KR20220005446A - Liposome production method - Google Patents
Liposome production method Download PDFInfo
- Publication number
- KR20220005446A KR20220005446A KR1020217032697A KR20217032697A KR20220005446A KR 20220005446 A KR20220005446 A KR 20220005446A KR 1020217032697 A KR1020217032697 A KR 1020217032697A KR 20217032697 A KR20217032697 A KR 20217032697A KR 20220005446 A KR20220005446 A KR 20220005446A
- Authority
- KR
- South Korea
- Prior art keywords
- ethanol
- agent
- liposomes
- hydrochloride
- liposome
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/10—Dispersions; Emulsions
- A61K9/127—Liposomes
- A61K9/1271—Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes, liposomes coated with polymers
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/33—Heterocyclic compounds
- A61K31/395—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
- A61K31/495—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with two or more nitrogen atoms as the only ring heteroatoms, e.g. piperazine or tetrazines
- A61K31/505—Pyrimidines; Hydrogenated pyrimidines, e.g. trimethoprim
- A61K31/519—Pyrimidines; Hydrogenated pyrimidines, e.g. trimethoprim ortho- or peri-condensed with heterocyclic rings
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/70—Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
- A61K31/7028—Compounds having saccharide radicals attached to non-saccharide compounds by glycosidic linkages
- A61K31/7034—Compounds having saccharide radicals attached to non-saccharide compounds by glycosidic linkages attached to a carbocyclic compound, e.g. phloridzin
- A61K31/704—Compounds having saccharide radicals attached to non-saccharide compounds by glycosidic linkages attached to a carbocyclic compound, e.g. phloridzin attached to a condensed carbocyclic ring system, e.g. sennosides, thiocolchicosides, escin, daunorubicin
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K45/00—Medicinal preparations containing active ingredients not provided for in groups A61K31/00 - A61K41/00
- A61K45/06—Mixtures of active ingredients without chemical characterisation, e.g. antiphlogistics and cardiaca
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
- A61K47/06—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite
- A61K47/24—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite containing atoms other than carbon, hydrogen, oxygen, halogen, nitrogen or sulfur, e.g. cyclomethicone or phospholipids
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
- A61K47/06—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite
- A61K47/28—Steroids, e.g. cholesterol, bile acids or glycyrrhetinic acid
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K49/00—Preparations for testing in vivo
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/10—Dispersions; Emulsions
- A61K9/127—Liposomes
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/10—Dispersions; Emulsions
- A61K9/127—Liposomes
- A61K9/1277—Processes for preparing; Proliposomes
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P25/00—Drugs for disorders of the nervous system
- A61P25/28—Drugs for disorders of the nervous system for treating neurodegenerative disorders of the central nervous system, e.g. nootropic agents, cognition enhancers, drugs for treating Alzheimer's disease or other forms of dementia
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P29/00—Non-central analgesic, antipyretic or antiinflammatory agents, e.g. antirheumatic agents; Non-steroidal antiinflammatory drugs [NSAID]
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/04—Antibacterial agents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/12—Antivirals
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P35/00—Antineoplastic agents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P39/00—General protective or antinoxious agents
- A61P39/06—Free radical scavengers or antioxidants
Abstract
본 발명은 감소된 수의 생산 단계, 즉 종래 리포좀 생산 공정의 압출 단계를 제외하여, 캡슐화된 제제의 높은 캡슐화 효율을 얻기 위한 리포좀의 생산 방법에 관한 것이다. 본 발명의 리포좀은 항암제, 항산화제, 항염증제, 해열제, 항생제, 항바이러스제, 항류마티스제, 진통제, 성장-인자, 또는 이들의 혼합물과 같은 치료제를 운반하도록 의도된다.The present invention relates to a method for the production of liposomes in order to obtain a high encapsulation efficiency of an encapsulated formulation, excluding the reduced number of production steps, i.e., the extrusion steps of conventional liposome production processes. The liposomes of the present invention are intended to deliver therapeutic agents such as anticancer agents, antioxidants, anti-inflammatory agents, antipyretics, antibiotics, antiviral agents, antirheumatic agents, analgesics, growth-factors, or mixtures thereof.
Description
본 발명은 보다 적은 수의 생산 단계로 캡슐화제의 높은 캡슐화 효율을 얻기 위한 리포좀의 생산 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a method for the production of liposomes for obtaining high encapsulation efficiency of encapsulants with fewer production steps.
리포좀은 하나 이상의 동심원 인지질 층(라멜라)으로 둘러싸인 수성 코어로 구성된 인공 현미경 소포로 정의된다[1]. 리포좀은 자연적으로 발생하는 물질로 구성되어 있어 독성이 없고 생분해되기 때문에 다양한 치료제의 담체로 많은 주목을 받고 있다[2]. 리포좀은 친수성(수성 구획 내), 소수성(지질 막 내), 및 양친매성 물질(지질 수성 계면)을 함유할 수 있기 때문에 광범위한 잠재적 적용을 보여준다[3]. 또한, 리포좀에 캡슐화된 생물학적 활성 물질은 즉각적인 희석 또는 분해로부터 보호된다. 이러한 모든 이유로 리포좀은 발견 이후 가장 널리 사용되는 나노운반체 시스템이다.Liposomes are defined as artificial microscopic vesicles composed of an aqueous core surrounded by one or more concentric phospholipid layers (lamellae) [1]. Because liposomes are non-toxic and biodegradable because they are composed of naturally occurring substances, they are receiving much attention as carriers for various therapeutic agents [2]. Liposomes show a wide range of potential applications because they can contain hydrophilic (in the aqueous compartment), hydrophobic (in the lipid membrane), and amphiphilic substances (in the lipid aqueous interface) [3]. In addition, the biologically active substances encapsulated in the liposomes are protected from immediate dilution or degradation. For all these reasons, liposomes are the most widely used nanocarrier systems since their discovery.
여러 목적을 위한 리포좀의 광범위한 사용은 가능한 한 가장 단순하게 효율적이고 재현 가능한 제조 방법을 개발할 필요성을 불러일으켰다. 리포좀을 제조하는 방법에는 다양한 변형이 있다. 그 단순성 때문에, 대부분의 실험실에서는 1965년에 처음 기술된 지질 박막 수화법(lipid thin-film hydration)을 사용한다[4]. 그러나, 필름 방식은 대규모 생산에 적합하지 않은 경향이 있다. 또한, 염소계 용제의 사용에 대한 우려가 있다.The widespread use of liposomes for multiple purposes has created the need to develop an efficient and reproducible preparation method in the simplest possible way. There are various modifications to the method for preparing liposomes. Because of its simplicity, most laboratories use lipid thin-film hydration, first described in 1965 [4]. However, the film method tends not to be suitable for large-scale production. In addition, there is a concern about the use of a chlorine-based solvent.
에탄올 주입 방법은 GMP 규모-확대 리포좀 생산을 위한 흥미로운 기술이다. 이는 다음과 같은 몇 가지 이점을 제공한다: 단순성, GMP 친화적인 용매, 빠른 구현 및 재현성, 지질 분해 또는 산화적 변형을 일으키지 않는다는 사실. 에탄올 주입 방법은 초음파 처리 없이 소형 단층 소포(SUV)를 제조하기 위한 첫 번째 대안 중 하나로 Batzri와 Korn[5]에 의해 1973년에 처음 보고되었다. 수성 상(aqueous phase)에서 에탄올을 즉시 희석함으로써, 지질 분자가 침전되어 이중층 평면 단편을 형성한다. 시스템(교반 및/또는 초음파 처리에 의한)에서의 에너지 소산을 통해, 이러한 지질 이중층의 단편은 분자의 소수성 부분이 수성 환경에 노출되는 것을 감소시키는 경향이 있어, 그 결과 준-구형 구조를 취하는 이러한 단편의 곡률이 발생한다. 다음 몇 년 동안, 여러 연구에서 생성된 리포좀의 특성(크기 분포, 제타 전위(zeta potential), 약물 캡슐화 효율 등)에 대한 에탄올 주입 기술의 제조 매개변수(지질 농도 및 조성, 주입 속도, 두 상의 온도, 교반 속도 등)를 조사하였다[6].The ethanol injection method is an interesting technique for GMP scale-up liposome production. It offers several advantages: simplicity, GMP-friendly solvent, fast implementation and reproducibility, the fact that it does not cause lipolysis or oxidative modification. The ethanol injection method was first reported in 1973 by Batzri and Korn [5] as one of the first alternatives to fabricate small unilamellar vesicles (SUVs) without sonication. By immediately diluting the ethanol in the aqueous phase, the lipid molecules precipitate to form bilayer planar fragments. Through energy dissipation in the system (by agitation and/or sonication), fragments of these lipid bilayers tend to reduce the exposure of the hydrophobic portion of the molecule to an aqueous environment, resulting in such a quasi-spherical structure. The curvature of the fragment occurs. In the next few years, several studies have shown that the manufacturing parameters of the ethanol injection technique (lipid concentration and composition, infusion rate, temperature of both phases) for the properties of the generated liposomes (size distribution, zeta potential, drug encapsulation efficiency, etc.) , stirring speed, etc.) were investigated [6].
종래의 에탄올 주입 방법에서, 에탄올 상은 수성 상에 비해 적은 비율로, 일반적으로 5-10%이다. 에탄올 증발 후, 소포 크기를 줄이기 위해 리포좀 분산액을 압출한다. 간단히 말해서, 종래의 에탄올 주입 방법은 3가지 주요 단계로 구성된다:In conventional ethanol injection methods, the ethanol phase is a small proportion compared to the aqueous phase, typically 5-10%. After evaporation of the ethanol, the liposome dispersion is extruded to reduce the vesicle size. Briefly, the conventional ethanol injection method consists of three main steps:
1. 수성 상에 지질(에탄올) 주입;1. Lipid (ethanol) injection into the aqueous phase;
2. 리포좀 크기를 줄이기 위한 압출; 및2. Extrusion to reduce liposome size; and
3. 캡슐화되지 않은 제제를 제거.3. Eliminate unencapsulated formulations.
일반적으로, 리포좀 치료제 또는 조영제 로딩(loading)은 수동 또는 능동 방법에 의해 달성된다:In general, liposomal therapeutic or contrast agent loading is accomplished by passive or active methods:
수동 로딩(Passive loading)은 관심 제제를 함유하는 수용액에서 건조된 지질 필름의 용해를 포함한다. 이 접근 방식은 수용성 제제에만 사용할 수 있으며, 로딩 효율은 종종 낮다(5% 미만). 이 방법은 화학 구조와 무관하게 광범위한 화합물에 사용할 수 있다.Passive loading involves dissolution of the dried lipid film in an aqueous solution containing the agent of interest. This approach can only be used with water-soluble formulations, and loading efficiencies are often low (less than 5%). This method can be used for a wide range of compounds irrespective of their chemical structure.
능동 로딩(Active loading)은 리포좀 막관통 pH 구배에 의해 구동되는 제제의 내재화를 포함한다[7]. 이 과정은 매우 효율적일 수 있고(95% 이상), 높은 리포좀 내 농도와 값비싼 화학요법제의 낭비를 최소화할 수 있다.Active loading involves the internalization of an agent driven by a liposomal transmembrane pH gradient [7]. This process can be very efficient (>95%), with high intraliposome concentrations and minimal waste of expensive chemotherapeutic agents.
그러나 이 방법(능동 로딩)은 분자가 리포좀 내부와 외부에서 사용하는 완충액의 극한 pH에서 다른 양성자화 상태를 가질 것을 요구한다. 이러한 방식으로 주어진 분자는 두 개의 다른 pH가 리포좀 내부와 외부에서 설정될 때 지질 이중층을 확산시킬 것이다. 따라서, pH 구배는 양친매성 약 염기 및 산을 이동시키고 유지하는 원동력이다[8].However, this method (active loading) requires that molecules have different protonation states at the extreme pH of the buffer used inside and outside the liposome. A molecule given in this way will diffuse the lipid bilayer when two different pHs are established inside and outside the liposome. Thus, the pH gradient is the driving force for transport and retention of amphiphilic weak bases and acids [8].
또한 막횡단 황산암모늄 구배를 사용하는 약염기성 아민 치료제 또는 영상화제에 대한 능동 로딩 접근법이 문헌에 보고되어 있다. 이 경우, 암모니아 구배는 pH 구배를 유도하여, 제제를 리포좀으로 능동적으로 수송한다. 그런 다음 황산염은 이온화된 제제에 대한 반대 이온으로 작용하여, 리포좀 내에서 침전되도록 한다. 이 방법은 Doxil에 관한 리포좀 독소루비신 생산에 적용되었다. Myocet은, pH 구배가 시트르산으로 성립되지만, 원격으로 로드되는 리포좀 독소루비신의 또 다른 예이다[9].Active loading approaches for weakly basic amine therapeutics or imaging agents using a transmembrane ammonium sulfate gradient have also been reported in the literature. In this case, the ammonia gradient induces a pH gradient, which actively transports the agent into the liposome. The sulfate then acts as a counter ion to the ionized agent, allowing it to precipitate within the liposome. This method was applied to the production of liposomal doxorubicin on Doxil. Myocet is another example of a remotely loaded liposomal doxorubicin, although the pH gradient is established with citric acid [9].
능동 로딩 공정에서는, 종래의 에탄올 주입 방법으로 리포좀을 제조한 후, 리포좀-외 상을 제거한 다음, 리포좀-외 상에 제제를 첨가하고 리포좀을 인큐베이션하여 원격 로딩 공정이 진행되도록 한다. 간단히 말해서, 능동 로딩 프로세스는 5가지 주요 단계로 구성된다:In the active loading process, after the liposome is prepared by the conventional ethanol injection method, the liposome-extra-phase is removed, then the agent is added to the liposome-extra-phase and the liposome is incubated to proceed with the remote loading process. Briefly, the active loading process consists of five main steps:
1. 수성 상에 지질(에탄올) 주입;1. Lipid (ethanol) injection into the aqueous phase;
2. 리포좀 크기를 줄이기 위한 압출;2. Extrusion to reduce liposome size;
3. 리포좀-외 상의 제거;3. Removal of liposome-extraphase;
4. 제제와 리포좀의 인큐베이션; 및4. Incubation of formulations with liposomes; and
5. 캡슐화되지 않은 제제를 제거.5. Remove the unencapsulated formulation.
WO/2013/084208(Paulo A. et al., 2013, Liposomes and its production method)에는 지질막 수화법인 리포좀 생산 방법이 기재되어 있다.WO/2013/084208 (Paulo A. et al ., 2013, Liposomes and its production method) describes a lipid membrane hydration method for producing liposomes.
US4752425A(Martin F. et al., 1988, High-encapsulation liposome processing method)에는 클로로포름을 사용하는 리포좀의 생산 방법이 기재되어 있다. 생성된 리포좀은 1.5미크론 이상으로 존재하고, 크기 감소를 위해 압출이 필요하다(본래 캡슐화된 제제가 손실되는 경우).US4752425A (Martin F. et al ., 1988, High-encapsulation liposome processing method) describes a method for producing liposomes using chloroform. The resulting liposomes are larger than 1.5 microns and require extrusion for size reduction (if the original encapsulated formulation is lost).
US5549910A(Szoka F. et al., 1994, Preparation of liposome and lipid complex compositions)는 물, 알코올, 및 할로겐화 탄화수소 용매에서 낮은 용해도를 보이는 화합물을 함유하는 리포좀을 얻는 방법을 기술하고 있다. 이 방법에서 지질은 비양성자성 용매 용액에 용해되고, 이를 용해시키는 데 필요한 경우 저급 알칸올을 추가로 함유할 수 있다. 이 방법은 정의된 크기의 리포좀을 얻기 위해 압출이 필요하다.US5549910A (Szoka F. et al ., 1994, Preparation of liposome and lipid complex compositions) describes a method for obtaining liposomes containing compounds exhibiting low solubility in water, alcohol, and halogenated hydrocarbon solvents. In this method, the lipid is dissolved in a solution of an aprotic solvent and may further contain a lower alkanol if necessary to dissolve it. This method requires extrusion to obtain liposomes of defined size.
US20120171280A1(Zhang Y, 2011, Method of making liposomes, liposome compositions made by the methods, and methods of using the same)에는, 수용액이 아스코르브산 또는 그의 염을 캡슐화하기 위한 에틸렌디아민테트라아세트산(EDTA)을 포함하는, 리포좀을 얻는 방법이 기재되어 있다. 리포좀 조성물은 약 200-500nm의 선택된 평균 입자 크기 직경을 갖는다.US20120171280A1 (Zhang Y, 2011, Method of making liposomes, liposome compositions made by the methods, and methods of using the same), an aqueous solution comprising ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) for encapsulating ascorbic acid or a salt thereof, Methods for obtaining liposomes are described. The liposome composition has a selected average particle size diameter of about 200-500 nm.
US 5316771A(Barenholz, Y. et al., 1994, Method of amphiphatic drug loading in liposomes by ammonium ion gradient)는 막횡단 구배를 사용하여 약한 양친매성 약물을 리포좀으로 능동적으로 로딩하는 것을 설명한다.US 5316771A (Barenholz, Y. et al ., 1994, Method of amphiphatic drug loading in liposomes by ammonium ion gradient) describes the active loading of weakly amphiphilic drugs into liposomes using a transmembrane gradient.
US 5939096A(Clerc, S.Y. and Barenholz, 1999, Stably encapsulating a weak acid drug in liposomes, at a high concentration)에는 고농도의 약산성 약물로 캡슐화된 리포좀이 기재되어 있다. 이 방법은 더 높은 내부/낮은 외부 pH 구배를 생성하기 위해 약산의 염과 관련된 양성자 셔틀 메커니즘을 사용하였다.US 5939096A (Clerc, S.Y. and Barenholz, 1999, Stably encapsulating a weak acid drug in liposomes, at a high concentration) describes liposomes encapsulated with a weakly acidic drug in high concentration. This method used a proton shuttle mechanism involving salts of weak acids to create a higher internal/lower external pH gradient.
WO201364911은 지질층 내에 캡슐화된 핵산, 단백질, 및 펩티드와 같은 지질-캡슐화된 음-전하 치료용 중합체를 생산하기 위한 방법 및 조성물에 관한 것이다. WO201364911 relates to methods and compositions for producing lipid-encapsulated negative-charge therapeutic polymers such as nucleic acids, proteins, and peptides encapsulated in a lipid layer.
WO0105374는 미리 형성된 지질 소포, 하전 치료제(지질과 반대 전하를 가짐) 및 불안정화제의 혼합 후에, 지질-캡슐화된 하전 치료제 입자를 생산하기 위한 방법 및 조성물에 관한 것이다.WO0105374 relates to methods and compositions for producing lipid-encapsulated charged therapeutic agent particles after mixing of a preformed lipid vesicle, a charged therapeutic agent (having an opposite charge to the lipid) and a destabilizing agent.
발명의 일반적인 내용general content of the invention
본 명세서의 방법은 나노입자를 생성하기 위한 추가 처리 단계 없이 이전 방법과 동일하거나 더 나은 표적 리포좀에서 소분자 캡슐화 효율을 달성하는 이점이 있다. 메토텍스트레이트 및 독소루비신과 같은 중성 pH(5-8)에서 구조에 음전하를 띠는 다중하전 분자는 이 방법으로 더 잘 캡슐화된다. 메토텍스트레이트는 캡슐화율이 높고 단계 수가 감소한 독소루비신이다(표 2 및 3)The method herein has the advantage of achieving the same or better small molecule encapsulation efficiency in the target liposome than the previous method without additional processing steps to generate nanoparticles. Multicharged molecules that are negatively charged in their structure at neutral pH (5-8), such as methotrexate and doxorubicin, are better encapsulated in this way. Methotextrate is doxorubicin with high encapsulation rate and reduced number of steps (Tables 2 and 3)
제안된 대안적인 방법에서, 치료제 또는 영상화제의 더 높은 캡슐화 효율은 에탄올:수성 상을 유사한 부피비로 사전-농축 방법을 사용하여 달성되고, 리포좀은 마지막에 희석될 수 있다. 신규 제안된 방법은 산업 공정에서 바람직한 감소된 단계 수(단 2개)를 제공한다. 이러한 특징은 동일한 방법으로 처음으로 집계되었고, 이는 문헌에 보고된 특징과 차별화된다.In the proposed alternative method, a higher encapsulation efficiency of the therapeutic or imaging agent is achieved using a pre-concentration method with an ethanol:aqueous phase in a similar volume ratio, and the liposomes can be diluted last. The novel proposed method provides a desirable reduced number of steps (only two) in industrial processes. These features were aggregated for the first time in the same way, which differentiates them from those reported in the literature.
여러 목적을 위한 리포좀의 광범위한 사용으로 인해 효율적이고 재현 가능하며 가능한 가장 단순해야 하는 제조 방법을 개발할 필요가 생겼다. 기존 방법은 산업적 규모-확대 및/또는 관심 제제의 낮은 캡슐화 효율 달성에 대해 여전히 어려운 상태이다. 이와 같이, 단계 수를 줄이고 캡슐화제의 높은 캡슐화 효율을 달성할 수 있는 방법의 개발이 시급하다.The widespread use of liposomes for multiple purposes has created a need to develop manufacturing methods that are efficient, reproducible and should be the simplest possible. Existing methods remain difficult for industrial scale-up and/or to achieve low encapsulation efficiencies of agents of interest. As such, there is an urgent need to develop a method that can reduce the number of steps and achieve high encapsulation efficiency of the encapsulant.
리포좀을 생성하기 위해 사용된 지질은 리포좀 표면 및 막 층의 특성을 맞춤화하기 위해 변경되거나 변형될 수 있다. 중성, 양이온, 및 음이온과 같이 전하에 따라 다양한 종류의 지질이 있다. 포스페이트 헤드 그룹에 유기 분자를 추가하면 포스파티딜에탄올아민(PE), 포스파티딜세린(PS), 포스파티딜글리세롤(PG) 및 포스파티딜콜린(PC)과 같은 다양한 인지질 종을 생성한다. 이 모든 지질은 리포좀 생산에 사용될 수 있다.The lipids used to generate liposomes can be altered or modified to customize the properties of the liposome surface and membrane layer. There are different types of lipids depending on the charge, such as neutral, cationic, and anionic. Addition of organic molecules to the phosphate head group yields various phospholipid species such as phosphatidylethanolamine (PE), phosphatidylserine (PS), phosphatidylglycerol (PG) and phosphatidylcholine (PC). All these lipids can be used for liposome production.
변형되지 않은 리포좀은 대식세포에 의해 제거되기 때문에 순환에서 오래 생존하지 못 한다. 이러한 문제를 극복하기 위한 첫 번째 시도 중 하나는, 예를 들어 스테로이드를 포함하여, 이중층 유동성을 조정하기 위해 지질막 구성요소를 조작하는 데 중점을 두었다. 이러한 방식으로, 본 발명의 리포좀 제형은 35-55%, 바람직하게는 35-40%의 몰비에서 다양할 수 있는 콜레스테롤(CH)을 우선적으로 함유할 수 있다. 콜레스테롤을 리포좀에 혼입하면 지질 이중층에서 인지질의 패킹(packing)을 증가시켜 혈액 단백질과의 상호 작용을 감소시키는 것으로 나타났다.Unmodified liposomes do not survive long in circulation because they are removed by macrophages. One of the first attempts to overcome this problem, including, for example, steroids, focused on manipulating lipid membrane components to modulate bilayer fluidity. In this way, the liposome formulation of the present invention may preferentially contain cholesterol (CH) which may vary in a molar ratio of 35-55%, preferably 35-40%. Incorporation of cholesterol into liposomes has been shown to increase the packing of phospholipids in the lipid bilayer, thereby reducing their interaction with blood proteins.
또한, 우선적으로 리포좀에 합성 고분자인 폴리에틸렌글리콜(PEG)을 포함시켰다. PEG-함유 리포좀은 혈액 단백질에 대한 결합이 적고, RES 흡수가 감소하여, 순환계에서 리포좀의 지속 시간이 연장되었다. 이는 통상적인 리포좀의 혈액 순환을 약물 전달로 확장시켰고, 접합된 인지질 DSPE-MPEG는 4-12%, 바람직하게는 5-10% 사이에서 변할 수 있는 몰비로 이러한 새로운 제형의 지질 필름에 혼입되었다.In addition, polyethylene glycol (PEG), a synthetic polymer, was preferentially incorporated into the liposome. PEG-containing liposomes had less binding to blood proteins and decreased RES uptake, prolonging the duration of liposomes in circulation. This extended the blood circulation of conventional liposomes to drug delivery, and the conjugated phospholipid DSPE-MPEG was incorporated into the lipid film of this novel formulation in a molar ratio that could vary between 4-12%, preferably 5-10%.
또한 강글리오사이드와 함께 표면-개질된 리포좀은 비-개질된 리포좀과 비교하여 혈류에서 연장된 순환 시간을 갖는다는 것이 입증되었다. 이러한 특성은 면역요법에서 강글리오사이드의 적용에 잠재적으로 유용하다. 정맥 주사 후 리포좀의 RES 흡수 연구에서 여러 당지질이 테스트되었다: 당지질 GM1(뇌-조직-유래 모노시알로강글리오사이드)은 리포좀 표면에 통합될 때 RES 흡수를 상당히 감소시켰고, 제형은 몇 시간 동안 혈액 순환에 남아 있었다.It has also been demonstrated that surface-modified liposomes with gangliosides have extended circulation times in the bloodstream compared to non-modified liposomes. This property is potentially useful for the application of gangliosides in immunotherapy. Several glycolipids were tested in a study of RES uptake of liposomes after intravenous injection: the glycolipid GM1 (brain-tissue-derived monosialoganglioside) significantly reduced RES uptake when incorporated into the liposome surface, and the formulation was put into circulation for several hours. remained
능동 표적화는 표적화 리간드로 리포좀 표면의 특이적 변형을 이용하여, 표적 부위에 축적되거나 표적 세포로 세포 내 전달될 수 있다. 리포좀에 특정 리간드를 포함시키면 수용체-매개 엔도사이토시스에 의해 그 내용물이 세포 내로 방출될 수 있다. 막 표면에서 표적화제 통합은 인지질 또는 지방 아실 사슬에 접합되거나 지질막에 혼입되어 달성될 수 있다.Active targeting uses specific modification of the liposome surface with a targeting ligand, so that it can accumulate at a target site or be delivered intracellularly to a target cell. Incorporation of a specific ligand into the liposome allows its contents to be released into the cell by receptor-mediated endocytosis. Targeting agent incorporation at the membrane surface can be achieved either by conjugation to phospholipids or fatty acyl chains or by incorporation into the lipid membrane.
리포좀의 제조를 위한 다양한 방법이 있고, 다양한 변형이 있다. 에탄올 주입법(5% 에탄올)에서는, 수용액의 일부가 수용성 물질과 함께 소포 내부에 수동적으로 캡슐화된다. 이 방법의 장점은 단순하다는 것이지만, 수용성 치료제 또는 영상화제의 극히 적은 비율만 이러한 방식으로 캡슐화할 수 있다.There are various methods for the preparation of liposomes, and there are various modifications. In the ethanol injection method (5% ethanol), a portion of the aqueous solution is passively encapsulated inside the vesicle together with the water-soluble material. Although the advantage of this method is its simplicity, only a very small proportion of the water-soluble therapeutic agent or imaging agent can be encapsulated in this way.
원격 로딩에서, 빈 리포좀은 일반적으로 초기 염 또는 낮은 pH 완충액에서 제조된다. 그런 다음, 투석 또는 크기 배제 크로마토그래피를 사용하거나 pH를 약간 염기성 조건으로 적정하여 리포좀-외 상을 제거한다. 마지막으로, 제제가 리포좀-외 단계에 추가되고 리포좀이 배양되어 원격 로딩 프로세스가 진행된다[6]. 관련된 단계의 수는 생산 프로세스를 확장하기 어렵게 만들고, 이 표준 접근 방식의 추가 개발에 대한 장벽을 구성한다.In remote loading, empty liposomes are usually prepared in initial salt or low pH buffer. The liposome-traumatic phase is then removed using dialysis or size exclusion chromatography or by titrating the pH to slightly basic conditions. Finally, the agent is added to the extra-liposome step and the liposomes are cultured to proceed with the remote loading process [6]. The number of steps involved makes the production process difficult to scale and constitutes a barrier to further development of this standard approach.
따라서, 감소된 생산 단계로 리포좀 내부의 제제 캡슐화의 최적화에 초점을 맞춘다. 실제로, 사용된 제제의 소량만이 캡슐화되어(예: 메토트렉세이트 약물에 대해 3-5%), 다량의 제제가 낭비되고 이는 스케일-업 프로세스에서 문제가 될 수 있다. 캡슐화된 제제를 증가시키기 위해 생산 방법의 여러 단계에서 수많은 조건을 테스트하였다. 즉, 인지질을 함유하는 유기 상의 수성 상에서(대신 반대), 에탄올을 제거하지 않고, 70ºC 대신 실온에서 주입을 수행하여, 다양한 주입 속도와 여러 농도의 유기상(5%에서 95%까지)을 테스트한다.Therefore, the focus is on optimization of agent encapsulation inside liposomes with reduced production steps. In practice, only a small amount of the formulation used is encapsulated (eg 3-5% for methotrexate drug), a large amount of formulation is wasted and this can be a problem in the scale-up process. Numerous conditions were tested at different stages of the production process to increase the encapsulated formulation. That is, in the aqueous phase of the organic phase containing phospholipids (as opposed to instead), without removal of ethanol, and at room temperature instead of 70ºC, injections are performed at different injection rates and different concentrations of the organic phase (from 5% to 95%).
본 발명은 리포좀의 소수성 성분을 에탄올에 용해시키고, 격렬한 교반하에 약 2-4ml/min의 속도로 수성 상에 주입하는 리포좀의 새로운 제조 방법으로 이루어진다. 에탄올:수성 상의 초기 부피 비율은 1/1이다. 에탄올 증발 또는 접선 유동 여과(tangential flow filtration) 후 리포좀 분산액을 원하는 최종 농도까지 1~10배 희석해야 한다.The present invention consists of a novel method for preparing liposomes in which a hydrophobic component of liposomes is dissolved in ethanol and injected into an aqueous phase at a rate of about 2-4 ml/min under vigorous stirring. The initial volume ratio of ethanol:aqueous phase is 1/1. After ethanol evaporation or tangential flow filtration, the liposome dispersion should be diluted 1 to 10 times to the desired final concentration.
본 발명의 일 실시예에서, 사전-농축 방법은 2개의 주요 단계를 포함한다:In one embodiment of the present invention, the pre-concentration method comprises two main steps:
·수성 상에 지질(에탄올)을 주입한 후(1:1 v/v), 희석하고;· After injection of lipids (ethanol) into the aqueous phase (1:1 v/v), dilute;
·캡슐화되지 않은 제제를 제거한다.· Remove unencapsulated preparations.
본 명세서의 일 실시예에서, 이 방법은 감소된 단계 수(단 2개)로 메토트렉세이트와 같은 다중하전 제제에 대한 높은 캡슐화 효율(예: ~40%)의 달성을 허용한다. 초기 사전-농축(낮은 수성 부피 사용)은 인지질 농도를 증가시키고, 결과적으로 더 높은 캡슐화 효율을 허용한다. 또한, 초기 1:1의 에탄올:수성 상 부피비를 사용하면 극성이 다른 두 상 사이의 균형을 유지하여 제제의 캡슐화를 증가시킬 수 있다.In one embodiment of the present disclosure, this method allows to achieve high encapsulation efficiencies (eg -40%) for multicharged agents such as methotrexate with a reduced number of steps (only two). Initial pre-concentration (using a lower aqueous volume) increases the phospholipid concentration and consequently allows for higher encapsulation efficiency. In addition, using an initial 1:1 ethanol:aqueous phase volume ratio can increase the encapsulation of the formulation by maintaining a balance between the two phases with different polarities.
본 명세서의 일 실시예에서, 본 발명은 하기 순차적 단계를 포함하는 리포좀에 활성 성분을 캡슐화하는 방법에 관한 것이다:In one embodiment of the present specification, the present invention relates to a method for encapsulating an active ingredient in liposomes comprising the following sequential steps:
- 인지질과 스테로이드(바람직하게는 콜레스테롤)의 소수성 분자를 에탄올과 혼합하여 에탄올 상을 제조하고; - preparing an ethanol phase by mixing phospholipids and hydrophobic molecules of a steroid (preferably cholesterol) with ethanol;
- 완충 용액에서 활성 성분 및 표적화제로 수성 상을 제조하고;- preparing an aqueous phase with active ingredient and targeting agent in buffer solution;
- 약 50℃ 내지 약 80℃의 온도에서 상기 수성 상에 상기 에탄올 상을 주입함으로써 리포좀을 수득하고, 여기서 에탄올/수성 상 부피비는 1:1 내지 3:2이고;- obtaining liposomes by injecting said ethanol phase into said aqueous phase at a temperature of from about 50 °C to about 80 °C, wherein the ethanol/aqueous phase volume ratio is from 1:1 to 3:2;
- 증발 또는 접선 흐름 여과에 의해 에탄올을 제거하고;- removal of ethanol by evaporation or tangential flow filtration;
- 적절한 방식으로, 즉 접선 유동 여과(tangential flow filtration)에 의해 남아있는 유리 활성 성분을 제거하는 단계;- removing the remaining free active ingredient in an appropriate manner, ie by tangential flow filtration;
여기서 표적화제는 리포좀 성분과 접합되거나 지질막에 혼입된 펩티드임.wherein the targeting agent is a peptide conjugated to a liposome component or incorporated into a lipid membrane.
본 명세서의 또 다른 실시예에서, 본 발명은 추가로 희석된 수성 상에서 리포좀 분산액을 1 내지 10배 희석하는 단계를 추가로 포함하는 방법에 관한 것이다.In another embodiment of the present specification, the present invention relates to a method further comprising the step of diluting the liposome dispersion by 1 to 10-fold in the further diluted aqueous phase.
본 명세서의 추가 실시예에서, 본 발명은 에탄올 상이 대략 2-4ml/분의 속도로 주입되는 방법에 관한 것이다.In a further embodiment herein, the present invention relates to a method in which the ethanol phase is injected at a rate of approximately 2-4 ml/min.
본 명세서의 추가 실시예에서, 본 발명은 주입 단계가 교반하에 수행되는 방법에 관한 것이다.In a further embodiment of the present specification, the present invention relates to a method in which the pouring step is carried out under stirring.
본 명세서의 추가 실시예에서, 본 발명은 활성 성분이 약물, 특히 항암제, 항류마티스제, 항-신경변성 질환 약물, 항산화제, 항-염증제, 약물 해열제, 항생제, 항바이러스제, 진통제 또는 이들의 조합인 방법에 관한 것이다. In a further embodiment of the present specification, the present invention provides that the active ingredient is a drug, in particular an anti-cancer agent, an anti-rheumatic agent, an anti-neurodegenous disease drug, an antioxidant, an anti-inflammatory agent, a drug antipyretic agent, an antibiotic, an antiviral agent, an analgesic agent, or a combination thereof. It's about how to be.
본 명세서의 또 다른 실시예에서, 본 발명은 표적화제가 하기 서열의 적어도 90%의 동일성 정도를 갖는 하기 목록으로부터 선택된 펩티드인 방법에 관한 것이다: SEQ-ID. NO 1, SEQ-ID. NO 2, SEQ-ID. NO 3, 또는 이들의 혼합물; SEQ- ID. NO 1, SEQ- ID. NO 2, SEQ- ID. NO 3, 또는 또는 이들의 혼합물과 적어도 95% 동일하거나, 바람직하게는 또는 적어도 96% 동일하거나, 또는 적어도 97% 동일하거나, 또는 적어도 98% 동일하거나, 또는 적어도 99% 동일한 서열을 포함한다.In another embodiment of the present specification, the present invention relates to a method wherein the targeting agent is a peptide selected from the following list having a degree of identity of at least 90% of the sequence: SEQ-ID. NO 1, SEQ-ID. NO 2, SEQ-ID. NO 3, or mixtures thereof; SEQ-ID. NO 1, SEQ-ID. NO 2, SEQ-ID. NO 3 , or a mixture thereof, comprises a sequence that is at least 95% identical, preferably or at least 96% identical, or at least 97% identical, or at least 98% identical, or at least 99% identical.
비교를 위한 서열의 정렬 방법은 당업계에 잘 알려져 있고, 이러한 방법에는 GAP, BESTFIT, BLAST, FASTA, 및 TFASTA가 포함된다. GAP는 Needleman 및 Wunsch((1970) J Mol Biol 48: 443-453)의 알고리즘을 사용하여 일치 수를 최대화하고 갭 수를 최소화하는 두 서열의 글로벌(총 서열에 대해) 정렬(global alignment)을 찾는다. BLAST 알고리즘(Altschul et al. (1990) J Mol Biol 215: 403-10)은 퍼센트 서열 동일성을 계산하고 두 서열 사이의 유사성에 대한 통계적 분석을 수행한다. BLAST 분석을 수행하기 위한 소프트웨어는 NCBI(National Center for Biotechnology Information)를 통해 공개적으로 제공된다. 유사성 및 동일성의 전체 백분율은 MatGAT 소프트웨어 패키지(Campanella et al., BMC Bioinformatics. 2003 Jul 10; 4:29. MatGAT: 단백질 또는 DNA 서열을 사용하여 유사성/동일성 매트릭스를 생성하는 응용 프로그램)에서 사용 가능한 방법 중 하나를 사용하여 결정할 수도 있다. 당업자에게 명백한 바와 같이, 보존된 모티프 간의 정렬을 최적화하기 위해 약간의 수동 편집이 수행될 수 있다. 본 대상에 백분율로 표시된 서열 동일성 값은 기본 매개변수와 함께 BLAST를 사용하여 전체 아미노산 서열에 대해 결정되었다.Methods for aligning sequences for comparison are well known in the art and include GAP, BESTFIT, BLAST, FASTA, and TFASTA. GAP uses the algorithm of Needleman and Wunsch ((1970) J Mol Biol 48: 443-453) to find a global (over total sequence) alignment of two sequences that maximizes the number of matches and minimizes the number of gaps. . The BLAST algorithm (Altschul et al. (1990) J Mol Biol 215: 403-10) calculates percent sequence identity and performs a statistical analysis of the similarity between two sequences. Software for performing BLAST analysis is publicly available through the National Center for Biotechnology Information (NCBI). The overall percentages of similarity and identity are methods available in the MatGAT software package (Campanella et al., BMC Bioinformatics. 2003 Jul 10; 4:29. MatGAT: applications that use protein or DNA sequences to generate similarity/identity matrices). You may decide to use one of them. As will be apparent to those skilled in the art, some manual editing may be performed to optimize alignment between preserved motifs. Sequence identity values expressed as percentages in this subject were determined over the entire amino acid sequence using BLAST with basic parameters.
본 명세서의 또 다른 실시예에서, 본 발명은 초기 수성 부피에 대한 에탄올 농도가 40% 내지 60%, 바람직하게는 50%인 방법에 관한 것이다.In another embodiment of the present specification, the present invention relates to a process wherein the ethanol concentration to the initial aqueous volume is between 40% and 60%, preferably 50%.
본 명세서의 또 다른 실시예에서, 본 발명은 온도가 60℃ 또는 70℃인 방법에 관한 것이다.In another embodiment of the present disclosure, the present invention relates to a method wherein the temperature is 60°C or 70°C.
본 명세서의 또 다른 실시예에서, 본 발명은 활성 성분이 약 4 내지 약 7의 pH에서 적어도 하나의 음전하, 특히 메토텍스트레이트 또는 독소루비신을 함유하는 다중하전 분자인 방법에 관한 것이다.In another embodiment of the present disclosure, the present invention relates to a method wherein the active ingredient is a multicharged molecule containing at least one negative charge, in particular methottexrate or doxorubicin, at a pH of about 4 to about 7.
본 명세서의 추가 실시예에서, 본 발명은 수성 상이 인산 완충 식염수, PBS인 방법에 관한 것이다.In a further embodiment herein, the present invention relates to a method wherein the aqueous phase is phosphate buffered saline, PBS.
본 명세서의 또 다른 실시예에서, 본 발명은 에탄올 상이 음이온성, 중성, 또는 양이온성 인지질을 포함하는 방법에 관한 것이다.In another embodiment of the present specification, the present invention relates to a method wherein the ethanol phase comprises anionic, neutral, or cationic phospholipids.
본 명세서의 추가 실시예에서, 본 발명은 에탄올 상이 포스파티딜콜린, 포스파티딜에탄올아민, 포스파티딜세린, 포스파티딜글리세롤 및/또는 그의 유도체 또는 그의 혼합물, 특히 1,2-디올레오일-sn-글리세로-3-포스포에탄올아민을 포함하는 방법에 관한 것이다.In a further embodiment of the present specification, the present invention relates to ethanol phase phosphatidylcholine, phosphatidylethanolamine, phosphatidylserine, phosphatidylglycerol and/or derivatives thereof or mixtures thereof, in particular 1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phospho It relates to a method comprising polyethanolamine.
본 명세서의 또 다른 실시예에서, 본 발명은 에탄올 상이 스테로이드, 스텔스제(stealth agent), 표적화제, 또는 이들의 혼합물을 포함하는 방법에 관한 것이다.In another embodiment of the present disclosure, the present invention is directed to a method wherein the ethanol phase comprises a steroid, a stealth agent, a targeting agent, or a mixture thereof.
본 명세서의 추가 실시예에서, 본 발명은 스테로이드가 콜레스테롤, 및/또는 그의 유도체, 특히 콜레스테릴 헤미숙시네이트인 방법에 관한 것이다.In a further embodiment of the present specification, the present invention relates to a method wherein the steroid is cholesterol, and/or a derivative thereof, in particular cholesteryl hemisuccinate.
본 명세서의 또 다른 실시예에서, 본 발명은 스텔스제가 폴리에틸렌 글리콜, PEG, 또는 강글리오시드인 방법에 관한 것이다.In another embodiment of the present disclosure, the present invention relates to a method wherein the stealth agent is polyethylene glycol, PEG, or ganglioside.
본 명세서의 추가 실시예에서, 본 발명은 폴리에틸렌 글리콜, PEG가 인지질, 특히 디스테아로일포스파티딜에탄올아민에 결합되는 방법에 관한 것이다.In a further embodiment of the present specification, the present invention relates to a method in which polyethylene glycol, PEG, is bound to a phospholipid, in particular distearoylphosphatidylethanolamine.
본 명세서의 또 다른 실시예에서, 본 발명은 표적화제가 지질막에 혼입되는 방법에 관한 것이다.In another embodiment herein, the present invention relates to a method in which a targeting agent is incorporated into a lipid membrane.
본 명세서의 또 다른 실시예에서, 본 발명은 활성 성분이 영상화제 또는 치료제인 방법에 관한 것이다.In another embodiment of the present specification, the present invention relates to a method wherein the active ingredient is an imaging agent or a therapeutic agent.
본 명세서의 추가 실시예에서, 본 발명은 영상화제 또는 치료제가 소수성 또는 친수성인 방법에 관한 것이다.In a further embodiment herein, the present invention relates to a method wherein the imaging agent or therapeutic agent is hydrophobic or hydrophilic.
본 명세서의 또 다른 추가 실시예에서, 본 명세서는 영상화제가 염료인 방법에 관한 것이다.In yet a further embodiment of the present specification, the present specification relates to a method wherein the imaging agent is a dye.
발명의 상세한 설명DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
본 명세서는 감소된 수의 생산 단계, 즉 종래의 리포좀 생산 공정의 압출 단계를 제외하여, 캡슐화된 제제의 높은 캡슐화 효율을 얻기 위한 리포좀의 생산 방법에 관한 것이다. 본 발명의 리포좀은 항암제, 항산화제, 항염증제, 해열제, 항생제, 항바이러스제, 항류마티스제, 진통제, 성장-인자, 또는 이들의 혼합물과 같은 치료제를 운반하도록 의도된다.The present specification relates to a method for producing liposomes to obtain a high encapsulation efficiency of an encapsulated formulation, excluding the reduced number of production steps, ie, the extrusion steps of conventional liposome production processes. The liposomes of the present invention are intended to deliver therapeutic agents such as anticancer agents, antioxidants, anti-inflammatory agents, antipyretics, antibiotics, antiviral agents, antirheumatic agents, analgesics, growth-factors, or mixtures thereof.
본 명세서의 방법은 나노입자를 생성하기 위한 추가 처리 단계 없이 이전 방법과 동일하거나 더 나은 표적화된 리포좀에서 소분자 캡슐화 효율을 달성하는 이점이 있다.The method herein has the advantage of achieving the same or better efficiency of small molecule encapsulation in targeted liposomes than previous methods without additional processing steps to generate nanoparticles.
캡슐화제를 증가시키기 위해, 감소된 생산 단계로, 생산 방법의 여러 단계에서 수많은 조건을 시험하였다. 시험 결과는 에탄올의 초기 백분율이 캡슐화 효율에 상당한 영향을 미친다는 것을 보여준다. 캡슐화 효율의 급격한 증가는 에탄올 부피가 기존의 5%(초기 수성 상에 비해 50%)보다 높았고 또한 더 적은 부피의 제제 수용액을 사용함에 따라 나타났다(샘플은 이후 에탄올 증발 또는 접선 유동 여과 후 일반적인 제제 농도를 얻기 위해 5배 희석된다). 소포의 크기는 이 비율이 달성된 후 에탄올 부피에 의해 긍정적인 영향을 받았다. 실제로, 더 높은 에탄올 부피(>50%)를 갖는 배치(batches)는 이전에 생성된 리포좀 배치보다 더 큰 소포(< 150nm)를 나타냈다. 이러한 결과는, 인지질의 느린 자기-조립(self-assembly)으로 인해 더 큰 크기의 리포좀 형성으로 이어지는, 수성 상의 부피 증가와 관련된 에탄올의 더 느린 확산에 기인할 수 있다. 따라서, 친수제가 주로 리포좀 수성 코어에 캡슐화되어 있기 때문에, 소포의 크기가 작을수록, 수성 코어 부피가 작아지고 얻어지는 캡슐화 효율이 낮아진다[10, 11]. 그러나, 캡슐화 효율과 크기 사이의 절충물은 초기 에탄올 부피의 50%를 사용하여 얻어졌다. 이 비율의 에탄올로 얻은 리포좀은 작은 크기(<150 nm) 및 PDI 값(<0.1)을 나타낸다. 또한, 이러한 조건에서는, 일반적으로 압출 공정을 줄여야 하고, 균일한 소포의 크기는 완벽하게 필요하지는 않다.In order to increase the encapsulant, a number of conditions were tested at different stages of the production process, with reduced production steps. The test results show that the initial percentage of ethanol has a significant effect on the encapsulation efficiency. A sharp increase in encapsulation efficiency was observed with the ethanol volume higher than 5% conventional (50% compared to the initial aqueous phase) and also with the use of a lower volume of aqueous formulation solution (the sample was then sampled at typical formulation concentration after ethanol evaporation or tangential flow filtration). 5 times diluted to obtain The size of the vesicles was positively affected by the ethanol volume after this ratio was achieved. Indeed, batches with higher ethanol volume (>50%) showed larger vesicles (<150 nm) than previously generated liposome batches. This result could be attributed to the slower diffusion of ethanol associated with the volume increase of the aqueous phase, leading to the formation of larger sized liposomes due to the slow self-assembly of phospholipids. Therefore, since the hydrophilic agent is mainly encapsulated in the liposome aqueous core, the smaller the vesicle size, the smaller the aqueous core volume and the lower the resulting encapsulation efficiency [10, 11]. However, a compromise between encapsulation efficiency and size was obtained using 50% of the initial ethanol volume. Liposomes obtained with this proportion of ethanol exhibited small size (<150 nm) and PDI values (<0.1). Also, under these conditions, the extrusion process should generally be reduced, and a uniform vesicle size is not perfectly necessary.
리포좀 생산Liposome production
본 명세서의 일 실시예에서, DOPE/콜레스테롤/DSPE-MPEG(54:36:10, 몰비)로 구성된 리포좀은 에탄올 주입 방법을 사용하여 제조하였다. 간단히 말해서, 지질(DOPE, 콜레스테롤, 및 DSPE-MPEG)은 60℃에서 에탄올(종래의 에탄올 주입 방법에서 5%; 새로 제시된 사전-농축 방법에서 50%, 초기 20% 수성 상에 비해)에 용해되었다.In one embodiment of the present specification, a liposome composed of DOPE/cholesterol/DSPE-MPEG (54:36:10, molar ratio) was prepared using an ethanol injection method. Briefly, lipids (DOPE, cholesterol, and DSPE-MPEG) were dissolved in ethanol (5% in the conventional ethanol injection method; 50% in the newly presented pre-concentration method, compared to the initial 20% aqueous phase) at 60 °C. .
상기 용액을 교반하면서 수용액(인산 완충 식염수, PBS)에 주입하였다. 이 과정은 70℃에서 수행되고, 모든 에탄올 부피를 증발시키는 데 필요한 시간 동안 유지된다.The solution was injected into an aqueous solution (phosphate buffered saline, PBS) while stirring. This process is carried out at 70° C. and held for the time required to evaporate all the ethanol volume.
종래의 에탄올 주입 방법에서 리포좀은 크기를 줄이기 위해 압출된다. 사전-농축 방법에서는, 에탄올 증발 또는 접선 유동 여과 후, 리포좀 분산액을 PBS에 5배 희석한다(부피의 나머지 80%가 추가됨). 리포좀에 혼입되지 않은 유리 치료제 또는 영상화제는 5kDa 컷-오프가 있는 겔 여과 크로마토그래피 컬럼(GE Healthcare)(8.3mL의 Sephadex G-25 배지를 함유하는 PD-10 탈염 컬럼)을 통과한 후 샘플에서 제거되었다. 친수성 치료제 또는 영상화제(예: 메토트렉세이트 및 독소루비신)는 기존 에탄올 주입 방법 및 새로 제시된 사전-농축 방법에서 이 수성 상에 존재한다. 원격/능동 로딩에서, 황산 암모늄(120mM, pH=8.5)에서 생산한 후, 완충액을 Trizma®Base sucrose(10%, w/v, pH 9.0에서 완충됨)로 변경하고 빈 리포좀을 치료제 또는 영상화제와 함께 인큐베이션 한다. In conventional ethanol injection methods, liposomes are extruded to reduce their size. In the pre-concentration method, after ethanol evaporation or tangential flow filtration, the liposome dispersion is diluted 5-fold in PBS (the remaining 80% of the volume is added). Free therapeutics or imaging agents not incorporated into the liposomes were passed through a gel filtration chromatography column (GE Healthcare) with a 5 kDa cut-off (PD-10 desalting column containing 8.3 mL of Sephadex G-25 medium) from the sample. was removed Hydrophilic therapeutics or imaging agents (eg methotrexate and doxorubicin) are present in this aqueous phase in both the existing ethanol injection method and the newly presented pre-concentration method. In remote/active loading, after production in ammonium sulfate (120 mM, pH=8.5), the buffer is changed to Trizma ® Base sucrose (10%, w/v, buffered at pH 9.0) and empty liposomes are replaced with therapeutic or imaging agents. incubate with
메토트렉세이트를 캡슐화하는 리포좀의 특성화: 여러 생산 방법 간의 비교 연구.Characterization of liposomes encapsulating methotrexate: a comparative study between different production methods.
(메클로레타민 염산염)Mustargen (Mechlorethamine Hydrochloride)
(Mechlorethamine Hydrochloride)
플루오로우라실--국소)Carac (Fluorouracil--Topical) (
fluorouracil--topical)
베네토클락스))Venclexta (Venetoclax)
Venetoclax))
(에나시데닙 메실레이트))Idhifa (Enasidenib Mesylate)
(enasidenib mesylate))
표 IV 염료의 A 내지 Z 목록 Table IV List of Dyes A to Z
본 명세서에서, 범위가 제공되는 경우, 종점(endpoints)이 포함된다. 또한, 문맥 및/또는 당업자의 이해로부터 달리 나타내거나 달리 명백하지 않는 한, 범위로서 표현되는 값은, 문맥상 명백하게 달리 지시하지 않는 한, 범위의 하한 단위의 10분의 1까지, 본 발명의 다른 실시예에서 언급된 범위 내에서 임의의 특정 값을 취할 수 있음을 이해해야 한다. 문맥 및/또는 당업자의 이해로부터 달리 나타내거나 달리 명백하지 않는 한, 범위로 표현된 값은 주어진 범위 내의 임의의 하위 범위를 취할 수 있으며, 여기서 하위 범위의 종점은 범위의 하한 단위의 10분의 1과 같은 정확도로 표현된다.In this specification, where ranges are provided, endpoints are included. Further, unless otherwise indicated or otherwise apparent from context and/or understanding of one of ordinary skill in the art, values expressed as ranges, unless the context clearly dictates otherwise, include up to tenths of the unit of the lower limit of the range. It should be understood that the embodiments may take any specific value within the recited ranges. Unless otherwise indicated or otherwise apparent from the context and/or understanding of one of ordinary skill in the art, a value expressed in a range may take any sub-range within a given range, wherein the endpoint of the sub-range is one tenth of the unit of the lower limit of the range. expressed with the same accuracy as
본 명세서에서 사용될 때마다 "포함하는(comprising)"이라는 용어는 언급된 특징, 정수, 단계, 구성요소의 존재를 나타내기 위한 것이지만, 하나 이상의 다른 특징, 정수, 단계, 구성요소 또는 이들의 그룹의 존재 또는 추가를 배제하는 것은 아니다.The term "comprising" whenever used herein is intended to indicate the presence of a stated feature, integer, step, element, but of one or more other features, integers, steps, elements, or groups thereof. It does not exclude the presence or addition.
물론 본 명세서는 설명된 실시예에 어떤 식으로든 제한되지 않고, 당업자는 첨부된 청구범위에 정의된 바와 같은 명세서의 기본 사상을 벗어남이 없이 그의 변형에 대한 많은 가능성을 예상할 것이다.Of course, this specification is not in any way limited to the described embodiments, and those skilled in the art will anticipate many possibilities for modifications thereof without departing from the basic spirit of the specification as defined in the appended claims.
상술한 실시예는 명백히 결합 가능하다.The above-described embodiments are obviously combinable.
하기의 종속항은 본 발명의 특정 실시예를 설명한다.The following dependent claims set forth specific embodiments of the invention.
서열 목록sequence list
SEQ- ID. NO.1: Folic acid-DRDDQAAWFSQYSEQ-ID. NO.1: Folic acid-DRDDQAAWFSQY
SEQ- ID. NO 2: KDEPQRRSARLSAKPAPPKPEPKPKKAPAKK-DRDDQAAWFSQYSEQ-ID. NO 2: KDEPQRRRSARLSAKPAPPKPEPKPKKAPAKK-DRDDQAAWFSQY
SEQ- ID. NO 3: YQSFWAAQDDRD-KDEPQRRSARLSAKPAPPKPEPKPKKAPAKKSEQ-ID. NO 3: YQSFWAAQDDRD-KDEPQRRRSARLSAKPAPPKPEPKPKKAPAKK
참조문헌References
[1] Wang, A. Z., Langer, R., and Farokhzad, O. C., Nanoparticle Delivery of Cancer Drugs, Annual Review of Medicine. 2012, 63, 185-198.[One] Wang, A. Z., Langer, R., and Farokhzad, O. C., Nanoparticle Delivery of Cancer Drugs, Annual Review of Medicine. 2012, 63, 185-198.
[2] Hong, M.-S., Lim, S.-J., Lee, M.-K., Kim, Y. B., and Kim, C.-K., Prolonged Blood Circulation of Methotrexate by Modulation of Liposomal Composition, Drug Delivery. 2001, 8, 231-237.[2] Hong, M.-S., Lim, S.-J., Lee, M.-K., Kim, YB, and Kim, C.-K., Prolonged Blood Circulation of Methotrexate by Modulation of Liposomal Composition, Drug Delivery . 2001, 8, 231-237.
[3] Laouini, A., Jaafar-Maalej, C., Limayem-Blouza, I., Sfar, S., Charcosset, C., and Fessi, H., Preparation, Characterization and Applications of Liposomes: State of the Art, Journal of Colloid Science and Biotechnology. 2012, 1, 147-168.[3] Laouini, A., Jaafar-Maalej, C., Limayem-Blouza, I., Sfar, S., Charcosset, C., and Fessi, H., Preparation, Characterization and Applications of Liposomes: State of the Art, Journal of Colloid Science and Biotechnology. 2012, 1, 147-168.
[4] Bangham, A. D., Standish, M. M., and Watkins, J. C., Diffusion of univalent ions across the lamellae of swollen phospholipids, Journal of Molecular Biology. 1965, 13, 238-IN27.[4] Bangham, A. D., Standish, M. M., and Watkins, J. C., Diffusion of univalent ions across the lamellae of swollen phospholipids, Journal of Molecular Biology. 1965, 13, 238-IN27.
[5] Batzri, S. and Korn, E. D., Single bilayer liposomes prepared without sonication, Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranes. 1973, 298, 1015-1019.[5] Batzri, S. and Korn, E. D., Single bilayer liposomes prepared without sonication, Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranes. 1973, 298, 1015-1019.
[6] Naeff, R., Feasibility of topical liposome drugs produced on an industrial scale, Advanced Drug Delivery Reviews. 1996, 18, 343-347.[6] Naeff, R., Feasibility of topical liposome drugs produced on an industrial scale, Advanced Drug Delivery Reviews. 1996, 18, 343-347.
[7] Sur, S., Fries, A. C., Kinzler, K. W., Zhou, S., and Vogelstein, B., Remote loading of preencapsulated drugs into stealth liposomes, Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2014, 111, 2283-2288.[7] Sur, S., Fries, A. C., Kinzler, K. W., Zhou, S., and Vogelstein, B., Remote loading of preencapsulated drugs into stealth liposomes, Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2014, 111, 2283-2288.
[8] Gubernator, J., Active methods of drug loading into liposomes: Recent strategies for stable drug entrapment and increased in vivo activity. Vol. 8. 2011. 565-80.[8] Gubernator, J., Active methods of drug loading into liposomes: Recent strategies for stable drug entrapment and increased in vivo activity. Vol. 8. 2011. 565-80.
[9] Duong, A. D., Collier, M. A., Bachelder, E. M., Wyslouzil, B. E., and Ainslie, K. M., One Step Encapsulation of Small Molecule Drugs in Liposomes via Electrospray-Remote Loading, Mol Pharm. 2016, 13, 92-9.[9] Duong, A. D., Collier, M. A., Bachelder, E. M., Wyslouzil, B. E., and Ainslie, K. M., One Step Encapsulation of Small Molecule Drugs in Liposomes via Electrospray-Remote Loading, Mol Pharm. 2016, 13, 92-9.
[10] Jaafar-Maalej, C., Diab, R., Andrieu, V., Elaissari, A., and Fessi, H., Ethanol injection method for hydrophilic and lipophilic drug-loaded liposome preparation, J Liposome Res. 2010, 20, 228-43.[10] Jaafar-Maalej, C., Diab, R., Andrieu, V., Elaissari, A., and Fessi, H., Ethanol injection method for hydrophilic and lipophilic drug-loaded liposome preparation, J Liposome Res. 2010, 20, 228-43.
[11] Pons, M., Foradada, M., and Estelrich, J., Liposomes obtained by the ethanol injection method, International Journal of Pharmaceutics. 1993, 95, 51-56.[11] Pons, M., Foradada, M., and Estelrich, J., Liposomes obtained by the ethanol injection method, International Journal of Pharmaceutics. 1993, 95, 51-56.
SEQUENCE LISTING <110> UNIVERSIDADE DO MINHO <120> METHOD FOR PRODUCTION OF LIPOSOMES <130> P687.3 WO <150> PT115500 <151> 2019-05-07 <160> 3 <170> BiSSAP 1.3.6 <210> 1 <211> 12 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Folic Acid with SEQ ID 1 <400> 1 Asp Arg Asp Asp Gln Ala Ala Trp Phe Ser Gln Tyr 1 5 10 <210> 2 <211> 43 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Sequence 2 <400> 2 Lys Asp Glu Pro Gln Arg Arg Ser Ala Arg Leu Ser Ala Lys Pro Ala 1 5 10 15 Pro Pro Lys Pro Glu Pro Lys Pro Lys Lys Ala Pro Ala Lys Lys Asp 20 25 30 Arg Asp Asp Gln Ala Ala Trp Phe Ser Gln Tyr 35 40 <210> 3 <211> 43 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Sequence 3 <400> 3 Tyr Gln Ser Phe Trp Ala Ala Gln Asp Asp Arg Asp Lys Asp Glu Pro 1 5 10 15 Gln Arg Arg Ser Ala Arg Leu Ser Ala Lys Pro Ala Pro Pro Lys Pro 20 25 30 Glu Pro Lys Pro Lys Lys Ala Pro Ala Lys Lys 35 40 SEQUENCE LISTING <110> UNIVERSIDADE DO MINHO <120> METHOD FOR PRODUCTION OF LIPOSOMES <130> P687.3 WO <150> PT115500 <151> 2019-05-07 <160> 3 <170> BiSSAP 1.3.6 <210> 1 <211> 12 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Folic Acid with SEQ ID 1 <400> 1 Asp Arg Asp Asp Gln Ala Ala Trp Phe Ser Gln Tyr 1 5 10 <210> 2 <211> 43 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Sequence 2 <400> 2 Lys Asp Glu Pro Gln Arg Arg Ser Ala Arg Leu Ser Ala Lys Pro Ala 1 5 10 15 Pro Pro Lys Pro Glu Pro Lys Pro Lys Lys Ala Pro Ala Lys Lys Asp 20 25 30 Arg Asp Asp Gln Ala Ala Trp Phe Ser Gln Tyr 35 40 <210> 3 <211> 43 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Sequence 3 <400> 3 Tyr Gln Ser Phe Trp Ala Ala Gln Asp Asp Arg Asp Lys Asp Glu Pro 1 5 10 15 Gln Arg Arg Ser Ala Arg Leu Ser Ala Lys Pro Ala Pro Pro Lys Pro 20 25 30 Glu Pro Lys Pro Lys Lys Ala Pro Ala Lys Lys 35 40
Claims (23)
완충 용액에서 활성 성분 및 표적화제로 수성 상(aqueous phase)을 제조하고;
약 50℃ 내지 약 80℃의 온도에서, 상기 수성 상에 상기 에탄올 상을 주입함으로써 리포좀을 얻고(여기서, 에탄올/수성 상 부피비는 1:1 내지 3:2임);
에탄올을 제거하고; 그리고
적절한 방식으로, 즉 접선 유동 여과(tangencial flow filtration)에 의해 남아있는 유리 활성 성분을 제거하는;
순차 단계를 포함하는 리포좀에 활성 성분을 캡슐화하는 방법으로서,
상기 표적화제는 리포좀 성분과 접합되거나 지질막에 혼입된 펩티드인 것을 특징으로 하는 방법.
preparing an ethanolic phase by mixing phospholipids and hydrophobic molecules of a steroid with ethanol;
preparing an aqueous phase with the active ingredient and the targeting agent in a buffer solution;
obtaining liposomes by injecting the ethanol phase into the aqueous phase at a temperature of about 50° C. to about 80° C., wherein the ethanol/aqueous phase volume ratio is 1:1 to 3:2;
remove ethanol; and
removing the remaining free active ingredient in an appropriate manner, ie by tangential flow filtration;
A method for encapsulating an active ingredient in liposomes comprising sequential steps, comprising:
The method of claim 1, wherein the targeting agent is a peptide conjugated to a liposome component or incorporated into a lipid membrane.
The method of claim 1 , wherein the ethanol removal is by evaporation or tangential flow filtration.
3. The method according to claim 1 or 2, wherein the steroid is cholesterol.
4. The method according to any one of claims 1 to 3, wherein the cholesterol is cholesteryl hemisuccinate.
5. The method according to any one of claims 1 to 4, further comprising diluting the liposome dispersion 1 to 10 fold in the further diluted aqueous phase.
6 . The method of claim 1 , wherein the ethanol phase is injected at a rate of approximately 2-4 ml/min.
Process according to any one of the preceding claims, characterized in that the ethanol concentration to the initial aqueous volume is between 40% and 60%, preferably 50%.
Method according to any one of the preceding claims, characterized in that the temperature is 60°C or 70°C.
9. The method of any one of claims 1 to 8, wherein the free active ingredient is a multicharged molecule containing at least one negative charge at a pH of about 4 to about 7.
10. The drug according to any one of claims 1 to 9, wherein the free active ingredient is a drug, in particular an anticancer agent, an antirheumatic agent, an anti-neurodegenous disease drug, an antioxidant drug, an anti-inflammatory agent, an antipyretic agent, an antibiotic drug, an antiviral agent. A method, characterized in that it is a drug, an analgesic, or a combination thereof.
11. The method according to any one of the preceding claims, characterized in that the injecting step is carried out under agitation.
12. The method of any one of claims 1-11, wherein the targeting agent is SEQ- ID. NO 1, SEQ-ID. NO 2 , SEQ- ID. at least one peptide selected from the list having a degree of identity of at least 90% of the sequences of NO 3 , or mixtures thereof.
13. The method according to any one of claims 1 to 12, wherein the aqueous phase is phosphate buffered saline (PBS).
14. The method of any one of claims 1-13, wherein the ethanol phase comprises anionic, neutral, or cationic phospholipids.
15. The method according to any one of claims 1 to 14, wherein the phospholipids in the ethanol phase are phosphatidylcholine, phosphatidylethanolamine, phosphatidylserine, phosphatidylglycerol, and/or derivatives thereof or mixtures thereof, in particular 1,2-dioleoyl -sn-glycero-3-phosphoethanolamine.
16. The method of any one of claims 1-15, wherein the ethanol phase further comprises a stealth agent, a targeting agent, or a mixture thereof.
17. The method according to any one of claims 1 to 16, wherein the stealth agent is polyethylene glycol, PEG, or ganglioside.
18. The method according to any one of the preceding claims, characterized in that the polyethylene glycol (PEG) is bound to a phospholipid, in particular to distearoylphosphatidylethanolamine.
19. The method of any one of claims 1-18, wherein the targeting agent is incorporated into the lipid membrane.
20. A method according to any one of the preceding claims, characterized in that the free active ingredient is an imaging agent or a therapeutic agent.
21. The method of any one of claims 1-20, wherein the imaging or therapeutic agent is hydrophobic or hydrophilic.
22. The method according to any one of the preceding claims, wherein the imaging agent is a dye.
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
PT115500 | 2019-05-07 | ||
PT11550019 | 2019-05-07 | ||
PCT/IB2020/054346 WO2020225769A1 (en) | 2019-05-07 | 2020-05-07 | Method for production of liposomes |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
KR20220005446A true KR20220005446A (en) | 2022-01-13 |
Family
ID=71083668
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
KR1020217032697A KR20220005446A (en) | 2019-05-07 | 2020-05-07 | Liposome production method |
Country Status (8)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US20220241203A1 (en) |
EP (1) | EP3965738A1 (en) |
JP (1) | JP2022531610A (en) |
KR (1) | KR20220005446A (en) |
CN (1) | CN113825497A (en) |
AU (1) | AU2020269626A1 (en) |
CA (1) | CA3137789A1 (en) |
WO (1) | WO2020225769A1 (en) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP4247339A1 (en) * | 2020-12-01 | 2023-09-27 | Ege Universitesi | Targeted drug delivery system with curcumin supplement in the treatment of glioblastoma |
WO2023056089A1 (en) * | 2021-10-03 | 2023-04-06 | Eisai R&D Management Co., Ltd. | Immunological adjuvant formulations comprising tlr4 agonist e6020 |
US11926579B1 (en) | 2023-10-31 | 2024-03-12 | King Faisal University | 8-(4-methoxybenzylideneamino)naphthalene-1,3-disulfonic acid as an antioxidant compound |
Family Cites Families (11)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4752425A (en) | 1986-09-18 | 1988-06-21 | Liposome Technology, Inc. | High-encapsulation liposome processing method |
IL91664A (en) | 1988-09-28 | 1993-05-13 | Yissum Res Dev Co | Ammonium transmembrane gradient system for efficient loading of liposomes with amphipathic drugs and their controlled release |
US5549910A (en) | 1989-03-31 | 1996-08-27 | The Regents Of The University Of California | Preparation of liposome and lipid complex compositions |
EP0825852B1 (en) | 1995-04-18 | 2004-07-07 | Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem | Liposome drug-loading method and composition |
EP1196145A1 (en) | 1999-07-15 | 2002-04-17 | Inex Pharmaceuticals Corp. | Methods and apparatus for preparation of lipid vesicles |
CN101744767B (en) * | 2008-12-05 | 2013-02-13 | 中国人民解放军军事医学科学院毒物药物研究所 | Thermal sensitive liposome preparation containing camptothecin antineoplastic agents |
AU2011353698B2 (en) | 2011-01-05 | 2017-05-11 | Livon Laboratories | Methods of making liposomes, liposome compositions made by the methods, and methods of using the same |
DK2773326T3 (en) | 2011-11-04 | 2019-04-15 | Nitto Denko Corp | PROCEDURE FOR STERILE PREPARATION OF LIPID NUCLEIC ACID PARTICLES |
PT2789348T (en) | 2011-12-07 | 2021-11-11 | Univ Do Minho | Liposomes and corresponding production method |
AP2017009766A0 (en) * | 2014-08-14 | 2017-02-28 | L E A F Holdings Group Llc | Liposome encapsulated affinity drug |
US20200315967A1 (en) * | 2016-06-24 | 2020-10-08 | Modernatx, Inc. | Lipid nanoparticles |
-
2020
- 2020-05-07 KR KR1020217032697A patent/KR20220005446A/en unknown
- 2020-05-07 US US17/607,714 patent/US20220241203A1/en active Pending
- 2020-05-07 AU AU2020269626A patent/AU2020269626A1/en active Pending
- 2020-05-07 CN CN202080033425.6A patent/CN113825497A/en active Pending
- 2020-05-07 CA CA3137789A patent/CA3137789A1/en active Pending
- 2020-05-07 EP EP20732313.0A patent/EP3965738A1/en active Pending
- 2020-05-07 JP JP2021566082A patent/JP2022531610A/en active Pending
- 2020-05-07 WO PCT/IB2020/054346 patent/WO2020225769A1/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO2020225769A1 (en) | 2020-11-12 |
AU2020269626A1 (en) | 2021-10-28 |
CA3137789A1 (en) | 2020-11-12 |
CN113825497A (en) | 2021-12-21 |
US20220241203A1 (en) | 2022-08-04 |
JP2022531610A (en) | 2022-07-07 |
EP3965738A1 (en) | 2022-03-16 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
KR20220005446A (en) | Liposome production method | |
US10363226B2 (en) | Platelet membrane-coated drug delivery system | |
CN103906503B (en) | For aseptic prepare lipid-nucleic acid particle be intended for single use system | |
CN112533626A (en) | Silk-based product formulations and methods of use | |
CN107920964A (en) | Merge the coated porous silicon nanoparticles of liposome | |
JP2014532071A5 (en) | ||
US20200375912A1 (en) | Liposomal coated nanoparticles for immunotherapy applications | |
JP2014532071A (en) | Lipid bilayer (protocell) supported on porous nanoparticles for targeted delivery including transdermal delivery of cargo and method thereof | |
EP3512554B1 (en) | Platelet compositions and methods for the delivery of therapeutic agents | |
JP2018203750A (en) | Cochleates made with soy phosphatidylserine | |
US20200405650A1 (en) | Starry mesoporous silica nanoparticles and supported lipid bi-layer nanoparticles | |
JP2016504312A5 (en) | ||
C Silva et al. | Delivery systems for biopharmaceuticals. Part II: liposomes, micelles, microemulsions and dendrimers | |
CN110114072A (en) | Polymer nano granules | |
JP5698296B2 (en) | Biocompatible alginate microparticle composition for controlled release of active ingredients by intravenous administration | |
WO2013140643A1 (en) | Carrier for intracellular delivery of functional protein | |
CN107760661A (en) | PEG trims of medicinal kininogenase and its preparation method and application | |
Rani et al. | Surface-engineered liposomes for dual-drug delivery targeting strategy against methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) | |
Li et al. | Multifunctional cell membranes-based nano-carriers for targeted therapies: a review of recent trends and future perspective | |
US9526791B2 (en) | Weakly acidic pH-responsive peptide and liposome containing same | |
JP2005529086A (en) | A spiral made of purified soy phosphatidylserine | |
US11096893B2 (en) | Glucose sensitive compositions for drug delivery | |
Dutta et al. | Biomedical and food applications of biopolymer-based liposome | |
US20210369860A1 (en) | Functionalized nanoparticle formulations for oral drug delivery | |
CN107753953A (en) | The preparation of Pegylation kininogenase and its application |