KR20210068195A - Purification method of lactonic sophorolipid - Google Patents

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Abstract

The present invention relates to a method for purifying lactone-type sophorolipids, and more particularly, to a method for purifying lactone-type sophorolipids with high purity by recovering oxidized and lactone-type sophorolipid precipitates produced by culturing a yeast of the genus Candida having a sophorolipid-producing ability, and performing ultrafiltration using the principle of formation of a micelle structure among the surfactant properties of sophorolipids.

Description

락톤형 소포로리피드의 정제방법{Purification method of lactonic sophorolipid}Purification method of lactonic sophorolipid

본 발명은 락톤형 소포로리피드의 정제 방법에 관한 것으로, 더욱 상세하게는 소포로리피드 생산능을 갖는 캔디다 속 효모균을 배양하여 생산되는 산화형 및 락톤형 소포로리피드 침전액을 회수하고, 이로부터 소포로리피드의 계면활성제 특성 중 미셀 구조 형성 원리를 이용하여 한외 여과를 통해 락톤형 소포로리피드를 고순도로 정제하는 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a method for purifying a lactone-type sophorolipid, and more particularly, recovering the oxidized and lactone-type sophorolipid precipitates produced by culturing a yeast of the genus Candida having a sophorolipid-producing ability, and therefrom It relates to a method of purifying lactone-type sophorolipids with high purity through ultrafiltration using the principle of forming a micelle structure among the surfactant properties of sophorolipids.

계면활성제는 친수성기와 소수성기를 가지고 있는 화합물로, 2가지 이상의 물질이 형성하고 있는 계면에 흡착되어 계면 장력을 저하시키는 기능을 가지고 있다. 이와 같은 계면활성제는 수용액 상태에서 이온을 띄는 이온성 계면활성제와 이온화가 되지 않는 비이온성 계면활성제로 크게 분류할 수 있으며, 또 다른 분류 기준으로는 화학적 합성에 의해 생산되는 화학 계면활성제와 박테리아, 효모 및 곰팡이 등의 미생물에 의해 생산되는 생물 계면활성제 등이 있다. 그 중 생물 계면활성제는 인체에 대해 낮은 독성을 보이고, 단순한 구조 및 구성 물질을 가져 생분해가 쉽게 이루어진다. A surfactant is a compound having a hydrophilic group and a hydrophobic group, and has a function of reducing the interfacial tension by adsorbing to the interface formed by two or more substances. Such surfactants can be broadly classified into ionic surfactants that exhibit ions in aqueous solution and nonionic surfactants that do not ionize, and as another classification criterion, chemical surfactants produced by chemical synthesis, bacteria, and yeast and biosurfactants produced by microorganisms such as fungi. Among them, biosurfactants show low toxicity to the human body and are easily biodegradable due to their simple structure and constituent materials.

또한, 계면활성제는 수용액 상태에서 특정 농도 이상이 되면 계면 장력이 더 이상 감소되지 않고 유지됨과 동시에 미셀을 형성하는 특성을 보인다. 이때의 미셀을 형성하는 농도를 임계 미셀 농도(CMC, Critical Micelle Concentration)이라고 하며, 생물 계면활성제는 화학적 합성에 의해 만들어진 계면활성제와 비교해 CMC 가 낮아 화학 계면활성제에 비해 나은 세정력 등을 나타내 화학 계면활성제의 대체품으로 많은 연구가 진행되고 있다. In addition, when the surfactant exceeds a certain concentration in the aqueous solution state, the interfacial tension is not reduced any more and is maintained while simultaneously forming micelles. The concentration that forms micelles at this time is called Critical Micelle Concentration (CMC), and biological surfactants have a lower CMC compared to surfactants made by chemical synthesis, so they show better cleaning power than chemical surfactants. A lot of research is being done as an alternative to

생물 계면활성제는 박테리아, 효모 및 곰팡이 등의 미생물의 생합성 대사경로를 통해 생산되는 모든 종류의 계면활성제를 의미하며, 구조에 따라 당지질 (Glycolipid), 리포펩타이드(Lipopeptide) 및 리포단백질(Lipoprotein), 중성지방 (Neutral lipid) 및 인지질(Phospholipid), 고분자 계면활성제(Polymeric surfactant) 그리고 입자 계면활성제(Particulate surfactant) 등으로 분류된다.Biosurfactants refer to all kinds of surfactants produced through the biosynthetic metabolic pathway of microorganisms such as bacteria, yeast and mold, and depending on the structure, glycolipid, lipopeptide and lipoprotein, neutral It is classified into Neutral lipid and Phospholipid, Polymeric surfactant and Particulate surfactant.

소포로리피드는 당지질 구조의 계면활성제로, 포도당 두 분자가 β-1,2 결합한 소포로스(Sophorose)와 주로 팔미트산(C16) 및 스테아르산(C18)의 불포화 형태 지방산 한 분자에 존재하는 수산기와 결합한 단순한 구조로 이루어져 있으며, 세정력이 높고, 세균 및 진균에 대한 높은 항균력을 보여, 화장품, 식품 등의 다양한 분야에서 이용되고 있다. 효모균으로부터 생산되는 소포로리피드의 구조는 크게 Closed 유형의 락톤형 소포로리피드(Lactonic sophorolipid)와 Open 유형의 산화형 소포로리피드(Acidic sophorolipid) 2가지 유형으로 나눌 수 있으며, 구조에 따른 항균력과 물성이 달리 나타난다. 현재 연구된 바로는 캔디다 속 균주인 캔디다 봄비콜라(Candida bombicola) 균주가 높은 생산성을 나타내 해당 균주에 대해 연구가 많이 이뤄지고 있고, 생산 연구에 사용되고 있다.Sophorolipid is a surfactant with a glycolipid structure. Sophorose, in which two glucose molecules are β-1,2 bonded, and hydroxyl groups present in one molecule of unsaturated fatty acids, mainly palmitic acid (C16) and stearic acid (C18). It has a simple structure combined with , and has high cleaning power and high antibacterial activity against bacteria and fungi, so it is used in various fields such as cosmetics and food. The structure of the sophorolipid produced from yeast is largely divided into two types: a closed type of lactonic sophorolipid and an open type of acidic sophorolipid. This appears differently. The current study is that Candida bombicola, a strain of the genus Candida, is bombicola ) strain exhibits high productivity, and many studies are being conducted on the strain, and it is being used for production research.

Figure pat00001
Figure pat00001

산화형 소포로리피드 락톤형 소포로리피드 Oxidized Sophorolipid Lactone Sophorolipid

[화학식 1] [화학식 2] [Formula 1] [Formula 2]

효모균인 캔디다 봄비콜라는 유가식 배양(Fed-batch culture)을 통해 최대 300 g/L의 소포로리피드 생산 농도를 보이는 것으로 알려졌으며, 일반적으로 캔디다 봄비콜라의 배양을 통해 생산되는 소포로리피드의 경우, 산화형과 락톤형이 각각 40%, 60%의 비율로 구성된다. 락톤형 소포로리피드는 산화형 소포로리피드에 비해 낮은 CMC를 나타냈으며, 세정력이 더 우수하다. 산화형 소포로리피드가 세균에 대한 항균력을 거의 보이지 않는 반면, 락톤형 소포로리피드는 여드름 균인 Propionibacterium acnes 등의 균에 대한 항균력을 보인다. 산화형은 락톤형에 비해 HLB(Hydrophilic Lipophilic Balance) 값이 높은데, 이는 산화형이 물에 대한 용해도가 높은 것을 나타내며, 친수성 계면활성제로서 가용화제로 작용할 수 있음을 의미한다.The yeast, Candida bombicola, is known to show a sophorolipid production concentration of up to 300 g/L through fed-batch culture, and in general, in the case of sophorolipid produced by culturing Candida bombicola, , the oxidized type and the lactone type are composed of 40% and 60%, respectively. The lactone-type sophorolipid exhibited a lower CMC than the oxidized sophorolipid, and had better cleaning power. Oxidized sophorolipids show little antibacterial activity against bacteria, while lactone-type sophorolipids show antibacterial activity against acne bacteria such as Propionibacterium acnes. The oxidized type has a higher HLB (Hydrophilic Lipophilic Balance) value than the lactone type, which means that the oxidized type has high solubility in water and can act as a solubilizer as a hydrophilic surfactant.

소포로리피드를 비롯한 당지질 구조의 계면활성제의 분리 및 정제 방법에는 유기 용매를 이용한 정제, 컬럼을 이용한 정제 등이 있으며, 이는 락톤형 및 산화형 소포로리피드 혼합물 정제 또는 산화형 소포로리피드 단일 정제 또는 락톤형 소포로리피드 단일 정제 등 대상 물질의 함량 및 목적에 따라 달리 정제될 수 있다. 유기 용매인 헥산 및 에틸아세트산을 이용한 정제 방법의 경우, 소포로리피드의 순도가 낮고, 해당 유기 용매들이 인체에 독성을 나타내기 때문에 잔류할 경우, 사용에 제약이 있을 수 있으며, 컬럼을 이용한 정제는 회수가 어렵고, 그 양이 적으며, 유기 용매를 사용하므로 용매 추출 방법과 마찬가지로 화장품 등 제품의 사용에 문제가 될 수 있다(Saraya Co., Ltd. (2015). E.P. Patent No. 2821495A1)Methods for separation and purification of surfactants having a glycolipid structure including sophorolipid include purification using an organic solvent, purification using a column, etc., which include purification of a mixture of lactone and oxidized sophorolipids or single purification of oxidized sophorolipids or It may be purified differently depending on the content and purpose of the target substance, such as a single tablet of lactone-type sophorolipid. In the case of the purification method using the organic solvents hexane and ethyl acetic acid, the purity of sophorolipid is low, and if the organic solvents remain toxic to the human body, there may be restrictions on use, and purification using a column may be Recovery is difficult, the amount is small, and since an organic solvent is used, it may be a problem for the use of products such as cosmetics as in the solvent extraction method (Saraya Co., Ltd. (2015). EP Patent No. 2821495A1)

한편, 막 여과를 이용한 물질의 정제는 정제 대상 물질의 분자량에 따라 특정 공극 크기(Pore size)를 기준으로 물질을 분리하는 것으로, 정밀 여과 (Microfiltration, MF), 한외 여과(Ultrafiltration, UF), 나노 여과 (Nanofiltration, NF), 역삼투막 여과 (Reverse osmosis, RO) 등이 막 여과의 대표적인 예이다. 일반적으로 정밀 여과는 0.1~10 ㎛, 한외 여과는 10~100 nm, 나노 여과는 1~10 nm, 그리고 역삼투막 여과는 1nm 이하의 공극 크기를 가진 것으로 통용되며, 해당 크기에 따라 물질의 분자량 차이에 의해 막을 통과하거나 또는 통과하지 못하는 물질을 분리한다.On the other hand, purification of a material using membrane filtration separates the material based on a specific pore size according to the molecular weight of the material to be purified. Microfiltration (MF), ultrafiltration (UF), nano Nanofiltration (NF) and reverse osmosis (RO) are representative examples of membrane filtration. In general, microfiltration is 0.1 to 10 μm, ultrafiltration is 10 to 100 nm, nano filtration is 1 to 10 nm, and reverse osmosis membrane filtration is commonly used as having a pore size of 1 nm or less. Separation of substances that either pass through or do not pass through the membrane.

유럽특허공개 EP 2821495A : High-purity acid-form sophorolipid (sl) containing composition and process for preparing sameEuropean Patent Publication EP 2821495A: High-purity acid-form sophorolipid (sl) containing composition and process for preparing same 대한민국 특허공개 제2019-0125878호 : 락톤형 소포로리피드의 제조 방법Korean Patent Laid-Open No. 2019-0125878: Method for producing lactone-type sophorolipids

본 발명자들은 생물계면활성제인 소포로리피드를 생산할 수 있는 캔디다 속 효모균을 배양하여 생산되는 소포로리피드 침전물로부터 당류와 오일류를 포함하는 배양액 조성물, 배양 중 생성되는 단백질, 대사산물로써 색소 등의 불순물 및 산화형 소포로리피드 등을 막 여과, 더욱 자세하게는 한외 여과를 이용하여 분리 및 정제하는 연구를 수행하였고, 그 결과 고순도로 정제된 락톤형 소포로리피드의 제조를 확인하여 본 발명을 완성하였다.The present inventors provide a culture solution composition containing sugars and oils from a sophorolipid precipitate produced by culturing a yeast of the genus Candida capable of producing sophorolipids, which are biosurfactants, proteins produced during culture, impurities such as pigments as metabolites, and Separation and purification of oxidized sophorolipids using membrane filtration, more specifically ultrafiltration, was conducted, and as a result, the production of highly purified lactone-type sophorolipids was confirmed, thereby completing the present invention.

따라서, 본 발명의 과제는 생물 계면활성제인 소포로리피드, 특히 락톤형 소포로리피드를 캔디다 속 효모균의 배양액 침전물로부터 한외 여과를 이용해 분리 및 정제하여 고순도로 제조하는 방법을 제공하는 것이다. Accordingly, an object of the present invention is to provide a method for producing a biosurfactant, sophorolipid, particularly a lactone-type sophorolipid, from a culture solution precipitate of a yeast of the genus Candida by using ultrafiltration and purification to separate and purify the sophorolipid.

상기한 과제를 달성하기 위해 본 발명은,In order to achieve the above object, the present invention,

소포로리피드 생산능을 갖는 캔디다 속 효모균 배양액으로부터 락톤형 및 산화형 소포로리피드를 포함하는 소포로리피드 혼합액을 얻는 제1 단계;A first step of obtaining a sophorolipid mixture containing lactone-type and oxidized sophorolipid from a yeast culture medium of the genus Candida having a sophorolipid-producing ability;

상기 혼합액에 버퍼를 혼합하여 산화형 소포로리피드를 용해하는 제2단계;a second step of dissolving the oxidized sophorolipid by mixing a buffer with the mixed solution;

버퍼와 혼합된 혼합액을 분획분자량 1,000 내지 3,000 Da의 한외여과막으로 여과하여 미셀을 형성한 락톤형 소포로리피드를 포함하는 농축액(retantate)를 분리하는 제3단계;a third step of filtering the mixed solution mixed with the buffer through an ultrafiltration membrane having a molecular weight cutoff of 1,000 to 3,000 Da to separate a concentrate (retantate) containing lactone-type sophorolipids in which micelles are formed;

상기 농축액(retantate)을 가열한 후 분획분자량 1,000 내지 3,000 Da의 한외여과막으로 여과하여 미셀이 분해된 락톤형 소포로리피드를 포함하는 여과액(permeate)를 회수하는 제4단계A fourth step of recovering a filtrate (permeate) containing lactone-type sophorolipids in which micelles are decomposed by heating the concentrate (retantate) and filtering it through an ultrafiltration membrane having a molecular weight cutoff of 1,000 to 3,000 Da

를 포함하는 락톤형 소포로리피드의 정제방법을 제공한다.It provides a method for purifying a lactone-type sophorolipid comprising a.

본 발명의 정제방법에 따르면, 당류 및 오일류를 포함한 배양액 조성에서 소포로리피드 생산능을 가진 캔디다 속 효모균의 배양을 통해 생산되는 소포로리피드 침전물을 회수하고, 크게 침전물 속 배양액 조성물질인 당류 및 오일류, 배양 중 생성되는 단백질, 그리고 대사과정을 통해 만들어지는 색소 등의 불순물 및 산화형 소포로리피드 등을 용해도에 따른 미셀 구조 형성 및 분자량에 따라 막 여과를 통해 분리 및 정제하여 고순도 락톤형 소포로리피드를 얻을 수 있다. According to the purification method of the present invention, the sophorolipid precipitate produced through the culturing of yeast bacteria of the genus Candida having sophorolipid-producing ability in a culture solution composition including sugars and oils is recovered, and sugars and oils, which are largely the contents of the culture solution in the sediment High-purity lactone-type sophorolipids by separating and purifying impurities such as proteins produced during culturing, pigments produced through metabolic processes, and oxidized sophorolipids through micelle structure formation and molecular weight according to solubility can get

도 1은 캔디다 속 효모균의 배양을 통해 생산된 소포로리피드 침전물로부터 한외 여과를 통해 락톤형 소포로리피드를 분리 및 정제하는 일련의 공정을 나타낸 모식도이다.
도 2는 전처리로서 소포로리피드 침전물을 분획분자량 10,000에 해당하는 공극 크기의 한외 여과 막을 이용하여 여과를 진행한 후, 여과액의 중간 순도 확인을 위해 HPLC(High-Performance Liquid Chromatography) 분석결과를 나타낸 것이다.
도 3은 최종 수득한 파우더화된 락톤형 소포로리피드의 순도를 분석한 HPLC 분석결과를 나타낸 것이다.
1 is a schematic diagram illustrating a series of processes for isolating and purifying lactone-type sophorolipids through ultrafiltration from sophorolipid precipitates produced through the cultivation of yeast in the genus Candida.
2 is a pre-treatment of the sophorolipid precipitate using an ultrafiltration membrane having a pore size corresponding to a molecular weight cutoff of 10,000, followed by HPLC (High-Performance Liquid Chromatography) to confirm the intermediate purity of the filtrate. will be.
3 shows the results of HPLC analysis of the purity of the finally obtained powdered lactone-type sophorolipid.

이하 본 발명을 상세히 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in detail.

본 발명의 락톤형 소포로리피드의 정제방법은The purification method of lactone-type sophorolipid of the present invention is

소포로리피드 생산능을 갖는 캔디다 속 효모균 배양액으로부터 락톤형 및 산화형 소포로리피드를 포함하는 소포로리피드 혼합액을 얻는 제1 단계;A first step of obtaining a sophorolipid mixture containing lactone-type and oxidized sophorolipid from a yeast culture medium of the genus Candida having a sophorolipid-producing ability;

상기 혼합액에 버퍼를 혼합하여 산화형 소포로리피드를 용해하는 제2단계;a second step of dissolving the oxidized sophorolipid by mixing a buffer with the mixed solution;

버퍼와 혼합된 혼합액을 분획분자량 1,000 내지 3,000 Da의 한외여과막으로 여과하여 미셀을 형성한 락톤형 소포로리피드를 포함하는 농축액(retantate)를 분리하는 제3단계;a third step of filtering the mixed solution mixed with the buffer through an ultrafiltration membrane having a molecular weight cutoff of 1,000 to 3,000 Da to separate a concentrate (retantate) containing lactone-type sophorolipids in which micelles are formed;

상기 농축액(retantate)을 가열한 후 분획분자량 1,000 내지 3,000 Da의 한외여과막으로 여과하여 미셀이 분해된 락톤형 소포로리피드를 포함하는 여과액(permeate)를 회수하는 제4단계를 포함한다. A fourth step of recovering a filtrate (permeate) containing lactone-type sophorolipids in which micelles are decomposed by heating the concentrate (retantate) and filtering it through an ultrafiltration membrane having a molecular weight cutoff of 1,000 to 3,000 Da is included.

각 단계별로 상세히 살펴보면 다음과 같다. A detailed look at each step is as follows.

제1단계: Step 1: 소포로리피드Sophorolipid 생산능을productivity 갖는 캔디다 속 효모균 배양액으로부터 from the culture medium of yeast bacteria of the genus Candida with rock 톤형 및 tone and 산화형oxidized 소포로리피드를Sophorolipid 포함하는 containing 소포로리피드Sophorolipid 혼합액을 얻는다. get a mixture

상기 소포로리피드 생산능을 갖는 캔디다 속 효모균은 내재적으로 또는 형질전환에 의해 소포로리피드를 생산할 수 있는 균으로, 구체적으로 캔디다 봄비콜라(Candida bombicola)를 사용할 수 있다.The yeast of the genus Candida having the sophorolipid-producing ability is a bacterium capable of producing sophorolipids endogenously or by transformation, specifically, Candida bombicola can be used.

효모균 배양액은 상기 효모균을 배양 배지에서 배양하여 얻어진 것으로서 미생물의 대사 산물을 포함하며, 미생물을 포함하거나, 미생물은 분리된 배양액일 수 있다.The yeast culture medium is obtained by culturing the yeast in a culture medium, and contains the metabolites of microorganisms, and may contain microorganisms, or the microorganisms may be isolated cultures.

상기 효모균 배양액으로부터 락톤형, 및 산화형 소포로리피드를 포함하는 소포로리피드 혼합액을 얻는다. 이때 밀도 차이를 이용하여 락톤형 및 산화형 소포로리피드 침전액을 회수하여 사용할 수 있다. A sophorolipid mixed solution containing lactone-type and oxidized sophorolipids is obtained from the yeast culture solution. In this case, the lactone-type and oxidized sophorolipid precipitates can be recovered and used by using the density difference.

이때 락톤형 및 산화형 소포로리피드를 포함하는 소포로리피드 혼합액을 분획분자량 5,000 내지 10,000 Da의 한외 여과막으로 여과하여 배양액 내 세포 및 세포 부산물을 제거하는 전처리 공정을 수행할 수 있으며, 그 여과액(permeate)를 이후 공정에 이용한다. At this time, a pretreatment process of removing cells and cell by-products in the culture medium by filtering the sophorolipid mixture containing the lactone-type and oxidized sophorolipids with an ultrafiltration membrane having a molecular weight cutoff of 5,000 to 10,000 Da can be performed, and the filtrate ( permeate) is used in the subsequent process.

제2단계: 혼합액에 버퍼를 혼합하여 Step 2: Mixing the buffer with the mixed solution 산화형oxidized 소포로리피드를Sophorolipid 용해한다. dissolve

본 발명의 락톤형 소포로리피드의 정제방법은 소포로리피드를 포함한 계면활성제의 구조적 특성을 이용하여, 한외 여과를 통해 소포로리피드 침전물로부터 락톤형 소포로리피드를 분리 및 정제한다. The purification method of the lactone-type sophorolipid of the present invention uses the structural characteristics of a surfactant including sophorolipid to separate and purify the lactone-type sophorolipid from the sophorolipid precipitate through ultrafiltration.

계면활성제는 수성기 및 소수성기를 동시에 가지는 양친매성 (Amphiphilic) 구조를 가지는데, 이로 인해 온도나 pH 그리고 용액 또는 유기용매 내 해당 계면활성제의 농도 등에 따른 특정 조건 하에서 미셀(Micelle) 구조를 형성한다. 계면활성제가 계면에 흡착되어 계면 장력을 저하시키는데, 특정 농도 이상이 되면 계면 장력을 더 이상 감소시키지 않고 그 수치가 유지되며, 해당 농도를 임계 미셀 농도 (CMC) 로 정하게 되는데, CMC 이상의 농도에서는 미셀이 형성된다. 미셀은 계면활성제 단량체가 모여서 집적되는 집합체이다.Surfactants have an amphiphilic structure having an aqueous group and a hydrophobic group at the same time, thereby forming a micelle structure under specific conditions according to temperature, pH, and the concentration of the surfactant in a solution or organic solvent. The surfactant is adsorbed to the interface to lower the interfacial tension. When the concentration is higher than a certain concentration, the interfacial tension is not reduced and the level is maintained, and the concentration is set as the critical micelle concentration (CMC). this is formed A micelle is an aggregate in which surfactant monomers are gathered and integrated.

수용액에서는 계면활성제의 소수성 작용기 부분이 가운데 핵을 형성하고 친수성 작용기 부분이 바깥으로 향하는 구조를 가지는데, 이러한 형태의 구조를 미셀이라고 한다. 집합체 내 계면활성제 단량체의 수는 물질의 구조 및 온도, 농도 등에 따라 달라지는데, 이는 Aggregation Number(NAgg)로 나타낼 수 있으며, 이와 같은 원리에 근거하여 락톤형 소포로리피드를 분리 및 정제할 수 있다. In aqueous solution, the hydrophobic functional group of the surfactant forms a central nucleus and the hydrophilic functional group faces outward. This type of structure is called a micelle. The number of surfactant monomers in the aggregate varies depending on the structure, temperature, concentration, etc. of the material, which can be represented by the Aggregation Number (N Agg ), and based on this principle, the lactone-type sophorolipid can be separated and purified.

소포로리피드 침전물은 점도가 높아 막 여과 장치 내에 액상의 흐름을 주기 위해 버퍼에 용해한다. 수용액 상 배양액 조성 물질 및 단백질, 대사산물 등과 소포로리피드 특히, 산화형 소포로리피드의 용해도를 높이기 위하여 버퍼 용액을 이용하였다. pH에 따른 용해도 확인을 위하여, 시트레이트 버퍼 (Citrate buffer) pH 5.0 및 인산 버퍼 (Potassium phosphate buffer) pH 5.5, pH 6.0, pH 6.5, pH 7.0, pH 7.5, pH 8.0 를 제조하여, 각 버퍼에 소포로리피드 침전물이 1% 농도가 되도록 용해를 진행하였다. 결과적으로 pH 6.5 인산 버퍼에서 가장 용해도가 높았으며, pH 7.0 이상에서는 소포로리피드가 분해되는 등의 손실을 확인할 수 있었다. The sophorolipid precipitate has a high viscosity and is dissolved in a buffer to provide a liquid flow in the membrane filtration unit. A buffer solution was used in order to increase the solubility of sophorolipids, particularly oxidized sophorolipids, with the composition of the aqueous phase culture medium, proteins, metabolites, and the like. To check solubility according to pH, citrate buffer pH 5.0 and phosphate buffer pH 5.5, pH 6.0, pH 6.5, pH 7.0, pH 7.5, pH 8.0 were prepared, and defoamed in each buffer Dissolution proceeded so that the lolipid precipitate was 1% concentration. As a result, the solubility was the highest in the phosphate buffer at pH 6.5, and loss such as the degradation of sophorolipids at pH 7.0 or higher was confirmed.

제3단계: 버퍼와 혼합된 혼합액을 분획분자량 1,000 내지 3,000 Step 3: The mixed solution mixed with the buffer has a molecular weight cutoff of 1,000 to 3,000 Da의Da's 한외여과막으로with ultrafiltration membrane 여과하여 by filtration 미셀을micelles 형성한 formed 락톤형lactone 소포로리피드를Sophorolipid 포함하는 농축액(retantate)를 분리한다. Separate the concentrate (retantate) containing it.

소포로리피드 침전물이 용해된 인산 버퍼 용액으로 막 여과를 진행하였다. 소포로리피드는 산화형 및 락톤형이 표준상태에서 각각 0.1 wt% 및 0.01 wt% 의 CMC 를 보였으며, 해당 농도 이상에서 평균적인 소포로리피드의 응집수(Aggregation number, NAgg)는 6, 즉 6 개의 소포로리피드 단량체가 하나의 미셀을 형성하게 된다. 소포로리피드의 분자량이 산화형은 706 g/mol 및 락톤형은 688 g/mol 이므로, 더욱 상세하게는 1 wt% 인산 버퍼 용액 내에서 소포로리피드가 평균적으로 미셀 구조로서 1 몰 (mol) 당 산화형은 4240 g, 그리고 락톤형은 4130 g 의 분자량을 가지게 된다.Membrane filtration was performed with a phosphate buffer solution in which the sophorolipid precipitate was dissolved. Sophorolipids showed CMC of 0.1 wt% and 0.01 wt%, respectively, in the standard state of the oxidized and lactone forms, and the average number of sophorolipids (Aggregation number, N Agg) above the concentration was 6, that is, Six sophorolipid monomers form one micelle. Since the molecular weight of sophorolipid is 706 g/mol for the oxidized type and 688 g/mol for the lactone type, more specifically, sophorolipid has an average micelle structure in 1 wt% phosphate buffer solution per 1 mol (mol). The oxidized form has a molecular weight of 4240 g, and the lactone form has a molecular weight of 4130 g.

소포로리피드, 특히 락톤형 소포로리피드를 분자량에 따라 분리하고자 할 때 적합한 여과막의 공극 크기를 선별하기 위해 배양액 내 주요 조성 물질, 단백질, 대사산물들과 소포로리피드 미셀의 분자량을 비교하였다. 배양액 내 조성 가운데 주요 물질로 포도당으로 대표되는 당류는 180 g/mol, 올레산 (Oleic acid) 을 고함량으로 하는 카놀라유로 대표되는 오일류는 280 g/mol, 그리고 색소 물질 (Pigment) 은 300 내지 400 g/mol 이다.Sophorolipids, especially lactone-type sophorolipids, were compared with the molecular weight of sophorolipid micelles with major constituents, proteins, and metabolites in the culture medium to select the appropriate pore size of the filtration membrane when separating lactone-type sophorolipids according to molecular weight. Among the composition of the culture medium, sugar represented by glucose as the main material is 180 g/mol, oil represented by canola oil with a high content of oleic acid is 280 g/mol, and pigment is 300 to 400 g /mol.

상기 내용을 토대로하여 막 여과 가운데 분획분자량(molecular weight cut-off) 1,000 내지 3,000 Da에 해당하는 공극 크기를 가지는 한외 여과막 (Ultrafiltraion membrane) 을 선택하였다. 산화형 소포로리피드는 미셀 구조에서 4240 g/mol의 분자량을 보이나 pH 6.5 인산 버퍼 내에서 용해되어 분자량 706 g/mol의 단량체로 존재하는 산화형 소포로리피드는 대부분 여과된다. 락톤형 소포로리피드는 인산 버퍼에서도 용해가 거의 되지 않고 미셀 구조를 형성하고 있어 여과되지 않고 여과막 내에 농축된다.Based on the above information, an ultrafiltration membrane having a pore size corresponding to a molecular weight cut-off of 1,000 to 3,000 Da among membrane filtration was selected. Although the oxidized sophorolipid has a molecular weight of 4240 g/mol in the micellar structure, most of the oxidized sophorolipid dissolved in a pH 6.5 phosphate buffer and present as a monomer having a molecular weight of 706 g/mol is filtered. The lactone-type sophorolipid is hardly dissolved even in the phosphate buffer and forms a micellar structure, so it is not filtered and is concentrated in the filtration membrane.

소포로리피드 침전물의 인산 버퍼 용액을 여과 시스템 장치를 이용하여 한외 여과를 진행하였다. 분획분자량 1,000 내지 3,000 Da, 더 바람직하게는 3,000 Da의 공극 크기를 가진 여과막을 이용하였을 때, 당류 및 오일류 등 배양액 내 대부분의 물질들은 막을 통과하여 여과액(Permeate)으로 빠져나가고, 막을 통과하지 못한 단백질, 미셀 구조의 락톤형 소포로리피드 및 용해되지 않은 산화형 소포로리피드와 분자량 3,000 Da 이상의 불순물은 막 내에 농축(Retantate)된다. 분획분자량 1,000 내지 3000 Da의 한외 여과막 중 3,000 Da에 해당하는 한외 여과막을 선별한 것은 락톤형 소포로리피드의 미셀 구조일 때 분자량보다 작은 한외 여과막 가운데 공극 크기가 가장 큰 여과막을 사용할 때, 단백질에 의한 막힘 현상이 최소화될 수 있다.The phosphate buffer solution of the sophorolipid precipitate was subjected to ultrafiltration using a filtration system device. When a filtration membrane having a pore size of 1,000 to 3,000 Da, more preferably 3,000 Da, is used, most substances in the culture medium, such as sugars and oils, pass through the membrane and exit as a filtrate (permeate), and do not pass through the membrane. Proteins, lactone-type sophorolipids of micellar structure, undissolved oxidized sophorolipids, and impurities with a molecular weight of 3,000 Da or more are concentrated (retantate) in the membrane. Among the ultrafiltration membranes with a molecular weight cutoff of 1,000 to 3000 Da, the ultrafiltration membrane corresponding to 3,000 Da was selected when the lactone-type sophorolipid micellar structure was used. Clogging can be minimized.

제4단계: 농축액(Step 4: Concentrate ( retantateretantate )을 가열한 후 분획분자량 1,000 내지 3,000 ) after heating, molecular weight fraction of 1,000 to 3,000 Da의Da's 한외여과막으로 여과하여 Filtration with an ultrafiltration membrane 미셀이Michelle 분해된 decomposed 락톤형lactone 소포로리피드를Sophorolipid 포함하는 여과액(permeate)를 회수한다. The filtrate (permeate) containing it is recovered.

한외 여과에서 투과되지 않은 분자량 3000 Da 이상의 단백질, 미셀 구조의 락톤형 소포로리피드 및 산화형 소포로리피드 그리고 불순물을 포함하는 농축액(retantate)을 회수하여 해당 용액에 가열을 진행하였다. Proteins with a molecular weight of 3000 Da or more, lactone-type sophorolipids and oxidized sophorolipids having a micellar structure that were not permeated by ultrafiltration, and a concentrate (retantate) containing impurities were recovered and the solution was heated.

이는 가열을 통해 용액의 온도를 높여 용액 내 소포로리피드가 형성하고 있는 미셀 구조를 분해하기 위함이다. 120 ℃ 이상으로 가열하면 소포로리피드가 분해되므로, 30 ℃, 40 ℃, 50 ℃, 60 ℃, 70 ℃, 80 ℃ 의 온도 구간을 나누어 가열을 진행하여 온도를 조절한 후, 동일한 분자량 3000 의 한외 여과막을 이용하여 여과를 진행하였다. 결과적으로, 50 ℃ 이상에서 락톤형 소포로리피드의 회수량에서 큰 차이가 없었으며, 여과를 진행한 후 회수한 여과액(permeate)을 건조하여 고순도 락톤형 소포로리피드를 수득하였다.This is to decompose the micellar structure formed by the sophorolipids in the solution by increasing the temperature of the solution through heating. Since sophorolipids are decomposed when heated to 120 ℃ or higher, the temperature is controlled by dividing the temperature sections of 30 ℃, 40 ℃, 50 ℃, 60 ℃, 70 ℃, 80 ℃, and after adjusting the temperature, the same molecular weight of 3000 Filtration was performed using a filtration membrane. As a result, there was no significant difference in the amount of lactone-type sophorolipid recovered at 50° C. or higher, and after filtration, the recovered filtrate (permeate) was dried to obtain a high-purity lactone-type sophorolipid.

이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 바람직한 실시예 및 실험예를 제시한다. 그러나 하기의 실시예는 본 발명을 보다 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐, 실시예에 의해 본 발명의 내용이 한정되는 것은 아니다.Hereinafter, preferred examples and experimental examples are presented to help the understanding of the present invention. However, the following examples are only provided for easier understanding of the present invention, and the content of the present invention is not limited by the examples.

실시예Example 1 One

1-1 분획분자량 10,000 1-1 molecular weight cut off 10,000 DaDa 한외out of bounds 여과막을filter membrane 이용한 배양액 내 세포 및 세포 부산물 제거 Removal of cells and cell by-products in the culture medium using

배양액 내에 잔존하는 효모균 세포 및 세포 부산물 등을 제거하기 위해 분획분자량 10000 Da에 해당하는 한외 여과막을 이용하여 여과를 진행하였다. 세포 및 세포 부산물 외에도 분자량 10,000 달톤 이상에 분포하는 단백질이 전체 단백질의 상당량을 차지하는 바, 분획분자량 1000 내지 3000 Da에 해당하는 공극 크기의 한외 여과막을 이용한 락톤형 소포로리피드의 여과 전 1차적으로 분자량이 큰 물질을 걸러내는 전처리로서 그 목적을 둔다. In order to remove yeast cells and cell by-products remaining in the culture medium, filtration was performed using an ultrafiltration membrane corresponding to a molecular weight fraction of 10000 Da. In addition to cells and cell by-products, proteins with a molecular weight of 10,000 Daltons or more account for a significant amount of the total protein, so the molecular weight is primarily molecular weight before filtration of lactone-type sophorolipids using an ultrafiltration membrane with a pore size corresponding to a molecular weight cutoff of 1000 to 3000 Da. It serves as a pretreatment to filter out these large substances.

이는 락톤형 소포로리피드를 여과하기 전 분획분자량 1000 내지 3000 Da에 해당하는 공극 크기의 한외 여과막이 단백질 및 분자량 10000 달톤 이상의 불순물로부터 막히는 것을 방지하기 위함이기도 하다.This is also to prevent the ultrafiltration membrane having a pore size corresponding to a cut molecular weight of 1000 to 3000 Da before filtering the lactone-type sophorolipid from clogging from proteins and impurities with a molecular weight of 10000 Daltons or more.

분리 및 정제의 대상 물질은 당류 및 오일류를 포함한 배양액 내 조성 물질, 단백질 및 색소와 같은 대사 산물이며, 분획분자량 10,000 Da에 해당하는 한외 여과막을 이용한 여과의 주 목적은 단백질 제거에 있으므로, 단백질의 분석을 통해 제거 여부를 다음과 같이 확인하였다. Substances subject to separation and purification are metabolites such as proteins and pigments, composition substances in culture including sugars and oils, and since the main purpose of filtration using an ultrafiltration membrane with a molecular weight cutoff of 10,000 Da is to remove proteins, analysis of proteins Whether or not it was removed was confirmed as follows.

단백질의 분석은 단백질 분석 키트를 이용하였으며, 키트에서 제공하는 표준 단백질 물질을 이용하여 UV-Vis 분광흡도계를 이용해 검량선을 작성한 후 여과 시료를 특정할 수 있는 농도로 제조하여 분석을 진행하였다.Protein analysis was performed using a protein analysis kit, and a calibration curve was prepared using a UV-Vis spectroscopy using a standard protein material provided in the kit, and then the filtered sample was prepared at a specific concentration and analyzed.

여과에서 분리된 소포로리피드의 확인을 위해 HPLC (High-Performance Liquid Chromatography)를 이용해 산화형 소포로리피드와 락톤형 소포로리피드의 분석을 진행하였다. 최종적으로 소포로리피드를 20 % MeOH 에 용해시켜 분석 샘플을 만들었으며, 소포로리피드 HPLC 분석에서 사용된 컬럼은 Optimapak C18 이며, 분석 조건은 컬럼온도 25 ℃ UV detector 207 nm 이며, Acetonitrile(A)과 물을 이동상으로 사용하여 시간대별로 농도 gradient(0-15분 20%A, 15-40분 80%A, 40-50분 100%A, 50-70분 100%A, 70-80분 20%A)를 주어 0.5 ml/분의 flow rate로 진행하였다. 그 결과는 도 2에 나타내었다. In order to confirm the sophorolipid separated by filtration, the analysis of the oxidized sophorolipid and the lactone-type sophorolipid was performed using HPLC (High-Performance Liquid Chromatography). Finally, an analysis sample was prepared by dissolving sophorolipid in 20% MeOH. The column used for sophorolipid HPLC analysis is Optimapak C18, and the analysis conditions are column temperature 25 ℃ UV detector 207 nm, Acetonitrile (A) and Concentration gradient for each time period using water as the mobile phase (0-15 min 20% A, 15-40 min 80% A, 40-50 min 100% A, 50-70 min 100% A, 70-80 min 20% A ) and proceeded with a flow rate of 0.5 ml/min. The results are shown in FIG. 2 .

도 2를 참조하면, 30 분 대에서 42 분 대 사이에 존재하는 피크는 산화형 소포로리피드, 그리고 51 분 대와 55 분 대에 존재하는 피크는 락톤형 소포로리피드이며, 나머지는 불순물로 간주하였다. 또한, 전처리의 주 목적은 단백질의 1차 제거를 위함인데, 단백질 함량 분석의 결과는 여과 전 20.5%에서 여과 후 2.1%로 감소되는 것을 확인하였다.Referring to FIG. 2 , the peak present between 30 min and 42 min is oxidized sophorolipid, and the peak present in 51 min and 55 min is lactone-type sophorolipid, and the rest are considered impurities. did. In addition, the main purpose of the pretreatment is for the primary removal of protein, and the result of protein content analysis confirmed that it decreased from 20.5% before filtration to 2.1% after filtration.

1-2. 인산 버퍼를 이용한 분획분자량 3,000 1-2. Molecular weight cutoff using phosphate buffer 3,000 DaDa 한외out of bounds 여과 정제 filtration purification

세포 및 세포 부산물과 분자량 10,000 Da 이상의 단백질 및 불순물이 제거된 소포로리피드 여과액으로부터 당류 및 오일류 등의 배양액 내 조성 물질, 분자량 10,000 Da 이하의 단백질 그리고 대사 산물로서의 색소 및 산화형 소포로리피드 등과 불순물들을 제거하기 위해 분획분자량 3,000 Da에 해당하는 공극 크기의 한외 여과막을 이용한 여과를 진행하였다. From the sophorolipid filtrate from which cells and cell by-products, proteins and impurities with a molecular weight of 10,000 Da or more have been removed, composition materials such as sugars and oils in the culture medium, proteins with a molecular weight of 10,000 Da or less, pigments as metabolites and oxidized sophorolipids, etc. Filtration was performed using an ultrafiltration membrane having a pore size corresponding to a molecular weight cutoff of 3,000 Da to remove them.

상기 1-1에서 전처리를 진행한 후 여과액(permeate)을 pH 6.5 인산 버퍼에 1 wt% 농도로 용해를 하였다. 인산 버퍼 용액을 분획분자량 3,000 Da에 해당하는 공극 크기의 한외 여과막으로 여과를 진행하였으며, 본 과정에서 포도당으로 대표되는 당류, 카놀라유로 대표되는 오일류, 단백질 및 색소와 산화형 소포로리피드 및 불순물이 제거됨과 동시에 여과를 진행할수록 색이 점점 옅어지는 것을 확인할 수 있었다. 락톤형 소포로리피드는 대부분 미셀 구조를 형성하여 3,000 달톤이상의 분자량을 가지기 때문에 여과되지 않고 여과막 내에 농축되는데, 본 여과에서는 이 농축액을 회수하였다.After the pretreatment in 1-1, the filtrate (permeate) was dissolved in a pH 6.5 phosphate buffer at a concentration of 1 wt%. The phosphate buffer solution was filtered through an ultrafiltration membrane with a pore size corresponding to a molecular weight cutoff of 3,000 Da. In this process, sugars represented by glucose, oils represented by canola oil, proteins and pigments, and oxidized sophorolipids and impurities were removed. At the same time, it was confirmed that the color gradually became pale as the filtration proceeded. Most of the lactone-type sophorolipids form micellar structures and have a molecular weight of 3,000 daltons or more, so they are not filtered and are concentrated in the filtration membrane.

1-3. 가열 후 분획분자량 3,000 1-3. Molecular weight fraction after heating 3,000 DaDa 한외out of bounds 여과를 통한 through filtration 락톤형lactone 소포로리피드Sophorolipid 정제 refine

소포로리피드 침전물 내 락톤형 소포로리피드 및 소량의 산화형 소포로리피드 및 단백질을 제외한 대부분의 주요 불순물이 제거된 농축액(retantate)을 회수하여 온도를 50 ℃ 가 되도록 가열을 진행하였다. 50 ℃ 이상의 인산 버퍼 용액에서는 소포로리피드의 용해도가 높아지고 미셀 구조가 깨지므로, 이 용액을 분획분자량 3000 Da에 해당하는 공극 크기의 한외 여과막에 여과를 진행하면, 락톤형 소포로리피드 및 소량의 산화형 소포로리피드가 투과되며, 용액 내 잔존하는 단백질 및 불순물은 걸러지게 된다. 최종적으로 여과액(permeate)을 회수하여 동결건조를 진행하였으며, 파우더화된 락톤형 소포로리피드의 순도를 분석하고 그 결과는 도 3에 나타내었다. A concentrate (retantate) from which most major impurities except for lactone-type sophorolipid and a small amount of oxidized sophorolipid and protein in the sophorolipid precipitate were removed, and heating was performed so that the temperature was set to 50 °C. In a phosphate buffer solution of 50 ° C or higher, the solubility of sophorolipids increases and the micellar structure is broken. Therefore, when the solution is filtered through an ultrafiltration membrane with a pore size corresponding to a molecular weight cutoff of 3000 Da, lactone-type sophorolipids and a small amount of oxidation The type sophorolipid is permeated, and proteins and impurities remaining in the solution are filtered out. Finally, the filtrate (permeate) was collected and freeze-dried, and the purity of the powdered lactone-type sophorolipid was analyzed, and the results are shown in FIG. 3 .

도 3을 참조하면, 건조 시료 내 소포로리피드의 순도는 85.2 %이며, 산화형 및 락톤형이 각각 21.3 % 및 63.9 %로 나타났다. 포도당은 HPLC 와 RI(Refractive Index) 검출기를 이용하여 분석 및 측정하였을 때 검출이 되지 않았으며, 단백질 함량은 여과 전 20.5 % 에서 여과 후 최종적으로 0.1%로 나타났다.Referring to FIG. 3 , the purity of the sophorolipid in the dry sample was 85.2%, and the oxidized type and the lactone type were 21.3% and 63.9%, respectively. Glucose was not detected when analyzed and measured using HPLC and RI (Refractive Index) detector, and the protein content was found to be 0.1% after filtration from 20.5% before filtration.

Claims (4)

소포로리피드 생산능을 갖는 캔디다 속 효모균 배양액으로부터 락톤형 및 산화형 소포로리피드를 포함하는 소포로리피드 혼합액을 얻는 제1 단계;
상기 혼합액에 버퍼를 혼합하여 산화형 소포로리피드를 용해하는 제2단계;
버퍼와 혼합된 혼합액을 분획분자량 1,000 내지 3,000 Da의 한외여과막으로 여과하여 미셀을 형성한 락톤형 소포로리피드를 포함하는 농축액(retantate)를 분리하는 제3단계;
상기 농축액(retantate)을 가열한 후 분획분자량 1,000 내지 3,000 Da의 한외여과막으로 여과하여 미셀이 분해된 락톤형 소포로리피드를 포함하는 여과액(permeate)를 회수하는 제4단계
를 포함하는 락톤형 소포로리피드의 정제방법.
A first step of obtaining a sophorolipid mixture containing lactone-type and oxidized sophorolipid from a yeast culture medium of the genus Candida having a sophorolipid-producing ability;
a second step of dissolving the oxidized sophorolipid by mixing a buffer with the mixed solution;
a third step of filtering the mixed solution mixed with the buffer through an ultrafiltration membrane having a molecular weight cutoff of 1,000 to 3,000 Da to separate a concentrate (retantate) containing lactone-type sophorolipids in which micelles are formed;
A fourth step of recovering a filtrate (permeate) containing lactone-type sophorolipids in which micelles are decomposed by heating the concentrate (retantate) and filtering it through an ultrafiltration membrane having a molecular weight cutoff of 1,000 to 3,000 Da
A method for purifying a lactone-type sophorolipid comprising a.
제1항에 있어서, 상기 제1단계의 소포로피리드 혼합액을 분획분자량 5,000 내지 10,000 Da의 한외 여과막으로 여과하여 전처리하는 단계를 포함하는 락톤형 소포로리피드의 정제방법.The method for purifying lactone-type sophorolipids according to claim 1, comprising the step of pre-treating the sophoropyride mixture of the first step by filtration through an ultrafiltration membrane having a molecular weight cutoff of 5,000 to 10,000 Da. 제1항에 있어서, 상기 버퍼는 pH 6.5인 것인 락톤형 소포로리피드의 정제방법.The method of claim 1, wherein the buffer has a pH of 6.5. 제1항에 있어서, 상기 제4단계의 가열은 50 ℃ 이상 120 ℃ 미만의 온도에서 수행하는 것인 락톤형 소포로리피드의 정제방법.
The method of claim 1, wherein the heating in the fourth step is performed at a temperature of 50 °C or more and less than 120 °C.
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