NO821233L - HIGHLY DETAILED INFORMATIONAL RIBONUCLEIC ACID (I-RNA), PROCEDURE FOR PREPARING IT AND USING THEREOF - Google Patents

HIGHLY DETAILED INFORMATIONAL RIBONUCLEIC ACID (I-RNA), PROCEDURE FOR PREPARING IT AND USING THEREOF

Info

Publication number
NO821233L
NO821233L NO821233A NO821233A NO821233L NO 821233 L NO821233 L NO 821233L NO 821233 A NO821233 A NO 821233A NO 821233 A NO821233 A NO 821233A NO 821233 L NO821233 L NO 821233L
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
rns
stated
cell
administration
animals
Prior art date
Application number
NO821233A
Other languages
Norwegian (no)
Inventor
Walther Lamprecht
Original Assignee
Schwarzhaupt Kg
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Schwarzhaupt Kg filed Critical Schwarzhaupt Kg
Publication of NO821233L publication Critical patent/NO821233L/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H21/00Compounds containing two or more mononucleotide units having separate phosphate or polyphosphate groups linked by saccharide radicals of nucleoside groups, e.g. nucleic acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/26Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
    • C12P19/28N-glycosides
    • C12P19/30Nucleotides
    • C12P19/34Polynucleotides, e.g. nucleic acids, oligoribonucleotides

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Oppfinnelsens gjenstand, er i-RNS ( " inf ormatoriske"', tidligere også kalt "immun" ribonukleinsyre) som er spesifikk mot antigener..,, og som utvinnes i det cellefrie system og er så høyrenset at den er fordragelig hos menneske og dyr ved parenteral, fortrinnsvis intravenøs administrering. Videre vedrører oppfinnelsen fremgangsmåter for. fremstilling av den slags høyrenset The object of the invention is i-RNS ("informative"', previously also called "immune" ribonucleic acid) which is specific against antigens...,, and which is extracted in the cell-free system and is so highly purified that it is tolerable in humans and animals by parenteral, preferably intravenous administration. Furthermore, the invention relates to methods for. production of that kind of high-purity

.i-RNS, såvel som anvendelse av den. .i-RNS, as well as its application.

i-RNS dannes normalt av forskjellige 'immun-kompetente celler i legemet etter kontakt med et antigen. Den inneholder og overfører informasjon for syntese' av antistoff er,. regulator-prbtein og cellebunden immunitet . i-RNS er_altså alltid å i-RNS is normally formed by various immune-competent cells in the body after contact with an antigen. It contains and transmits information for the synthesis' of antibody is,. regulator-prbtein and cell-bound immunity. i-RNS is_so always to

finne i det perifere blod og i lymfatiske organer, når makro-organismen kommer'ut av det med et antigen. Med enhver blod-transfusjon, overføres et stort antall forskjellige i-RNS-sorter,'uten at de er kjent med de antigener som reagerer med de i find in the peripheral blood and in lymphatic organs, when the macro-organism comes out of it with an antigen. With any blood transfusion, a large number of different i-RNS types are transferred, without knowing the antigens that react with those in

hvert tilfelle syntetiserte antistoffer. Konsentrasjonen av de enkelte i-RNS-sorter er dog alt for liten til å kunne påvises. each case synthesized antibodies. The concentration of the individual i-RNS varieties is, however, far too small to be detected.

Forutsetning for utvinnelse av en bestemt i-RNS er Prerequisite for the extraction of a particular i-RNS is

derfor den eksperimentelle skjeldning av antigenerkjennelsen fra antistoffsyntesen. Dette lykkes best i cellefrie bio-syntetiske systemer, som enten bare kan erkjenne det valgte antigen, eller som for det annet bare kan syntetisere antistoffer. hence the experimental delineation of antigen recognition from antibody synthesis. This is most successful in cell-free bio-synthetic systems, which can either only recognize the selected antigen, or which can only synthesize antibodies.

Fra arbeidene til Jachertz og andre er det kjent' at det første konkrete produkt fra en antigenerkjennelse i- det cellefrie system er i-RNS. Kfr. Jachertz "Zeitschrift fiir medizin-is.che Mikrobiologie und Immunologie" 154 (1968), s. 245 , From the work of Jachertz and others, it is known that the first concrete product from antigen recognition in the cell-free system is i-RNS. Cf. Jachertz "Zeitschrift fiir medizin-is.che Mikrobiologie und Immunologie" 154 (1968), p. 245,

"Annals of the Nev/ York Academy of Science" 207 (1973), s. 122, "Zeitschrift fiir Immunitatsforschung und experimentelle Therapie" 144 (1972), s. 260, såvel som "Journal of Immuno-Genetics "• 1 (1974 ), s. 355-36.2. De av Jachertz beskrevne prepareringer av i-RNS har fremdeles vært sterkt forurenset og derfor uegnet, for administrering til mennesker. En forbedring av rensningen offentliggjorde Jachertz i "Mole.cular and cellular Biochemistry".. "Annals of the New York Academy of Science" 207 (1973), p. 122, "Zeitschrift fiir Immunitatsforschung und experimentalle Therapie" 144 (1972), p. 260, as well as "Journal of Immuno-Genetics "• 1 (1974 ), pp. 355-36.2. The preparations of i-RNS described by Jachertz have still been highly contaminated and therefore unsuitable for administration to humans. An improvement of the purification was published by Jachertz in "Mole.cular and cellular Biochemistry".

.24 (1979) 93. Også her var imidlertid, som i de andre arbeider, den eksperimentelle del. så ■ ufullstendig at det å arbeide etter dette flere ganger var uten hell, og derfor ble resultatene i sin helhet trukket i tvil. Dette førte til at hverken resul- .24 (1979) 93. Here too, however, as in the other works, was the experimental part. so ■ incomplete that working according to this several times was unsuccessful, and therefore the results in their entirety were called into question. This led to neither resul-

tåtene eller tolkningen av disse resultatene er blitt akseptert av fagfolkene. the interpretation or interpretation of these results has been accepted by those skilled in the art.

Det ble også forsøkt å fremstille i-RNS in vivo, for. deretter å utvinne den fra milten og lymfeknutene til et dyr; Attempts were also made to produce i-RNS in vivo, for. then extracting it from the spleen and lymph nodes of an animal;

kfr. Liu Shi-Shan m.fl. "The Lancet" , januar 23, 1982, s". 197.. Bortsett fra den brysomme fremstilling (det ble anvendt hester, cf. Liu Shi-Shan et al. "The Lancet", January 23, 1982, p". 197.. Apart from the troublesome presentation (horses were used,

■ som i hvert tilfelle måtte slaktes), lyktes det heller ikke her med noen fullstendig rensning. ■ which in each case had to be slaughtered), no complete purification succeeded here either.

.Oppfinnelsen "har som oppgave å utvinne høyrenset i-RNS i det cellefrie system, som er spesifikk mot antigener og for-'dragelig hos mennesket ved administrering, spesielt ved injeksjon. Dette er overraskende nok lyktes, hvorved den således utvunne i-RNS er fordragelig hos mennesker og dyr ved parenteral,. særlig • intravenøs , administrering,, hvorved det særlig er tenkt på varmblodige .dyr og pattedyr. Fremgangsmåten i henhold til oppfinnelsen for fremstilling av i-RNS som er utvunnet i det cellefrie system,, er høyrenset, spesifikk mot antigener og fordragelig hos mennesket ved parenteral, særlig, intravenøs,' administrering, ved omsetning av antigen, DNS (inklusive i-DNS), nukleotider og et enzymsystem som er utvunnet av leukocytter, lymfocytter, andre slags • celler eller cellebestanddelér, ekstraksjon med.en. vandig løsning av fenol og natriumdodecylsulfat og videre rensning, erkarakterisert vedat. man for rensning sentrifugerer over en tetthetsgradient,'nemlig fortrinnsvis over en tetthetsgradient av cesiumklorid, sakkarose og tris-puffer:ved ca. 130.000 G. Denne sentrifugering varer i ca. 4 timer. Fortrinnsvis foretas i tillegg en ytterligere sentrifugering over cesiumsulfat. The invention "has the task of extracting highly purified i-RNS in the cell-free system, which is specific against antigens and tolerable in humans by administration, especially by injection. This has surprisingly succeeded, whereby the i-RNS thus obtained is tolerable in humans and animals by parenteral, particularly • intravenous, administration, whereby warm-blooded animals and mammals are particularly contemplated. The method according to the invention for the production of i-RNS which is extracted in the cell-free system, is highly purified , specific against antigens and tolerable in humans by parenteral, in particular, intravenous,' administration, by conversion of antigen, DNS (including i-DNS), nucleotides and an enzyme system which is extracted from leukocytes, lymphocytes, other types of • cells or cell components, extraction with an aqueous solution of phenol and sodium dodecyl sulfate and further purification is characterized by centrifuging for purification over a density gradient, namely preferably over a density gradient of cesium chloride, sucrose and tris buffer: at approx. 130,000 G. This centrifugation lasts for approx. 4 hours. Preferably, a further centrifugation over cesium sulphate is also carried out.

Særlig fordelaktig er det hvis man anvender et enzymsystem som er utvunnet av leukocytter eller lymfocytter fra et milt-homogenisat ved sentrifugering over en tetthetsgradient. For dette formål har særlig en tetthetsgradient av sakkarose i tris-puffer av 30 - 60% sakkarose ved ca. 100.000 G vist seg,gunstig. En forutgående stimulering av immunsystemet hos'dyret hvis milt-■homogenisat anvendes for utvinning av detcellefrie system, It is particularly advantageous if one uses an enzyme system which is extracted from leukocytes or lymphocytes from a spleen homogenate by centrifugation over a density gradient. For this purpose, a density gradient of sucrose in tris buffers of 30 - 60% sucrose at approx. 100,000 G proved favorable. A prior stimulation of the immune system in the animal whose spleen homogenate is used for the recovery of the cell-free system,

er fordelaktig.. Denne stimulering kan vanligvis foregå med Freunds adjuvans, BCG, men også særlig med Pirtd-Avi .(stråle-inaktivert hønsekoppervirus). is beneficial.. This stimulation can usually take place with Freund's adjuvant, BCG, but also particularly with Pirtd-Avi (radiation-inactivated chicken pox virus).

En ytterligere fremgangsmåte for skånsom rensning best.år i affinitetskromatografi'. 'Matrisen kan'f. eks. bestå av poly(u)-sefarose 4B eller oligo-desoksytymidin. A further method for gentle purification is best.year in affinity chromatography'. 'The matrix can'f. e.g. consist of poly(u)-sepharose 4B or oligo-deoxythymidine.

Den i henhold til oppfinnelsen i det cellefrie system utvunne, høyrensede i-RNS som er spesifikk mot antigener og fordragelig hos mennesker og dyr ved parenteral, særlig intra-venøs, administrering, er faktisk egnet til anvendelse ved den direkte terapi. Den fører faktisk til syntese av - antistoffer, regulatorprotein og cellebunden. immunitet. Man kan derfor uten The highly purified i-RNS obtained according to the invention in the cell-free system, which is specific against antigens and tolerable in humans and animals by parenteral, especially intravenous, administration, is actually suitable for use in direct therapy. It actually leads to the synthesis of - antibodies, regulatory protein and the cell membrane. immunity. You can therefore do without

videre'anvende den til .aktiv immunisering såvel som til utvinning av antisera og antistoffer in vivo og in vitro. De således further use it for active immunization as well as for the extraction of antisera and antibodies in vivo and in vitro. They thus

utvunne antisera og■antistoffer kan på sin side også anvendes til målrettet passiv immunisering. De kan dessuten anvendes til. analytiske formål, da^de er høyspesifikke overfor de aktuelle antigener. En i-RNS i henhold til oppfinnelsen er således en nøkkelsubstans med hvilken det er overordentlig enkelt og elegant og derved mulig uten ettervirkninger å løse recovered antisera and antibodies can in turn also be used for targeted passive immunization. They can also be used for analytical purposes, as they are highly specific to the relevant antigens. An i-RNS according to the invention is thus a key substance with which it is extremely simple and elegant and thereby possible without after-effects to solve

de forskjelligste problemer eller å løse dem bedre..Selv-følgelig kan man også administrere dem sammen med andre fordragelige stoffer, f.eks. som tilsetning til transfusjoner av helt blod, helblodkonserver, plasma, plasmafraksjoner, plasma-ekspanderende midler o.s.v. ■ the most diverse problems or to solve them better.. Of course, one can also administer them together with other tolerable substances, e.g. as an addition to transfusions of whole blood, whole blood preserves, plasma, plasma fractions, plasma-expanding agents, etc. ■

Typiske antigener er f.eks. bakterier, vira, viruider, sopper, tumorer og parasitter. Det kan imidlertid også være høyeremolekylære kjemiske substanser, f.eks. steroider, plante-og dyre-gifter, såvel som allergener. Særlig fordelaktig er stråle-inaktivert.e vira, da de ikke lenger er patogene, men allikevel har bevart sin antigenisitet. Typical antigens are e.g. bacteria, viruses, viroids, fungi, tumors and parasites. However, there can also be higher molecular chemical substances, e.g. steroids, plant and animal poisons, as well as allergens. Particularly advantageous are radiation-inactivated viruses, as they are no longer pathogenic, but have still retained their antigenicity.

Det er funnet at en i-RNS i henhold til oppfinnelsen også' i det cellefrie system er .i stand til a syntetisere spesi-fikke antistoffer. Av større betydning er det funn at i-RNS i celler induserer syntesen av et regulatorprotein so,m induserer ' nysyntesen av celléegen i-RNS i mottagercellen. Den injiserte It has been found that an i-RNS according to the invention is also capable of synthesizing specific antibodies in the cell-free system. Of greater importance is the finding that i-RNS in cells induces the synthesis of a regulatory protein which induces the new synthesis of the cell's own i-RNS in the recipient cell. The injected

i-RNS og den nydannede i-RNS er på sin side i stand til- å i-RNS and the newly formed i-RNS are in turn capable of

indusere dannelsen av antistoffer. i-RNS er således fremragende egnet, med henblikk på spesifikk terapi å bli administrert parenteralt, særlig intravenøst,, og derved'å mobilisere de kroppsegne forsvarskrefter raskt og målrettet. Såfremt kroppen -fremdeles ikke inneholder antigenet, så finner det sted en aktiv immunisering som forløper raskere og mer komplikasjons-fritt enn den vanlige vaksinering med antigen. induce the formation of antibodies. i-RNS is thus eminently suitable, with a view to specific therapy, to be administered parenterally, especially intravenously, and thereby to mobilize the body's own defense forces quickly and purposefully. If the body - still does not contain the antigen, then an active immunization takes place which proceeds faster and more complication-free than the usual vaccination with antigen.

Da de en viss tid etter injeksjonen av i-RNS'i henhold til oppfinnelsen også danner betydelige mengder av antistoffer, kan serumet noen tid senere anvendes for den passive immunisering. eller utvinning av antistoffer,..• Den slags sera og antistoffer egner seg selvfølgelig også fremragende for spesifikk diagnostikk og erkjennelse av.antigener. Since a certain time after the injection of i-RNS according to the invention they also form significant amounts of antibodies, the serum can be used some time later for passive immunization. or extraction of antibodies,..• These kinds of sera and antibodies are of course also excellent for specific diagnostics and recognition of antigens.

Fremstilling i henhold til oppfinnelsen av i-RNS foregår Production according to the invention of i-RNS takes place

. uten noen som'helst manipuleringer av det genetiske materiale . without any manipulations of the genetic material whatsoever

i betydningen'av en rekombinasjon.. Til tross for syntesen i cellefrie systemer er i-RNS i henhold til oppfinnelsen å anse som normal bestanddel i det perifere blod. Kriterier på in the sense of a recombination. Despite the synthesis in cell-free systems, according to the invention, i-RNS is to be considered a normal component in the peripheral blood. Criteria on

ubetenkeligheten ved en anvendelse av i-RNS hos mennesket kan the safety of an application of i-RNS in humans can

. derfor orientere seg til■kriteriene og erfaringene fra blod-overføringer. Dé injeksjoner av i-RNS som hittil, er.utført hos mennesket har heller ikke i noe tilfelle vist de minste bivirkninger. Den 'ønskede biologiske virkning ble imidlertid . therefore orient yourself to■the criteria and experiences from blood transfusions. The injections of i-RNS that have been carried out in humans so far have not shown the slightest side effects in any case. However, the 'desired biological effect was

registrert i så og si alle tilfeller. Av dette kan den slutning-trekkes'at den i-RNS som er dannet i det cellefrie system av immunkompetente celler etter stimulering med antigen, faktisk oppviser hele den nødvendige informasjon for.syntesen av antistoffer og for utpregning av cellebundet immunitet. Videre er i-RNS fri for antigener og antigen-bruddstykker såvel som andre slags forurensninger, såsom proteiner, DNS- pg RNS-di-fferente informasjonsinnhold. Dette kan eksempelvis, påvises ved agarose-gel-elektroforese eller tynnsjiktkromatografi.- registered in almost all cases. From this it can be concluded that the i-RNS which is formed in the cell-free system by immunocompetent cells after stimulation with antigen, actually exhibits all the necessary information for the synthesis of antibodies and for expression of cell-bound immunity. Furthermore, i-RNS is free of antigens and antigen fragments as well as other types of contamination, such as proteins, DNS and RNS different information content. This can, for example, be demonstrated by agarose gel electrophoresis or thin-layer chromatography.

For utførelse av den.direkte terapi er det vanligvis tilstrekkelig å injisere den høyrensede i-RNS i henhold til oppfinnelsen én gang. Bare i noen tilfeller har det vist.seg å være å anbefale å gjenta injeksjonen etter f. eks. 10 dager'. For carrying out the direct therapy, it is usually sufficient to inject the highly purified i-RNS according to the invention once. Only in some cases has it been shown to be recommendable to repeat the injection after e.g. 10 days'.

I de følgende eksempler er oppfinnelsen.nærmere belyst: In the following examples, the invention is explained in more detail:

Ek sempel 1 Oak sample 1

a) Fremstilling' av enzymsysternet For fremstilling av det egnede' enzymsystem kan leukocytter og lymfocytter anvendes.. Særlig enkelt foregår, frem-, . stillingen ut fra milt. Til dette støtes 1-2 g frisk, dypfryst milt (f.eks. svinemilt) i morter med tørris og flytende nitrogen til pulver..Pulveret settes til 1,5 ml tris-puffer A i et sentrif ugeglajss,. og suspensjonen innfryses ved -70°C. Denne prosess gjentas ca. 10 x. Deretter avsentrifugeres de oppsluttede celler i 30 minutter i en Beckman-ultrasentrifuge, Rotor SW 50.1 ved 30.000 G. Etter sentrifugeringen tas a) Production of the enzyme system For the production of the suitable enzyme system, leukocytes and lymphocytes can be used. It is particularly easy to proceed, the position based on the spleen. For this, 1-2 g of fresh, deep-frozen spleen (e.g. pig spleen) is pounded into powder in a mortar with dry ice and liquid nitrogen. and the suspension is frozen at -70°C. This process is repeated approx. 10x. The engulfed cells are then centrifuged for 30 minutes in a Beckman ultracentrifuge, Rotor SW 50.1 at 30,000 G. After the centrifugation,

1-1,5 ml av .den røde, klare, overstående del av og bringes til en-diskontinuerlig sakkarose-gradient. Denne gradient består av 1 ml 60 %ig sakkarose i tris-puffer A, over hvilken 2,75 ml 30 %ig sakkaroseløsning befinner seg i tris-puffer A. 1-1.5 ml of the red, clear, supernatant of and brought to a discontinuous sucrose gradient. This gradient consists of 1 ml of 60% sucrose in tris buffer A, above which 2.75 ml of 30% sucrose solution is in tris buffer A.

I en Beckman-ultrasentrifuge, Rotor SW-50.1' sentrifugeres ved 100.000 G, 0°C. Etter 4 timer får' man'den ønskede fraksjon som rødlig,, klart sjikt over den 30 %ige sakkarose. Sjiktet tas av med en forhåndsavkjølt pipette og fortynnes med kold ■ .tris-puffer. A i forholdet 1:1. Løsningen kan oppbevares, i flytende nitrogen. - .. In a Beckman ultracentrifuge, Rotor SW-50.1' is centrifuged at 100,000 G, 0°C. After 4 hours, the desired fraction is obtained as a reddish, clear layer above the 30% sucrose. The layer is removed with a pre-chilled pipette and diluted with cold ■ .tris buffer. A in the ratio 1:1. The solution can be stored in liquid nitrogen. - ..

b) DNS (desoksyribonukleinsyre) inklusive i-DNS b) DNS (deoxyribonucleic acid) including i-DNS

(info.rmatorisk desoksyribonukleinsyre) (informational deoxyribonucleic acid)

1-2 g .dypfryst milt som er oppbevart i nitrogen, tines langsomt i 5 ml tris-puffer A og homogeniseres i homogeni-satoren ved ca. 30 kolbebevegelser. ■ Suspensjonen tilsettes dråpevis i en erlenmeyerkolbe med 20 ml av en emulsjon av 2 %ig' vandig natriumdodecylsulfat-løsning. med frisk destillert'1-2 g of deep-frozen spleen that has been stored in nitrogen is slowly thawed in 5 ml of Tris-buffer A and homogenized in the homogenizer at approx. 30 flask movements. ■ The suspension is added dropwise to an Erlenmeyer flask with 20 ml of an emulsion of 2% aqueous sodium dodecyl sulphate solution. with freshly distilled'

fenol (forhold 1:1), hvorved kolben svinges sterkt for opp-nåelse av. homogen fordeling. Ved for viskøs, blanding kan 3. %ig koksaltløsning- tilsettes. Etter .24 timer sentrifugeres den melkeaktige emulsjon i en sentrifuge i 15 minutter ved 2000 G, hvorved det fremkommer to faser. Den vandige øvre fase tilsettes samme volum (+ lo%) vannfri etanol, slik at DNS faller ut. DNS overføres'med en utgiødet platinaløkké til- 10. ml steril,, 0,85' %ig natriumkloridløsnlng. 5 ml .av. 1 %ig natrium-, dodecylsulfat-løsning, 5 ml av 0,05 mol/l. tris-A .og 0,05 mol/l phenol (ratio 1:1), whereby the flask is shaken strongly to achieve homogeneous distribution. If the mixture is too viscous, 3% sodium chloride solution can be added. After .24 hours, the milky emulsion is centrifuged in a centrifuge for 15 minutes at 2000 G, whereby two phases emerge. The same volume (+ lo%) of anhydrous ethanol is added to the aqueous upper phase, so that DNS precipitates out. The DNS is transferred with a cast platinum loop to 10 ml of sterile 0.85% sodium chloride solution. 5 ml .of. 1% sodium dodecyl sulfate solution, 5 ml of 0.05 mol/l. tris-A .and 0.05 mol/l

EDTA-puffer pH 7,6 og 2 mg proteinase K tilsettes, og alt blandes. Oppløsningen av DNS varer ca. 1 dag, og. etter dette kan den igjen utfelles med alkohol. Oppløsning pg fornyet utfelling gjentas 3 til 7 ganger, til forholdet mellom E260' og ^ 2S0 harrnådd en verdi mellom 1,9 og 2 og den hyperkrome effekt utgjør minst 20%. ekstinksjonsøkning ved 260 nm. En absorpsjon av DNS ved-2 60 nm på lo.D. 'tilsvarer omtrent en. konsentrasjon på..40 ug/ml.. Ved hjelp av denne relasjon EDTA buffer pH 7.6 and 2 mg of proteinase K are added, and everything is mixed. The resolution of DNS takes approx. 1 day, and. after this it can again be precipitated with alcohol. Resolution for renewed precipitation is repeated 3 to 7 times, until the ratio between E260' and ^ 2S0 has reached a value between 1.9 and 2 and the hyperchromic effect amounts to at least 20%. extinction increase at 260 nm. An absorption of DNS at -2 60 nm on lo.D. 'equivalent to approximately one. concentration of..40 ug/ml.. Using this relation

•fortynnes DNS-løsningén slik at man får en konsentrasjon på. •the DNS solution is diluted so that you get a concentration of

1 ug/ml. Denne bruksløsning innfryses i porsjoner på 0,5 ml<p>g oppbevares ved -20°C. 1 ug/ml. This solution for use is frozen in portions of 0.5 ml<p>g and stored at -20°C.

c) Syntese,av i-RNS (informatorisk ribonukleinsyre) c) Synthesis of i-RNS (informative ribonucleic acid)

I isbad tilsettes det rensede enzymsystem og antigenet In an ice bath, the purified enzyme system and the antigen are added

i tris-puffer A ved pH. 8,0 og tilsettes en blanding av nukleo-tidene ATP, GTP, CTP og UTP. Til kontroll lages en liten sats -, i det. samme mengdeforhold, som. imidlertid tilsettes tritium-markert UTP... Det pipetteres alltid med avkjølte pipetter.^ in tris-buffer A at pH. 8.0 and a mixture of the nucleotides ATP, GTP, CTP and UTP is added. For control, a small batch is made -, in it. same quantity ratio, as. however, tritium-labeled UTP is added... Pipetting is always done with chilled pipettes.^

De optimale konsentrasjoner av de enkelte komponenter fås The optimal concentrations of the individual components are obtained

ved flere forsøk. Hver av prøvene inkuberes i.vannbad ved 37°C og tilsettes allerede etter 3-6 minutter.en vandig løsning av 1% natriumdodecylsulfat og.1% vandig fenol. Også den optimale inkubasjonstid avhenger'noe.av konsentrasjonene og det aktuelle antigen og kan1 .beregnes ved noen håndforsøk på'forhånd."Det avkjøles i isbad og avséntrifugeres ved■2.000 .G. DetOverstående inneholder den syntetiserte rå i-RNS. by several attempts. Each of the samples is incubated in a water bath at 37°C and an aqueous solution of 1% sodium dodecyl sulfate and 1% aqueous phenol is added already after 3-6 minutes. The optimal incubation time also depends somewhat on the concentrations and the antigen in question and can be calculated by some manual experiments in advance. It is cooled in an ice bath and centrifuged at 2,000 G. The above contains the synthesized crude i-RNS.

d.) Rensning av i-RNS d.) Purification of i-RNS

Av det overstående isoleres i-RNS over én diskontinuerlig cesiumklorid/sakkaros.e.-gradient. Således' blir i ' sentrif uge- ' røret av celluloseacetat i .'hvert tilfelle 1 ml cesiumklor id--løsning med tetthet g 1,9 g/ml oversjiktet med o,7 5 ml av en 30 %ig sakkaroseløsning i. tris-puffer A pH 8,0. Hver .2 ml av prøvene has på gradienten,'og rørene lukkes med steril paraffin.. Etter åt sentrifugen har løpt ved 18°C, 130.000 G, From the above, i-RNS is isolated over a discontinuous cesium chloride/sucrose gradient. Thus, in the centrifuge, the cellulose acetate tube is in each case 1 ml of cesium chloride solution with a density of 1.9 g/ml overlaid with 0.75 ml of a 30% sucrose solution in tris- buffer A pH 8.0. Every .2 ml of the samples is placed on the gradient, and the tubes are closed with sterile paraffin. After the centrifuge has run at 18°C, 130,000 G,

i 4 timer i Beckman R<p>tor SW 50.1, tas cesiumkloridsjiktet vekk. SåledesStikkes isentrifugerørene med en utglødet-nål i bunnen, og hele ceciumkloridløsningen overføres til sakkarose-sjiktet i rør. Den således oppnådde' løsning fortynnes med - for 4 hours in Beckman R<p>tor SW 50.1, the cesium chloride layer is removed. Thus, the ice centrifuge tubes are pricked with an annealed needle at the bottom, and the entire caesium chloride solution is transferred to the sucrose layer in tubes. The solution thus obtained is diluted with -

sterilt"vann 1:2'og kan innfryst oppbevares ved -20°C. Den videre, rensning foregår ved at man s.edimenterer over en cesiumsulfat-gradient. Således fylles 4,8 ml cesiumsulfat-løsning med tetthet 1,5 g/ml i sentrifugerør av celluloseacetat sterile water 1:2 and can be stored frozen at -20°C. Further purification takes place by sedimentation over a cesium sulphate gradient. Thus, 4.8 ml of cesium sulphate solution with a density of 1.5 g/ ml in centrifuge tubes of cellulose acetate

.(Rotor Beckman SW 50.1). Over dette sjikter'mari 0,3 ml av prøven.og sentrifugerer minst 4 "timer (fortrinnsvis 12-19 timer) ved 18°C og 130.000 G. Etter sentrifugeringen gjennomstikkes . rørene i bunnen, og 13-14 fraksjoner, hver av- 9 dråper .(Rotor Beckman SW 50.1). Layer 0.3 ml of the sample over this and centrifuge for at least 4 hours (preferably 12-19 hours) at 18°C and 130,000 G. After the centrifugation, the tubes at the bottom are pierced, and 13-14 fractions, each of 9 drops

,(= -0,4 ml) snittes i fraksjoner. 0,1. ml av hver fraksjon anvendes for bestemmelse av radioaktiviteten, og de resterende. 0„ 3 ml fortynnes med samme volum vann og. oppbevares ved -20°C. Etter at det fastslås i hvilke fraksjoner den høyeste radio-, aktivitet inneholdes, velges også de tilsvarende fraksjoner av hovedsatsenv De inneholder den høyrensede i-RNS. , (= -0.4 ml) is divided into fractions. 0.1. ml of each fraction is used for determining the radioactivity, and the remaining. 0„ 3 ml is diluted with the same volume of water and. stored at -20°C. After it is determined in which fractions the highest radioactivity is contained, the corresponding fractions of the main batch are also selected. They contain the highly purified i-RNS.

Fraksjonene, kan om ønsket umiddelbart injiseres uten videre rensetrinn. The fractions, if desired, can be immediately injected without further purification steps.

Det. er. mulig å påvise i-RNS elektro.nopt.isk, 'hvorved det er iakttatt molekyllengder på mellom 1.500 og 2000 nm. Renhetsgraden lar seg eksempelvis påvise ved agarose-gel-elektroforese. The. is. possible to detect i-RNS electro-optically, whereby molecular lengths of between 1,500 and 2,000 nm have been observed. The degree of purity can be demonstrated, for example, by agarose gel electrophoresis.

Enda en påvisning av i-RNS består i at man syntetiserer antistoffer i.det cellefrie system. For dette formål føres en .prøve av i-RNS, høyrensede ribosomer, det ovennevnte enzymsystem og leucin og valin sammen i tris-puffer A pH 8,0, Prøvene inkuberes i.4 5 sek. ved 7°C, og deretter stoppes proteinsyntesen.ved innfrysing ved -20°C. Antistoffene.kan separeres og renses ved affinitetskromatografi på immun-adsorpsjonssøyler og påvises analytisk. Another demonstration of i-RNS consists in synthesizing antibodies in the cell-free system. For this purpose, a sample of i-RNS, highly purified ribosomes, the above-mentioned enzyme system and leucine and valine are brought together in tris-buffer A pH 8.0. The samples are incubated for 45 sec. at 7°C, and then protein synthesis is stopped by freezing at -20°C. The antibodies can be separated and purified by affinity chromatography on immuno-adsorption columns and detected analytically.

De høyeste konsentrasjoner av antistoffer fremkalles ved tilsetning av båre 10 i-RNS. Dette viser at et molekyl i-RNS i det cellefrie system er i stand til å syntetisere minst 10<4>molekyler antistoffer. The highest concentrations of antibodies are elicited by the addition of carrier 10 i-RNS. This shows that a molecule of i-RNS in the cell-free system is capable of synthesizing at least 10<4> molecules of antibodies.

Det er videre, mulig, med en RNS-replikase å forhøye mengden av i-RNS med faktoren 10 4 til 10 5. Ved flere gangers gjentagelse av disse trinn finner det sted en klonisering. It is furthermore possible, with an RNS replicase, to increase the amount of i-RNS by a factor of 10 4 to 10 5 . By repeating these steps several times, a cloning takes place.

Da også den således oppnådde i-RNS fremdeles har de samme egenskaper med hensyn til antistoffsyntesen som den opprinnelig utvunne, kan den slutning trekkes at antistoffer ennå frem-stilles ved medslepne antigenrester. Since the thus obtained i-RNS also still has the same properties with regard to antibody synthesis as the one originally extracted, the conclusion can be drawn that antibodies are still produced by entrained antigen residues.

Analysen av i-RNS gav at molekylvekten utgjør ca.. 1-2 x 10 6. Som antigener.ble det anvendt Aujeszky-virus, H.erpes-sim<p>lex-virus,.irifluensa-virus, MKS-virus, Varicella-. virus, Masern-virus, HBs-antigen, E.coli 0-antigen, saue-erytrocytter, ADH, tetanus-toksin, såvel som systemer med tumorceller, såsom LC^fra marsvin, p815 fra DBA2<->mus., L' 1210 fra DBA2_mus såvel som den ved poliomavirus induserte tumor hos Lewis-rotter. De første vellykkede resultater■ble videre oppnådd med det attenuerte Masern-virus "Moraten" ogHBS-antigen. Tilsvarende forsøk viste at det ikke inntrer.noen kryssreaksjoner. Det oppstår således høyspesifikk i-RNS i avhengighet av det. i hvert tilfelle anvendte antigen. The analysis of i-RNS showed that the molecular weight is approx. 1-2 x 10 6. As antigens, Aujeszky virus, Herpes sim<p>lex virus, irifluenza virus, FMD virus, Varicella-. virus, Measles virus, HBs antigen, E.coli 0 antigen, sheep erythrocytes, ADH, tetanus toxin, as well as systems with tumor cells, such as LC^ from guinea pig, p815 from DBA2<->mus., L' 1210 from DBA2_mouse as well as the polyomavirus-induced tumor in Lewis rats. The first successful results■were further achieved with the attenuated Masernia virus "Moraten" and HBS antigen. Corresponding experiments showed that no cross-reactions occur. Thus, highly specific i-RNS arises in dependence on it. in each case antigen used.

Eksempel 2 Example 2

Det ble fremstilt en spesifikk i-RNS mot hepatitis B, A specific i-RNS against hepatitis B was produced,

og denne ble prøvd på over 200 pasienter med hensyn på for-dragelighet, og virksomhet. Dosen av i-RNS var 10 mol/ml. Pasientene fikk av "denne løsning i de fleste tilfeller én .gang 1-2 ml, men i sjeldne,alvorlige tilfeller ble det foretatt en injeksjon til. Den for tiden overskubare 'helbredelseskvote utgjør-på det nærmeste 100%. and this was tried on over 200 patients with regard to tolerability and activity. The dose of i-RNS was 10 mol/ml. In most cases, the patients received 1-2 ml of this solution once, but in rare, serious cases, another injection was made. The curative rate, which can be seen at the moment, is close to 100%.

Eksempel 3-BALB/c-mus ble i ukentlige avstander spr.øytet tre ganger, hver gang med 100 'yl komplett Freunds adjuvans. Det komplette Freu.nds adjuvans som er å få i handelen, ble blandet : 1:1 .med ■ fysiologisk koksaltløsning. Etter den siste -injeksjon ventet Example 3 BALB/c mice were injected three times at weekly intervals, each time with 100 µl complete Freund's adjuvant. The complete Freund's adjuvant which is commercially available was mixed: 1:1 with ■ physiological saline solution. After the last injection waited

roan 4 uker.. Deretter ble milten til dyrene fjernet pg opp-arbeidet for utvinnelse av det cellefrie system. rest 4 weeks. Then the spleens of the animals were removed due to the recovery work for the recovery of the cell-free system.

De med dette cellefrie system oppnådde utbytter av i-RNS var med en faktor 10 høyere. The yields of i-RNS obtained with this cell-free system were a factor 10 higher.

Claims (11)

1. Høyrenset i-RNS, utvunnet i det cellefrie system, spesifikk mot antigener, fordragelig av .mennesker og.dyr ved administrering.1. Highly purified i-RNS, extracted in the cell-free system, specific against antigens, tolerated by .humans and .animals when administered. 2. i-RNS som angitt i krav. 1,,karakterisertved at'den er fordragelig ved parenteral, særlig intravenøs, administrering.2. i-RNS as specified in requirements. 1,, characterized in that it is tolerable by parenteral, especially intravenous, administration. 3.. Fremgangsmåte for fremstilling' av i-RNS som er utvunnet i det cellefrie system, er høyrenset, spesifikk mot antigener., fordragelig av mennesker og dyr ved parenteral., spesielt intravenøs,, administrering, ved omsetning, av antigen, DNS (inklusive i-DNS)', nukleotider pg et enzymsystem som er utvunnet av leukocytter, lymfocytter, andre slags celler eller cellebestanddeler, ekstraksjon med en vandig løsning- av fenol og natriumdodecylsulfat-og videre rensning, kar a k t e r ,i - sert ved at man for rensning sentrifugerer over en-tetthetsgradient.3.. Process for the production of i-RNS which is extracted in the cell-free system, is highly purified, specific against antigens., tolerated by humans and animals by parenteral., especially intravenous,, administration, by turnover, of antigen, DNS ( including i-DNS), nucleotides by an enzyme system which is extracted from leukocytes, lymphocytes, other types of cells or cell components, extraction with an aqueous solution of phenol and sodium dodecyl sulfate and further purification, characterized by purification by centrifugation over a density gradient. 4. Fremgangsmåte som angitt■i krav 3, k a r a k/t e r i - sert ve d atman 'sentrifugerer over en tetthetsgradient av cesiumklorid/sakkarose og tris-puffer ved.ca. 130.000 G.4. Method as stated in claim 3, characterized by centrifugation over a density gradient of cesium chloride/sucrose and tris buffer at approx. 130,000 G. 5. Fremgangsmåte som angitt i krav 4,karakterisert vedat man deretter renser i-RNS ved hjelp av ■affinitetskromatografi.5. Method as stated in claim 4, characterized in that i-RNS is then purified by means of affinity chromatography. 6. Fremgangsmåte som angitt i krav .4.,karakterisert ved- at- man i tillegg sentrifugerer over cesiumsulfat.6. Method as stated in claim .4., characterized by - in addition centrifuging over cesium sulphate. 7.. Fremgangsmåte som angitt i -et ■ av kravene 3.-6,'karakterisert, ved at man anvender éf enzymsystem som utvinnes ved rensning av et homogenisat av vev fra det retikulo-endotheliale system (RES), fortrinnsvis milt ved sentrifugering over"en tetthetsgradient.7.. Method as stated in one ■ of the claims 3.-6, characterized by the use of an enzyme system which is extracted by cleaning a homogenise of tissue from the reticulo-endothelial system (RES), preferably spleen by centrifugation over “a density gradient. 8.. Fremgangsmåte som angitt i krav 7,karakterisert vedat det immunsystem fra dyr, som anvendes f<p>r utvinning. av homogenisatet fra vev i det retikulo-endotheliale system, på forhånd stimuleres, fortrinnsvis med BCG, Freunds adjuvans og Pind-Avi.8.. Method as stated in claim 7, characterized in that the immune system from animals, which is used for extraction. of the homogenise from tissue in the reticulo-endothelial system, is previously stimulated, preferably with BCG, Freund's adjuvant and Pind-Avi. 9. Fremgangsmåte som angitt- i krav 7, kar ak t e ri - s e r t .v e d at man sentrifugerer over en tetthetsgradient av sakkarose i tris-puffer ved ca. 100.000 G. ;9. Procedure as stated - in claim 7, character - s e r t .by centrifuging over a density gradient of sucrose in Tris-buffer at approx. 100,000 G. ; 10. Anvendelse av i-RNS som er utvunnet i det cellefrie system, er høyrenset, spesifikk mot antigener, fordragelig av mennesker, og dyr ved parenteral, fortrinnsvis intravenøs, administrering, for direkte terapi, for aktiv immunisering eller. utvinning av antisera og antistoffer in vivo og in. vitro..10. Application of i-RNS obtained in the cell-free system, highly purified, specific against antigens, tolerated by humans and animals by parenteral, preferably intravenous, administration, for direct therapy, for active immunization or. extraction of antisera and antibodies in vivo and in. vitro.. 11. Anvendelse i henhold til krav 10, hvorved administrer-ingen ■ foregår sammen med andre fordragelige stoffer.11. Application according to claim 10, whereby the administration ■ takes place together with other tolerable substances.
NO821233A 1981-04-16 1982-04-15 HIGHLY DETAILED INFORMATIONAL RIBONUCLEIC ACID (I-RNA), PROCEDURE FOR PREPARING IT AND USING THEREOF NO821233L (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19813115559 DE3115559A1 (en) 1981-04-16 1981-04-16 HIGH PURIFIED INFORMATIVE RIBONUCLEIC ACID (I-RNS), METHOD FOR THE PRODUCTION AND USE THEREOF

Publications (1)

Publication Number Publication Date
NO821233L true NO821233L (en) 1982-10-18

Family

ID=6130352

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO821233A NO821233L (en) 1981-04-16 1982-04-15 HIGHLY DETAILED INFORMATIONAL RIBONUCLEIC ACID (I-RNA), PROCEDURE FOR PREPARING IT AND USING THEREOF

Country Status (14)

Country Link
EP (1) EP0063353A3 (en)
JP (1) JPS57179119A (en)
AU (1) AU8255782A (en)
CA (1) CA1192152A (en)
DD (1) DD202723A5 (en)
DE (1) DE3115559A1 (en)
DK (1) DK169082A (en)
ES (1) ES8306180A1 (en)
FI (1) FI821285L (en)
GR (1) GR75912B (en)
IL (1) IL65494A0 (en)
NO (1) NO821233L (en)
PT (1) PT74751B (en)
ZA (1) ZA822558B (en)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2611985B2 (en) * 1987-03-13 1997-05-21 株式会社日立製作所 Sample purification method and device

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE1617545C2 (en) * 1967-06-19 1983-11-03 Diether Prof. Dr. Bern Jachertz Use of informational ribonucleic acid as a vaccine
DE1792609A1 (en) * 1968-09-25 1972-01-20 Diether Prof Dr Jachertz Process for the production of a vaccine
DE2755802A1 (en) * 1976-12-16 1978-07-06 Int Inst Of Differentiation Human cell line LDV/7 - for in vitro microbiological studies and prodn. of immunological material

Also Published As

Publication number Publication date
FI821285L (en) 1982-10-17
AU8255782A (en) 1982-10-21
ES511449A0 (en) 1983-05-01
ZA822558B (en) 1983-03-30
DD202723A5 (en) 1983-09-28
DK169082A (en) 1982-10-17
EP0063353A3 (en) 1983-06-22
ES8306180A1 (en) 1983-05-01
JPS57179119A (en) 1982-11-04
DE3115559A1 (en) 1982-10-28
PT74751B (en) 1983-11-08
CA1192152A (en) 1985-08-20
EP0063353A2 (en) 1982-10-27
IL65494A0 (en) 1982-07-30
PT74751A (en) 1982-05-01
GR75912B (en) 1984-08-02
FI821285A0 (en) 1982-04-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Stroun et al. Presence of RNA in the nucleoprotein complex spontaneously released by human lymphocytes and frog auricles in culture
Scott Biological effects of the adjuvant Corynebacterium parvum: I. Inhibition of PHA, mixed lymphocyte and GVH reactivity
US3636191A (en) Vaccine against viral hepatitis and process
Ambrose Regulation of the secondary antibody response in vitro: Enhancement by actinomycin D and inhibition by a macromolecular product of stimulated lymph node cultures
US4816253A (en) Novel mutant strain of Listeria monocytogenes and its use in production of IgM antibodies and as an immunotherapeutic agent
RU2006120003A (en) COMPOUNDS AND METHODS FOR TREATMENT AND DIAGNOSTIC OF CHLAMIDIA INFECTION
Shibata et al. Nephritogenic glycoprotein: I. Proliferative glomerulonephritis induced in rats by a single injection of the soluble glycoprotein isolated from homologous glomerular basement membrane
NO774311L (en) METHOD OF PREPARING IMMUNOLOGICAL MATERIALS
Stevens et al. Studies on antibody synthesis initiated in vitro
US4567041A (en) Mutant strain of Listeria monocytogenes and its use in production of IgM antibodies and as an immunotherapeutic agent
US4324887A (en) Type II group B Streptococci polysaccharide
GB1590144A (en) Vaccines based on ribosome fractions
Patrick et al. Cleavage of the fourth component of human complement (C4) by activated activated Cls
EP0008969A2 (en) Vaccine and method of making
Tew et al. The spontaneous induction of anamnestic antibody synthesis in lymph node cell cultures many months after primary immunization
US4349540A (en) Process for preparing vaccines based on antigenic ribosomal fractions
Rueckert et al. Biosynthesis of virus protein in Escherichia coli C in vivo following infection with bacteriophage φX174
Lepow et al. Mechanism of activation of C'1 and inhibition of C'1 esterase
US4009257A (en) Preparation of immunosuppressive materials
RU95113158A (en) NEW IMPAIRED PSEUDOMONAS AERUGINOSA STRAINS
NO821233L (en) HIGHLY DETAILED INFORMATIONAL RIBONUCLEIC ACID (I-RNA), PROCEDURE FOR PREPARING IT AND USING THEREOF
US4001080A (en) Production of immunological materials
US4367223A (en) Vaccine against Group B streptococci
Lazda et al. The stability of messenger ribonucleic acid in antibody synthesis
US4367221A (en) Immunization against Group B streptococci