KR102271698B1 - Biomarker for the discrimination of geographical origins of the soybeans and method for discriminating of geographical origin using the same - Google Patents

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Abstract

본 발명은 대두의 원산지 판별용 바이오마커 및 이를 이용한 원산지 판별방법에 관한 것이다.
본 발명의 대두의 원산지 판별용 바이오마커를 이용하면, 대두 내 대사체의 수준변화를 이용하여 국내 7개의 도에서 재배되는 대두의 원산지를 판별할 수 있다. 본 발명의 바이오마커는, 실제 단속에 이용하여 원산지를 속여 부당한 이익을 취하는 행위를 단속할 수 있는 중요한 도구로써 사용할 수 있으며, 이는 국내 유통 농산물의 시장질서 확립과 소비자들의 신뢰 확보에 기여할 수 있다.
The present invention relates to a biomarker for determining the origin of soybeans and a method for determining the origin using the same.
If the biomarker for determining the origin of soybeans of the present invention is used, the origin of soybeans grown in 7 provinces in Korea can be determined by using the change in the level of metabolites in the soybean. The biomarker of the present invention can be used as an important tool to crack down on acts of taking unfair profits by deceiving the country of origin by using it for actual enforcement, which can contribute to establishing market order for domestically distributed agricultural products and securing consumer trust.

Description

대두의 원산지 판별용 바이오마커 및 이를 이용한 원산지 판별방법{Biomarker for the discrimination of geographical origins of the soybeans and method for discriminating of geographical origin using the same}Biomarker for determining the origin of soybeans and a method for discriminating the origin using the same {Biomarker for the discrimination of geographical origins of the soybeans and method for discriminating of geographical origin using the same}

본 발명은 대두의 원산지 판별용 바이오마커 및 이를 이용한 원산지 판별방법에 관한 것이다.The present invention relates to a biomarker for determining the origin of soybeans and a method for determining the origin using the same.

원산지란 그 물품이 성장했거나, 생산제조가공된 지역을 말하며, 수출입 물품의 경우 국적을 의미한다. 전 세계적인 자유무역협정 (FTA) 의 확대로 농산물들이 자유롭게 각국의 국경을 넘나들 수 있는 가능성이 커졌으나, 국가들 간의 교역을 통한 농산물의 원산지가 위조되어 판매되는 경우가 발생하여 시장 질서를 교란시키고 소비자들의 불신을 사고 있다. 우리나라 원산지 표시 제도는 1991년 7월 1일부터 시행되고 있으며, 대외무역법령에 「원산지 판정 기준」,「원산지 표시 대상 물품」,「위반시의 벌칙」등 에 관한 규정을 두고 있다. 관세법령에는 통관 시의 원산지 및 그 표시의 확인 및 시중 유통 과정에서의 단속 등에 관한 규정을 두어 운영하고 있다. 국립농산물품질관리원은 2014년 4290개 업체가 농식품의 원산지를 속여 판매하다가 적발되었다고 밝힌 바 있으며, 2012년에는 4642개, 2013년에는 4443개 업체가 원산지를 위조하다 적발되었다. 해마다 적발되는 업체의 수가 소폭 감소하고 있지만, 여전히 하루에 10개 이상의 업체가 적발되고 있다. 정부에서는 "불량식품"을 4대 사회악 중 하나로 포함시켜서 이의 근절을 위해 다각적으로 심혈을 기울이고 있으나, 식품으로 직접 사용되거나 가공식품의 주요 원료가 되는 농산물의 원산지 변조를 막지 못하고 있다. 국내 농산물 및 식품의 위변조 규모는 정확하게 알려져 있지 않지만, 전 세계적인 추세를 감안하면, 국내 전체 시장 규모의 10% 정도 차지하는 것으로 예측된다. 또한, 이 중 약 5%, 즉 국내에서 유통되고 있는 전체 농산물 및 식품 중 약 0.5% 정도가 원산지가 위변조되어 유통되고 있을 것으로 추정된다. 이에 농산물의 원산지를 과학적으로 판별하는 것은 국가적으로 중요한 사회문제로 대두되고 있으며, 과학적이고 객관적인 판별법의 확보가 시급한 실정이다.Country of origin refers to the region where the goods were grown or produced, manufactured, and processed, and in the case of imported goods, it means nationality. With the expansion of global free trade agreements (FTAs), the possibility of agricultural products freely crossing national borders has increased. are gaining their distrust. Korea's country of origin labeling system has been in effect since July 1, 1991, and the Foreign Trade Act has regulations on 「Criteria for judging the country of origin」, 「Goods subject to labeling of the country of origin」, and 「Penalty rules for violations」. In the Customs Act, there are regulations on the confirmation of the country of origin and labeling at the time of customs clearance, and regulation on market distribution. The National Agricultural Products Quality Management Service reported that 4,290 companies in 2014 were caught selling the origin of agri-food by cheating, 4642 in 2012 and 4443 in 2013 were caught for counterfeiting the country of origin. Although the number of companies caught is slightly decreasing every year, more than 10 companies are still caught per day. The government has included “bad food” as one of the four major social evils and is working hard to eradicate it from various angles, but it cannot prevent the alteration of the country of origin of agricultural products that are used directly as food or are the main raw material of processed foods. The scale of counterfeiting and counterfeiting of domestic agricultural products and food is not known precisely, but considering the global trend, it is expected to account for about 10% of the total domestic market. In addition, it is estimated that about 5% of these, that is, about 0.5% of all agricultural products and foods distributed in Korea, are distributed with forged origins. Therefore, scientifically determining the origin of agricultural products is emerging as a nationally important social issue, and it is urgent to secure a scientific and objective method of identification.

현재까지 농산물의 원산지 판별은 주로 isotope-ratio mass spectrometry(IRMS), HPLC, visible micro-Raman spectroscopy, ultraviolet-visible absorption spectroscopy(UV-vis), elemental analysis-like inductively coupled plasma-atomic emission spectrometry(ICP-AES) 등을 활용한 화학적 분석으로 이루어져 왔다. 그러나 이들 연구 방법들은 모두 특정 성분이나 그룹에 초점을 맞추어 온 targeted 접근방법으로써 한계점이 있다.So far, the origin of agricultural products has been mainly determined by isotope-ratio mass spectrometry (IRMS), HPLC, visible micro-Raman spectroscopy, ultraviolet-visible absorption spectroscopy (UV-vis), elemental analysis-like inductively coupled plasma-atomic emission spectrometry (ICP- AES) has been used for chemical analysis. However, all of these research methods have limitations as they are targeted approaches that have focused on specific components or groups.

한편, 대사체학(metabolomics)은 농산물에 존재하는 대사체(metabolites) 들을 분석, 연구하는 학문으로 정의한다. 또한 대사체학은 농산물 내 전대사체(metabolome)를 비표적적인(Un-targeted) 방식으로 분석하는 접근방법이며, 유전적 차이나 환경적 변화에 대한 차이를 효율적으로 규명할 수 있어서 대사체학을 활용한 농산물 및 약용작물의 원산지 판별에 대한 많은 연구가 진행되고 있다.Meanwhile, metabolomics is defined as the study that analyzes and studies metabolites present in agricultural products. In addition, metabolomics is an approach that analyzes all metabolomes in agricultural products in an un-targeted way, and it can efficiently identify differences in genetic or environmental changes. And many studies on the identification of the origin of medicinal crops are in progress.

2010년도 이후 농산물품질관리원에서 주로 유전체 정보를 활용한 단일염기다형성마커을 이용하여 곶감, 구기자, 쌀 등의 원산지 판별을 위한 키트를 개발하여 특허를 출원 중에 있거나 등록하였으나, 대사체를 이용해 국내에서 재배되는 대두의 원산지를 판별하는 연구는 아직 이루어지지 않은 상태이다. 또한 현재 우리나라의 대두 소비는 대부분 수입에 의존하고 있어 원산지를 명확하게 할 필요성이 있다.Since 2010, the Agricultural Products Quality Control Institute has developed a kit for determining the origin of dried persimmon, wolfberry, and rice using single nucleotide polymorphism markers that mainly utilize genomic information, and has applied for or registered a patent. Studies to determine the origin of soybeans have not yet been conducted. In addition, since Korea's soybean consumption is mostly dependent on imports, it is necessary to clarify the country of origin.

이에, 본 발명자들은 전술한 바와 같은 종래기술의 문제점을 해결하기 위하여 대사체를 이용해 국내에서 재배되는 대두의 원산지를 판별하는 방법을 개발하고자 하였다. 그 결과, 대두 내 대사체인 트립토판(Tryptophan), 말로닐제니스틴(Malonylgenistin), 말로닐다이드진(Malonyldaidzin), N-아세틸오르니틴(N-acetylornithine) 및 알리신(Allysine)의 발현 수준 차이를 이용하여, 국내에서 재배되는 대두의 원산지를 신속 정확하게 판별할 수 있음을 확인함으로써, 본 발명을 완성하였다.Accordingly, the present inventors tried to develop a method for determining the origin of domestically grown soybeans using metabolites in order to solve the problems of the prior art as described above. As a result, using the difference in expression levels of tryptophan, malonylgenistin, malonyldaidzin, N-acetylornithine and allysine, which are metabolites in soybeans, By confirming that the origin of soybeans grown in Korea can be quickly and accurately determined, the present invention has been completed.

따라서, 본 발명의 일 목적은, 대두의 원산지 판별용 바이오마커 조성물을 제공하는 데 있다.Accordingly, one object of the present invention is to provide a biomarker composition for determining the origin of soybeans.

또한, 본 발명의 다른 목적은, 상기 조성물을 포함하는 대두의 원산지 판별용 키트를 제공하는 데 있다.Another object of the present invention is to provide a kit for determining the origin of soybeans comprising the composition.

또한, 본 발명의 또 다른 목적은, 대두의 원산지 판별용 바이오마커를 이용하여 대두의 원산지를 판별하는 방법을 제공하는 데 있다.Another object of the present invention is to provide a method for determining the origin of soybeans using a biomarker for determining the origin of soybeans.

이하, 본 발명에 대해 상세히 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in detail.

본 발명의 일 양태에 따르면, 본 발명은 트립토판(Tryptophan), 말로닐제니스틴(Malonylgenistin), 말로닐다이드진(Malonyldaidzin), N-아세틸오르니틴(N-acetylornithine) 및 알리신(Allysine)로 이루어진 군으로부터 선택된 3 종 이상의 대사체를 포함하는 대두의 국내 원산지 판별용 바이오마커 조성물을 제공한다.According to one aspect of the present invention, the present invention is from the group consisting of tryptophan, malonylgenistin, malonyldaidzin, N-acetylornithine and allysine. Provided is a biomarker composition for determining domestic origin of soybeans comprising three or more selected metabolites.

본 발명의 대두의 국내 원산지 판별용 바이오마커는 원산지별 대두의 대사체의 발현 수준 차이를 이용하여 대두의 원산지를 판별할 수 있는 것을 특징으로 한다. 상기 대사체의 발현 수준은, 구체적으로, 국내 경기도, 강원도, 충청도, 경상북도, 경상남도, 전라북도 및 전라남도 중에서 가장 많이 고발현 또는 저발현되는 것으로 이해되어야 한다.The biomarker for determining the domestic origin of soybeans of the present invention is characterized in that the origin of soybeans can be determined by using the difference in expression level of soybean metabolites by country of origin. The expression level of the metabolite, specifically, it should be understood that the highest expression or low expression among the domestic Gyeonggi-do, Gangwon-do, Chungcheong-do, Gyeongsangbuk-do, Gyeongsangnam-do, Jeollabuk-do and Jeollanam-do.

본 명세서에서 사용된 용어 "원산지"는, 그 물품이 성장했거나, 생산, 제조 가공된 지역을 말하여 수출입 물품의 경우 국적을 의미한다. 우리나라의 원산지 표시제도는 1991년 7월 1일 부터 시행되고 있으며, 대외무역법령에 「원산지 판정 기준」,「원산지 표시 대상 물품」,「위반시의 벌칙」등 에 관한 규정을 두고 있다. 관세법령에는 통관 시의 원산지 및 그 표시의 확인 및 시중 유통 과정에서의 단속 등에 관한 규정을 두어 운영하고 있다.As used herein, the term "origin" refers to the region where the goods were grown, produced, manufactured, or processed, and in the case of imported and exported goods, refers to the nationality. Korea's country of origin labeling system has been in effect since July 1, 1991, and the Foreign Trade Act has regulations on 「Criteria for determining the country of origin」, 「Goods subject to labeling of the country of origin」, and 「Penalty for violations」. In the Customs Act, there are regulations on the confirmation of the country of origin and labeling at the time of customs clearance, and regulation on market distribution.

본 명세서에서 사용된 용어 "대두"는, "콩"이라고도 호칭되며, 콩과의 1년초 또는 그 종자를 의미한다. 대두는 콩과식물 중 가장 영양분이 많고 소화하기 쉬운 식량으로써 단백질이 풍부하며 값싸게 얻을 수 있는 단백질 공급원 중의 하나이다. 대두에는 수분 8.6%, 단백질 40%, 지방 18%, 섬유질 3.5%, 회분 4.6%, 펜토산 4.4%, 당분 7% 등이 함유되어 있으며 노란색 대두 껍질에는 이소플라본(Isoflavone)계 색소가 있다. 대두에 함유되어 있는 필수지방산인 리놀레산(Linoleic aicd)은 인체의 구성 성분을 이루는 외에도 혈관벽에 붙은 콜레스테롤(Cholesterol) 제거에 효과가 있으며 레시틴(Lecithin)도 이와 같은 효과가 있어서 이 두 성분은 동맥경화를 예방하는데 효과가 있다.As used herein, the term "soybean" is also called "bean", and refers to an annual plant of the legume family or its seeds. Soybeans are the most nutritious and easy-to-digest food among legumes, and are rich in protein and one of the cheapest sources of protein. Soybeans contain 8.6% water, 40% protein, 18% fat, 3.5% fiber, 4.6% ash, 4.4% pentosan, and 7% sugar. The yellow soybean hull contains isoflavone-based pigment. Linoleic aicd, an essential fatty acid contained in soybeans, is effective in removing cholesterol from the blood vessel wall as well as forming a component of the human body. Lecithin has the same effect, so these two components prevent arteriosclerosis. effective in prevention.

본 명세서에서 사용된 용어 "판별"은, 대두의 원산지가 어느 곳인지 결정하여 구별하는 것을 의미한다.As used herein, the term “discriminate” means to discriminate by determining where the soybean is of origin.

본 명세서에서 사용된 용어 "수준 차이"는, 대두에서의 특정 대사체를 비교하고자 하는 그룹 간에서의 대사체 수준이 높거나 혹은 낮은 것을 의미한다.As used herein, the term “level difference” refers to high or low metabolite levels between groups for which a specific metabolite in soybean is to be compared.

본 명세서에서 사용된 용어 "대두 원산지 판별용 바이오마커"는 원산지로부터의 대두 내에 트립토판(Tryptophan), 말로닐제니스틴(Malonylgenistin), 말로닐다이드진(Malonyldaidzin), N-아세틸오르니틴(N-acetylornithine) 및 알리신(Allysine)인 대사체들이 발현되어 상기 대사체들의 발현 수준을 이용하여 원산지를 판별할 수 있는 바이오마커로 사용할 수 있다는 뜻이다. As used herein, the term "biomarker for determining the origin of soybean" is tryptophan, malonylgenistin, malonyldaidzin, N-acetylornithine in soybeans from the origin. and allicin (Allysine) metabolites are expressed, meaning that they can be used as biomarkers capable of discriminating the origin using the expression level of the metabolites.

상기 대두 원산지 판별용 바이오마커로 트립토판(Tryptophan), 말로닐제니스틴(Malonylgenistin), 말로닐다이드진(Malonyldaidzin), N-아세틸오르니틴(N-acetylornithine) 및 알리신(Allysine) 을 단독 또는 3 종 이상 사용할 수 있다.Tryptophan, malonylgenistin, Malonyldaidzin, N-acetylornithine and Allysine as the biomarker for determining the origin of soybean can be used alone or three or more types can

본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 본 발명의 대두 원산지 판별용 바이오마커 조성물은, 바람직하게는 트립토판(Tryptophan), 말로닐제니스틴(Malonylgenistin), 말로닐다이드진(Malonyldaidzin), N-아세틸오르니틴(N-acetylornithine) 및 알리신(Allysine)으로 이루어진 군에서 선택된 4 종 이상을 포함할 수 있다. 가장 바람직하게는 상기 5 종을 모두 포함할 수 있다. 5 종을 모두 포함하는 대두 원산지 판별용 바이오마커 조성물을 사용할 경우 경기도, 강원도, 충청도, 경상북도, 경상남도, 전라북도 및 전라남도 지역에서 생산되는 대두 원산지를 보다 정확하게 판별할 수 있다.According to a preferred embodiment of the present invention, the biomarker composition for determining the origin of soybeans of the present invention is preferably tryptophan, malonylgenistin, malonyldaidzin, N-acetylornithine ( It may include 4 or more selected from the group consisting of N-acetylornithine) and allicin (Allysine). Most preferably, all of the above five species may be included. When using a biomarker composition for determining the origin of soybeans containing all five species, it is possible to more accurately determine the origin of soybeans produced in Gyeonggi-do, Gangwon-do, Chungcheong-do, Gyeongsangbuk-do, Gyeongsangnam-do, Jeollabuk-do and Jeollanam-do.

본 발명의 일 실시예에서는 최초 동정된 210 종 중 10 종을 모두 포함하는 대두 원산지 판별용 바이오마커 조성물을 사용할 경우 유의성있는 판별 효과가 없음을 확인함으로써, 본 발명의 5 종을 모두 포함하는 대두 원산지 판별용 바이오마커 조합이 최적임을 확인하였다.In one embodiment of the present invention, it was confirmed that there is no significant discriminating effect when using the biomarker composition for determining the origin of soybean including all 10 species out of 210 initially identified, thereby confirming that there is no significant discriminating effect. It was confirmed that the combination of biomarkers for discrimination was optimal.

또한, 상기 원산지는 경기도, 강원도, 충청도, 경상북도, 경상남도, 전라북도 및 전라남도로 이루어진 군에서 선택되는 1종 이상일 수 있다.In addition, the origin may be at least one selected from the group consisting of Gyeonggi-do, Gangwon-do, Chungcheong-do, Gyeongsangbuk-do, Gyeongsangnam-do, Jeollabuk-do and Jeollanam-do.

또한, 상기 조성물은 대두 내 대사체의 수준을 측정할 수 있는 제제를 포함할 수 있으며, 상기 제제는 7 개의 지역으로부터 생산된 대두 시료에서 대사체 각각의 수준을 측정할 수 있다.In addition, the composition may include an agent capable of measuring the level of a metabolite in the soybean, and the agent may measure the level of each metabolite in soybean samples produced from seven regions.

또한, 본 발명의 다른 양태에 따르면, 본 발명은 상술한 대두의 국내 원산지 판별용 바이오마커 조성물을 포함하는, 대두의 국내 원산지 판별용 키트를 제공한다.In addition, according to another aspect of the present invention, the present invention provides a kit for determining the domestic origin of soybeans, comprising the biomarker composition for determining the domestic origin of soybeans.

본 발명의 대두의 국내 원산지 판별용 키트는 원산지가 의심되는 대두시료로부터 상기 대사체를 검출하거나 정량분석하여 대두시료의 원산지를 판별하는데 사용될 수 있으며, 특별히 이에 제한되지는 않는다.The kit for determining the domestic origin of soybeans of the present invention can be used to determine the origin of the soybean sample by detecting or quantitatively analyzing the metabolite from the soybean sample suspected of origin, but is not particularly limited thereto.

또한, 상기 대두의 국내 원산지 판별용 키트는 대사체를 검출하기 위한 직접적인 수단뿐만 아니라 분석 방법에 사용되는 다른 구성 성분, 용액 또는 장치를 포함할 수 있다. 그 예로써 테스트 튜브, 컨테이너, 반응 완충액, 분석용 효소, 멸균수 등을 포함할 수 있다.In addition, the kit for determining the domestic origin of soybeans may include direct means for detecting metabolites, as well as other components, solutions or devices used in the analysis method. Examples thereof may include test tubes, containers, reaction buffers, enzymes for analysis, sterile water, and the like.

본 발명의 대두의 국내 원산지 판별용 키트는 상술한 3 종 이상의 바이오마커를 포함하여 시료의 대사체를 정량 분석함으로써 대두의 원산지를 판별할 수 있는 것을 특징으로 한다.The kit for determining the domestic origin of soybeans of the present invention is characterized in that it is possible to determine the origin of soybeans by quantitatively analyzing the metabolites of the sample including the three or more types of biomarkers described above.

본 발명의 키트는 시료를 담지할 수 있는 통상의 웰 형태의 마이크로타이터 플레이트를 포함할 수 있다. 상기 웰 내에는 시료 및 하나 이상의 바이오마커를 흡수할 수 있는 다공성 지지체를 포함할 수 있다. 상기 지지체는 대두 대사체 추출물의 첨가를 대비하여 내부 바이오마커를 미리 결정된 농도로 포함하고 있으며, 아울러 각 시료를 고정할 수 있다. 또한, 지지체의 다공성은 시료 분석 시 첨가되는 추출 용매에 최대한 노출되게 할 수 있다.The kit of the present invention may include a conventional well-shaped microtiter plate capable of carrying a sample. The well may include a porous support capable of adsorbing a sample and one or more biomarkers. The support includes an internal biomarker at a predetermined concentration in preparation for the addition of the soybean metabolite extract, and can also immobilize each sample. In addition, the porosity of the support allows maximum exposure to the extraction solvent added during sample analysis.

따라서, 상기 지지체는 높은 수준의 다공도를 가진 임의의 지지체일 수 있으며, 이러한 지지체는 종래 기술분야에서 공지되어 있으며, 또는 상업적으로 구입 가능하다.Accordingly, the support may be any support having a high level of porosity, and such support is known in the art or commercially available.

구체적으로, 고형 지지체일 수 있다. 보다 구체적으로는 액체에 대한 흡수성 물질로 이루어져 있다. 상기 흡수성 물질은 흡착제 또는 흡착성 물질일 수 있다.Specifically, it may be a solid support. More specifically, it is made of a material that absorbs liquids. The absorbent material may be an adsorbent or an adsorbent material.

상기 액체 흡수성 물질은 바이오마커의 용액과 분석용 후속 시료가 기공을 통해 일정하게 흡착 또는 흡수되게 한다.The liquid absorbent material allows a solution of the biomarker and a subsequent sample for analysis to be constantly adsorbed or absorbed through the pores.

상기 흡수성 물질로 셀룰로오스와 같은 카보하이드레이트 물질, 유리 섬유, 유리 비드, 폴리아크릴아미드 젤, 다공성 플라스틱 불활성 폴리머 및 다공성 흑연 중에서 하나 이상을 포함할 수 있다. 보다 구체적으로는, 아가로오스, 아가, 셀룰로오스, 덱스트란, 키토산 또는 곤약과 같은 카보하이드레이트 물질이나 그 유도체, 카나기난, 젤란 또는 알기네이트를 포함할 수 있다. 가장 구체적으로는, 셀룰로오스 또는 유리 섬유일 수 있다.The absorbent material may include at least one of a carbohydrate material such as cellulose, glass fiber, glass beads, polyacrylamide gel, a porous plastic inert polymer, and porous graphite. More specifically, it may include a carbohydrate material such as agarose, agar, cellulose, dextran, chitosan, or konjac or a derivative thereof, carnaginan, gellan, or alginate. Most specifically, it may be cellulose or glass fibers.

본 발명의 키트에 포함된 바이오마커는 시료에 존재하는 대사체의 양을 정량하기 위해 유사 또는 동일한 유사체에 대한 비교로 사용되는, 양을 알고 있는 절대량의 비교물질인 것으로 이해할 수 있다. 상기 바이오마커는 시료의 대사체와의 적절한 구별을 위해 동위원소로 표지될 수 있다.It can be understood that the biomarker included in the kit of the present invention is an absolute amount of a comparative substance of known amount, which is used as a comparison to a similar or identical analog to quantify the amount of a metabolite present in a sample. The biomarker may be labeled with an isotope for proper differentiation from a metabolite of the sample.

또한, 본 발명의 키트에 사용할 수 있는 시료는 대두 원산지별 대사체 추출물로서, 액체 시료의 형태로 키트에 제공될 수 있다.In addition, the sample that can be used in the kit of the present invention is a metabolite extract for each origin of soybean, and may be provided in the kit in the form of a liquid sample.

상기 대사체의 추출방법은 특별히 제한하지는 않으나, 바람직하게는 용매추출법을 이용한다. 상기 용매는 대두의 대사체를 용해할 수 있는 것이라면 특별히 제한하지는 않는다. 예를 들어, 상기 용매로, 물; 메탄올, 에탄올, 프로판올, 부탄올 등의 저급 알코올; 아세톤; 트리플루오로에탄올; 테트라하이드로퓨란; 디클로로메탄; 포스페이트; 및 이들의 혼합용매를 사용할 수 있다.The extraction method of the metabolite is not particularly limited, but preferably a solvent extraction method is used. The solvent is not particularly limited as long as it can dissolve soybean metabolites. For example, as the solvent, water; lower alcohols such as methanol, ethanol, propanol and butanol; acetone; trifluoroethanol; tetrahydrofuran; dichloromethane; phosphate; and mixed solvents thereof.

예컨대, 상기 대사체 추출물은 메탄올 및 물의 혼합용매, 구체적으로 1:1 내지 9:1의 부피비, 보다 구체적으로는 7:3의 부피비로 혼합한 혼합용매에서 대두를 균질화하여 얻을 수 있으나, 이에 특별히 제한하는 것은 아니다.For example, the metabolite extract can be obtained by homogenizing soybeans in a mixed solvent of methanol and water, specifically 1:1 to 9:1 by volume, more specifically, in a mixed solvent of 7:3 by volume. It is not limiting.

또한, 대사체의 추출 범위를 보다 넓게 하기 위해 상기 용매 내에서 대두 시료를 균질화하는 과정을 추가적으로 실시할 수 있다.In addition, in order to widen the extraction range of metabolites, a process of homogenizing the soybean sample in the solvent may be additionally performed.

또한, 상기 마이크로타이터 플레이트는 분석물을 배출하기 위한 필터 및 배출구 등을 추가로 포함할 수 있으며, 이들의 배치, 배출방법 등은 당업자 수준에서 이해될 수 있는 범위 내에서 조정 가능하다.In addition, the microtiter plate may further include a filter and an outlet for discharging the analyte, and their arrangement, discharging method, etc. can be adjusted within a range that can be understood by those skilled in the art.

또한, 본 발명의 키트는 통상적으로 분석장치와 조합하여 대사체 범위를 정량 표적 분석하기 위하여 여러 가지 대사체를 준비할 수 있는 기구에 포함된 시약, 용매, 소프트웨어 시스템 등을 더 포함할 수 있다.In addition, the kit of the present invention may further include reagents, solvents, software systems, etc. included in an apparatus capable of preparing various metabolites for quantitative target analysis of a range of metabolites, typically in combination with an analysis device.

본 발명의 키트는 상술한 조성물을 이용하므로, 상술한 바와 중복된 내용은 본 명세서의 과도한 복잡성을 피하기 위하여 그 기재를 생략한다. Since the kit of the present invention uses the above-described composition, the description of overlapping contents as described above is omitted in order to avoid excessive complexity of the present specification.

또한, 본 발명의 다른 양태에 따르면, 본 발명은 다음 단계를 포함하는 대두의 국내 원산지 판별방법을 제공한다:Further, according to another aspect of the present invention, the present invention provides a method for determining the domestic origin of soybeans, comprising the steps of:

(a) 대두로부터 대사체를 추출하는 단계; 및(a) extracting metabolites from soybeans; and

(b) 상기 (a) 단계에서 추출된 대사체 중 트립토판(Tryptophan), 말로닐제니스틴(Malonylgenistin), 말로닐다이드진(Malonyldaidzin), N-아세틸오르니틴(N-acetylornithine) 및 알리신(Allysine)로 이루어진 군으로부터 선택된 3 종 이상의 대사체를 기체 크로마토그래피-질량분석기와 액체 크로마토그래피-질량분석기로 분석하는 단계.(b) tryptophan, malonylgenistin, malonyldaidzin, N-acetylornithine and allicin among the metabolites extracted in step (a) Analyzing three or more metabolites selected from the group consisting of gas chromatography-mass spectrometry and liquid chromatography-mass spectrometry.

상기 원산지는 경기도, 강원도, 충청도, 경상북도, 경상남도, 전라북도 및 전라남도로 이루어진 군에서 선택되는 1 종 이상이다.The origin is at least one selected from the group consisting of Gyeonggi-do, Gangwon-do, Chungcheong-do, Gyeongsangbuk-do, Gyeongsangnam-do, Jeollabuk-do and Jeollanam-do.

바람직하게는, 상기 (b) 단계의 대사체들 간의 발현 수준 차이로 원산지를 판정한다.Preferably, the origin is determined by the difference in expression level between the metabolites of step (b).

본 발명의 일 구현예에서, 하기와 같은 방법으로 서로 다른 원산지의 대두 시료 간의 대사체의 차별성을 판별한다:In one embodiment of the present invention, the differentiation of metabolites between soybean samples of different origins is determined by the following method:

(1) 국내 7 개의 지역에서 차이를 보이는 5가지 대사체(Tryptophan, Malonylgenistin, Malonyldaidzin, N-acetylornithine, Allysine)를 선별 후, 선별된 대사체에 대해 직교부분최소제자승판별(OPLS-DA)를 이용하여 다변량 방식으로 반응 변수 모형화;(1) After screening 5 metabolites (Tryptophan, Malonylgenistin, Malonyldaidzin, N-acetylornithine, Allysine) showing differences in 7 regions in Korea, orthogonal partial least squares discrimination (OPLS-DA) was performed on the selected metabolites. modeling response variables in a multivariate manner using

(2) GC/TOF MS와 LC/Orbitrap MS에서 분석된 대사체의 강도를 이용하여 상대적 수준 차이 비교;(2) comparing the relative level difference using the intensities of metabolites analyzed by GC/TOF MS and LC/Orbitrap MS;

(3) ROC 곡선 (Receiver Operating Characteristic curve)을 이용하여 대사체 바이오마커를 검증하는 방법을 순차적으로 적용하여 AUC(Area Under the Curve) 값 비교; 및(3) comparing AUC (Area Under the Curve) values by sequentially applying a method of verifying metabolite biomarkers using a ROC curve (Receiver Operating Characteristic curve); and

(4) ROC 곡선(Receiver Operating Characteristic curve)을 이용하여 대사체 바이오마커를 검증을 통하여 대두시료로부터 대사체 바이오마커 분석.(4) Metabolite biomarker analysis from soybean samples by verifying metabolite biomarkers using ROC curve (Receiver Operating Characteristic curve).

상기 대두시료에서 대사체의 수준차이를 측정하는 방법은 질량분석기(Mass Spectrometer), 크로마토그래피(Chromatography) 기기, 크로마토그래피가 결합된 질량분석기(Chromatography- mass spectrometer), 핵자기공명분광분석기(Nuclear Magnetic Resonance spectrometer), 라만 분광기(Raman spectroscopy), 광흡수분석(light absorption analysis)기, 유동주입분석(flow injection analysis)기 등의 기기장치를 이용한 분석법; 상기 대사체에 특이적인 항체, 엡타머, 펩타이드, 핵산 또는 고분자와 대사체 간의 특이적인 결합을 이용한 대사체의 정량분석법; ELISA(enzyme linked immunosorbent asay), 웨스턴 블랏, 방사선면역분석(RIA: Radioimmunoassay), 방사면역확산법(radioimmunodiffusion), 오우크테로니(Ouchterlony) 면역 확산법, 로케트(rocket) 면역전기영동, 조직면역 염색, 면역침전 분석법(Immunoprecipitation assay), 보체고정분석법(Complement Fixation Assay), FACS(Fluorescence activated cell sorter) 또는 마이크로어레이(microarray) 분석법 등의 방법을 이용하여 수행할 수 있으며, 이에 제한하지 않는다. 바람직하게는, 상기 대사체의 수준을 측정하는 방법으로 기체 크로마토그래피 분석법, 액체 크로마토그래피 및 질량분석법을 사용할 수 있다.Methods for measuring the level difference of metabolites in the soybean sample include a mass spectrometer, a chromatography instrument, a chromatography-combined mass spectrometer (Chromatography-mass spectrometer), and a nuclear magnetic resonance spectrometer (Nuclear Magnetic). Resonance spectrometer), Raman spectroscopy (Raman spectroscopy), light absorption analysis (light absorption analysis), flow injection analysis (flow injection analysis) analysis method using instruments such as; Quantitative analysis of metabolites using specific binding between the metabolite-specific antibody, eptamer, peptide, nucleic acid, or polymer and the metabolite; ELISA (enzyme linked immunosorbent asay), Western blot, Radioimmunoassay (RIA), radioimmunodiffusion, Ouchterlony immunodiffusion method, rocket immunoelectrophoresis, tissue immunostaining, immunity Precipitation assay (Immunoprecipitation assay), complement fixation assay (Complement Fixation Assay), FACS (Fluorescence activated cell sorter) or a method such as microarray (microarray) can be performed using a method, but is not limited thereto. Preferably, as a method for measuring the level of the metabolite, gas chromatography analysis, liquid chromatography, and mass spectrometry may be used.

본 발명에서 이용되는 크로마토그래피(Chromatography)는 가스 크로마토그래피(Gas Chromatography), 액체-고체 크로마토그래피 (Liquid-Solid Chromatography, LSC), 종이 크로마토그래피(Paper Chromatography, PC), 박층 크로마토그래피 (Thin-Layer Chromatography, TLC), 기체-고체 크로마토그래피(Gas-Solid Chromatography, GSC), 액체-액체 크로마토그래피(Liquid-Liquid Chromatography, LLC), 포말 크로마토그래피(Foam Chromatography, FC), 유화 크로마토그래피(Emulsion Chromatography, EC), 기체-액체 크로마토그래피(Gas-Liquid Chromatography, GLC), 이온 크로마토그래피(Ion Chromatography, IC), 겔 여과 크로마토그래피(Gel Filtration Chromatograhy, GFC) 또는 겔 투과 크로마토그래피(Gel Permeation Chromatography, GPC)를 포함하며, 이에 제한되지 않고 당업계에서 통상적으로 사용되는 모든 정량용 크로마토그래피를 사용할 수 있다. 바람직하게는, 본 발명에서 이용되는 크로마토그래피는 가스 크로마토그래피와 액체 크로마토그래피이다. 바람직하게는, 본 발명에서 이용되는 질량분석기는 MALDI-TOF MS 또는 TOF MS와 Orbitrap MS이고, 보다 바람직하게는 TOF MS와 Orbitrap MS이다.Chromatography used in the present invention is gas chromatography (Gas Chromatography), liquid-solid chromatography (Liquid-Solid Chromatography, LSC), paper chromatography (Paper Chromatography, PC), thin-layer chromatography (Thin-Layer) Chromatography, TLC), Gas-Solid Chromatography (GSC), Liquid-Liquid Chromatography (LLC), Foam Chromatography (FC), Emulsion Chromatography (Emulsion Chromatography, EC), Gas-Liquid Chromatography (GLC), Ion Chromatography (IC), Gel Filtration Chromatography (GFC) or Gel Permeation Chromatography (GPC) It includes, but is not limited to, any chromatography for quantitative use commonly used in the art can be used. Preferably, the chromatography used in the present invention is gas chromatography and liquid chromatography. Preferably, the mass spectrometer used in the present invention is MALDI-TOF MS or TOF MS and Orbitrap MS, and more preferably TOF MS and Orbitrap MS.

또한, 상기 기기장치를 이용한 분석법을 수행할 경우, 상기 대두시료로부터 대사체를 추출하여 수득하고, 추출된 대사체에 메톡시아민을 처리하여 유도체화하는 단계를 더 포함할 수 있다.In addition, when the analysis method using the apparatus is performed, the method may further include the step of extracting and obtaining a metabolite from the soybean sample, and treating the extracted metabolite with methoxyamine for derivatization.

또한, 본 발명의 다른 구현예에서, 하기와 같은 방법으로 서로 다른 원산지의 대두 시료 간의 대사체의 차별성을 판별한다: 먼저, 대두의 원산지 판별의 바이오마커를 스크리닝하기 위해 국내 7 개의 도에서 재배된 대두 시료를 확보하여 대사체를 추출하였다. 그 용매는 메탄올:아이소프로판올:증류수 (3:3:2)를 사용하며, 추출된 샘플은 효과적인 Gas Chromatography Mass spectrometer 분석을 위해, pyridine, MSTFA 유도체화를 실시하였다. 내부 보유 마커로는 13가지 다른 지방산메틸에스터를 첨가하였다. 또한 Liquid Chromatography Mass spectrometer 분석을 위해, 80% Methanol로 Reconsitution하였다.In addition, in another embodiment of the present invention, the differentiation of metabolites between soybean samples of different origins is discriminated in the following way: First, in order to screen for biomarkers for determining the origin of soybeans, cultivated in 7 provinces in Korea Soybean samples were obtained and metabolites were extracted. The solvent is methanol:isopropanol:distilled water (3:3:2), and the extracted sample was derivatized with pyridine and MSTFA for effective Gas Chromatography Mass Spectrometer analysis. Thirteen different fatty acid methyl esters were added as internal retention markers. In addition, for liquid chromatography mass spectrometer analysis, reconsitution was performed with 80% methanol.

그 후, GC/TOF MS와 LC/Orbitrap MS를 이용하여 대사체 프로파일의 차이를 비교, 분석하였다. 이를 위하여 분석결과를 통계처리 가능한 수치로 변화한 다음, 변환된 수치를 이용하여 통계학적으로 그 차별성을 검증하였다. 그 결과 210종의 대사체를 동정하였고 표준화를 위하여 GC/TOF MS와 LC/Orbitrap MS 분석결과 나온 강도를 대사체의 강도 합으로 나누는 방법을 사용하였고, 추가적으로 변위차 표준화법을 실시하였다. Thereafter, differences in metabolite profiles were compared and analyzed using GC/TOF MS and LC/Orbitrap MS. To this end, the analysis result was changed to a numerical value that can be processed statistically, and the difference was statistically verified using the converted value. As a result, 210 metabolites were identified. For standardization, the method of dividing the intensity from the GC/TOF MS and LC/Orbitrap MS analysis results by the sum of the metabolite intensity was used, and additionally, the displacement difference standardization method was performed.

또한, 그룹 간 차이를 보이는 단일 바이오마커 후보를 탐색하기 위하여, (1) 주성분 분석(PCA); (2) 직교부분최소자승판별 분석(OPLS-DA)을 통한 VIP 순위 탐색; (3) 아노바 (ANOVA)분석에서의 공통 대사체를 후보로 검증하였다. 또한 이들의 다양한 조합을 통하여 복합 바이오마커를 탐색하였다. 이는 직교부분최소자승판별 분석(OPLS-DA)을 통하여 다변량 방식으로 반응 변수를 모형화 및 주성분분석과 같은 성분을 추출해 낼 수 있다.In addition, in order to search for single biomarker candidates showing differences between groups, (1) principal component analysis (PCA); (2) VIP ranking search through orthogonal partial least squares analysis (OPLS-DA); (3) Common metabolites in ANOVA analysis were verified as candidates. In addition, complex biomarkers were searched through various combinations thereof. It is possible to model the response variable in a multivariate manner through orthogonal partial least squares discriminant analysis (OPLS-DA) and extract components such as principal component analysis.

또한, ROC 분석을 통해 총 6개의 단일 대사체 후보와 그의 42가지 조합을 확인 한 결과 4개의 그룹 사이의 AUC 값이 모두 0.7 이상으로 확인되었다. 또한 보다 높은 AUC 값(질병의 판정을 위한 AUC 값 > 0.8)을 도출하기 위한 분석을 추가하여 실시하였다.In addition, as a result of confirming a total of six single metabolite candidates and 42 combinations thereof through ROC analysis, the AUC values between the four groups were all confirmed to be 0.7 or higher. In addition, an analysis for deriving a higher AUC value (AUC value > 0.8 for diagnosis of disease) was added and performed.

또한, 각 그룹별 t-검정을 통하여 그룹에 특이적인 대사체를 확인할 수 있었다. 대사체의 유의적 차이의 크기를 폴드 체인지로 비교하여 (fold change) 그 양이 증가 혹은, 감소하는 패턴을 분석하여, 그룹 특이적 대사체를 선별하였다.In addition, the group-specific metabolites could be identified through the t-test for each group. Group-specific metabolites were selected by comparing the magnitude of the significant difference of metabolites by fold change and analyzing the pattern in which the amount increased or decreased.

이 중 새롭게 선별된 5가지 대사체(Tryptophan, Malonylgenistin, Malonyldaidzin, N-acetylornithine, Allysine)를 국내 7 개의 도에서 재배되는 대두의 원산지를 판별할 수 있는 바이오 마커로 선정하였고, 특정 지역에서 보다 일관성 있고 신뢰도 높은 정확한 판별을 가능하게 함으로써 실제 원산지 단속에 적용 가능하도록 하였다.Among them, five newly selected metabolites (Tryptophan, Malonylgenistin, Malonyldaidzin, N-acetylornithine, Allysine) were selected as biomarkers that can discriminate the origin of soybeans grown in 7 provinces in Korea. By enabling reliable and accurate identification, it was made applicable to actual country of origin control.

따라서, 본 발명의 대두의 원산지 판별용 바이오마커를 이용한 대두의 원산지 판별방법을 이용하였을 때, 보다 일관성 있고 신뢰도 높게 대두의 원산지를 판별할 수 있음을 확인하였다. 또한, 이는 실제 원산지 단속에 적용할 수 있으며, 대두 외 다양한 농산물에도 적용할 수 있다.Therefore, it was confirmed that the origin of soybeans could be determined more consistently and reliably when using the method for determining the origin of soybeans using the biomarker for determining the origin of soybeans of the present invention. In addition, this can be applied to the actual origin control, and can be applied to various agricultural products other than soybeans.

본 발명의 대두의 원산지 판별용 바이오마커를 이용하면, 대두 내 대사체의 수준변화를 이용하여 국내 7 개의 도에서 재배되는 대두의 원산지를 판별할 수 있다. 본 발명의 바이오마커는, 실제 단속에 이용하여 원산지를 속여 부당한 이익을 취하는 행위를 단속할 수 있는 중요한 도구로써 사용할 수 있으며, 이는 국내 유통 농산물의 시장질서 확립과 소비자들의 신뢰 확보에 기여할 수 있다.If the biomarker for determining the origin of soybeans of the present invention is used, the origin of soybeans grown in seven domestic provinces can be determined by using the change in the level of metabolites in the soybean. The biomarker of the present invention can be used as an important tool to crack down on acts of taking unfair profits by deceiving the country of origin by using it for actual enforcement, which can contribute to establishing market order for domestically distributed agricultural products and securing consumer confidence.

도 1은 질량 분석을 통해 나온 결과를 주성분분석(principal component analysis, PCA) 을 이용하여 분석한 결과로, 국내 7 개의 도에서 재배되는 대두 시료에서 검출된 대사체들의 차이를 나타낸 도이다.
도 2는 직교부분최소자승판별 분석(orthogonal partial least squares discriminant analysis, OPLS-DA) 결과로, 국내 7 개의 도에서 재배되는 대두 시료에서 검출된 대사체들의 차이를 나타낸 도이다.
도 3은 계층적 군집 분석(Hierarchical clustering analysis, HCA)을 토대로 상대 존재비(Relative abundances)를 나타낸 결과로, 국내 5개의 도에서 재배되는 대두의 원산지를 판별해 낼 수 있는 최소한의 대사체 5가지(Tryptophan, Malonylgenistin, Malonyldaidzin, N-acetylornithine, Allysine)를 선택하고 각각의 수치를 나타낸 도이다.
도 4는 본 발명에서 선별한 5 가지 대사체를 이용하였을 때 각각의 지역에 대한 판별 결과를 나타내는 AUC curve 결과를 나타낸 도이다.
1 is a diagram showing the difference between metabolites detected in soybean samples grown in 7 provinces in Korea as a result of analyzing the results obtained through mass spectrometry using principal component analysis (PCA).
2 is a diagram showing the difference between metabolites detected in soybean samples grown in 7 provinces in Korea as a result of orthogonal partial least squares discriminant analysis (OPLS-DA).
3 is a result showing the relative abundances based on a hierarchical clustering analysis (HCA). The minimum 5 metabolites that can determine the origin of soybeans grown in 5 provinces in Korea ( Tryptophan, Malonylgenistin, Malonyldaidzin, N-acetylornithine, Allysine) are selected and each value is shown.
4 is a diagram showing the AUC curve results showing the discrimination results for each region when the five metabolites selected in the present invention are used.

이하, 본 발명을 실시예에 의거하여 보다 구체적으로 설명한다. 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 요지에 따라 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.Hereinafter, the present invention will be described in more detail based on examples. The examples are only for illustrating the present invention in more detail, and it will be apparent to those of ordinary skill in the art that the scope of the invention is not limited by these examples according to the gist of the present invention.

실시예Example 1. 시료 내 1. In the sample 대사체metabolite 추출 및 extraction and 유도체화derivatization

1-1. 대두 시료의 전처리 및 1-1. pretreatment of soybean samples and 대사체metabolite 추출 extraction

경기도, 강원도, 충청도, 경상북도, 경상남도, 전라북도 및 전라남도 지역의 대두 시료는 국립농산물품질관리원에서 제공받았으며, 대두 콩 7 g을 균질화하여 파우더 형태로 만든 후 대사체 추출 전까지 영하 80℃에서 냉동 보관하는 방법으로 전처리하였다.Soybean samples from Gyeonggi-do, Gangwon-do, Chungcheong-do, Gyeongsangbuk-do, Gyeongsangnam-do, Jeollabuk-do and Jeollanam-do were provided by the National Agricultural Products Quality Management Service. was pretreated with

대두 시료 내 대사체 추출을 위해, 상기 냉동 보관 되어 있는 대두 파우더를 20 mg씩 튜브에 담은 후 1 ㎖의 추출용제 (메탄올:이소프로프라놀:증류수, 3:3:2, v/v/v)를 첨가하였다. 이 혼합물을 4℃에서 10분간 초음파 분쇄한 후, 5분간 13,200 rpm 으로 원심분리하여 850 ㎕의 상등액을 다른 튜브에 담고 고속진공농축기(speed vacuum concentrator)를 사용하여 건조시켰다. 건조된 추출물은 GC-TOF 질량 분석기와 LC-Orbitrap 질량분석기로 분석할 때까지 -80℃에서 냉동 보관하였다.For metabolite extraction in the soybean sample, 20 mg of the frozen soybean powder was put into a tube and 1 ml of an extraction solvent (methanol:isopropranol:distilled water, 3:3:2, v/v/v) ) was added. The mixture was sonicated at 4° C. for 10 minutes, centrifuged at 13,200 rpm for 5 minutes, and 850 μl of the supernatant was placed in another tube and dried using a speed vacuum concentrator. The dried extract was stored frozen at -80°C until analyzed by GC-TOF mass spectrometer and LC-Orbitrap mass spectrometer.

1-2. 1-2. 대사체의metabolite 유도체화derivatization

상기 실시예 1-1에서 추출한 대두의 대사체 샘플의 더욱 효과적인 분석을 위해 유도체화를 실시하였으며, 이를 위해 우선 40 mg/ml 농도의 메톡시아민 염산 (methoxyamine hydrochloride) 5㎕를 첨가하고 90분간 반응하였다 (200rpm, 30℃). 그 후, 지방산 메틸에스테르 (Fatty acid methyl esters: FAME, C8, C9, C10, C12, C14, C16, C18, C20, C22, C24, C26, C28 및 C30)를 이용하여 머무름 시간 색인지표(internal retention index markers)의 혼합물을 합성하고, C8-C16과 C18-C30은 각각 0.8 mg/ml와 0.4 mg/ml 농도의 클로로포름에 융해시킨 후, 지방산 메틸에스테르 2㎕, N-methyl-N-trimethylsilyltrifluoroacetamide (MSTFA + 1% TMCS, Thermo, USA) 45㎕를 추가하여 200 rpm, 37℃의 조건으로 1시간동안 반응하였다.For more effective analysis of the soybean metabolite sample extracted in Example 1-1, derivatization was performed. For this, 5 μl of methoxyamine hydrochloride at a concentration of 40 mg/ml was first added and reacted for 90 minutes. (200 rpm, 30 °C). Then, fatty acid methyl esters (Fatty acid methyl esters: FAME, C8, C9, C10, C12, C14, C16, C18, C20, C22, C24, C26, C28 and C30) using the retention time index index (internal retention) index markers), and after dissolving C8-C16 and C18-C30 in chloroform at a concentration of 0.8 mg/ml and 0.4 mg/ml, respectively, 2 μl of fatty acid methyl ester, N-methyl-N-trimethylsilyltrifluoroacetamide (MSTFA) + 1% TMCS, Thermo, USA) 45 μl was added and reacted for 1 hour at 200 rpm and 37°C.

1-3. 1-3. 대사체의metabolite 재현탁resuspension

상기 실시예 1-1에서 추출한 대두의 대사체 샘플의 더욱 효과적인 분석을 위해 재현탁을 실시하였으며, 이를 위해 80% 메탄올 (Methanol) 100㎕를 첨가하여 Reconstitution을 하였다.For more effective analysis of the soybean metabolite sample extracted in Example 1-1, resuspension was performed. For this, 100 μl of 80% methanol was added for reconstitution.

실시예Example 2. 2. 대사체metabolite 검출 및 분석 Detection and analysis

2-1. 기체 크로마토그래피 분석2-1. Gas Chromatography Analysis

대두 시료에서 추출한 샘플 내 대사체 검출을 위해, 상기 실시예 1-2에서 유도체화한 대사체 샘플 0.5 ㎕를 Automatic Liquid Sampler(Agilent 7693 ALS, Agilent Technologies, Wilmington, DE)를 이용해 기체 크로마토그래피에 주입하였다. 기체 크로마토그래피는 Agilent 7890B gas chromatograph(Agilent Technologies, Wilmington, DE)과 RTX-5Sil MS column(30 m ⅹ 0.25 mm, 0.25 ㎛ film thickness, Restek, Gellefonte, PA)을 이용하였고 첫 1분은 50℃로, 이후 분당 20℃씩 온도를 상승시켜 330℃에 도달한 후 5분 동안 유지하였다. 기체 크로마토그래피의 전재선 (transfer line) 온도는 280℃로 설정하였다.For the detection of metabolites in samples extracted from soybean samples, 0.5 μl of the metabolite sample derivatized in Example 1-2 was injected into gas chromatography using an Automatic Liquid Sampler (Agilent 7693 ALS, Agilent Technologies, Wilmington, DE). did. For gas chromatography, an Agilent 7890B gas chromatograph (Agilent Technologies, Wilmington, DE) and an RTX-5Sil MS column (30 m × 0.25 mm, 0.25 μm film thickness, Restek, Gelefonte, PA) were used and the first minute was at 50°C. , and thereafter, the temperature was increased by 20 °C per minute to reach 330 °C and maintained for 5 minutes. The transfer line temperature of gas chromatography was set to 280°C.

2-2. 질량 분석기 분석2-2. mass spectrometry analysis

또한 대두 시료에서 추출한 샘플 내 대사체 검출을 위해 질량 분석기를 이용하여 질량 분석을 실시하였다. 질량 분석에는 Pegasus HT time of flight (TOF) MS software 4.50 (LECO, St. Joseph, MI) 프로그램을 기반으로 한 Pegasus HT TOF 질량 분석기를 이용하였으며, 85-500m/z의 질량 범위에서 초당 20 스펙트럼의 속도로 대사체들의 질량 스펙트럼을 확보하였다. 이온소스 (ion source) 의 온도는 250℃로 조정하였으며, 전자 충격 이온화 (electron impact ionization) 는 70 eV로 시행하였다.In addition, mass spectrometry was performed using a mass spectrometer to detect metabolites in samples extracted from soybean samples. For mass spectrometry, a Pegasus HT TOF mass spectrometer based on the Pegasus HT time of flight (TOF) MS software 4.50 (LECO, St. Joseph, MI) program was used. Mass spectra of metabolites were obtained at the rate. The temperature of the ion source was adjusted to 250 °C, and electron impact ionization was performed at 70 eV.

2-3. 액체 크로마토그래피 분석2-3. Liquid chromatography analysis

대두 시료에서 추출한 샘플 내 대사체 검출을 위해, 상기 실시예 1-3에서 재현탁한 대사체 샘플 2 ㎕를 액체 크로마토그래피에 주입하여 분리하였다. 액체 크로마토그래피는 UltiMate 3000(Thermo Fisher Scientific, MA, USA)과 Waters Acquity UPLC BEH C18 Column (2.1 mm ⅹ 150 mm, 1.7 ㎛)을 이용하였고 이동상으로 0.1% Formic acid가 각각 포함된 D.W(Solvent A)와 Acetonitrile(Solvent B)을 사용하고 300 ㎕/min의 Flow rate으로 다음과 같은 Gradient에서 분석하였다; 0 - 2.0 min, 0% B; 2.0 - 30.0 min, 0% - 100% B; 30.0 - 32.0 min, 100% B; 32.0 - 32.1 min, 100% - 0% B; 32.1 - 35.0 min, 0% B.For the detection of metabolites in samples extracted from soybean samples, 2 μl of the metabolite samples resuspended in Examples 1-3 were injected and separated by liquid chromatography. Liquid chromatography was performed using UltiMate 3000 (Thermo Fisher Scientific, MA, USA) and Waters Acquity UPLC BEH C18 Column (2.1 mm × 150 mm, 1.7 μm), and DW (Solvent A) containing 0.1% Formic acid as a mobile phase, respectively. and Acetonitrile (Solvent B) were used and analyzed at the following gradient at a flow rate of 300 μl/min; 0 - 2.0 min, 0% B; 2.0 - 30.0 min, 0% - 100% B; 30.0 - 32.0 min, 100% B; 32.0 - 32.1 min, 100% - 0% B; 32.1 - 35.0 min, 0% B.

2-4. 질량 분석기 분석2-4. mass spectrometry analysis

또한 상기 실시예 2-3에서 분리한 샘플 내 대사체 검출을 위해 질량 분석기를 이용하여 질량 분석을 실시하였다. 질량 분석에는 Q-Exactive Plus (Thermo Fisher Scientific, MA, USA) 기기를 이용하였으며, 100-1200Da의 질량 범위에서 Positive 이온화 모드로 대사체들의 질량 스펙트럼을 확보하였다. In addition, mass spectrometry was performed using a mass spectrometer to detect metabolites in the samples separated in Example 2-3. For mass spectrometry, a Q-Exactive Plus (Thermo Fisher Scientific, MA, USA) instrument was used, and mass spectra of metabolites were obtained in a positive ionization mode in a mass range of 100-1200 Da.

2-3. 2-3. 대사체metabolite 초기동정 initial sympathy

상기 2-1 및 2-2에서 분석한 대사체들의 초기동정(annotation)을 위해 Fiehn 라이브러리(2007)/NIST 라이브러리(2012)를 사용하여 스펙트럼(spectrum)의 일치도를 통한 비교분석을 실시하였으며, 이후 표준물질의 스펙트럼(spectrum)과 머무름시간 (retention time) 직접적 비교를 통한 검증을 하였다. 결과적으로 상기 과정들을 통해 대두 시료에서 총 210개의 대사체들을 검출하였다.For initial identification (annotation) of the metabolites analyzed in 2-1 and 2-2, a comparative analysis was performed through the coincidence of the spectrum using the Fiehn library (2007)/NIST library (2012), and then It was verified through direct comparison of the spectrum and retention time of the standard material. As a result, a total of 210 metabolites were detected in soybean samples through the above procedures.

CompoundCompound CompoundCompound CompoundCompound CompoundCompound 1-deoxyerythritol1-deoxyerythritol melibiosemelibiose 9-Oxo-10(E),12(E)-octadecadienoic acid9-Oxo-10(E),12(E)-octadecadienoic acid LysoPE 18:1LysoPE 18:1 1-monopalmitin1-monopalmitin methioninemethionine Abscisic acidAbscisic acid LysoPE 16:0LysoPE 16:0 2-deoxyerythritol2-deoxyerythritol methionine sulfoxidemethionine sulfoxide AcetyldaidzinAcetyldaidzin LysoPE 18:0LysoPE 18:0 2-hydroxypyridine2-hydroxypyridine myo-inositolmyo-inositol AcetylgenistinAcetylgenistin LysoPE 18:2LysoPE 18:2 2-monopalmitin2-monopalmitin nicotinic acidnicotinic acid AcetylglycitinAcetylglycitin LysoPE 18:3LysoPE 18:3 3-hydroxypropionic acid3-hydroxypropionic acid n-methylalaninen-methylalanine Adenosine 3'-monophosphateAdenosine 3'-monophosphate LysoSM 18:0LysoSM 18:0 3-hydroxypyridine3-hydroxypyridine norvalinenorvaline AdenosineAdenosine MalonyldaidzinMalonyldaidzin 3-phenyllactic acid3-phenyllactic acid oleic acidoleic acid AgmatineAgmatine MalonylgenistinMalonylgenistin 3-phosphoglycerate3-phosphoglycerate ornithineornithine AllysineAllysine MalonylglycitinMalonylglycitin adenosine-5-monophosphateadenosine-5-monophosphate oxalic acidoxalic acid alpha-Lactosealpha-lactose Monoisobutyl phthalic acidMonoisobutyl phthalic acid alaninealanine oxoprolineoxoproline ApigetrinApigerin N(6)-(Octanoyl)lysineN(6)-(Octanoyl)lysine asparagineasparagine palmitic acidpalmitic acid Argininosuccinic acidArgininosuccinic acid N-Acetyl-L-glutamate 5-semialdehydeN-Acetyl-L-glutamate 5-semialdehyde asparagine dehydratedasparagine dehydrated phenylalaninephenylalanine AspartameAspartame N-AcetylornithineN-Acetylornithine aspartateaspartate phosphoethanolaminephosphoethanolamine BetaineBetaine NaringeninNaringenin beta alaninebeta alanine pinitolpinitol Bis(2-ethylhexyl) amineBis(2-ethylhexyl) amine Ophthalmic acidOphthalmic acid butane-2,3-diol butane-2,3-diol prolineproline Ceramide 34:1Ceramide 34:1 Oxoglutaric acidOxoglutaric acid butyrolactam butyrolactam pyrophosphate pyrophosphate CholineCholine Palmitic amidePalmitic amide cellobiosecellobiose pyruvic acidpyruvic acid CytosineCytosine PC 36:4PC 36:4 cholesterolcholesterol ribitolribitol Pantothenic acidPantothenic acid p-Cymenep-Cymene citric acidcitric acid riboseribose Aminoadipic acidAminoadipic acid PE 18:5PE 18:5 citrullinecitrulline serineserine DaidzeinDaidzein PE 36:4PE 36:4 cysteinecysteine sorbitolsorbitol DaidzinDaidzin PhosphocholinePhosphocholine enolpyruvate enolpyruvate stearic acidstearic acid DEETDEET QuercetinQuercetin erythritolerythritol succinic acidsuccinic acid Dehydroascorbic acidDehydroascorbic acid RutinRutin ethanolamineethanolamine sucrosesucrose DG 36:6DG 36:6 SafroleSafrole ethanol phosphate ethanol phosphate threonic acidthreonic acid ArginineArginine sn-Glycero-3-phosphocholinesn-Glycero-3-phosphocholine fructosefructose threoninethreonine Pipecolinic acidPipecolinic acid Soyasaponin 1Soyasaponin 1 fumaric acidfumaric acid trehalosetrehalose StachydrineStachydrine Soyasaponin 2Soyasaponin 2 galactinolgalactinol trehalose-6-phosphatetrehalose-6-phosphate EriodictyolEriodictyol Soyasaponin 3Soyasaponin 3 gamma-aminobutyric acidgamma-aminobutyric acid tris(ethylenglycol)tris(ethylenglycol) ErucamideErucamide Soyasaponin 4Soyasaponin 4 gluconic acidgluconic acid tryptophan tryptophan Gamma-GlutamyltyrosineGamma-Glutamyltyrosine Soyasaponin 5Soyasaponin 5 glucoseglucose tyrosinetyrosine GenisteinGenistein Soyasaponin αgSoyasaponin αg glucose-6-phosphateglucose-6-phosphate uraciluracil GenistinGenistin Soyasaponin BdSoyasaponin Bd glutamineglutamine uridineuridine GlyciteinGlycitein Soyasaponin Be Soyasaponin Be glyceric acidglyceric acid valinevaline GlycitinGlycitin Soyasaponin βaSoyasaponin βa glycerolglycerol xanthinexanthine GlycylprolylhydroxyprolineGlycylprolylhydroxyproline Soyasaponin βgSoyasaponin βg glycerol-alpha-phosphateglycerol-alpha-phosphate xylosexylose HexamethylenetetramineHexamethylenetetramine Soyasaponin γaSoyasaponin γa glycineglycine (R)-N-Methylsalsolinol(R)-N-Methylsalsolinol Homo-L-arginineHomo-L-arginine Soyasaponin γgSoyasaponin γg glycolic acidglycolic acid 1-(sn-Glycero-3-phospho)-1D-myo-inositol1-(sn-Glycero-3-phospho)-1D-myo-inositol Indole-3-acrylic acidIndole-3-acrylic acid Spermidinespermidine guanineguanine 19-Nortestosterone19-Nortestosterone IsorhamnetinIsorhamnetin SuccinyladenosineSuccinyladenosine guanosineguanosine 2-5-Furandicarboxylic acid2-5-Furandicarboxylic acid Jasmonic acidJasmonic acid SulcatolSulcatol heptadecanoic acidheptadecanoic acid 3,5-di-tert-Butyl-4-hydroxybenzaldehyde3,5-di-tert-Butyl-4-hydroxybenzaldehyde KaempferolKaempferol TexanolTexanol hexitolhexitol 3,5-di-tert-Butylbenzaldehyde3,5-di-tert-Butylbenzaldehyde Kynurenic acidKynurenic acid trans-4-Hydroxy-L-prolinetrans-4-Hydroxy-L-proline homoserinehomoserine 3-Acetylindole3-Acetylindole CarnitineCarnitine TriisopropanolamineTriisopropanolamine hydroxylaminehydroxylamine 3-Cresotinic acid3-Cresotinic acid LeucineLeucine VinylacetylglycineVinylacetylglycine inositol-4-monophosphateinositol-4-monophosphate 3-Hydroxyadipic acid3-Hydroxyadipic acid L-gamma-glutamyl-L-leucineL-gamma-glutamyl-L-leucine   isoleucineisoleucine 3-Methylglutaconic acid3-Methylglutaconic acid L-gamma-glutamyl-L-valineL-gamma-glutamyl-L-valine   isothreonic acidisothreonic acid 4-Aminobenzoic acid4-Aminobenzoic acid Glutamic acidGlutamic acid   lactic acidlactic acid 4-Guanidinobutanoic acid4-Guanidinobutanoic acid HistidineHistidine   lactitollactitol 4-Methoxycinnamaldehyde4-Methoxycinnamaldehyde Linoleoyl ethanolamideLinoleoyl ethanolamide   lysinelysine 5-(2'-Carboxyethyl)-4-6-Dihydroxypicolinate5-(2'-Carboxyethyl)-4-6-Dihydroxypicolinate LysoPC 16:0LysoPC 16:0   lyxitollyxitol 5-Hydroxymethyl-2-furaldehyde5-Hydroxymethyl-2-furaldehyde LysoPC 18:0LysoPC 18:0   lyxose lyxose 8-Hydroxyadenine8-Hydroxyadenine LysoPC 18:1LysoPC 18:1   malic acidmalic acid 9-10-DHOME9-10-DHOME LysoPC 18:2LysoPC 18:2   maltotriose maltotriose 9-HODE9-HODE LysoPC 18:3LysoPC 18:3  

실시예Example 3. 3. 대사체metabolite 바이오마커biomarker 선별 Selection

3-1. 주성분 분석(principal component analysis, 3-1. principal component analysis, PCAPCA ))

상기 실시예 1 및 2의 과정을 통해 검출한 총 210개의 대사체들 중 바이오마커 선별을 위한 분석으로 우선, 주성분 분석(principal component analysis, PCA)을 통해 검출한 대사체들을 도식화하였고 그 결과는 도 1에 나타내었다.As an analysis for biomarker selection among a total of 210 metabolites detected through the process of Examples 1 and 2, metabolites detected through principal component analysis (PCA) were first schematically illustrated, and the results are shown in Fig. 1 is shown.

도 1에서 보는 바와 같이 지역별로 대두 시료 내 대사체 분포에 차이가 있음을 확인할 수 있었다.As shown in FIG. 1 , it was confirmed that there was a difference in the metabolite distribution in the soybean sample by region.

3-2. 3-2. 직교부분최소자승판별Least squares discrimination of orthogonal parts 분석(orthogonal partial least squares discriminant orthogonal partial least squares discriminant analysis , OPLSanalysis , OPLS -DA)-DA)

또한, 국내의 재배되는 지역에 따른 대사체의 분포를 확인하기 위해 직교부분최소자승판별 (orthogonal partial least squares discriminant analysis , OPLS-DA) 분석을 시행하였고 이에 대한 결과를 도 2에 나타내었다.In addition, orthogonal partial least squares discriminant analysis (OPLS-DA) analysis was performed to confirm the distribution of metabolites according to domestic cultivation regions, and the results are shown in FIG. 2 .

도 2에서 보는 바와 같이 지역별로 대두 시료 내 대사체 분포에 차이가 있음을 확인할 수 있었다.As shown in FIG. 2 , it was confirmed that there was a difference in the metabolite distribution in the soybean sample by region.

3-3. 계층적 군집 분석(Hierarchical clustering analysis, 3-3. Hierarchical clustering analysis, HCAHCA ))

또한, 검출한 대사체들의 통계 분석을 위해, Multi Experiment Viewer (MeV, ver.4.8.1)을 이용한 계층적 군집 분석(Hierarchical clustering analysis, HCA)을 실시하였다. 그 후, 분석 결과를 바탕으로 통계적으로 식별 가능한 대사체들을 선별하여 상대 존재비(Relative abundances)를 분석하였고 이를 도 3에 나타내었다.In addition, for statistical analysis of the detected metabolites, hierarchical clustering analysis (HCA) using Multi Experiment Viewer (MeV, ver.4.8.1) was performed. Thereafter, based on the analysis results, statistically identifiable metabolites were selected and the relative abundances were analyzed, which is shown in FIG. 3 .

도 3에서 보는 바와 같이 각 지역별로 5 가지 대사체 트립토판(Tryptophan), 말로닐제니스틴(Malonylgenistin), 말로닐다이드진(Malonyldaidzin), N-아세틸오르니틴(N-acetylornithine) 및 알리신(Allysine) 대사체의 분포에 차이가 있음을 확인할 수 있었다. 따라서 이들을 대사체 바이오마커로 선별하였다.As shown in FIG. 3, the 5 metabolites Tryptophan, Malonylgenistin, Malonyldaidzin, N-acetylornithine and Allysine metabolites for each region It can be seen that there is a difference in the distribution of Therefore, they were selected as metabolite biomarkers.

실시예Example 4. 4. 대사체metabolite 바이오마커biomarker 검증 및 확립 Verification and establishment

상기 실시예 3에서 선별한 대사체 바이오마커를 검증 및 확립하기 위해, 선별된 대사체 바이오마커를 이용한 모델을 적용하였고 이 때 각각의 지역들에 대한 판별능력을 ROC curve 로 나타내었으며, 이를 도 4에 나타내었다.In order to verify and establish the metabolite biomarker selected in Example 3, a model using the selected metabolite biomarker was applied. At this time, the discrimination ability for each region is shown as an ROC curve, which is shown in FIG. 4 shown in

도 4에서 보는 바와 같이 AUC 값이 충청도는 0.87, 경상남도는 0.907 이며, 경기도, 강원도, 경상북도, 전라북도, 전라남도에서 1로 나타나 선별된 바이오마커의 대두 지역별 판별력이 매우 높음을 확인하였다.As shown in FIG. 4, the AUC values were 0.87 in Chungcheong-do and 0.907 in Gyeongsangnam-do, and 1 in Gyeonggi-do, Gangwon-do, Gyeongsangbuk-do, Jeollabuk-do, and Jeollanam-do, confirming that the selected biomarker had a very high discrimination power by soybean region.

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결론적으로, 본 발명을 통해 선정된 대두 원산지 판별 대사체 마커들은 신속하고 높은 정확도로 국내 대두 원산지를 판별할 수 있으며, 향후 국내 대두 산업 유통체계의 혼란을 막는데 도움을 줄 수 있는 바이오마커 개발의 초석이 될 것으로 사료된다.In conclusion, the metabolite markers for determining the origin of soybean selected through the present invention can determine the origin of domestic soybeans quickly and with high accuracy, and the development of biomarkers that can help prevent confusion in the domestic soybean industry distribution system in the future It is expected to be a cornerstone.

본 발명에 따른 각 지역별 대두의 대사체 마커 비율은 다음과 같다. Metabolite marker ratios of soybeans for each region according to the present invention are as follows.

경기도산 대두는 대사체인 N-아세틸오르니틴과 알리신 물질들은 많이 포함되어 있으나, 이에 비해 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진은 상대적으로 적게 포함되어 있다. 본원발명의 바이오마커로서 이용되는 경우, 경기도산 대두 내 대사체인 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 분포 비율은 0.82: 0.88: 0.84: 1.31: 1.35이다. Gyeonggi-do soybeans contain a lot of metabolites N-acetylornithine and allicin, but relatively few tryptophan, malonylgenistine, and malonyldizine. When used as a biomarker of the present invention, the distribution ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin, which are metabolites in soybean produced in Gyeonggi-do, is 0.82: 0.88: 0.84: 1.31: 1.35.

강원도산 대두는 대사체인 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신 물질들은 대체적으로 많이 포함되어 있다. 본원발명의 바이오마커로서 이용되는 경우, 강원도산 대두 내 대사체인 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 분포 비율은 1.26: 1.37: 1.25: 1.04: 1.12이다.Soybeans from Gangwon-do generally contain a lot of metabolites such as tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin. When used as a biomarker of the present invention, the distribution ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin, which are metabolites in soybean produced in Gangwon-do, is 1.26: 1.37: 1.25: 1.04: 1.12.

충청도산 대두는 대사체인 트립토판 물질이 많이 포함되어 있으나, 이에 비해 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신은 상대적으로 적게 포함되어 있다. 본원발명의 바이오마커로서 이용되는 경우, 충청도산 대두 내 대사체인 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 분포 비율은 1.14: 0.94: 0.91: 0.92: 0.88이다.Soybeans from Chungcheong-do contain a lot of tryptophan, a metabolite, but in comparison, malonylgenistine, malonyldidine, N-acetylornithine and allicin are relatively low. When used as the biomarker of the present invention, the distribution ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin, which are metabolites in soybean produced in Chungcheong-do, is 1.14: 0.94: 0.91: 0.92: 0.88.

경상북도산 대두는 대사체인 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진과 같은 물질들은 많이 포함되어 있으나, 이에 비해 트립토판, N-아세틸오르니틴 및 알리신은 상대적으로 적게 포함되어 있다. 본원발명의 바이오마커로서 이용되는 경우, 경상북도산 대두 내 대사체인 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 분포 비율은 0.86: 1.19: 1.34: 0.89: 0.76이다.Soybeans from Gyeongsangbuk-do contain a lot of substances such as metabolites malonylgenistin and malonyldizine, but relatively little tryptophan, N-acetylornithine and allicin. When used as a biomarker of the present invention, the distribution ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin, which are metabolites in soybean from Gyeongsangbuk-do, is 0.86: 1.19: 1.34: 0.89: 0.76.

경상남도산 대두는 대사체인 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진 및 N-아세틸오르니틴 같은 물질들은 많이 포함되어 있으나, 이에 비해 트립토판과 알리신은 상대적으로 적게 포함되어 있다. 본원발명의 바이오마커로서 이용되는 경우, 경상남도산 대두 내 대사체인 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 분포 비율은 0.89: 1.19: 1.25: 1.09: 0.99이다.Soybeans from Gyeongsangnam-do contain a lot of metabolites such as malonylgenistine, malonyldizine, and N-acetylornithine, but relatively little tryptophan and allicin. When used as a biomarker of the present invention, the distribution ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin, which are metabolites in soybean from Gyeongsangnam-do, is 0.89: 1.19: 1.25: 1.09: 0.99.

전라북도산 대두는 대사체인 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신이 대체적으로 모두 적게 포함되어 있다. 본원발명의 바이오마커로서 이용되는 경우, 전라북도산 대두 내 대사체인 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 분포 비율은 0.95: 0.82: 0.83: 0.83: 0.96이다.Soybeans from Jeollabuk-do contain relatively low levels of metabolites such as tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin. When used as a biomarker of the present invention, the distribution ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin, which are metabolites in soybean from Jeollabuk-do, is 0.95: 0.82: 0.83: 0.83: 0.96.

전라남도산 대두는 대사체인 트립토판 물질은 많이 포함되어 있으나, 이에 비해 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신은 상대적으로 적게 포함되어 있다. 본원발명의 바이오마커로서 이용되는 경우, 전라남도산 대두 내 대사체인 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 분포 비율은 1.09: 0.61: 0.58: 0.93: 0.94이다. Soybeans from Jeollanam-do contain a lot of tryptophan, a metabolite, but relatively low amounts of malonylgenistine, malonyldidine, N-acetylornithine and allicin. When used as the biomarker of the present invention, the distribution ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin, which are metabolites in soybean produced in Jeollanam-do, is 1.09: 0.61: 0.58: 0.93: 0.94.

Claims (6)

대두로부터 추출된, 대사체로서 트립토판(Tryptophan), 말로닐제니스틴(Malonylgenistin), 말로닐다이드진(Malonyldaidzin), N-아세틸오르니틴(N-acetylornithine) 및 알리신(Allysine)을 포함하는, 대두의 국내 원산지 품종 판별용 바이오마커 조성물로서,
상기 대두로부터 추출된 대사체 5 종의 함량을 기체 크로마토그래피-질량분석기와 액체 크로마토그래피-질량분석기로 분석하고, 상기 대사체들의 함량 수준 차이로 국내 원산지 품종을 판정하고;
상기 대두의 국내 원산지 품종은 경기도산, 강원도산, 충청도산, 경상북도산, 경상남도산, 전라북도산 및 전라남도산인 것을 특징으로 하는,
대두의 국내 원산지 품종 판별용 바이오마커 조성물.
Extracted from soybean, including tryptophan, malonylgenistin, malonyldaidzin, N-acetylornithine and Allysine as metabolites, domestic soybean As a biomarker composition for discrimination of origin varieties,
analyzing the content of five metabolites extracted from the soybean by gas chromatography-mass spectrometry and liquid chromatography-mass spectrometry, and determining domestic origin varieties by the difference in the content level of the metabolites;
The domestic origin varieties of soybeans are from Gyeonggi-do, Gangwon-do, Chungcheong-do, Gyeongsangbuk-do, Gyeongsangnam-do, Jeollabuk-do and Jeollanam-do,
Biomarker composition for discrimination of domestic origin varieties of soybeans.
제1항에 있어서,
상기 경기도산 대두는 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 함량 비율이 0.82: 0.88: 0.84: 1.31: 1.35이고;
상기 강원도산 대두는 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 함량 비율이 1.26: 1.37: 1.25: 1.04: 1.12이며;
상기 충청도산 대두는 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 함량 비율이 1.14: 0.94: 0.91: 0.92: 0.88이고;
상기 경상북도산 대두는 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 함량 비율이 0.86: 1.19: 1.34: 0.89: 0.76이며;
상기 경상남도산 대두는 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 함량 비율이 0.89: 1.19: 1.25: 1.09: 0.99이고,
상기 전라북도산 대두는 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 함량 비율이 0.95: 0.82: 0.83: 0.83: 0.96이며;
상기 전라남도산 대두는 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 함량 비율이 1.09: 0.61: 0.58: 0.93: 0.94인 것을 특징으로 하는, 대두의 국내 원산지 품종 판별용 바이오마커 조성물.
According to claim 1,
The content ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldaidzine, N-acetylornithine and allicin in the Gyeonggi soybean is 0.82: 0.88: 0.84: 1.31: 1.35;
The content ratio of tryptophan, malonylgenistin, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin in Gangwon-do soybean is 1.26: 1.37: 1.25: 1.04: 1.12;
The content ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin in the Chungcheong-do soybean is 1.14: 0.94: 0.91: 0.92: 0.88;
The content ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin in the Gyeongsangbuk-do soybean is 0.86: 1.19: 1.34: 0.89: 0.76;
The content ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin of the soybean produced in Gyeongsangnam-do is 0.89: 1.19: 1.25: 1.09: 0.99,
The Jeollabuk-do soybean has a content ratio of tryptophan, malonylgenistin, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin of 0.95: 0.82: 0.83: 0.83: 0.96;
The Jeollanam-do soybean has a content ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldaidzine, N-acetylornithine and allicin of 1.09: 0.61: 0.58: 0.93: 0.94. marker composition.
제1항의 대두의 국내 원산지 품종 판별용 바이오마커 조성물을 포함하는, 대두의 국내 원산지 품종 판별용 키트.
A kit for discriminating domestic origin varieties of soybeans, comprising the biomarker composition for identifying domestic origin varieties of soybeans of claim 1.
다음 단계를 포함하는 대두의 국내 원산지 품종 판별방법:
(a) 대두로부터 대사체를 추출하는 단계; 및
(b) 상기 (a) 단계에서 추출된 대사체 중 트립토판(Tryptophan), 말로닐제니스틴(Malonylgenistin), 말로닐다이드진(Malonyldaidzin), N-아세틸오르니틴(N-acetylornithine) 및 알리신(Allysine)의 함량을 기체 크로마토그래피-질량분석기와 액체 크로마토그래피-질량분석기로 분석하고, 상기 대사체들의 함량 수준 차이로 국내 원산지 품종을 판별하는 단계.
A method for determining domestic origin varieties of soybeans, comprising the following steps:
(a) extracting metabolites from soybeans; and
(b) of the metabolites extracted in step (a) of tryptophan, malonylgenistin, malonyldaidzin, N-acetylornithine and allicin Analyzing the content by gas chromatography-mass spectrometry and liquid chromatography-mass spectrometry, and determining the domestic origin variety by the difference in the content level of the metabolites.
제4항에 있어서,
상기 경기도산 대두는 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 함량 비율이 0.82: 0.88: 0.84: 1.31: 1.35이고;
상기 강원도산 대두는 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 함량 비율이 1.26: 1.37: 1.25: 1.04: 1.12이며;
상기 충청도산 대두는 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 함량 비율이 1.14: 0.94: 0.91: 0.92: 0.88이고;
상기 경상북도산 대두는 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 함량 비율이 0.86: 1.19: 1.34: 0.89: 0.76이며;
상기 경상남도산 대두는 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 함량 비율이 0.89: 1.19: 1.25: 1.09: 0.99이고,
상기 전라북도산 대두는 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 함량 비율이 0.95: 0.82: 0.83: 0.83: 0.96이며;
상기 전라남도산 대두는 트립토판, 말로닐제니스틴, 말로닐다이드진, N-아세틸오르니틴 및 알리신의 함량 비율이 1.09: 0.61: 0.58: 0.93: 0.94인 것을 특징으로 하는,
대두의 국내 원산지 품종 판별방법.
5. The method of claim 4,
The content ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldaidzine, N-acetylornithine and allicin in the Gyeonggi soybean is 0.82: 0.88: 0.84: 1.31: 1.35;
The content ratio of tryptophan, malonylgenistin, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin in Gangwon-do soybean is 1.26: 1.37: 1.25: 1.04: 1.12;
The content ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin in the Chungcheong-do soybean is 1.14: 0.94: 0.91: 0.92: 0.88;
The content ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin in the Gyeongsangbuk-do soybean is 0.86: 1.19: 1.34: 0.89: 0.76;
The content ratio of tryptophan, malonylgenistine, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin in the soybean from Gyeongsangnam-do is 0.89: 1.19: 1.25: 1.09: 0.99,
The Jeollabuk-do soybeans have a content ratio of tryptophan, malonylgenistin, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin of 0.95: 0.82: 0.83: 0.83: 0.96;
The Jeollanam-do soybean is characterized in that the content ratio of tryptophan, malonylgenistin, malonyldizine, N-acetylornithine and allicin is 1.09: 0.61: 0.58: 0.93: 0.94,
A method for identifying domestic varieties of soybeans.
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