KR102228267B1 - Methods for virus production using BHK-21 cell - Google Patents

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KR102228267B1 KR1020190138342A KR20190138342A KR102228267B1 KR 102228267 B1 KR102228267 B1 KR 102228267B1 KR 1020190138342 A KR1020190138342 A KR 1020190138342A KR 20190138342 A KR20190138342 A KR 20190138342A KR 102228267 B1 KR102228267 B1 KR 102228267B1
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Abstract

본 발명은 BHK-21 세포를 이용하여 다양한 종류의 바이러스를 대량으로 생산하는 방법에 관한 것이다. 본 발명은 효과적으로 대량의 바이러스를 생산할 수 있는 최적의 조건을 확립하였고, 다양한 종류의 바이러스 생산에 적용될 수 있으므로, 바이러스 의약품 생산 등 관련 의약 분야에 유용하게 이용될 수 있을 것으로 기대된다.The present invention relates to a method for mass-producing various types of viruses using BHK-21 cells. Since the present invention has established the optimal conditions for effectively producing a large amount of virus, and can be applied to the production of various types of viruses, it is expected that it can be usefully used in related pharmaceutical fields such as viral drug production.

Description

BHK-21 세포를 이용한 바이러스 생산방법{Methods for virus production using BHK-21 cell}Methods for virus production using BHK-21 cells {Methods for virus production using BHK-21 cells}

본 발명은 BHK-21 세포를 이용하여 다양한 종류의 바이러스를 대량으로 생산하는 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a method for mass-producing various types of viruses using BHK-21 cells.

바이러스란, 동물, 식물, 세균 및 방사균 등 살아있는 세포에 기생하며 세포 내에서만 증식할 수 있는 수백 μm 이하의 감염성 입자이다. 자신과 같은 것을 복제하는 생물의 특성을 가졌으나, 세포 밖에서는 핵단백질로 결정하는 것도 있다. 핵산의 종류에 따라 DNA바이러스와 RNA바이러스로, 숙주에 따라 동물바이러스와 식물바이러스 및 박테리오파지로 분류된다. 바이러스는 자신의 대사계가 없기 때문에 바이러스 핵산을 주형으로 하여 숙주 세포의 대사계를 통해 필요한 효소 단백을 합성하고, 바이러스 핵산을 복제하는 동시에 항원 단백을 만들며, 이들이 집합되어 새로운 바이러스를 완성해서 세포 밖으로 방출한다. 이때 바이러스는 당 지방질을 포함하며, 세포를 죽이고 병원성을 나타낸다.Viruses are infectious particles of several hundred μm or less that are parasitic in living cells such as animals, plants, bacteria, and radioactive bacteria and can only grow within cells. It has the characteristics of living organisms that replicate the same thing as itself, but some determine it as a nucleoprotein outside the cell. According to the type of nucleic acid, it is classified into DNA virus and RNA virus, and it is classified into animal virus, plant virus, and bacteriophage depending on the host. Viruses do not have their own metabolic system, so they synthesize necessary enzyme proteins through the metabolic system of host cells using viral nucleic acids as a template, replicate viral nucleic acids, and at the same time make antigen proteins, assemble them to complete new viruses and release them out of the cell. do. At this time, the virus contains sugar lipids, kills cells and shows pathogenicity.

한편, 종양 분해성 바이러스(oncolytic virus: OV)는 종양 세포에서 특이적으로 성장하여 이들을 사멸시키도록 설계되거나 선택된, 복제성 치료제이다. 몇몇의 그룹은 전-임상 동물 모델 및 사람에서의 조기 임상 데이터를 기준으로 한 상업화의 초기 단계에 있다. 그러나, 당해 분야에서 여전히 직면하고 있는 과제는 환자들에게 전달하기 위하여 약제학적으로 이용 가능한 바이러스를 대규모로 제조하는 것이다. 바이러스들은 합성된 약물이라기보다는 오히려 실질적인 생물이므로, 제조 공정은 세포 내에서 바이러스의 생산 및 감염 효력을 유지하면서 오염성 세포 잔해를 제거하는 과정이 포함되어야 한다.On the other hand, oncolytic virus (OV) is a replication therapeutic agent designed or selected to specifically grow and kill tumor cells. Several groups are in the early stages of commercialization based on pre-clinical animal models and early clinical data in humans. However, a challenge still facing in the art is the large-scale production of pharmaceutically usable viruses for delivery to patients. Since viruses are real organisms rather than synthetic drugs, the manufacturing process should include removing contaminating cellular debris while maintaining the viral production and infectious effects within the cells.

일반적으로, 백신 적용을 위해, 환자들은, 오염성 세포 단백질이 실제로 항원보강제(adjuvant)로 작용하여 제제의 면역원성을 증가시킬 수 있는 국소부위(흔히 근육 내) 내에 저용량의 바이러스들을 제공받는다. 이와 대조적으로, 종양 분해성 바이러스 치료제의 경우, 필요한 바이러스의 용량이 백신 적용을 위한 용량보다 백만배까지 더 크고, 정맥 내, 두개 내, 복강 내 또는 직접 종양 주사에 의해 투여될 수 있다. 따라서, OV의 경우 오염성 비-인간 세포 잔해가 제거된 다량의 바이러스를 제조할 수 있는 것이 중요하나, 대규모의 종양 분해성 바이러스 생산을 위한 개선된 방법에 대한 관련 연구는 미흡한 실정이다.In general, for vaccination applications, patients are given low doses of viruses in a local area (often intramuscularly) where the contaminating cellular protein can actually act as an adjuvant, thereby increasing the immunogenicity of the agent. In contrast, in the case of oncolytic viral therapeutics, the dose of virus required is up to a million times greater than the dose for vaccine application and can be administered by intravenous, intracranial, intraperitoneal or direct tumor injection. Therefore, in the case of OV, it is important to be able to prepare a large amount of virus from which contaminating non-human cell debris has been removed, but related studies on an improved method for large-scale oncolytic virus production are insufficient.

대한민국공개공보 제10-2014-0058601호Republic of Korea Published Publication No. 10-2014-0058601

이에 본 발명자들은 바이러스의 대량 생산방법에 대한 연구를 거듭한 결과, 최적의 바이러스 생산 세포주로 BHK-21 세포를 선정하고, 경제적으로 바이러스를 생산할 수 있는 최적의 조건(MOI, 감염기간 등)을 확립함으로써 본 발명을 완성하였다.Accordingly, the present inventors have repeatedly researched the method for mass production of viruses, and as a result, select BHK-21 cells as the optimal virus-producing cell line, and establish the optimal conditions (MOI, infection period, etc.) for economically producing the virus. By doing this, the present invention was completed.

따라서, 본 발명의 목적은 바이러스 생산방법을 제공하는 것이다.Accordingly, it is an object of the present invention to provide a virus production method.

그러나 본 발명이 이루고자 하는 기술적 과제는 이상에서 언급한 과제에 제한되지 않으며, 언급되지 않은 또 다른 과제들은 아래의 기재로부터 당해 기술 분야의 통상의 기술자에게 명확하게 이해될 수 있을 것이다.However, the technical problem to be achieved by the present invention is not limited to the problems mentioned above, and other problems that are not mentioned will be clearly understood by those skilled in the art from the following description.

본 발명의 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 하기의 단계를 포함하는 바이러스 생산방법을 제공한다:In order to achieve the object of the present invention, the present invention provides a virus production method comprising the following steps:

(a) BHK(Baby Hamster Kidney)-21 세포를 0.0001 내지 0.5 MOI(multiplicity of infection)로 바이러스와 접촉시켜 감염된 BHK-21 세포를 생성하는 단계;(a) contacting BHK (Baby Hamster Kidney)-21 cells with a virus at 0.0001 to 0.5 MOI (multiplicity of infection) to generate infected BHK-21 cells;

(b) 상기 단계 (a)에서 감염된 BHK-21 세포를 배지에서 배양하는 단계; 및(b) culturing the BHK-21 cells infected in step (a) in a medium; And

(c) 상기 단계 (b)의 배양물로부터 바이러스를 분리하는 단계.(c) separating the virus from the culture of step (b).

또한, 본 발명은 상기 바이러스 생산방법에 의하여 생산된 바이러스를 제공한다.In addition, the present invention provides a virus produced by the virus production method.

본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 단계 (a)의 바이러스는 포유동물 리오바이러스일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In one embodiment of the present invention, the virus of step (a) may be a mammalian reovirus, but is not limited thereto.

본 발명의 다른 구현예에 있어서, 상기 포유동물 리오바이러스는 인간 리오바이러스일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the mammalian reovirus may be a human reovirus, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 인간 리오바이러스는 혈청형 3의 리오바이러스일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the human reovirus may be a serotype 3 reovirus, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 혈청형 3의 리오바이러스는 Dearing 주(reovirus type 3 Dearing)일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the reovirus of the serotype 3 may be a Dearing main (reovirus type 3 Dearing), but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (a)는 0.001 내지 0.5 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시키는 것일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the step (a) may be to infect BHK-21 cells with a virus of 0.001 to 0.5 MOI, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (a)는 0.005 내지 0.5 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시키는 것일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the step (a) may be to infect BHK-21 cells with a virus of 0.005 to 0.5 MOI, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (a)는 0.005 내지 0.1 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시키는 것일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the step (a) may be to infect BHK-21 cells with a virus of 0.005 to 0.1 MOI, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (a)는 0.01 내지 0.5 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시키는 것일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the step (a) may be to infect BHK-21 cells with a virus of 0.01 to 0.5 MOI, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (a)는 0.01 내지 0.1 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시키는 것일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the step (a) may be to infect BHK-21 cells with a virus of 0.01 to 0.1 MOI, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 1일 내지 10일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the step (b) may be cultured for 1 to 10 days after virus infection, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 2일 내지 8일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, step (b) may be cultured for 2 to 8 days after virus infection, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 3일 내지 8일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the step (b) may be cultured for 3 to 8 days after virus infection, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 4일 내지 7일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the step (b) may be cultured for 4 to 7 days after virus infection, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 5일 내지 7일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the step (b) may be cultured for 5 to 7 days after virus infection, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 5일 내지 6일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the step (b) may be cultured for 5 to 6 days after virus infection, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (a)는 0.001 내지 0.1 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시키고, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 5일 내지 6일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, step (a) infects BHK-21 cells with a virus of 0.001 to 0.1 MOI, and step (b) can be cultured for 5 to 6 days after virus infection. , But is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (a)는 0.01 내지 0.1 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시키고, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 5일 내지 6일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, step (a) infects BHK-21 cells with a virus of 0.01 to 0.1 MOI, and step (b) can be cultured for 5 to 6 days after virus infection. , But is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (b)에서 배지는 DMEM, MEM, EMEM, RPMI-1640, F-12 및 DMEM/F12 배지로 이루어진 군으로부터 선택될 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the medium in step (b) may be selected from the group consisting of DMEM, MEM, EMEM, RPMI-1640, F-12, and DMEM/F12 medium, but is not limited thereto. .

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 단계 (c)에서의 바이러스는, 배양 중 또는 배양 완료 후 (i) 단계 (b)의 배지를 원심분리하여 수득한 상층액 및 (ii) 상기 배지의 원심분리 후 생성된 펠렛에 단계 (b)에서 수득한 배양물에 남아 있는 감염된 세포를 혼합한 후 혼합물 내 세포를 파쇄한 다음 원심분리하여 수득한 상층액으로부터 분리될 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the virus in the step (c) is a supernatant obtained by centrifuging the medium of (i) step (b) during or after the culturing, and (ii) the medium After centrifugation, the resulting pellet may be mixed with the infected cells remaining in the culture obtained in step (b), crushed the cells in the mixture, and then separated from the supernatant obtained by centrifugation, but is not limited thereto. .

본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 세포 파쇄는 초음파 처리(sonication)를 실시하여 이루어질 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In another embodiment of the present invention, the cell disruption may be performed by performing sonication, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 의하면, 상기 단계 (c)는, 단계 (b)의 배양물 내 세포를 파쇄하는 단계; 및 상기 세포 파쇄 결과물을 CsCl 경사원심분리(gradient centrifuge)하는 단계를 포함할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.According to another embodiment of the present invention, the step (c) comprises the steps of crushing the cells in the culture of step (b); And performing CsCl gradient centrifugation of the cell disruption result, but is not limited thereto.

본 발명의 또 다른 구현예에 의하면, 상기 CsCl 경사원심분리는 2회 이상 수행될 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.According to another embodiment of the present invention, the CsCl oblique centrifugation may be performed two or more times, but is not limited thereto.

본 발명의 바이러스 생산방법은 BHK-21 세포를 이용하는 세포 공장 시스템(cell factory system)을 사용하여 대량생산이 가능하고, 배지뿐만 아니라 세포 안에 존재하는 잔여 바이러스까지 회수함에 따라 생산수율이 높다. 본 발명은 효과적으로 대량의 바이러스를 생산할 수 있는 최적의 조건을 확립하였고, 다양한 종류의 바이러스 생산에 적용될 수 있으므로, 바이러스 의약품 생산 등 관련 의약 분야에 유용하게 이용될 수 있을 것으로 기대된다.The virus production method of the present invention can be mass-produced using a cell factory system using BHK-21 cells, and the production yield is high as not only the medium but also the residual virus present in the cells is recovered. Since the present invention has established the optimal conditions for effectively producing a large amount of virus, and can be applied to the production of various types of viruses, it is expected that it can be usefully used in related pharmaceutical fields such as viral drug production.

도 1a는 BHK-21 세포를 다양한 MOI(0.01, 0.1, 1, 10, 30, 100 MOI)로 리오바이러스에 감염시킨 후 3일 또는 5일간 배양한 다음, 배양된 배지를 모아 원심분리하여 수득한 상층액에 존재하는 리오바이러스의 생산량(TCID50) 및 생산수율을 보여주는 도이다(Sup 단독).
도 1b는 BHK-21 세포를 다양한 MOI(0.01, 0.1, 1, 10, 30, 100 MOI)로 리오바이러스에 감염시킨 후 3일 또는 5일간 배양한 다음, 배양된 배지를 모아 원심분리하여 수득한 pellet 및 감염된 세포에 존재하는 리오바이러스의 생산량(TCID50) 및 생산수율을 보여주는 도이다(Pellet 단독).
도 1c는 Sup 단독과 Pellet 단독에 존재하는 리오바이러스 생산량의 합(TCID50) 및 생산수율을 보여주는 도이다(Sup+Pellet).
도 2a는 BHK-21 세포를 다양한 MOI(0.0001, 0.001, 0.01, 0.1, 1, 10 MOI)로 리오바이러스에 감염시킨 후 1 내지 10일간 배양하여 생산된 Sup + Pellet에 존재하는 리오바이러스의 배양일별 생산량(TCID50)을 보여주는 도이다.
도 2b는 BHK-21 세포를 다양한 MOI(0.0001, 0.001, 0.01, 0.1, 1, 10 MOI)로 리오바이러스에 감염시킨 후 1 내지 10일간 배양하여 생산된 Sup + Pellet에 존재하는 리오바이러스의 배양일별 생산수율을 보여주는 도이다.
1A shows BHK-21 cells were infected with reovirus at various MOIs (0.01, 0.1, 1, 10, 30, 100 MOI) and then cultured for 3 or 5 days, and then collected and centrifuged to collect the cultured medium. It is a diagram showing the production amount (TCID 50 ) and production yield of the reovirus present in the supernatant (Sup alone).
1b is obtained by incubating BHK-21 cells with reovirus at various MOIs (0.01, 0.1, 1, 10, 30, 100 MOI) for 3 or 5 days, and then collecting and centrifuging the cultured medium. It is a diagram showing the production amount (TCID 50 ) and production yield of the reovirus present in the pellet and infected cells (Pellet alone).
Figure 1c is a diagram showing the sum of the amount of reovirus production (TCID 50 ) and production yield present in Sup alone and Pellet alone (Sup+Pellet).
Figure 2a shows BHK-21 cells in various MOIs (0.0001, 0.001, 0.01, 0.1, 1, 10 MOI) after infection with the reovirus and cultured for 1 to 10 days, and the culture of the reovirus present in Sup + Pellet by day It is a diagram showing the production volume (TCID 50 ).
Figure 2b shows BHK-21 cells in various MOIs (0.0001, 0.001, 0.01, 0.1, 1, 10 MOI) after infection with the reovirus and cultured for 1 to 10 days, and the reovirus present in Sup + Pellet produced by culture day It is a diagram showing the production yield.

본 발명은 하기의 단계를 포함하는 바이러스 생산방법을 제공한다:The present invention provides a method for producing a virus comprising the following steps:

(a) BHK(Baby Hamster Kidney)-21 세포를 0.0001 내지 0.5 MOI(multiplicity of infection)로 바이러스와 접촉시켜 감염된 BHK-21 세포를 생성하는 단계;(a) contacting BHK (Baby Hamster Kidney)-21 cells with a virus at 0.0001 to 0.5 MOI (multiplicity of infection) to generate infected BHK-21 cells;

(b) 상기 단계 (a)에서 감염된 BHK-21 세포를 배지에서 배양하는 단계; 및(b) culturing the BHK-21 cells infected in step (a) in a medium; And

(c) 상기 단계 (b)의 배양물로부터 바이러스를 분리하는 단계.(c) separating the virus from the culture of step (b).

또한, 본 발명은 상기 바이러스 생산방법에 의하여 생산된 바이러스를 제공한다.In addition, the present invention provides a virus produced by the virus production method.

구체적으로, 본 발명자들은 실시예를 통하여, BHK-21 세포를 이용하여 바이러스를 생산하는 경우 분리장소에 따른 바이러스 생산성을 비교 평가하였고(실시예 1 참조), 실시예 1의 결과를 바탕으로 추가적인 실험을 통하여 최적의 바이러스 생산 조건(바이러스 MOI, 감염일수)을 확립하였다(실시예 2 참조).Specifically, the present inventors compared and evaluated the virus productivity according to the isolation location in the case of producing a virus using BHK-21 cells through Examples (see Example 1), and additional experiments based on the results of Example 1. The optimal virus production conditions (virus MOI, number of days of infection) were established through (see Example 2).

본 명세서에서 사용된 용어, “BHK-21 세포”에서 BHK란 베이비 햄스터 키드니(Baby Hamster Kidney)의 약자로, BHK 세포는 원래 햄스터 세포의 폴리오마 변환(polyoma transformation)에 의해 분리되었으며, 백신에 대한 바이러스 전파 및 바이러스 매개된 발현을 위한 기질로서 사용될 수 있다. 또한, BHK 세포는 다양한 재조합 단백질의 안정된 발현을 위한 숙주 세포주로서 유용하다. BHK-21(BHK Strain 21) 세포주는 IA Macpherson과 MGP Stoker에 의해 1961년 3월에 5마리의 unsexed, 1일된 햄스터의 아기 햄스터 신장으로부터 유래되었다. 상기 햄스터는 BHK-21 세포를 생성하는데 사용되었으며, 일반적으로 시리아 황금 햄스터(Mesocricetus auratus)로 알려져 있다.In the term "BHK-21 cells" as used herein , BHK stands for B aby H amster K idney, and BHK cells were originally isolated by polyoma transformation of hamster cells. , Can be used as a substrate for viral transmission and viral mediated expression for vaccines. In addition, BHK cells are useful as host cell lines for the stable expression of various recombinant proteins. The BHK-21 (BHK Strain 21) cell line was derived from baby hamster kidneys of five unsexed, 1-day-old hamsters in March 1961 by IA Macpherson and MGP Stoker. The hamster was used to generate BHK-21 cells, and is generally known as a Syrian golden hamster (Mesocricetus auratus).

본 명세서에서 사용된 용어, “바이러스”는 상기 BHK-21 세포를 감염시켜 세포 내에서 복제할 수 있는 바이러스를 의미하며, 특정한 바이러스로 한정되는 것은 아니다.As used herein, the term “virus” refers to a virus capable of infecting the BHK-21 cells and replicating within the cells, and is not limited to a specific virus.

본 발명에 있어서, 상기 바이러스는 포유동물 리오바이러스일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In the present invention, the virus may be a mammalian reovirus, but is not limited thereto.

본 명세서에서 사용된 용어, “리오바이러스”는 이중가닥의 세그먼트화된 RNA 게놈을 가지는 바이러스로서, 리오바이러스 과(Reoviridae)로 분류되는 임의의 바이러스를 의미한다. 상기 리오바이러스의 비리온(virion)은 직경이 60~80 nm이며, 2개의 동심성 캡시드 껍질을 보유하고 있다. 이 게놈은 10~12개의 불연속의 세그먼트(segment)인 이중가닥 RNA로 구성되고, 16~27 kbp의 총 게놈 사이즈를 가지며, 각각의 RNA 세그먼트는 크기가 다르다.As used herein, the term “reovirus” refers to a virus having a double-stranded segmented RNA genome, and refers to any virus classified as Reoviridae. The virion of the reovirus has a diameter of 60 to 80 nm and has two concentric capsid shells. This genome is composed of 10-12 discrete segments, double-stranded RNA, and has a total genome size of 16-27 kbp, and each RNA segment has a different size.

본 발명에 있어서, 상기 리오바이러스는 자연 발생적(naturally occurring)리오바이러스뿐만 아니라, 변형되거나 또는 재조합체인 리오바이러스도 포함한다. 상기 리오바이러스는 자연으로부터 분리될 수 있고, 인간에 의해 인위적인 변경이 행해지지 않은 경우에 “자연 발생적”이라고 한다. 예를 들어, 상기 리오바이러스는 “필드 공급원(field source)”, 즉 이 리오바이러스에 감염된 사람으로부터 유래할 수 있다.In the present invention, the reovirus includes not only a naturally occurring reovirus, but also a modified or recombinant reovirus. The reovirus can be isolated from nature and is said to be "naturally occurring" when no artificial alteration has been made by humans. For example, the reovirus can be from a “field source”, ie from a person infected with this reovirus.

상기 리오바이러스는 변형될 수 있지만, 활성화된 ras 경로를 가지는 포유동물 세포를 용해적(lytically)으로 감염시킬 수 있다. 또한, 상기 리오바이러스는 증식하는 세포에 투여하기 전에 화학적 또는 생화학적으로(예를 들면, 키모트립신 또는 트립신과 같은 프로테아제를 이용하여 처리함으로써) 전처리 될 수 있다. 프로테아제를 이용하는 전처리에 의해 바이러스의 외막 또는 캡시드가 제거되어 상기 바이러스의 감염성을 증대시킬 수 있다. 상기 리오바이러스는 리포좀 또는 마이셀로 피복될 수 있으며, 예를 들어, 새로운 전염성 서브 바이러스 입자를 생성하기 위하여 마이셀 형성 농도의 알킬 황산 세제(alkyl sulfate detergent)의 존재 하에서 비리온을 키모트립신으로 처리할 수 있다.The reovirus can be modified, but lytically infect mammalian cells with an activated ras pathway. In addition, the reovirus may be pretreated chemically or biochemically (eg, by treatment with a protease such as chymotrypsin or trypsin) before administration to proliferating cells. By pretreatment using a protease, the outer membrane or capsid of the virus can be removed, thereby increasing the infectivity of the virus. The reovirus may be coated with liposomes or micelles, and for example, virion may be treated with chymotrypsin in the presence of an alkyl sulfate detergent having a micelle-forming concentration to generate new infectious subviral particles. have.

본 발명에 있어서, 상기 포유동물 리오바이러스는 인간 리오바이러스일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In the present invention, the mammalian reovirus may be a human reovirus, but is not limited thereto.

인간 리오바이러스는 다음과 같이 3개의 혈청형으로 구성될 수 있다: 1형(Lang 주 또는 T1L), 2형(Jones 주, T2J) 및 3형(Dearing 주, T3D 또는 Abney 주, T3A). 상기 3종의 혈청형은 중화반응 및 혈구 응집소 저해 어세이(assay)에 기반하여 용이하게 동정할 수 있다.Human reovirus can be composed of three serotypes: type 1 (Lang strain or T1L), type 2 (Jones strain, T2J) and type 3 (Dearing strain, T3D or Abney strain, T3A). The three serotypes can be easily identified based on a neutralization reaction and an assay for inhibiting hemagglutination.

본 발명에 있어서, 상기 인간 리오바이러스는 혈청형 3의 리오바이러스일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In the present invention, the human reovirus may be a serotype 3 reovirus, but is not limited thereto.

본 발명에 있어서, 상기 인간 리오바이러스는 리오바이러스 혈청형 3 Dearing 주(Reovirus type 3 Dearing, T3D)일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In the present invention, the human reovirus may be a reovirus serotype 3 Dearing (Reovirus type 3 Dearing, T3D), but is not limited thereto.

본 명세서에서 사용된 용어, “감염된 BHK-21 세포”는 BHK-21 세포로 바이러스가 침입하여 이후 세포 내에서 바이러스가 복제되는 상태를 의미한다.As used herein, the term "infected BHK-21 cells" refers to a state in which the virus invades into BHK-21 cells and then the virus is replicated within the cell.

본 명세서에서 사용된 용어, “MOI”는 감염다중도(multiplicity of infection)의 약자로서, 바이러스를 접종시킨 세포수에 대한 접종 바이러스양의 비율(접종 바이러스양/세포수)로, 감염될 때 세포 1개당 몇 개의 감염성 바이러스를 얻을 수 있는가를 나타내는 것이다. 실제로는 흡착되지 않은 상태로 접종액 중에 남기거나, 흡착이 되더라도 침입하지 않는 바이러스 입자가 많이 남기 때문에 MOI는 그대로 세포 내에 침입한 바이러스 입자수를 나타내는 것은 아니다.As used herein, the term “MOI” stands for multiplicity of infection, and is the ratio of the amount of inoculated virus to the number of cells inoculated with the virus (the amount of inoculated virus/number of cells). It indicates how many infectious viruses can be obtained per one. In practice, the MOI does not indicate the number of virus particles that have invaded into the cell as it is, because a lot of virus particles that do not invade remain in the inoculum without being adsorbed or even if adsorbed.

본 발명에 있어서, 상기 단계 (a)는 0.001 내지 0.5 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시킬 수 있다. 예를 들어, 상기 단계 (a)는 0.001 내지 0.4, 0.001 내지 0.3, 0.001 내지 0.2 또는 0.001 내지 0.1 MOI; 0.002 내지 0.5, 0.002 내지 0.4, 0.002 내지 0.3, 0.002 내지 0.2 또는 0.002 내지 0.1 MOI; 0.003 내지 0.5, 0.003 내지 0.4, 0.003 내지 0.3, 0.003 내지 0.2 또는 0.003 내지 0.1 MOI; 또는 0.004 내지 0.5, 0.004 내지 0.4, 0.004 내지 0.3, 0.004 내지 0.2 또는 0.004 내지 0.1 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시킬 수 있다.In the present invention, the step (a) may infect BHK-21 cells with a virus of 0.001 to 0.5 MOI. For example, the step (a) is 0.001 to 0.4, 0.001 to 0.3, 0.001 to 0.2 or 0.001 to 0.1 MOI; 0.002 to 0.5, 0.002 to 0.4, 0.002 to 0.3, 0.002 to 0.2 or 0.002 to 0.1 MOI; 0.003 to 0.5, 0.003 to 0.4, 0.003 to 0.3, 0.003 to 0.2 or 0.003 to 0.1 MOI; Alternatively, BHK-21 cells can be infected with a virus of 0.004 to 0.5, 0.004 to 0.4, 0.004 to 0.3, 0.004 to 0.2, or 0.004 to 0.1 MOI.

본 발명에 있어서, 상기 단계 (a)는 0.005 내지 0.5 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시킬 수 있다.In the present invention, the step (a) may infect BHK-21 cells with a virus of 0.005 to 0.5 MOI.

본 발명에 있어서, 상기 단계 (a)는 0.005 내지 0.1 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시킬 수 있다.In the present invention, the step (a) may infect BHK-21 cells with a virus of 0.005 to 0.1 MOI.

본 발명에 있어서, 상기 단계 (a)는 0.01 내지 0.5 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시킬 수 있다.In the present invention, the step (a) may infect BHK-21 cells with a virus of 0.01 to 0.5 MOI.

본 발명에 있어서, 상기 단계 (a)는 0.01 내지 0.1 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시킬 수 있다.In the present invention, the step (a) may infect BHK-21 cells with a virus of 0.01 to 0.1 MOI.

예를 들어, 상기 단계 (a)는 0.005 내지 0.4, 0.005 내지 0.3, 0.005 내지 0.2 또는 0.005 내지 0.1; 0.006 내지 0.5, 0.006 내지 0.4, 0.006 내지 0.3, 0.006 내지 0.2 또는 0.006 내지 0.1; 0.007 내지 0.5, 0.007 내지 0.4, 0.007 내지 0.3, 0.007 내지 0.2 또는 0.007 내지 0.1; 0.008 내지 0.5, 0.008 내지 0.4, 0.008 내지 0.3, 0.008 내지 0.2 또는 0.008 내지 0.1; 0.009 내지 0.5, 0.009 내지 0.4, 0.009 내지 0.3, 0.009 내지 0.2 또는 0.009 내지 0.1; 또는 0.01 내지 0.5, 0.01 내지 0.4, 0.01 내지 0.3, 0.01 내지 0.2 또는 0.01 내지 0.1 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시킬 수 있다.For example, the step (a) is 0.005 to 0.4, 0.005 to 0.3, 0.005 to 0.2 or 0.005 to 0.1; 0.006 to 0.5, 0.006 to 0.4, 0.006 to 0.3, 0.006 to 0.2 or 0.006 to 0.1; 0.007 to 0.5, 0.007 to 0.4, 0.007 to 0.3, 0.007 to 0.2 or 0.007 to 0.1; 0.008 to 0.5, 0.008 to 0.4, 0.008 to 0.3, 0.008 to 0.2 or 0.008 to 0.1; 0.009 to 0.5, 0.009 to 0.4, 0.009 to 0.3, 0.009 to 0.2 or 0.009 to 0.1; Alternatively, BHK-21 cells can be infected with a virus of 0.01 to 0.5, 0.01 to 0.4, 0.01 to 0.3, 0.01 to 0.2, or 0.01 to 0.1 MOI.

본 명세서에서 사용된 용어, “배양”은 바이러스에 감염된 세포를 적당히 인공적으로 조절한 환경 조건에서 생육시키면서 바이러스를 증식시키기 위하여 수행하는 모든 행위를 의미한다.As used herein, the term “culture” refers to any action performed to propagate a virus while growing a virus-infected cell in an appropriately artificially controlled environmental condition.

본 발명에서 세포의 배양은 세포 공장 시스템(cell factory system)을 이용할 수 있다. 상기 방법에 의하면 바이러스의 생산시 스케일 업(scale up)하여 대량생산이 가능하다는 장점이 있다.In the present invention, the cell culture may be performed using a cell factory system. According to the above method, there is an advantage that mass production is possible by scaling up the virus during production.

본 발명에서는 당해 분야에서 바이러스 증식 또는 생산을 위하여 세포배양에 통상적으로 사용되는 배지 또는 배양액을 모두 사용할 수 있다.In the present invention, any medium or culture medium commonly used for cell culture may be used for viral growth or production in this field.

본 발명에 있어서, 상기 단계 (b)에서 배지는 DMEM, MEM, EMEM, RPMI-1640, F-12 및 DMEM/F12 배지로 이루어진 군으로부터 선택된 배지일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 예를 들어, 본 발명은 상기 단계 (b)에서 DMEM/F12 배지를 사용할 수 있다.In the present invention, the medium in step (b) may be a medium selected from the group consisting of DMEM, MEM, EMEM, RPMI-1640, F-12, and DMEM/F12 medium, but is not limited thereto. For example, the present invention may use the DMEM/F12 medium in step (b).

본 발명에 있어서, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 1일 내지 10일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 예를 들어, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 1일 내지 9일, 1일 내지 8일, 1일 내지 7일, 1일 내지 6일 또는 1일 내지 5일; 2일 내지 10일, 2일 내지 9일, 2일 내지 8일, 2일 내지 7일, 2일 내지 6일 또는 2일 내지 5일; 3일 내지 10일, 3일 내지 9일, 3일 내지 8일, 3일 내지 7일, 3일 내지 6일 또는 3일 내지 5일; 4일 내지 10일, 4일 내지 9일, 4일 내지 8일, 4일 내지 7일, 4일 내지 6일 또는 4일 내지 5일; 5일 내지 10일, 5일 내지 9일, 5일 내지 8일, 5일 내지 7일 또는 5일 내지 6일; 또는 6일 내지 10일, 6일 내지 9일, 6일 내지 8일 또는 6일 내지 7일 배양할 수 있다.In the present invention, the step (b) may be cultured for 1 to 10 days after virus infection, but is not limited thereto. For example, the step (b) may be 1 to 9, 1 to 8, 1 to 7, 1 to 6, or 1 to 5 days after virus infection; 2 to 10, 2 to 9, 2 to 8, 2 to 7, 2 to 6, or 2 to 5 days; 3 to 10, 3 to 9, 3 to 8, 3 to 7, 3 to 6 or 3 to 5 days; 4 to 10, 4 to 9, 4 to 8, 4 to 7, 4 to 6, or 4 to 5 days; 5 to 10, 5 to 9, 5 to 8, 5 to 7 or 5 to 6 days; Alternatively, it may be cultured for 6 to 10 days, 6 to 9 days, 6 to 8 days, or 6 to 7 days.

본 발명에 있어서, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 2일 내지 8일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In the present invention, the step (b) may be cultured for 2 to 8 days after virus infection, but is not limited thereto.

본 발명에 있어서, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 3일 내지 8일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In the present invention, the step (b) may be cultured for 3 to 8 days after virus infection, but is not limited thereto.

본 발명에 있어서, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 4일 내지 7일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In the present invention, the step (b) may be cultured for 4 to 7 days after virus infection, but is not limited thereto.

본 발명에 있어서, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 5일 내지 7일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In the present invention, the step (b) may be cultured for 5 to 7 days after virus infection, but is not limited thereto.

본 발명에 있어서, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 5일 내지 6일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In the present invention, the step (b) may be cultured for 5 to 6 days after virus infection, but is not limited thereto.

본 발명은 상기 단계 (a)에서는 상술한 수치범위로부터 선택된 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시키고, 상기 단계 (b)에서는 바이러스 감염 후 상술한 배양일 수로부터 선택된 배양일 동안 배양할 수 있다. 예를 들어, 본 발명은 하기와 같이 실시될 수 있다.In the present invention, in the step (a), the BHK-21 cells are infected with a virus having an MOI selected from the above numerical range, and in the step (b), the cells may be cultured for a culture day selected from the number of culture days described above after virus infection. . For example, the present invention can be practiced as follows.

본 발명에 있어서, 상기 단계 (a)는 0.001 내지 0.1 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시키고, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 4일 내지 7일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In the present invention, step (a) infects BHK-21 cells with a virus of 0.001 to 0.1 MOI, and step (b) may be cultured for 4 to 7 days after virus infection, but is limited thereto. no.

또한, 상기 단계 (a)는 0.001 내지 0.1 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시키고, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 5일 내지 6일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In addition, step (a) infects BHK-21 cells with a virus having an MOI of 0.001 to 0.1 MOI, and step (b) may be cultured for 5 to 6 days after virus infection, but is not limited thereto.

또한, 상기 단계 (a)는 0.01 내지 0.1 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시키고, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 4일 내지 7일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In addition, the step (a) infects BHK-21 cells with a virus of 0.01 to 0.1 MOI, and the step (b) may be cultured for 4 to 7 days after virus infection, but is not limited thereto.

또한, 상기 단계 (a)는 0.01 내지 0.1 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시키고, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 5일 내지 6일 동안 배양할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In addition, the step (a) infects BHK-21 cells with a virus of 0.01 to 0.1 MOI, and the step (b) may be cultured for 5 to 6 days after virus infection, but is not limited thereto.

본 발명의 단계 (c)에서 배양물로부터 바이러스를 분리하는 방법은 바이러스를 분리 정제할 수 있는 당해분야에 알려진 방법을 통하여 제한 없이 사용할 수 있다.The method of separating the virus from the culture in step (c) of the present invention may be used without limitation through a method known in the art capable of separating and purifying the virus.

본 발명에서 바이러스의 분리는, 배양 중간 중간 분리할 수도 있고, 목적하는 배양일수가 완료된 이후에 한 번에 분리할 수도 있다.In the present invention, the virus may be separated in the middle of culture, or may be separated at a time after the desired number of culture days is completed.

본 발명에 있어서, 상기 단계 (c)에서의 바이러스는, 배양 중 또는 배양 완료 후 (i) 단계 (b)의 배지를 원심분리하여 수득한 상층액 및 (ii) 상기 배지의 원심분리 후 생성된 펠렛에 단계 (b)에서 수득한 배양물에 남아 있는 감염된 세포를 혼합한 후 혼합물 내 세포를 파쇄한 다음 원심분리하여 수득한 상층액으로부터 분리될 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In the present invention, the virus in step (c) is a supernatant obtained by centrifuging the medium of step (b) during or after (i) culturing, and (ii) generated after centrifugation of the medium. After mixing the infected cells remaining in the culture obtained in step (b) to the pellet, the cells in the mixture may be crushed and then separated from the supernatant obtained by centrifugation, but is not limited thereto.

본 발명에 있어서, 상기 단계 (c)에서의 바이러스 분리는, 단계 (b)의 배양물 내 세포를 파쇄하는 단계; 및 상기 세포 파쇄 결과물을 CsCl 경사원심분리(gradient centrifuge)하는 단계를 포함할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In the present invention, the virus isolation in step (c) comprises the steps of disrupting the cells in the culture of step (b); And performing CsCl gradient centrifugation of the cell disruption result, but is not limited thereto.

예를 들어, 상기 단계 (c)에서의 바이러스 분리는, 배양 중 또는 배양 완료 후, 단계 (b)의 배지를 원심분리하여 수득한 상층액((i) 상층액) 및 상기 배지의 원심분리 후 생성된 펠렛에 단계 (b)에서 수득한 배양물에 남아 있는 감염된 세포를 혼합한 후 혼합물 내 세포를 파쇄한 다음 원심분리하여 수득한 상층액((ii) 상층액)을 얻는 단계; 및 상기 (i) 및 (ii) 상층액을 CsCl 경사원심분리하는 단계를 포함할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.For example, the virus separation in step (c) is during or after the culture is completed, the supernatant obtained by centrifuging the medium of step (b) ((i) supernatant) and after centrifugation of the medium Obtaining a supernatant ((ii) supernatant) obtained by mixing the resulting pellet with the infected cells remaining in the culture obtained in step (b), crushing the cells in the mixture, and then centrifuging; And (i) and (ii) decanting the supernatant with CsCl, but is not limited thereto.

본 발명에 있어서, 상기 세포 파쇄는 초음파 처리(sonication)를 실시하여 이루어질 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 상기 초음파 처리는 전통적인 세포 동결-융해(freeze-thawing) 방식 또는 계면활성제(detergent) 방식이 아닌 초음파처리로 세포를 깨어 세포를 버리지 않고 세포 안에 존재하는 잔여의 바이러스까지 회수하므로 높은 바이러스 수율을 가진다.In the present invention, the cell disruption may be performed by performing sonication, but is not limited thereto. The sonication treatment is not a conventional cell freeze-thawing method or a surfactant (detergent) method, but the sonication treatment, which wakes up the cells and recovers the residual virus present in the cells without discarding the cells, and thus has a high virus yield.

본 발명에 있어서, 상기 CsCl 경사원심분리는 2회 이상 수행할 수 있다. 2회 이상의 CsCl 경사원심분리를 통하여 더욱 순도 높은 바이러스를 얻을 수 있다.In the present invention, the CsCl gradient centrifugation may be performed two or more times. Higher purity virus can be obtained through two or more decanter centrifugation of CsCl.

이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 바람직한 실시예를 제시한다. 그러나 하기의 실시예는 본 발명을 보다 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐, 하기 실시예에 의해 본 발명의 내용이 한정되는 것은 아니다.Hereinafter, a preferred embodiment is presented to aid the understanding of the present invention. However, the following examples are provided for easier understanding of the present invention, and the contents of the present invention are not limited by the following examples.

[실시예][Example]

실시예 1. 분리 장소(pellet vs sup)에 따른 리오바이러스 생산성 비교Example 1. Reovirus productivity comparison according to the separation site (pellet vs sup)

BHK(Baby Hamster Kidney)-21 세포(1 x 106 cells/dish)에 0.01, 0.1, 1, 10, 30 및 100 MOI(multiplicity of infection, PFU 기준)의 리오바이러스(Reovirus type 3 Dearing)를 감염시킨 후 CPE(Cytopathic effect) 80% 이상 관찰되는 시점에서 세포가 배양된 배지(DMEM:F-12, Ham's nutrient mixture F-12 and Dulbecco's modified Eagle's essential medium, ThermoFisher)를 각각 15 ml 원심분리용 보틀(centrifuge bottle)에 동량으로 모아 원심분리(3,270±20 g, 10±0.5분)하였다. 원심분리 후 세포 펠렛(cell pellet)을 제외한 상층액만 분리하여 50 ml 병에 모았다(Sup, 약 8.5 ml).BHK (Baby Hamster Kidney)-21 cells (1 x 10 6 cells/dish) are infected with Reovirus type 3 Dearing of 0.01, 0.1, 1, 10, 30 and 100 MOI (multiplicity of infection, PFU standard) CPE (Cytopathic effect) 80% or more at the time point where the cells were cultured (DMEM: F-12, Ham's nutrient mixture F-12 and Dulbecco's modified Eagle's essential medium, ThermoFisher) was added to each 15 ml bottle for centrifugation ( centrifuge bottle) and centrifuged (3,270±20 g, 10±0.5 minutes). After centrifugation, only the supernatant, excluding the cell pellet, was separated and collected in a 50 ml bottle (Sup, about 8.5 ml).

또한, 남아 있는 세포 펠렛에 새 배지 2 ml을 더한 후 초음파 처리(sonication, 3분)를 실시하여 세포를 깬 후에 15 ml 원심분리용 보틀(centrifuge bottle)에 동량으로 모아 원심분리(3,270±20 g, 10±0.5분)하여 다시 상층액만 모아 두었다(Pellet, 약 4.5 ml).In addition, after adding 2 ml of fresh medium to the remaining cell pellet, sonication (3 minutes) is performed to break the cells, collect the same amount in a 15 ml centrifuge bottle, and centrifuge (3,270±20 g). , 10±0.5 minutes) and the supernatant was collected again (Pellet, about 4.5 ml).

세슘클로라이드(Cesium chloride, CsCl) 경사(gradient)원심분리를 위하여 울트라 튜브(Ultra tube)에 Sol’A(1.40 CsCl, 62 g in 100 ml PBS) 9 ml, Sol’B(1.25 CsCl, 36 g in 100 ml PBS) 9 ml 및 상기 초음파처리를 3분간 수행한 시료 18 ml을 순서대로 넣고, 26,000 rpm에서 2시간 동안 1차 초원심분리(ultracentrifuge)를 수행하였다. 그 다음, 아래쪽 리오바이러스 밴드(band)만 남기고 석션(suction)하여 상층액을 제거한 후 리오바이러스만 취하여 새 50 ml 튜브로 옮긴 다음, 리오바이러스 부피와 동량의 PBS(phosphate buffered saline)를 가하여 잘 섞었다. 그리고, 울트라 튜브에 Sol’C(1.38 CsCl, 60 g in 100 ml PBS) 15 ml, 상기 리오바이러스에 PBS를 섞은 시료 20 ml을 순서대로 넣고, 26,000 rpm에서 2 시간 동안 2차 초원심분리를 수행한 뒤 리오바이러스 밴드만 남기고 석션하여 상층액을 제거한 후 리오바이러스만 취하여 새 50 ml 튜브로 옮겼다.For gradient centrifugation of cesium chloride (CsCl), 9 ml of Sol'A (1.40 CsCl, 62 g in 100 ml PBS), Sol'B (1.25 CsCl, 36 g in) in an Ultra tube. 100 ml PBS) 9 ml and 18 ml of a sample subjected to the sonication for 3 minutes were sequentially added, and a first ultracentrifuge was performed at 26,000 rpm for 2 hours. Then, after removing the supernatant by suction, leaving only the lower reovirus band, take only the reovirus and transfer it to a new 50 ml tube, and then add PBS (phosphate buffered saline) equal to the volume of the reovirus to mix well. I got it. Then, 15 ml of Sol'C (1.38 CsCl, 60 g in 100 ml PBS) and 20 ml of a sample mixed with PBS were sequentially added to an ultra tube, and a second ultracentrifugation was performed at 26,000 rpm for 2 hours. After removing the supernatant by suction, leaving only the reovirus band, only the reovirus was taken and transferred to a new 50 ml tube.

바이러스 투석을 위하여 상기 리오바이러스를 투석 튜빙(Dialysis tubing)에 넣고 클로져(closure)로 잘 봉한 후, 2 L PBS와 마그네틱 바(magnetic bar)가 들어있는 2.4 L 투석 리저버(Dialysis Reservoir)에 담아 투석을 수행하였으며, PBS는 총 3번 교환되었다(PBS는 최초 16 시간, 2번째부터는 3시간 간격으로 교환). 투석이 끝나면 4℃ 에서 보관하였다.For viral dialysis, the reovirus is put in a dialysis tubing and well sealed with a closure, and then dialysis is carried out by placing it in a 2.4 L dialysis reservoir containing 2 L PBS and a magnetic bar. It was performed, and PBS was exchanged three times in total (PBS was exchanged at intervals of 16 hours for the first time and 3 hours from the second time). When the dialysis was finished, it was stored at 4°C.

실험 결과, 도 1a 및 도 1b에 나타난 바와 같이, BHK-21 세포를 이용하여 리오바이러스를 생산할 때 Sup 단독 및 Pellet 단독으로부터 바이러스를 분리하는 경우 최적의 생산조건은 각각 30 MOI, 5일의 배양기간이었다. 또한, 도 1c에 나타난 바와 같이, Sup + Pellet으로부터 바이러스를 분리하는 경우에는 훨씬 낮은 MOI(10~100 MOI), 5일의 배양기간 일 때 가장 많은 양의 리오바이러스가 생산되었다. 이러한 결과는 Sup + Pellet으로부터 바이러스를 생산하는 것이 낮은 MOI에서 많은 양의 바이러스를 생산할 수 있어 경제성이 우수함을 보여준다.As a result of the experiment, as shown in FIGS. 1A and 1B, when the virus is isolated from Sup alone and Pellet alone when producing a reovirus using BHK-21 cells, the optimal production conditions are 30 MOI and 5 days incubation period, respectively. Was. In addition, as shown in Figure 1c, in the case of separating the virus from Sup + Pellet, a much lower MOI (10-100 MOI), the greatest amount of reovirus was produced when the culture period was 5 days. These results show that producing virus from Sup + Pellet can produce a large amount of virus at a low MOI, so it is excellent in economics.

실시예 2. 감염기간에 따른 리오바이러스 생산성 비교Example 2. Comparison of reovirus productivity according to infection period

BHK-21 세포(1 x 106 cells/dish)에 0.0001, 0.001, 0.01, 0.1, 1 및 10 MOI(PFU 기준)의 리오바이러스를 감염시킨 후 10일 동안 배양하는 과정에서 매일 배지(DMEM:F-12, Ham's nutrient mixture F-12 and Dulbecco's modified Eagle's essential medium, ThermoFisher)를 각각 15 ml 원심분리용 보틀(centrifuge bottle)에 동량으로 모아 원심분리(3,270±20 g, 10±0.5분) 하여 상층액만 모았다(Sup, 8 ml). 원심분리 후 남은 펠렛은, 감염된 세포와 합쳐서 초음파분쇄(sonication 10분)를 실시하고, 500 ml 원심분리용 보틀에 동량으로 모아 원심분리(3,270±20 g, 10±0.5분)하여 다시 상층액만 모아 두었다(Pellet, 약 4.5 ml). 이후 세슘클로라이드 경사원심분리 및 바이러스 투석은 실시예 1과 같이 실시하였다.BHK-21 cells (1 x 10 6 cells/dish) were infected with reovirus of 0.0001, 0.001, 0.01, 0.1, 1 and 10 MOI (based on PFU), and then cultured for 10 days. -12, Ham's nutrient mixture F-12 and Dulbecco's modified Eagle's essential medium, ThermoFisher) were collected in equal amounts in a 15 ml centrifuge bottle, and centrifuged (3,270±20 g, 10±0.5 minutes) for the supernatant. Only collected (Sup, 8 ml). After centrifugation, the remaining pellets are combined with the infected cells and subjected to sonication (sonication 10 minutes), collected in an equal amount in a 500 ml centrifuge bottle, and centrifuged (3,270 ± 20 g, 10 ± 0.5 minutes), and then only the supernatant. Collected (Pellet, about 4.5 ml). Thereafter, cesium chloride decanter centrifugation and virus dialysis were performed as in Example 1.

실험 결과, 본 발명은 기존의 바이러스 생산방법보다 개선되어 대량의 바이러스 복제가 가능하고 세포 내의 잔여 바이러스까지 회수할 수 있어 높은 수율을 가지는 등 효과적인 바이러스 생산방법임을 확인하였다. 구체적으로, 도 2a에 나타난 바와 같이, 1 x 106 BHK-21 세포가 생산할 수 있는 최대 리오바이러스의 양은 약 +1010 CID50/ml 수준이었으며, 4일(4 days post infection) 이상 배양할 때 0.001 MOI 이상 처리하면 거의 유사한 양의 리오바이러스가 생산되었으며, 8일 이상 배양하면 오히려 리오바이러스 타이터(titer)가 낮아지는 경향을 보였다. 또한, 리오바이러스를 고농도(1 혹은 10 MOI)로 처리하였을 때 초기(3일)까지는 리오바이러스의 생산량이 높았으나, 그 이후에는 낮은 MOI 처리군의 생산량보다 오히려 감소하는 경향을 보였다.As a result of the experiment, it was confirmed that the present invention is an effective virus production method, such as having a high yield since it is possible to replicate a large amount of virus and recover residual virus in cells by improving over the existing virus production method. Specifically, as shown in Fig. 2a, the maximum amount of reovirus that 1 x 10 6 BHK-21 cells could produce was about +10 10 CID 50 /ml, and when cultured for more than 4 days (4 days post infection) Treatment of more than 0.001 MOI produced almost similar amounts of reovirus, and when cultured for more than 8 days, the reovirus titer tended to decrease. In addition, when the reovirus was treated at a high concentration (1 or 10 MOI), the amount of reovirus production was high until the initial stage (3 days), but after that, it showed a tendency to decrease rather than that of the low MOI treatment group.

종합하면, 생산량(도 2a)과 생산율(도 2b)을 모두 고려하는 경우, 바이러스를 0.001-0.1 MOI로 처리하고, 5~6일 동안 배양하는 것이 효율적으로 바이러스를 대량으로 생산할 수 있으며, 특히 바이러스를 0.01~0.1 MOI로 처리하고, 5~6일 배양하는 경우 더욱 효율적으로 바이러스를 생산할 수 있다.Taken together, when both production (Fig. 2a) and production rate (Fig. 2b) are considered, it is possible to efficiently produce a large amount of virus by treating the virus at an MOI of 0.001-0.1 and culturing it for 5 to 6 days. Treatment with 0.01 to 0.1 MOI, and incubation for 5 to 6 days, the virus can be produced more efficiently.

전술한 본 발명의 설명은 예시를 위한 것이며, 본 발명이 속하는 기술분야의 통상의 지식을 가지는 자는 본 발명의 기술적 사상이나 필수적인 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 쉽게 변형이 가능하다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 그러므로 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적이 아닌 것으로 이해해야만 한다.The above description of the present invention is for illustrative purposes only, and those of ordinary skill in the art to which the present invention pertains will be able to understand that other specific forms can be easily modified without changing the technical spirit or essential features of the present invention. will be. Therefore, it should be understood that the embodiments described above are illustrative and non-limiting in all respects.

Claims (23)

하기의 단계를 포함하는 바이러스 생산방법:
(a) BHK(Baby Hamster Kidney)-21 세포를 0.005 내지 0.1 MOI(multiplicity of infection)로 바이러스와 접촉시켜 감염된 BHK-21 세포를 생성하는 단계;
(b) 상기 단계 (a)에서 감염된 BHK-21 세포를 배지에서 배양하는 단계; 및
(c) 상기 단계 (b)의 배양물로부터 바이러스를 분리하는 단계,
상기 단계 (c)에서의 바이러스는, 배양 중 또는 배양 완료 후 (i) 단계 (b)의 배지를 원심분리하여 수득한 상층액 및 (ii) 상기 배지의 원심분리 후 생성된 펠렛에 단계 (b)에서 수득한 배양물에 남아 있는 감염된 세포를 혼합한 후 혼합물 내 세포를 파쇄한 다음 원심분리하여 수득한 상층액으로부터 분리되는 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
Virus production method comprising the following steps:
(a) contacting BHK (Baby Hamster Kidney)-21 cells with a virus at 0.005 to 0.1 MOI (multiplicity of infection) to generate infected BHK-21 cells;
(b) culturing the BHK-21 cells infected in step (a) in a medium; And
(c) separating the virus from the culture of step (b),
The virus in step (c) is added to a supernatant obtained by centrifuging the medium of step (b) during or after the culturing (i) and (ii) a pellet produced after centrifugation of the medium in step (b). ) After mixing the infected cells remaining in the culture obtained in), crushing the cells in the mixture, and then separating the cells from the supernatant obtained by centrifugation.
제1항에 있어서,
상기 단계 (a)의 바이러스는 포유동물 리오바이러스인 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 1,
The virus of the step (a) is characterized in that the mammalian reovirus, virus production method.
제2항에 있어서,
상기 포유동물 리오바이러스는 인간 리오바이러스인 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 2,
The mammalian reovirus is a human reovirus, characterized in that, virus production method.
제3항에 있어서,
상기 인간 리오바이러스는 혈청형 3의 리오바이러스인 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 3,
The human reovirus is characterized in that the reovirus of serotype 3, virus production method.
제4항에 있어서,
상기 혈청형 3의 리오바이러스는 Dearing 주(reovirus type 3 Dearing)인 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 4,
The reovirus of the serotype 3 is characterized in that Dearing main (reovirus type 3 Dearing), virus production method.
삭제delete 삭제delete 삭제delete 삭제delete 제1항에 있어서,
상기 단계 (a)는 0.01 내지 0.1 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시키는 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 1,
The step (a) is characterized in that infecting BHK-21 cells with a virus of 0.01 to 0.1 MOI, virus production method.
제1항에 있어서,
상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 1일 내지 10일 동안 배양하는 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 1,
The step (b) is characterized in that the culture for 1 to 10 days after the virus infection, virus production method.
제1항에 있어서,
상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 2일 내지 8일 동안 배양하는 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 1,
The step (b) is characterized in that the culture for 2 to 8 days after the virus infection, virus production method.
제1항에 있어서,
상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 3일 내지 8일 동안 배양하는 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 1,
The step (b) is characterized in that the culture for 3 to 8 days after the virus infection, virus production method.
제1항에 있어서,
상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 4일 내지 7일 동안 배양하는 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 1,
The step (b) is characterized in that the culture for 4 to 7 days after the virus infection, virus production method.
제1항에 있어서,
상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 5일 내지 7일 동안 배양하는 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 1,
The step (b) is characterized in that the culture for 5 to 7 days after the virus infection, virus production method.
제1항에 있어서,
상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 5일 내지 6일 동안 배양하는 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 1,
The step (b) is characterized in that the culture for 5 to 6 days after the virus infection, virus production method.
삭제delete 제1항에 있어서,
상기 단계 (a)는 0.01 내지 0.1 MOI의 바이러스로 BHK-21 세포를 감염시키고, 상기 단계 (b)는 바이러스 감염 후 5일 내지 6일 동안 배양하는 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 1,
The step (a) is infecting BHK-21 cells with a virus of 0.01 to 0.1 MOI, and the step (b) is a virus production method, characterized in that incubation for 5 to 6 days after virus infection.
제1항에 있어서,
상기 단계 (b)에서 배지는 DMEM, MEM, EMEM, RPMI-1640, F-12 및 DMEM/F12 배지로 이루어진 군으로부터 선택된 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 1,
In the step (b), the medium is selected from the group consisting of DMEM, MEM, EMEM, RPMI-1640, F-12, and DMEM/F12 medium.
삭제delete 제1항에 있어서,
상기 단계 (c)는, 단계 (b)의 배양물 내 세포를 파쇄하는 단계; 및 상기 세포 파쇄 결과물을 CsCl 경사원심분리(gradient centrifuge)하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 1,
The step (c), the step of disrupting the cells in the culture of step (b); And CsCl gradient centrifuge the cell disruption result.
제21항에 있어서,
상기 CsCl 경사원심분리는 2회 이상 수행하는 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 21,
The CsCl decanter centrifugation is characterized in that to perform two or more times, virus production method.
제21항에 있어서,
상기 세포 파쇄는 초음파 처리(sonication)를 실시하여 이루어지는 것을 특징으로 하는, 바이러스 생산방법.
The method of claim 21,
The cell disruption is characterized in that by performing ultrasonic treatment (sonication), virus production method.
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