KR20040067638A - Method for modifying surface of titanium for implant using proteins - Google Patents

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Abstract

PURPOSE: Provided is a surface-treated implant titanium which facilitates the adhesion of osteoblast to the bone-implant location as well as the adhesion of fibroblast to the gingival location, thereby exerting enhanced tissue healing effect. CONSTITUTION: A method of surface-treating the implant comprises the steps of: dipping implant titanium or titanium alloy in a hydroxyapatite paste, and drying it; heat-treating the implant titanium or titanium alloy at 800-900 deg.C for 1-2 hours under the atmosphere of argon or nitrogen gas; and dipping the heat-treated implant titanium or titanium alloy in a solution of type I collagen with a concentration of 0.005-0.5% or a fibronectin solution with a concentration of 0.0001-0.5% for 1-12 hours to thereby surface-coat it.

Description

단백질을 이용한 임플란트용 티타늄의 표면처리 방법{METHOD FOR MODIFYING SURFACE OF TITANIUM FOR IMPLANT USING PROTEINS}Surface treatment method of implant titanium using protein {METHOD FOR MODIFYING SURFACE OF TITANIUM FOR IMPLANT USING PROTEINS}

본 발명은 단백질을 이용한 임플란트용 티타늄 또는 티타늄 합금의 표면처리방법에 관한 것이다.The present invention relates to a surface treatment method of titanium or titanium alloy for implants using proteins.

치과용 임플란트는 인간의 턱뼈 위에 인공치아를 영구적으로 이식시키기 위해 사용하는 것으로서, 턱뼈와 인공치아를 연결시키고 음식의 저작(詛嚼)시 발생하는 하중을 감당, 분산시켜 실제 치아와 동일한 역할을 수행하며, 기존의 의치(義齒)에 비하여 더욱 안정한 치아로서의 역할을 수행한다. 이러한 임플란트는 기계적으로 제작되는 것으로서, 인간의 생체조직에 대하여 매우 안정적인 생체친화 재료를 사용하여야 하며, 부작용 및 기타 화학, 생화학적 반응성이 없는 것이어야 하며, 또한 반복되는 하중 및 순간적인 압력의 부과에도 변형 및 파괴되지 않도록 기계적 강도가 매우 높아야 하기 때문에 적당한 소재를 선택하는 것이 매우 중요하다.Dental implants are used to permanently implant artificial teeth on the jaw bone of humans. The dental implants connect the jaw bones with the artificial teeth and handle and distribute the loads generated when chewing food. It also serves as a more stable tooth than conventional dentures. These implants are mechanically manufactured and must be made of biocompatible materials that are very stable against human tissues, free from side effects and other chemical and biochemical reactivity, and are also subject to repeated loading and instantaneous pressure implications. It is very important to choose a suitable material because the mechanical strength must be very high so as not to deform and destroy.

임플란트의 적절한 소재로서 다양한 금속 및 합금이 개발, 시도되고 있으며, 현재 주로 사용되는 임플란트의 소재는 티타늄(Ti) 금속이나 그의 합금이다[Larry L. Hench, "Bioceramics",J. Am. Ceram. Soc. 81[7] 1705-28 (1998)]. 티타늄 또는 그의 합금은 가공이 용이할 뿐만 아니라 인간의 생체조직에 대한 높은 생체친화성, 높은 기계적 강도 및 생체 불활성을 갖는 장점을 가지고 있다. 그러나 티타늄 및 그의 합금 자체는 인체에 이식시 골과의 결합시간이 길고, 이식 후 장시간 지나면 금속 이온이 생체로 녹아 들어가는 단점이 있다.Various materials and alloys have been developed and tried as suitable materials for implants, and the materials of implants currently used are titanium (Ti) metals or alloys thereof [Larry L. Hench, "Bioceramics", J. Am. Ceram. Soc. 81 [7] 1705-28 (1998). Titanium or its alloys have the advantage of being easy to process and having high biocompatibility, high mechanical strength and bioinertness to human biological tissues. However, titanium and its alloys themselves have a long bonding time with the bone when implanted in the human body, and metal ions melt into the living body after a long time after transplantation.

이러한 단점을 보완하기 위해 티타늄 및 그의 합금에 표면처리를 수행하는 연구가 활발히 진행되고 있으며, 그 중 티타늄 표면에 존재하는 TiO2산화막은 생체에서 안정하고 생체적합성이 우수하며 세포와의 반응에서도 긍정적인 면을 보인다고 보고되었으며 산화 처리한 임플란트는 기계가공만 수행한 임플란트보다 이식시 골과의 결합력이 우수하다고 보고된 바 있다[Patrick J. Henry, Albert E. S. Tan, Brent P. Allan, Jan Hall and Carina Johansson, "Removal Torque Comparison of TiUnite and Turned Implants in the Creyhound Dog Mandible,"Applied Osseointegration Research, 1[1] 15-17 (2000)].In order to make up for these drawbacks, studies are being actively carried out on surface treatment of titanium and its alloys. Among them, the TiO 2 oxide film present on the surface of titanium is stable in vivo, excellent in biocompatibility and positive in cell reaction. Oxidized implants have been reported to have superior bonds with bone at implantation compared to machined implants [Patrick J. Henry, Albert ES Tan, Brent P. Allan, Jan Hall and Carina Johansson]. , "Removal Torque Comparison of TiUnite and Turned Implants in the Creyhound Dog Mandible," Applied Osseointegration Research, 1 [1] 15-17 (2000)].

한편, 치과용 임플란트는 고정체 부위와 지대원주 부위로 나누어지는데, 이를 인체에 적용 후 각 조직의 치유에 의해 그 기능을 유지하게 된다. 먼저, 고정체 부위는 골조직의 치유에 의하여 저작하중을 담당하는 것으로, 구체적으로 임플란트가 뼈속에 매식된 후 골모세포(osteoblast)의 부착 및 증식에 의해 골조직이 재생되어 인공치아로써 그 기능을 수행할 수 있다. 또한, 지대원주 부위는 연조직의 치유에 의해 미생물의 침투를 막아 건강과 기능을 유지하는 것으로, 연조직 중 결체조직(connective tissue) 및 상피조직(epithelium)의 치유가 중요하다. 특히, 결체조직의 치유가 연조직의 재생에 가장 중요한 요소로서, 구체적으로 섬유모세포(fibroblast)의 부착 및 증식이 치유에 가장 중요하다.On the other hand, dental implants are divided into a fixed part and a circumferential part, which is applied to the human body to maintain its function by the healing of each tissue. First, the fixed part is responsible for chewing load by healing of bone tissue. Specifically, after the implant is embedded in bone, bone tissue is regenerated by attachment and proliferation of osteoblasts to perform its function as an artificial tooth. Can be. In addition, the zone of circumference is to maintain the health and function by preventing the penetration of microorganisms by the healing of soft tissues, the healing of connective tissue and epithelium of the soft tissues is important. In particular, the healing of connective tissue is the most important factor for the regeneration of soft tissues. Specifically, the attachment and proliferation of fibroblasts are the most important for healing.

이에, 골조직의 치유와 연조직 치유를 향상시킬 수 있는 임플란트의 소재 개발이 요구되고 있는 실정이다.Thus, the situation is required to develop the material of the implant that can improve the healing of bone tissue and soft tissue.

본 발명은 상기 요구되는 문제를 해결하기 위하여, 티타늄 또는 그의 합금에 표면처리를 가하여 골조직의 치유와 연조직 치유를 향상시킬 수 있는 치과용 임플란트의 표면처리방법을 제공하는 것이다.The present invention is to provide a surface treatment method of a dental implant that can improve the healing of bone tissue and soft tissue by applying a surface treatment to titanium or its alloy to solve the above problems.

도 1a는 본 발명에서 열처리 전의 티타늄 금속 표면을 조직학적으로 관찰한 SEM 사진을 나타낸 것이며, Figure 1a shows a SEM photograph of the histological observation of the titanium metal surface before heat treatment in the present invention,

도 1b는 본 발명에서 800℃에서 1 시간동안 열처리한 티타늄의 표면을 조직학적으로 관찰한 SEM 사진을 나타낸 것이며, Figure 1b shows a SEM image of the histological observation of the surface of the titanium heat-treated for 1 hour at 800 ℃ in the present invention,

도 2a는 본 발명에서 800℃에서 열처리한 티타늄의 표면에 대한 화학적 조성을 나타낸 SAES 그래프이며, Figure 2a is a SAES graph showing the chemical composition of the surface of the titanium heat-treated at 800 ℃ in the present invention,

O : 산소 원자농도(atomic concentration) 분포도,O: oxygen concentration distribution map,

Ti : 티타늄 원자농도 분포도,Ti: Titanium atomic concentration distribution map,

P : 인 원자농도 분포도.P: distribution of phosphorus atom concentration.

도 2b는 본 발명에서 800℃에서 열처리한 티타늄 금속의 표면에 대한 인 및 칼슘의 깊이 분포(depth profiles)를 나타낸 그래프이고, Figure 2b is a graph showing the depth profiles (depth profiles) of phosphorus and calcium on the surface of the titanium metal heat-treated at 800 ℃ in the present invention,

P LVV2 : 티타늄 포스파이드(titanium phosphide)내의 인의 원자농도 분포도,P LVV2: atomic concentration distribution of phosphorus in titanium phosphide,

Ca : 칼슘의 원자농도 분포도.Ca: Distribution of atomic concentration of calcium.

도 3a는 본 발명에서 열처리전 20 초간 아르콘 스퍼터링 후 티타늄 금속을 분석한 SAES 그래프이며, Figure 3a is a SAES graph of the analysis of titanium metal after arcon sputtering for 20 seconds before heat treatment in the present invention,

도 3b는 본 발명에서 800℃에서 열처리한 티타늄(80초간 아르곤 스퍼터링 후) 금속을 분석한 SAES 그래프이며, 3B is a SAES graph of analyzing titanium (after 80 seconds argon sputtering) metal heat-treated at 800 ° C in the present invention,

도 4a는 원심성 세포부착 분석한 결과 스코어링 기준의 예를 나타낸 사진이며, Figure 4a is a photograph showing an example of the scoring criteria of the results of centrifugal cell adhesion analysis,

도 4b는 본 발명에서 타입 I 콜라젠 또는 피브로넥틴의 단백질에 대한 NHGF, 인간 골육종 세포주인 MG63 및 HOS에서의 세포부착을 나타낸 사진이며, Figure 4b is a photograph showing the cell adhesion in NHGF, human osteosarcoma cell lines MG63 and HOS to the protein of type I collagen or fibronectin in the present invention,

도 4c는 본 발명에서 타입 I 콜라젠 또는 피브로넥틴의 단백질에 대한 NHGF, 인간 골육종 세포주인 MG63 및 HOS에서의 세포부착 수준을 나타낸 그래프이며, Figure 4c is a graph showing the cell adhesion level in NHGF, human osteosarcoma cell lines MG63 and HOS for protein of type I collagen or fibronectin in the present invention,

도 5는 본 발명에서 각 조건에 따른 티타늄 금속에 대한 NHGF, 인간 골육종 세포주인 MG63 및 HOS에서의 세포부착을 나타낸 흡광도 그래프이다. 5 is an absorbance graph showing cell adhesion in NHGF, human osteosarcoma cell lines MG63 and HOS for titanium metal according to the conditions of the present invention.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은In order to achieve the above object, the present invention

임플란트용 티타늄 또는 티타늄 합금을 수산화아파타이트 페이스트에 침적시킨 후 건조하는 단계(단계 1);Depositing titanium or titanium alloy for implant in an apatite hydroxide paste and drying (step 1);

상기 임플란트용 티타늄 또는 티타늄 합금을 열처리하는 단계(단계 2); 및Heat-treating the titanium or titanium alloy for the implant (step 2); And

상기 열처리된 임플란트용 티타늄 또는 티타늄 합금을 타입 I 콜라젠 또는 피브로넥틴 용액에 담궈 표면을 코팅하는 단계(단계 3)로 이루어진 임플란트의 표면처리 방법을 제공한다.It provides a method for surface treatment of the implant consisting of the step (step 3) of coating the surface by dipping the heat-treated implant titanium or titanium alloy in a type I collagen or fibronectin solution.

즉, 본 발명의 임플란트의 표면처리 방법은 임플란트용 티타늄 또는 티타늄 합금을 수산화아파타이트로 처리하여 표면경도를 더욱 향상시킬 수 있으며,That is, the surface treatment method of the implant of the present invention can further improve the surface hardness by treating the implant titanium or titanium alloy with hydroxide apatite,

또한, 티타늄 또는 티타늄 합금 표면을 세포외기질단백질의 일종인 타입 I 콜라젠 또는 피브로넥틴으로 코팅하여 뼈에 매식되는 부위가 골모세포의 부착을 촉진시키고, 치은에 위치하는 부위가 섬유모세포의 부착을 촉진하여 조직의 치유를 향상시킬 수 있는 특징으로 가지고 있다.In addition, the surface of titanium or titanium alloy is coated with type I collagen or fibronectin, which is a type of extracellular matrix protein, so that the bone embedded site promotes adhesion of osteoblasts, and the gingival site promotes adhesion of fibroblasts. Has the characteristics to improve the healing of tissues.

이하, 본 발명을 상세히 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in detail.

먼저, 임플란트용 티타늄 또는 티타늄 합금을 수산화아파타이트 페이트스에 침적시킨 후 건조시킨다.First, the titanium or titanium alloy for implant is dipped in apatite hydroxide pate and dried.

임플란트용 티타늄은 가공이 용이하고, 인간의 생체조직에 대한 높은 생체친화성, 높은 기계적 강도 및 생체 불활성을 갖는 특징이 있는 것으로, 본 발명에서는 순수한 티타늄 금속 또는 그의 합금을 사용할 수 있다. 상기 티타늄 합금은 임플란트용으로 사용할 수 있는 모든 티타늄 합금을 사용할 수 있으며, 바람직하게는 Ti6Al4V를 사용할 수 있다.Titanium for implants is characterized by easy processing and high biocompatibility, high mechanical strength and bioinertness to human biological tissues. Pure titanium metal or alloys thereof may be used in the present invention. The titanium alloy may be any titanium alloy that can be used for the implant, preferably Ti 6 Al 4 V may be used.

수산화아파타이트는 Ca10(PO4)6(OH)2의 구조식을 갖으며, 골 무기성분이 함유된 바이오세라믹의 일종으로, 본 발명에서는 이를 페이스트 형태로 제조하여 사용한다. 이때, 페이스트의 제조는 본 분야에서 통상적인 모든 방법으로 수행할 수 있다.Apatite hydroxide has a structural formula of Ca 10 (PO 4 ) 6 (OH) 2 , and is a kind of bioceramic containing bone inorganic components, which is prepared and used in the present invention in the form of a paste. At this time, the preparation of the paste can be performed by all methods conventional in the art.

그 후, 상기 임플란트용 티타늄 또는 티타늄 합금을 열처리하는 것으로, 열처리에 의한 열확산 방법을 통하여 수산화아파타이트에 함유된 칼슘(Ca) 및 인(P)을 티타늄 내부로 침투시켜 티타늄 또는 그의 합금의 표면경도를 더욱 향상시키는 역할을 수행한다. 이러한 효과를 고려하여, 상기 열처리는 불활성기체하, 800∼900℃에서 1∼2 시간 동안 수행하는 것이 바람직하며, 이때, 불활성기체는 열처리시 산화를 방지하기 위한 것으로, 아르곤 기체 또는 질소기체 등을 사용할 수 있다.After that, the heat treatment of the titanium or titanium alloy for implantation, through the thermal diffusion method by the heat treatment penetrates the calcium (Ca) and phosphorus (P) contained in the apatite hydroxide into the inside of titanium to improve the surface hardness of titanium or its alloys It serves to further improve. In consideration of this effect, the heat treatment is preferably carried out for 1 to 2 hours at 800 ~ 900 ℃ under an inert gas, wherein the inert gas is to prevent oxidation during heat treatment, argon gas or nitrogen gas Can be used.

그 후, 상기 열처리된 임플란트용 티타늄 또는 티타늄 합금을 타입 I 콜라젠 또는 피브로넥틴 용액에 담궈 표면을 코팅한다. 구체적으로, 임플란트를 상기 용액에 담근 후 1∼12 시간 동안 유지시켜 표면 코팅을 수행한다.Thereafter, the heat treated implant titanium or titanium alloy is immersed in a type I collagen or fibronectin solution to coat the surface. Specifically, the surface coating is performed by maintaining the implant in the solution for 1 to 12 hours.

타입 I 콜라젠은 주로 골조직, 진피, 건(tendon) 등에서 골모세포와 섬유모세포에 의해 합성되는 세포외기질단백질의 일종으로, 골조직과 건의 내구력에 관여하며 피부와 주요 장기, 혈관의 보전(integrity)에도 중요한 역할을 한다. 피브로넥틱은 골모세포와 섬유모세포에 의해 합성되는 세포외기질단백질의 일종으로, 결체조직이나 세포표면 또는 혈장, 체액 등에 존재하는 당단백질이다. 인테그린(integrin) 또는 비인테그린성 수용체를 통해 세포와 상호작용을 한다.Type I collagen is a type of extracellular matrix protein synthesized mainly by osteoblasts and fibroblasts in bone tissue, dermis, and tendons.It is involved in the durability of bone tissues and tendons, and also in the integrity of skin, major organs, and blood vessels. Plays an important role. Fibronectic is a type of extracellular matrix protein synthesized by osteoblasts and fibroblasts, and is a glycoprotein present in connective tissues, cell surfaces, plasma, and body fluids. Interact with cells through integrin or nonintegrin receptors.

상기 타입 I 콜라젠 및 피브로넥틴은 세포의 부착, 이동 및 성장에 중요한 역할을 수행하는 것으로, 본 발명에서는 이를 임플란트용 티타늄 또는 티타늄 합금의 표면에 코팅하여 뼈에 매식되는 부위가 골모세포의 부착을 촉진시키고, 치은에 위치하는 부위가 섬유모세포의 부착을 촉진하여 조직의 치유를 향상시킨다.The type I collagen and fibronectin play an important role in cell adhesion, migration and growth, and in the present invention, it is coated on the surface of the titanium or titanium alloy for implantation to promote osteoblast adhesion. In addition, the site located in the gingiva promotes adhesion of fibroblasts, thereby improving tissue healing.

본 발명에서는 상기한 효과를 고려하여, 타입 I 콜라젠은 0.005∼0.5%의 농도로 사용하며, 피브로넥틴은 0.0001∼0.5%의 농도로 사용한다. 상기 농도 범위 미만인 경우, 임플란트용 티타늄 또는 티타늄 합금에 골모세포 및 섬유모세포의 세포부착을 감소시킬 수 있는 단점이 있으며, 상기 농도 범위를 초과한 경우, 단백질용액의 제조 및 티타늄 또는 티타늄 합금에 적용하는데 어려운 단점이 있다.In the present invention, in consideration of the above effects, type I collagen is used at a concentration of 0.005 to 0.5%, and fibronectin is used at a concentration of 0.0001 to 0.5%. When the concentration is less than the concentration range, there is a disadvantage that can reduce the cell adhesion of osteoblasts and fibroblasts to the titanium or titanium alloy for implant, if the concentration range is exceeded, for the preparation of protein solution and applying to titanium or titanium alloy It has a hard disadvantage.

또한, 본 발명의 표면처리방법은 추가로 세척 단계 및 소혈청 알부민을 첨가하여 배양하는 단계를 수행한다.In addition, the surface treatment method of the present invention further performs the washing step and the step of culturing by adding bovine serum albumin.

구체적으로, 상기와 같이 표면 처리한 후 첨가한 타입 I 콜라젠 또는 피브로넥틴을 제거하고, 포스페이트-완충용액 살린(phosphate-buffered saline; PBS)로 1∼수회 동안 조심스럽게 세척한다. 표면처리가 되지 않은 표면을 차단하기 위하여, 소혈청 알부민(bovine serum albumin)을 첨가하고 37℃에서 배양한다. 배양 후 소혈청 알부민을 제거하고, PBS로 조심스럽게 세척한다.Specifically, after the surface treatment as described above, the added type I collagen or fibronectin is removed and carefully washed with phosphate-buffered saline (PBS) for 1 to several times. To block the untreated surface, bovine serum albumin is added and incubated at 37 ° C. After incubation, the bovine serum albumin is removed and carefully washed with PBS.

상기 표면 처리 방법에 의해 적용되는 임플란트는 뼈에 매식되는 부위가 골모세포의 부착을 촉진시키고, 치은에 위치하는 부위가 섬유모세포의 부착을 촉진하여 조직의 치유를 향상시킬 수 있는 특징으로 가지고 있는 것으로, 이러한 특징으로 인해 본 발명의 표면처리 방법은 뼈와 접촉하는 임플란트인 임플란트 고정체, 치은과 접촉하는 임플란트인 임플란트 지대원주 및 임플란트 고정체와 지대원주의 일체형인 1 피스 임플란트(1 piece implant)에 유용하게 적용할 수 있다.The implant applied by the surface treatment method is characterized in that the site embedded in bone promotes the attachment of osteoblasts, and the site located in the gingiva promotes the attachment of fibroblasts, thereby improving the healing of tissues. Due to these features, the surface treatment method of the present invention is an implant fixture that is in contact with bone, implant abutment and implant fixture in contact with gingiva and a one-piece implant (one piece implant) that is integral with abutment. It can be usefully applied.

이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in detail by way of examples.

단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.However, the following examples are merely to illustrate the invention, but the content of the present invention is not limited to the following examples.

<실시예 1> 본 발명의 표면처리 방법 1Example 1 Surface Treatment Method 1 of the Present Invention

직경 24 ㎜, 높이 1 ㎜의 티타늄(grade 2)을 수산화아파타이트페이스트(paste)에 침적(dipping)한 후 이를 공기 중에 건조하였다.Titanium (grade 2) having a diameter of 24 mm and a height of 1 mm was dipped in apatite hydroxide paste and dried in air.

상기 티타늄을 흑연 도가니에 넣고 진공 형성 후(10-2Torr) 아르곤 가스 조건하, 800℃에서 1 시간 동안 열처리를 수행하였다.The titanium was placed in a graphite crucible and subjected to heat treatment at 800 ° C. for 1 hour under argon gas after vacuum formation (10 −2 Torr).

상기 열처리한 티타늄을 배양접시에 넣고, 0.005 %(50 ㎍/㎖) 타입 I 콜라젠 용액을 첨가하였다. 첨가 후 실온에서 12 시간 동안 배양하여 타입 I 콜라젠을 상기 티타늄의 표면에 코팅하였다.The heat treated titanium was placed in a culture dish and 0.005% (50 μg / ml) type I collagen solution was added. Type I collagen was coated on the surface of the titanium by incubation for 12 hours at room temperature after addition.

첨가한 타입 I 콜라젠을 제거하고, 포스페이트-완충 살린(PBS)로 1회 조심스럽게 세척한 후 소 혈청 알부민 1 ㎎/㎖을 첨가하고, 37℃에서 30분간 배양하였다. 마지막으로, 상기 소 혈청 알부민을 제거한고 PBS로 조심스럽게 세척하였다.The added Type I collagen was removed, washed carefully once with phosphate-buffered saline (PBS) and then bovine serum albumin 1 mg / ml was added and incubated at 37 ° C. for 30 minutes. Finally, the bovine serum albumin was removed and carefully washed with PBS.

<실시예 2> 본 발명의 표면처리 방법 2Example 2 Surface Treatment Method 2 of the Present Invention

직경 24 ㎜, 높이 1 ㎜의 티타늄(grade 2)을 수산화아파타이트 페이스트(paste)에 침적(dipping)한 후 이를 공기 중에 건조하였다.Titanium (grade 2) having a diameter of 24 mm and a height of 1 mm was dipped in an apatite hydroxide paste and then dried in air.

상기 티타늄을 흑연 도가니에 넣고 진공 형성 후(10-2Torr) 아르곤 가스 조건하, 800℃에서 1 시간 동안 열처리를 수행하였다.The titanium was placed in a graphite crucible and subjected to heat treatment at 800 ° C. for 1 hour under argon gas after vacuum formation (10 −2 Torr).

상기 열처리한 티타늄을 배양접시에 넣고, 0.005 %(50 ㎍/㎖) 피브로넥틴 용액을 첨가하였다. 첨가 후 실온에서 12 시간 동안 배양하여 피브로넥틴을 상기 티타늄의 표면에 코팅하였다.The heat treated titanium was placed in a culture dish and 0.005% (50 μg / ml) fibronectin solution was added. Fibronectin was coated on the surface of the titanium by incubation at room temperature for 12 hours after addition.

첨가한 피브로넥틴을 제거하고, 포스페이트-완충 살린(PBS)로 1회 조심스럽게 세척한 후 소 혈청 알부민 1 ㎎/㎖을 첨가하고, 37℃에서 30분간 배양하였다. 마지막으로, 상기 소 혈청 알부민을 제거한고 PBS로 조심스럽게 세척하였다.The added fibronectin was removed, washed carefully once with phosphate-buffered saline (PBS), and then bovine serum albumin 1 mg / ml was added and incubated at 37 ° C. for 30 minutes. Finally, the bovine serum albumin was removed and carefully washed with PBS.

<실험예 1> 표면분석Experimental Example 1 Surface Analysis

(1) SEM(Scanning Electron Microscopy)(1) SEM (Scanning Electron Microscopy)

본 발명에 의해 열처리된 티타늄 소재의 조직학적 관찰하기 위하여, SEM(Hitachi X-650, Hiatachi, Japan)을 이용하여 표면을 분석하였다. 시료는 열처리하기 전의 티타늄과 800℃에서 1 시간 동안 열처리한 티타늄을 사용하였다. 결과는도 1a도 1b에 나타내었다. 구체적으로,도 1a는 열처리 전 티타늄의 표면을 분석한 것이며,도 1b는 800℃에서 1 시간동안 열처리한 티타늄의 표면을 분석한 것이다.For histological observation of the titanium material heat-treated by the present invention, the surface was analyzed by SEM (Hitachi X-650, Hiatachi, Japan). The sample used titanium before heat processing and titanium heat-processed at 800 degreeC for 1 hour. The results are shown in FIGS . 1A and 1B . Specifically, FIG. 1A analyzes the surface of titanium before heat treatment, and FIG. 1B analyzes the surface of titanium heat treated at 800 ° C. for 1 hour.

도 1a도 1b에서 보는 바와 같이, 열처리한 티타늄은 침상의 표면조직이 성장함을 알 수 있었다. 이러한 침상의 표면조직은 열처리 온도가 상승함에 따라 더욱 성장함을 나타내고 있으며, 이러한 표면처리 온도에 따라 달라지는 티타늄 표면의 조직학적 변화는 수산화아파타이트로부터 칼슘, 인 등 특정 원소의 확산 정도에 크게 영향을 미칠 수 있다.As shown in Figure 1a and Figure 1b , the heat treatment of titanium was found to grow needle-like surface texture. The surface texture of these needles grows as the heat treatment temperature increases, and the histological change of the titanium surface depending on the surface treatment temperature may significantly affect the diffusion of certain elements such as calcium and phosphorus from the apatite hydroxide. have.

(2) SAES(Scanning Auger Electron Spectroscopy)(2) Scanning Auger Electron Spectroscopy (SAES)

본 발명에 의한 임플란트 표면의 화학적 조성 분석을 위하여, SAES(VGESCALAB 210, U.K.)를 이용하여 표면분석을 수행하였다. 결과는도 2a내지도 3b에 나타내었다.For chemical composition analysis of the implant surface according to the present invention, surface analysis was performed using SAES (VGESCALAB 210, UK). The results are shown in FIGS . 2A- 3B .

도 2a도 2b에서 보는 바와 같이, 수산화아파타이트와 함께 진공형성 후 아르곤 분위기에서 열처리한 후 SAES를 이용하여 티타늄 소재 표면층의 화학적 조성 분석 결과 수산화아파타이트로부터 티타늄 표면 내부로 확산되어 침투된 칼슘과 인의 원자농도가 열처리온도에 따라 크게 달랐다. 순수 티타늄의 경우, 티타늄의 상변태온도 이전의 온도인 800℃에서 Ca보다 P이 "gettering effect" 의하여 최고 7% 이상까지 많은 양이 확산됨을 확인할 수 있었다.As shown in FIGS . 2A and 2B , after forming a vacuum together with apatite hydroxide and heat-treating in an argon atmosphere, analysis of the chemical composition of the titanium material surface layer using SAES revealed that atoms of calcium and phosphorus diffused from the apatite into the titanium surface were penetrated. The concentration varied greatly with the heat treatment temperature. In the case of pure titanium, it was confirmed that the amount of P diffused up to 7% or more due to the "gettering effect" of P at Ca at 800 ° C. before the phase transformation temperature of titanium.

이러한 확산된 인(P)은도 3a도 3b에서 보는 바와 같이, 티타늄과 결합하여 SAES 스펙트라에서 인의 운동에너지가 가 약 110 eV에서 약 120 eV로 변화됨을 관찰하였는데 이것은 인이 포스페이트(phosphate) 상태에서 변화하여 티타늄 포스파이드(titanium phosphide)를 형성하고 있음을 확인할 수 있었다.As shown in FIGS . 3A and 3B , the diffused phosphorus (P) was combined with titanium to observe that the kinetic energy of phosphorus in the SAES spectra changes from about 110 eV to about 120 eV, which indicates that phosphorus is in the phosphate state. It was confirmed that the titanium phosphide (titanium phosphide) was formed by changing from.

<실험예 2> 표면경도 실험Experimental Example 2 Surface Hardness Experiment

수산화아파타이트 페이스에 담그고 건조시킨 후 아르곤가스 분위기 하에서 1 시간 동안 열처리한 티타늄의 표면 경도를 비커스경도계를 이용하여 측정하였다. 결과는 하기표 1에 나타내었다.The surface hardness of titanium which was immersed in an apatite hydroxide face and dried and then heat treated for 1 hour in an argon gas atmosphere was measured using a Vickers hardness tester. The results are shown in Table 1 below.

Materials Temp.(℃)Materials Temp. (℃) 비커스경도(Hv)Vickers Hardness (Hv) N.TN.T 333.2(20.3)* 333.2 (20.3) * 800800 443.5(20.6)443.5 (20.6) * : ( )는 표준편차*: () Is the standard deviation

상기표 1에서 보는 바와 같이, 열처리 전 비스커스 경도가 333.2 Hv에 비해 800℃에서 열처리한 비스커스 경도는 443.5 Hv로 열처리 후 표면 경도가 약 110 Hv 정도 증가하였음을 알 수 있다. 이로 인해, 본 발명에서 수산화아파타이트를 처리하므로서, 티타늄 또는 그의 합금의 표면 경도가 더욱 향상됨을 확인할 수 있다.As shown in Table 1 , the viscous hardness before heat treatment at 480 ° C compared to 333.2 Hv, the hardness of the Vickers is 443.5 Hv after the heat treatment can be seen that the surface hardness increased by about 110 Hv. For this reason, it can be seen that the surface hardness of titanium or its alloy is further improved by treating the apatite hydroxide in the present invention.

<실험예 3> 원심성 세포부착 분석(Centrifugal cell adhesion assay)Experimental Example 3 Centrifugal Cell Adhesion Assay

(1) 세포 및 세포배양(1) Cell and Cell Culture

일차 인간 정상 치은 섬유모세포(Primary normal human gingival fibroblasts; 이하 "NHGF"라 칭함)는 구강 수술을 수행한 환자로부터 절제한 치은(gingiva) 결합조직으로부터 확립하였다. 외식체(explant) 배양으로부터 밖으로 증식하는 세포를 10% FBS(fetal bovine serum)를 포함하는 DMEM(Dulbecco's modified Eagles medium)에서 계속적으로 배양하였다.Primary normal human gingival fibroblasts (hereinafter referred to as "NHGF") were established from gingiva connective tissue excised from patients undergoing oral surgery. Cells proliferating out from explant cultures were continuously cultured in Dulbecco's modified Eagles medium (DMEM) containing 10% fetal bovine serum (FBS).

또한, 인간 골육종 세포주는 ATCC에서 구입한 MG63(ATCC CRL 1427) 및 HOS(ATCC CRL 1543)을 구입하여 사용하였다.In addition, human osteosarcoma cell lines were purchased from MG63 (ATCC CRL 1427) and HOS (ATCC CRL 1543) purchased from ATCC.

(2) 원심성 세포부착 분석(Centrifugal cell adhesion assay)(2) Centrifugal cell adhesion assay

원심성 세포부착은 하시모토-우시마 등(Hashimoto-Uoshimaet al.(1997))의방법에 따라 측정하였다.Centrifugal cell adhesion was measured according to the method of Hashimoto-Uoshima et al. (1997).

구체적으로, 96-웰 U-바닥 폴리비닐클로라이드 플라스틱 마이크로타이터 플레이트(Falcon, Lincoln Park, NJ)를 ECM 요소인 타입 I 콜라젠(50 ㎍/㎖), 피브로넥틴(1 ㎍/㎖) 또는 라미닌(laminin (10 ㎍/ml))을 PBS에 희석하여 4℃에서 하룻밤 동안 흡착시켰다. 상기 웰을 세척한 후, 10 ㎎/㎖ BSA를 포함하는 PBS로 결합되지 않은 부위를 블록킹하였다. 세포를 10 mM EDTA(Gibco BRL)로 떼어내고, 5 ×103세포를 포함하는 세포 현탁액을 각 웰에 분주하고, 5% CO2조건 37℃에서 15분 동안 정착 및 부착하도록 하였다. 상기 배양 기간 후에 플레이트를 4℃에서 5분간 1,000 g로 원심분리하였다(Sorval RT6000B centrifuge). 상기 웰에 있는 배지는 조심스럽게 제거하고, 고정을 위하여 2시간 동안 PBS에 있는 0.005% 크리스탈 바이올렛을 포함하는 17.5% 포름알데히드로 바꾸었다. 이미 코팅된 ECM 단백질에 원심분리가 세포부착에 미치는 영향을 원형바닥 웰에 있는 세포를 관찰하여 결정하였고, 하시모토-우시마 등(Hashimoto-Uoshimaet al.(1997))의 방법에 따라 스코어링하였다. 또한, 각 웰의 중앙을 촬영하였다. 평균 및 표준편차는 6번의 독립적인 실험으로 계산하였다. 결과는도 4a내지도 4c에 나타내었다. 구체적으로,도 4a는 스코어링 기준의 예를 나타낸 것이며,도 4b는 세포부착 분석 사진을 나타낸 것이며,도 4c는 세포부착 수준을 나타낸 그래프이다.Specifically, 96-well U-bottom polyvinylchloride plastic microtiter plates (Falcon, Lincoln Park, NJ) were used as ECM elements type I collagen (50 μg / ml), fibronectin (1 μg / ml) or laminin (10 μg / ml)) was diluted in PBS and adsorbed at 4 ° C. overnight. After washing the wells, unbound sites were blocked with PBS containing 10 mg / ml BSA. Cells were detached with 10 mM EDTA (Gibco BRL) and a cell suspension containing 5 × 10 3 cells was dispensed into each well and allowed to settle and attach for 15 minutes at 37 ° C. in 5% CO 2 conditions. After the incubation period the plates were centrifuged at 1,000 g for 5 min at 4 ° C. (Sorval RT6000B centrifuge). The medium in the wells was carefully removed and changed to 17.5% formaldehyde containing 0.005% crystal violet in PBS for 2 hours for fixation. The effect of centrifugation on cell adhesion to the already coated ECM protein was determined by observing the cells in the round bottom wells and scored according to the method of Hashimoto-Uoshima et al . (1997). In addition, the center of each well was photographed. Mean and standard deviation were calculated from six independent experiments. The results are shown in FIGS . 4A- 4C . Specifically, Figure 4a shows an example of the scoring criteria, Figure 4b shows a cell adhesion assay picture, Figure 4c is a graph showing the cell adhesion level.

도 4a는 스코어링 기준의 예로서,0은 완전히 응집(pelleting),1은 주위에 탈착에 저항하는 소수의 세포를 포함한 중앙의 대부분 응집,2는 중앙에 소수의 클러스터를 제외한 탈착에 저항하는 세포,3은 96웰 U-바닥 플레이트의 중앙 또는 주위에 침전 또는 클러스터 없이 탈착에 저항하는 세포를 나타낸다. 4A is an example of a scoring criterion, where 0 is fully agglomerated, 1 is centrally aggregated with a few cells resistant to desorption around, 2 is a cell resistant to desorption except a few clusters in the center, 3 represents cells resistant to desorption without precipitation or clusters in the center or around the 96 well U-bottom plates.

도 4b도 4c에서 보는 바와 같이, 타입 I 콜라젠 및 피브로넥틴은 NHGF 및 인간 골육종 세포주인 MG63 및 HOS의 세포 부착을 촉진시킴을 확인할 수 있다. 구체적으로, NHGF에 대해서 타입 I 콜라젠은 세포부착을 촉진시킴을 나타내는 반면, 피브로넥틴은 세포 부착을 촉진시키지 않음을 나타내고 있다. 그러나, 인간 골육종 세포주인 MG63 및 HOS에 대해서는 타입 I 콜라젠 및 피브로넥틴 모두 세포 부착을 촉진함을 알 수 있었다.As shown in Figures 4b and 4c , it can be seen that type I collagen and fibronectin promote cell adhesion of NHGF and human osteosarcoma cell lines MG63 and HOS. Specifically, for NHGF, type I collagen promotes cell adhesion, while fibronectin does not. However, for human osteosarcoma cell lines MG63 and HOS, both type I collagen and fibronectin promoted cell adhesion.

<실험예 4> 세포부착 분석Experimental Example 4 Cell Attachment Analysis

6 웰 플레이트에 실시예에서 제작된 티타늄 플레이트를 넣고, 1.5 ㎖의 타입 I 콜라젠(50 ㎍/㎖) 또는 피브로넥틴(1 ㎍/㎖)을 첨가하고 실온에서 하룻밤 동안 배양하여 ECM 단백질을 코팅하였다. 대조군으로 1.5 ㎖의 PBS를 첨가하고 동일하게 처리하였다. 상기 코팅된 티타늄 플레이트를 2 ㎖의 증류수로 1회 조심스럽게(gently) 세척한 후 20∼30 분간 공기중에서 건조시켰다.The titanium plate prepared in Example was placed in a 6 well plate, and 1.5 ml of Type I collagen (50 µg / ml) or fibronectin (1 µg / ml) was added and incubated overnight at room temperature to coat the ECM protein. 1.5 ml of PBS was added as a control and treated the same. The coated titanium plate was gently washed once with 2 ml of distilled water and then dried in air for 20-30 minutes.

각 세포들을 상기 6 웰 플레이트의 웰당 5 ×105세포(2.5 ㎖)량으로 분주하였다. DMEM+10% FBS+1% 항생제를 배양액으로 사용하여 37℃, 5% CO2배양기에서 30분간 세포배양을 수행하였다. 배양액을 제거한 후 PBS로 1회 조심스럽게(gently)세척하고 그 후, 2 ㎖의 10% 포르말린 용액(10% formalin in PBS)을 넣고, 실온에서 15분간 방치시켰다. 증류수로 2회 세척한 후 2 ㎖의 10% 포르말린 용액에 있는 1% 톨루엔 블루를 넣고 실온에서 1시간 방치하였다.Each cell was aliquoted at an amount of 5 × 10 5 cells (2.5 mL) per well of the 6 well plate. Cell culture was performed for 30 minutes in a 37%, 5% CO 2 incubator using DMEM + 10% FBS + 1% antibiotic as a culture medium. After the culture was removed, the cells were gently washed once with PBS, and then, 2 ml of 10% formalin in PBS was added thereto, and left at room temperature for 15 minutes. After washing twice with distilled water, 1% toluene blue in 2 ml of 10% formalin solution was added thereto, and left at room temperature for 1 hour.

상기 티타늄 플레이트를 증류수로 3회 세척하였다. 각 회당 흔들면서 바닥의 염료가 빠져 나오도록 하고, 디스크를 약간씩 들었다 놨다를 반복하여 플레이트 아래쪽의 염료도 모두 빠져 나오도록 하였다. 티타늄 플레이트를 새로운 6 웰 플레이트로 옮기고, 2% SDS 1 ㎖를 첨가하여 15 분간 세포를 용해시켰다. 상기 세포용해액을 100 ㎕씩 따서 96 웰 플레이트에 옮겼다(각 2회). 플레이트 리더(Micro plate reader Model 550, BIO-RAD)로 595 ㎚에서 흡광도를 측정하였다. 상기 결과는도 5에 나타내었다.The titanium plate was washed three times with distilled water. Shake each time to let the dye out of the bottom, and then lift and release the disc a little bit to get all the dye off the bottom of the plate. The titanium plate was transferred to a new 6 well plate and 1 ml of 2% SDS was added to lyse the cells for 15 minutes. 100 μl of the cell lysate was transferred to a 96 well plate (2 times each). Absorbance was measured at 595 nm with a plate reader (Micro plate reader Model 550, BIO-RAD). The results are shown in Fig.

도 5에서 보는 바와 같이, 열처리 후 타입 I 콜라젠 또는 피브로넥틴으로 표면처리한 티타늄은 NHGF 및 인간 골육종 세포주 MG63 및 HOS의 세포부착을 촉진시킴을 알 수 있으며, 바람직하게는 열처리 후 타입 I 콜라젠으로 표면처리한 티타늄이 세포부착을 더욱 촉진시킴을 알 수 있다.As shown in FIG. 5 , it can be seen that the titanium surface-treated with type I collagen or fibronectin after heat treatment promotes cell adhesion of NHGF and human osteosarcoma cell lines MG63 and HOS, and is preferably surface treated with type I collagen after heat treatment. It can be seen that one titanium further promotes cell adhesion.

상술한 바와 같이, 본 발명의 임플란트 표면처리 방법은 임플란트용 티타늄 또는 티타늄 합금을 수산화아파타이트로 처리하여 표면경도를 더욱 향상시킬 수 있으며, 또한, 티타늄 또는 티타늄 합금 표면을 세포외기질단백질의 일종인 타입 I콜라젠 또는 피브로넥틴으로 코팅하여 뼈에 매식되는 부위가 골모세포의 부착을 촉진시키고, 치은에 위치하는 부위가 섬유모세포의 부착을 촉진하여 조직의 치유를 향상시킬 수 있어 뼈와 접촉하는 임플란트인 임플란트 고정체, 치은과 접촉하는 임플란트인 임플란트 지대원주 및 임플란트 고정체와 지대원주의 일체형인 1 피스 임플란트(1 piece implant)에 유용하게 적용할 수 있다.As described above, the implant surface treatment method of the present invention can further improve the surface hardness by treating the titanium or titanium alloy for implants with hydroxide apatite, and also the type of extracellular matrix protein to the titanium or titanium alloy surface I-coated implants, which are coated with collagen or fibronectin, promote the adhesion of osteoblasts to the bone-embedded area and promote the adhesion of fibroblasts to areas of the gingiva that can improve tissue healing. It can be usefully applied to implant abutments, implants that are in contact with the stagnation and gingival, and to one piece implants, which are integral to the implant fixture and abutments.

Claims (6)

임플란트용 티타늄 또는 티타늄 합금을 수산화아파타이트 페이스트에 침적시킨 후 건조하는 단계(단계 1);Depositing titanium or titanium alloy for implant in an apatite hydroxide paste and drying (step 1); 상기 임플란트용 티타늄 또는 티타늄 합금을 열처리하는 단계(단계 2); 및Heat-treating the titanium or titanium alloy for the implant (step 2); And 상기 열처리된 임플란트용 티타늄 또는 티타늄 합금을 타입 I 콜라젠 또는 피브로넥틴 용액에 담궈 표면을 코팅하는 단계(단계 3)로 이루어진 임플란트의 표면처리 방법.The surface treatment method of the implant comprising the step of coating the surface by dipping the heat-treated implant titanium or titanium alloy in a type I collagen or fibronectin solution. 제 1항에 있어서, 상기 단계 3의 타입 I 콜라젠 용액의 농도가 0.005∼0.5 %이고, 상기 피브로넥틴 용액의 농도가 0.0001∼0.5 %인 것을 특징으로 하는 임플란트의 표면처리 방법.The method of claim 1, wherein the concentration of the type I collagen solution of step 3 is 0.005 to 0.5% and the concentration of the fibronectin solution is 0.0001 to 0.5%. 제 1항에 있어서, 상기 단계 3의 코팅이 열처리된 임플란트를 타입 I 콜라젠 용액 또는 피브로넥틴 용액 안에 담근 후 1∼12 시간 동안 유지시키는 것을 특징으로 하는 임플란트의 표면처리 방법.The method of claim 1, wherein the coating of step 3 is immersed in the type I collagen solution or fibronectin solution and maintained for 1 to 12 hours. 제 1항에 있어서, 상기 단계 2의 열처리가 불활성기체하, 800∼900℃에서 1∼2시간 동안 수행하는 것을 특징으로 하는 임플란트의 표면처리 방법.The surface treatment method of an implant according to claim 1, wherein the heat treatment of step 2 is performed at 800 to 900 DEG C for 1 to 2 hours under an inert gas. 제 1항에 있어서, 상기 불활성기체가 아르곤기체 또는 질소기체인 것을 특징으로 하는 임플란트의 표면처리 방법.The surface treatment method of an implant according to claim 1, wherein the inert gas is an argon gas or a nitrogen gas. 제 1항에 있어서, 임플란트의 표면처리 방법이 단계 3의 코팅 후 세척하는 단계 및 세척 후 소혈청 알부민을 첨가하여 배양하는 단계를 추가로 포함하는 것을 특징으로 하는 임플란트의 표면처리 방법.The method of claim 1, wherein the method for treating the surface of the implant further comprises the step of washing after coating in step 3 and culturing by adding bovine serum albumin after washing.
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