using Acetobacter cerinus IFO 3266, 2,5-diaketoglyconic acid is obtained with a yield of over 95%. (calculated as glucose). -40 Patent claims 1. A method for producing 2,5-diaketoglyconic acid in an Acetobacter culture carried out under aerobic conditions, characterized in that the Acetobacter cerinus culture is carried out at a temperature of 20-35 °C and an initial pH of 3.5 -7.5 on a medium containing 2.5-20% glucose and a nitrogen source, especially urea or ammonium salts, mineral salts and a phosphorus source, in the presence of nicotinic acid, and then the desired acid is isolated in a known manner. 2. The method according to claim 1, characterized in that the cultivation is carried out at a temperature of 25-30 °C and an initial pH of 5-6. 55 3. The method according to claim 1, characterized in that the Acetobacter cerinus strain is IFO 3263. 4. The method according to claim 1. 1, characterized in that the Acetobacter cerinus strain used is IFO 3266.LDD Z-d 2, no. 1075/1400/82, no. 95+20 copies. Price PLN 100 PL PL PL

Claims (2)

1.Zastrzezenia patentowe 1. Sposób wytwarzania kwasu 2,5-dwuketoglikonowego w hodowli Acetobacter prowadzonej w warunkach aerobo- 45 wych, znamienny tym, ze prowadzi sie hodowle Aceto¬ bacter cerinus, w temperaturze 20—35 °C i poczatkowym pH 3,5—7,5 na pozywce zawierajacej 2,5—20% glikozy i zródlo azotu, zwlaszcza mocznik lub sole amonowe, sole mineralne i zródlo fosforu, w obecnosci kwasu nikotyno- 50 wego, a nastepnie wyosabnia sie zadany kwas w znany sposób. 1. Patent claims 1. A method of producing 2,5-diaketoglyconic acid in an Acetobacter culture carried out under aerobic conditions, characterized in that the Acetobacter cerinus culture is carried out at a temperature of 20-35 °C and an initial pH of 3.5 -7.5 on a medium containing 2.5-20% glucose and a nitrogen source, especially urea or ammonium salts, mineral salts and a phosphorus source, in the presence of nicotinic acid, and then the desired acid is isolated in a known manner. 2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze hodowle prowadzi sie w temperaturze 25—30 °C, przy poczatkowym pH5—6. 55 3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako 3. Acetobacter cerinus stosuje sie szczep IFO 3263. 4. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako Acetobacter cerinus stosuje sie szczep IFO 3266. LDD Z-d 2, z. 1075/1400/82, n. 95+20 egz. Cena 100 zl PL PL PL2. The method according to claim 1, characterized in that the cultivation is carried out at a temperature of 25-30 °C and an initial pH of 5-6. 55 3. The method according to claim 1, characterized in that the 3. Acetobacter cerinus strain is IFO 3263. 4. The method according to claim 1. 1, characterized in that the strain IFO 3266 is used as Acetobacter cerinus. LDD Z-d 2, no. 1075/1400/82, no. 95+20 copies. Price PLN 100 PL PL PL
PL1978210683A 1977-11-18 1978-11-03 Process for preparing 2,5-diketogluconic acid PL118433B1 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US85295077A 1977-11-18 1977-11-18

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL210683A1 PL210683A1 (en) 1979-06-18
PL118433B1 true PL118433B1 (en) 1981-10-31

Family

ID=25314629

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1978210683A PL118433B1 (en) 1977-11-18 1978-11-03 Process for preparing 2,5-diketogluconic acid

Country Status (26)

Country Link
JP (1) JPS54145283A (en)
AR (1) AR218348A1 (en)
AT (1) AT363887B (en)
AU (1) AU505434B1 (en)
BE (1) BE872095A (en)
BR (1) BR7807524A (en)
CA (1) CA1119981A (en)
CH (1) CH643592A5 (en)
DD (1) DD140459A5 (en)
DE (1) DE2849393C2 (en)
DK (1) DK152679C (en)
ES (1) ES475216A1 (en)
FI (1) FI782871A (en)
FR (1) FR2409304A1 (en)
GB (1) GB2008116B (en)
HU (1) HU175521B (en)
IL (1) IL55969A0 (en)
IT (1) IT1101715B (en)
LU (1) LU80536A1 (en)
NL (1) NL7811353A (en)
NO (1) NO783877L (en)
PL (1) PL118433B1 (en)
PT (1) PT68789A (en)
RO (1) RO75389A (en)
SE (1) SE7809345L (en)
ZA (1) ZA786487B (en)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4316960A (en) * 1979-09-28 1982-02-23 Pfizer Inc. Preparation of 2,5-diketogluconic acid
JPS6365970A (en) * 1987-08-25 1988-03-24 Kyushu Hitachi Maxell Ltd Motor-driven sprayer
FR2820973B1 (en) 2001-02-19 2003-05-23 Oreal COMPOSITION COMPRISING VITAMIN C PREPARED DURING APPLICATION, USE OF ENZYMES FOR THE FORMATION OF VITAMIN C FOR TOPICAL USE AND COSMETIC PROCESSING METHOD

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3234105A (en) * 1962-09-20 1966-02-08 Takeda Chemical Industries Ltd Method for producing 2-keto-lgulonic acid
US3790444A (en) * 1971-03-09 1974-02-05 Daiichi Seiyaku Co Process for preparing diketogluconic acid
JPS5135485A (en) * 1974-09-20 1976-03-25 Shionogi Seiyaku Kk 22 keto ll guronsan no seizohoho

Also Published As

Publication number Publication date
DE2849393C2 (en) 1983-05-05
ES475216A1 (en) 1979-04-16
SE7809345L (en) 1979-05-19
BE872095A (en) 1979-05-17
PT68789A (en) 1978-12-01
DD140459A5 (en) 1980-03-05
NL7811353A (en) 1979-05-22
CH643592A5 (en) 1984-06-15
FR2409304A1 (en) 1979-06-15
LU80536A1 (en) 1980-06-05
NO783877L (en) 1979-05-21
CA1119981A (en) 1982-03-16
IT7829866A0 (en) 1978-11-16
BR7807524A (en) 1979-07-24
ZA786487B (en) 1979-10-31
JPS579357B2 (en) 1982-02-20
RO75389A (en) 1980-11-30
PL210683A1 (en) 1979-06-18
DK152679C (en) 1988-08-22
ATA823178A (en) 1981-02-15
AU505434B1 (en) 1979-11-22
HU175521B (en) 1980-08-28
JPS54145283A (en) 1979-11-13
FI782871A (en) 1979-05-19
AT363887B (en) 1981-09-10
DK152679B (en) 1988-04-11
IL55969A0 (en) 1979-01-31
GB2008116A (en) 1979-05-31
GB2008116B (en) 1982-03-17
DK512978A (en) 1979-05-19
IT1101715B (en) 1985-10-07
DE2849393A1 (en) 1979-05-23
AR218348A1 (en) 1980-05-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0089370B1 (en) Production of gamma-decalactone
CA1168999A (en) Method for preparing 2,5-diketo-d-gluconic acid
JPH02150287A (en) Method of fermentation
US3959076A (en) Process for producing 2-keto-L-gulonic acid
EP0032830B1 (en) Preparation of 2-keto-l-gulonic acid
PL118433B1 (en) Process for preparing 2,5-diketogluconic acid
DE3910024A1 (en) METHOD FOR THE FERMENTATIVE PRODUCTION OF 2- (4-HYDROXIPENOXI-) PROPIONIC ACID
DE2811303C3 (en) Enzymatic complexes suitable for converting racemic hydantoins into optically active amino acids, and their application
US3957579A (en) Method for preparing d-tartaric acid
CA1140878A (en) Preparation of 2,5-diketogluconic acid
DE3025424C2 (en) Process for the production of galactose oxidase
US4263402A (en) Process for producing 2,5-diketogluconic
US3433710A (en) Process for the preparation of 7-chloro-5-hydroxytetracycline
US3331750A (en) Method for the preparation of salicylic acid
DE2107461A1 (en) Process for the production of alkaline dextranase enzyme
SU1311256A1 (en) Consortium of candida tropicalis yeast and acinetobacter species bacteria as producer of exopolysaccharide
JPH0378106B2 (en)
DE1960524A1 (en) Fermentative process for the production of L-dihydroxyphenylalanine
DE2605921C3 (en) Process for the enzymatic production of L-tartaric acid from cis-epoxysuccinic acid
EP0568004A2 (en) Microbiological process for the preparation of malonyl-7-aminocephalosporanic acid derivatives
JPH0378107B2 (en)
JPH0378108B2 (en)
DE2102793B2 (en) Process for the production of Lbeta, 3,4-dihydroxyphenyl-alpha alanine by fermentation
IE48378B1 (en) Destruction by fermentation of 2-ketogluconate in the presence of 2-ketogulonate
JPS6070069A (en) Novel microorganism