KR20170089766A - Betaglucan-peptide complexes, preparation method thereof, and pharmaceutical composition for use in preventing or treating inflammatory diseases containing the same as an active ingredient - Google Patents

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Abstract

The present invention relates to a betaglucan-peptide complex, a preparation method of the same, and a pharmaceutical composition for preventing or treating inflammatory diseases comprising the same as an active ingredient. Specifically, shizophyllan (SPG) which is beta-1,3-glucan, is covalently bound to SH3 peptide originated from c-Src to form SPG-c-Src-SH3 peptide complex, and the pharmaceutical composition comprises the complex as an active ingredient for preventing or treating inflammatory diseases such as sepsis and colitis. The betaglucan-peptide complex according to the present invention significantly reduces the production of active oxygen (ROS) and inflammatory cytokines by targeting p47phox, and thus can be beneficially used as a pharmaceutical composition for preventing or treating ROS-related life-threatening inflammatory diseases such as sepsis and colitis. Further, the betaglucan-peptide complex according to the present invention can be beneficially used in the development of novel peptide-based drugs targeting p47phox.

Description

베타글루칸-펩타이드 복합체, 이의 제조방법 및 이를 유효성분으로 함유하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물{Betaglucan-peptide complexes, preparation method thereof, and pharmaceutical composition for use in preventing or treating inflammatory diseases containing the same as an active ingredient}TECHNICAL FIELD The present invention relates to a beta-glucan-peptide complex, a method for producing the beta-glucan-peptide complex, and a pharmaceutical composition for preventing or treating an inflammatory disease containing the same as an active ingredient. as an active ingredient}

본 발명은 베타글루칸-펩타이드 복합체, 이의 제조방법 및 이를 유효성분으로 함유하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물에 관한 것이다. 보다 상세하게는 베타-1,3-글루칸인 시조필란(Schizophyllan, SPG)과 c-Src 유래의 SH3 펩타이드를 공유결합시켜 SPG-c-Src-SH3 펩타이드 복합체를 제조하고, 상기 복합체를 유효성분으로 함유하는 패혈증 및 대장염과 같은 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물에 관한 것이다.The present invention relates to a beta-glucan-peptide complex, a process for its preparation, and a pharmaceutical composition for the prophylaxis or treatment of inflammatory diseases containing it as an active ingredient. More particularly, the SPG-c-Src-SH3 peptide complex is prepared by covalently binding SH3 peptide derived from c-Src with Schizophyllan (SPG), which is a beta-1,3-glucan, And to a pharmaceutical composition for the prophylaxis or treatment of inflammatory diseases such as sepsis and colitis.

NADPH 산화효소(NADPH oxidase; NOX) 의존적인 활성산소(reactive oxygen species; ROS)와 산화제(oxidant)에 의해 유도된 단백질 또는 지질 변화(alteration)는 패혈증(sepsis) 및 대장염(colitis)과 같은 치명적 염증성 반응에서 관찰되는 조직 손상과 관련이 있다(Zhong Y et.al., Nature cell biology., 11(4):468-476, 2009; Gump JM et.al., Trends in molecular medicine., 13(10):443-448, 2007; Wadia JS et.al., Nature medicine., 10(3):310-315, 2004; Hotchkiss RS et.al., Journal of immunology., 176(9):5471-5477, 2006). 패혈증은 그람 음성 세균 감염에 대한 전신적인 염증 반응(systemic inflammatory response)이 특징이다. ROS가 Toll-like receptor(TLR) 4 활성화와 면역 세포 활성화 및 말단 기관 손상을 조절하여 패혈증의 병리학적 치료에 중요한 역할을 한다는 증거가 증가하고 있다(Fang FC., Nature reviews Microbiology., 2(10):820-832, 2004). 세포내(intracellular) 및 세포외(extracellular)의 과도한 ROS(초과산화물(superoxide) 및 과산화수소(hydrogen peroxide))는 식세포(대식세포(macrophage) 및 호중구(neutrophils))가 급성 과다 염증 반응(acute hyper-inflammatory response)에 대해 준비하는 능력을 갖추도록 한다(Matsunaga K et.al., Nature cell biology., 11(4):385-396, 2009; El Gazzar M. et.al., Molecular and cellular biology., 29(7):1959-1971, 2009). 세포의 ROS 수준을 조절하는 숙주 인자(host factor)는 패혈증의 병인에 중요한 조절자(modifier) 역할을 할 수 있다(Xu J. et.al., Nature medicine., 15(11):1318-1321, 2009; Jain A. et.al., Nature., 473(7348):484-488, 2011).Protein or lipid alteration induced by NADPH oxidase (NOX) -independent reactive oxygen species (ROS) and oxidant has been shown to be associated with fatal inflammatory conditions such as sepsis and colitis It has to do with the tissue damage observed in reaction (Zhong Y et.al., Nature cell biology , 11 (4):.. 468-476, 2009; Gump JM et.al., Trends in molecular medicine, 13 (10 ): 443-448, 2007; Wadia JS et al . , Nature medicine., 10 (3): 310-315, 2004; Hotchkiss RS et al. , Journal of Immunology, 176 (9): 5471-5477 , 2006). Sepsis is characterized by a systemic inflammatory response to gram-negative bacterial infections. There is increasing evidence that ROS plays an important role in the pathological treatment of sepsis by modulating Toll-like receptor (TLR) 4 activation, immune cell activation and endothelial damage (Fang FC., Nature reviews Microbiology., 2 ): 820-832, 2004). Excessive ROS (superoxide and hydrogen peroxide) in intracellular and extracellular cells may cause acute hyper-inflammatory responses in phagocytes (macrophages and neutrophils) (Matsunaga K et al. , Nature cell biology., 11 (4): 385-396, 2009; El Gazzar M. et al. , Molecular and cellular biology. , 29 (7): 1959-1971, 2009). Host factors that modulate ROS levels in cells may play important modulators in the pathogenesis of sepsis (Xu J. et al ., Nature medicine., 15 (11): 1318-1321 , 2009; Jain A. et al. , Nature., 473 (7348): 484-488, 2011).

궤양성 대장염(Ulcerative colitis; UC)은 위장관(gastrointestinal tract)의 만성(chronic) 및 재발성(recurrent) 염증을 특징으로 하는 재발성 염증성 장 질환(inflammatory bowel disease; IBD)이다. 대장염의 병인 기작(pathogenic mechanisms)은 복잡하며 유전적, 숙주 면역계(host immune system)와 환경적 요인 사이의 상호작용을 포함한다(Hubbard WJ. et.al., Shock., Shock. 2005;24 Suppl 1:52-57, 2005; Cavaillon JM. et.al., Scandinavian journal of infectious diseases., 35(9):535-544, 2003). 대장염 발병의 주요 인자 중 하나는 IBD 환자에서 점막 조직 손상과 만성 염증으로 이끄는 장내 미생물에 대한 부적절한 점막 면역 반응(mucosal immune response)이다(Victor VM. et.al., Current pharmaceutical design.. 11(24):3141-3158, 2005). 또한 IBD 환자의 염증이있는 점막에서 과도한 ROS 생성이 관찰되었다(Hutchins NA. et.al., Trends in molecular medicine., 20(4):224-233, 2014; Buchweitz JP. et.al., The Journal of pharmacology and experimental therapeutics., 323(2):675-683, 2007). 이러한 고도의 세포 독성 분자(cytotoxic molecules)는 IBD에서 조직 손상에 기여할 수 있으며, IBD 환자의 결장의 점막(colonic mucosa) 내로 비-식세포(non-phagocytes)(예컨대, 장 상피 세포)에 의해 세포 독성 분자가 방출 될 수 있다. 그러나, 급성 및 만성 염증 동안 원발성 장내 상피 세포(primary intestinal epithelial cells)에서 NOX 효소를 통해 ROS 생산을 조절하는 분자 경로(molecular pathways)는 잘 알려져 있지 않다.Ulcerative colitis (UC) is a recurrent inflammatory bowel disease (IBD) characterized by chronic and recurrent inflammation of the gastrointestinal tract. Pathogenic mechanisms of colitis are complex and involve interactions between genetic, host immune systems and environmental factors (Hubbard, WJ, et al ., Shock , Shock, 2005; 24 Suppl 1: 52-57, 2005; Cavaillon JM et al ., Scandinavian journal of infectious diseases, 35 (9): 535-544, 2003). One of the major factors in the development of colitis is inadequate mucosal immune response to intestinal microorganisms leading to mucosal tissue injury and chronic inflammation in IBD patients (Victor VM et al ., Current pharmaceutical design .. 11 (24 ): 3141-3158, 2005). In addition, excessive ROS production was observed in inflammatory mucosa of IBD patients (Hutchins NA et al ., Trends in molecular medicine., 20 (4): 224-233, 2014; Buchweitz JP et . Al., The Journal of pharmacology and experimental therapeutics, 323 (2): 675-683, 2007). These highly cytotoxic molecules may contribute to tissue damage in IBD and may result in cytotoxicity by non-phagocytes (e.g., intestinal epithelial cells) into the colonic mucosa of the IBD patient Molecules can be released. However, molecular pathways regulating ROS production through NOX enzymes in primary intestinal epithelial cells during acute and chronic inflammation are not well known.

NOX 복합체(NOX complex)는 두 개의 막 통과 단백질(transmembrane proteins로 구성되어 있는데, 플라보사이토크롬 b 컴포넌트(flavocytochrome b components; gp91phox/NOX2 및 p22phox)와 4개 세포질 단백질(cytosolic proteins)(p47phox, p67phox, p40phox, 및 Rac1/2)이 식세포(phagocyte)에 존재한다(Lambeth JD. et.al., Annual review of pathology., 9:119-145, 2014). 여러 세린 잔기에서 p47phox의 인산화는 손상되지 않은 세포에서 복합체의 활성화에 필수적이다. 활성화시, 세포질 성분은 막 투과 촉매 단백질(transmembrane catalytic protein) gp91phox/NOX2로 이동되어 기능성(functional) NOX 복합체(NOX complex)가 형성된다. ROS는 세포 신호 전달에서 2차 전달자(secondary messenger)로 여러 생리학적 및 병리학적 과정에 관여한다. 많은 연구가 TLR4 신호 전달(signaling), 염증 반응 및 질병 발병 기전을 조절하는 데 있어 NOX 의존성 ROS 생성(NOX-dependent ROS generation)의 역할을 입증했다. 특히 결장 상피 세포(colon epithelial cells)는 구조와 기능면에서 NOX2와 가장 밀접한 관련이 있는 동족체(homolog)인 NOX1을 풍부하게 발현한다(Victor VM. et.al., Current pharmaceutical design., 11(24):3141-3158, 2005; Hutchins NA. et.al., Trends in molecular medicine.. 20(4):224-233, 2014). 이 효소는 정상 및 병원성 박테리아와 밀접하게 접촉하며 장내에서 국소 선천 면역(local innate immune) 및 염증 반응에 중요한 역할을 할 수 있다(Bruno BJ. et.al., Therapeutic delivery.. 4(11):1443-1467, 2013). 몇몇 연구는 in vitro 상에서 장 상피 세포(intestinal epithelial cell) 배양에 있어, IL-18, IFN-γ 및 TNF-α와 같은 전-염증성 사이토카인(pro-inflammatory cytokines), 박테리아, 박테리아 생성물이 NOX 발현과 ROS 생성을 자극할 수 있다고 밝혔다. NOX의 활성화(activation)는 p22phox와의 상호작용과 이를 조절하는 파트너(NOX organizer 1(NOXO1), p47phox homolog, NOX activator 1(NOXA1), p67phox homolog, Rac1 GTPase)와의 결합을 필요로 한다. NOXO1과 NOXA1 전사체(transcripts)는 결장(colon)에서도 풍부하게 발현된다. 현재까지 NOX 발현과 활성이 패혈증과 IBD와 같은 병리학적 측면과 연관이 되어 있는지는 명확하게 밝혀져 있지 않다. The NOX complex is composed of two transmembrane proteins: flavocytochrome b components (gp91phox / NOX2 and p22phox) and four cytosolic proteins (p47phox, p67phox , p40phox, and Rac1 / 2) are present in the phagocyte (Lambeth JD et al ., Annual review of pathology, 9: 119-145, 2014). The activation of the cytoplasmic component is transferred to the transmembrane catalytic protein gp91phox / NOX2 to form a functional NOX complex (ROS), which is involved in cell signaling Secondary messenger, involved in several physiological and pathological processes. Many studies have shown that NOX-dependent ROS production (NOX-d) is involved in regulating TLR4 signaling, inflammatory response and disease pathogenesis ependent ROS generation), particularly colon epithelial cells express richly in NOX1, a homologue most closely related to NOX2 in terms of structure and function (Victor VM et al. ., Current pharmaceutical design, 11 ( 24):... 3141-3158, 2005; Hutchins NA et.al., Trends in molecular medicine .. 20 (4): 224-233, 2014) the enzyme is normal and pathogenic It is in intimate contact with bacteria and can play an important role in the local innate immune and inflammatory response in the intestine (Bruno BJ. et al. , Therapeutic delivery .. 4 (11): 1443-1467, 2013). Several studies have shown that pro-inflammatory cytokines, bacteria, and bacterial products, such as IL-18, IFN-γ and TNF-α, inhibit NOX expression in cultured intestinal epithelial cells in vitro And ROS generation can be stimulated. Activation of NOX requires the interaction with p22phox and its partners regulating it (NOXO1, p47phox homolog, NOX activator 1, p67phox homolog, Rac1 GTPase). NOXO1 and NOXA1 transcripts are also abundantly expressed in the colon. To date, it is unclear whether NOX expression and activity are related to pathological aspects such as sepsis and IBD.

치마버섯(Schizophyllum commune) 유래 가용성 형태의 β-글루칸(β-glucan)인 시조필란(Schizophyllan, SPG)은 중성 용액(neutral solution)에서 3중 나선(triple helix)을 형성하는 β-(1-3)-글루칸계(β-(1-3)-glucan family) 다당류(polysaccharide) 구성원이다. 시조필란(SPG)의 알칼리성 용액이 중화되면, 변성되어 단일 사슬(single chain)을 형성하고 소수성(hydrophobic) 및 수소 결합 상호작용을 통해 원래의 3중 나선으로 되돌아간다. 이러한 물리화학적 상호작용(physicochemical interaction) 동안, β-(1-3)-글루칸의 2개의 주쇄(main-chain) 글루코스와 하나의 올리고뉴클레오타이드(Oligonucletide; ODN) 염기 또는 펩타이드는 원래의 3중 나선으로 되돌아가는 대신에 화학량론 복합체(stoichiometric complex)를 형성한다. 이 복합체를 이용함으로써 SPG-기반 약물 전달 시스템(SPG-based drug delivery system)은 표적 세포(targeted cell)에 기능성(functional) ODN을 전달하도록 고안되었다(Yang CS. et.al., Cell host & microbe., 11(3):277-289, 2012; Deretic V. et.al., Scientific American., 298(5):74-81, 2008; Deretic V. et.al., Cell host & microbe., 5(6):527-549, 2009; Craik DJ. et.al., Chemical biology & drug design., 81(1):136-147, 2013). Schizophyllan (SPG), which is a soluble form of β-glucan derived from Schizophyllum commune , is a β- (1-3), which forms a triple helix in a neutral solution. ) - glucan (β- (1-3) -glucan family) polysaccharide. When the alkaline solution of zypohilane (SPG) is neutralized, it is denatured to form a single chain and back to the original triple helix through hydrophobic and hydrogen bonding interactions. During these physicochemical interactions, the two main-chain glucose and one oligonucleotide (ODN) bases or peptides of β- (1-3) -glucan are the original triple helix Instead of going back, it forms a stoichiometric complex. Using this complex, the SPG-based drug delivery system is designed to deliver a functional ODN to targeted cells (Yang CS et al ., Cell host & microbe .., 11 (3): 277-289, 2012; Deretic V. et.al, Scientific American, 298 (5):... 74-81, 2008; Deretic V. et.al, Cell host & microbe, 5 (6): 527-549, 2009; Craik DJ et al ., Chemical biology & drug design., 81 (1): 136-147, 2013).

한편, 덱틴-1(Dectin-1)은 SPG와 같은 β-글루칸(β-glucan)에 결합하는 병원체 패턴 인식 수용체(pathogen pattern recognition receptor)로 확인되었으며, 대식세포(macrophage), 수지상 세포(dendritic cell) 및 비-식세포(non-phagocyte)(상피세포 및 내피세포)와 같은 항원 제시 세포(antigen presenting cell, APC)에서 주요 β-글루칸 수용체(β-glucan receptor)이다(Lee YS. et.al., EMBO molecular medicine., 7(5):577-592, 2015). 따라서, 상기 복합체는 항원 제시 세포(APCs)의 덱틴-1에 의해 인지될 것이며, ODN 또는 펩티드는 이들 세포에 의해 섭식(intake) 될 것이다. β-글루칸에 의한 덱틴-1의 결합(engagement)은 세포질 도메인(cytoplasmic domain) 내에서 면역 수용체 타이로신-기반 활성화 모티프-유사 서열(immunoreceptor tyrosine-based activation motif-like sequence)의 인산화를 유도한다. 이후 C-Src 또는 Syk 타이로신 인산화효소(tyrosine kinase)의 결합(association)은 수지상 세포와 대식세포에서 CARD9/BCL10/MALT1 복합체-NF-κB(CARD9/BCL10/MALT1 complex-nuclear factor-κB) 경로로 구성된 골격(scaffold)의 조립(assembly)을 유도한다(Kim SD. et.al., Journal of immunology., 185(7):4302-4310, 2010). 그러나, 현재까지 ROS에 의해 유도된 면역 반응(ROS-induced immune responses)에서 SPG의 역할은 상세하게 규명되어 있지 않다.Dectin-1 has been identified as a pathogen pattern recognition receptor that binds to β-glucan such as SPG. Dectin-1 has been identified as a macrophage, dendritic cell Glucan receptors in antigen presenting cells (APCs) such as non-phagocytes (epithelial cells and endothelial cells) (Lee YS et al. , EMBO molecular medicine., 7 (5): 577-592, 2015). Thus, the complex will be recognized by the Dectin-1 of antigen presenting cells (APCs), and ODNs or peptides will be ingested by these cells. The engagement of deutin-1 by? -glucan induces phosphorylation of an immunoreceptor tyrosine-based activation motif-like sequence within the cytoplasmic domain. The association of C-Src or tyrosine kinase with CARD9 / BCL10 / MALT1 complex -NF-κB (CARD9 / BCL10 / MALT1 complex-nuclear factor-κB) pathway in dendritic cells and macrophages Induced assembly of scaffolds (Kim SD et al., Journal of Immunology, 185 (7): 4302-4310, 2010). However, to date, the role of SPG in ROS-induced immune responses has not been elucidated in detail.

본 발명자들은 C-Src가 p47phox와의 물리적 및 기능적 상호작용을 통해 NOX 활성에 중요한 음성 조절자임을 규명하였다. 즉, C-Src가 p47phox와 다른 NOX 서브유닛(subunit)과의 결합을 경쟁적으로 저해하여 NOX 복합체(NOX complex)의 조립을 효과적으로 차단함을 규명하였다. 또한, C-Src 유래 SH3 펩타이드(peptide)는 시조필란(SPG)과 결합되어 NOX 상호작용을 차단하며, 결국 활성산소(ROS) 및 염증성 사이토카인 생성을 현저하게 저해하게 됨을 밝혔다. 아울러, CLP(cecal ligation procedure)-유도 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis) 및 DSS(dextran sodium sulfate)-유도-궤양성 대장염(ulcerative colitis) 마우스 in vivo 동물 모델에 SPG/C-Src-SH3 펩티드 복합체(SPG/C-Src-SH3 peptide complex)를 처리하면, ROS 및 염증의 과도한 생성을 조절하여 현저하게 사망률을 감소시키고, 뿐만 아니라 마우스 동물 모델에서의 병리학적 반응 또한 개선시킴을 밝혔다. 종합하면, 본 발명자들은 C-Src가 p47phox와 직접 결합(direct binding)을 통해 NOX 활성에 있어 중요한 역할을 하며, 과도한 염증 반응을 저해할 수 있음을 규명하였다.The present inventors have identified that C-Src is an important regulator of NOX activity through physical and functional interaction with p47phox. In other words, C-Src competitively inhibited the binding of p47phox to other NOX subunits and effectively blocked the assembly of NOX complex (NOX complex). In addition, SH3-derived peptides from C-Src have been shown to bind to sipyo-pilan (SPG) to block NOX interactions, resulting in marked inhibition of reactive oxygen species (ROS) and inflammatory cytokine production. In addition, CLP (cecal ligation procedure) - polymicrobial sepsis and DSS (dextran sodium sulfate) -induced ulcerative colitis mouse in vivo Treatment of the animal model with the SPG / C-Src-SH3 peptide complex (SPG / C-Src-SH3 peptide complex) significantly reduces mortality by modulating the excessive production of ROS and inflammation, But also improved the pathological response. Taken together, the present inventors have found that C-Src plays an important role in NOX activity through direct binding with p47phox and can inhibit excessive inflammatory response.

세포내(intracellular) 활성산소종(reactive oxygen species, ROS)에 의해 유발되는 과도한 염증 반응은 패혈증 및 대장염을 비롯하여 다양한 질병을 유발할 수 있지만, 이 과정의 조절자는 여전히 잘 정의되어 있지 않다. 이에, 상기와 같은 규명을 통해 본 발명의 SPG-C-Src-SH3 펩타이드 복합체가 p47phox를 표적으로 하여, 패혈증 및 대장염과 같은 ROS와 관련된 치명적인 염증성 질환을 효과적으로 개선 또는 치료할 수 있으며, p47phox를 표적으로하는 새로운 펩타이드 기반 약제 개발에 유용하게 활용할 수 있음을 알 수 있다.Excessive inflammatory responses caused by intracellular reactive oxygen species (ROS) can cause a variety of diseases including sepsis and colitis, but the regulator of this process is still not well defined. Thus, the SPG-C-Src-SH3 peptide complex of the present invention can target or treat p47phox as a target, thereby effectively treating or treating a fatal inflammatory disease associated with ROS such as sepsis and colitis, Which is useful for the development of novel peptide-based drugs.

이러한 배경하에서, 본 발명자들은 패혈증 및 대장염과 같은 염증성 질환 치료를 위한 치료제를 개발하고자 예의 연구 노력한 결과, C-Src가 p47phox와의 결합을 통해 활성산소(ROS) 생성 및 NOX 복합체(NOX complex)의 조립을 저해함을 규명하고, C-Src의 아미노산 91-108과 121-140으로 구성된 C-Src SH3-유래 펩타이드와 β-1,3-글루칸(β-1,3-glucan)인 시조필란(schizophyllan, SPG)이 결합된 SPG-C-Src-SH3 펩타이드 복합체를 개발하게 되었다. 또한, 상기 복합체가 NOX 서브유닛(subunit) 조립(assembly) 및 전염증성 매개자(proinflammatory mediators)의 생성을 억제함을 확인하고, 이를 패혈증 또는 대장염 마우스 동물 모델에 적용해 본 결과, 패혈증 및 대장염과 같은 염증성 질환 개선 및 치료 효과가 있음을 확인함으로써, 본 발명을 완성하게 되었다.Under these circumstances, the present inventors have made extensive efforts to develop a therapeutic agent for the treatment of inflammatory diseases such as sepsis and colitis, and found that C-Src binds to p47phox to produce active oxygen (ROS) and assembly of NOx complex And the C-Src SH3-derived peptide consisting of amino acids 91-108 and 121-140 of C-Src, and schizophyllan (β-1,3-glucan) , SPG) -containing SPG-C-Src-SH3 peptide complex. It has also been found that the complex inhibits the production of NOX subunit assembly and proinflammatory mediators and is applied to an animal model of sepsis or colitis mice, Inflammatory disease, and the therapeutic effect, thereby completing the present invention.

Zhong Y et.al., Nature cell biology., 11(4):468-476, 2009Zhong Y et al., Nature cell biology., 11 (4): 468-476, 2009 Gump JM et.al., Trends in molecular medicine., 13(10):443-448, 2007Gump JM et al., Trends in molecular medicine, 13 (10): 443-448, 2007 Wadia JS et.al., Nature medicine., 10(3):310-315, 2004Wadia JS et al., Nature medicine., 10 (3): 310-315, 2004 Hotchkiss RS et.al., Journal of immunology., 176(9):5471-5477, 2006Hotchkiss RS et al., Journal of Immunology, 176 (9): 5471-5477, 2006 Fang FC., Nature reviews Microbiology., 2(10):820-832, 2004Fang FC., Nature reviews Microbiology., 2 (10): 820-832, 2004 Matsunaga K et.al., Nature cell biology., 11(4):385-396, 2009 Matsunaga K et al., Nature cell biology., 11 (4): 385-396, 2009 El Gazzar M. et.al., Molecular and cellular biology., 29(7):1959-1971, 2009El Gazzar M. et al., Molecular and cellular biology., 29 (7): 1959-1971, 2009 Xu J. et.al., Nature medicine., 15(11):1318-1321, 2009 Xu J. et al., Nature medicine., 15 (11): 1318-1321, 2009 Jain A. et.al., Nature., 473(7348):484-488, 2011Jain A. et al., Nature., 473 (7348): 484-488, 2011 Hubbard WJ. et.al., Shock., Shock. 2005;24 Suppl 1:52-57, 2005Hubbard WJ. et al., Shock., Shock. 2005; 24 Suppl 1: 52-57, 2005 Cavaillon JM. et.al., Scandinavian journal of infectious diseases., 35(9):535-544, 2003Cavaillon JM. et al., Scandinavian journal of infectious diseases, 35 (9): 535-544, 2003 Victor VM. et.al., Current pharmaceutical design.. 11(24):3141-3158, 2005Victor VM. et al., Current pharmaceutical design .. 11 (24): 3141-3158, 2005 Hutchins NA. et.al., Trends in molecular medicine., 20(4):224-233, 2014Hutchins NA. et al., Trends in molecular medicine, 20 (4): 224-233, 2014 Buchweitz JP. et.al., The Journal of pharmacology and experimental therapeutics., 323(2):675-683, 2007Buchweitz JP. et al., The Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics, 323 (2): 675-683, 2007 Lambeth JD. et.al., Annual review of pathology., 9:119-145, 2014Lambeth JD. et al., Annual review of pathology., 9: 119-145, 2014 Bruno BJ. et.al., Therapeutic delivery.. 4(11):1443-1467, 2013Bruno BJ. et al., Therapeutic delivery .. 4 (11): 1443-1467, 2013 Yang CS. et.al., Cell host & microbe., 11(3):277-289, 2012Yang CS. et al., Cell host & microbe., 11 (3): 277-289, 2012 Deretic V. et.al., Scientific American., 298(5):74-81, 2008Deretic V. et al., Scientific American., 298 (5): 74-81, 2008 Deretic V. et.al., Cell host & microbe., 5(6):527-549, 2009Deretic V. et al., Cell host & microbe., 5 (6): 527-549, 2009 Craik DJ. et.al., Chemical biology & drug design., 81(1):136-147, 2013Craig DJ. et al., Chemical biology & drug design., 81 (1): 136-147, 2013 Kim SD. et.al., Journal of immunology., 185(7):4302-4310, 2010Kim SD. et al., Journal of immunology., 185 (7): 4302-4310, 2010

본 발명의 목적은 염증성 질환 예방 또는 치료용 베타글루칸-펩타이드 복합체를 제공하기 위한 것이다.It is an object of the present invention to provide a beta glucan-peptide complex for the prevention or treatment of inflammatory diseases.

본 발명의 다른 목적은 상기 베타글루칸-펩타이드 복합체의 제조방법을 제공하기 위한 것이다.It is another object of the present invention to provide a method for producing the beta-glucan-peptide complex.

본 발명의 또 다른 목적은 상기 베타글루칸-펩타이드 복합체를 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공하기 위한 것이다.It is still another object of the present invention to provide a pharmaceutical composition for preventing or treating an inflammatory disease comprising the beta-glucan-peptide complex as an active ingredient.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 베타글루칸-펩타이드 복합체, 이의 제조방법 및 이를 유효성분으로 함유하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다. 보다 상세하게는, 베타-1,3-글루칸인 시조필란(Schizophyllan, SPG)과 c-Src 유래의 SH3 펩타이드를 공유결합시켜 SPG-c-Src-SH3 펩타이드 복합체를 제조하고, 상기 복합체를 유효성분으로 함유하는 패혈증 및 대장염과 같은 염증성 질환의 예방 또는 치료를 위한 약학적 조성물을 제공한다.In order to achieve the above object, the present invention provides a beta-glucan-peptide complex, a process for producing the beta-glucan-peptide complex, and a pharmaceutical composition for preventing or treating an inflammatory disease containing the same. More specifically, SPG-c-Src-SH3 peptide complex is prepared by covalently binding SH3 peptides derived from c-Src with Schizophyllan (SPG), which is a beta-1,3-glucan, And a pharmaceutical composition for the prophylaxis or treatment of inflammatory diseases such as sepsis and colitis.

이하, 본 발명을 구체적으로 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in detail.

하나의 양태로서, 본 발명은 (ⅰ) 베타-1,3-글루칸(β-1,3-glucan), 및 (ⅱ) 상기 베타-1,3-글루칸과 결합되어 있는 서열번호 1 및/또는 2의 아미노산 서열로 구성된 펩타이드를 포함하는, 염증성 질환 예방 또는 치료용 베타글루칸-펩타이드 복합체를 제공한다.In one embodiment, the present invention provides a pharmaceutical composition comprising (i) beta-1,3-glucan, and (ii) a beta-1,3- 2 < / RTI > for the prophylaxis or treatment of inflammatory diseases.

본 발명에서 용어 "베타-1,3-글루칸(β-1,3-glucan)"은 포도당(glucose)이 β-1,3 화학결합을 중심으로 중합된 다당류를 총칭하며, 버섯, 효모 등 미생물의 세포벽이나 세포외 다당류에서 분리함으로써 생산되는 미생물 유래의 베타-글루칸과, 보리, 귀리와 같은 곡물의 식이섬유에서 추출 생산되는 식물성 베타-글루칸이 있다. 구체적으로 베타-1,3-글루칸(β-1,3-glucan)은 포도당 분자간에 베타-1,3-결합을 이루는 고분자 다당류 물질이며, 이에 제한되지는 않으나, 시조필란(Schizophyllan, SPG), 자이모산(Zymosan), 커들란 AL(Curdlan AL), 스클로글루칸(Scleroglucan) 또는 라미나린(Laminarin) 일 수 있다.The term "beta-1,3-glucan" in the present invention refers to a polysaccharide polymerized with glucose centered on a beta-1,3 chemical bond and includes microorganisms such as mushroom, yeast, Beta-glucan derived from microorganisms produced by separation from cell walls or extracellular polysaccharides of plant cells, and plant beta-glucan extracted from cereal dietary fiber such as barley and oats. Specifically, beta-1,3-glucan is a polymeric polysaccharide substance that forms a beta-1,3-bond between glucose molecules, and includes, but not limited to, Schizophyllan (SPG) Zymosan, Curdlan AL, Scleroglucan, or Laminarin. ≪ RTI ID = 0.0 >

상기 시조필란(Schizophyllan, SPG)은 치마버섯(Schizophyllum commune) 유래 가용성 형태(soluble form)의 β-글루칸(β-glucan)이며, 중성 용액(neutral solution)에서 3중 나선(triple helix)을 형성하는 다당류(polysaccharide)이다. The Schizophyllan (SPG) is a soluble form of β-glucan derived from Schizophyllum commune and forms a triple helix in a neutral solution. It is a polysaccharide.

한편, 자이모산(Zymosan)은 사카로미세스 세레비지에(S. cerevisiae)의 세포벽(cell wall) 유래 β-글루칸이며, 커들란 AL(Curdlan AL)은 알칼리제니스 페칼리스(Alcaligenes faecalis ) 유래 β-글루칸이며, 스클로글루칸(Scleroglucan)은 스크레로티움 롤프시(Sclerotium rolfsii) 유래 β-글루칸이며, 라미나린(Laminarin)은 라미나리아 디지타타(Laminaria digitata)유래 β-글루칸 일 수 있다.On the other hand, Zymosan is β-glucan derived from the cell wall of S. cerevisiae , Curdlan AL is β-glucan derived from Alcaligenes faecalis , Glucan, and Scleroglucan is Sclerotium < RTI ID = 0.0 > glutamic acid, and laminarin may be? -glucan derived from Laminaria digitata .

본 발명에서 용어 "펩타이드(peptide)"는 c-Src 유래의 SH3 펩타이드로, c-Src의 아미노산 91 내지 108(서열번호 1: ALYDYESRTETDLSFKKG)과, 121 내지 140(서열번호 2: WWLAHSLSTGQTGYIPSNYV)으로 구성된다.The term "peptide" in the present invention is an SH3 peptide derived from c-Src and consists of amino acids 91 to 108 (SEQ ID NO: 1: ALYDYESRTETDLSFKKG) and 121 to 140 (SEQ ID NO: 2: WWLAHSLSTGQTGYIPSNYV) of c-Src .

본 발명의 일실시예에 있어서, 상기 펩타이드는 각각 c-Src-SH-1 및 c-Src-SH2로 칭하였으며, c-Src-SH-1 또는 c-Src-SH2 단독으로 사용하거나, c-Src-SH-1 및 c-Src-SH2가 혼합된 형태로 사용하였다.In one embodiment of the invention, the peptides are referred to as c-Src-SH-1 and c-Src-SH2, respectively, and either c-Src-SH-1 or c- Src-SH-1 and c-Src-SH2 were mixed.

상기 펩타이드는 필요에 따라 N 말단에 형광물질을 표지할 수 있으며, 형광물질은 이에 제한되지는 않으나, TAMRA(카르복시테트라메틸로다민), 알렉사 플루오르 647, TMR(테트라메틸로다민), 로다민그린(Rhodamine Green), 알렉사 플루오르(Alexa fluor) 488, YOYO1, 에보블루(EVOblue) 50, 피코에리스린(phycoerythrin, PE), 텍사스 레드(Texas Red, TR), 로다민(tetramethylrhodamine isothiocyanate, TRITC), 플루오레신카복실산(fluorescein carboxylic acid, FCA), 플루오레신 티오우레아(fluorescein thiourea, FTH), 7-아세톡시쿠마린(acethocycoumarin)-3-1, 플루오레신-5-1, 플루오레신-6-1, 2',7'-디클로로플루오레신(dichlorofluorescein)-5-1, 2',7'-디클로로플루오레신-6-1, 디하이드로테트라메틸로사민(dehydrotetramethylosamine)-4-1, 테트라메틸로다민(tetramethylrhodamine)-5-1, 및 테트라메틸로다민-6-1로 이루어진 군으로부터 선택된 것일 수 있다. The peptide may be labeled with a fluorescent substance at the N terminus, if necessary. The fluorescent substance may include, but not limited to, TAMRA (carboxytetramethylrhodamine), Alexafluor 647, TMR (tetramethylrhodamine), rhodamine green Rhodamine Green, Alexa fluor 488, YOYO1, EVOblue 50, phycoerythrin (PE), Texas Red, TR, tetramethylrhodamine isothiocyanate (TRITC) Fluorescein carboxylic acid (FCA), fluorescein thiourea (FTH), acethocycoumarin-3-1, fluorescein-5-1, fluorescein-6- 1, 2 ', 7'-dichlorofluorescein -5-1, 2', 7'-dichlorofluorescein-6-1, dehydrotetramethylosamine -4-1, tetra Tetramethylrhodamine-5-1, and tetramethylrhodamine-6-1. There.

상기 베타-1,3-글루칸인 시조필란(Schizophyllan, SPG)과, 상기 서열번호 1 및/또는 서열번호 2의 아미노산 서열로 구성된 c-Src 유래의 SH3 펩타이드는 화학적 결합에 의해 서로 결합되어 있는 것일 수 있다. The SH3 peptide derived from Schizophyllan (SPG), which is the beta-1,3-glucan, and the c-Src comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and / or SEQ ID NO: 2, .

상기 화학적 결합은 이에 제한되지는 않으나, 공유결합 또는 비공유결합일 수 있으며, 상기 비공유결합은 수소결합, 정전기(이온) 결합 및/또는 반데르발스 인력을 비롯한 임의의 비공유결합력을 통해 매개될 수 있다.The chemical bond may be covalent bond or noncovalent bond, but not limited thereto, and the noncovalent bond may be mediated through any noncovalent bonding force including hydrogen bonding, electrostatic (ion) bonding and / or van der Waals attraction .

한편, 상기 베타-1,3-글루칸인 시조필란(Schizophyllan, SPG)과, 상기 서열번호 1 및/또는 서열번호 2의 아미노산 서열로 구성된 c-Src 유래의 SH3 펩타이드는 직접적으로 공유결합된 복합체일 수 있으며, 링커를 통해 간접적으로 공유결합된 복합체일 수 있다.On the other hand, the SH3 peptide derived from c-Src consisting of the above-mentioned beta-1,3-glucan, Schizophyllan (SPG) and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and / or SEQ ID NO: 2 is a covalently bonded complex And may be a covalently bonded complex indirectly through a linker.

본 발명의 일실시예에 있어서, 숙신산 무수물(succinic anhydride)을 첨가하여 시조필란(Schizophyllan, SPG)의 히드록시기를 카르복실기로 변환시켜, 시조필란(Schizophyllan, SPG) 말단에 카르복실기(-COOH기)를 도입하고, 상기 시조필란(SPG)의 카르복실기(-COOH기)와 서열번호 1 및/또는 서열번호 2의 아미노산 서열로 구성된 c-Src 유래의 SH3 펩타이드의 아민기를 공유결합시켜, 베타글루칸-펩타이드 복합체를 형성하였다(도 8).In one embodiment of the present invention, succinic anhydride is added to convert a hydroxyl group of Schizophyllan (SPG) into a carboxyl group to introduce a carboxyl group (-COOH group) at the terminal of Schizophyllan (SPG) And the amino group of the SH3 peptide derived from the c-Src peptide consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and / or SEQ ID NO: 2 is covalently bonded to the carboxyl group (-COOH group) of the above-mentioned zypho-pyran (SPG) to form a betaglucan- (Fig. 8).

상기 공유결합은 가교제(crosslinker)를 첨가하여 형성할 수 있으며, 이에 제한되지는 않으나, 가교제로는 1-에틸-3-(3-디메틸아미노프로필)카보디이미드(EDC; 1-Ethyl-3-(3-dimethyl aminopropyl) carbodiimide), N-하이드록시숙신이미드(NHS; N-Hydroxy succinimide), 글루타르알데히드, NHS 에스터, 말레이미드, 피리딜 디설파이드, 하이드라지드, 및 알콕시 아민류 등을 사용할 수 있다.The covalent bond may be formed by adding a crosslinker. Examples of the crosslinking agent include 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide (EDC; (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide, N-Hydroxy succinimide (NHS), glutaraldehyde, NHS ester, maleimide, pyridyl disulfide, hydrazide and alkoxy amines have.

다른 하나의 양태로서, 본 발명은 베타글루칸-펩타이드 복합체를 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다.In another aspect, the present invention provides a pharmaceutical composition for the prophylaxis or treatment of an inflammatory disease comprising a beta-glucan-peptide complex as an active ingredient.

상기 베타글루칸-펩타이드 복합체는 베타-1,3-글루칸인 시조필란(SPG)과, 서열번호 1 및/또는 서열번호 2의 아미노산 서열로 구성된 c-Src 유래의 SH3 펩타이드가 공유결합되어 있는 형태이며, p47phox를 표적으로 하여, 활성산소(ROS) 생성 및 염증성 사이토카인인 TNF-α, IL-6, IL-1β 또는 IL-18의 생성을 억제할 수 있다.The beta-glucan-peptide complex is a form in which SH3 peptide derived from c-Src comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and / or SEQ ID NO: 2 is covalently bonded to sipofilane (SPG) , p47phox can be targeted to inhibit the production of reactive oxygen species (ROS) and the production of the inflammatory cytokines TNF-a, IL-6, IL-l [beta] or IL-18.

본 발명의 일실시예에 있어서, CLP(cecal ligation procedure)-유도 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis) 및 DSS(dextran sodium sulfate)-유도-궤양성 대장염(ulcerative colitis) 마우스 in vivo 동물 모델에 SPG/C-Src-SH3 펩티드 복합체(SPG/C-Src-SH3 peptide complex)를 처리하면, ROS 및 전염증성 사이토카인의 과도한 생성을 조절하여 현저하게 사망률을 감소시키고, 뿐만 아니라 마우스 동물 모델에서의 병리학적 반응 또한 개선시킴을 확인하였다(도 11 및 도 12).In one embodiment of the present invention, CLP (cecal ligation procedure) -based polymicrobial sepsis and DSS (dextran sodium sulfate) -induced ulcerative colitis mice are administered in vivo Treatment of the animal model with SPG / C-Src-SH3 peptide complex (SPG / C-Src-SH3 peptide complex) significantly reduces mortality by modulating the excessive production of ROS and proinflammatory cytokines, And also improved the pathological response in the model (FIGS. 11 and 12).

이에, 본 발명에 따른 SPG/C-Src-SH3 펩티드 복합체를 포함하는 조성물은 패혈증 및 대장염 동물 모델의 사망률을 감소시키고, ROS 및 염증성 사이토카인의 생성을 현저하게 저해시키는 효과를 갖는 바, 패혈증 및 대장염과 같은 염증성 질환을 예방 또는 치료할 수 있다. Accordingly, the composition comprising the SPG / C-Src-SH3 peptide complex according to the present invention has an effect of reducing the mortality of sepsis and colitis animal models and significantly inhibiting the production of ROS and inflammatory cytokines, Inflammatory diseases such as colitis can be prevented or treated.

구체적으로, 상기 염증성 질환은 이에 제한되지는 않으나, 패혈증(sepsis), 패혈성 쇼크, 염증성 장질환(Inflammatory bowel disease, IBD), 복막염, 신장염, 급성 기관지염, 만성 기관지염, 골관절염, 장질환 척추염, 만성 폐쇄성 폐질환(chronic obstructive pulmonary disease, COPD), 류마티스성 관절염(rheumatoid arthritis), 급성 폐손상(acute lung injury) 및 기관지 폐 형성장애(broncho-pulmonary dysplasia)로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있다.Specifically, the inflammatory diseases include, but are not limited to, sepsis, septic shock, inflammatory bowel disease (IBD), peritonitis, nephritis, acute bronchitis, chronic bronchitis, osteoarthritis, Chronic obstructive pulmonary disease (COPD), rheumatoid arthritis, acute lung injury, and broncho-pulmonary dysplasia.

한편, 이에 제한되지는 않으나, 상기 염증성 장질환(IBD)은 궤양성 대장염(Ulcerative colitis, UC) 또는 크론씨병(Crohns disease)일 수 있다.The inflammatory bowel disease (IBD) may be Ulcerative colitis (UC) or Crohns disease, although not limited thereto.

본 발명에서 용어 "예방"이란, 본 발명의 약학적 조성물의 투여로 염증성 질환의 발병을 억제 또는 지연시키는 모든 행위를 의미하며, "치료"란, 본 발명의 약학적 조성물의 투여로 인해 이미 유발된 염증성 질환의 증세가 호전되거나 이롭게 되는 모든 행위를 의미한다.The term "prevention" in the present invention means all the actions of inhibiting or delaying the onset of an inflammatory disease by the administration of the pharmaceutical composition of the present invention. By "treatment" Of all inflammatory diseases are treated or benefited.

본 발명에 따른 상기 약학적 조성물은, 약학조성물의 제조에 통상적으로 사용하는 적절한 담체, 부형제 또는 희석제를 더 포함할 수 있다. The pharmaceutical compositions according to the present invention may further comprise suitable carriers, excipients or diluents conventionally used in the production of pharmaceutical compositions.

본 발명에서 사용가능한 담체, 부형제 또는 희석제로는, 락토즈, 덱스트로즈, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 자일리톨, 에리스리톨, 말티톨, 전분, 아카시아 고무, 알지네이트, 젤라틴, 칼슘 포스페이트, 칼슘 실리케이트, 셀룰로즈, 메틸 셀룰로즈, 미정질 셀룰로스, 폴리비닐 피롤리돈, 물, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트 또는 광물유 등을 들 수 있다.Examples of the carrier, excipient or diluent which can be used in the present invention include lactose, dextrose, sucrose, sorbitol, mannitol, xylitol, erythritol, maltitol, starch, acacia rubber, alginate, gelatin, calcium phosphate, calcium silicate, Methylcellulose, microcrystalline cellulose, polyvinylpyrrolidone, water, methylhydroxybenzoate, propylhydroxybenzoate, talc, magnesium stearate or mineral oil.

상기 조성물은, 각각 통상의 방법에 따라 산제, 과립제, 정제, 캡슐제, 현탁액, 에멀젼, 시럽, 에어로졸 등의 경구형 제형, 외용제, 좌제 및 멸균 주사용액의 형태로 제형화하여 사용될 수 있다.The composition may be formulated in the form of powders, granules, tablets, capsules, suspensions, emulsions, syrups, aerosols and the like, oral preparations, suppositories and sterilized injection solutions according to a conventional method.

제제화할 경우에는 보통 사용하는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제된다. 경구투여를 위한 고형제제에는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등이 포함되며, 이러한 고형제제는 상기 화합물은 적어도 하나 이상의 부형제, 예를 들면, 전분, 칼슘카보네이트(calcium carbonate), 수크로스(sucrose) 또는 락토오스(lactose), 젤라틴 등을 섞어 조제한다. In the case of formulation, a diluent or excipient such as a filler, an extender, a binder, a wetting agent, a disintegrant, or a surfactant is usually used. Solid formulations for oral administration include tablets, pills, powders, granules, capsules and the like, which may contain at least one excipient such as starch, calcium carbonate, sucrose sucrose), lactose, gelatin, and the like.

또한, 단순한 부형제 이외에 마그네슘 스테아레이트, 탈크 같은 윤활제들도 사용된다. 경구를 위한 액상 제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제 등이 해당되는데 흔히 사용되는 단순희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. In addition to simple excipients, lubricants such as magnesium stearate and talc may also be used. Examples of the liquid preparation for oral use include suspensions, solutions, emulsions, and syrups. In addition to water and liquid paraffin, simple diluents commonly used, various excipients such as wetting agents, sweeteners, fragrances, preservatives and the like may be included .

비경구 투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조 제제, 좌제가 포함된다. 비수성용제, 현탁제로는 프로필렌글리콜(propylene glycol), 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(witepsol), 마크로골, 트윈(tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세로제라틴 등이 사용될 수 있다.Formulations for parenteral administration include sterilized aqueous solutions, non-aqueous solutions, suspensions, emulsions, freeze-dried preparations, and suppositories. Examples of the suspending agent include propylene glycol, polyethylene glycol, vegetable oil such as olive oil, injectable ester such as ethyl oleate, and the like. Examples of suppository bases include witepsol, macrogol, tween 61, cacao butter, laurin, glycerogelatin, and the like.

상기 조성물의 사용량은 환자의 나이, 성별, 체중에 따라 달라질 수 있으나, 1 내지 100 mg/㎏의 양을 일일 1회 내지 수회 투여할 수 있다.  The amount of the composition to be used may vary depending on the age, sex, and body weight of the patient, but may be administered in an amount of 1 to 100 mg / kg once to several times per day.

또한, 이러한 조성물의 투여량은 투여경로, 질병의 정도, 성별, 체중, 나이 등에 따라서 증감될 수 있다. 따라서, 상기 투여량은 어떠한 면으로든 본 발명의 범위를 한정하는 것은 아니다.In addition, the dosage of such a composition may be increased or decreased depending on the route of administration, degree of disease, sex, weight, age, and the like. Thus, the dosage amounts are not intended to limit the scope of the invention in any manner.

상기 조성물은 쥐, 생쥐, 가축, 인간 등의 포유동물에 다양한 경로로 투여될 수 있다. 투여의 모든 방식은 예상될 수 있는데, 예를 들면, 경구, 직장 또는 정맥, 근육, 피하, 자궁내 경막 또는 뇌혈관내(intracerebroventricular)주사에 의해 투여될 수 있다.The composition can be administered to mammals such as rats, mice, livestock, humans, and the like in a variety of routes. All modes of administration may be expected, for example, by oral, rectal or intravenous, intramuscular, subcutaneous, intra-uterine or intracerebroventricular injections.

또 다른 하나의 양태로서, 본 발명은 다음을 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 베타글루칸-펩타이드 복합체의 제조방법을 제공한다:In yet another aspect, the invention provides a method of preparing a beta glucan-peptide complex for the prevention or treatment of an inflammatory disease, comprising:

(a) 유기용매에 베타-1,3-글루칸(β-1,3-glucan)을 용해시키고, 고리형 무수물(cyclic anhydride)을 첨가하여 베타-1,3-글루칸의 히드록시기를 카르복실기로 변환시켜, 베타-1,3-글루칸 말단에 카르복실기(-COOH기)를 도입하는 단계; 및(a) dissolving beta-1,3-glucan in an organic solvent and adding a cyclic anhydride to convert the hydroxy group of beta-1,3-glucan to a carboxyl group , Introducing a carboxyl group (-COOH group) at the beta-1,3-glucan terminal; And

(b) 단계 (a)의 베타-1,3-글루칸의 카르복실기(-COOH기)와 서열번호 1 및/또는 2의 아미노산 서열로 구성된 펩타이드의 아민기를 결합시켜, 베타글루칸-펩타이드 복합체를 형성하는 단계.(b) binding an amino group of a peptide consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and / or 2 with the carboxyl group (-COOH group) of the beta-1,3-glucan of step (a) to form a betaglucan- step.

본 발명의 일실시예에 있어서, 치마버섯(Schizophyllum commune) 유래 베타-1,3-글루칸인 시조필란(Schizophyllan, SPG)을 유기용매로 용해시키고, 고리형 무수물(cyclic anhydride)을 첨가하여 카르복실기(-COOH기) 말단을 갖는 시조필란(SPG)을 합성하고, 상기 카르복실기 말단을 갖는 시조필란(SPG)과, 서열번호 1 및/또는 서열번호 2의 아미노산 서열로 구성된 c-Src 유래의 SH3 펩타이드의 아민기를 공유결합시킴에 따라 베타글루칸-펩타이드 복합체, 즉, SPG/C-Src-SH3 펩티드 복합체(SPG/C-Src-SH3 peptide complex)를 제조하였다(도 8).In one embodiment of the present invention, Schizophyllan (SPG), a beta-1,3-glucan derived from Schizophyllum commune , is dissolved in an organic solvent and cyclic anhydride is added to form a carboxyl group (SPG) having a carboxyl terminal end and a SH3 peptide derived from c-Src composed of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and / or SEQ ID NO: 2 The SPG / C-Src-SH3 peptide complex (SPG / C-Src-SH3 peptide complex) was prepared by covalently bonding an amine group (FIG.

상기 유기용매는 이에 제한되지는 않으나, 다이메틸설폭사이드(DMSO), 메탄올, 에탄올, 이소프로판올, 부탄올, 에틸렌, 아세톤, 헥산, 에테르, 클로로포름, 에틸아세테이트, 부틸아세테이트, 다이클로로메탄, 피리딘, N,N-다이메틸포름아미드(DMF), 1,3-부틸렌글리콜, 프로필렌글리콜 및 이들의 혼합용매로 구성된 군으로부터 선택되는 것일 수 있다.The organic solvent includes, but is not limited to, dimethylsulfoxide (DMSO), methanol, ethanol, isopropanol, butanol, ethylene, acetone, hexane, ether, chloroform, ethyl acetate, butyl acetate, dichloromethane, pyridine, N-dimethylformamide (DMF), 1,3-butylene glycol, propylene glycol, and mixed solvents thereof.

또한, 상기 고리형 무수물은 이에 제한되지는 않으나, 숙신산 무수물, 말레산 무수물 또는 글루타르산 무수물일 수 있다.The cyclic anhydride may be, but is not limited to, succinic anhydride, maleic anhydride or glutaric anhydride.

상기 c-Src 유래의 SH3 펩타이드의 아미노산 서열은, c-Src의 아미노산 91 내지 108(서열번호 1: ALYDYESRTETDLSFKKG)과, 121 내지 140(서열번호 2: WWLAHSLSTGQTGYIPSNYV)로 구성된다.The amino acid sequence of the SH3 peptide derived from c-Src is composed of amino acids 91 to 108 (SEQ ID NO: 1: ALYDYESRTETDLSFKKG) and 121 to 140 (SEQ ID NO: 2: WWLAHSLSTGQTGYIPSNYV) of c-Src.

상기 SPG/C-Src-SH3 펩티드 복합체(SPG/C-Src-SH3 peptide complex)는 SPG-c-Src-ALYDYESRTETDLSFKKG(서열번호 1) 및 SPG-c-Src-WWLAHSLSTGQTGYIPSNYV(서열번호 2)로 구성된 군으로부터 하나 이상 선택될 수 있다.(SEQ ID NO: 1) and SPG-c-Src-WWLAHSLSTGQTGYIPSNYV (SEQ ID NO: 2) in the SPG / C-Src-SH3 peptide complex Or more.

한편, 상기 단계 (b)는 1-에틸-3-(3-디메틸아미노프로필)카보디이미드(EDC; 1-Ethyl-3-(3-dimethyl aminopropyl) carbodiimide) 및 N-하이드록시숙신이미드(NHS; N-Hydroxy succinimide) 사이의 반응에 의해 수행되는 것일 수 있다.On the other hand, the step (b) may be carried out in the presence of 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide (EDC) and N-hydroxysuccinimide NHS (N-Hydroxy succinimide).

다른 식으로 정의되지 않는 한, 본 명세서에서 사용된 모든 기술적 및 과학적 용어들은 본 발명이 속하는 기술분야에서 숙련된 전문가에 의해서 통상적으로 이해되는 것과 동일한 의미를 갖는다. 일반적으로, 본 명세서에서 사용된 명명법은 본 기술분야에서 잘 알려져 있고 통상적으로 사용되는 것이다. Unless otherwise defined, all technical and scientific terms used herein have the same meaning as commonly understood by one of ordinary skill in the art to which this invention belongs. In general, the nomenclature used herein is well known and commonly used in the art.

본 발명에 따른 베타글루칸-펩타이드 복합체는 p47phox를 표적으로 하여, 활성산소(ROS) 및 염증성 사이토카인 생성을 현저하게 저해하므로, 패혈증 및 대장염과 같은 ROS와 관련된 치명적인 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물로 유용하게 사용될 수 있다. 한편, p47phox를 표적으로하는 새로운 펩타이드 기반 약제 개발에도 유용하게 활용될 수 있다.The betaglucan-peptide complex according to the present invention targets p47phox and significantly inhibits the production of reactive oxygen species (ROS) and inflammatory cytokines, and thus is useful as a pharmaceutical for the prevention or treatment of a fatal inflammatory disease associated with ROS such as sepsis and colitis May be useful as a composition. On the other hand, it can be useful for the development of new peptide-based drugs targeting p47phox.

도 1은 본 발명의 일실시예에 따라 시조필란(Schizophyllan, SPG)이 p47phox 활성화의 억제를 통해 TLR4-ROS 신호를 차단함에 대한 결과를 나타낸 도이다. 다양한 농도(0, 1, 10 또는 100 ㎍/㎖)의 SPG로 1시간 동안 전처리(pretreatment)한 후, 세포를 (A) 30분, (B 및 F) 18시간, (C) 1시간, (D) 4시간, (E) 2시간 또는 (G의 우) 15분 동안 LPS(100 ng/㎖)로 자극을 주었다. (A) BMDM(Bone Marrow-derived Macrophage)의 NADPH oxidase(NOX) 활성은 SPG(0, 1, 10, 100 ㎍/㎖) 존재 하에서 LPS로 자극하여 확인하였다(좌). BMDM의 O2-와 H2O2 생성을 각각 검출하기 위해, DHE와 CM-H2DCFDA 형광 강도를 확인하였다(우). (B) 배양 상층액(supernatant)을 수집하고, ELISA assay(enzyme-linked immunosorbent assay)를 수행하여 사이토카인(cytokine) 생성 정도를 확인하였다. (C, F 및 G) BMDM을 수확(harvest)한 후, 인산화된 형태의 MAPK(p42/44, p38 및 SAPK/JNK)와, 인산화된 총 형태의 IκB-α(C), gp91phox, p22phox, p47phox 및 p67phox(F), p47phox의 인산화된 형태(S304, S345, S359와 S370)(G)는 면역 블롯(IB)을 수행하여 확인하였으며, 액틴(actin)은 내재적 대조군으로 사용하였다. (D) NF-κB 리포터 플라스미드(NF-κB reporter plasmid)와 표준화(normalization)를 위한 pRL-TK 레닐라 플라스미드(pRL-TK Renilla plasmid)를 RAW264.7 세포에 공-형질주입(co-transfection) 시켰다. 루시퍼라아제 분석(Luciferase assay)를 수행하기 위해, 2일 후, 시조필란(SPG) 존재하에서 세포를 LPS로 자극하였다. (E) 면역 형광 현미경(Immunofluorescence microscopy) 분석법으로 BMDM에서 p65(녹색)를 확인하였으며, 이때 핵은 DNA-삽입 염료(DNA-intercalating dye)인 DAPI(파란색)로 염색되었다.
도 2는 본 발명의 일실시예에 따라 베타-1,3-글루칸(β-1,3-glucan)인 자이모산(Zymosan), 커들란 AL(Curdlan AL), 스클로글루칸(Scleroglucan), 라미나린(Laminarin)이 LPS로 유도된 대식세포(LPS-induced macrophage)에서 NOX(NADPH oxidase) 활성과 염증성 사이토카인(inflammatory cytokines)인 TNF-α, IL-6, IL-10 생성에 미치는 영향에 대한 결과를 나타낸 도이다. 다양한 농도(0, 1, 10 및 100 ㎍/㎖)의 베타-1,3-글루칸(β-1,3-glucan)인 자이모산(Zymosan), 커들란 AL(Curdlan AL), 스클로글루칸(Scleroglucan), 라미나린(Laminarin)을 BMDM(Bone Marrow-derived Macrophage)에 (A) 1시간 또는 (B) 18시간 동안 전처리한 후, 30분 동안 LPS(100 ng/㎖)로 자극을 주었다. (A) BMDM(Bone Marrow-derived Macrophage)의 NADPH oxidase(NOX) 활성은 상기 베타-1,3-글루칸(0, 1, 10, 100 ㎍/㎖) 존재 하에서 LPS로 자극하여 확인하였다. (B) 배양 상층액(supernatant)을 수집하고, ELISA assay(enzyme-linked immunosorbent assay)를 수행하여 사이토카인(cytokine) 생성 정도를 확인하였다.
도 3은 본 발명의 일실시예에 따라 p47phox가 C-Src와 상호작용(interaction)하고 NOX(NADPH oxidase) 조립(assembly)을 조절함에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) p47phox 복합체(p47phox complex)는 시조필란(Schizophyllan, SPG; 10 ㎍/㎖)을 1시간 동안 처리하고 LPS로 30분 동안 자극한, 플래그(Flag)-p47phox-발현(expressed) THP-1 세포로부터 정제되었다. 아가로스 비드(agarose bead)가 결합된 αFlag 항체를 이용하여 상기 p47phox 복합체(p47phox complex)의 면역침강법(immunoprecipitation; IP) 분석을 수행하고, 질량 분석법(Mass spectrometry analysis)을 통해 분석하였다. (B 및 C) 시조필란(Schizophyllan, SPG; 10 ㎍/㎖)을 전처리(pretreatment)한 THP-1 세포에 LPS(100 ng/㎖)를 처리하여 15 내지 30분 동안 자극을 주었다. 상기 세포를 수확(harvest)한 후, p47phox에 대한 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, C-Src 및 p47phox의 인산화된 형태(S304, S345, S359 및 S370)(B) 또는 gp91phox, p22phox, p47phox 및 p67phox(C)는 면역 블롯(IB)을 수행하여 확인하였다. (D) 결합 맵핑(binding mapping)으로 p47phox 및 C-Src의 구조를 개략적으로 나타내었다(위). 293T 세포에 V5-C-Src 또는 이의 돌연변이체(ΔSH2-KD, ΔKD)와 함께, 대조군 벡터(control vector)인 플래그(flag)-p47phox 또는 47phox의 절단된(truncated) 돌연변이체(ΔSH3-PRR, ΔAIR-PRR, ΔPRR)를 공-형질주입(co-transfection) 시켰다. 상기 세포는 V5 또는 플래그(flag)에 대한 항체로 공-면역침강법(co-immunoprecipitation; co-IP)을 수행한 후, 플래그(flag) 또는 V5에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다(아래, 왼쪽). 293T 세포에 AU1-p67phox 또는 AU1-p40phox와 함께, V5-C-Src의 양을 증가시키면서 플래그(flag)-p47phox를 공-형질주입(co-transfection) 시키고, 플래그(flag)에 대한 항체로 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행한 후, 플래그(Flag), AU1, V5에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다(아래, 오른쪽). 액틴(actin)은 내재적 대조군으로 사용하였다.
도 4는 본 발명의 일실시예에 따라 C-Src가 p47phox와 상호작용하고 p67phox 및 p40phox와의 결합은 저해함에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) p47phox 및 C-Src 구조의 개략도를 나타내었다. (B) 293T 세포에 AU1-p67phox 또는 AU1-p40phox와 함께, V5-C-Src의 양을 증가시키면서 플래그(flag)-p47phox를 공-형질주입(co-transfection) 시키고, AU1에 대한 항체로 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하였다. 이후, 플래그(Flag), AU1, V5에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였으며, 액틴(actin)은 내재적 대조군으로 사용하였다.
도 5는 본 발명의 일실시예에 따라 시조필란(Schizophyllan, SPG) 처리에 따른 전신성 패혈증(systemic sepsis) 및 대장염(colitis)의 예방 또는 치료 효과에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) 시조필란(SPG) 또는, 대조군으로서 비히클(Vehicle)을 처리한 CLP 유도 동물 모델 구축을 위한 개략도이다(위). 마우스 당 20 ㎎/㎏의 시조필란(SPG)을 경구 투여로 처리한 CLP-유도 마우스의 생존율을 7일 동안 모니터링 하였으며, 그룹당 10마리의 마우스에 대해 사망률을 측정하였다(아래). (B) 그룹당 5마리의 마우스에서 CLP 유도 후 18시간에 수득한 폐(lung)와 비장(spleen)의 대표적인 H&E(Hematoxylin-eosin) 염색 결과(왼쪽)를 나타낸 것으로, 조직 병리학 점수는 폐 절편(section)의 H&E 염색 결과로부터 도출하였다(오른쪽). (C) 시조필란(SPG) 또는, 대조군으로서 비히클(Vehicle)을 처리한 5% DSS-유도 대장염 동물 모델 구축을 위한 개략도이다(위). 시조필란(SPG) 또는 비히클(Vehicle)을 처리한 DSS-유도 마우스의 생존율을 25일 동안 모니터링 하였다. 대조군(control) 마우스와 비교한 통계적 차이로 표시하였다(log-rank test). (D) 시조필란(SPG) 또는 비히클(Vehicle)을 처리한 DSS-유도 마우스의 체중 변화를 나타내었다. (E) 체중 감소, 대변 농도, 결장 출혈 등의 제안된 대장염 동물 모델의 임상적 매개 변수를 그래프화하여 나타내었다. (F) 그룹당 5마리의 마우스에서 DSS 처리 후 6일째 수득한 결장(colon)의 대표적인 H&E(Hematoxylin-eosin) 염색 결과(왼쪽)를 나타낸 것으로, 조직 병리학 점수는 중간(middle) 및 말단(distal) 부위의 결장 절편(section)의 H&E 염색 결과로부터 도출하였다(오른쪽).
도 6은 본 발명의 일실시예에 따라 시조필란(Schizophyllan, SPG) 처리에 따른 전신성 패혈증(systemic sepsis) 및 대장염(colitis)의 예방 또는 치료 효과에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) 마우스 당 20 ㎎/㎏의 시조필란(SPG)을 경구 투여로 처리한 마우스 또는 대조군으로서 비히클(vehicle)을 처리한 마우스의 체중을 4주 동안 측정하여 나타내었다(왼쪽). 또한, 시조필란(SPG) 또는 대조군으로서 비히클(vehicle)을 처리하고 2주째 수득한 혈청(serum)에서 사이토카인 분비량을 측정하여 나타내었다(오른쪽). (B) 시조필란(SPG) 또는 대조군으로서 비히클(vehicle)을 처리한 CLP-유도 마우스의 비장(spleen)의 형태적 차이를 비교하여 나타내었다. 여기에서, UN은 아무것도 처리하지 않은 테스트 군이다. (C) 시조필란(SPG) 또는 비히클(Vehicle)을 처리한 DSS-유도 마우스의 생존율을 25일 동안 관찰한 결과(왼쪽)와 체중 변화(오른쪽)를 나타내었다. (D) 시조필란(SPG) 또는 대조군으로서 비히클(vehicle)을 처리한 DSS-유도 마우스의 결장(colon)의 형태적 차이(왼쪽) 및 길이 차이(오른쪽)를 나타내었다.
도 7은 본 발명의 일실시예에 따라 SPG와 결합된 펩타이드의 합성 결과를 나타낸 도이다. (A) C-Src, p67phox 및 p47phox의 서열 얼라인먼트(sequence alignment)를 나타낸 도로, 박스는 본 발명의 SH3-1 펩타이드와 SH3-2 펩타이드를 나타낸다. (B) SPG(Schizophyllan), SGP/SA(Schizophyllan/succinic anhydride), SGP/SA/NHS(Schizophyllan/succinic anhydride/1-Ethyl-3(3-dimethyl aminopropyl) carbodiimide(EDC) 및 N-Hydroxyl succinimide(NHS)) 및 SPG/SA/NHS/SH3(Schizophyllan/succinic anhydride/1-Ethyl-3(3-dimethyl aminopropyl) carbodiimide(EDC) 및 N-Hydroxyl succinimide(NHS)/SH3 peptide; 즉, SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체)의 FR-IR 스펙트럼 결과를 나타내었다. (C) SPG(Schizophyllan), SGP/SA(Schizophyllan/succinic anhydride) 및 SPG/SA/NHS/SH3(Schizophyllan/succinic anhydride/1-Ethyl-3(3-dimethyl aminopropyl) carbodiimide(EDC) 및 N-Hydroxyl succinimide(NHS)/SH3 peptide; 즉, SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체)의 1H NMR 스펙트럼 결과를 나타내었다. (D) 펩타이드의 흡광도(absorbance) 스펙트럼을 나타내었다. 여기에서, std는 standard의 약어이며, SH3-1 펩타이드 또는 SH-2 펩타이드/SPG는, SPG와 결합된 SH3 펩타이드 복합체(SH3 peptide conjugated SPG)이며, SPG는 DMSO에 1 ㎎/㎖의 농도로 용해되어 있는 시조필란(Schizohpyllan)이다. (E) TAMRA로 표지된 TAMRA-C-Src-SH3 펩타이드에 대한 Raw264.7 세포의 면역형광(immunofluorescence) 현미경 사진을 나타내었다. Raw264.7 세포에서의 면역형광은 C-Src-SH3를 TAMRA로 표지함으로써 수행하였다. Raw264.7 세포에 SPG/TAMRA-C-Src-SH3 펩타이드 복합체(10 ㎍/㎖)를 1시간 동안 처리하고, SPG/TAMRA-C-Src-SH3 펩타이드 복합체의 섭식(intake) 결과를 나타내었다.
도 8은 본 발명의 일실시예에 따라 베타-1,3-글루칸(β-1,3-glucan)인 SPG(Schizohpyllan)와 SH3 펩타이드(peptide)를 연결하여 베타글루칸-펩타이드 복합체를 제조하는 과정을 모식적으로 나타낸 도이다. 구체적으로 무수물(anhydride)을 이용한 교차결합(cross linking) 방법에 의한 SPG와 기능성 펩타이드의 생물학적 결합에 대해 도식화하여 나타내었다.
도 9는 본 발명의 일실시예에 따라 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체가 TLR4-ROS 신호전달(signaling)을 차단함에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) 293T 세포에 AU1-p67phox(왼쪽) 또는 AU1-p40phox(오른쪽)와 함께, 12시간 동안 플래그(flag)-p47phox를 공-형질주입(co-transfection) 시키고, 농도별(1, 5, 10 ㎍/㎖)로 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드 복합체와, SPG-SH3-1 펩타이드 복합체, SPG-SH3-2 펩타이드 복합체, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 6시간 동안 처리하였다. 이후 플래그(flag)에 대한 항체로 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행한 후, 플래그(Flag), AU1에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 액틴(actin)은 내재적 대조군으로 사용하였다. (B) 플래그(Flag)-p47phox-발현 THP-1 세포(THP-1-Flag-p47phox)에 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드 복합체와, SPG-SH3-1 펩타이드 복합체, SPG-SH3-2 펩타이드 복합체, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 1시간 동안 전처리한 후, LPS(100 ng/㎖)로 30분 동안 자극을 주었다. 이후, 세포를 수확(harvest)하여 플래그(flag)에 대한 항체로 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, p67phox, p40phox, p22phox, gp91phox 또는 플래그(Flag)에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 액틴(actin)은 내재적 대조군으로 사용하였다. (C) 플래그(Flag)-p47phox-발현 Raw264.7 세포(Raw264.7-Flag-p47phox)에 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드 복합체와, SPG-SH3-1 펩타이드 복합체, SPG-SH3-2 펩타이드 복합체, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 처리하고, LPS(100 ng/㎖)로 자극을 준 후, NOX(NADPH oxidase) 활성을 측정하여 나타내었다. (D) NF-κB 리포터 플라스미드(NF-κB reporter plasmid)와 표준화(normalization)를 위한 pRL-TK 레닐라 플라스미드(pRL-TK Renilla plasmid)를 플래그(Flag)-p47phox-발현 Raw264.7 세포(Raw264.7-Flag-p47phox)에 공-형질주입(co-transfection) 시켰다. 2일 후, 상기 세포에 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드 복합체와, SPG-SH3-1 펩타이드 복합체, SPG-SH3-2 펩타이드 복합체, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 처리하고, LPS로 자극을 준 후, 루시퍼라아제 어세이(luciferase assay)를 수행하여 NK-κB 활성을 측정하여 나타내었다. (E) 플래그(Flag)-p47phox-발현 Raw264.7 세포(Raw264.7-Flag-p47phox)에 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드 복합체와, SPG-SH3-1 펩타이드 복합체, SPG-SH3-2 펩타이드 복합체, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 1시간 동안 전처리한 후, 18시간 동안 LPS로 자극을 주었다. 이후 배양 상층액을 수집(harvest)하고 효소면역측정법(ELISA)을 수행하여 사이토카인 분비량을 측정하여 나타내었다.
도 10은 본 발명의 일실시예에 따라 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체가 TLR(Toll-like receptor) 및 NLRP3 염증조절복합체-매개-NOX 조립(NLRP3 inflammasome-mediated NOX assembly)과 ROS-매개 전-염증성 신호(ROS mediated pro-inflammatory signaling)를 강하게 억제함에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) Raw264.7과 THP-1 세포에 농도별(1, 5, 10 ㎍/㎖)로 SPG-SH3-1 펩타이드 복합체, SPG-SH3-2 펩타이드 복합체, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 72시간 동안 처리하고 배양한 후, MTT assay를 수행하여 세포 생존율을 측정하여 나타내었다. (B) 293T 세포에 AU1-p67phox과 함께, 12시간 동안 플래그(flag)-p47phox를 공-형질주입(co-transfection) 시키고, 농도별(1, 5, 10 ㎍/㎖)로 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드 복합체와, SPG-SH3-1 펩타이드 복합체, SPG-SH3-2 펩타이드 복합체, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 6시간 동안 처리하였다. 이후 플래그(flag)에 대한 항체로 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행한 후, 플래그(Flag), AU1에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 액틴(actin)은 내재적 대조군으로 사용하였다. (C) 플래그(Flag)-p47phox-발현 Raw264.7 세포(Raw264.7-Flag-p47phox)에 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드 복합체와, SPG-SH3-1 펩타이드 복합체, SPG-SH3-2 펩타이드 복합체, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 1시간 동안 전처리한 후, LPS(100 ng/㎖)로 30분 동안 자극을 주었다. 이후, 세포를 수확(harvest)하여 플래그(flag)에 대한 항체로 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, p67phox, p40phox, p22phox, gp91phox 또는 플래그(Flag)에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 액틴(actin)은 내재적 대조군으로 사용하였다. (D) Raw264.7 세포에 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드 복합체와, SPG-SH3-1 펩타이드 복합체, SPG-SH3-2 펩타이드 복합체, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 처리하고, LPS(100 ng/㎖)로 자극을 준 후, NOX(NADPH oxidase) 활성을 측정하여 나타내었다. (E) LPS(100 ng/㎖)로 4시간 동안 자극을 준, 플래그(Flag)-p47phox-발현 J774A.1 세포(LPS-primed J774A.1-Flag-p47phox) 에 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드 복합체와, SPG-SH3-1 펩타이드 복합체, SPG-SH3-2 펩타이드 복합체, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 처리하고 18시간 동안 DSS(Dextran Sulfate Sodium)로 자극을 주었다. 이후 배양 상층액을 수집(harvest)하고 효소면역측정법(ELISA)을 수행하여 사이토카인 분비량을 측정하여 나타내었다.
도 11은 본 발명의 일실시예에 따라 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체 처리에 따른 CLP(cecal ligation and puncture)-유도 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis)의 치료 효과에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드, SPG-SH3-1 펩타이드, SPG-SH3-2 펩타이드, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드와, 음성대조군으로서 PBS를 처리한 CLP 유도 동물 모델 구축을 위한 개략도이다(위). 마우스 당 10 ㎎/㎏의 투여량으로 SPG-SC(Scramble) 펩타이드, SPG-SH3-1 펩타이드, SPG-SH3-2 펩타이드, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드와, 음성대조군으로서 PBS를 복강 주사한 CLP-유도 마우스의 생존율을 7일 동안 관찰하였으며, 그룹당 20마리의 마우스에 대해 사망률을 측정하였다(아래). 대조군(control)인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드를 투여한 CLP-유도 마우스와 비교한 통계적 차이로 표시하였다(log-rank test). (B 내지 G) 비장세포에서의 NOX(NADPH oxidase) 활성(B, n=6), 혈청(serum) 사이토카인 수준(C, n=5), 대표적인 폐와 비장의 H&E 염색(D, n=5), 면역블롯(IB)을 위해 사용한 비장세포(E 및 F), 세균 수 측정(G, n=8)은 CLP-유도 마우스에 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드, SPG-SH3-1 펩타이드, SPG-SH3-2 펩타이드, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드와, 음성대조군으로서 PBS를 처리한 후 20시간째 측정하였다. (D) 그룹당 5마리의 마우스에서 CLP 유도 후 SPG-SC(Scramble) 펩타이드, SPG-SH3-1 펩타이드, SPG-SH3-2 펩타이드, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드와, 음성대조군으로서 PBS를 처리하고 20시간에 수득한 폐(lung)와 비장(spleen)의 대표적인 H&E(Hematoxylin-eosin) 염색 결과(왼쪽)를 나타낸 것으로, 조직 병리학 점수는 폐 절편(section)의 H&E 염색 결과로부터 도출하였다(오른쪽). (E) 비장세포를 이용하여 면역블롯(IB)을 수행하고, 비장세포에서의 iNOS 및 COX-2의 발현 수준을 확인하여 나타내었다. 액틴(actin)은 내재적 대조군으로 사용하였다. (F) 비장세포를 수확(harvest)한 후, p47phox에 대한 항체로 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행한 후, p67phox, p40phox 또는 p47phox에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 액틴(actin)은 내재적 대조군으로 사용하였다. (G) 혈액(왼쪽)과 복막액(가운데) 내의 세균(bacteria) 수를 측정하여 나타내었다. 또한, LB broth 플레이트 상의 E. coli DH5α에 대해SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체의 직접적인 세균 사멸 효과를 측정하였으며, 살아남은 콜로니의 수를 계수하여 나타내었다(오른쪽).
도 12는 본 발명의 일실시예에 따라 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체 처리에 따른 DSS(dextran sodium sulfate)-유도 궤양성 대장염(ulcerative colitis)의 치료 효과에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드, SPG-SH3-1 펩타이드, SPG-SH3-2 펩타이드, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드와, 음성대조군으로서 PBS를 처리한 5% DSS-유도 대장염 동물 모델 구축을 위한 개략도이다(위). 마우스 당 10 ㎎/㎏의 투여량으로 SPG-SC(Scramble) 펩타이드, SPG-SH3-1 펩타이드, SPG-SH3-2 펩타이드, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드와, 음성대조군으로서 PBS를 복강 주사한 CLP-유도 마우스의 생존율을 25일 동안 관찰하였으며, 그룹당 20마리의 마우스에 대해 사망률을 측정하였다(아래). 대조군(control)인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드를 투여한 DSS-유도 마우스와 비교한 통계적 차이로 표시하였다(log-rank test). (B) 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 처리한 DSS-유도 마우스(n=15)의 체중 변화를 측정하여 나타내었다. (C) 체중 감소, 대변 농도, 결장 출혈 등의 제안된 대장염 마우스(n=15) 동물 모델의 임상적 매개 변수를 그래프화하여 나타내었다. (D 내지 I) 결장 파쇄액(colon homogenates)에서의 NOX(NADPH oxidase) 활성(D, n=6), 사이토카인 수준(E, n=5), 결장 파쇄액(colon homogenates)에서의 MPO(myeloperoxidase) 활성(F, n=5), 대표적인 결장의 H&E 염색(G, n=5), 면역블롯(IB)을 위해 사용한 결장 파쇄액(colon homogenates)(H 및 I)은 DSS-유도 대장염 마우스에 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드, SPG-SH3-1 펩타이드, SPG-SH3-2 펩타이드, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드와, 음성대조군으로서 PBS(UN;untreated)를 처리한 후 6일째 측정하였다. (G) 그룹당 5마리의 마우스에서 DSS 유도 후 SPG-SC(Scramble) 펩타이드, SPG-SH3-1 펩타이드, SPG-SH3-2 펩타이드, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드와, 음성대조군으로서 PBS를 처리하고 6일째에 수득한 결장(colon)의 대표적인 H&E(Hematoxylin-eosin) 염색 결과를 나타낸 것으로, 조직 병리학 점수는 결장 절편(section)의 H&E 염색 결과로부터 도출하였다. (H 및 I) 결장 파쇄액(colon homogenates)은 트리클로로아세트산(trichloroacetic acid)으로 침전시켜 단백질을 농축시켰다. 이후, IL-1β, IL-18 및 카스파제-1(Caspase-1) 단백질의 발현 수준을 확인하기 위해 면역블롯(IB)을 수행하였으며(H), p47phox에 대한 항체로 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행한 후, p67phox, p40phox 또는 p47phox에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다(I). 액틴(actin)은 내재적 대조군으로 사용하였다.
FIG. 1 is a graph showing the results of Schizophyllan (SPG) blocking TLR4-ROS signal through inhibition of p47phox activation according to an embodiment of the present invention. After pretreatment with SPG at various concentrations (0, 1, 10, or 100 μg / ml) for 1 hour, the cells were incubated for 30 minutes, (B and F) for 18 hours, (C) D) for 4 hours, (E) 2 hours or (G right) for 15 minutes with LPS (100 ng / ml). (A) NADPH oxidase (NOX) activity of BMDM (bone marrow-derived macrophage) was confirmed by LPS stimulation in the presence of SPG (0, 1, 10, 100 ㎍ / ㎖). DHE and CM-H 2 DCFDA fluorescence intensities were determined to detect O 2- and H 2 O 2 production of BMDM, respectively (right). (B) Culture supernatant was collected and assayed for cytokine production by ELISA assay (enzyme-linked immunosorbent assay). (C, F and G) BMDM and then phosphorylated forms of MAPK (p42 / 44, p38 and SAPK / JNK), phosphorylated total forms of IκB-α (C), gp91phox, p22phox, Phosphorylated forms of p47phox and p67phox (F), p47phox (S304, S345, S359 and S370) (G) were confirmed by immunoblotting (IB) and actin was used as an internal control. (D) Co-transfection of pRL-TK Renilla plasmid (pRL-TK Renilla plasmid) for NF-κB reporter plasmid and normalization into RAW264.7 cells. . To perform the luciferase assay, cells were stimulated with LPS in the presence of zymogen (SPG) two days later. (E) Immunofluorescence microscopy was used to identify p65 (green) in BMDM, where the nuclei were stained with DAPI (blue), a DNA-intercalating dye.
FIG. 2 is a graph showing the results of measurement of the concentration of beta-1, 3-glucan, Zymosan, Curdlan AL, Scleroglucan, Effects of Laminarin on NOX (NADPH oxidase) activity and inflammatory cytokines TNF-α, IL-6 and IL-10 production in LPS-induced macrophages Fig. Zymosan, Curdlan AL, and Scrooglucan, which are beta-1,3-glucan at various concentrations (0, 1, 10 and 100 占 퐂 / Scleroglucan and Laminarin were pretreated with BMDM (Bone Marrow-derived Macrophage) for 1 hour or (B) for 18 hours and stimulated with LPS (100 ng / ml) for 30 minutes. (A) NADPH oxidase (NOX) activity of bone marrow-derived macrophage (BMDM) was confirmed by stimulation with LPS in the presence of beta-1,3-glucan (0, 1, 10, 100 ㎍ / ml). (B) Culture supernatant was collected and assayed for cytokine production by ELISA assay (enzyme-linked immunosorbent assay).
Figure 3 shows the results of p47phox interaction with C-Src and regulation of NOX (NADPH oxidase) assembly according to one embodiment of the present invention Fig. (A) The p47phox complex was treated with Flag-p47phox-expressing (expressed) THP-1, which had been treated with Schizophyllan (SPG; 10 g / ml) for 1 hour and stimulated with LPS for 30 minutes Lt; / RTI > Immunoprecipitation (IP) analysis of the p47phox complex was performed using an α-FLAG antibody conjugated with agarose beads and analyzed by mass spectrometry analysis. (B and C) THP-1 cells pretreated with Schizophyllan (SPG; 10 占 퐂 / ml) were treated with LPS (100 ng / ml) and stimulated for 15-30 minutes. After the cells were harvested, immunoprecipitation (IP) was performed on p47phox and phosphorylated forms of C-Src and p47phox (S304, S345, S359 and S370) (B) or gp91phox, p22phox , p47phox and p67phox (C) were confirmed by performing immunoblot (IB). (D) Binding mapping schematically shows the structure of p47phox and C-Src (above). 293T cells were treated with V5-C-Src or a mutant thereof (ΔSH2-KD, ΔKD) with a control vector flag -47 phox or 47 phox truncated mutant (ΔSH3-PRR, ΔAIR-PRR, ΔPRR) were co-transfected. The cells underwent co-immunoprecipitation (co-IP) with antibodies against V5 or a flag and then underwent immunoblot (IB) with a flag or antibody to V5 (Bottom, left). 293T cells were co-transfected with AU1-p67phox or AU1-p40phox with flag-p47phox increasing the amount of V5-C-Src and immunized with antibodies against the flag After immunoprecipitation (IP) was performed, the immunoblot (IB) was carried out with the antibody against the flag (Flag), AU1, V5 (lower right). Actin was used as an intrinsic control.
Figure 4 shows the results of C-Src interaction with p47phox and inhibition of binding with p67phox and p40phox according to one embodiment of the present invention. (A) p47phox and C-Src structures. (B) 293T cells were co-transfected with AU1-p67phox or AU1-p40phox co-transfected with flag-p47phox increasing the amount of V5-C-Src and immunized with antibodies against AU1 Immunoprecipitation (IP) was performed. Immunoblot (IB) was then performed with the antibody against Flag (Flag), AU1, V5, and actin was used as an internal control.
FIG. 5 is a graph showing the results of the prophylactic or therapeutic effects of systemic sepsis and colitis caused by treatment with Schizophyllan (SPG) according to an embodiment of the present invention. (A) Schematic diagram for constructing a CLP-guided animal model treated with zymogen (SPG) or a vehicle as a control (above). The survival rate of CLP-induced mice treated with orally administered 20 mg / kg of zyphofilane (SPG) per mouse was monitored for 7 days and the mortality rate was measured for 10 mice per group (below). (B) Hematoxylin-eosin staining results (left) representative of lung and spleen obtained 18 hours after induction of CLP in 5 mice per group (histopathology score) section) from the H & E staining results (right). (C) schematic diagram for constructing a 5% DSS-induced colitis animal model treated with zymogen (SPG) or Vehicle as a control (above). The survival rate of DSS-induced mice treated with zymogen (SPG) or Vehicle was monitored for 25 days. (Log-rank test) as compared to control mice. (D) Weight change of DSS-induced mice treated with zymogen (SPG) or Vehicle. (E) The clinical parameters of the proposed colitis animal model, such as weight loss, fecal concentration, and colonic hemorrhage, are shown in graph form. (H) (Hematoxylin-eosin) staining results (left) of the colon obtained on day 6 after DSS treatment in 5 mice per group (left). Histopathology scores are shown as middle and distal And from the H & E staining results of the colon section of the site (right).
FIG. 6 is a graph showing the results of the prophylactic or therapeutic effects of systemic sepsis and colitis caused by treatment with Schizophyllan (SPG) according to an embodiment of the present invention. (A) The body weight of mice treated with orally administered 20 mg / kg of zymoglobulin (SPG) per mouse or mice treated with vehicle as a control group was measured for 4 weeks (left). In addition, cytokine secretion levels were measured (right) in the serum obtained from the treatment with shisoplan (SPG) or control as a vehicle for 2 weeks. (B) The morphological differences of the spleen of CLP-induced mice treated with zymogen (SPG) or vehicle as a control were compared. Here, the UN is a test group that has not processed anything. (C) The survival rate of DSS-induced mice treated with Shizo pilana (SPG) or vehicle (Vehicle) was observed for 25 days (left) and weight change (right). (Left) and difference in length (right) of the colon of DSS-induced mice treated with Drosophila DPG (SPG) or vehicle as a control.
FIG. 7 is a graph showing a result of synthesis of a peptide coupled with SPG according to an embodiment of the present invention. FIG. (A) On the road showing the sequence alignment of C-Src, p67phox and p47phox, the boxes represent SH3-1 peptide and SH3-2 peptide of the present invention. (B) SPG (Schizophyllan), SGP / SA, Schizophyllan / succinic anhydride / 1-Ethyl-3 (3-dimethylaminopropyl) NHS) and SPG / SA / NHS / SH3 (Schizophyllan / succinic anhydride / 1-Ethyl-3 (3-dimethyl aminopropyl) carbodiimide (EDC) and N-Hydroxy succinimide Src-SH3 peptide complex). (C) SPG (Schizophyllan), SGP / SA (Schizophyllan / succinic anhydride) and SPG / SA / NHS / SH3 (Schizophyllan / succinic anhydride / 1-Ethyl- The results of 1 H NMR spectra of the succinimide (NHS) / SH3 peptide (i.e., SPG / C-Src-SH3 peptide complex) are shown. (D) peptide of the present invention. Here, std is an abbreviation of standard. SH3-1 peptide or SH-2 peptide / SPG is a SH3 peptide conjugated SPG conjugated with SPG, SPG is dissolved in DMSO at a concentration of 1 mg / It is a Schizohpyllan. (E) Immunofluorescence micrographs of Raw264.7 cells against TAMRA-C-Src-SH3 peptides labeled with TAMRA. Immunofluorescence in Raw264.7 cells was performed by labeling C-Src-SH3 with TAMRA. Raw264.7 cells were treated with SPG / TAMRA-C-Src-SH3 peptide complex (10 μg / ml) for 1 hour and the intake of SPG / TAMRA-C-Src-SH3 peptide complexes was shown.
FIG. 8 is a graph showing the results of a process for preparing a beta-glucan-peptide complex by linking SPG (Schizohpyllan), which is beta-1,3-glucan, with SH3 peptide according to an embodiment of the present invention Fig. Specifically, the biological binding of SPG to functional peptides by cross linking using anhydride is illustrated and depicted.
FIG. 9 is a graph showing the results of blocking the TLR4-ROS signaling by the SPG / C-Src-SH3 peptide complex according to an embodiment of the present invention. (A) 293T cells were co-transfected with flag-p47phox for 12 hours with AU1-p67phox (left) or AU1-p40phox (right) (Scramble) peptide complex, SPG-SH3-1 peptide complex, SPG-SH3-2 peptide complex, or SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide complexes as a control group for 6 hours Respectively. Immunoprecipitation (IP) was then performed with the antibody against the flag, followed by immunoblot (IB) with the Flag (Flag), the antibody against AU1. Actin was used as an intrinsic control. (Scramble) peptide complex, SPG-SH3-1 peptide complex, SPG-SH3-2 (SEQ ID NO: 2), which is a control group, and (B) flag (flag) -p47phox-expressing THP- Peptide complex, or the SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide complexes were pretreated for 1 hour and stimulated with LPS (100 ng / ml) for 30 minutes. The cells were then harvested and immunoprecipitation (IP) was performed with the antibody against the flag and immunoblot (IB) as an antibody against p67phox, p40phox, p22phox, gp91phox or Flag (Flag) . Actin was used as an intrinsic control. (Scramble) peptide complex, SPG-SH3-1 peptide complex, SPG-SH3-2 (Raw264.7-Flag-p47phox) Peptide complexes or SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide complexes and stimulated with LPS (100 ng / ml), followed by measurement of NOX (NADPH oxidase) activity. (D) A pRL-TK Renilla plasmid for NF-κB reporter plasmid and pRL-TK Renilla plasmid for normalization was cloned into Flag-p47phox-expressing Raw264.7 cells (Raw264 Gt; 7-Flag-p47phox). ≪ / RTI > After 2 days, the cells were treated with the SPG-SC (Scramble) peptide complex, the SPG-SH3-1 peptide complex, the SPG-SH3-2 peptide complex or the SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide complexes , And stimulated with LPS, followed by luciferase assay to measure NK-κB activity. (Scramble) peptide complex, SPG-SH3-1 peptide complex, SPG-SH3-2 (E) flag (flag) -p47phox-expressing Raw264.7 cells (Raw264.7-Flag- p47phox) Peptide complex, or the SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide complexes were pretreated for 1 hour and stimulated with LPS for 18 hours. The culture supernatant was then harvested and the enzyme immunoassay (ELISA) was performed to measure the amount of cytokine secreted.
FIG. 10 is a graph showing the effect of the SPG / C-Src-SH3 peptide complex on TLR (Toll-like receptor) and NLRP3 inflammation-mediated NOX assembly and ROS-mediated (ROS mediated pro-inflammatory signaling). ≪ Desc / Clms Page number 2 > SH3-1 peptide complex, SPG-SH3-2 peptide complex, or SPG-SH3-1 and SH3-1 peptide complexes (1, 5, 10 쨉 g / ml) in Raw264.7 and THP- 2 peptide complexes were cultured for 72 hours and MTT assays were performed to measure cell viability. (B) 293T cells were co-transfected with AU1-p67phox for 12 hours in a flag-p47phox, and treated with SPG-1 as a control (1, 5, 10 / / The SC (Scramble) peptide complex, the SPG-SH3-1 peptide complex, the SPG-SH3-2 peptide complex, or the SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide complexes were treated for 6 hours. Immunoprecipitation (IP) was then performed with the antibody against the flag, followed by immunoblot (IB) with the Flag (Flag), the antibody against AU1. Actin was used as an intrinsic control. (Scramble) peptide complex, SPG-SH3-1 peptide complex, SPG-SH3-2 (Raw264.7-Flag-p47phox) Peptide complex, or the SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide complexes were pretreated for 1 hour and stimulated with LPS (100 ng / ml) for 30 minutes. The cells were then harvested and immunoprecipitation (IP) was performed with the antibody against the flag and immunoblot (IB) as an antibody against p67phox, p40phox, p22phox, gp91phox or Flag (Flag) . Actin was used as an intrinsic control. (D) Treatment of Raw264.7 cells with the control SPG-SC (Scramble) peptide complex, SPG-SH3-1 peptide complex, SPG-SH3-2 peptide complex or SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide complex And stimulated with LPS (100 ng / ml), and the activity of NOX (NADPH oxidase) was measured. (LPS-primed J774A.1-Flag-p47phox), which was stimulated for 4 hours with (E) LPS (100 ng / ml) ) Peptide complex, the SPG-SH3-1 peptide complex, the SPG-SH3-2 peptide complex, or the SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide complexes were stimulated with Dextran Sulfate Sodium (DSS) for 18 hours. The culture supernatant was then harvested and the enzyme immunoassay (ELISA) was performed to measure the amount of cytokine secreted.
FIG. 11 is a graph showing the therapeutic effect of cecal ligation and puncture-induced polymicrobial sepsis according to the SPG / C-Src-SH3 peptide complex treatment according to an embodiment of the present invention. (A) a control group, SPG-SC (Scramble) peptide, SPG-SH3-1 peptide, SPG-SH3-2 peptide, or SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide, This is a schematic diagram for model building (above). SPG-SC3 (Scramble) peptide, SPG-SH3-1 peptide, SPG-SH3-2 peptide, or SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide at a dose of 10 mg / kg per mouse, PBS as a negative control Survival of peritoneal injected CLP-induced mice was observed for 7 days and mortality was measured for 20 mice per group (below). (Log-rank test) as compared to CLP-induced mice in which the control (control) SPG-SC (Scramble) peptide was administered. (D, n = 6), serum cytokine levels (C, n = 5), typical lung and spleen H & E staining (D, n = 5), splenocytes (E and F) used for immunoblot (IB) and bacterial counts (G, n = 8) were used as control SPG-SC (Scramble) peptide, CLP- , SPG-SH3-2 peptide, or SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide, and PBS as a negative control group at 20 hours. (Scramble) peptide, SPG-SH3-1 peptide, SPG-SH3-2 peptide, or SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide after CLP induction in 5 mice per group as a negative control (Hematoxylin-eosin) staining results (left) of lung and spleen obtained after 20 hours of treatment with PBS. The histopathology score was derived from the H & E staining results of the lung sections (Right). (E) Splenocytes were used to perform immunoblot (IB) and the expression levels of iNOS and COX-2 in spleen cells were confirmed and shown. Actin was used as an intrinsic control. (F) After harvesting the spleen cells, immunoprecipitation (IP) was performed with an antibody against p47phox, followed by immunoblotting (IB) with antibodies against p67phox, p40phox or p47phox. Actin was used as an intrinsic control. (G) The number of bacteria in the blood (left) and peritoneal fluid (middle) was measured and shown. In addition, the direct bacterial killing effect of the SPG / C-Src-SH3 peptide complex on E. coli DH5α on LB broth plates was measured and the number of surviving colonies was counted (right).
FIG. 12 shows the results of treatment of DSS (dextran sodium sulfate) -induced ulcerative colitis according to the SPG / C-Src-SH3 peptide complex treatment according to an embodiment of the present invention. (A) SPG-SC (Scramble) peptide, SPG-SH3-1 peptide, SPG-SH3-2 peptide, or SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide as a control group and 5% DSS - Guideline for establishing an animal model of induced colitis (above). SPG-SC3 (Scramble) peptide, SPG-SH3-1 peptide, SPG-SH3-2 peptide, or SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide at a dose of 10 mg / kg per mouse, PBS as a negative control Survival of peritoneal injected CLP-induced mice was monitored for 25 days and mortality was measured for 20 mice per group (below). (Log-rank test) as compared to DSS-induced mice receiving the control SPG-SC (Scramble) peptide. (B) Body weight changes of DSS-induced mice (n = 15) treated with SPG-SC (Scramble) peptide or SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide complexes as controls were measured. (C) The clinical parameters of the proposed colitis mouse model (n = 15), such as weight loss, fecal concentration, colon bleeding, are graphically represented. (D, I), NO (NADPH oxidase) activity in colon homogenates (D, n = 6), cytokine levels (E, n = 5), and colon homogenates Colon homogenates (H and I) used for myeloperoxidase activity (F, n = 5), representative colon H & E staining (G, n = 5), immunoblot (IB) , SPG-SC3 (Scramble) peptide, SPG-SH3-1 peptide, SPG-SH3-2 peptide, or SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide as a control group and PBS (UN; untreated) 6 days later. (Scramble) peptide, SPG-SH3-1 peptide, SPG-SH3-2 peptide, or SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide after induction of DSS in 5 mice per group (G) The results of H & E (Hematoxylin-eosin) staining of the colon obtained on the 6th day after treatment with PBS were obtained. The histopathology score was derived from the H & E staining results of the colon section. (H and I) colon homogenates were precipitated with trichloroacetic acid to concentrate the proteins. Subsequently, immunoblot (IB) was performed (H) to confirm the expression levels of IL-1β, IL-18 and caspase-1 proteins and immunoprecipitation was performed with antibodies against p47phox. IP), followed by immunoblotting (IB) with antibodies to p67phox, p40phox or p47phox (I). Actin was used as an intrinsic control.

이하, 실시예를 통하여 본 발명의 구성 및 효과를 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것일 뿐, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 한정되는 것은 아니다.Hereinafter, the constitution and effects of the present invention will be described in more detail through examples. These examples are only for illustrating the present invention, and the scope of the present invention is not limited by these examples.

실시예Example 1: 실험 재료 준비 및 실험 방법 1: Preparation of experimental materials and experimental methods

실시예Example 1-1: 세포 준비  1-1: Cell preparation

마우스 대식세포 세포주(macrophage cell line)인 RAW264.7(ATCC TIB-71; American Type Culture Collection)와 HEK293T(ATCC-11268) 세포는 10% FBS(fetal bovine serum; invitrogen), 소디움 피루베이트(sodium pyruvate), 비필수 아미노산(NAA; nonessential amino acids), 페니실린 G(penicillin G, 100 IU/ml), 스트렙토마이신(streptomycin, 100ug/ml)이 포함한 DMEM 배지(invitrogen)를 이용하여 배양하였다. 인간 단핵세포주(human monocytic cell line)인 THP-1(ATCC TIB-202)세포는 10% FBS가 포함된 RPMI 1640-GlutaMAXTM 배지를 사용하여 배양하였다. 일시적 형질주입(transient transfection)은 제조사의 메뉴얼에 따라 리포펙타민® 3000(Lipofectamine® 3000; Invitrogen), 또는 인산칼슘(calcium phosphate)(Clontech)을 사용하여 시행했다. THP-1과 Raw264.7의 안정적(stable) 세포주(cell line)는 2 ㎍/㎖의 퓨로마이신(puromycin)으로 표준 선택 프로토콜(standard selection protocol)을 사용하여 생성하였다. The mouse macrophage cell line RAW264.7 (ATCC TIB-71; American Type Culture Collection) and HEK293T (ATCC-11268) cells were treated with 10% fetal bovine serum (FBS), sodium pyruvate ), Nonessential amino acids (NAA), penicillin G (100 IU / ml), and streptomycin (100 ug / ml) were inoculated in DMEM medium (Invitrogen). THP-1 (ATCC TIB-202) cells, a human monocytic cell line, were cultured using RPMI 1640-GlutaMAX medium containing 10% FBS. Transient transfection injection (transient transfection) are lipofectamine ® 3000 (Lipofectamine ® 3000; Invitrogen ) according to the manufacturer's manual was performed using, or calcium phosphate (calcium phosphate) (Clontech). Stable cell lines of THP-1 and Raw264.7 were generated with 2 ug / ml of puromycin using the standard selection protocol.

실시예Example 1-2: 시약 준비 1-2: Reagent preparation

LPS(Escherichia coli O111:B4), Zymosan(사카로미세스 세레비지에(S. cerevisiae)의 세포벽(cell wall) 제조), 알칼리제니스 페칼리스(Alcaligenes faecalis)로부터 얻은 커들란 AL(Curdlan AL), 스크레로티움 롤프시(Sclerotium rolfsii)로부터 얻은 스클로글루칸(Scleroglucan), 라미나리아 디지타타(Laminaria digitata)로부터 얻은 라미나린(Laminarin)은 Invivogen사로부터 구입하였으며, 치마버섯(Schizophyllum commune)으로부터 얻은 시조필란(Schizophyllan, SPG)은 큐젠바이오텍(QueGen Biotech)으로부터 제공받았다. 숙신산 무수물(Succinic anhydride), DMSO(dimethyl sulfoxide), EDC(1-Ethyl-3-(3-dimethyl aminopropyl) carbodiimide) 및 NHS(N-Hydroxy succinimide)은 한국 씨그마 알드리치사(Sigma-Aldrich Korea)에서 구입하였다. 나노퓨어수(Nanopure water)와 25 mM의 MES(2-(N-morpholino) ethanesulfonic acid buffer, pH 5.0)는 SPG(Schizophyllan)-SH3 펩타이드(peptide)를 합성하는데 사용하였다. LPS ( Escherichia coli O111: B4), Zymosan (cell wall preparation of S. cerevisiae ), curdlan AL (curdlan AL ) obtained from Alcaligenes faecalis, sclerotium Scleroglucan obtained from Sclerotium rolfsii and Laminarin obtained from Laminaria digitata were purchased from Invivogen and were purchased from Schizophyllum commune ( Schizophyllum commune ) SPG) was obtained from QueGen Biotech. Succinic anhydride, DMSO, EDC (1-Ethyl-3- (3-dimethyl aminopropyl) carbodiimide) and NHS (N-Hydroxy succinimide) were purchased from Sigma-Aldrich Korea Respectively. Nanopure water and 25 mM MES (2- ( N- morpholino) ethanesulfonic acid buffer, pH 5.0) were used to synthesize SPG (Schizophyllan) -SH3 peptides.

실시예Example 1-3: 플라스미드 구축( 1-3: Construction of plasmid ( plasmidplasmid construction)  construction)

p47phox(표지(Flag)-p47phox)의 전체-길이(full-length)를 암호화(encoding)하는 플라스미드(plasmid)와 NF-κB 루시퍼라아제 리포터(NF-κB luciferase reporter) 플라스미드는 Jain A et al., Nature protocols., 7(3):445-452 (2012) 및 Rice TW et al., Critical care medicine., 38(8):1685-1694 (2010)에 설명되어 있다. p47phox(ΔSH3-PRR, ΔAIR-PRR, ΔPRR)의 다른 부위(region), p67phox, p40phox, c-C-src 및 c-C-src(ΔSH2-KD, ΔKD) 유전자를 암호화(encoding)하는 플라스미드는 cDNA PCR 증폭(amplification)과 pEF-IRES 내의 AflⅡ와 XbaI 사이트(site) 사이에서의 서브클로닝(subcloning)을 통해 제조되었다. 모든 포유류 세포(mammalian cell)에서 일시적(transient)이고 지속적(stable)으로 발현되는 구조(construct)는 pEF-IRES-Puro 발현 벡터(pEF-IRES-Puro expression vector)에서 유래 되었다. 모든 구조(construct)는 원래 시퀀스(sequence)와의 100% 상동성을 확인하기 위하여 ABI PRISM 377 자동 DNA 시퀀서(ABI PRISM 377 automatic DNA sequencer)를 사용하여 시퀀싱(squencing) 하였다.Plasmids encoding NF-κB luciferase reporter plasmids encoding the full-length of p47phox (Flag-p47phox) are described in Jain A et al . , Nature protocols., 7 (3): 445-452 (2012) and Rice TW et al ., Critical care medicine., 38 (8): 1685-1694 (2010). Plasmids encoding other regions of p47phox (ΔSH3-PRR, ΔAIR-PRR, ΔPRR), p67phox, p40phox, cC-src and cC-src (ΔSH2-KD, ΔKD) and subcloning between Afl II and Xba I sites in pEF-IRES. The transient and stable expression in all mammalian cells was derived from the pEF-IRES-Puro expression vector (pEF-IRES-Puro expression vector). All constructs were sequenced using an ABI PRISM 377 automatic DNA sequencer to verify 100% homology with the original sequence.

실시예Example 1-4:  1-4: 면역침강법과Immunoprecipitation 면역  immune 블롯Blot 분석 analysis

면역침강법(immunoprecipitation)과 면역 블롯 분석법(immunoblot assay)은 Jain A et al., Nature protocols., 7(3):445-452 (2012) 및 Rice TW et al., Critical care medicine., 38(8):1685-1694 (2010)에 기재되어 있는 방법에 따라 수행하였다. 항체 결합(antibody binding)은 화학 발광계(chemiluminescence; ECL: Millipore)를 사용하여 가시화하고, Vilber사의 화학 발광 분석기(Vilber chemiluminescence analyzer, Fusion SL 3;Vilber Lourmat)로 검출하였다.Immunoprecipitation and immunoblot assays were performed in accordance with Jain A et al ., Nature protocols. 7 (3): 445-452 (2012) and Rice TW et al ., Critical care medicine. 38 8): 1685-1694 (2010). Antibody binding was visualized using chemiluminescence (ECL: Millipore) and detected by Vilber chemiluminescence analyzer (Fusion SL 3; Vilber Lourmat).

실시예Example 1-5:  1-5: 펩타이드Peptides (peptide) 준비 peptide preparation

C-Src-SH3 펩타이드는 상업적으로 합성하였으며, 전임상(pre-clinical) 연구에서 비정상적인 반응을 피하기 위해 아세트산 염 형태(acetate salt form)로 정제 하였다(Peptron, Korea). 본 발명에서 사용한 펩타이드의 아미노산 서열(amino acid sequence)은 하기 표 1과 같다. 한편, C-Src-SH3 펩타이드는 필요에 따라 N 말단에 형광물질(Fluorophore) TAMRA를 표지하여 사용하였다.C-Src-SH3 peptides were synthesized commercially and purified in acetate salt form to avoid abnormal reactions in pre-clinical studies (Peptron, Korea). The amino acid sequences of the peptides used in the present invention are shown in Table 1 below. On the other hand, C-Src-SH3 peptide was labeled with Fluorophore TAMRA at the N-terminus as needed.

펩타이드Peptides (peptide)(peptide) 아미노산 서열Amino acid sequence
(amino acid sequence, from N to C)(amino acid sequence, from N to C)
서열번호SEQ ID NO:
Src-SH3-1 (aa 91-108)Src-SH3-1 (aa 91-108) ALYDYESRTETDLSFKKGALYDYESRTETDLSFKKG 1One Src-SH3-2 (aa 121-140)Src-SH3-2 (aa 121-140) WWLAHSLSTGQTGYIPSNYVWWLAHSLSTGQTGYIPSNYV 22 Src-SH3-1-ScrambleSrc-SH3-1-Scramble ETRKESFYLKDSTAGYDLETRKESFYLKDSTAGYDL 33 Src-SH3-2-ScrambleSrc-SH3-2-Scramble NGTHSSGVLQSLITYPWAWYNGTHSSGVLQSLITYPWAWY 44

실시예Example 1-6: 말단에 - 1-6: At the end - COOH기를COOH group 갖는  Have SPGSPG (( COOHCOOH -terminated -terminated SPGSPG ) 합성 ) synthesis

합성(synthesis)은 Hsu CC et.al., Biochemical pharmacology., 85(3):385-395 (2013)에 보고된 변형된(modified) 프로토콜(protocol)에 따라 수행하였다. SPG(5 ㎎, 0.011 mM)은 연속적으로 마일드(mild)하게 교반하면서 6시간 동안 DMSO에 용해시켰다. 숙신산 무수물 용액(succinic anhydride solution; DMSO 중 0.1 mM)을 SPG(Schizophyllan) 용액에 한 방울씩 떨어뜨렸다. 상기 용액 혼합물을 50℃에서 12시간 동안 교반한 다음, 혼합물을 투석(dialysis)막으로 옮겼다(MWCO: 6-8 kDa, Spectra/Por., USA). 투석은 3일 동안 탈이온수(Deionized(DI) water)를 이용하여 수행하였다. 최종적으로 혼합물은 동결 건조시켰으며, 남은 생성물은 스펀지와 같은(sponge-like) 섬유(fiber) 형태였다. 표면 상에 COOH와 C=O의 존재는 FT-IR과 1H-NMR 분광법(spectroscopies)에 의해 분석되었다. The synthesis was carried out according to a modified protocol reported in Hsu CC et al ., Biochemical pharmacology., 85 (3): 385-395 (2013). SPG (5 mg, 0.011 mM) was dissolved in DMSO for 6 hours with continuous mild agitation. A succinic anhydride solution (0.1 mM in DMSO) was added dropwise to the SPG (Schizophyllan) solution. The solution mixture was stirred at 50 < 0 > C for 12 hours and then the mixture was transferred to a dialysis membrane (MWCO: 6-8 kDa, Spectra / Por., USA). Dialysis was performed using deionized (DI) water for 3 days. Finally, the mixture was lyophilized and the remaining product was in the form of a sponge-like fiber. The presence of COOH and C = O on the surface was analyzed by FT-IR and 1 H-NMR spectroscopy.

실시예Example 1-7: 1-7: 말단에 At the end NHS를NHS 갖는  Have SPGSPG (( NHSNHS -terminated -terminated SPGSPG ) 합성) synthesis

카르복실기(carboxyl group) 말단 SPG(Schizophyllan)는 NHS 작용기(functional group)와 반응할 수 있다. SPG/SA(COOH-SPG, 5 ㎎)와 EDC(10 ㎎; 0.1 mM)은 5 ㎖의 DMSO에 용해시켰다. EDC 가교제(crosslinker)와 교차결합된 COOH-SPG를 활성화(activation) 시킨 후 NHS(10 ㎎; 0.2 mM)를 용액에 첨가하고, 상기 혼합물을 실온(room temperature)에서 24시간 동안 교반하였다. 이후, 생성된 혼합물을 3일 동안 투석 처리하고 동결 건조시켰다. 정제된 샘플은 점착성(sticky) 겔 형태가 되었다. 완전히 동결 건조된 SPG/SA/EDC는 FT-IR과 1H-NMR 분광법(spectroscopies)으로 다시 분석하였다. The carboxyl group terminal SPG (Schizophyllan) can react with an NHS functional group. SPG / SA (COOH-SPG, 5 mg) and EDC (10 mg; 0.1 mM) were dissolved in 5 ml of DMSO. Activation of cross-linked COOH-SPG with an EDC crosslinker was followed by the addition of NHS (10 mg; 0.2 mM) to the solution and the mixture was stirred at room temperature for 24 hours. The resulting mixture was then dialyzed for 3 days and lyophilized. The purified sample was in the form of a sticky gel. Fully lyophilized SPG / SA / EDC was again analyzed by FT-IR and 1 H-NMR spectroscopy.

실시예Example 1-8:  1-8: 펩타이드와Peptides and 결합된Combined SPGSPG (peptide conjugated (peptide conjugated SPGSPG )의 합성 ) Synthesis of

먼저, 각각의 펩타이드, Src-SH3-1 (aa 91-108) 및 Src-SH3-2 (aa 121-140) (4.5 ㎎)를 교반하면서 DMSO에 용해시켰다. SPG/SA (COOH-SPG, 5 ㎎)를 1 ㎖의 DMSO에 녹인 후, 4 ㎖의 MES 완충액(buffer)을 가하여 pH 6으로 조정하였다. 그 다음, EDC(20 ㎎)와 NHS(10 ㎎)를 상기 용액 혼합물에 첨가하고, 4℃에서 24시간 동안 교반하였다. 최종적으로 투석은 6시간마다 완충 용액 (buffer solution, 투석액(diaysate))을 정기적으로 교체하면서 3일 동안 탈이온수(Deionized(DI) water)를 이용하여 수행하였다. 이후, 반응 혼합물을 동결 건조시키고, 사용하기 전까지 -20 ℃에서 보관하였다. First, each of the peptides, Src-SH3-1 (aa 91-108) and Src-SH3-2 (aa 121-140) (4.5 mg) was dissolved in DMSO with stirring. SPG / SA (COOH-SPG, 5 mg) was dissolved in 1 ml of DMSO and adjusted to pH 6 with 4 ml of MES buffer. EDC (20 mg) and NHS (10 mg) were then added to the solution mixture and stirred at 4 < 0 > C for 24 hours. Finally, dialysis was performed using deionized (DI) water for three days with periodic replacement of the buffer solution (diaysate) every 6 hours. The reaction mixture was then lyophilized and stored at-20 C until use.

실시예Example 1-9: 형광 표지된  1-9: Fluorescently labeled 펩타이드와Peptides and 결합된Combined SPGSPG (fluorescence tagged peptide conjugated SPG)의 합성 (fluorescence tagged peptide conjugated SPG)

SPG/SA(COOG-SPG, 5 ㎎)를 1 ㎖의 DMSO에 인 후, 4 ㎖의 MES 완충액(buffer)을 가하여 pH 6으로 조정하였다. 그 다음, EDC(10 ㎎)와 NHS(10 ㎎)를 상기 용액 혼합물에 첨가하여 1시간 동안 반응시켰다. 이후, 형광 표지된(fluorescently tagged) 펩타이드(1 ㎎)를 상기 혼합물에 첨가하고 4℃에서 12시간 동안 어두운 곳에 보관하였다. 다음으로, 싱기 반응 혼합물을 동결 건조시키고, 250 내지 450 nm 범위의 흡광도 스펙트럼 곡선(absorbance spectra curve)을 적분함에 따라 농도를 분석하였다.SPG / SA (COOG-SPG, 5 mg) was dissolved in 1 ml of DMSO and adjusted to pH 6 with 4 ml of MES buffer. EDC (10 mg) and NHS (10 mg) were then added to the solution mixture and reacted for 1 hour. Subsequently, fluorescently tagged peptide (1 mg) was added to the mixture and stored at 4 [deg.] C for 12 hours in the dark. Next, the lyophilized reaction mixture was lyophilized and the concentration was analyzed by integrating the absorbance spectra curve in the range of 250 to 450 nm.

실시예Example 1-10:  1-10: 특징화Characterization (characterization) 방법(characterization method)

생성물의 표면 작용기(functional group)는 FTIR(Fourier Transform IR; Perkin-Elmer Spectrim one)과 1H-NMR(Breker ARX 500 MHz spectrometer)로 분석하였다. SPF/펩타이드(peptide)의 특징은 표지된 펩타이드(tagged-peptide)의 SPG/펩타이드(peptide) 분액(aliquot) 200 ㎕에 대한 UV 흡광 스펙트럼(aabsorbance spectra)에 의해 측정되었다(Synergy Mix, Bioteck Inc.). 펩타이드의 흡광 스펙트럼을 각 샘플에 대해 통합하여 그 농도(250 내지 450 nm 사이의 곡선 아래 영역)를 계산하였다.The functional groups of the product were analyzed by FTIR (Fourier Transform IR) and 1 H-NMR (Breker ARX 500 MHz spectrometer). The SPF / peptide characteristics were measured by the aabsorbance spectra of 200 μl of the SPG / peptide aliquot of the tagged-peptide (Synergy Mix, Bioteck Inc.). ). The absorbance spectrum of the peptide was integrated for each sample to calculate its concentration (the area under the curve between 250 and 450 nm).

실시예Example 1-11:  1-11: NOXNOX (( NADPHNADPH oxidaseoxidase ) 활성(activity) 측정 ) Activity measurement

세포 내 초과산화물(superoxide) 생성은 루시제닌(lucigenin; bis-N-methylacridinium nitrate)-ECL 방법으로 측정하였다(Wadia JS et.al., Nature medicine., 10(3):310-315, 2004; Jain A et.al., Nature protocols., 7(3):445-452, 2012).The intracellular superoxide production was measured by lucigenin-bis-N-methylacridinium nitrate-ECL method (Wadia JS et al ., Nature medicine., 10 (3): 310-315, 2004; Jaine et al. , Nature protocols., 7 (3): 445-452, 2012).

실시예Example 1-12: 패혈증(sepsis)과 대장염(colitis) 마우스 동물 모델 구축 1-12: Sepsis and colitis mouse animal model construction

CLP(cecal ligation and puncture)로 유도된 패혈증 마우스 모델 및 DSS(dextran sodium sulfate)로 유도된 급성 대장염 마우스 모델은 6주령(6-week-old) C57BL/6 암컷 마우스(Samtako, Korea)를 사용하여 Opal SM et.al., Jama ., 309(11):1154-1162 (2013) 및 Hotchkiss RS et.al., Journal of immunology., 176(9):5471-5477 (2006)에 기재되어 있는 방법에 따라 준비하였다. 모든 동물 관련 절차는 한양대학교 동물 보호 기관과 사용 위원회에 의해 검토되고 승인되었다. A sepsis mouse model induced by CLP (cecal ligation and puncture) and an acute colitis mouse model induced by DSS (dextran sodium sulfate) were prepared using a 6-week-old C57BL / 6 female mouse (Samtako, Korea) Opal SM et al. , Jama ., 309 (11): 1154-1162 (2013) and Hotchkiss RS et al. , Journal of Immunology., 176 (9): 5471-5477 (2006). All animal related procedures were reviewed and approved by Hanyang University Animal Protection Agency and Usage Committee.

실시예Example 1-13: 임상 점수(clinical score) 및 조직학(histology) 1-13: Clinical score and histology

대장염(colitis)의 임상 점수는 대장염 유발 기간 동안 체중(body weight), 직장(rectum) 당 잠재 출혈(occult blood) 및 총 출혈 손실과, 대변의 농도를 매일 측정하였다. 임상 점수는 처리 그룹에 대해 알지 못하는 2명의 숙련된 연구자에 의해 측정되었다(Huang L et.al., International immunopharmacology ., 28(1):444-449, 2015). 조직 절편(tissue section)의 면역조직화학검사(immunohistochemistry)를 위해 마우스의 비장(spleen), 폐(lung), 결장(colon)을 10 % 포르말린(formalin)으로 고정시키고 파라핀에 포매(embedding) 시켰다. 상기 파라핀 절편(paraffin section)을 4 ㎛ 두께로 절단하고 H&E(hematoxylin and eosin) 염색을 수행하였다. 조직 병리학 점수(histopathologic score)는 Osuchowski MF et.al., Journal of immunology., 177(3):1967-74 (2006) 및 Liu W et.al., Cell research., 25(6):691-706 (2015)에 기재되어 있는 기준에 따라 측정하였다. Clinical scores of colitis were measured daily for body weight, occult blood and total bleeding loss and fecal concentration during the period of colitis induction. Clinical scores were measured by two skilled investigators who were unaware of the treatment group (Huang et al ., International immunopharmacology ., 28 (1): 444-449, 2015). The spleen, lung, and colon of the mouse were fixed with 10% formalin and embedded in paraffin for immunohistochemistry of the tissue section. The paraffin section was cut to a thickness of 4 μm and H & E (hematoxylin and eosin) staining was performed. The histopathologic score was obtained from Osuchowski MF et al. , Journal of Immunology, 177 (3): 1967-74 (2006) and Liu W et al. , Cell research., 25 (6): 691-706 (2015).

실시예Example 1-14: 기타 실험(miscellaneous procedures) 1-14: Miscellaneous procedures

항체(antibody), MTT 분석(MTT assay), 단백질 정제(protein purification), 질량 분석(Mass spectrometry), 루시퍼라아제 분석(Luciferase assay), 샌드위치 ELISA(sandwich ELISAs), 공초점 분석법(confocal analysis), ROS 측정, 세균 계수(bacteria count), MPO 분석(MPO assay) 등은 당업계에 알려져 있는 통상적인 방법에 따라 수행하였다.Antibody assay, MTT assay, protein purification, mass spectrometry, luciferase assay, sandwich ELISA, confocal analysis, ROS measurement, bacterial count, MPO assay, and the like were performed according to a conventional method known in the art.

실시예Example 1-15: 통계 분석(statistical analysis)  1-15: Statistical analysis

독립적인 실험(평균(means) ± 표준편차(SD))로부터 얻은 결과는 two-tailed Student's t-test를 사용하여 분석하였다. 차이(differences)는 p <0.05에서 유의한 것으로 간주되었다. 생존율(survival) 비교를 위해서는 log-rank(Mantel-Cox) 테스트를 사용하여 Kaplan-Meier 생존분석, 즉 누적한계추정법(product-limit method)에 따라 결과를 그래프화하고 분석하였다(Prism, version 5.0, GraphPad Software). Results from independent experiments (mean ± SD) were analyzed using a two-tailed Student's t-test. Differences were considered significant at p <0.05. For survival comparison, results were graphed and analyzed according to the Kaplan-Meier survival analysis, the product-limit method, using log-rank (Mantel-Cox) GraphPad Software).

실시예Example 2: 실험 결과 2: Experimental results

실시예Example 2-1:  2-1: 시조필란(schizophyllan, SPG)은The schizophyllan (SPG) p47phox의p47phox 탈인산Dephosphoric acid 화(dephosphorylation)를 통해 활성산소(Reactive oxygen species, Through dephosphorylation, reactive oxygen species, ROSROS ) 및 염증(inflammation) 생성을 강력하게 억제한다.) And inflammation. &Lt; / RTI &gt;

베타-글루칸(β-glucan)은 in vitroin vivo 상에서 LPS-유도 염증 반응(LPS-induced inflammatory response)을 억제하는 것으로 알려져 있다(Cohen J., Nature., 420(6917):885-891, 2002; Balk RA., Critical care clinics., 16(2):179-192, 2000; Dombrovskiy VY. et.al., Critical care medicine., 35(5):1244-1250, 2007; Martin GS. et.al., The New England journal of medicine., 348(16):1546-1554, 2003). 그러나 대식세포(macrophage)에서 베타-글루칸(β-glucan)의 세포 내 조절 기작에 대해서는 알려진 바가 거의 없다. 활성산소(Reactive oxygen species, ROS) 및 염증(inflammation) 생성에 근거하여, LPS(Lipopolysaccharide)/TLR4(Toll-like receptor 4) 자극에 대해 가능성 있는 항-염증성 물질(anti-inflammatory agent)을 규명하기 위해, 본 발명자들은 먼저 여러 다른 출처에서 얻은 몇몇 베타-글루칸(β-glucan) 형태, 즉, 구체적으로 시조필란(schizophyllan, SPG), 자이모산(Zymosan), 커들란 AL(Curdlan AL), 스클로글루칸(Scleroglucan), 라미나린(Laminarin)이 NOX(NADPH oxidase) 활성과 염증성 사이토카인(inflammatory cytokines), TNF-α, IL-6, IL-10 생성을 억제하는지의 여부를 실험을 통해 확인하였다(도 1의 A, 도 1의 B 및 도 2). Beta-glucan is known to inhibit the LPS-induced inflammatory response in vitro and in vivo (Cohen J., Nature., 420 (6917): 885-891, 2002; Balk RA, Critical care clinics , 16 (2):.. 179-192, 2000; Dombrovskiy VY et.al., Critical care medicine, 35 (5):... 1244-1250, 2007; Martin GS et .al. , The New England Journal of Medicine. , 348 (16): 1546-1554, 2003). However, little is known about the intracellular regulatory mechanism of beta-glucan in macrophages. Identifying potential anti-inflammatory agents for Lipopolysaccharide / TLR4 (Toll-like receptor 4) stimulation, based on reactive oxygen species (ROS) and inflammation formation The inventors of the present invention firstly identified several beta-glucan forms obtained from several different sources, namely, schizophyllan (SPG), Zymosan, Curdlan AL, Experiments have confirmed whether glucan (Scleroglucan) and laminarin inhibit NOX (NADPH oxidase) activity and the production of inflammatory cytokines, TNF-α, IL-6 and IL-10 1, A, B, and 2).

그 결과, 치마버섯(Schizophyllum commune)의 수용성 베타-글루칸(β-glucan) 형태인 시조필란(Schizophyllan, SPG)이 LPS로 자극된 대식세포(LPS-stimulated macrophage)에서 NOX(NADPH oxidase) 활성, 활성산소(Reactive oxygen species, ROS) 및 염증(inflammation) 생성을 두드러지게 약화시킴을 확인하였다(도 1의 A 및 도 1의 B).As a result, Schizophyllan (SPG), a water-soluble β-glucan form of Schizophyllum commune , was found to be effective in NOX (NADPH oxidase) activity and activity in LPS-stimulated macrophages (Reactive Oxygen Species (ROS) and inflammation) (Fig. 1A and Fig. 1B).

MAPK(Mitogen-activated protein kinase)/NF-κB 신호 전달(signaling)의 활성화는 LPS와 사이토카인 같은 전-염증성 자극(pro-inflammatory stimuli)에 대한 대식세포(macrophage)의 반응에서 필수적이다(Gay NJ. et.al., Annual review of biochemistry., 76:141-165, 2007). 따라서 본 발명자들은 LPS-처리된 세포(LPS-treated cell)에서 시조필란(Schizophyllan, SPG)이 MAPK/NK-κB 신호 캐스케이드(signaling cascades)에 영향을 미치는지 확인하였다. Activation of mitogen-activated protein kinase (MAPK) / NF-κB signaling is essential in the response of macrophages to pro-inflammatory stimuli such as LPS and cytokines (Gay NJ et al ., Annual review of biochemistry., 76: 141-165, 2007). Thus, the present inventors have confirmed that Schizophyllan (SPG) affects MAPK / NK-κB signaling cascades in LPS-treated cells.

그 결과, LPS-자극된 세포(LPS-stimulated cell)에 시조필란(Schizophyllan, SPG)을 전처리(pre-treatment) 함에 따라, 농도 의존적(dose-dependent)으로 p38 및 ERK1/2의 인산화(phosphorylation)가 하향 조절(down-regulation)됨을 확인하였으나, JNK/SAPK에는 영향을 미치지 않았다(도 1의 C). 또한, 시조필란(SPG)을 전처리한 BMDM(bone marrow derived macrophage)에서 농도 의존적으로 IκB-α의 분해 및 인산화가 유의하게 억제됨을 확인하였다. 이와 관련하여, 시조필란(SPG)을 처리한 BMDM에서는 LPS에 의해 유도되는 NF-κB 루시퍼라아제 프로모터 활성(LPS-induced NF-κB-luciferase promoter activity)과 NK-κB p65의 핵내 이동(nuclear translocation) 또한 현저하게 감소되었다(도 1의 D 및 도 1의 E).As a result, phosphorylation of p38 and ERK1 / 2 in a dose-dependent manner by pre-treatment of LPS-stimulated cells with Schizophyllan (SPG) (Down-regulation), but did not affect JNK / SAPK (FIG. 1C). In addition, it was confirmed that the degradation and phosphorylation of IκB-α were significantly inhibited by BMDM (bone marrow derived macrophage) pretreated with epidermal growth factor (SPG) in a concentration-dependent manner. In this regard, LPS-induced NF-κB luciferase promoter activity and nuclear translocation of NK-κB p65 were observed in BMG treated with zymogen (SPG) ) And also remarkably decreased (D in Fig. 1 and E in Fig. 1).

NOX(NADPH oxidase) 활성과 활성산소(Reactive oxygen species, ROS) 생성은 NOX 서브유닛(subunit)의 발현(Lambeth JD., Nature reviews Immunology., 4(3):181-189, 2004)과, NOX의 p47phox 조절(regulatory) 서브유닛(subunit)의 C 말단 영역(C-terminal region; Ser-303 내지 Ser-379)에 위치한 몇몇의 세린(serine) 잔기의 인산화(phosphorylation)(Lambeth JD. et.al., Annual review of pathology., 9:119-145, 2014)를 동반하기 때문에, 본 발명자들은 LPS에 의해 유도된 NOX 발현(LPS-induced NOX expression)이 시조필란(SPG)에 의해 조절되는지 여부를 실험을 통해 확인하였다. The production of NOX (NADPH oxidase) and reactive oxygen species (ROS) are regulated by the expression of NOX subunits (Lambeth JD., Nature Reviews Immunology. 4 (3): 181-189, 2004) Phosphorylation of several serine residues located in the C-terminal region (Ser-303 to Ser-379) of the p47phox regulatory subunit of Lambeth JD et al. , Annual review of pathology., 9: 119-145, 2014), the present inventors have determined whether LPS-induced NOX expression is regulated by zymogen (SPG) And confirmed through experiments.

그 결과, 시조필란(SPG)을 다양한 농도(0, 1, 10, 100 ㎍/㎖)로 처리하여 배양한 대식세포(macrophage)에서 LPS에 의해 유도된 NOX 서브유닛(subunit)의 발현에는 유의한 차이가 없음을 확인하였으나(도 1의 F), p47phox S345, S359 및 S370의 인산화는 시조필란(SPG)의 전처리에 의해 완전히 저해됨을 확인하였다(도 1의 G). 따라서, 상기 결과들을 통해 치마버섯(Schizophyllum commune)의 수용성 베타-글루칸(β-glucan) 형태인 시조필란(Schizophyllan, SPG)이 LPS로 자극된 대식세포(LPS-stimulated macrophage)에서 p47phox 활성화 및 ROS-염증성 신호(ROS-inflammatory signaling)의 음성 조절(negative regulation)을 우선적으로 매개함을 알 수 있었다.As a result, the expression of LPS-induced NOX subunits in macrophages cultured by treatment of epidermal growth factor (SPG) with various concentrations (0, 1, 10, 100 ㎍ / (F in FIG. 1), phosphorylation of p47phox S345, S359, and S370 was completely inhibited by pretreatment with sipyoilane (SPG) (G in FIG. 1). Therefore, the above results show that Schizophyllan (SPG), a water-soluble β-glucan form of Schizophyllum commune , has been shown to inhibit p47phox activation and ROS-stimulated macrophage activation in LPS-stimulated macrophages, And negative regulation of inflammatory signaling (ROS-inflammatory signaling).

실시예Example 2-2:  2-2: p47phox는p47phox 대식세포에서 C- In macrophages, C- Src와With Src 상호작용(interaction)하고 NOX(NADPH oxidase) 조립(assembly)을 조절한다.  Interaction and regulation of NOX (NADPH oxidase) assembly.

시조필란(schizophyllan, SPG)에 의해 조절되는 TLR4 신호전달(signaling)에서 p47phox의 역할을 규명하기 위해, 본 발명자들은 p47phox가 활성산소(Reactive oxygen species, ROS) 조절에 관여하는 분자와 상호작용하는지 여부를 실험을 통해 확인하였다. LPS로 자극된 세포(LPS-stimulated cell)에서 시조필란(SPG) 전처리에 의한 p47phox 복합체(p47phox complex)의 공면역침강법(co-immunoprecipitation; co-IP) 분석을 수행하였다. 또한, 정제된 p47phox 복합체는 질량 분석법(Mass spectrometry analysis)을 통해 분석을 수행하였으며, 그 결과 60-kDa 단백질인 C-Src가 p47phox와 관련되어 있음을 확인하였다(도 3의 A). 시조필란(SPG) 존재하에 LPS 자극시, p47phox S345, S359 및 S370의 탈인산화(dephosphorylation)가 일어나고, 이에 C-Src가 일시적(15 내지 30분)이기는 하나, 내인성 p47phox와 강력하게 상호작용함을 내인성(endogenous) 공면역침강법(co-immunoprecipitation; co-IP) 분석을 통해 확인하였다(도 3의 B). 흥미롭게도, 대식세포(macrophage)에서 C-Src와 결합한 후에 p47phox가 gp91phox, p22phox, p67phox 및 p40phox와의 상호작용이 현저하게 억제됨을 확인하였다(도 3의 B 및 도 3의 C). 상기 결과를 통해 C-Src가 p47phox-매개 NOX 복합체(p47phox-mediated NADPH oxidase complex) 조립(assembly)을 억제함으로써, 면역 조절자로서 작용할 수 있음을 알 수 있었다.To characterize the role of p47phox in TLR4 signaling mediated by schizophyllan (SPG), the present inventors have determined whether p47phox interacts with molecules involved in the regulation of reactive oxygen species (ROS) Were confirmed through experiments. Co-immunoprecipitation (co-IP) analysis of the p47phox complex by pretreatment with zyphopyran (SPG) was performed in LPS-stimulated cells. The purified p47phox complex was analyzed by mass spectrometry analysis. As a result, it was confirmed that C-Src, a 60-kDa protein, was associated with p47phox (FIG. 3A). The dephosphorylation of p47phox S345, S359 and S370 occurs during LPS stimulation in the presence of zyphopyran (SPG), which strongly interacts with endogenous p47phox, although C-Src is transient (15-30 minutes) And was confirmed by endogenous co-immunoprecipitation (co-IP) analysis (Fig. 3B). Interestingly, it was confirmed that the interaction of p47phox with gp91phox, p22phox, p67phox and p40phox was significantly inhibited after binding to C-Src in macrophages (Fig. 3B and Fig. 3C). These results indicate that C-Src can act as an immunomodulator by inhibiting the assembly of a p47phox-mediated NADPH oxidase complex.

p47phox와 C-src의 다양한 절단된(truncated) 돌연변이체(mutant)(van der Vliet A., Free radical biology & medicine., 44(6):938-955 (2008); Yang CS. et.al., Journal of immunology., 182(6):3696-3705 (2009))를 이용한 보다 상세한 맵핑(mapping) 연구는 HEK 293T 세포에서 p47phox의 PX가 C-Src의 SH3와 상호작용하는데 필요함을 확인하였다(도 3의 D 및 도 4). C-Src의 양이 증가됨에 따라 HEK 293T 세포에서 p47phox와 p67phox 또는 p40phox의 상호작용을 감소시킴을 C-Src 구성체(construct)를 이용한 경쟁 분석법(competition assay)을 통해 확인하였다(도 3의 D 및 도 4). Various truncated mutants of p47phox and C-src (van der Vliet A., Free radical biology & medicine., 44 (6): 938-955 (2008); Yang CS et al . , Journal of Immunology, 182 (6): 3696-3705 (2009)) confirmed that PX of p47phox is required for interaction with SH3 of C-Src in HEK 293T cells 3 D and FIG. 4). As the amount of C-Src was increased, a decrease in the interaction between p47phox and p67phox or p40phox in HEK 293T cells was confirmed by a competition assay using a C-Src construct (see D and 4).

상기 결과를 종합하면, p47phox의 PX 도메인(domain)과 SH3의 결합을 통해 C-Src가 ROS-매개 염증 반응(ROS-mediated inflammatory responses)에 필수적인 음성 조절자(negative regulator)로 작용하고, TLR4(Toll-like receptor 4) 신호전달(signaling)에 대한 다른 NOXs(NADPH oxidase complex)와 경쟁하는 C-Src의 능력(capacity)을 강화시키는 상기 p47phox의 PX 도메인(domain)과 SH3의 결합은 시조필란(schizophyllan, SPG)에 의해 조절됨을 알 수 있다.These results suggest that C-Src acts as a negative regulator essential for ROS-mediated inflammatory responses through the binding of SH3 to the PX domain of p47phox and TLR4 The binding of SH3 to the PX domain of p47phox enhances the capacity of C-Src to compete with other NOXs (NADPH oxidase complex) for Toll-like receptor 4) signaling, schizophyllan, SPG).

실시예Example 2-3: 전신성 패혈증(systemic sepsis) 및 대장염(colitis) 마우스 동물 모델에서의 시조필란(schizophyllan, SPG)의 효과 2-3: Effect of schizophyllan (SPG) in mouse animal models in systemic sepsis and colitis

시조필란(schizophyllan, SPG)이 다균성 복막염(polymicrobial peritonitis) 및 패혈증(sepsis)로 인한 패혈성 쇼크(septic shock)로부터 마우스 동물 모델에 대해 보호 효과를 나타내는지 확인하기 위하여, 본 발명자들은 통상적으로 치명적인 인간 다균성 감염-유발 전신성 염증 반응 증후군(human polymicrobial infection-induced systemic inflammatory response syndrome)과 유사한 CLP(cecal ligation and puncture) 마우스 동물 모델을 사용하였다(Yang CS. et.al., Cell host & microbe., 11(3):264-276, 2012). 먼저, in vivo 상에서 시조필란(SPG)의 세포독성을 측정하였다. 28일 동안 시조필란(SPG)과 대조군으로서 비히클(vehicle)을 경구 투여한 그룹 간의 체중(body weight) 감소와 전신성 염증(systemic inflammation)은 유의한 차이를 나타내지 않았다(도 6의 A). 다음으로, 마우스 동물 모델에서 CLP로 인한 사망률(mortality)에 대한 시조필란(SPG)의 보호 효과를 검증하였다. 주목할 만하게, 3주 동안 마우스 당 20 ㎎/㎏의 투여량으로 시조필란(SPG)을 경구 투여로 전처리(pre-treatment)한, CLP(cecal ligation and puncture) 유도 마우스의 경우, 70 %의 마우스가 CLP 유도로 인한 죽음으로부터 보호됨을 확인하였다. 즉, 시조필란(SPG)을 전처리한 CLP 유도 마우스의 사망률이 현저하게 감소함을 확인하였다(도 5의 A). 반면, 비히클(vehicle)을 처리한 대조군의 경우 CLP 유도 마우스의 생존률이 현저하게 감소함을 확인하였다. Schizophyllan (SPG) To determine if it exhibits a protective effect against mouse animal models from septic shock due to polymicrobial peritonitis and sepsis, the present inventors have routinely performed studies on the pathogenesis of fatal human bacterial infection-induced systemic inflammation A cecal ligation and puncture mouse animal model similar to the human polymicrobial infection-induced systemic inflammatory response syndrome was used (Yang CS et al ., Cell host & microbe., 11 (3): 264- 276, 2012). First, in vivo The cytotoxicity of zyphopyran (SPG) was measured in the culture medium. There was no significant difference in body weight reduction and systemic inflammation between the group administered with orally administered shingo pill (SPG) for 28 days and the vehicle as a control (Fig. 6A). Next, we demonstrated the protective effect of zymogen (SPG) on mortality due to CLP in mouse animal models. Notably, in the case of CLP (cecal ligation and puncture) -induced mice, which had been pre-treated orally with zymoglobulin (SPG) at a dose of 20 mg / kg per mouse for 3 weeks, 70% Lt; RTI ID = 0.0 &gt; CLP &lt; / RTI &gt; induction. That is, it was confirmed that the mortality rate of CLP-induced mice pretreated with Shizo pilana (SPG) was remarkably reduced (Fig. 5A). On the other hand, the survival rate of CLP-induced mice was significantly reduced in the vehicle-treated control group.

또한, 사망률 결과와 일치하게, 대조군으로서 비히클(vehicle)이 처리된 CLP 유도 마우스의 비장(spleen) 및 폐(lung) 조직에 대해 H&E(Hematoxylin and Eosin) 염색을 수행해 본 결과, 폐포 벽(alveolar wall)이 두꺼워진 심각한 폐 염증(pulmonary inflammation) 및 간세포(세포질의 호산구 증가증(eosinophilia) 및 핵농축(pyknosis) 증가)와 비장세포(핵붕괴(karyorrhexis))의 괴사(necrosis)를 나타내었다. 그러나, 시조필란(SPG)을 처리한 CLP 유도 마우스에서는 상기와 같은 변화, 즉 심각한 폐 염증 및 간세포와 비장세포의 괴사를 유의하게 감소시켰다(도 5의 B, 왼쪽). 이러한 조직학적 매개 변수(histologic parameters)의 반정량적 점수(semiquantitative scoring)는 조직 내 염증 세포의 수와 분포 뿐만 아니라, 세(細)기관지(bronchiolar)의 상피 손상 및 회복(repair)의 증거와 같은 비-염증성(non-inflammatory) 변화까지 포함하여 측정되었다. CLP에 의해 유발된 비장 비대증(splenomegaly)에 있어서, 시조필란(SPG)을 처리한 CLP 유도 마우스의 패혈증의 중증도(severity)가 비히클(vehicle) 처리된 대조군 CLP 유도 마우스와 비교하여 현저하게 낮음을 확인하였다(도 5의 B, 오른쪽; 및 도 6). 상기 결과를 통해, CLP-유도 패혈증(CLP-induced sepsis)에서 시조필란(SPG)이 보호하는 역할을 함을 알 수 있었다.Also, in accordance with the mortality results, H & E (Hematoxylin and Eosin) staining for spleen and lung tissue of CLP-induced mice treated with vehicle as a control group resulted in alveolar wall ) Showed severe pulmonary inflammation and hepatocyte (eosinophilia and pyknosis increase) and necrosis of splenocytes (karyorrhexis), both of which were thickened. However, CLP-induced mice treated with zymogen (SPG) significantly reduced such changes as severe lung inflammation and hepatocyte and splenocyte necrosis (Fig. 5B, left). Semiquantitative scoring of these histologic parameters can be used to detect not only the number and distribution of inflammatory cells in the tissue but also the number of inflammatory cells in the bronchiolar epithelium, Including non-inflammatory changes. In splenomegaly induced by CLP, the severity of sepsis in CLP-induced mice treated with zymogen (SPG) was significantly lower compared to vehicle-treated control CLP-induced mice (B in Fig. 5, right, and Fig. 6). From the above results, it can be seen that sipyoilan (SPG) plays a protective role in CLP-induced sepsis.

아울러, 시조필란(schizophyllan, SPG)이 in vivo 상에서 DSS(dextran sodium sulfate)에 의해 유도되는 위장염증(gastrointestinal inflammation)을 저해할 수 있는지에 대한 추가적인 실험 결과를 확인하기 위해, DSS(dextran sodium sulfate)로 유도된 급성 대장염 마우스 모델을 사용하였다. DSS 모델은 인간의 궤양성 대장염(Ulcerative colitis, UC)과 연관된 많은 임상적 관찰을 재현(recpitulate)하는 것으로 나타났다(Yang CS. et.al., Cell host & microbe., 11(3):277-89, 2012; Deretic V. et.al., Scientific American., 298(5):74-81, 2008; Deretic V. et.al., Cell host & microbe., 5(6):527-549, 2009). 급성 대장염 마우스 모델 구축을 위해, 6일 동안 마우스에 3% 또는 5% DSS를 처리하고 25일 동안 생존율을 평가하였다. 이러한 조건에서, 시조필란(SPG)을 전처리한 DSS 유도 마우스는 대조군으로서 비히클(vehicle)을 처리한 DSS 유도 마우스에 비해 생존율이 현저하게 증가한 것으로 나타났다(도 5의 C 및 도 6의 C). 상기 생존율 결과와 일치하게, 시조필란(SPG)을 전처리한 DSS 유도 마우스는 위장관 질환(gastrointestinal disease)의 증진과 관련된 체중 감소 및 임상적 특징(대변 농도(consistnecy) 및 직장 출혈(rectal bleeding))에 있어, 비히클(vehicle)을 처리한 DSS 유도 대조군 마우스에 비해 유의한 감소를 보였으며, 결장(colon)의 길이 또한 상당히 증가한 것으로 나타났다(도 5의 D, 도 5의 E, 도 6의 C 및 도 6의 D). 이런 임상 평가는 대표적인 결장 절편(section)의 조직학적 검사로 확인하였다(Shibutani ST. et.al., Nature immunology., 16(10):1014-1024, 2015). 이러한 조직학적 매개 변수(histologic parameters)의 반정량적 점수(semiquantitative scoring)는 장세포 손실(enterocyte loss), 담즙(crypt) 염증, 고유판 단핵세포(lamina propria mononuclear cell)와 호중구의 침윤(infiltration), 상피 과증식(epithelial hyperplasia)과 같은 요소 등을 포함하여 측정되었다. 시조필란(SPG)을 처리한 DSS 유도 마우스의 대장염의 중증도(severity)가 비히클(vehicle) 처리된 대조군 DSS 유도 마우스와 비교하여 상당히 낮음을 확인하였다(도 5의 F). DSS 유도 마우스에서의 이러한 상기 표준 병리 검사 결과(standard pathological test)는 대장염(colitis)이 유발된 동안 일어나는 병리학적 변화가 시조필란(SPG)에 의해 크게 개선되었음을 나타내었다. In addition, progenitor pilran (schizophyllan, SPG) is in vivo (DSS) (dextran sodium sulfate) -induced acute colitis mouse model was used to confirm further experimental results on whether it could inhibit gastrointestinal inflammation induced by DSS (dextran sodium sulfate). The DSS model has been shown to recite many clinical observations associated with human ulcerative colitis (UC) (Yang CS et al ., Cell host & microbe., 11 (3): 277- 89, 2012; Deretic V. et.al., Scientific American, 298 (5):.. 74-81, 2008; Deretic V. et.al., Cell host & microbe, 5 (6): 527-549, 2009). For the construction of acute colitis mouse model, mice were treated with 3% or 5% DSS for 6 days and the survival rate was evaluated for 25 days. Under these conditions, DSS-induced mice pretreated with zymogen (SPG) showed a significantly higher survival rate compared to DSS-treated mice treated with vehicle as a control (FIG. 5C and FIG. 6C). Consistent with the survival rate results, DSS-induced mice pretreated with zyphopyran (SPG) were associated with weight loss and clinical characteristics associated with the enhancement of gastrointestinal disease (consistnecy and rectal bleeding) And significantly increased the length of the colon compared to the DSS-induced control mice treated with vehicle (FIG. 5D, FIG. 5E, FIG. 6C and FIG. 6, D). This clinical evaluation was confirmed by histological examination of representative colon sections (Shibutani ST. Et al ., Nature immunology., 16 (10): 1014-1024, 2015). Semiquantitative scoring of these histologic parameters can be used to detect enterocyte loss, crypt inflammation, infiltration of neutrophils with lamina propria mononuclear cells, And elements such as epithelial hyperplasia. The severity of colitis in DSS-induced mice treated with zymogen (SPG) was found to be significantly lower compared to vehicle-treated control DSS-induced mice (Fig. 5F). This standard pathological test in DSS-induced mice indicated that the pathological changes during colitis induction were greatly improved by zymogen (SPG).

종합하면 상기 결과를 통해, 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis) 및 급성 대장염(acute colitis)에서 시조필란(SPG)이 보호하는 역할을 함을 알 수 있었다. 즉, 시조필란(SPG)이 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis) 및 급성 대장염(acute colitis)에 대한 예방 및 치료 효과가 있음을 알 수 있었다.Taken together, these results indicate that epidermal filament (SPG) plays a protective role in polymicrobial sepsis and acute colitis. In other words, it was found that Shijo filan (SPG) has a preventive and therapeutic effect on polymicrobial sepsis and acute colitis.

실시예Example 2-4:  2-4: SPGSPG /C-/ C- SrcSrc -SH3 -SH3 펩타이드Peptides 복합체( Complex SPGSPG /C-/ C- SrcSrc -SH3 peptide complex)의 합성 -SH3 peptide complex)

베타-1,3-글루칸(β-1,3-glucan)인 시조필란(schizophyllan, SPG) 기반의 약물 전달 시스템(SPG-based drug delivery system)은 기능성 ODNs(oligodeoxynucleotides) 또는 siRNA(small interfering RNA)를 표적화된(targeted) 세포에 전달하도록 디자인되었다(Padkin A. et.al., Critical care medicine., 31(9):2332-2338, 2003; Vincent JL. et.al., Jama ., 274(8):639-644, 1995; Janeway CA. et.al., Annual review of immunology., 20:197-216, 2002). 따라서 본 발명자들은 시조필란(schizophyllan, SPG)을 포함하는 복합체(complex)의 형성물(formation)로서, p47phox와 C-Src의 상호작용을 억제하기 위해 p67phox와 p47phox의 보존된 잔기(conserved residue)를 포함하는 C-Src 서열의 SH3를 사용하였다(도 7의 A 및 표 1). SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체는 상기 실시예 1-5 내지 실시예 1-10에서 기술한 대로 준비하였다(도 8). SPG와 펩타이드를 결합(conjugation)시키기 위해서는 일련의 교차결합(crosslinking) 과정이 필요하다. 숙신산 무수물(succinic anhydride, SA; DMSO에 용해되어 있는 형태)은 SPG 표면의 히드록시기(hydroxyl group)를 카복실산 그룹(carboxylic acid groups)으로 전환시켰다. 이후, FT-IR 분광법(Fourier Transform Infrared Spectroscopy)을 사용하여, 말단에 카복실산을 갖는 SPG(carboxylic acid terminated SPG)가 기존 SPG(naive SPG)에서는 존재하지 않는 ~1723 ㎝-1 에서 C=O 결합을 보임으로 확인하였다(도 7의 B). 또한, 1H-NMR(300 MHz, DMSOD6) 결과를 통해 SPG 표면의 카복실산의 존재를 검증하였는데, SPG에서 숙신산 무수물의 양성자(proton)에 대한 2.9 ppm에 해당되는 중요한 공명 신호를 증명하였다. 아울러, SPG/C-Src-SH3의 1H-NMR 스펙트럼은 SPG/c-Src-SH3 내 트립토판(Tryptophan, Trp; W)의 양성자에 대한 3.6 ppm과 6.9~7.5 ppm으로의 특징적인 이동을 보여주었다. 한편, 카복실산에 의해 기능화된(functionalized) SPG와 가교제(crosslinker)인 EDC/NHC의 교차결합(crosslinking)은 아미드 결합(amide bonds)을 형성시켰다(도 7의 C). 이후, FT-IR 분광법을 사용하여 분석한 결과, 1550 ㎝-1 에서 아미드 그룹(amide group)이 관찰되었다. 따라서, 펩타이드에 대한 결합 모티프(coupling motif)가 가교제(crosslinker)와 성공적 결합(conjugation)을 하였음을 입증하였다. 최종 산물, 즉, SPG/C-Src-SH3(SPG/SA/NHS/SH3)에 대해 FT-IR 분광법을 사용하여 분석한 결과, 최종 산물은 C=O, N-C=O 피크(peak) 뿐만 아니라, 결합된 펩타이드의 타이로신(Tyrosin, Try; Y) 및/또는 트립토판(Tryptophan, Trp; W)에서 방향족(aromatic) C=C 신축(stretch)에 관여하는 다른 피크의 존재 또한 확인하였다(도 7의 B). 또한, 자외-가시광 분광법(UV-Vis Spectroscopy) 분석을 통해서도 상기 최종 산물에 대한 혼합물(mixture)에서 펩타이드의 존재를 확인하였다(도 7의 D). 한편, 4~15%의 농도 구배 젤 전기영동(gradient native gel electrophoresis)을 수행하여 SPG가 결합된 펩타이드(SPG conjugated peptide)가 성공적인 결합(conjugation)을 하였음을 간접적으로 확인하였다. 더 나아가, SPG-SH3 펩타이드 복합체(SPG-SH3 peptide complexes)가 대식세포(macrophage)에 의해 섭식(intake) 되는지 확인하기 위해 면역형광(immunofluorescence)을 수행하였다. 그 결과, 도 7의 E에 나타난 바와 같이, Raw267.4 세포가 TAMRA-C-Src-SH3 펩타이드 단독에 비해 SPG/TAMRA-C-Src-SH3 펩타이드 복합체를 더 효과적으로 섭식(intake)함을 확인하였다. 따라서 상기 결과를 통해, 시조필란(schizophyllan, SPG)이 대식세포에 C-Src-SH3 펩타이드의 세포 내 전달에 중요한 역할을 함을 알 수 있었다.Based drug delivery system based on schizophyllan (SPG), which is beta-1, 3-glucan (beta-1,3-glucan) the was designed to deliver the targeted (targeted) cells (Padkin A. et.al., Critical care medicine , 31 (9):... 2332-2338, 2003; Vincent JL et.al., Jama, 274 ( 8: 639-644, 1995; Janeway CA. et al., Annual review of immunology., 20: 197-216, 2002). Accordingly, the inventors have discovered that a conserved residue of p67phox and p47phox can be used to inhibit the interaction of p47phox with C-Src as a formation of a complex comprising schizophyllan (SPG) SH3 of the C-Src sequence was used (Fig. 7A and Table 1). The SPG / C-Src-SH3 peptide complex was prepared as described in Examples 1-5 to 1-10 above (Fig. 8). A series of crosslinking steps is required to conjugate the SPG and the peptide. Succinic anhydride (SA) (a form dissolved in DMSO) has converted the hydroxyl group of the SPG surface to carboxylic acid groups. After that, carboxylic acid terminated SPG having a carboxylic acid at the terminal was converted to a C═O bond at ~ 1723 cm -1 , which is not present in a conventional SPG (naive SPG), using FT-IR spectroscopy (Fig. 7B). In addition, 1 H-NMR (300 MHz, DMSOD6) results confirmed the presence of carboxylic acid on the SPG surface, demonstrating an important resonance signal corresponding to 2.9 ppm of the succinic anhydride proton in SPG. In addition, the 1 H-NMR spectrum of SPG / C-Src-SH3 shows characteristic shifts of 3.6 ppm and 6.9 to 7.5 ppm for the protons of tryptophan (Tryptophan, Trp; W) in SPG / c-Src-SH3 gave. On the other hand, cross-linking of functionalized SPG with carboxylic acid and crosslinking agent EDC / NHC formed amide bonds (FIG. 7C). Thereafter, analysis using FT-IR spectroscopy revealed an amide group at 1550 cm -1 . Thus, it has been demonstrated that the binding motif for the peptide has successfully conjugated with the crosslinker. Analysis of the final product, SPG / C-Src-SH3 (SPG / SA / NHS / SH3) using FT-IR spectroscopy showed that the final product was not only C = O, NC = O peak , The presence of other peaks involved in aromatic C = C stretch in tyrosine (Try; Y) and / or tryptophan (Tryptophan, Trp; W) B). The presence of the peptide in the mixture for the final product was also confirmed by UV-Vis Spectroscopy analysis (FIG. 7D). On the other hand, it was indirectly confirmed that SPG-conjugated peptide successfully conjugated by performing 4-15% gradient native gel electrophoresis. Further, immunofluorescence was performed to confirm that the SPG-SH3 peptide complexes were taken up by macrophages. As a result, it was confirmed that Raw267.4 cells more effectively ingested the SPG / TAMRA-C-Src-SH3 peptide complexes than the TAMRA-C-Src-SH3 peptide alone . Therefore, it was found from the above results that schizophyllan (SPG) plays an important role in the intracellular delivery of C-Src-SH3 peptide to macrophages.

실시예Example 2-5:  2-5: SPGSPG /C-/ C- SrcSrc -SH3 -SH3 펩타이드Peptides 복합체는  The complex NOXNOX (( NADPHNADPH oxidaseoxidase )-매개 신호전달(NOX-mediated signaling)에 부정적인 영향(negative effect)을 미친다.) -Negative effect on NOX-mediated signaling.

시조필란(schizophyllan, SPG)-SH3 펩타이드(peptide)가 약리학적 및 생물학적 프로파일(profile)에 미치는 영향을 더 구체적으로 규명하고자 하였다. 이에, 먼저 세포의 생장 저해에서 오는 저해 효과의 가능성을 배제하기 위해 펩타이드의 세포독성을 측정하였다. 다양한 농도(1, 5, 10 ㎍/㎖)의 펩타이드를 처리하고 배양한 Raw 264.7 세포와 THP-1 세포의 세포독성을 측정한 결과, 펩타이드에 의한 세포 생장에 있어 유의한 차이를 보이지 않았으며, 이에 펩타이드에 의한 세포독성을 나타내지 않음을 확인하였다(도 10의 A). 다음으로, SH3-펩타이드가 NOX(NADPH oxidase) 조립(assembly)에 있어 영향을 미치는지 그 가능성을 실험을 통해 확인하였다. HEK 293T 세포에 SPG-SH3-1 펩타이드 복합체, SPG-SH3-2 펩타이드 복합체, SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 처리하고 6시간 동안 배양하는 동안 p47phox-p67phox 또는 p40phox 간의 상호작용이 효과적으로 차단됨을 확인하였다. 반면, 대조군으로서 사용한 SPG-SC(Scramble) 펩타이드 복합체와 SPG 단독 처리에 의해서는 p47phox-p67phox 또는 p40phox 간의 상호작용이 차단되지 않았다(도 9의 A). 특히, SPG와 결합되지 않은, SH3 펩타이드 단독 처리에 의해서도 p47phox-p67phox 또는 p40phox 간의 상호작용이 차단되지 않음을 확인하였으며, 이에, SPG 결합 없이는 C-Src-SH3 펩타이드의 세포 내 전달이 비효율적임을 알 수 있었다(도 10의 B). The effect of schizophyllan (SPG) -SH3 peptides on pharmacological and biological profiles was investigated more specifically. First, the cytotoxicity of the peptide was measured in order to exclude the possibility of the inhibition effect from the cell growth inhibition. Cytotoxicity of Raw 264.7 cells and THP-1 cells treated with various concentrations of peptides (1, 5, 10 ㎍ / ml) and measured for cytotoxicity did not show any significant difference in the cell growth by the peptides, And did not show cytotoxicity by the peptides (Fig. 10A). Next, the possibility of whether the SH3-peptide affects the NOX (NADPH oxidase) assembly is experimentally confirmed. The interaction between p47phox-p67phox or p40phox during HEK 293T cells treated with SPG-SH3-1 peptide complex, SPG-SH3-2 peptide complex, SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide complex and incubated for 6 hours . On the other hand, SPG-SC (Scramble) peptide complex used as a control and SPG alone treatment did not block the interaction between p47phox-p67phox or p40phox (Fig. 9A). In particular, it was confirmed that the interaction between p47phox-p67phox and p40phox was not blocked by the SH3 peptide alone, which was not conjugated with SPG. Thus, it was found that the intracellular delivery of C-Src-SH3 peptide was ineffective without SPG binding (FIG. 10B).

미생물 감염(microbial infection) 또는 TLR(Toll-like receptor) 활성화(activation)에 따라, NOX(NADPH oxidase) 서브유닛(subunit)은 주기적으로 면역세포(예컨대, 대식세포와 단핵구) 및 비-면역세포(예컨대, 내피세포와 상피세포)와 상호작용하고 상기 세포들을 활성화 시켜 이들로부터 활성산소(Reactive oxygen species, ROS) 및 염증성 사이토카인(inflammatory cytokines)의 생성을 촉진시킨다(van der Vliet A. et.al., Free radical biology & medicine., 44(6):938-955, 2008). 이에, 본 발명의 SPG-SH3 펩타이드 복합체가 TLR4-ROS 신호전달(signaling)을 차단하는지 확인하고자, 먼저 THP-1-Flag-p47phox 세포와 Raw264.7-Flag-p47phox 세포에 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드 복합체와, SPG-SH3-1 펩타이드 복합체, SPG-SH3-2 펩타이드 복합체, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 1시간 동안 다양한 농도(1, 5, 10 ㎍/㎖)로 전처리하고, 30분 동안 LPS/TLR4로 자극을 주었다. 이후, 플래그(Flag)-p47phox 복합체에 대한 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, p67phox, p40phox, p22phox, gp91phox에 대한 다양한 항체로 면역 블롯(IB)을 수행하였다. 그 결과, SPG-SH3 펩타이드를 처리한 경우에는 p47phox-매개-NOX(p47phox-mediated NADPH oxidase) 상호작용 및 NOX 조립(assembly)이 현저하게 억제되었다. 이에 반해, 대조군으로서 사용한 SPG-SC(Scramble) 펩타이드 복합체에 의해서는 p47phox-매개-NOX 상호작용 및 NOX 조립(assembly)억제되지 않았다(도 9의 B 및 도 10의 C). 또한, SPG-SH3 펩타이드를 처리한 경우, 벡터(vector) 또는 p47phox를 발현하는 세포에서 LPS에 의해 유도된 초과산화물 음이온(superoxide anion) 생성, NOX 활성 및 NF-κ 루시퍼라아제(NF-κB-luciferase) 프로모터 활성이 농도 의존적으로 현저히 억제됨을 확인하였다(도 9의 C, 9의 D 및 도 10의 D). NOX 신호전달(NADPH oxidase signaling)은 전-염증성 사이토카인(pro-inflammatory cytokine)의 발현을 조절하는 것으로 알려져 있다(Gay NJ. et.al., Annual review of biochemistry., 76:141-165, 2007; van der Vliet A. et.al., Free radical biology & medicine., 44(6):938-955, 2008). 이에, 본 발명의 SPG-SH3 펩타이드 복합체가 전-염증성 사이토카인(pro-inflammatory cytokine)의 발현을 조절하는지 확인하고자, Raw 264.7 세포 또는 J744A.1 세포에 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드 복합체와, SPG-SH3-1 펩타이드 복합체, SPG-SH3-2 펩타이드 복합체, 또는 SPG-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 다양한 농도(1, 5, 10 ㎍/㎖)로 처리하고, LPS/TLR4 또는 NLRP3 염증조절복합체(nucleotide-binding domain, leucine-rich repeats containing family, pyrin domain-containing-3 inflammasome) 유도제(inducer)를 처리하여 자극을 주었다. 이후, 상층액(supernatant)을 수집하여 사이토카인의 발현량을 분석하였다. 그 결과, 대조군으로 사용한 SPG-SC(Scramble) 펩타이드를 처리한 경우와 비교하여 SPG-SH3 펩타이드를 처리한 경우, TNF-α, IL-6, IL-1β, IL-18과 같은 전-염증성 사이토카인(pro-inflammatory cytokine)의 생성이 상당히 저해됨을 확인하였다(도 9의 E 및 도 10의 E). 상기 결과를 통해, SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체가 TLR4 및 NLRP3 염증조절복합체(NLRP3 inflammasome)에 의해 유도되는 ROS-매개 전-염증성 신호(ROS mediated pro-inflammatory signaling)를 특이적으로 조절하는데 사용될 수 있음을 알 수 있었다.Following microbial infection or TLR activation, the NOX (NADPH oxidase) subunit is periodically activated by immune cells (e.g., macrophages and monocytes) and non-immune cells For example, endothelial cells and epithelial cells, and activates the cells to promote the production of reactive oxygen species (ROS) and inflammatory cytokines from them (van der Vliet A. et al .., Free radical biology & medicine , 44 (6): 938-955, 2008). In order to confirm whether the SPG-SH3 peptide complex of the present invention blocked TLR4-ROS signaling, SPP-SC (SEQ ID NO: 1), which is a control group for THP-1-Flag-p47phox cells and Raw264.7- Scramble peptide complex, SPG-SH3-1 peptide complex, SPG-SH3-2 peptide complex or SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide complexes at various concentrations (1, 5, 10 / / And stimulated with LPS / TLR4 for 30 min. Then, immunoprecipitation (IP) was performed on Flag-p47phox complex and immunoblot (IB) was performed with various antibodies against p67phox, p40phox, p22phox and gp91phox. As a result, treatment with SPG-SH3 peptide significantly inhibited p47phox-mediated NADPH oxidase interaction and NOX assembly. In contrast, p47phox-mediated -NOX interaction and NOX assembly were not inhibited by the SPG-SC (Scramble) peptide complex used as a control (FIG. 9B and FIG. 10C). In addition, when SPG-SH3 peptide was treated, LPS-induced superoxide anion production, NOX activity, and NF-κB luciferase (NF-κB- luciferase promoter activity was significantly inhibited in a concentration-dependent manner (Fig. 9C, 9D and 10D). NOX signaling (NADPH oxidase signaling) is known to regulate the expression of pro-inflammatory cytokines (Gay NJ et al., Annual review of biochemistry., 76: 141-165, 2007 van der Vliet A. et al. , Free radical biology & medicine, 44 (6): 938-955, 2008). Therefore, in order to confirm whether the SPG-SH3 peptide complex of the present invention regulates the expression of pro-inflammatory cytokine, SPG-SC (Scramble) peptide complex, which is a control group in Raw 264.7 cell or J744A.1 cell, , SPG-SH3-1 peptide complex, SPG-SH3-2 peptide complex, or SPG-SH3-1 and SH3-2 peptide complexes at various concentrations (1, 5, 10 / / NLRP3 inflammatory modulators (nucleotide-binding domain, leucine-rich repeats containing family, pyrin domain-containing-3 inflammasome) inducers were stimulated. Then supernatant was collected and the amount of cytokine expressed was analyzed. As a result, compared to the case of treatment with SPG-SC (Scramble) peptide used as a control group, when treated with SPG-SH3 peptide, proinflammatory cytokines such as TNF-α, IL-6, IL-1β and IL- It was confirmed that production of pro-inflammatory cytokine was significantly inhibited (FIG. 9E and FIG. 10E). These results indicate that the SPG / C-Src-SH3 peptide complex specifically regulates ROS mediated pro-inflammatory signaling induced by the TLR4 and NLRP3 inflammatory regulatory complex (NLRP3 inflammasome) Can be used.

실시예Example 2-6: 전신성 패혈증(systemic sepsis) 마우스 동물 모델에서의 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체의 치료 효과 2-6: Therapeutic effect of SPG / C-Src-SH3 peptide complex in mouse model of systemic sepsis mice

본 발명의 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체가 CLP(cecal ligation and puncture)-유도 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis) 마우스 동물 모델에 대해 보호 효과를 나타내는지 확인하기 위하여, 먼저, 마우스 동물 모델에서 CLP로 인한 사망률(mortality)에 대한 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체의 치료 효과를 검증하였다. 구체적으로, CLP-유도 마우스에 마우스 당 10 ㎎/㎏의 투여량으로 SPG/C-Src-SH3-1 펩타이드, SPG/C-Src-SH3-2 펩타이드, 또는 SPG/C-Src-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드를 3, 6, 12시간에 3번 복강 내 주사(intraperitoneal injection) 한 후, CLP-유도 마우스의 생존율을 확인하였다. 그 결과, SPG-SH3-1 펩타이드 또는 SPG-SH3-2 펩타이드를 복강 투여한 CLP-유도 마우스의 경우, 40 %의 마우스가 CLP 유도로 인한 죽음으로부터 보호됨을 확인하였다. 특히, 마우스 당 10 ㎎/㎏의 투여량으로 SPG/C-Src-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드를 복강 투여한 CLP-유도 마우스의 경우, 80 %의 마우스가 CLP 유도로 인한 죽음으로부터 보호됨을 확인하였다. 즉, SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체를 처리한 CLP 유도 마우스의 사망률이 현저하게 감소함을 확인하였다(도 11의 A). 또한, 사망률 결과와 일치하게, 대조군으로 비히클(vehicle)을 처리한 CLP 유도 마우스와 비교하여 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체를 처리한 CLP 유도 마우스의 비장(spleen)에서 NOX 활성과, 혈청(serum)에서의 TNF-α, IL-6, IL-1β, IL-18과 같은 전-염증성 사이토카인(pro-inflammatory cytokines)의 농도가 현저히 감소함을 확인하였다. 그러나, IL-10과 IL-4의 농도는 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체를 처리한 CLP 유도 마우스 그룹과 대조군으로서 비히클(vehicle)을 처리한 CLP 유도 마우스 그룹 간에 유의한 차이를 나타내지는 않았다(도 11의 B및 도 11의 C). SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체를 처리한 CLP 유도 마우스와 대조군으로서 비히클(vehicle)을 처리한 CLP 유도 마우스의 비장(spleen) 및 폐(lung) 조직에 대해 H&E(Hematoxylin and Eosin) 염색을 수행하고, 이를 기반으로 조직학적 매개 변수(histologic parameters)의 반정량적 점수(semiquantitative scoring)를 측정하였다. 그 결과, 비히클(vehicle)을 처리한 대조군 CLP 유도 마우스와 비교하여 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체를 처리한 CLP 유도 마우스의 경우, 면역세포(immune cells)의 침투(infiltration)가 감소하고, 비장 및 폐 조직의 손상이 감소하였으며, 비장에서 iNOS 및 COX-2 단백질이 낮은 수준으로 발현함을 확인하였다(도 11의 D 및 도 11의 E).In order to confirm that the SPG / C-Src-SH3 peptide complex of the present invention shows a protective effect on an animal model of CLP (cecal ligation and puncture) -induced polymicrobial sepsis mouse, CLP The effect of SPG / C-Src-SH3 peptide complex on the mortality rate was tested. Specifically, SPG / C-Src-SH3-1 peptide, SPG / C-Src-SH3-2 peptide, or SPG / C-Src-SH3-1 peptide at a dose of 10 mg / And SH3-2 peptide were injected intraperitoneally three times at 3, 6 and 12 hours, and the survival rate of CLP-induced mice was confirmed. As a result, it was confirmed that 40% of the CLP-induced mice treated with the SPG-SH3-1 peptide or the SPG-SH3-2 peptide were protected from death due to CLP induction. Specifically, in the case of CLP-induced mice in which the SPG / C-Src-SH3-1 and SH3-2 peptides were intraperitoneally administered at a dose of 10 mg / kg per mouse, 80% of the mice were protected from death due to CLP induction Respectively. That is, it was confirmed that the mortality of the CLP-induced mouse treated with the SPG / C-Src-SH3 peptide complex was remarkably reduced (FIG. 11A). Also, consistent with the mortality results, the NOX activity and the serum levels of serum (in the spleen of the CLP-induced mice treated with the SPG / C-Src-SH3 peptide complexes as compared to the vehicle treated vehicle as the control group serum concentrations of pro-inflammatory cytokines such as TNF-α, IL-6, IL-1β and IL-18 were significantly reduced. However, the concentrations of IL-10 and IL-4 did not show a significant difference between the CLP-induced mouse group treated with the SPG / C-Src-SH3 peptide complex and the CLP-induced mouse group treated with vehicle as a control (Fig. 11B and Fig. 11C). H & E (Hematoxylin and Eosin) staining was performed on the spleen and lung tissues of CLP-induced mice treated with SPG / C-Src-SH3 peptide complex and CLP-induced mice treated with vehicle as a control group And semiquantitative scoring of histologic parameters was measured based on this. As a result, in the case of CLP-induced mice treated with the SPG / C-Src-SH3 peptide complex as compared to vehicle-treated control CLP-induced mice, the infiltration of immune cells was reduced, Spleen and pulmonary tissue were reduced, and iNOS and COX-2 protein were expressed at low levels in the spleen (FIG. 11D and FIG. 11E).

다음으로, 본 발명자들은 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체가 in vivo 상에서 약리학적 활성을 가지는지 그 여부를 실험을 통해 확인하였다. 치명적인 염증성 질환을 치료하기 위한 치료제를 탐색하는 데 있어, 신규 펩타이드를 평가할 때 NOX 단백질 결합 프로파일(NOX protein binding profile)과 활성을 in vivo 상에서 탐지하는 것이 중요하다. 도 9의 B, 도 10의 C 및 도 11의 B에 나타낸 in vitroin vivo 결과와 일치하게, SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체를 처리한 CLP 유도 마우스의 비장에서 NOX 단백질 결합 프로파일(NOX protein binding profile) 및 활성을 확인해 본 결과, 비장세포(splenocytes)에서 단백질의 발현 정도에는 영향을 미치지 않았으나, SPG/C-Src-SH3 펩타이드 처리에 의해 p47phox와 p67phox 또는 p40phox의 결합이 현저히 감소됨을 확인하였다(도 11의 F). 한편, CLP에 의해 유발된 치사율은 말초 혈액(peripheral blood) 및 복막액(peritoneal fluid)에서 세균 콜로니 형성 수(bacterial colony forming units(CFU))와 양성적으로 관련되어 있기 때문에(Matsunaga K. et.al., Nature cell biology., 11(4):385-96, 2009), 본 발명의 SPG/C-Src-SH3 펩타이드가 세균 제거 또한 향상시키는지 확인하였다. CLP-유도 마우스에 SPG/C-Src-SH3 펩타이드를 처리한 결과, 말초 혈액(peripheral blood) 및 복막액(peritoneal fluid)에서 세균 콜로니 형성 수(bacterial colony forming units(CFU))가 현저히 감소함을 확인하였다. 특히, 대조군인 SPG-SC(Scramble) 펩타이드를 처리한 경우에는 세균(bacteria)에 대한 사멸 효과가 관찰되지 않았으나, SPG/C-Src-SH3 펩타이드를 처리한 경우에는 직접적인 세균 사멸효과가 관찰되었다(도 11의 G). Next, the present inventors confirmed through experiments whether or not the SPG / C-Src-SH3 peptide complex has pharmacological activity in vivo . In the search for therapeutic agents to treat fatal inflammatory diseases, it is important to detect the NOX protein binding profile and activity in vivo when evaluating new peptides. In agreement with the in vitro and in vivo results shown in Figures 9B, 10C and 11B, the NOX protein binding profile (NOX) in the spleen of CLP-induced mice treated with the SPG / C-Src-SH3 peptide complex protein binding profile and activity of SPG / C-Src-SH3 peptides did not affect the degree of protein expression in splenocytes, but the binding of p47phox to p67phox or p40phox was markedly reduced by SPG / C-Src-SH3 peptide treatment (F in Fig. 11). On the other hand, CLP-induced mortality is positively associated with bacterial colony forming units (CFU) in peripheral blood and peritoneal fluid (Matsunaga K. et. al., Nature cell biology., 11 (4): 385-96, 2009), confirming that the SPG / C-Src-SH3 peptide of the present invention also improved bacterial elimination. Treatment of CLP-induced mice with SPG / C-Src-SH3 peptide resulted in a significant decrease in bacterial colony forming units (CFU) in peripheral blood and peritoneal fluid Respectively. In particular, treatment with SPG-SC (Scramble) peptide, a control group, did not kill the bacteria, but a direct bactericidal effect was observed when SPG / C-Src-SH3 peptide was used G in Fig. 11).

따라서, 상기 결과를 통해, SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체가 CLP에 의해 유발된 패혈증을 완화시키는 치료 효과가 있음을 확인하였으며, 이에, 본 발명의 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체를 패혈증과 같은 난치성 염증 질환 치료제로 유용하게 이용할 수 있음을 유추할 수 있다.Therefore, it was confirmed from the above results that the SPG / C-Src-SH3 peptide complex had a therapeutic effect of alleviating the CLP-induced septicemia. Thus, the SPG / C- And thus can be used as a therapeutic agent for intractable inflammatory diseases.

실시예Example 2-7: 2-7: 대장염(colitis) 마우스 동물 모델에서의 In colitis mouse animal models, SPGSPG /C-/ C- SrcSrc -SH3 -SH3 펩타이Peptic 드 복합체의 치료 효과Therapeutic effect

본 발명의 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체가 DSS(dextran sodium sulfate)-유도 급성 대장염(acute colitis) 마우스 동물 모델에 대해 보호 효과를 나타내는지 확인하기 위하여, 먼저, 마우스 동물 모델에서 DSS에 급성 대장염으로 인한 사망률(mortality)에 대한 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체의 치료 효과를 검증하였다. 구체적으로, DSS-유도 마우스에 마우스 당 10 ㎎/㎏의 투여량으로 SPG/C-Src-SH3-1 펩타이드, SPG/C-Src-SH3-2 펩타이드, 또는 SPG/C-Src-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드를 5번 복강 내 주사(intraperitoneal injection) 한 후, DSS-유도 마우스의 생존율을 확인하였다. 그 결과, SPG/C-Src-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 복강 투여한 CLP-유도 마우스의 경우, 65 %의 마우스가 CLP 유도로 인한 죽음으로부터 보호됨을 확인하였다. 즉, SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체를 처리한 DSS 유도 마우스의 사망률이 현저하게 감소함을 확인하였다(도 12의 A). 또한, 사망률 결과와 일치하게, 대조군으로 사용한 SPG-SC(Scramble) 펩타이드를 처리한 경우와 비교하여SPG/C-Src-SH3-1 및 SH3-2 펩타이드 복합체를 처리한 DSS 유도 마우스는 위장관 질환(gastrointestinal disease)의 증진과 관련된 체중 감소 및 임상적 특징(대변 농도(consistnecy) 및 직장 출혈(rectal bleeding))과, NOX 활성, 결장 파쇄액(colon homogenates)에서 TNF-α, IL-6, IL-1β, IL-18과 같은 전-염증성 사이토카인(pro-inflammatory cytokines)의 농도, 및 MPO(myeloperoxidase) 활성이 두드러지게 감소함을 확인하였다(도 12의 B 내지 도 12의 F). SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체를 처리한 CLP 유도 마우스와 대조군으로서 SPG-SC(Scramble) 펩타이드를 처리한 DSS 유도 마우스의 결장(colon) 조직에 대해 H&E(Hematoxylin and Eosin) 염색을 수행하고, 이를 기반으로 조직학적 매개 변수(histologic parameters)의 반정량적 점수(semiquantitative scoring)를 측정하였다. 그 결과, SPG-SC(Scramble) 펩타이드를 처리한 대조군 DSS 유도 마우스와 비교하여 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체를 처리한 DSS 유도 마우스의 경우, 대장염의 중증도(severity)가 감소하였으며, 결장에서 IL-1β, IL-18 및 카스파제-1(Caspase-1) 단백질이 낮은 수준으로 발현함을 확인하였다(도 12의 G 및 도 12의 H).In order to confirm that the SPG / C-Src-SH3 peptide complex of the present invention shows a protective effect against a mouse model of DSS (dextran sodium sulfate) -induced acute colitis mouse, first, The therapeutic effect of the SPG / C-Src-SH3 peptide complex on the mortality due to colitis was verified. Specifically, SPG / C-Src-SH3-1 peptide, SPG / C-Src-SH3-2 peptide, or SPG / C-Src-SH3-1 peptide at a dose of 10 mg / And SH3-2 peptide were intraperitoneally injected 5 times, and the survival rate of DSS-induced mice was confirmed. As a result, it was confirmed that 65% of the CLP-induced mice treated with the SPG / C-Src-SH3-1 and SH3-2 peptide complexes were protected from death due to CLP induction. That is, it was confirmed that the mortality of DSS-induced mice treated with the SPG / C-Src-SH3 peptide complexes was remarkably reduced (FIG. 12A). In addition, the DSS-induced mice treated with the SPG / C-Src-SH3-1 and SH3-2 peptide complexes compared with those treated with the SPG-SC (Scramble) peptide used as the control group, IL-6, IL-6, and IL-6 levels in weight loss and clinical characteristics (consistnecy and rectal bleeding), NOX activity, and colon homogenates associated with the enhancement of gastrointestinal disease (Fig. 12B to Fig. 12F) that the concentration of pro-inflammatory cytokines such as IL-1 [beta] and IL-18 and MPO (myeloperoxidase) activity were markedly decreased. CLP-induced mice treated with SPG / C-Src-SH3 peptide complex and H & E (Hematoxylin and Eosin) staining were performed on the colon tissue of DSS-induced mice treated with SPG-SC (Scramble) Based on this, semiquantitative scoring of histologic parameters was measured. As a result, the severity of colitis was reduced in DSS-induced mice treated with the SPG / C-Src-SH3 peptide complex as compared to the control DSS-induced mice treated with SPG-SC (Scramble) IL-1β, IL-18 and caspase-1 (G in FIG. 12 and H in FIG. 12).

다음으로, 본 발명자들은 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체가 in vivo 상에서 약리학적 활성을 가지는지 그 여부를 실험을 통해 확인하였다. 신규 펩타이드를 평가할 때 NOX 단백질 결합 프로파일(NOX protein binding profile)과 활성을 in vivo 상에서 탐지하는 것은 치명적인 염증성 질환을 치료하기 위한 치료제를 탐색하는 데 있어 중요하다. 도 12의 D에 나타낸 in vivo 결과와 일치하게, SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체를 처리한 DSS 유도 마우스의 결장(colon)에서 NOX 단백질 결합 프로파일(NOX protein binding profile) 및 활성을 확인해 본 결과, 결장에서 단백질의 발현 정도에는 영향을 미치지 않았으나, SPG/C-Src-SH3 펩타이드 처리에 의해 p47phox와 p67phox 또는 p40phox의 결합이 현저히 감소됨을 확인하였다(도 12의 I). Next, the present inventors confirmed through experiments whether or not the SPG / C-Src-SH3 peptide complex has pharmacological activity in vivo . Detecting the NOX protein binding profile and activity in vivo when evaluating new peptides is important in the search for therapeutic agents to treat fatal inflammatory diseases. Consistent with the in vivo results shown in Fig. 12D, the NOX protein binding profile and activity of the DSS-induced mouse colon treated with the SPG / C-Src-SH3 peptide complex , But the binding of p47phox to p67phox or p40phox was markedly reduced by treatment with SPG / C-Src-SH3 peptide (I of FIG. 12), although it did not affect the degree of protein expression in the colon.

따라서, 상기 결과를 통해, SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체가 DSS에 의해 유도된 대장염을 완화시키는 치료 효과가 있음을 확인하였으며, 이에, 본 발명의 SPG/C-Src-SH3 펩타이드 복합체를 대장염과 같은 염증 질환 치료제로 유용하게 이용할 수 있음을 유추할 수 있다.Therefore, it was confirmed from the above results that the SPG / C-Src-SH3 peptide complex had a therapeutic effect of alleviating the DSS-induced colitis, and the SPG / C-Src-SH3 peptide complex of the present invention, It can be said that it can be usefully used as a therapeutic agent for inflammatory diseases such as inflammation.

<110> Industry-University Cooperation Foundation Hanyang University ERICA Campus <120> Betaglucan-peptide complexes, preparation method thereof, and pharmaceutical composition for use in preventing or treating inflammatory diseases containing the same as an active ingredient <130> P16U22D0509 <150> KR 10-2016-0009128 <151> 2016-01-26 <160> 4 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 18 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Src-SH3-1 (aa 91-108) <400> 1 Ala Leu Tyr Asp Tyr Glu Ser Arg Thr Glu Thr Asp Leu Ser Phe Lys 1 5 10 15 Lys Gly <210> 2 <211> 20 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Src-SH3-2 (aa 121-140) <400> 2 Trp Trp Leu Ala His Ser Leu Ser Thr Gly Gln Thr Gly Tyr Ile Pro 1 5 10 15 Ser Asn Tyr Val 20 <210> 3 <211> 18 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Src-SH3-1-Scramble <400> 3 Glu Thr Arg Lys Glu Ser Phe Tyr Leu Lys Asp Ser Thr Ala Gly Tyr 1 5 10 15 Asp Leu <210> 4 <211> 20 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Src-SH3-2-Scramble <400> 4 Asn Gly Thr His Ser Ser Gly Val Leu Gln Ser Leu Ile Thr Tyr Pro 1 5 10 15 Trp Ala Trp Tyr 20 <110> Industry-University Cooperation Foundation Hanyang University ERICA Campus <120> Betaglucan-peptide complexes, preparation method thereof, and          pharmaceutical composition for use in preventing or treating          inflammatory diseases containing the same active ingredient <130> P16U22D0509 <150> KR 10-2016-0009128 <151> 2016-01-26 <160> 4 <170> KoPatentin 3.0 <210> 1 <211> 18 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Src-SH3-1 (aa 91-108) <400> 1 Ala Leu Tyr Asp Tyr Glu Ser Arg Thr Glu Thr Asp Leu Ser Phe Lys   1 5 10 15 Lys Gly         <210> 2 <211> 20 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Src-SH3-2 (aa 121-140) <400> 2 Trp Trp Leu Ala His Ser Leu Ser Thr Gly Gln Thr Gly Tyr Ile Pro   1 5 10 15 Ser Asn Tyr Val              20 <210> 3 <211> 18 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Src-SH3-1-Scramble <400> 3 Glu Thr Arg Lys Glu Ser Phe Tyr Leu Lys Asp Ser Thr Ala Gly Tyr   1 5 10 15 Asp Leu         <210> 4 <211> 20 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Src-SH3-2-Scramble <400> 4 Asn Gly Thr His Ser Ser Gly Val Leu Gln Ser Leu Ile Thr Tyr Pro   1 5 10 15 Trp Ala Trp Tyr              20

Claims (13)

(ⅰ) 베타-1,3-글루칸(β-1,3-glucan), 및 (ⅱ) 상기 베타-1,3-글루칸과 결합되어 있는 서열번호 1 및/또는 2의 아미노산 서열로 구성된 펩타이드를 포함하는, 염증성 질환 예방 또는 치료용 베타글루칸-펩타이드 복합체.
(I) beta-1,3-glucan, and (ii) a peptide consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and / or 2 which is linked to the beta-1,3- Beta glucan-peptide complex for the prevention or treatment of inflammatory disease.
제1항에 있어서, 상기 베타-1,3-글루칸은 시조필란(schizophyllan, SPG)인 베타글루칸-펩타이드 복합체.
The beta-glucan-peptide complex according to claim 1, wherein the beta-1,3-glucan is schizophyllan (SPG).
제1항에 있어서, 상기 베타-1,3-글루칸과 상기 서열번호 1 및/또는 2의 아미노산 서열로 구성된 펩타이드는 화학적 결합에 의해 서로 결합되어 있는 것인 베타글루칸-펩타이드 복합체.
2. The beta-glucan-peptide complex according to claim 1, wherein the beta-1,3-glucan and the peptide consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and / or 2 are bound to each other by chemical bonding.
제3항에 있어서, 상기 베타-1,3-글루칸은 시조필란(schizophyllan, SPG)이고, 상기 결합은 상기 베타-1,3-글루칸 말단에 도입된 카르복실기(-COOH기)와 상기 펩타이드의 아민기(-NH2기) 사이의 아미드 결합(amide bond)인 것인 베타글루칸-펩타이드 복합체.
4. The method according to claim 3, wherein the beta-1,3-glucan is schizophyllan (SPG), and the binding is selected from the group consisting of a carboxyl group (-COOH group) introduced at the beta-1,3- (-NH2 group). &Lt; / RTI &gt;
제1항 내지 제4항 중 어느 한 항에 따른 베타글루칸-펩타이드 복합체를 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
A pharmaceutical composition for preventing or treating an inflammatory disease comprising the beta-glucan-peptide complex according to any one of claims 1 to 4 as an active ingredient.
제5항에 있어서, 상기 베타글루칸-펩타이드 복합체는 p47phox를 표적으로 하여, 활성산소(ROS) 생성 및 염증성 사이토카인인 TNF-α, IL-6, IL-1β 또는 IL-18의 생성을 억제하는 것인 약학적 조성물.
6. The method of claim 5, wherein the beta-glucan-peptide complex targets p47phox and inhibits production of reactive oxygen species (ROS) and inhibits the production of inflammatory cytokines TNF-a, IL-6, IL- &Lt; / RTI &gt;
제5항에 있어서, 상기 염증성 질환은 패혈증(sepsis), 패혈성 쇼크, 염증성 장질환(Inflammatory bowel disease, IBD), 복막염, 신장염, 급성 기관지염, 만성 기관지염, 골관절염, 장질환 척추염, 만성 폐쇄성 폐질환(chronic obstructive pulmonary disease, COPD), 류마티스성 관절염(rheumatoid arthritis), 급성 폐손상(acute lung injury) 및 기관지 폐 형성장애(broncho-pulmonary dysplasia)로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나인 것인 약학적 조성물.
6. The method of claim 5, wherein the inflammatory disease is selected from the group consisting of sepsis, septic shock, inflammatory bowel disease (IBD), peritonitis, nephritis, acute bronchitis, chronic bronchitis, osteoarthritis, wherein the composition is any one selected from the group consisting of chronic obstructive pulmonary disease (COPD), rheumatoid arthritis, acute lung injury, and broncho-pulmonary dysplasia.
제7항에 있어서, 상기 염증성 장질환(IBD)은 궤양성 대장염(Ulcerative colitis, UC) 또는 크론씨병(Crohns disease)인 약학적 조성물.
The pharmaceutical composition according to claim 7, wherein the inflammatory bowel disease (IBD) is Ulcerative colitis (UC) or Crohns disease.
(a) 유기용매에 베타-1,3-글루칸(β-1,3-glucan)을 용해시키고, 고리형 무수물(cyclic anhydride)을 첨가하여 베타-1,3-글루칸의 히드록시기를 카르복실기로 변환시켜, 베타-1,3-글루칸 말단에 카르복실기(-COOH기)를 도입하는 단계; 및
(b) 단계 (a)의 베타-1,3-글루칸의 카르복실기(-COOH기)와 서열번호 1 및/또는 2의 아미노산 서열로 구성된 펩타이드의 아민기를 결합시켜, 베타글루칸-펩타이드 복합체를 형성하는 단계;를 포함하는, 염증성 질환의 예방 또는 치료용 베타글루칸-펩타이드 복합체의 제조방법.
(a) dissolving beta-1,3-glucan in an organic solvent and adding a cyclic anhydride to convert the hydroxy group of beta-1,3-glucan to a carboxyl group , Introducing a carboxyl group (-COOH group) at the beta-1,3-glucan terminal; And
(b) binding an amino group of a peptide consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and / or 2 with the carboxyl group (-COOH group) of the beta-1,3-glucan of step (a) to form a betaglucan- Peptide complex for the prophylaxis or treatment of an inflammatory disease.
제9항에 있어서, 상기 베타-1,3-글루칸은 시조필란(schizophyllan, SPG)인 베타글루칸-펩타이드 복합체의 제조방법.
10. The method of claim 9, wherein the beta-1,3-glucan is schizophyllan (SPG).
제9항에 있어서, 단계 (a)의 유기용매는 다이메틸설폭사이드(DMSO), 메탄올, 에탄올, 이소프로판올, 부탄올, 에틸렌, 아세톤, 헥산, 에테르, 클로로포름, 에틸아세테이트, 부틸아세테이트, 다이클로로메탄, 피리딘, N,N-다이메틸포름아미드(DMF), 1,3-부틸렌글리콜, 프로필렌글리콜 및 이들의 혼합용매로 구성된 군으로부터 선택되는 것인, 베타글루칸-펩타이드 복합체의 제조방법.
10. The process of claim 9, wherein the organic solvent of step (a) is selected from the group consisting of dimethylsulfoxide (DMSO), methanol, ethanol, isopropanol, butanol, ethylene, acetone, hexane, ether, chloroform, ethyl acetate, butyl acetate, Wherein the solvent is selected from the group consisting of pyridine, N, N-dimethylformamide (DMF), 1,3-butylene glycol, propylene glycol and mixed solvents thereof.
제9항에 있어서, 단계 (a)의 고리형 무수물은 숙신산 무수물, 말레산 무수물 또는 글루타르산 무수물인, 베타글루칸-펩타이드 복합체의 제조방법.
10. The method of claim 9, wherein the cyclic anhydride of step (a) is succinic anhydride, maleic anhydride or glutaric anhydride.
제9항에 있어서, 상기 단계 (b)는 1-에틸-3-(3-디메틸아미노프로필)카보디이미드(EDC; 1-Ethyl-3-(3-dimethyl aminopropyl) carbodiimide) 및 N-하이드록시숙신이미드(NHS; N-Hydroxy succinimide) 사이의 반응에 의해 수행되는 것인, 베타글루칸-펩타이드 복합체의 제조방법.

10. The method of claim 9, wherein step (b) comprises reacting 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide (EDC) Wherein the reaction is carried out by a reaction between N-hydroxysuccinimide (NHS).

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