KR102200041B1 - Composition for Nucleic Acid Purification and Extraction and Nucleic Acid Detection Kit and Method using the same - Google Patents
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Abstract
본 발명은 핵산 정제 및 추출용 조성물 및 이를 이용한 핵산 검출 키트 및 방법에 관한 것으로, 생물학적 시료에 포함된 불순물을 효과적으로 정제할 수 있고, 동시에 생물학적 시료에 포함된 감염균 등의 핵산의 증폭이 가능하므로, 간편하고 단순한 공정으로 생물학적 시료에 존재하는 감염균 등의 핵산의 검출에 유용하게 활용할 수 있다.The present invention relates to a nucleic acid purification and extraction composition and a nucleic acid detection kit and method using the same, since impurities contained in a biological sample can be effectively purified, and at the same time, nucleic acids such as infectious bacteria contained in a biological sample can be amplified, With a simple and simple process, it can be usefully used to detect nucleic acids such as infectious bacteria present in biological samples.
Description
본 발명은 핵산 정제 및 추출용 조성물 및 이를 이용한 핵산 검출 키트 및 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a nucleic acid purification and extraction composition and a nucleic acid detection kit and method using the same.
현재 감염균 분석에 이용되는 의료 시료는 대부분 전혈(whole blood)과 같은 혈액이다. 혈액은 감염균뿐만 아니라 백여가지의 건강 수치를 제공하는 중요한 시료이기도 하다. 혈액 시료는 혈구, 혈장 단백질 등 많은 요소들로 구성되어 있으며, 그 중에서 감염균은 약 백만분의 일, 혹은 십억분의 일 이하로 존재한다. 그렇기 때문에 미량의 타겟을 정확하게 검출하는 것에 한계가 있다. 핵산을 기반으로 한 분자 진단 방법은 민감도와 정확도면에서 뛰어나지만, 혈액에는 헤모글로빈, 락토페린, 면역글로불린과 같이 분자 진단의 후속 공정 즉 PCR을 방해하는 인자들이 있어 어려움이 있다. Currently, most medical samples used for the analysis of infectious bacteria are blood such as whole blood. Blood is an important sample that provides not only infectious bacteria, but also a hundred health values. Blood samples are composed of many elements such as blood cells and plasma proteins, and among them, infectious bacteria are present in less than about one millionth or one billionth. Therefore, there is a limit to accurately detecting a small amount of target. Nucleic acid-based molecular diagnosis methods are excellent in sensitivity and accuracy, but there are difficulties in the blood because there are factors that interfere with the subsequent process of molecular diagnosis, such as PCR, such as hemoglobin, lactoferrin, and immunoglobulin.
혈액에 존재하는 감염균을 검측하는 방법은 크게 두 가지로 나누어진다. 1) 혈액 내 감염균의 핵산을 추출하는 것, 2) 그 핵산을 증폭하여 확인하는 것이다. 먼저 혈액 내 감염균의 핵산을 추출하는 가장 보편적인 방법은 카오트로픽 염(chaotropic salt)을 사용하여 세포를 용해시키고, 단백질 및 불순물을 제거하는 것이다. 이 방법은 후속 공정에 영향을 미치지 않도록 정제된 핵산을 제공하나, 사용한 염을 제거하기 위한 워싱(washing) 과정이 필요하기 때문에 공정이 복잡하고 숙련된 전문가가 필요하다. 이후, 추출된 핵산을 중합효소에 의해 증폭하여 정성, 정량 분석을 진행하게 된다. There are two methods to detect infections in the blood. 1) Extracting nucleic acid from infectious bacteria in blood, and 2) Amplifying and confirming the nucleic acid. First, the most common method for extracting nucleic acids from infectious bacteria in the blood is to lyse cells and remove proteins and impurities using chaotropic salts. This method provides purified nucleic acids so as not to affect subsequent processes, but since a washing process is required to remove used salts, the process is complex and requires an experienced expert. Thereafter, the extracted nucleic acid is amplified by a polymerase to perform qualitative and quantitative analysis.
앞서 설명한 방법은 복잡하고 정교하게 다루어져야 하기 때문에 장소와 시간의 제약을 받는다. 그러나 혈액은 대부분의 의료 정보를 대변하는 가장 중요한 시료이기 때문에, 이를 해결하기 위한 소형화된 장비와 단순해진 공정의 개발로 많은 현장형 장비가 개발되고 있다. 그 중 다이렉트 버퍼(direct buffer)는 화학 물질을 이용하여 혈액 내 감염균의 핵산을 추출하고 불순물을 어느 정도 정제해 주는 시약이다. 다이렉트 버퍼는 보통 계면활성제(detergents)와 이온을 포함하는 시약으로 구성되며, 사용하기에 간단하지만 완벽하게 불순물을 제거하지 못하기 때문에 민감한 증폭 반응 환경을 요구하는 조건에서는(예를 들어, RNA 증폭 반응, 등온 증폭 반응 등) 핵산을 검출하기에 한계가 있다.The above-described method is limited by location and time because it must be handled in a complex and elaborate manner. However, since blood is the most important sample representing most medical information, many field-type equipment has been developed with the development of miniaturized equipment and simplified processes to solve this problem. Among them, the direct buffer is a reagent that extracts nucleic acids from infectious bacteria in the blood using chemical substances and purifies impurities to some extent. Direct buffers are usually composed of reagents containing surfactants and ions, and are simple to use, but cannot completely remove impurities, so under conditions that require a sensitive amplification reaction environment (e.g., RNA amplification reaction , Isothermal amplification reaction, etc.) There is a limit to detecting nucleic acids.
이에, 본 발명자는 간편하고 단순한 공정으로 생물학적 시료에서 감염균을 검출할 수 있는 방법을 발굴하기 위한 연구를 수행하여 본 발명을 완성하였다. Accordingly, the present inventor completed the present invention by carrying out a study to discover a method for detecting an infectious bacteria in a biological sample by a simple and simple process.
본 발명의 하나의 목적은 핵산 정제 및 추출용 조성물에 있어서, 상기 조성물은 수산화기(-OH)를 포함하는 염기성 화합물을 포함하고, 상기 정제는 가열 조건에서 이루어지는 것인 핵산 정제 및 추출용 조성물을 제공하는 것이다.One object of the present invention is to provide a composition for purifying and extracting nucleic acids, wherein the composition comprises a basic compound containing a hydroxyl group (-OH), and the purification is performed under heating conditions. Is to do.
본 발명의 다른 목적은 본 발명의 일 구체예에 따른 핵산 정제 및 추출용 조성물을 포함하는 핵산 검출용 키트를 제공하는 것이다.Another object of the present invention is to provide a kit for detecting nucleic acids comprising a composition for purifying and extracting nucleic acids according to an embodiment of the present invention.
본 발명의 또 다른 목적은 본 발명의 일 구체예에 따른 핵산 정제 및 추출용 조성물을 생물학적 시료와 혼합하는 단계; 생물학적 시료를 70℃에서 5 내지 10분 동안 가열하는 단계; 및 생물학적 시료에서 핵산을 검출하는 단계를 포함하는 핵산 검출 방법을 제공하는 것이다.Another object of the present invention is the step of mixing a composition for purifying and extracting nucleic acids according to an embodiment of the present invention with a biological sample; Heating the biological sample at 70° C. for 5 to 10 minutes; And it provides a nucleic acid detection method comprising the step of detecting the nucleic acid in the biological sample.
본 발명의 일 양상은 핵산 정제 및 추출용 조성물에 있어서, 상기 조성물은 수산화기(-OH)를 포함하는 염기성 화합물을 포함하고, 상기 정제는 가열 조건에서 이루어지는 것인 핵산 정제 및 추출용 조성물을 제공한다.One aspect of the present invention provides a composition for purifying and extracting nucleic acids, wherein the composition comprises a basic compound containing a hydroxyl group (-OH), and the purification is performed under heating conditions. .
본 발명의 조성물은 시료에 포함된 불순물 제거 및 감염균으로부터 핵산을 추출하는데 사용할 수 있으므로, 시료에 존재하는 감염균의 핵산 증폭 효율이 우수하여 감염균의 검출을 위하여 유용하게 활용할 수 있다.Since the composition of the present invention can be used to remove impurities contained in a sample and to extract nucleic acids from infectious bacteria, the efficiency of amplifying nucleic acids of infectious bacteria present in the sample is excellent, and thus can be usefully used for detection of infectious bacteria.
본 발명에서 사용되는 용어, "핵산 정제"는 증폭 대상 핵산 외에 시료(예를 들어, 전혈)에 포함되어 있는 불순물(예를 들어, 적혈구 및 백혈구 등)을 침전 등에 의하여 제거하는 것을 말한다.The term "nucleic acid purification" used in the present invention refers to removing impurities (eg, red blood cells and white blood cells) contained in a sample (eg, whole blood) in addition to the nucleic acid to be amplified by precipitation or the like.
본 발명에서 사용되는 용어, "핵산 추출"은 시료에 포함되어 있는 증폭 대상 핵산을 감염균 등으로부터 증폭이 용이하도록 분리하는 것을 말하며, 이는 세포의 용해, 및 단백질 등 불순물의 제거에 의한 것일 수 있다.The term "nucleic acid extraction" used in the present invention refers to separating a nucleic acid to be amplified contained in a sample from an infectious organism to facilitate amplification, which may be caused by lysis of cells and removal of impurities such as proteins.
본 발명에서 사용되는 용어, "다이렉트 버퍼(direct buffer)"는 시료(예를 들어, 전혈) 내 증폭 대상 핵산(예를 들어, 감염균의 RNA)을 추출하고 시료에 포함된 불순물을 정제하여, 별도의 워싱 단계 없이 핵산을 증폭하기 위해 사용할 수 있는 시약을 말한다.As used herein, the term "direct buffer" refers to a sample (eg, whole blood) by extracting a nucleic acid to be amplified (eg, RNA of an infectious bacteria) and purifying the impurities contained in the sample. It refers to a reagent that can be used to amplify nucleic acids without the washing step of
본 발명의 "수산화기(-OH)를 포함하는 염기성 화합물"은 무기 알칼리 수산화 화합물 또는 암모늄 수산화 화합물일 수 있다. 예를 들어, 칼륨(K), 나트륨(Na) 등의 알칼리 금속, 마그네슘(Mg), 칼슘(Ca) 등의 알칼리 토금속, 또는 암모늄(NH4+)과 형성된 수산화 화합물일 수 있으며, 바람직하게는 수산화나트륨(NaOH)일 수 있다.The "basic compound containing a hydroxyl group (-OH)" of the present invention may be an inorganic alkali hydroxide compound or an ammonium hydroxide compound. For example, it may be a hydroxide compound formed with alkali metals such as potassium (K) and sodium (Na), alkaline earth metals such as magnesium (Mg) and calcium (Ca), or ammonium (NH4 + ), preferably hydroxide It may be sodium (NaOH).
본 발명의 일 구체예에 따르면, 상기 조성물은 PEG(polyethylene glycol) 200, PEG 8000, 또는 PEG 200과 PEG 8000의 혼합물을 더 포함할 수 있다.According to an embodiment of the present invention, the composition may further include polyethylene glycol (PEG) 200,
본 발명의 일 구체예에 따른 핵산 정제 및 추출용 조성물은 PEG 200 및/또는 PEG 8000를 더 포함함으로써, 핵산의 증폭 효율을 더욱 향상시킬 수 있다.The composition for purifying and extracting nucleic acids according to an embodiment of the present invention further includes
본 발명의 일 구체예에 따르면, 본 발명의 일 구체예에 따르면, 상기 조성물은 0 내지 1.25부피%의 PEG 200; 0 내지 10부피%의 PEG 8000; 및 10 내지 80mM의 NaOH를 포함하는 것일 수 있다.According to an embodiment of the present invention, according to an embodiment of the present invention, the composition comprises 0 to 1.25% by volume of
0 내지 1.25부피%의 PEG 200; 0 내지 10부피%의 PEG 8000; 및 10 내지 80mM의 NaOH의 조성비를 갖는 다이렉트 버퍼의 핵산 회수율이 우수하며, 특히, 1.25부피%의 PEG 200; 10부피%의 PEG 8000; 및 50mM의 NaOH의 조성비를 갖는 다이렉트 버퍼의 핵산 회수율이 가장 우수하므로, 생물학적 시료로부터 감염균의 신속하고 간단한 검출을 위한 키트에 유용하게 활용할 수 있다.0 to 1.25 vol%
본 발명의 일 구체예에 따르면, 상기 핵산은 생물학적 시료에 포함된 것일 수 있다.According to an embodiment of the present invention, the nucleic acid may be included in a biological sample.
본 발명의 일 구체예에 따르면, 상기 생물학적 시료는 전혈(whole blood), 플라즈마 및 변으로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나인 것일 수 있다.According to an embodiment of the present invention, the biological sample may be any one selected from the group consisting of whole blood, plasma, and feces.
본 발명의 핵산 정제 및 추출용 조성물은 전혈 등 생물학적 시료에 포함된 불순물을 별도의 워싱 과정 없이 제거할 수 있으므로, 본 발명의 핵산 정제 및 추출용 조성물을 사용함으로써, 비전문가도 단순한 공정으로 생물학적 시료로부터 감염균을 검출할 수 있다.Since the nucleic acid purification and extraction composition of the present invention can remove impurities contained in a biological sample such as whole blood without a separate washing process, by using the nucleic acid purification and extraction composition of the present invention, even a non-expert can use a simple process from a biological sample. Infectious bacteria can be detected.
본 발명의 일 구체예에 따르면, 상기 가열은 40 내지 70℃에서 1 내지 10분 동안 이루어질 수 있다.According to an embodiment of the present invention, the heating may be performed at 40 to 70° C. for 1 to 10 minutes.
본 발명의 일 구체예에 따른 핵산 정제 및 추출용 조성물만을 사용하거나, 본 발명의 일 구체예에 따른 핵산 정제 및 추출용 조성물을 사용하지 않고 가열만을 한 경우에는 정제가 충분히 이루어지지 않으므로, 핵산의 증폭 효율이 감소할 수 있다. 반면, 생물학적 시료와 본 발명의 일 구체예에 따른 핵산 정제 및 추출용 조성물를 혼합한 후, 40 내지 70℃에서 1 내지 10분간 가열함으로써, 생물학적 시료에 포함된 불순물의 정제 효율을 현저히 증가시킬 수 있다. 1분 미만으로 가열할 경우, 불순물의 정제가 충분하지 않다. 한편, 10분 초과로 가열하더라도, 증폭 효율에 미치는 영향이 미미하므로 가열에 따른 효율이 낮다.When only the nucleic acid purification and extraction composition according to an embodiment of the present invention is used, or when only heating without using the nucleic acid purification and extraction composition according to an embodiment of the present invention, purification is not sufficiently performed, The amplification efficiency can be reduced. On the other hand, after mixing the biological sample with the composition for nucleic acid purification and extraction according to an embodiment of the present invention, by heating at 40 to 70°C for 1 to 10 minutes, the purification efficiency of impurities contained in the biological sample can be significantly increased. . If heated in less than 1 minute, purification of impurities is not sufficient. On the other hand, even if it is heated for more than 10 minutes, since the effect on the amplification efficiency is insignificant, the heating efficiency is low.
본 발명의 다른 양상은 본 발명의 일 구체예에 따른 핵산 정제 및 추출용 조성물을 포함하는 핵산 검출용 키트를 제공한다.Another aspect of the present invention provides a nucleic acid detection kit comprising a nucleic acid purification and extraction composition according to an embodiment of the present invention.
본 발명의 핵산 검출용 키트는 본 발명의 일 구체예에 따른 핵산 정제 및 추출용 조성물 외에, 당업계에서 핵산의 증폭반응에 일반적으로 사용하는 프라이머 세트 및 시약을 더 포함할 수 있다.The nucleic acid detection kit of the present invention may further include a primer set and reagents generally used in amplification reactions of nucleic acids in the art, in addition to the composition for purifying and extracting nucleic acids according to an embodiment of the present invention.
본 발명의 일 구체예에 따르면, 상기 키트는 비드-비팅부를 포함할 수 있다.According to an embodiment of the present invention, the kit may include a bead-beating part.
본 명세서에서 사용되는 용어, "비드-비팅"은 시료 중의 고체 물질을 물리적인 힘으로 파쇄하는 방법으로써, 비드가 포함된 시료 용액을 손으로 흔들거나 자동진동기를 이용하여 수행될 수 있으나, 자동진동기를 이용하여 수행되는 것이 바람직하다. 상기 "비드"의 소재는 제한이 없으나, 바람직하게는 마이크로 유리 비드일 수 있다.As used herein, the term "bead-beating" is a method of crushing a solid material in a sample with a physical force, and may be performed by shaking a sample solution containing beads by hand or using an automatic vibrator, but an automatic vibrator It is preferred that this is performed using. The material of the "bead" is not limited, but may preferably be a micro glass bead.
본 발명의 키트는 미세유체 칩의 형태로 제작될 수 있으며, 구체적으로, 미세유체 챔버 부분, 시료 준비 챔버 부분, 및 증폭 및 검출 챔버 부분의 세 부분으로 구성될 수 있다. 한편, 미세유체 챔버 부분은 시료가 채워지는 시료 입력 부분 및 처리된 시료와 다이렉트 버퍼가 시료 준비 챔버에서 증폭 및 검출 챔버로 옮겨지는 미세유체 채널로 구성될 수 있다. 시료 준비 챔버는 본 발명의 다이렉트 버퍼와 비드 및 마그네틱바를 포함하며, 비드-비팅이 수행되는 비드-비팅부에 해당한다. 증폭 및 검출 챔버 부분은 핵산 증폭에 사용되는 시약을 포함한다. The kit of the present invention may be manufactured in the form of a microfluidic chip, and specifically, may be composed of three parts: a microfluidic chamber part, a sample preparation chamber part, and an amplification and detection chamber part. Meanwhile, the microfluidic chamber portion may include a sample input portion filled with a sample and a microfluidic channel through which the processed sample and the direct buffer are transferred from the sample preparation chamber to the amplification and detection chamber. The sample preparation chamber includes a direct buffer of the present invention, a bead, and a magnetic bar, and corresponds to a bead-beating part in which bead-beating is performed. The amplification and detection chamber portion contains reagents used for nucleic acid amplification.
또한, 본 발명의 키트에 생물학적 시료를 넣어주면 기기의 모터부분이 작동해 비드의 회전이 이루어지고 이로 인해 핵산 추출공정이 진행될 수 있다, 이때, 다이렉트 버퍼와 시료가 혼합된 후, 키트의 히터가 작동하여 불순물 정제가 이루어지고, 증폭 및 검출 챔버 부분으로 시료가 이동된 후, 핵산의 증폭이 이루어질 수 있다. 이와 같이 증폭된 핵산은 형광기기 등을 이용하여 검출될 수 있다.In addition, when a biological sample is put in the kit of the present invention, the motor part of the device is operated to rotate the bead, and thus the nucleic acid extraction process may proceed. At this time, after the direct buffer and the sample are mixed, the heater of the kit is After the operation is performed to purify impurities, and after the sample is moved to the amplification and detection chamber part, the nucleic acid can be amplified. The nucleic acid amplified in this way can be detected using a fluorescent device or the like.
본 발명의 일 구체예에 따른 핵산 정제 및 추출용 조성물을 생물학적 시료와 혼합하는 단계; 생물학적 시료를 40 내지 70℃에서 1 내지 10분 동안 가열하는 단계; 및 생물학적 시료에서 핵산을 검출하는 단계를 포함하는 핵산 검출 방법을 제공한다.Mixing the composition for purifying and extracting nucleic acids according to an embodiment of the present invention with a biological sample; Heating the biological sample at 40 to 70° C. for 1 to 10 minutes; And it provides a nucleic acid detection method comprising the step of detecting the nucleic acid in the biological sample.
본 발명의 방법에 따르면, 생물학적 시료의 전처리부터 감염균의 핵산 증폭까지 한번에 수행할 수 있으므로, 생물학적 시료에 존재하는 감염균을 신속하고 간단하게 검출할 수 있다.According to the method of the present invention, since the pretreatment of the biological sample to the amplification of the nucleic acid of the infectious bacteria can be performed at one time, infectious bacteria present in the biological sample can be detected quickly and simply.
본 발명의 일 구체예에 따르면, 상기 핵산은 감염균 유래 핵산일 수 있다.According to one embodiment of the present invention, the nucleic acid may be a nucleic acid derived from an infectious bacteria.
본 발명의 일 구체예에 따르면, 상기 감염균은 박테리아 또는 바이러스일 수 있다.According to one embodiment of the present invention, the infectious bacteria may be bacteria or viruses.
본 발명의 일 구체예에 따르면, 상기 바이러스는 아데노바이러스, 뎅기바이러스 또는 인플루엔자 A 바이러스(H1N1)일 수 있다.According to an embodiment of the present invention, the virus may be an adenovirus, dengue virus, or influenza A virus (H1N1).
본 발명의 방법에 따르면, 102pfu/100㎕ 수준의 아데노바이러스, 103pfu/㎖ 수준의 뎅기바이러스 및 인플루엔자 A 바이러스(H1N1)의 간편하고 신속한 검출이 가능하므로, 현장에서도 고민감도로 감염균의 검출이 가능하다.According to the method of the present invention, since it is possible to easily and quickly detect 10 2 pfu/100 μl level of adenovirus, 10 3 pfu/ml level of dengue virus, and influenza A virus (H1N1), the infectious bacteria can be detected in the field with high sensitivity. Detection is possible.
본 발명의 일 구체예에 따르면, 상기 박테리아는 대장균(Escherichia coli), 황색포도상구균(Staphylococcus aureus) 또는 살모넬라균(Salmonella typhimurium)일 수 있다.According to an embodiment of the present invention, the bacteria may be Escherichia coli , Staphylococcus aureus , or Salmonella typhimurium .
본 발명의 방법에 따르면, 103pfu/㎖ 수준의 대장균 및 105cfu/ml 수준의 살모넬라균의 간편하고 신속한 검출이 가능하므로, 현장에서도 고민감도로 감염균의 검출이 가능하다.According to the method of the present invention, since it is possible to easily and quickly detect E. coli at a level of 10 3 pfu/ml and Salmonella at a level of 10 5 cfu/ml, it is possible to detect infectious bacteria with high sensitivity even in the field.
본 발명의 일 구체예에 따르면, 상기 뎅기바이러스는 뎅기바이러스 혈청형 1, 뎅기바이러스 혈청형 2, 뎅기바이러스 혈청형 3 및 뎅기바이러스 혈청형 4로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상의 뎅기바이러스 혈청형일 수 있다.According to one embodiment of the present invention, the dengue virus may be one or more dengue virus serotypes selected from the group consisting of
본 발명의 방법에 따르면, 뎅기바이러스의 혈청형 1, 2, 3 및 4의 구별이 가능하다.According to the method of the present invention, it is possible to distinguish between
본 발명의 일 구체예에 따르면, 상기 검출은 중합효소 연쇄반응(Polymerase Chain Reaction: PCR) 또는 고리매개 등온 증폭(Loop-mediated isothermal amplification: LAMP)일 수 있다.According to one embodiment of the present invention, the detection may be a polymerase chain reaction (PCR) or loop-mediated isothermal amplification (LAMP).
본 발명의 핵산을 검출하는 단계는 PCR 방법으로 수행될 수 있다. 이 경우, 핵산의 검출을 위하여 프라이머 세트, 및 당업계에서 PCR 반응에 일반적으로 사용하는 시약, 예를 들어, dNTP 및 Taq, Q5 등의 중합효소 등을 사용하여 핵산 증폭 반응이 수행될 수 있다.The step of detecting the nucleic acid of the present invention may be performed by a PCR method. In this case, a nucleic acid amplification reaction may be performed using a primer set for detection of a nucleic acid, and reagents commonly used in PCR reactions in the art, for example, dNTP and polymerases such as Taq and Q5.
본 발명의 핵산을 검출하는 단계는 LAMP 방법으로 수행될 수 있다. 이 경우, 핵산의 검출을 위하여 고리매개등온 증폭 프라이머 세트, 및 당업계에서 LAMP 반응에 일반적으로 사용하는 시약, 예를 들어, Isothermal Amplification Buffer II, MgSO4, dNTP Mix, Bst 중합효소 및 AMV Reverse Transcriptase 등을 사용하여 핵산 증폭 반응이 수행될 수 있다.The step of detecting the nucleic acid of the present invention may be performed by the LAMP method. In this case, a set of ring-mediated isothermal amplification primers for detection of nucleic acids, and reagents commonly used in LAMP reactions in the art, for example, Isothermal Amplification Buffer II, MgSO4, dNTP Mix, Bst polymerase, and AMV Reverse Transcriptase, etc. Nucleic acid amplification reaction can be carried out using.
핵산 정제 및 추출용 조성물 및 이를 이용한 핵산 검출 키트 및 방법에 따르면, 생물학적 시료에 포함된 불순물을 효과적으로 정제할 수 있고, 동시에 생물학적 시료에 포함된 감염균 등의 핵산의 증폭이 가능하므로, 간편하고 단순한 공정으로 생물학적 시료에 존재하는 감염균 등의 핵산의 검출에 유용하게 활용할 수 있다.According to the nucleic acid purification and extraction composition and the nucleic acid detection kit and method using the same, it is possible to effectively purify impurities contained in a biological sample and at the same time amplify nucleic acids such as infectious bacteria contained in a biological sample, so a simple and simple process As a result, it can be usefully used for detecting nucleic acids such as infectious bacteria present in biological samples.
도 1은 전혈로부터 뎅기바이러스의 검출을 위한 미세유체 칩을 나타낸 도면이다.
도 2는 전혈로부터 바이러스 RNA의 검출 공정을 나타낸 모식도이다.
도 3은 본 발명의 일 구체예에 따른 미세유체 칩을 사용하여 뎅기바이러스를 검출하는 공정을 나타낸 사진이다.
도 4는 다이렉트 버퍼 구성 물질의 농도에 따른 PCR 억제 효과를 나타낸 그래프이다.
도 5는 PCR 효율에 대한 다이렉트 버퍼 구성 물질의 주요 효과를 직접 샘플 PCR(a) 및 희석 샘플 PCR(b)에서 확인한 결과를 나타낸 그래프이다.
도 6은 PCR 효율에 대한 다이렉트 버퍼 구성 물질 중 두 물질간의 조합 효과를 직접 샘플 PCR에서 확인한 결과를 나타낸 그래프이다.
도 7은 PCR 효율에 대한 다이렉트 버퍼 구성 물질 중 두 물질간의 조합 효과를 희석 샘플 PCR에서 확인한 결과를 나타낸 그래프이다.
도 8은 전혈 샘플에서 PCR에 사용할 수 있는 DNA에 대한 PEG 8000의 농도별 효과를 나타낸 그래프(a) 및 사진(b)이다.
도 9는 상용 제품인 Qiagen 및 다이렉트 버퍼(Nex) 대비 본 발명의 일 구체예에 따른 다이렉트 버퍼의 아데노바이러스 검출 성능을 비교한 그래프이다.
도 10은 비드 크기(a), 비드 양(b) 및 비드-비팅 시간(c)에 따른 뎅기 바이러스 용해 효율 및 RNA 안정성을 나타낸 그래프이다.
도 11은 전혈 및/또는 다이렉트 버퍼의 가열 시간에 따른 뎅기바이러스 RNA의 증폭 효율을 나타낸 그래프이다.
도 12는 뎅기바이러스 혈청형 1(a), 뎅기바이러스 혈청형 4(b), 및 뎅기바이러스 혈청형 3 및 4(c)의 LAMP 산물에 대한 젤 전기영동 사진 및 형광 강도를 나타낸 그래프이다.
도 13은 상용 제품인 Qiagen 및 다이렉트 버퍼(Nex) 대비 본 발명의 일 구체예에 따른 미세유체 칩의 뎅기바이러스 혈청형 3의 검출 성능을 비교한 그래프이다.
도 14는 전혈에 포함된 살모넬라균(a), 아데노바이러스(b) 및 인플루엔자 A 바이러스(H1N1)(c)에 대한 증폭곡선이다.
도 15는 변에 포함된 대장균(a), 아데노바이러스(b) 및 인플루엔자 A 바이러스(H1N1)(c)에 대한 증폭곡선이다.1 is a diagram showing a microfluidic chip for detection of dengue virus from whole blood.
2 is a schematic diagram showing the detection process of viral RNA from whole blood.
3 is a photograph showing a process of detecting a dengue virus using a microfluidic chip according to an embodiment of the present invention.
4 is a graph showing the effect of inhibiting PCR according to the concentration of direct buffer constituents.
5 is a graph showing the results of confirming the main effects of direct buffer constituents on PCR efficiency in direct sample PCR (a) and diluted sample PCR (b).
6 is a graph showing the result of confirming the combination effect of two substances among the substances constituting the direct buffer on PCR efficiency in direct sample PCR.
7 is a graph showing the result of confirming the combination effect between two substances among the substances constituting the direct buffer on PCR efficiency in diluted sample PCR.
8 is a graph (a) and a photograph (b) showing the effect of each concentration of
9 is a graph comparing the adenovirus detection performance of a direct buffer according to an embodiment of the present invention compared to commercial products Qiagen and direct buffer (Nex).
10 is a graph showing dengue virus lysis efficiency and RNA stability according to bead size (a), bead amount (b), and bead-beating time (c).
11 is a graph showing the amplification efficiency of dengue virus RNA according to heating time of whole blood and/or direct buffer.
12 is a graph showing gel electrophoresis and fluorescence intensity of LAMP products of dengue virus serotype 1 (a), dengue virus serotype 4 (b), and
13 is a graph comparing the detection performance of
14 is an amplification curve for Salmonella (a), adenovirus (b), and influenza A virus (H1N1) (c) contained in whole blood.
15 is an amplification curve for Escherichia coli (a), adenovirus (b) and influenza A virus (H1N1) (c) contained in the stool.
이하 본 발명을 하나 이상의 실시예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나, 이들 실시예는 본 발명을 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.Hereinafter, the present invention will be described in more detail through one or more examples. However, these examples are for illustrative purposes only, and the scope of the present invention is not limited to these examples.
실시예 1. 다이렉트 버퍼 최적 조성비 및 바이러스 검출 효율 분석 방법Example 1. Direct buffer optimal composition ratio and virus detection efficiency analysis method
1-1. 바이러스 배양 및 전혈 샘플1-1. Virus culture and whole blood samples
설대우 교수(College of Pharmacy, Chung-Ang University, Korea)님으로부터 제공받은 인간 아데노바이러스(human adenovirus) 5 및 HEK 293 세포를 10% FBS(Fetal Bovine Serum)(Gibco, Grand Island, NY, USA)를 함유한 DMEM(Dulbecco's Modified Eagle's Medium)을 사용하여 배양하였다. HEK 293 세포에 2일 동안 바이러스를 감염시킨 후, 동결-해동 순환(freeze-thaw cycling)에 의해 바이러스를 수득하였다. 뎅기바이러스는 고려대학교 구로 병원에서 제공받았으며, 인플루엔자 A 바이러스(H1N1)는 BioNano Health-Guard Research Center에서 구입하였다. RNA의 안정성을 확인하기 위해 QIAamp Viral RNA Mini Kit(Qiagen, Hilden, Germany)를 사용하여 스파이크(spike)된 RNA를 추출하였다.10% Fetal Bovine Serum (FBS) (Gibco, Grand Island, NY, USA) with
전혈(whole blood)은 건강한 지원자 5명(남자 3명 및 여자 2명)으로부터 채취하였다. 수집된 혈액을 튜브(Vacutainer tube k2 EDTA, Becton Dickinson and Company, NJ, USA)에 담아 4℃에서 보관하고 일주일 이내에 사용하였다.Whole blood was collected from 5 healthy volunteers (3 males and 2 females). The collected blood was put in a tube (Vacutainer tube k2 EDTA, Becton Dickinson and Company, NJ, USA), stored at 4°C, and used within one week.
1-2. 직접 샘플 PCR 및 희석 샘플 PCR1-2. Direct sample PCR and diluted sample PCR
37℃ 및 150rpm의 진탕 배양기(Biofree, Seoul, Korea)에서 3% TBS(Tryptic soy broth)(Becton, France)로 배양한 Salmonella typhimurium(ATCC 14028)의 게놈 DNA를 전혈에 스파이크하였다. 전혈 및 다이렉트 버퍼(direct buffer)를 1:2의 부피비로 혼합하였다. 다이렉트 버퍼는 계면활성제(SDS(sodium dodecyl sulfate) 및 Triton X-100), PEG(polyethylene glycol) 200, PEG 8000, 카오트로픽 염(chaotropic salt)인 구아니디움 티오시아네이드(guanidium thiocyanate: GuSCN), 코스모트로픽 염(kosmotropic salt)인 황산나트륨(Na2SO4), NaOH 및/또는 MgCl2를 다양한 조성비로 혼합하여 구성하였다.Genomic DNA of Salmonella typhimurium (ATCC 14028) cultured with 3% TBS (Tryptic soy broth) (Becton, France) in a shaking incubator (Biofree, Seoul, Korea) at 37° C. and 150 rpm was spiked into whole blood. Whole blood and direct buffer were mixed in a volume ratio of 1:2. Direct buffers include surfactants (SDS (sodium dodecyl sulfate) and Triton X-100), PEG (polyethylene glycol) 200,
직접 샘플 PCR은 스파이크된 전혈 및 다이렉트 버퍼 혼합물을 샘플로 직접 사용하였다. 희석 샘플 PCR은 전혈 샘플을 TE 버퍼로 1000배 희석하여 사용하였다. 사용한 프라이머는 표 1과 같다. 혈액 상층액에서 DNA의 회수율 및 정제율을 정량하기 위하여 LightCycler® 480 System(Roche, Basel, Switzerland)을 사용하여 실시간(real time) PCR을 수행하였다.Direct sample PCR used spiked whole blood and direct buffer mixtures directly as samples. Diluted sample PCR was used by diluting the whole blood sample 1000 times with TE buffer. The primers used are shown in Table 1. Real time PCR was performed using the LightCycler® 480 System (Roche, Basel, Switzerland) to quantify the recovery and purification rate of DNA from the blood supernatant.
(5'→3')Primer sequence
(5'→3')
1-3. PCR 효율 분석 및 비교1-3. PCR efficiency analysis and comparison
QIAamp DNA mini kit를 사용하여 추출된 실시예 1-1의 아데노바이러스 DNA 양을 양성 대조군(positive control: PC)과 비교하여 용해 효율을 확인하였다. 또한, 대조군으로써 상용화된 다이렉트 버퍼인 NexampTM Direct PCR Buffer Kit(Genes Laboratories, Gyeongido, Korea)를 사용하였다. 마이크로 비드(직경 50 내지 70㎛, DAIHAN Scientific, Kangwon-do, Korea)를 35% 과산화수소와 98% 황산으로 구성된 피라나 용액(piranha solution)으로 30분 동안 세척하였다. 0.4g의 마이크로 비드와 다이렉트 버퍼를 샘플에 넣어 아데노바이러스를 용해시켰다. 아데노바이러스를 스파이크한 전혈(200㎕)을 2배 용량의 다이렉트 버퍼(400㎕) 및 마이크로 비드와 혼합한 후 비드-비팅(bead-beating)하였다. 1분 동안 30Hz의 진동수로 비드-비팅한 후, 실온에서 4분 동안 방치하였으며, 직접 샘플을 사용하여 실시간 PCR을 수행하였다.The amount of adenovirus DNA of Example 1-1 extracted using the QIAamp DNA mini kit was compared with a positive control (PC) to confirm dissolution efficiency. In addition, as a control, a commercially available direct buffer, Nexamp TM Direct PCR Buffer Kit (Genes Laboratories, Gyeongido, Korea) was used. Microbeads (
1-4. 다이렉트 버퍼 구성 물질의 주요 효과 및 조합 효과 분석1-4. Analysis of major effects and combination effects of direct buffer components
MinitabTM 프로그램을 사용하여 다이렉트 버퍼의 구성 물질에 대한 최적 비율을 분석하였다. PEG 200, PEG 8000, GuSCN, Na2SO4 및 MgCl2는 Sigma-Aldrich(St. Louis, Mo, USA)에서 구입하였고, NaOH는 Junsei-Chemical(Tokyo, Japan)에서 구입하였다. One-half factorial experiment는 2 반복 및 4 블록으로 설계되었다. 실험은 DOE(design of experiment)의 실행 순서에 의해 순차적으로 수행되었다.The Minitab ™ program was used to analyze the optimal ratio for the constituents of the direct buffer.
1-5. 역전사-PCR 및 LAMP1-5. Reverse transcription-PCR and LAMP
one step RT-PCR set(Bioassay, South Korea) 및 SuperScript® II Reverse Transcriptase(Invitrogen/Thermo Fisher Scientific, MA, USA)/TB Green Premix Ex Taq II(Takara Bio Inc., Shiga, Japan)을 각각 사용하여 One-step 및 two-step 역전사(Reverse Transcription: RT)-PCR(LightCycler®480 II, Roche, Basel, Switzerland)을 수행하였다.Using one step RT-PCR set (Bioassay, South Korea) and SuperScript® II Reverse Transcriptase (Invitrogen/Thermo Fisher Scientific, MA, USA)/TB Green Premix Ex Taq II (Takara Bio Inc., Shiga, Japan), respectively. One-step and two-step reverse transcription (RT)-PCR (LightCycler® 480 II, Roche, Basel, Switzerland) was performed.
고리매개 등온 증폭(Loop-mediated isothermal amplification: LAMP)은 Mmiso®Dengue Detection Kit(Real-Time)(Mmonitor, South Korea)의 각 유형 마스터 혼합물 23㎕와 58℃에서 준비된 RNA 샘플 2㎕의 혼합물로 40분 동안 수행한 후, FAM 채널로부터 형광을 판독하여 수행하였다.Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) is a mixture of 23 µl of each type master mixture of Mmiso®Dengue Detection Kit (Real-Time) (Mmonitor, South Korea) and 2 µl of RNA samples prepared at 58°C. After running for a minute, fluorescence was read from the FAM channel and performed.
1-6. 바이러스 용해 효율 및 RNA 안정성 분석1-6. Virus lysis efficiency and RNA stability analysis
다이렉트 버퍼(1.25%(v/v) PEG 200, 10%(v/v) PEG 8000 및 50mM NaOH) 내 비드-비팅(bead-beating) 조건에 따른 바이러스 용해 효율을 조사하기 위하여, 전혈 대신에 뎅기바이러스가 첨가된 물을 사용하고 RT-PCR로 측정하였다. H1N1에서 추출한 순수한 RNA는 또한 용해 준비 과정에서 RNA 안정성을 조사하기 위해 다이렉트 버퍼에 첨가되었다. 그 후, 순수한 뎅기바이러스 RNA를 함유한 전혈 샘플에 대한 정량적 PCR 결과를 순수한 뎅기바이러스 RNA를 함유한 물에 대한 정량적 PCR 결과와 비교하였다.To investigate the viral lysis efficiency according to the bead-beating conditions in direct buffer (1.25% (v/v)
1-7. 미세유체 칩 구성 및 뎅기바이러스 검출1-7. Microfluidic chip construction and dengue virus detection
미세유체 칩은 미세유체 챔버 부분, 시료 준비 챔버 부분 및 LAMP 챔버 부분의 세 부분으로 구성된다(도 1). 미세유체 챔버 부분은 전혈 시료가 채워지는 시료 입력 부분과 처리된 시료와 다이렉트 버퍼가 시료 준비 챔버에서 LAMP 챔버로 옮겨지는 미세유체 채널로 구성된다. 시료 준비 챔버는 0.4㎖의 다이렉트 버퍼에 0.8g의 유리 마이크로 비드(50 내지 70㎛)와 마그네틱바(8mm 및 3mm)를 포함한다. LAMP 챔버 부분에는 마스터 혼합물 23㎕이 포함된 6개의 상업용 표준 마이크로튜브가 존재한다. 마이크로유체 칩에서 뎅기바이러스를 용해시키기 위한 마이크로 비드-비팅 공정을 수행하기 위하여, 시료 준비 챔버에 4개의 배플(baffle)을 사용하여, 난류 효과를 개선하여 비드-비팅 효율을 증가시켰다.The microfluidic chip is composed of three parts: a microfluidic chamber part, a sample preparation chamber part, and a LAMP chamber part (FIG. 1). The microfluidic chamber part is composed of a sample input part filled with a whole blood sample and a microfluidic channel through which the processed sample and the direct buffer are transferred from the sample preparation chamber to the LAMP chamber. The sample preparation chamber contains 0.8 g of glass microbeads (50 to 70 μm) and magnetic bars (8 mm and 3 mm) in 0.4 ml of direct buffer. There are 6 commercial standard microtubes containing 23 μl of the master mixture in the LAMP chamber section. In order to perform the microbead-beating process for dissolving the dengue virus in the microfluidic chip, four baffles were used in the sample preparation chamber to improve the turbulence effect to increase the bead-beating efficiency.
미세유체 칩의 검출 공정은 교반(용해), 가열(블로킹 및 LAMP) 및 형광 검출로 수행된다(도 2). The detection process of the microfluidic chip is performed by stirring (dissolving), heating (blocking and LAMP), and fluorescence detection (Fig. 2).
구체적으로, 칩에 전혈을 넣어주면 기기의 모터부분이 작동해 비드의 회전이 이루어지고 이로 인해 핵산 추출공정이 진행된다. 교반 공정은 전혈을 시료 준비 챔버에 넣고 다이렉트 버퍼와 혼합시킨 후, 전혈 중의 바이러스를 90초 동안 비드-비팅을 유도하는 마그네트 바의 교반에 의한 바이러스의 용해로 이루어진다. 가열 공정은 히터가 작동하여 70℃에서 5 내지 10분간 가열됨에 따라 불순물이 정제된 후 실온으로 냉각하여 이루어진다. Specifically, when whole blood is added to the chip, the motor part of the device is operated to rotate the bead, and thus the nucleic acid extraction process proceeds. The stirring process consists of dissolving the virus by agitation of a magnet bar that induces bead-beating of the virus in the whole blood for 90 seconds after putting the whole blood into the sample preparation chamber and mixing it with the direct buffer. The heating process is performed by cooling to room temperature after impurities are purified as the heater is operated and heated at 70° C. for 5 to 10 minutes.
그 후, 전처리된 전혈 샘플은 5개의 마이크로 튜브 챔버(1, 2, 3 및 4번 챔버의 뎅기바이러스 혈청형 1, 2, 3 및 4, 및 5번 챔버의 양성 대조군, 6번 챔버의 음성 대조군(negative control: NC)로 이동하여 LAMP 시약과 만나 RNA의 증폭이 이루어지며, 증폭된 RNA는 형광에 의해 검출된다(도 3).Thereafter, the pretreated whole blood samples were 5 microtube chambers (dengue virus serotypes 1, 2, 3 and 4 in
실시예 2. PCR 효율에 미치는 다이렉트 버퍼 구성 물질의 주요 효과 확인Example 2. Identification of major effects of direct buffer constituents on PCR efficiency
다이렉트 버퍼 구성 물질이 PCR 효율에 미치는 영향을 확인하기 위하여, 실시예 1-3을 수행하여 Triton X-100, SDS, PEG 200, PEG 8000, Na2SO4, GuSCN, NaOH 및 MgCl2의 각 농도에 따른 PCR 효율을 분석하였다.In order to confirm the effect of the direct buffer constituents on the PCR efficiency, each concentration of Triton X-100, SDS,
그 결과, 계면활성제에 있어서, Triton X-100은 1% 농도까지 PCR 반응을 억제하지 않는 반면, SDS는 0.01% 이상의 농도에서 PCR 반응의 강력한 억제제로 작용함을 확인하였다. 이는 SDS가 강한 음이온성을 나타내기 때문에, PCR에 사용된 중합 효소의 표면에 흡착되어 효소 반응을 억제하기 때문이다(도 4a). As a result, as for the surfactant, it was confirmed that Triton X-100 did not inhibit the PCR reaction to a concentration of 1%, while SDS acts as a strong inhibitor of the PCR reaction at a concentration of 0.01% or more. This is because SDS exhibits a strong anionic property, so it is adsorbed on the surface of the polymerase used in PCR to inhibit the enzyme reaction (FIG. 4A).
또한, PEG는 길이에 따라 매우 다른 특성을 갖는 것으로 알려져 있으며, PCR 억제 결과 역시 길이에 따라 다름을 확인하였다. 짧은 길이의 PEG 200은 긴 길이의 PEG 8000 대비 PCR 반응을 강하게 억제하였으며, 비록 고농도에서 반응이 억제되기는 하였으나, PEG 8000의 경우 100% PEG 8000 샘플에서도 10%의 PCR 효율을 나타냄을 확인하였다(도 4b).In addition, PEG is known to have very different properties depending on the length, and it was confirmed that the PCR inhibition result also varies according to the length. Short-
일반적으로, 단백질의 3차원 구조를 변화시켜 단백질의 용해도를 증가시키는 카오트로픽 염(chaotropic salt)은 PCR의 강력한 억제제로 알려져 있으며, 코스모트로픽 염(kosmotropic salt)은 단백질의 응집을 촉진시켜 용해도를 낮추는 것으로 알려져 있다. 그러나, 코스모트로픽 염인 황산나트륨(Na2SO4)이 카오트로픽 염인 GuSCN보다 높은 PCR 억제능을 나타내는 것으로 확인되었다(도 4c).In general, chaotropic salts, which increase the solubility of proteins by changing the three-dimensional structure of proteins, are known as powerful inhibitors of PCR, and kosmotropic salts promote protein aggregation to lower the solubility. It is known. However, it was confirmed that sodium sulfate (Na 2 SO 4 ), which is a cosmotropic salt, exhibits higher PCR inhibitory ability than GuSCN, which is a chaotropic salt (FIG. 4C).
한편, NaOH는 pH와 밀접한 관련이 있다. 50mM NaOH는 pH가 약 13이고, PCR 버퍼에 포함되면, pH가 9 내지 10이기 때문에 PCR 완충액 농도를 증가시킴으로써, PCR 반응의 억제 효과를 해소할 수 있다. MgCl2의 경우, 중합 효소 반응의 억제는 Mg2+의 특성에 의한 것이다. 다만, Mg2+에 의한 PCR 저해 효과 역시 PCR 버퍼의 조성을 변화시킴으로써 해소할 수 있다(도 4d). On the other hand, NaOH is closely related to pH. 50mM NaOH has a pH of about 13, and when it is included in the PCR buffer, the pH is 9 to 10, so by increasing the concentration of the PCR buffer, the inhibitory effect of the PCR reaction can be eliminated. In the case of MgCl 2 , inhibition of the polymerase reaction is due to the properties of Mg 2+ . However, the effect of inhibiting PCR by Mg 2+ can also be solved by changing the composition of the PCR buffer (FIG. 4D).
상기 결과를 통하여, 전혈에 대한 DNA 회수율 및 PCR 효율에 대한 주요 효과 및 조합 효과를 확인하기 위한 각 화학물질의 적절한 농도 범위는 표 2와 같음을 확인하였다.Through the above results, it was confirmed that the appropriate concentration range of each chemical substance for confirming the main effect and combination effect on the DNA recovery rate and PCR efficiency for whole blood is shown in Table 2.
실시예 3. PCR 효율에 대한 다이렉트 버퍼 구성 물질의 주요 효과 확인Example 3. Identification of major effects of direct buffer constituents on PCR efficiency
다이렉트 버퍼를 개발할 때 가장 중요한 목표는 유리 핵산을 얻는 것이다. 유리 핵산의 존재는 두 가지 측정 방법으로 확인할 수 있다. 하나는 직접 샘플 PCR의 효율을 측정하는 것이고, 다른 하나는 저해제의 영향을 제거하고 PCR 효율을 측정(희석 샘플 PCR)하는 것이다. PCR 샘플에 포함된 핵산의 양과 불순물의 양은 직접 샘플 PCR 결과(핵산 양 및 불순물 양 모두에 의존)와 희석 샘플 PCR 결과(핵산 양에 의존)를 비교함으로써 도출할 수 있다.When developing direct buffers, the most important goal is to obtain free nucleic acids. The presence of free nucleic acids can be confirmed by two methods of measurement. One is to measure the efficiency of direct sample PCR, and the other is to remove the effect of the inhibitor and measure the PCR efficiency (diluted sample PCR). The amount of nucleic acid and the amount of impurities contained in the PCR sample can be derived by comparing the direct sample PCR result (depending on both the amount of nucleic acid and impurity) and the diluted sample PCR result (depending on the amount of nucleic acid).
따라서, PCR 효능에 대한 구성 물질의 주요 효과를 확인하기 위하여, 실시예 1-2의 직접 샘플 PCR(도 5a) 및 희석 샘플 PCR(도 5b)에 대하여 실시예 1-4에 따라 ANOVA 기반 DOE(Design of Experiment)를 수행하였다.Therefore, in order to confirm the main effect of the constituents on the PCR efficacy, ANOVA-based DOE according to Example 1-4 (FIG. 5A) and diluted sample PCR (FIG. 5B) of Example 1-2 ( Design of Experiment) was performed.
그 결과, PEG 200는 직접 샘플 PCR 효율(Ct의 감소)을 증가시키는 반면, 희석 샘플 PCR 효율에 대해서는 영향을 미치지 않음을 확인하였다. 이와 같은 결과를 통하여, PEG 200은 PCR에 관여하는 핵산에 영향을 주지 않고 전혈의 PCR 억제의 감소 효과를 확인하였으며, 이는 핵산에 대한 PEG 200의 다양한 이온(헴 등) 및 단백질(면역 글로블린 등) 흡착 방지 효과 때문임을 확인하였다.As a result, it was confirmed that
또한, PEG 8000이 버퍼에 존재하면 PCR 효율이 증가하나, 핵산의 양이 감소하면 PCR 효율이 감소하였다. 희석 샘플 PCR 결과에 따르면, 용액 중의 핵산의 양이 감소하였으나, 전혈의 불순물이 더 많이 감소되거나 전혈의 PCR 억제가 감소됨을 확인하였다. In addition, PCR efficiency increased when
한편, Mg2+는 PCR 효율에 유의한 영향을 미치지 않았으며, 이는 불순물을 제거하거나 핵산을 농축하는데 사용된 Mg2+의 농도가 너무 낮기 때문임을 확인하였다. 마찬가지로, 카오트로픽 염인 GuSCN 및 코스모트로픽 염인 Na2SO4의 농도가 낮기 때문에 PCR 효율에 큰 영향을 미치지 않음을 확인하였다. 다만, GuSCN의 경우, PCR에 영향을 미치지 않는 농도(50mM)의 사용에도 불구하고, GuSCN이 존재할 때 PCR 효율이 감소한다는 것을 확인하였다. 이는 카오트로픽 염인 GuSCN이 전혈의 PCR 저해 능력을 증가시킨다는 것을 시사한다(희석 샘플 PCR 결과에서는 PCR에 관여하는 핵산의 양이 감소하지 않음). On the other hand, had Mg 2+ did not significantly affect the efficiency of PCR, it was confirmed that due to impurities or too low concentration of Mg 2+ is used to concentrate the nucleic acids. Likewise, it was confirmed that the concentration of the chaotropic salt GuSCN and the cosmotropic salt Na 2 SO 4 did not significantly affect the PCR efficiency. However, in the case of GuSCN, despite the use of a concentration (50 mM) that does not affect PCR, it was confirmed that the PCR efficiency decreased when GuSCN was present. This suggests that the chaotropic salt, GuSCN, increases the PCR inhibitory ability of whole blood (diluted sample PCR results do not decrease the amount of nucleic acids involved in PCR).
PCR 효율은 계면활성제인 SDS 또는 Triton-X의 첨가에 따라 감소하였는데, 이는 핵산의 양이 감소하기 때문이 아니라 GuSCN의 경우와 같이 전혈의 계면활성제 및 모든 물질이 반응 또는 결합하기 때문임을 확인하였다.The PCR efficiency decreased with the addition of the surfactant SDS or Triton-X, which was confirmed not because the amount of nucleic acid decreased, but because the surfactant and all substances in whole blood reacted or bound as in the case of GuSCN.
pH 관련, NaOH는 PCR 효율에 긍정적인 역할을 하는 것으로 나타났다. 구체적으로, 직접 샘플 PCR 결과에 따르면, NaOH의 PCR 효율 증가 효과는 거의 나타나지 않았으나, 희석 샘플 PCR 결과에 따르면, PCR 효율이 크게 증가하였다. 이와 같은 결과를 통하여, NaOH가 전혈의 불순물을 제거하지는 않지만, PCR 반응에 참여할 수 있는 핵산의 양을 증가시키며, 이는 NaOH가 버퍼에 첨가됨으로써, 시료의 pH가 상승하고, 핵산이나 단백질 등의 각종 생물학적 물질이 높은 음전하를 나타내어 각종 생체 물질 간의 흡착을 방해하기 때문임을 확인하였다. 또한, 헴 또는 면역글로블린과 같은 억제제의 존재뿐만 아니라 핵산과의 결합에 의하여 전혈의 PCR 반응이 억제됨을 확인하였다. 따라서, NaOH는 다이렉트 버퍼 조성에 필수적인 구성임을 확인하였다.In terms of pH, NaOH has been shown to play a positive role in PCR efficiency. Specifically, according to the direct sample PCR results, the effect of increasing the PCR efficiency of NaOH was hardly observed, but according to the diluted sample PCR results, the PCR efficiency was greatly increased. Through this result, although NaOH does not remove impurities from whole blood, it increases the amount of nucleic acids that can participate in the PCR reaction, which increases the pH of the sample and increases the pH of the sample by adding NaOH to the buffer. It was confirmed that this is because the biological material exhibits a high negative charge and interferes with adsorption between various biological materials. In addition, it was confirmed that the PCR reaction of whole blood was inhibited by the presence of inhibitors such as heme or immunoglobulin as well as binding to nucleic acids. Therefore, it was confirmed that NaOH is an essential component for direct buffer composition.
실시예 4. PCR 효율에 대한 다이렉트 버퍼 구성 물질의 조합 효과 확인Example 4. Confirmation of Combination Effect of Direct Buffer Constituent Materials on PCR Efficiency
다이렉트 버퍼 구성 물질 중 두 물질간의 상호 작용을 확인하기 위하여, 실시예 1-2의 직접 샘플 PCR(도 6) 및 희석 샘플 PCR(도 7)에 대하여, 실시예 1-4에 따라 ANOVA 기반 DOE(Design of Experiment)를 수행하였다.In order to confirm the interaction between the two substances among the direct buffer constituents, for the direct sample PCR (Fig. 6) and the diluted sample PCR (Fig. 7) of Example 1-2, ANOVA-based DOE ( Design of Experiment) was performed.
그 결과, 대부분의 경우 주요 효과와 차이가 없으나, PEG 8000, 계면활성제 및 GuSCN과 같은 일부 물질은 결합되는 물질에 따라 특성이 변하는 것으로 확인되었다. 구체적으로, 직접 샘플 PCR에서 PEG 200이 없는 경우 NaOH의 영향은 무시할 수 있으나, 희석 샘플 PCR의 결과에 따르면, PEG 200의 존재에 관계없이 NaOH의 효과가 매우 높은 것으로 확인되었다. 이는 PEG 200에 불순물 정제 효과가 있음을 시사한다. PCR에 관여할 수 있는 핵산의 양은 NaOH에 의해 증가되지만(희석 샘플 PCR 결과), PEG 200이 없는 경우 효과는 매우 낮다(직접 샘플 PCR 결과). 즉, PEG 200은 NaOH와 같은 다이렉트 버퍼의 핵심 물질 중 하나임을 의미한다. As a result, in most cases, there is no difference from the main effect, but it was confirmed that the properties of some substances such as
또한, PEG 8000는 직접 샘플 PCR에 긍정적인 영향을 미친 것으로 나타났다. 그러나, PEG 8000 특성의 pH 변화는 직접 샘플 PCR 및 희석 샘플 PCR의 결과와는 정반대이다. 구체적으로, PEG 8000과 NaOH로 희석된 샘플 PCR 결과에 따르면, NaOH에 의한 희석 샘플 PCR 효율은 PEG 8000에 농도 의존적으로 증가하는 것으로 나타났다. 반면, 직접 샘플 PCR 결과에 따르면, PEG 8000이 존재할 경우, NaOH가 PCR에 부정적인 영향을 미치는 것으로 나타났고, 또한, PEG 8000의 존재 하에서 희석 샘플 PCR의 효율은 낮아지는 것으로 나타났다. 따라서, PEG 8000은 불순물의 정화 효과를 나타내나, 용액 중의 핵산의 농도를 감소시키는 효과(핵산 침전) 역시 갖는 것으로 확인되었다. 또한, 표준화된 PCR 결과에서 PEG 8000의 농도 및 반응 시간이 증가함에 따라 용액에 남아있는 핵산의 양이 감소하는 것으로 나타났다는 점에서, PEG 8000은 PCR에 영향을 미치는 핵산 및 불순물을 함께 침전 또는 응고시키며, PEG 8000의 농도가 10%일 때, 최적의 효과가 나타남을 확인하였다(도 8).In addition,
이와 같은 결과를 통하여, 1.25%(v/v) PEG 200, 10%(v/v) PEG 8000 및 50mM NaOH의 조성비를 갖는 다이렉트 버퍼의 핵산 회수율이 가장 우수함을 확인하였다.Through these results, it was confirmed that the nucleic acid recovery rate of the direct buffer having a composition ratio of 1.25% (v/v)
실시예 5. 전혈에서의 바이러스 핵산 검출 Example 5. Viral nucleic acid detection in whole blood
전혈에서 바이러스의 핵산 검출이 가능한지 여부를 확인하기 위하여, 실시예 4에서 확인한 최적의 조성비를 갖는 다이렉트 버퍼(1.25%(v/v) PEG 200, 10%(v/v) PEG 8000 및 50mM NaOH)를 아데노바이러스를 스파이크한 전혈에 사용하여, 실시예 1-3에 따라 아데노바이러스를 검출하였다.In order to confirm whether it is possible to detect the nucleic acid of the virus in whole blood, the direct buffer (1.25% (v/v)
그 결과, Qiagen 키트를 기반으로한 PCR 효율 및 선형 범위는 본 발명의 다이렉트 버퍼보다 우수한 것으로 나타났으나, 이와 같은 결과는 Qiagen 키트의 불순물 제거 공정에 기인한 것으로 확인되었다. 한편, 본 발명의 다이렉트 버퍼는 전혈 102pfu/100㎕ 농도의 바이러스의 검출이 가능한 것으로 나타나, 상용화된 NexampTM Direct PCR Buffer보다 PCR 효율 및 선형 범위가 뛰어난 것으로 확인되었다(도 9).As a result, it was found that the PCR efficiency and linear range based on the Qiagen kit were superior to those of the direct buffer of the present invention, but this result was confirmed to be due to the impurity removal process of the Qiagen kit. Meanwhile, the direct buffer of the present invention was found to be capable of detecting viruses at a concentration of 10 2 pfu/100 μl of whole blood, and it was confirmed that the PCR efficiency and linear range were superior to those of commercially available Nexamp TM Direct PCR Buffer (FIG. 9 ).
실시예 6. 비드-비팅 조건에 따른 RNA 추출 효율 및 안정성 확인Example 6. Confirmation of RNA extraction efficiency and stability according to bead-beating conditions
RNA 추출 효율 및 안정성에 대한 마이크로 유리 비드의 크기, 양 및 교반 시간에 대한 최적 조건을 확인하기 위하여, 뎅기바이러스 혈청형 3에 대한 RNA 추출 효율 및 안정성을 비드의 크기(20, 30, 50㎛), 양(0.4, 0.6, 0.8g) 및 비드-비팅 시간(30, 60, 90초)에 따라 분석하였다. 용해 효율은 QIAamp viral RNA mini Kit를 사용한 순수(pure water) 방법 대비 비드-비팅을 사용한 다이렉트 버퍼 방법(실시예 1-6)에 따른 뎅기바이러스 혈청형 3으로부터 추출한 RNA의 양(%)로 정의하였다. RNA 안정성은 비드-비팅 전 대비 비드-비팅 후 RT-PCR에 의해 증폭된 RNA 양(%)으로 정의하였다. In order to confirm the optimal conditions for the size, amount and stirring time of the micro glass beads for RNA extraction efficiency and stability, the RNA extraction efficiency and stability for
비드-비팅 공정에 따른 물리적 스트레스 하에서 RNA 안정성을 확인한 결과, 더 큰 비드는 더 효과적으로 뎅기바이러스를 용해시키는 것으로 나타났다(도 10a). 또한, 비드 양(도 10b) 및 교반 시간(도 10c)이 증가할수록 용해 효율이 높아지는 것으로 나타났다. RNA 추출 효율은 0.8g의 50㎛ 유리 비드를 사용하고 1,500rpm에서 90초 동안 교반(25Hz)할 때, 90% 이상인 것으로 확인되었다. 또한, 80% 이상의 RNA는 심각한 물리적 스트레스 하에서도 안정적인 것으로 나타났다.As a result of confirming RNA stability under physical stress according to the bead-beating process, it was found that the larger beads more effectively dissolve the dengue virus (FIG. 10A). In addition, it was found that the dissolution efficiency increased as the amount of beads (FIG. 10b) and stirring time (FIG. 10c) increased. RNA extraction efficiency was found to be 90% or more when using 0.8 g of 50 μm glass beads and stirring at 1,500 rpm for 90 seconds (25 Hz). In addition, more than 80% of RNA was found to be stable under severe physical stress.
실시예 7. 전혈 및 다이렉트 버퍼의 가열에 따른 RNA 증폭 효율 증가 효과 확인Example 7. Checking the effect of increasing RNA amplification efficiency by heating whole blood and direct buffer
뎅기바이러스로부터 RNA를 추출한 후, 샘플 내의 RNA를 실시예 1-5의 방법에 의해 증폭시켰다. 전혈은 전혈 단독 또는 전혈과 다이렉트 버퍼 혼합물을 70℃로 가열하여 사용하였다. 증폭 효율(%)은 (전혈에 존재하는 특정 RNA의 Ct - 음성 대조군의 Ct(NC))/(물에 존재하는 특정 RNA의 Ct - NC의 Ct)로 정의하였고, Ct(임계주기: threshold cycle)는 RT-PCR 결과에 따라 나타내었다.After extracting RNA from the dengue virus, RNA in the sample was amplified by the method of Example 1-5. Whole blood was used by heating whole blood alone or a mixture of whole blood and direct buffer at 70°C. The amplification efficiency (%) was defined as (Ct of a specific RNA present in whole blood-Ct (NC) of a negative control)/(Ct of a specific RNA present in water-Ct of NC), and Ct (threshold cycle) ) Is shown according to the RT-PCR results.
그 결과, 전혈만을 가열할 경우, RT-PCR 효율은 50% 미만으로 확인되었다. 그러나, 전혈과 다이렉트 버퍼 혼합물을 가열할 경우, RT-PCR 증폭 효율이 80%까지 향상되는 것으로 나타났다(도 11). 이는 높은 pH를 제공하는 PEG 200 및 NaOH가 폴리머라제 등의 효소와 단백질 등의 증폭 억제제 간의 비특이적 결합을 방지하기 때문임을 확인하였다. PEG 200과 NaOH는 고농도에서 증폭 반응을 억제하기 때문에, RNA 증폭에 있어서 불순물 정제 효율을 증가시키기 위하여, PEG 200 또는 NaOH의 농도를 증가시키는 것 보다는 70℃에서 5 내지 10분간 가열하는 것이 더욱 바람직함을 확인하였다.As a result, when heating only whole blood, the RT-PCR efficiency was confirmed to be less than 50%. However, when heating the whole blood and direct buffer mixture, it was found that the RT-PCR amplification efficiency was improved up to 80% (FIG. 11). It was confirmed that this is because
실시예 8. 미세유체 칩의 뎅기바이러스 혈청형 구별 성능 확인Example 8. Confirmation of dengue virus serotype discrimination performance of microfluidic chips
뎅기바이러스의 혈청형을 구별할 수 있는지 확인하기 위하여, 다양한 혈청형의 뎅기바이러스(104pfu)가 첨가된 전혈시료 200㎕를 실시예 1-7의 미세유체 칩을 사용하여 분석하였다.In order to confirm whether the serotype of the dengue virus could be distinguished, 200 µl of whole blood samples to which various serotypes of dengue virus (10 4 pfu) were added were analyzed using the microfluidic chip of Example 1-7.
그 결과, 도 12a 내지 12c와 같이, 뎅기바이러스 혈청형 1 내지 4가 효과적으로 구별됨을 확인하였다.As a result, as shown in Figs. 12a to 12c, it was confirmed that dengue virus serotypes 1 to 4 were effectively distinguished.
실시예 9. 미세유체 칩의 우수한 뎅기바이러스 검출 민감도 확인Example 9. Checking the sensitivity of the microfluidic chip for detection of dengue virus
실시예 1-7의 미세유체 칩이 상업용 다이렉트 버퍼(NEXampTM direct buffer kit, South Korea) 및 정상 guanidine 기반 column kit(QIAamp DNA mini Kit with whole blood protocol, Hilden, Germany) 대비 우수한 검출 효율을 나타내는지 확인하기 위하여, 103, 104 및 105pfu/㎖의 농도에서의 뎅기바이러스 혈청형 3의 검출율을 비교하였다.Whether the microfluidic chip of Example 1-7 exhibits superior detection efficiency compared to a commercial direct buffer (NEXamp TM direct buffer kit, South Korea) and a normal guanidine-based column kit (QIAamp DNA mini Kit with whole blood protocol, Hilden, Germany) To confirm, the detection rates of
그 결과, 실시예 1-7의 미세유체 칩을 사용할 경우 뎅기바이러스가 모두 검출되었다. 반면, 각각 103, 104 및 105pfu/㎖ 샘플에 대해서 NEXamp 키트는 각각 0, 20 및 60%의 성공률을 보이는 것으로 나타났고, Qiagen 키트는 60, 80 및 100%의 성공률을 보이는 것으로 나타났다(도 13). 즉, 실시예 1-7의 미세유체 칩은 상업용 다이렉트 버퍼 키트(NEXamp) 및 정상 DNA 정제 키트(Qiagen) 대비 뎅기바이러스 검출 민감도가 더욱 우수한 것으로 확인되었다.As a result, when using the microfluidic chip of Examples 1-7, all dengue viruses were detected. On the other hand, for each 10 3 , 10 4 and 10 5 pfu/ml sample, the NEXamp kit showed success rates of 0, 20 and 60%, respectively, and the Qiagen kit showed success rates of 60, 80 and 100%, respectively. (Fig. 13). That is, it was confirmed that the microfluidic chip of Examples 1-7 had better dengue virus detection sensitivity compared to the commercial direct buffer kit (NEXamp) and the normal DNA purification kit (Qiagen).
실시예 10. 생물학적 시료에 포함된 감염균 다중 검출 효과 확인Example 10. Confirmation of multiple detection effects of infectious bacteria contained in biological samples
10-1. 전혈에 포함된 감염균 다중 검출 효과 확인10-1. Confirmation of multiple detection effects of infectious bacteria contained in whole blood
전혈 200㎕에 살모넬라균(Salmonella typhimurium) 105cfu/㎖, DNA 바이러스인 아데노바이러스 105pfu/㎖ 및 RNA 바이러스인 인플루엔자 A 바이러스(H1N1) 103pfu/㎖를 스파이크한 후 증류수 200㎕와 혼합하고, 실시예 4에서 확인한 최적의 조성비를 갖는 다이렉트 버퍼(1.25%(v/v) PEG 200, 10%(v/v) PEG 8000 및 50mM NaOH) 400㎕를 혼합 및 비드-비팅을 진행한 다음, 70℃에서 5분간 가열한 후, PCR 반응을 수행하였다.
그 결과, 살모넬라균(도 14a), 아데노바이러스(도 14b) 및 인플루엔자 A 바이러스(H1N1)(도 14c) 각각에 대한 증폭곡선을 확인하여, 본 발명의 다이렉트 버퍼의 핵산 추출 및 정제공정이 정상적으로 작동함을 확인하였다. As a result, by confirming the amplification curves for each of Salmonella (Fig. 14a), adenovirus (Fig. 14b), and influenza A virus (H1N1) (Fig. 14c), the nucleic acid extraction and purification process of the direct buffer of the present invention operates normally. Confirmed that.
10-2. 변에 포함된 감염균 다중 검출 효과 확인10-2. Confirmation of multiple detection effects of infectious bacteria contained in stool
변 6mg에 대장균(Escherichia coli) 103cfu/㎖, DNA 바이러스인 아데노바이러스 105pfu/㎖ 및 RNA 바이러스인 인플루엔자 A 바이러스(H1N1) 104pfu/㎖를 스파이크한 후 증류수 200㎕와 혼합하고, 실시예 4에서 확인한 최적의 조성비를 갖는 다이렉트 버퍼(1.25%(v/v) PEG 200, 10%(v/v) PEG 8000 및 50mM NaOH) 400㎕를 혼합 및 비드-비팅을 진행한 다음, 70℃에서 5분간 가열한 후, PCR 반응을 수행하였다.E. coli ( Escherichia coli ) 10 3 cfu/ml,
그 결과, 대장균(도 15a), 아데노바이러스(도 15b) 및 인플루엔자 A 바이러스(H1N1)(도 15c) 각각에 대한 증폭곡선을 확인하여, 본 발명의 다이렉트 버퍼의 핵산 추출 및 정제공정이 정상적으로 작동함을 확인하였다.As a result, by checking the amplification curves for each of E. coli (Fig. 15a), adenovirus (Fig. 15b) and influenza A virus (H1N1) (Fig. 15c), the nucleic acid extraction and purification process of the direct buffer of the present invention operates normally. Was confirmed.
이제까지 본 발명에 대하여 그 실시예들을 중심으로 살펴보았다. 본 발명이 속하는 기술 분야에서 통상의 지식을 가진 자는 본 발명이 본 발명의 본질적인 특성에서 벗어나지 않는 범위에서 변형된 형태로 구현될 수 있음을 이해할 수 있을 것이다. 그러므로 개시된 실시예들은 한정적인 관점이 아니라 설명적인 관점에서 고려되어야 한다. 본 발명의 범위는 전술한 설명이 아니라 청구범위에 나타나 있으며, 그와 동등한 범위 내에 있는 모든 차이점은 본 발명에 포함된 것으로 해석되어야 할 것이다.So far, the present invention has been looked at around the examples. Those of ordinary skill in the art to which the present invention pertains will be able to understand that the present invention can be implemented in a modified form without departing from the essential characteristics of the present invention. Therefore, the disclosed embodiments should be considered from an illustrative point of view rather than a limiting point of view. The scope of the present invention is shown in the claims rather than the foregoing description, and all differences within the scope equivalent thereto should be construed as being included in the present invention.
<110> CHUNG ANG University industry Academic Cooperation Foundation <120> Composition for Nucleic Acid Purification and Extraction and Nucleic Acid Detection Kit and Method using the same <130> PN180416 <160> 2 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Salmonella typhimurium_forward <400> 1 ctcacgggac gcgaaaagac ga 22 <210> 2 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Salmonella typhimurium_reverse <400> 2 cgacgccgga ttcccctacc ag 22 <110> CHUNG ANG University industry Academic Cooperation Foundation <120> Composition for Nucleic Acid Purification and Extraction and Nucleic Acid Detection Kit and Method using the same <130> PN180416 <160> 2 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Salmonella typhimurium_forward <400> 1 ctcacgggac gcgaaaagac ga 22 <210> 2 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Salmonella typhimurium_reverse <400> 2 cgacgccgga ttcccctacc ag 22
Claims (15)
상기 조성물은
0.1 내지 1.25부피%의 PEG(polyethylene glycol) 200;
0.1 내지 10부피%의 PEG 8000; 및
10 내지 80mM의 NaOH
를 포함하고,
상기 정제는 40 내지 70℃에서 1 내지 10분 동안의 가열 조건에서 이루어지는 것이고,
상기 핵산은 생물학적 시료에 포함된 것이고,
상기 생물학적 시료는 전혈(whole blood), 플라즈마 및 변으로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나인 것인
핵산 정제 및 추출용 조성물.
In the composition for purification and extraction of nucleic acids,
The composition is
0.1 to 1.25% by volume of polyethylene glycol (PEG) 200;
0.1-10% by volume of PEG 8000; And
10 to 80 mM NaOH
Including,
The purification is made under heating conditions at 40 to 70° C. for 1 to 10 minutes,
The nucleic acid is contained in a biological sample,
The biological sample is any one selected from the group consisting of whole blood, plasma, and feces.
Composition for purification and extraction of nucleic acids.
A kit for detecting nucleic acids comprising the composition of claim 1.
The kit for detecting a nucleic acid according to claim 7, wherein the kit comprises a bead-beating part.
생물학적 시료를 40 내지 70℃에서 1 내지 10분 동안 가열하는 단계; 및
생물학적 시료에서 핵산을 증폭하는 단계
를 포함하는 핵산 증폭 방법.
Mixing the composition of claim 1 with a biological sample;
Heating the biological sample at 40 to 70° C. for 1 to 10 minutes; And
Amplifying a nucleic acid in a biological sample
Nucleic acid amplification method comprising a.
The method of claim 9, wherein the nucleic acid is a nucleic acid derived from an infectious bacteria.
The method of claim 10, wherein the infectious bacteria are bacteria or viruses.
The method of claim 11, wherein the virus is an adenovirus, dengue virus, or influenza A virus (H1N1).
The method of claim 11, wherein the bacteria are Escherichia coli , Staphylococcus aureus , or Salmonella typhimurium .
The method of claim 12, wherein the dengue virus is at least one dengue virus serotype selected from the group consisting of dengue virus serotype 1, dengue virus serotype 2, dengue virus serotype 3, and dengue virus serotype 4. .
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
AMND | Amendment | ||
E601 | Decision to refuse application | ||
X091 | Application refused [patent] | ||
AMND | Amendment | ||
X701 | Decision to grant (after re-examination) | ||
GRNT | Written decision to grant | ||
G170 | Publication of correction |