LT4605B - Fermentinis gliukozės sensorius ir jo gavimo būdas - Google Patents

Fermentinis gliukozės sensorius ir jo gavimo būdas Download PDF

Info

Publication number
LT4605B
LT4605B LT99-032A LT99032A LT4605B LT 4605 B LT4605 B LT 4605B LT 99032 A LT99032 A LT 99032A LT 4605 B LT4605 B LT 4605B
Authority
LT
Lithuania
Prior art keywords
enzyme
glucose
electrode
biosensor
sensor
Prior art date
Application number
LT99-032A
Other languages
English (en)
Other versions
LT99032A (lt
Inventor
Valdas-Stanislovas Laurinavičius
Bogumila Kurtinaitienė
Klemensas Bernotas
Rolandas Meškys
Remigijus Šimkus
Virginijus Liauksminas
Terje Skotheim
Leonid Boguslavsky
Original Assignee
Biochemijos Institutas
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Biochemijos Institutas filed Critical Biochemijos Institutas
Priority to LT99-032A priority Critical patent/LT4605B/lt
Publication of LT99032A publication Critical patent/LT99032A/lt
Publication of LT4605B publication Critical patent/LT4605B/lt

Links

Landscapes

  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Išradimas priskiriamas medžiagų analizei fermentų pagalba, kurios metu nustatomi elektrocheminiai parametrai. Išradimas apima fermentinį, gliukozės nustatymui skirtą biosensorių, jo sukūrimą, biosensoriaus gamybai skirtus polimerus ir jų gavimą. Gliukozės sensorius gali būti panaudotas medicinoje diagnostikos tikslams (pvz., nustatant cukraus kiekį kraujuje), maisto kokybės kontrolėje (pvz., nustatant gliukozės kiekį maisto produktuose), mikrobiologinėje pramonėje (pvz., nustatant gliukozės kiekį mikrobiologinėse terpėse) arba moksliniams tyrimams, nustatant gliukozės koncentraciją įvairiuose biologiniuose skysčiuose ir mikrobiologinėse terpėse, taip pat gamybinių procesų kontrolėje.
Gliukozės fermentinis nustatymo būdas remiasi reakcija:
gliukozė + Oox —-—* gliukono rūgštis + Ored kurioje E (fermentas) yra katalizatorius, selektyviai atpažįstantis β-D-gliukozę ir katalizuojantis jos oksidaciją, o oksidatoriaus redukuota forma (Ored) registruojama kokiu nors būdu: pvz., elektrochemiškai arba spektrofotometriškai. Tirpale šios reakcijos atliekamos paprastai panaudojant gliukozės oksidazę, arba β-nikotinamido adenino dinukleotidą (NAD) turinčią gliukozės dehidrogenazę ir tirpų vandenyje, dažnai spalvotą oksidatorių.
Naudojant gliukozės oksidavimą katalizuojantį fermentą imobilizuotame būvyje, ir komponuojant katalitinį sluoksnį kartu su atitinkamu oksidatoriumi ant elektrocheminių daviklių paviršiaus, gaunami fermentiniai elektrodai (sensoriai).
Elektrocheminiai biosėnsoriai, kurių sudėtyje yra įvairios biologinės medžiagos - sparčiai besivystanti tyrimų sritis [J. Davis, D.H. Vaughan, M.F. Cardosi Enzyme and Microbial Technology, 1995, 17, 1030-1035], Šių biosensorių veikimo principai yra panašūs, tačiau biosensorių konstrukcijos pasižymi plačia įvairove. Ši įvairovė gali būti aiškinama remiantis kai kuriais elektrocheminių sensorių konstrukciniais elementais: tai sensorinė medžiaga fermentas, polimerai, kurie naudojami sensorinės medžiagos imobilizavimui ant elektrodo paviršaus ir dirbtiniai mediatoriai, pernešantys elektronus tarp fermento ir elektrodo. Pastarieji yra reikalingi, nes tiesiogiai vykdyti elektronų apykaitą tarp fermento aktyvaus centro ir elektrodo paviršiaus būna labai sunku. Dėl aukšto NADH viršvoltažio mediatoriai yra būtini konstruojant biosensorius, turinčius nuo β-nikotinamido adenino dinukleotido (NADH) kofaktoriaus priklausančias dehidrogenazes [P. Leduc, D. Thevenot Bioelectrochem. Bioenerg.,1974, 1, 96-107. J. Moiroux,P.J. Elving Anai. Chem., 1979, 51, 346-350]. Kiti žinomi kofermentai, pavyzdžiui, flavinadenindinukleotidas (FAD) ir pirolochinolinchinonas (PQQ) yra baltymo globulės viduje, kas dar labiau apsunkina elektronų pernešimą [R. VVilson, A.P.F. Turner Biosensor & Bioelectronics 1992,7,165-185 ]. Konstruojant daugiakartinio naudojimo elektrocheminius biosensorius, ir biosensorius naudojamus in vivo yra būtina naudoti vandenyje netirpius mediatorius, arba imobilizuoti juos ant elektrodo paviršiaus. Patikimais mediatoriaus imobilizavimo būdais galima laikyti jų kovalentinį prijungimą prie polimero matricos arba prie paties fermento.[ J. Davis, D.H. Vaughan, M.F. Cardosi Enzyme and Microbial Technology, 1995, 17, 1030-1035 ] Teoriniu požiūriu kovalentinis mediatorių surišimas su polimerine matrica ir /arba fermentu būtų tinkamas problemos sprendimas, tačiau praktiškai mediatorių pririšimas prie polimerų ir šiems tikslams tinkamų polimerų sintezė yra sunkiai išsprendžiamas uždavinys.
Patentinėje literatūroje yra plačiai aprašyti fermentinių sensorių konstrukcijų su oksidazėmis ir dehidrogenazėmis variantai, skirti gliukozės nustatymui įvairiuose biologiniuose skysčiuose. Dažniausiai tai - sudėtingos membraninės sistemos, kurių sudėtyje esančios stambiamolekulinės medžiagos atlieka arba mediatorių arba fermentą imobilizuojančios medžiagos funkciją, pavyzdžiui, aprašytos paraiškose WO 90/12889, EP-A- 0194 578, EPA-0 206 471.
JAV patente 4, 545, 382 ir paraiškoje EP-A- 0 078 636 aprašyti sensoriai gliukozės nustatymui in vivo, panaudojant gliukozės oksidazę ir gliukozės dehidrogenazę, sudaryti iš metalinio arba anglies strypo, mediatoriaus sluoksnio ir fermento (oksidazės arba dehidrogenazes), juos sulaikančio gelio sluoksnio ir apsauginės, laidžios vandeniui ir gliukozei membranos.
Konstrukcijoje aprašomos polimerinės medžiagos, pavyzdžiui poliviologenai, polivinilferocenas, atlieka mediatoriaus funkciją. Šio sensoriaus konstrukcija ir jos sukūrimas - sudėtingi technologiniu požiūriu, nes reikia panaudoti keletą skirtingas funkcijas atliekančių polimerų. Paraiškoje EP-A-01770743 aprašytas membraninis elektrodas, skirtas gliukozės nustatymui kraujyje ir kituose biologiniuose skysčiuose, kuriame fermentas dalinai imobilizuojamas, arba užnešamas ant pagrindo (rišančios medžiagos), kuriuo gali būti stambiamolekulinės medžiagos, impregnuotos elektronų mediatoriais. Išradime rišančia medžiaga naudojami poliacetilenai, polipirolai, poli-fenilsulfidai ir kiti polimerai. Sensorius dengiamas dar viena, substratui pusiau laidžia, polimerine membrana.
Žinomų elektrodų (sensorių) kūrime naudojamos įvairios stambiamolekulinės medžiagos skirtingoms funkcijoms atlikti sąlygojo sudėtingos konstrukcijos sensorių, gaunamų naudojant sudėtingas technologijas, pateikimą patentinėje literatūtoje. Todėl nesudėtingų ir greitai pagaminamų sensorių gavimas, kuriuose redoks polimeras vienu metu atliktų mediatoriaus, fermentą imobilizuojančios medžiagos ir apsauginio sluoksnio funkciją - aktualus, sudėtingas ir iki šiol neišspręstas uždavinys.
Išradimo tikslas - elektrocheminio sensoriaus, skirto gliukozės nustatymui sukūrimas, kuriame redoks polimerai atliktų visas aukščiau paminėtas funkcijas. Kitas šio išradimo tikslas - elektroaktyvių redoks polimerų, tinkamų naudoti biosensoriaus konstrukcijoje gavimas.
Išradimas realizuojamas sensoriaus konstrukcija, susidedančia iš anglinio elektrodo, fermento - dehidrogenazės ir elektroaktyvių redoks polimerų. Naudojant išradime siūlomą sensorių galima matuoti gliukozės koncentraciją nuo 0.1 mmol/l iki 22 mmol/l. Šie dydžiai apima visą fiziologinę gliukozės koncentracijų sritį. Gliukozės nustatymo metu nereikia pridėti papildomų reagentų, o analizė atliekama įmerkus sensorių į analizuojamąjį skystį arba užlašinus lašelį tiriamo skysčio ant darbinio elektrodo paviršiaus.
Sensorius yra gaunamas formuojant redoks polimero plėvelę ant anglinio elektrodo paviršiaus. Gliukozės sensoriaus konstravimas gali būti atliktas keliais būdais:
1) ant anglinio elektrodo paviršiaus formuojant atskirus sluoksnius, susidedančius iš fermento dehidrogenazės ir redoks savybes turinčio polimero,
2) anglinis elektrodas dengiamas plėvele, suformuota iš fermento ir redoks polimero,
3) fermento imobilizavimas atliekamas po anglinio elektrodo padengimo polimerine plėvele.
Sensoriaus konstrukcijoje naudojamos NADH, FAD kofaktorius turinčios dehidrogenazės, gautos iš Sigma firmos. Pagal geriausią sensoriaus konstrukcijos realizavimo variantą naudojama dehidrogenazė, turinti kofaktorių pirolochinolinchinoną (PQQ), išskirta iš Erwinios 34-1 ir aprašyta Biochemijos institute [Biotechnol Lett t 21, 187-192, 1999]. Išradime aprašomai PQQ dehidrogenazei išskirti kamienas Envinios 34-1 kultivuojamas skystoje terpėje. Terpė gali būti sudaryta iš įprastinių anglies šaltinių tokių kaip gliukozė, glicerolis, manitolis, arabinozė, fruktozė, galaktozė, manozė, sacharozė, ksilozė, trehalozė, melasa. Azoto šaltiniu gali būti peptonas, mielių ekstraktas, mėsos ekstraktas, kukurūzų ekstraktas, neorganiniai junginiai amonio druskos, neorganinės magnio druskos, fosfatai, geležies sulfatas. PQQ priklausoma dehidrogenazė, kurią būtų galima panaudoti pramoniniuose gliukozės oksidacijos procesuose, kuriant biosensorius, gaunama valant įprastiniais fermentų grynininmo metodais [ G. Jagow, H. Schagger A practical guide to membrane protein purification. 1994, Academic press, New York],
Naujai išskirta PQQ kofaktorių turinti dehidrogenazė pasižymi šiomis charakteristikomis: optimalus pH 7.5 - 8.5; optimali temperatūra nuo 20 iki 60 °C; stabili prie 40 °C, molekulinė masė nustatyta natrio dodecilsulfato poliakrilamidinės gel elektroforezės būdu ir lygi 88 kDa, Michaelio konstantos Dmaltozei, L-arabinozei, D-gliukozei, 2-dezoksigliukozei atitinkamai lygios - 5.77, 2.46, 0.185, 0.69 mmol/l. Fermento aktyvumo ir stabilumo priklausomybė nuo pH ir temperatūrinis stabilumas duoti Fig. 1-4. Šios dehidrogenazės katalitinės savybės nepriklauso nuo deguonies koncentracijos tiriamajame skystyje, dėl to deguonies koncentracijos pokyčiai neturi įtakos sensoriaus parodymams.
Sensoriaus konstrukcijoje redoks polimerais naudojami elektroaktyvūs polifenolio dariniai, pavyzdžiui, poli-3,4-dihidroksibenzaldehidas, polihidrochinonas, taip pat polimeriniai, feroceno grupę turintys dariniai, pavyzdžiui, poli-feroceniloksietilenas. Šios medžiagos vienu metu realizuoja elektronų mediatoriaus, fermentą imobilizuojančios struktūros ir difuziją kontroliuojančio sluoksnio funkcijas. Aprašomų polimerų elektrocheminis aktyvumas, apsprendžiantis jų mediatorines savybes, įrodytas ciklinės voltamperometrijos pagalba. Iš ciklinės voltamperogramos duomenų, (žiūrėti Fig. 7,13,16) seka, kad polimerai pasižymi grįžtamais oksidacijos - redukcijos virsmais. Fermento imobilizavimas vyksta mechaniškai juos įterpiant į polimerinį sluoksnį, arba sudarant ant elektrodo atskirą polimerinį sluoksnį, kuris sulaiko fermento globules ant elektrodo paviršiaus. Sensoriaus konstrukcijoje naudojama polimerinė plėvelė leidžia gliukozei difunduoti prie imobilizuoto fermento ir įvykti katalitinei reakcijai, ir tuo pačiu metu, riboja gliukozės difuziją prie fermento. Šie požymiai išplečia biosensoriaus signalo priklausomybės nuo gliukozės koncentracijos tiesinį diapazoną. Difuziją kontroliuojančio sluoksnio efektas parodytas Fig. 20.
Išradime aprašomų polichinoninių polimerų sintezė atliekama chemofermentinės arba organinės sintezės metodais.
Žinoma, kad fermentas lakazė oksiduoja ir polimerizuoja daugybę fenolių ir aromatinių aminų [R. B Brown. Oxidative coupling of phenols. New York, 1967, 167], Daugeliu atveju susidaro elektrochemiškai aktyvūs chinonai, o taip pat chinonines grupuotes turintys oligomerai bei polimerai. Taigi, galima tikėtis, kad iš kai kurių lakazės substratų įmanoma susintetinti redoks oligomerus ir polimerus, tinkančius biosensoriams. Šiame išradime pateikiamas polimerų, parinktų šio sensoriaus realizavimui, gavimo būdas, kai fenolines grupes turinčius monomerus veikiant lakaze gaunami elektrochemiškai aktyvūs, mediatoriaus ir difuziją ribojančio sluoksnio funkcijas atliekantys polimerai. Šias savybes turintys redoks polimerai su feroceno grupe gali būti gaunami ir organinės sintezės metodais, prijungiant elektrochemiškai aktyvius komponentus prie oligomerų, pavyzdžiui, poli-feroceniloksietilenas gaunamas, laisvų radikalų metodu prijungiant ferocenilmetantiolą prie etilenglikolio vinilglicidilo diesterio oligomero 75 °C temperatūroje, esant azobisizosviesto rūgšties dinitrilui.[JI. BorycnaBCKHfi n ap; floKJiaAbi PAH, 1996, N° 12],
Išradimas yra iliustruojamas grafikais ir pateiktais eksperimentiniais pavyzdžiais.
Fig. 1 PQQ priklausomos gliukozės dehidrogenazės aktyvumo priklausomybė nuo buferio prigimties ir pH.
Fig. 2 PQQ priklausomos gliukozės dehidrogenazės aktyvumo priklausomybė nuo pH.
Fig. 3 PQQ priklausomos gliukozės dehidrogenazės temperatūrinis stabilumas.
Fig. 4 PQQ priklausomos gliukozės dehidrogenazės aktyvumo priklausomybė nuo temperatūros.
Fig. 5. Poli-dihidroksibenzaldehido sotaus tirpalo BMR 1H (90 MHz) spektras metanolyje.
Fig. 6. (A) Poli -3,4-dihidroksibenzaldehido, susintetinto iakazės pagalba IR spektras KBr tabletėje. (B) IRspektras poli - benzochinono, susintetinto Iakazės pagalba.
Fig. 7. A - Anglinio elektrodo, modifikuoto poli-DBA, ciklinė voltamperinė kreivė 0.05 mol/l fosfatiniame buferyje su 0.1 mol/l KCI, pH 6.7. Skleidimo greitis 10 mV/s. B - Anglinio elektrodo, modifikuoto poii-DBA, pusiausvyrinio potencialo priklausomybė nuo pH.
Fig. 8. Anglinio elektrodo, modifikuoto poli-DBA, anodinės srovės priklausomybė nuo NADH koncentracijos. 1, 2 - dvi to paties elektrodo kalibracinės kreivės.
Fig. 9. Poli-hidrochinono sintezės schema.
Fig. 10. Pakitimai UV ir matomos srities arbutino spektre (100 pmol/l) oksiduojant jį lakaze (25 ng/ml). Spektrai užrašyti be lakazės (1) ir pridėjus lakazę kas 8 min (2 - 6), po 2, 4 ir 24 valandų (atitinkamai 7 - 9).
Fig. 11. Poli-hidrochinono, gauto hidrolizuojant poliarbutiną (A) ir hidrochinono (B) IR spektrai KBr tabletėse.
Fig. 12. Hidrochinono (1) ir poli-hidrochinono, gauto hidrolizuojant susintetintą poliarbutiną (2) UV ir matomos srities spektrai, užrašyti metanolyje (10 mg/l).
Fig. 13. Anglinio elektrodo, modifikuoto poli-hidrochiononu, ciklinė voltamperinė kreivė (1). 2 - To paties elektrodo CV kreivė, pridėjus 12 mmol/l NADH. Skleidimo gretis 10 mV/s, terpė - fosfatinis buferis, pH 7.0.
Fig. 14. Anglinio elektrodo, modifikuoto poli-hidrochiononu, pusiausvyrinio potencialo priklausomybė nuo pH.
Fig. 15. Anglinio elektrodo, modifikuoto poli-hidrochiononu, atsakas į NADH 0.05 mol/ fosfatiniame buferyje su 0.1 mol/l KCI, pH 7.0, potenciostatinėse sąlygose,
E =200 mV, Ag/AgCI atžvilgiu.
Fig. 16. Anglinio elektrodo, padengto poli-Fc sluoksniiu iš 12 mg/ml tirpalo cikloheksanone ciklinė voltamperinė kreivė. Matavimai atlikti 0.05 mol/l fosfatiniame buferyje su 0.1 mol/l KCI, pH 7.0. Skleidimo greitis 10 mV/s.
Fig. 17. Anglinio elektrodo, modifikuoto poli-DBA ir PQQ-GDH, atsakas į gliukozę. Elektrodo potencialas 300 mV Ag/AgCI elektrodo atžvilgiu. 0.05 mol/l Glicininis buferis, pH 7.0 su 0.1 mol/l KCI. 1 ir 2 - dvi nuoseklios kalibracinės kreivės su tuo pačiu elektrodu.
Fig. 18. Anglinio elektrodo, modifikuoto poli-hidrochiononu, atsakas į gliukozę. Matuota 0.05 mol/l fosfatiniame buferyje, pH 7.0, potenxiostatinėse sajygose, E=550 mV, Ag/AgCI atžvilgiu.
Fig. 19. Anglinio elektrodo, padengto poli-Fc sluoksniu atsakas į gliukozę. Matavimai atlikti 0.05 mol/l fosfatiniame buferyje su 0.1 mol/l KCI, pH 7.0, esant tirpale 1.5 vnt. PQQ-GDH. Elektrodo potencialas 550 mV.
A - sluoksnis suformuotas iš koncentruoto (120 mg/ml) poli-Fc tirpalo cikloheksanone;
B - polimerinis sluoksnis suformuotas iš praskiesto (24 mg/ml) poli-Fc tirpalo cikloheksanone.
Fig. 20. Anglinių elektrodų, kurių paviršius padengtas poli-Fc ir adsorbuota PQQ-GDH (0.06 vnt.) kalibracinės kreivės.
- elektrodas, padengtas plėvele iš koncentruoto polimero tirpalo (120 mg/ml) cikloheksanone;
- elektrodas, ant kurio suformuota plėvelė iš praskiesto poli-Fc tirpalo (60 mg/ml).
Eksperimentinė dalis
Pavyzdys. Poli - 3,4-dihidroksibenzaldehido (poli-DBA) gavimas lakazės pagalba ir produkto charakteristika
CHO
L
HO
Poli - 3,4-dihidroksibenzaldehidas gaunamas iš pirktinio reagento 3,4dihidroksibenzaldehido (firmos “Sigma produktas), veikiant jo vandeninį tirpalą lakaze. 690 mg substrato ir 1 mg lakazės vandeninis tirpalas buvo maišomas 24 valandas atvirame inde. Tamsiai rudas reakcijos mišinys paskleidžiamas ant 1 m2 celuloido plėvelės ir toliau iš lėto džiovinamas ore. Išdžiūvęs, netirpus vandenyje produktas buvo naudojamas tyrimuose.
Poli-3,4-dihidroksibenzaldehido spektrinės charakteristikos duotos Fig. 5 ir Fig.
6.
Ištirpinto metanolyje poli-DBA BMR 1H spektre (Fig. 5) stebimi signalai aromatinių ir/arba dvigubos jungties protonų srityje (7.24,6.84 m.d.) ir signalas alifatinių protonų srityje (3.48 m.d.).
Polimero, ištirpinto D - dimetilsulfokside, C13 BMR spektre signalas su cheminiu postūmiu apie 138.2 ir 126 m.d., priskirtas aromatinei grupei, ir signalas su cheminiu poslinkiu 67.55 m.d., priskirtas alifatinei grupei.
Poli-DBA IR spektras KBr tabletėje pateiktas Fig. 6, kreivėje A. Pikas spektre ties 1200 cm'1 atitinka fenolinės hidroksilo grupės absorbcijos juostą. Poli-3,4-dihidroksibenzaldehido elektrocheminės savybės tirtos ciklinės voltamperometrijos būdu. Iš ciklinės voltamperogramos duomenų, pateiktų Fig. 7 A, seka, kad polimeras pasižymi grįžtamu oksidacijos - redukcijos virsmui, kurio pusiausvyrinis potencialas prie pH 7.0 yra 185 mV. Pusiausvyrinio potencialo priklausomybė nuo pH parodyta Fig. 7 B. Tiesės nuolinkio kampas (10 mV/pH) rodo, kad elektrodiniame procese dalyvauja 2 protonai ir 2 elektronai.
Ant anglinio elektrodo buvo suformuotas poli - DBA sluoksnis, išgarinant 3 pi sotaus etanolinio polimero tirpalo. Anglinis elektrodas su poli - DBA sluoksniu, poliarizuotas 200 mV Ag/AgCI palyginamojo elektrodo atžvilgiu, atsako į nedideles reduktoriaus - nikotinamidadenindinukleotido (NADH) koncentracijas. Anodinės srovės padidėjimas registruojamas saviraščio pagalba. Kalibracinis grafikas parodytas Fig. 8, kreivėje 1. Tiesinė grafiko dalis siekia 1.5 mM NADH. Polimerinis oksidatorius stabiliai išsilaiko ant elektrodo paviršiaus ir redoks savybės neprarandamos plaunant elektrodą ir vartojant jį pakartotinai. Iš Fig. 8, 2 kreivės matyti, kad antrą kartą matuojant NADH koncentraciją tuo pačiu elektrodu, signalai yra panašūs, kaip ir pirmos kreivės. Tai rodo, kad redoks polimeras ant elektrodo paviršiaus oksiduoja esantį tirpale biologinį reduktorių NADH, ir gali perduoti elektronus elektrodui.
Pavyzdys. Poli-hidrochinono sintezė ir charakteristika
OH
HO
Medžiagos sintezė atlikta pagal modifikuotą metodiką [J.S. Dordick et ai., J. Am. Chem. Soc. 1995, 117, 12885-12886] iš pirktinio arbutino (“Sigma”, JAV). Sintezė vykdoma dviem stadijom: pirma, polimerizuojant arbutiną fosfatiniame buferyje pH 5.25, (lakazė yra šio proceso katalizatorius) ir, hidrolizuojant gautą poliarbutiną rūgštinėje terpėje. Reakcijų schema pateikta Fig. 9. Gautas produktas - netirpios vandenyje rudos spalvos nuosėdos plaunamas ant filtrinio popieriaus destiliuotu vandeniu.
Fig. 10 iliustruoja 0.1 mM arbutino tirpalo spektro pakitimus lakazės katalizuojamos oksidacijos metu. Matyti, kad procesas lydimas UV absorbcijos intensyvėjimu, po 24 h praktiškai baigiasi. Poliarbutinas yra tirpus vandenyje, rudos spalvos, sugeriantis šviesą ties 400 nm banga.
Gauto galutinio produkto poli-hidrochinono IR spektras (KBr tabletė) pateiktas Fig. 6, kreivėje B ir Fig. 11, A. Polimero spektre stebimos panašaus dažnio juostos kaip ir monomero spektre, kuris parodytas Fig. 11, B.
Monomero (hidrochinono) ir polimero UV bei matomos srities spektrai sugretinti Fig. 12. UV srityje stebima juosta polimero atveju (kreivė 2) yra pasislinkusi į ilgųjų bangų pusę, kas yra būdinga polimerams.
Polimero elektrocheminės savybės tirtos vandeniniuose buferiniuose tirpaluose, analizuojant modifikuotų polimero sluoksnių anglinių elektrodų ciklines voltamperometrines kreives. Tipinė tokia kreivė fosfatiniame buferyje parodyta Fig. 13. Matyti, kad polimerinė medžiaga pasižymi grįžtamu oksidacijos redukcijos virsmu (kreivė 1), kurio pusiausvyrinis potencialas prie pH 7.0 yra 57 mV. Pusiausvyrinio potencialo priklausomybė nuo pH yra tiesė, kuri parodyta Fig. 14. Tiesės nuolinkio kampas (-56 mV/pH) rodo, kad elektrodiniame procese dalyvauja 2 protonai ir 2 elektronai.
Poli-hidrochinono gebėjimas oksiduoti redukuotą nikotinamidadenindinukleotidą (NADH) atspindėtas anodinės srovės padidėjimu pridėjus 12 mM NADH (Fig. 14, kreivė 2). Potenciostatinėse sąlygose esant potencialui 200 mV, modifikuoto poli-hidrochinonu anglinio elektrodo atsakas į NADH yra tiesinis iki 5 mM NADH (Fig. 15).
Pavyzdys. Poli-feroceniloksietileno (poli-Fc) sintezė ir polimero charakteristika
Medžiagos sintezė atlikta pagal metodiką [JI EorycnaBCKuū n ąp; flOK/iaAbi PAH, 1996, N° 12] , prijungiant ferocenilmetantiolą prie etilenglikolio vinilglicidilo diesterio 75 °C temperatūroje, esant azobisizosviesto rūgšties dinitrilui.
Poli-Fc spektrinės charakteristikos, įrodančios medžiagos struktūrą, sutampa su literatūroje nurodytomis charakteristikomis.
Medžiagos IR spektrai KBr tabletėse rodė juostas, charakteringas feroceno žiedui (dvigubas pikas 480 ir 500 cm'1) srityje. Viniloksigrupėi charakteringos juostos_(1605, 1625 cm'1) sintezės eigoje išnykdavo.
Struktūrinė oligomero forjnulė:
(CH—O—CH,),—CH, CH-S
Poli - feroceniloksietileno (poli-Fc) elektrocheminės savybės tirtos tiesiog ant anglinio elektrodo paviršiaus išgarinant 2 pi cikloheksanoninio polimero tirpalo. Poli-Fc ciklinė voltamperinė kreivė parodyta Fig. 16. Stebimas grįžtamas vienelektroninis oksidacijos-redukcijos procesas, kurio pusiausvyrinis potencialas yra apie 450 mV Ag/AgCI palyginamojo elektrodo atžvilgiu.
Fermentinių elektrodų, pagamintų panaudojant aukščiau aprašytus polimerus veikimas aprašytas šiuose pavyzdžiuose.
Pavyzdys. Gliukozės sensorius su poli-DBA ir PQQ-GDH.
Ant anglinio elektrodo paviršiaus sorbuojamas sluoksnis iš 0.05 vnt. fermento PQQ-gliukozės dehidrogenazės ir išgarinama 3 pi sotaus etanolinio poli-DBA tirpalo.
Toks elektrodas potenciostatinėse sąlygose (300 mV) atsako į gliukozės pridėjimą į buferinį tirpalą (Fig. 17.). Sensoriaus jautrumas yra apie 0.2 μΑ/mM. Jautrumas nepakito, atliekant matavimus antrą kartą su tuo pačiu elektrodu (kreivė 2), tai rodo, kad fermento ir redoks polimero savybės nepakito, ir imobilizavimas įvyko efektyviai.
Pavyzdys. Gliukozės elektrodo su PQQ-GDH ir polihidrochinonu gamyba.
Fermentinis elektrodas gaminamas formuojant ant anglies elektrodo du sluoksnius: adsorbuoto fermento sluoksnį iš 0.06 vnt fermento PQQ-gliukozės dehidrogenazės ir polimero plėvelę. Plėvelė susidaro išgarinus ant elektrodo paviršiaus 2 pi polimero tirpalo dimetilsulfokside.
Gliukozės matavimai atliekami 0.4 ml tūrio gardelėje su 0.05 M fosfatiniu buferiniu tirpalu, kurio pH 7.0, poliarizuojant paruoštą elektrodą 550 mV Ag/AgCI palyginamojo elektrodo atžvilgiu. Pridedant į tirpalą gliukozės, registruojami anodinės srovės pokyčiai. Rezultatai, atspindintys signalo priklausomybę nuo gliukozės koncentracijos, parodyti Fig. 18. Elektrodo jautrumas - 0.08 pA/mM gliukozės.
Pavyzdys. Gliukozės elektrodo su poli - Fc gamyba
Ant anglinio elektrodo paviršiaus suformuota polimerinė plėvelė išdžiovinant 3 μΙ poli-Fc tirpalo cikloheksanone. Elektrodas su polimeriniu sluoksniu merkiamas į 0.2 ml tūrio gardelę su 1.5 vnt. PQQ-gliukozės dehidrogenazės buferiniame tirpale (pH=6) ir nustatoma foninė elektrodo srovė, poliarizuojant jį 550 mV Ag/AgCI palyginamojo elektrodo atžvilgiu. Į gardelę įnešama po 2 μΙ 0.1 M gliukozės tirpalo ir registruojami anodinės srovės pokyčiai. Gliukozės matavimai, naudojant poli-Fc padengtą elektrodą, kai poliferoceninis sluoksnis tarnauja sistemos oksidatoriumi, o fermentas yra tirpale, iliustruojamas Fig. 19. Elektrodo, kurio paviršiuje suformuota plėvelė iš 120 mg/ml poli-Fc tirpalo, jautrumas gliukozei buvo 0.04 μΑ/mmoll ir kalibracinio grafiko tiesinė dalis siekė iki 8 mmol/l (Fig. 21, A kreivė). Elektrodo, kurio paviršiuje suformuota plėvelė iš 24 mg/ml poliFc tirpalo, jautrumas buvo 0.25 μΑ/mmoll, o kalibracinio grafiko tiesiškumas siekė 6 mmol/l (Fig. 19, B kreivė). Iš gautų rezultatų matyti, kad esant 5 kartus mažesniam polimero kiekiui, elektrodo jautrumas gliukozei yra 6 kartus didesnis, tačiau toks Biosensorius turi trumpesnę kalibracinio grafiko tiesinę dalį.
Pavyzdys, Gliukozės sensoriaus su poli-Fc ir PQQ GDH gamyba.
Polimero pagalba ant elektrodo paviršiaus imobilizavome fermentą. Tam konstravome dviejų sluoksnių fermentinį elektrodą. Vidiniame sluoksnyje buvo fermentas PQQ-GDH (0.06 vnt), adsorbuotas ant anglinio elektrodo paviršiaus. Išorinį sluoksnį sudarė polimerinė plėvelė iš 2 ųl poli-Fc tirpalo cikloheksanone. Tokia konstrukcija turi kelis privalumus. Pirma, polimerinė plėvelė,būdama mažai tirpi vandenyje, apsaugo fermentą nuo išsiplovimo į tirpalą. Antra, plėvelė sukelia difūzinius apsunkinimus gliukozės patekimui iš tirpalo į fermentinį sluoksnį, dėl ko pailgėja kalibracinio grafiko tiesinė dalis.
Į paruoštą 0.4 ml tūrio gardelę įvedama 0.008 ml 0.1 mol/l gliukozės tirpalo ir išmaišoma. Galutinė gliukozės koncentracija gardelėje 2 mmol/l. Matavimai atliekami gardelėje su 0.05 M fosfatiniu buferiniu tirpalu, kurio pH 7.0, poliarizuojant paruoštą elektrodą 550 mV Ag/AgCI palyginamojo elektrodo atžvilgiu Registruojami anodinės srovės pokyčiai šešis kartus iš eilės, merkiant fermentinį elektrodą į tą patį 2 mmol/l gliukozės tirpalą ir po kiekvieno matavimo elektrodą nuplaunant destiliuotu vandeniu. Fermento sluoksnio stabilumą ir katalitinio aktyvumo išlikimą, panaudojus elektrodą kelis kartus, iliustruoja šie rezultatai. Užregistruoti signalai sudarė : 0.16; 0.25; 0.15; 0.15 0.14 ir 0.24 μΑ. Reikšmių vidurkis x = 0.18 μΑ,. Variacijos koeficientas CV = 11.6% rodo, kad gautos reikšmės yra eksperimento paklaidos ribose.
Elektrodo, kurio paviršius modifikuotas dviem sluoksniais - PQQ-GDH ir poliFc plėvele, jautrumas gliukozei pateiktas Fig. 20.
Iš 1 kreivės matyti, kad esant polimerinei plėvelei suformuotai, iš 120 mg/ml poliFc tirpalo, elekrodo jautrumas buvo 62 nA mmol·11, o kai polimerinė plėvelė gauta iš dvigubai mažesnio poli-Fc kiekio (Fig. 20, 2 kreivė), tai elektrodo jautrumas gliukozei buvo didesnis ir siekė apie 98 nA/mmol l. Tai leidžia manyti, kad esant mažesniam polimero kiekiui susidaro plonesnis sluoksnis, kuriame feroceno darinys turi didesnį judrumą ir gali efektyviau sąveikauti su aktyviu fermento centru. Taip pat gauti rezultatai patvirtina, kad polimerinė plėvelė apsunkina gliukozės difuziją katalitiniame sluoksnyje, nes kalibracinio grafiko tiesinė dalis pailgėja iki 24 mmol/l.

Claims (10)

  1. IŠRADIMO APIBRĖŽTIS
    1. Biosensorius (fermentinis elektrodas), skirtas gliukozės nustatymui biologiniuose skysčiuose, besiskiriantis tuo, kad susideda iš anglinio elektrodo, fermento dehidrogenazės ir polimerinės plėvelės, kuri vienu metu atlieka mediatoriaus, fermentą imobilizuojančios struktūros ir difuziją kontroliuojančio sluoksnio funkciją.
  2. 2. Biosensorius pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad fermentu dehidrogenaze yra β-nikotinamido adenino dinukleotido (NADH), flavinadenindinukleotido (FAD) arba pirolochinolinchinono (PQQ) kofaktorius turinčios dehidrogenazės.
  3. 3. Biosensorius, kuriame fermentu dehidrogenaze yra pirolochinolinchinono (PQQ) kofaktorių turinti dehidrogenaze pagal 2 punktą, besiskiriantis tuo, kad pirolochinolinchinono (PQQ) kofaktorių turinčią dehidrogenazę išskiria iš mikroorganizmo kamieno Erwinia sp 34-1.
  4. 4. Biosensorius pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad jo sudėtyje esanti polimerinė plėvelė yra polichinoninės struktūros redoks polimerai.
  5. 5. Biosensorius pagal 1 ir 4 punktus, besiskiriantis tuo, kad jo sudėtyje esančius polichinoninių struktūrų redoks polimerus gauna chinoninės struktūros monomerus polimerizuojant fermento lakazės pagalba.
  6. 6. Biosensorius pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad jo sudėtyje esanti polimerinė plėvelė yra feroceno grupę turintys dariniai.
  7. 7. Biosensoriaus pagal 1 punktą gavimo būdas dengiant fermentą ir redoks polimero plėvelę ant elektrodo paviršiaus, besiskiriantis tuo, kad fermentą imobilizuoja nekovalentiniais ryšiais įterpiant į polimerinį sluoksnį.
  8. 8. Biosensoriaus gavimo būdas pagal 7 punktą, besiskiriantis tuo, kad polimerą dengia ant elektrodo sudarant atskirą, fermentą sulaikantį, sluoksnį.
  9. 9. Biosensoriaus gavimo būdas pagal 7 punktą, besiskiriantis tuo, kad elektrodą dengia plėvele, suformuota iš fermento ir redoks polimero.
  10. 10. Biosensoriaus gavimo būdas pagal 7 punktą, besiskiriantis tuo, fermentas imobilizuojamas po elektrodo padengimo polimeru.
LT99-032A 1999-04-07 1999-04-07 Fermentinis gliukozės sensorius ir jo gavimo būdas LT4605B (lt)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
LT99-032A LT4605B (lt) 1999-04-07 1999-04-07 Fermentinis gliukozės sensorius ir jo gavimo būdas

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
LT99-032A LT4605B (lt) 1999-04-07 1999-04-07 Fermentinis gliukozės sensorius ir jo gavimo būdas

Publications (2)

Publication Number Publication Date
LT99032A LT99032A (lt) 1999-11-25
LT4605B true LT4605B (lt) 2000-01-25

Family

ID=19722068

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
LT99-032A LT4605B (lt) 1999-04-07 1999-04-07 Fermentinis gliukozės sensorius ir jo gavimo būdas

Country Status (1)

Country Link
LT (1) LT4605B (lt)

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0078636A1 (en) 1981-10-23 1983-05-11 MediSense, Inc. Sensor for components of a liquid mixture
EP0194578A2 (en) 1985-03-13 1986-09-17 Miles Inc. Proteins immobilised on polyamides or cellulose hydrate and the use thereof for the preparation of biocatalysts, test strips or chromatography materials
EP0206471A2 (en) 1985-04-24 1986-12-30 Mitsubishi Gas Chemical Company, Inc. Process for preparation of pyrrolo-quinoline quinone
WO1990012889A1 (en) 1989-04-25 1990-11-01 Migrata Uk Ltd Method of analysis, reagent composition and use thereof for glucose determination
EP1770743A2 (de) 2005-09-30 2007-04-04 Schott AG Verbundsystem, Verfahren zur Herstellung eines Verbundsystems und Leuchtkörper

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0078636A1 (en) 1981-10-23 1983-05-11 MediSense, Inc. Sensor for components of a liquid mixture
US4545382A (en) 1981-10-23 1985-10-08 Genetics International, Inc. Sensor for components of a liquid mixture
EP0194578A2 (en) 1985-03-13 1986-09-17 Miles Inc. Proteins immobilised on polyamides or cellulose hydrate and the use thereof for the preparation of biocatalysts, test strips or chromatography materials
EP0206471A2 (en) 1985-04-24 1986-12-30 Mitsubishi Gas Chemical Company, Inc. Process for preparation of pyrrolo-quinoline quinone
WO1990012889A1 (en) 1989-04-25 1990-11-01 Migrata Uk Ltd Method of analysis, reagent composition and use thereof for glucose determination
EP1770743A2 (de) 2005-09-30 2007-04-04 Schott AG Verbundsystem, Verfahren zur Herstellung eines Verbundsystems und Leuchtkörper

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
JAMES DAVIS, D HUW VAUGHAN, MARCO F CARDOSI: "Elements of biosensor construction", ENZYME AND MICROBIAL TECHNOLOGY, 1995, pages 1030 - 1035, XP055283224, DOI: doi:10.1016/0141-0229(95)00013-5
P. LEDUC, D. THEVENOT: "Chemical and electrochemical oxidation of aqueous solutions of NADH and model compounds", BIOELECTROCHEMISTRY AND BIOENERGETICS, 1974, pages 96 - 107, XP026713699, DOI: doi:10.1016/0302-4598(74)85011-7
R.B. BROWN: "Oxidative coupling of phenols", pages: 167

Also Published As

Publication number Publication date
LT99032A (lt) 1999-11-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Cosnier Biomolecule immobilization on electrode surfaces by entrapment or attachment to electrochemically polymerized films. A review
Emr et al. Use of polymer films in amperometric biosensors
Chaubey et al. Mediated biosensors
Garjonyte et al. Amperometric glucose biosensor based on glucose oxidase immobilized in poly (o-phenylenediamine) layer
Dzyadevych et al. Amperometric enzyme biosensors: Past, present and future
Kausaite-Minkstimiene et al. Evaluation of amperometric glucose biosensors based on glucose oxidase encapsulated within enzymatically synthesized polyaniline and polypyrrole
Cosnier Electropolymerization of amphiphilic monomers for designing amperometric biosensors
CA2163816C (en) Electrochemical enzyme biosensor
Mizutani et al. Amperometric determination of pyruvate, phosphate and urea using enzyme electrodes based on pyruvate oxidase-containing poly (vinyl alcohol)/polyion complex-bilayer membrane
Mizutani et al. High-throughput flow-injection analysis of glucose and glutamate in food and biological samples by using enzyme/polyion complex-bilayer membrane-based electrodes as the detectors
Li et al. Development of an amperometric biosensor based on glucose oxidase immobilized through silica sol–gel film onto Prussian Blue modified electrode
Dempsey et al. Electropolymerised o-phenylenediamine film as means of immobilising lactate oxidase for a L-lactate biosensor
Malinauskas et al. Bioelectrochemical sensor based on PQQ-dependent glucose dehydrogenase
Nakabayashi et al. Amperometric glucose sensors fabricated by electrochemical polymerization of phenols on carbon paste electrodes containing ferrocene as an electron transfer mediator
Mizutani et al. Rapid measurement of transaminase activities using an amperometric l-glutamate-sensing electrode based on a glutamate oxidase–polyion complex-bilayer membrane
Bu et al. NAD (P) H sensors based on enzyme entrapment in ferrocene-containing polyacrylamide-based redox gels
Schuhmann et al. Electrocatalytic properties of polypyrrole in amperometric electrodes
Palmisano et al. An in situ electrosynthesized amperometric biosensor based on lactate oxidase immobilized in a poly-o-phenylenediamine film: Determination of lactate in serum by flow injection analysis
Cosnier et al. Enhancement of biosensor sensitivity in aqueous and organic solvents using a combination of poly (pyrrole-ammonium) and poly (pyrrole-lactobionamide) films as host matrices.
Lee et al. Amperometric glucose biosensor based on screen-printed carbon electrodes mediated with hexacyanoferrate–chitosan oligomers mixture
Hou et al. Amperometric glucose enzyme electrode by immobilizing glucose oxidase in multilayers on self-assembled monolayers surface
Mizutani et al. Amperometric glucose-sensing electrode based on carbon paste containing poly (ethylene glycol)-modified glucose oxidase and cobalt octaethoxyphthalocyanine
Alp et al. Glow-discharge-treated cellulose acetate (CA) membrane for a high linearity single-layer glucose electrode in the food industry
Tzang et al. Voltammetric biosensors for the determination of formate and glucose-6-phosphate based on the measurement of dehydrogenase-generated NADH and NADPH
Schuhmann et al. Electrocatalytic oxidation of NADH at mediator-modified electrode surfaces

Legal Events

Date Code Title Description
MM9A Lapsed patents

Effective date: 20010407