KR102017236B1 - The primer set for analysis of cephalopods and methods for their qualitativeand quantitative analysis - Google Patents

The primer set for analysis of cephalopods and methods for their qualitativeand quantitative analysis Download PDF

Info

Publication number
KR102017236B1
KR102017236B1 KR1020180025365A KR20180025365A KR102017236B1 KR 102017236 B1 KR102017236 B1 KR 102017236B1 KR 1020180025365 A KR1020180025365 A KR 1020180025365A KR 20180025365 A KR20180025365 A KR 20180025365A KR 102017236 B1 KR102017236 B1 KR 102017236B1
Authority
KR
South Korea
Prior art keywords
analysis
cephalopods
cephalopod
primer set
present
Prior art date
Application number
KR1020180025365A
Other languages
Korean (ko)
Other versions
KR20190086333A (en
Inventor
김현우
김은비
Original Assignee
부경대학교 산학협력단
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 부경대학교 산학협력단 filed Critical 부경대학교 산학협력단
Publication of KR20190086333A publication Critical patent/KR20190086333A/en
Application granted granted Critical
Publication of KR102017236B1 publication Critical patent/KR102017236B1/en

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6888Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/158Expression markers

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

본 발명은 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 포함하는 두족류 분석 또는 분석을 위한 유전자 라이브러리 제작용 조성물, 상기 두족류 분석용 조성물을 포함하는 두족류 분석용 키트, 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 이용한 두족류 분석 방법 및 두족류 분석용 유전자 라이브러리 제작 방법에 관한 것이다. 기존의 형태학적 분석과는 달리 본 발명의 CPD 범용 프라이머 세트를 이용하면 두족류 플랑크톤을 따로 분리하지 않더라도 혼재된 샘플에서 높은 특이성으로 두족류를 분류할 수 있다. 또한 본 발명의 CPD 범용 프라이머 세트를 이용할 경우, 기존의 시퀀싱 시스템에 비하여 두족류에 대한 정성적·정량적 분석을 경제적이고 신속하게 대량으로 분석할 수 있는 효과가 있다. 따라서, 본 발명의 프라이머 세트는 두족류, 두족류의 산란장 및 성육장 조사 및 해양 생태계 조사, 먹이 생물 분석, 생태계 교란 및 외래 유입종에 대한 분석 등과 가공식품의 원재료 분석에도 사용이 가능하며 대규모 수산생물의 유통의 원산지 및 동정에도 이용이 가능하다. 또한 기존의 두족류 분석용 유전자 라이브러리를 이용할 수 있을 뿐 아니라, 새로운 두족류 분석용 유전자 라이브러리를 구축함으로 좀 더 정확한 두족류의 종 동정에 이용할 수 있다. The present invention is a composition for producing a gene library for cephalopod analysis or analysis comprising a primer set consisting of the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 and 2, a kit for analysis of cephalopods comprising the composition for analyzing cephalopods, SEQ ID NO: 1 and 2 It relates to a cephalopod analysis method using a primer set consisting of the nucleotide sequence represented by and a method for producing a gene library for cephalopod analysis. Unlike conventional morphological analysis, the CPD universal primer set of the present invention can classify cephalopods with high specificity in mixed samples without separating cephalopod plankton. In addition, when using the CPD universal primer set of the present invention, there is an effect that can be economically and quickly mass analysis of qualitative and quantitative analysis of cephalopods compared to the existing sequencing system. Therefore, the primer set of the present invention can be used for cephalopods, cephalopods spawning and breeding and marine ecosystem investigation, food bioanalysis, ecosystem disturbance and analysis of foreign invasive species and raw material analysis of processed foods, It can also be used for origin and identification of distribution. In addition, the existing cephalopod analysis gene library can be used, as well as a new cephalopod analysis gene library can be used to identify more precise cephalopod species.

Description

두족류 분석용 프라이머 세트 및 이를 이용한 정성 및 정량적 분석 방법{The primer set for analysis of cephalopods and methods for their qualitativeand quantitative analysis}The primer set for analysis of cephalopods and methods for their qualitative and quantitative analysis}

본 발명은 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 포함하는 두족류 분석 또는 분석을 위한 유전자 라이브러리 제작용 조성물, 상기 두족류 분석용 조성물을 포함하는 두족류 분석용 키트, 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 이용한 두족류 분석 방법 및 두족류 분석용 유전자 라이브러리 제작 방법에 관한 것이다.The present invention is a composition for producing a gene library for cephalopod analysis or analysis comprising a primer set consisting of the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 and 2, a kit for analysis of cephalopods comprising the composition for analyzing cephalopods, SEQ ID NO: 1 and 2 It relates to a cephalopod analysis method using a primer set consisting of the nucleotide sequence represented by and a method for producing a gene library for cephalopod analysis.

우리나라는 삼면이 바다로 둘러싸여 있으며 다양한 형태의 저류지와 하천이 발달되어 총 1,186종의 자생어류가 서식하고 있다(국립생물자원관, 2011). 이중, 두족류는 어류의 주된 먹이 중 하나로써 해양의 다양한 서식처에 광범위하게 분포하며 오징어나 문어, 낙지와 같은 상업적으로 유용한 다수의 종들을 포함하고 있다. 특히, 유엔 식량농업기구(FAO) 에서 조사한 세계 주요국의 수산물 섭취량 보고서(2016) 에 따르면 한국 소비자들은 연간 1 인당 58.4 kg 의 수산물을 섭취한다고 보고되었으며 이는 노르웨이 (53.3 kg) 나 일본 (50.2 kg) 보다 더 높은 수준인 것으로 나타났다. 게다가 2025년에는 한국 소비자들의 수산물 섭취가 약 10 % 가량 더 증가할 것으로 예상된다고 보고된 바 있다. 우리나라에서 여러 수산물 중 가장 선호도가 높은 것은 고등어로 나타났으며 오징어나 문어 등의 두족류 또한 선호도가 3번째로 높은 것으로 나타났다. In Korea, three sides are surrounded by the sea, and various types of reservoirs and rivers have been developed, and a total of 1,186 native fish are inhabited (National Institute of Biological Resources, 2011). Cephalopods are one of the main food sources for fish and are widely distributed in various habitats of the ocean and include many commercially available species such as squid, octopus and octopus. In particular, according to the report on fish consumption in major countries of the world (2016) surveyed by the United Nations Food and Agriculture Organization (FAO), Korean consumers consume 58.4 kg of fish per capita per year, compared to Norway (53.3 kg) or Japan (50.2 kg). It was found to be at a higher level. In addition, it is reported that by 2025, Korean consumers' seafood consumption will increase by about 10%. In Korea, the highest preference among various aquatic products was mackerel, and cephalopods such as squid and octopus were also the third most preferred.

상기 두족류와 같은 상업종의 자원 관리를 위해서는 산란장의 환경 조건이나 알의 부화율 이외에도 유생 분포를 파악하는 것이 중요하다. 또한 유생 분포 연구에 대한 전반적인 이해는 종에 대한 생물 생태학적 특성을 이해하는데 도움이 될 뿐만 아니라, 자원의 변화를 예측함으로써 어황에 대한 기본 자료를 제공할 수 있다. 그러나 한국 주변 해역에 서식하는 두족류의 유생 분포 특성에 대한 연구는 샘플링과 그에 따른 형태학적 동정의 어려움으로 인해 많이 부족한 실정이다. In order to manage resources of commercial species such as cephalopods, it is important to understand the larval distribution in addition to the environmental conditions of the spawning ground and the hatching rate of eggs. In addition, an overall understanding of larval distribution studies not only helps to understand the bioecological characteristics of species, but can also provide basic data on fisheries by predicting changes in resources. However, studies on the distribution of larvae in cephalopods in the surrounding waters of Korea are lacking due to difficulties in sampling and morphological identification.

과거 형태학적인 분류 특징을 이용한 종 분석이 주로 이루어져 왔으나 최근에는 DNA 마커를 이용한 종 검정이 본격화되고 있다. 분자학적 기법의 발달로 그 중에서도 Sanger sequencing을 이용한 분석법이 많이 시행되고 있으나, 이 분석법은 특정 두족류 분류군에 한정되어 모든 두족류 분류군에 대한 분석이 어렵다는 단점이 있다.In the past, species analysis using morphological classification features has been mainly performed, but in recent years, species testing using DNA markers has been in full swing. Although the analysis using Sanger sequencing has been carried out with the development of molecular techniques, the analysis method is limited to a specific cephalopod group, which makes it difficult to analyze all the cephalopod group.

두족류를 분류하기 위해서 과거 형태에 기초한 종 동정, 특히 어란이나 자어의 경우 종 동정의 핵심이 불명확하여 어려움이 많았다. 그러나, 최근 NGS (Next generation sequencing)와 같은 분자동정기법이 개발됨에 따라 그러한 어려움이 상당 해소되었다. In order to classify cephalopods, species identification based on past forms, especially in the case of fish eggs and larvae, was difficult because the core of species identification was unclear. However, the recent development of molecular identification techniques such as next generation sequencing (NGS) has significantly solved these difficulties.

생물학의 발전에 따라 생물 분류 체계에도 변화가 뒤따랐으며, DNA 염기서열을 중심으로 한 분자 형질을 이용하여 생물의 계통을 연구하는 분야를 분자계통학(molecular systematics)라고 하며 이는 전체 생물의 분류체계와 동정법에 큰 변화를 가져왔다. 그 중 DNA 기반 종 분석은 노동 또는 시간 소비가 적게 듦으로써 형태분석법과 비교하여 볼 때 유용하고 유망한 도구이다. 두족류의 경우 mitochondrial genome 염기서열의 데이터 베이스화가 잘 되어있으며, 그 중 Ribosomal DNA 유전자 영역을 종 분석에 많이 사용한다. The development of biology has led to changes in the biological classification system, and the field of studying biological systems using molecular traits centered on DNA sequences is called molecular systematics. Has brought great changes to the law of sympathy. Among them, DNA-based species analysis is a useful and promising tool when compared to morphological analysis due to less labor or time consumption. Cephalopods have well-documented mitochondrial genome sequences, of which Ribosomal DNA gene regions are frequently used for species analysis.

종래에는 기본적으로 모든 시퀀서(sequencer)는 Sanger의 dideoxyribonucleotide analog를 이용한 방식이었는데, 최근 새로운 기법의 시퀀싱 기술이 급속도로 보급되었으며, 그 중 Sanger 방식과 달리 대량의 병렬 데이터 생산이 가능한 차세대 또는 제2세대 시퀀서(Next Generation Sequencer, 2nd Generation Sequencer)가 개발되었다. 차세대 염기서열 분석법인 NGS(Next Generation sequencing)는 모든 유전자의 집합체인 유전체를 무수히 많은 조각으로 나눠 읽은 후 얻어진 염기 서열 조각을 조립하여 전체 유전체의 서열을 얻는 분석 방법이다. 해당 기술이 상용화 된 이후 관련 기술이 비약적으로 발전함에 따라 단기간 내에 많은 양의 유전체 정보를 얻게 되었고 이를 다양한 연구 분야에 활용할 수 있게 되었다. 특히 유전체 분석 비용과 시간이 점차 감소함에 따라 다양한 생명체의 유전체 분석 수요가 빠르게 증가하고 있다.Conventionally, all sequencers were based on Sanger's dideoxyribonucleotide analog. Recently, new sequencing technology has been rapidly spread. Among them, next-generation or second-generation sequencers capable of producing massively parallel data unlike the Sanger method. (Next Generation Sequencer, 2nd Generation Sequencer) was developed. Next generation sequencing (NGS) is an analysis method that obtains the sequence of the entire genome by assembling the obtained sequencing fragment after reading the genome, which is a collection of all genes, into a myriad of fragments. Since the technology has been commercialized, as the related technology has developed rapidly, a large amount of genome information has been obtained in a short time, and it can be used for various research fields. In particular, as the cost and time of genome analysis decreases, the demand for genome analysis of various organisms is rapidly increasing.

특히, 2014년 10월 '나고야 의정서'가 발표됨에 따라 자국 생물자원의 중요성 및 가치가 대두되고 있으며, 이에 따라 해양생명자원의 확보 및 보전에 대한 국가차원의 체계적인 통합관리가 필요하다. 또한, 우리나라의 '해양생태계보전 및 관리에 관한 법률(2007)'에 따르면 원시성을 유지하고 있거나 해양생물 종 다양성이 풍부한 지역 등을 해양보호구역으로 지정하여 조사, 관찰 및 관리하는 기본계획 등을 규정한 바 있다. 수산자원 생물의 관리를 위해서는 우리나라 연근해 전역에 대한 두족류 종 조성 및 어종별 산란장 및 산란기 추정에 대한 조사가 필요하다. 또한 해양보호구역과 같은 정책 수립의 일환으로, 산란 및 성육장 파악이 필요하며 이를 위해 과학적인 종 조성 파악이 시급한 실정이다. In particular, with the announcement of the Nagoya Protocol in October 2014, the importance and value of biological resources in their own countries has emerged. Accordingly, the systematic integrated management at the national level on securing and preservation of marine life resources is necessary. In addition, Korea's Act on the Conservation and Management of Marine Ecosystems (2007) stipulates the basic plan for investigating, observing and managing marine protected areas by designating areas that maintain primitiveness or are rich in marine biodiversity. I've done it. For the management of aquatic resources, it is necessary to investigate the composition of cephalopod species and the spawning season and spawning season for the entire coastal waters of Korea. In addition, as part of establishing policies such as marine protected areas, it is necessary to identify spawning and breeding grounds.

따라서 NGS를 이용하여 상업종인 두족류를 분류 및 분석하기 위하여 DNA meta barcoding에 사용되는 많은 universal primer를 활용할 수 있지만, 분류학적으로 다앙한 생물이 혼재된 샘플에서 두족류 플랑크톤을 검출하기에는 몇 가지 문제점이 있다. 먼저 두족류는 플랑크톤 샘플 내에서 양이 매우 적기 때문에 상대적으로 양이 많은 다른 종들에 의해 검출되기 어려우며, 대부분의 범용 프라이머는 시퀀스가 잘 보존된 COI 영역을 타겟으로 하기 때문에 cross-reactivity에 의한 non-target species의 검출이 있을 수 있다. 따라서 플랑크톤 샘플에서 두족류를 높은 특이성으로 검출하기 위한 두족류-특이(cephalopod-specific, CPD-specific) 범용 프라이머 세트에 대한 필요성이 대두되고 있다. Therefore, many universal primers used for DNA meta-barcoding can be used to classify and analyze commercial cephalopods using NGS, but there are some problems in detecting cephalopod plankton in samples containing various taxonomic species. First, cephalopods are very low in plankton samples, making them difficult to detect by other relatively high species. Most general primers target non-targeted cross-reactivity because they target a well-conserved COI region. There may be detection of species. Therefore, there is a need for a cephalopod-specific (CPD-specific) universal primer set for detecting cephalopods in planktonic samples with high specificity.

이에 본 발명자들은 차세대 시퀀서(NGS)를 이용하여 분류학적으로 다양한 해양 생물이 혼재되어 있는 동물 플랑크톤 샘플에서 두족류만을 분류하기 위해 연구한 결과, Illumina Miseq sequencer로 분석이 가능한 최적화된 길이(465-471bp)의 신규한 두족류 분류용 범용 프라이머 세트를 디자인하였고 이를 이용하여 증폭된 DNA 서열을 Illumina Miseq sequencer로 분석한 결과, 기존의 시퀀싱 시스템에 비하여 두족류를 경제적이고 신속하며 대량으로 분류(classification)하며 정성적 분석뿐 아니라 정량적 분석이 가능함을 확인하여 본 발명을 완성하였다. Therefore, the present inventors studied to classify only cephalopods from a zooplankton sample containing taxonomically diverse marine organisms using a next-generation sequencer (NGS), and thus optimized length (465-471bp) that can be analyzed by Illumina Miseq sequencer. We have designed a new set of universal primers for the classification of cephalopods, and analyzed the amplified DNA sequences with Illumina Miseq sequencer, resulting in economical, rapid, mass-classification and qualitative analysis of cephalopods compared to conventional sequencing systems. As well as confirming that quantitative analysis is possible, the present invention has been completed.

따라서, 본 발명의 목적은 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 포함하는 두족류 분석 또는 분석을 위한 유전자 라이브러리 제작용 조성물, 상기 두족류 분석용 조성물을 포함하는 두족류 분석용 키트, 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 이용한 두족류 분석 방법 및 두족류 분석용 유전자 라이브러리 제작 방법을 제공하는 것이다. Accordingly, an object of the present invention is a composition for preparing a gene library for cephalopod analysis or analysis comprising a primer set consisting of the nucleotide sequences represented by SEQ ID NOs: 1 and 2, kit for analysis of cephalopods comprising the composition for analyzing cephalopods, sequence The present invention provides a method for analyzing cephalopods using a primer set consisting of base sequences represented by numbers 1 and 2 and a method for preparing a gene library for cephalopods.

상기와 같은 목적을 달성하기 위하여, 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 포함하는 두족류 분석용 조성물을 제공한다.In order to achieve the above object, there is provided a cephalopod analysis composition comprising a primer set consisting of the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 and 2.

또한 본 발명은 상기 조성물을 포함하는 두족류 분석용 키트를 제공한다. In another aspect, the present invention provides a kit for cephalopod analysis comprising the composition.

또한 본 발명은 (a) 샘플의 DNA를 추출하는 단계; (b) 상기 (a)의 DNA를 주형으로 하고 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 이용하여 증폭을 수행하는 단계; 및 (c) 상기 (b)의 증폭 산물에 대한 서열을 분석하는 단계; 를 포함하는 두족류 분석 방법을 제공한다. The present invention also comprises the steps of (a) extracting the DNA of the sample; (b) performing amplification using a primer set consisting of the nucleotide sequences represented by SEQ ID NOs: 1 and 2 as a template of the DNA of (a); And (c) analyzing the sequence for the amplification product of (b); Provides a cephalopod analysis method comprising a.

또한 본 발명은 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 포함하는, 두족류 분석을 위한 유전자 라이브러리 제작용 조성물을 제공한다.In another aspect, the present invention provides a composition for preparing a gene library for cephalopod analysis, comprising a primer set consisting of the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 and 2.

또한 본 발명은 (a) 샘플의 DNA를 추출하는 단계; (b) 상기 (a)의 DNA를 주형으로 하고 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 이용하여 증폭을 수행하는 단계; 및 (c) 상기 (b)의 증폭 산물에 대한 서열을 분석하는 단계; 를 포함하는, 두족류 분석용 유전자 라이브러리 제작 방법을 제공한다. The present invention also comprises the steps of (a) extracting the DNA of the sample; (b) performing amplification using a primer set consisting of the nucleotide sequences represented by SEQ ID NOs: 1 and 2 as a template of the DNA of (a); And (c) analyzing the sequence for the amplification product of (b); Provided, a method for producing a gene library for cephalopod analysis.

기존의 형태학적 분석과는 달리 본 발명의 CPD 범용 프라이머 세트를 이용하면 두족류 플랑크톤을 따로 분리하지 않더라도 혼재된 샘플에서 높은 특이성으로 두족류를 분류할 수 있다. 또한 본 발명의 CPD 범용 프라이머 세트를 이용할 경우, 기존의 시퀀싱 시스템에 비하여 두족류에 대한 정성적·정량적 분석을 경제적이고 신속하게 대량으로 분석할 수 있는 효과가 있다. 따라서, 본 발명의 프라이머 세트는 두족류, 두족류의 산란장 및 성육장 조사 및 해양 생태계 조사, 먹이 생물 분석, 생태계 교란 및 외래 유입종에 대한 분석 등과 가공식품의 원재료 분석에도 사용이 가능하며 대규모 수산생물의 유통의 원산지 및 동정에도 이용이 가능하다. 또한 기존의 두족류 분석용 유전자 라이브러리를 이용할 수 있을 뿐 아니라, 새로운 두족류 분석용 유전자 라이브러리를 구축함으로 좀 더 정확한 두족류의 종 동정에 이용할 수 있다. Unlike conventional morphological analysis, the CPD universal primer set of the present invention can classify cephalopods with high specificity in mixed samples without separating cephalopod plankton. In addition, when using the CPD universal primer set of the present invention, there is an effect that can be economically and quickly mass analysis of qualitative and quantitative analysis of cephalopods compared to the existing sequencing system. Therefore, the primer set of the present invention can be used for cephalopods, cephalopods spawning and breeding and marine ecosystem investigation, food bioanalysis, ecosystem disturbance and analysis of foreign invasive species and raw material analysis of processed foods, It can also be used for origin and identification of distribution. In addition, the existing cephalopod analysis gene library can be used, as well as a new cephalopod analysis gene library can be used to identify more precise cephalopod species.

도 1은 분석을 위한 샘플을 추출한 한국 해역의 258개의 정점을 나타낸 도이다.
도 2는 본 발명의 범용 프라이머 세트를 이용하여 해양 생물이 혼재된 샘플에서 두족류만을 특이적으로 검출할 수 있는지 여부를 확인한 전기영동 결과를 나타낸 도이다.
도 3은 2016년 월별 난자치어 샘플에서 본 발명의 프라이머 세트를 이용하여 확인한 두족류 조성을 그래프로 나타낸 도이다.
도 4는 CPD 범용 프라이머 세트를 이용한 한국 해역 내 두족류를 계통학적으로 분석한 결과를 나타낸 도이다.
도 5는 두족류 우점종 3종에 대한 월별 표준 단상형(haplotype)을 분석하기 위한 단상형간 비율의 분석한 결과를 나타낸 도이다.
1 is a diagram showing 258 vertices of a Korean sea area from which samples for analysis are extracted.
2 is a diagram showing the results of electrophoresis confirming whether only cephalopods can be specifically detected in a mixed sample of marine organisms using the universal primer set of the present invention.
Figure 3 is a graph showing the cephalopod composition confirmed using the primer set of the present invention in 2016 monthly egg fry samples.
Figure 4 is a diagram showing the results of systematic analysis of cephalopods in the Korean sea area using the CPD universal primer set.
Figure 5 is a diagram showing the results of the analysis of the ratio between the single phase for analyzing the monthly standard haplotype for three cephalopod dominant species.

본 발명은 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 포함하는 두족류 분석용 조성물을 제공한다.The present invention provides a cephalopod analysis composition comprising a primer set consisting of the nucleotide sequences represented by SEQ ID NOs: 1 and 2.

이하, 본 발명을 더욱 상세히 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in more detail.

본 발명에 있어서 "프라이머"는 카피하려는 핵산 가닥에 상보적인 단일 가닥 올리고뉴클레오티드 서열을 말하며, 프라이머 연장 산물의 합성을 위한 개시점으로서 작용할 수 있다. 상기 프라이머의 길이 및 서열은 연장 산물의 합성을 시작하도록 허용해야 한다. 프라이머의 구체적인 길이 및 서열은 요구되는 DNA 또는 RNA 표적의 복합도(complexity)뿐만 아니라 온도 및 이온 강도와 같은 프라이머 이용 조건에 의존할 것이다.As used herein, "primer" refers to a single stranded oligonucleotide sequence that is complementary to the nucleic acid strand to be copied and may serve as a starting point for the synthesis of a primer extension product. The length and sequence of the primers should allow to start the synthesis of extension products. The specific length and sequence of the primer will depend on the primer utilization conditions such as temperature and ionic strength as well as the complexity of the DNA or RNA target required.

본 발명에 있어서 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트는 두족류 미토콘드리아 DNA의 사이토크롬(cytochrome) b와 ND6 영역을 타겟으로 하여, 두족류나 갑각류 등 분류학적으로 다양한 해양 생물이 혼재되어 있는 동물플랑크톤 샘플에서 미량으로 존재하는 두족류만을 특이적으로 검출할 수 있다.In the present invention, the primer set consisting of the nucleotide sequences represented by SEQ ID NOs: 1 and 2 targets cytochrome b and ND6 regions of cephalopod mitochondrial DNA, and various taxonomic species such as cephalopods and crustaceans are mixed. Only cephalopods present in trace amounts in a zooplankton sample present can be specifically detected.

본 발명의 상기 프라이머 세트는 증폭된 PCR 산물이 차세대 시퀀서(NGS)를 이용하여 두족류를 분류하기 위해 최적 크기의 비교 서열을 얻을 수 있도록 서열을 증폭하는 것을 특징으로 할 수 있으며, 바람직하게는 300bp 내지 600bp의 PCR 산물을 증폭할 수 있고, 더욱 바람직하게는 465 내지 471 bp의 PCR 산물을 증폭하여 NGS에 최적화 될 수 있다. 300bp 내지 600bp의 유전자를 증폭하는 경우, 기존의 증폭 방법 대비 더 긴 서열의 분석이 가능하여 종 분석의 정확도가 증가될 수 있다.The primer set of the present invention may be characterized by amplifying a sequence so that the amplified PCR product can obtain a comparative size of an optimal size for classifying cephalopods using a next generation sequencer (NGS), preferably from 300bp to The 600 bp PCR product can be amplified, and more preferably, 465 to 471 bp amplified PCR product can be optimized for NGS. When amplifying the gene of 300bp to 600bp, it is possible to analyze the longer sequence than the conventional amplification method can increase the accuracy of species analysis.

본 발명의 프라이머 세트는 샘플 중에 존재하는 다양한 종의 두족류의 유전자를 공통적으로 증폭하는 것을 특징으로 할 수 있다. 본 발명의 프라이머 세트를 이용하면 1 내지 100종의 두족류의 유전자를 증폭할 수 있으며, 바람직하게는 1 내지 70종의 두족류의 유전자를 증폭할 수 있다. 본 발명에 있어 증폭 대상 두족류는 이에 제한되는 것은 아니나, 바람직하게는 하기 표 1에서 선택된 1종 이상일 수 있다.The primer set of the present invention may be characterized by amplifying common genes of cephalopods of various species present in the sample. By using the primer set of the present invention, it is possible to amplify 1 to 100 kinds of cephalopod genes, preferably 1 to 70 kinds of cephalopod genes. In the present invention, the cephalopod to be amplified is not limited thereto, but may be at least one selected from Table 1 below.

[표 1]TABLE 1

Figure 112018021606536-pat00001
Figure 112018021606536-pat00001

본 발명의 프라이머 세트는 차세대 시퀀서(Next Generation Sequencer, NGS) 분석용도에 사용될 수 있다.The primer set of the present invention can be used for Next Generation Sequencer (NGS) analysis.

본 발명의 프라이머 세트는 Cephalopoda(두족강)를 제외한 어떠한 다른 분류군의 서열도 증폭하지 않는다. 따라서, 본 발명의 프라이머 세트를 이용하면 데이터베이스 부족으로 인한 unidentified를 제외하고, 전체 서열의 87 % 이상이 종(species) 수준, 0.8 %가 속(genus) 수준으로 식별되면서 종 확인을 위한 충분한 종 내 variation을 포함하여 두족류를 진단 가능한 것을 특징으로 한다. 또한 본 발명의 프라이머 세트를 이용하면 표준 단상형(haplotype)을 분석할 수 있으며, 두족류의 종류, 두족류의 비율, 및 두족류의 표준 단상형(haplotype) 분석으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상의 분석이 가능하다.The primer set of the present invention does not amplify the sequences of any other taxa except Cephalopoda. Thus, with the primer set of the present invention, except for unidentified due to lack of database, more than 87% of the entire sequence is identified as species level, 0.8% as genus level, and enough species for species identification are identified. Cephalopods can be diagnosed, including variations. In addition, the primer set of the present invention can be used to analyze standard haplotypes, and one or more types of analysis selected from the group consisting of the types of cephalopods, the ratio of cephalopods, and the standard haplotype analysis of cephalopods are possible. Do.

상기 "분석"은 "정량적 분석" 및 "정성적 분석"으로 나눌 수 있으며, 상기 "정량적 분석"은 혼합된 샘플상에서 특정 분류군이 어떤 비율을 차지하는지를 알아내는 것을 말한다. "정성적 분석"은 혼합된 샘플상에서 어떠한 생물종이 있는지 확인할 수 있음을 뜻한다. The "analysis" can be divided into "quantitative analysis" and "quantitative analysis," "quantitative analysis" refers to finding out what proportion of a particular taxon on a mixed sample. "Qualitative analysis" means that you can identify what species are on the mixed sample.

또한 본 발명은 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 포함하는 두족류 분석용 조성물을 포함하는 두족류 분석용 키트를 제공한다. In another aspect, the present invention provides a cephalopod analysis kit comprising a cephalopod analysis composition comprising a primer set consisting of the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 and 2.

본 발명의 키트는 증폭 반응을 수행하기 위한 시약을 포함할 수 있으며, 내열성 DNA 중합효소, dNTPs, 버퍼 등을 포함할 수 있다. 또한, 본 발명의 키트는 최적의 반응 수행 조건을 기재한 사용자 안내서를 추가로 포함할 수 있다. 안내서는 키트 사용법, 예를 들면, PCR 완충액 제조 방법, 제시되는 반응 조건 등을 설명하는 인쇄물이다. 안내서는 팜플렛 또는 전단지 형태의 안내 책자, 키트에 부착된 라벨, 및 키트를 포함하는 패키지의 표면상에 설명을 포함한다. 또한, 안내서는 인터넷과 같이 전기 매체를 통해 공개되거나 제공되는 정보를 포함한다.The kit of the present invention may include a reagent for performing an amplification reaction, and may include heat resistant DNA polymerase, dNTPs, buffers, and the like. In addition, the kits of the present invention may further comprise a user guide describing the optimal reaction performance conditions. The guide is a printed document that explains how to use the kit, such as how to prepare a PCR buffer, and the reaction conditions presented. The instructions include brochures in the form of pamphlets or leaflets, labels affixed to the kit, and instructions on the surface of the package containing the kit. In addition, the guide includes information that is disclosed or provided through electronic media such as the Internet.

또한 본 발명은 (a) 시료의 DNA를 추출하는 단계; (b) 상기 (a)의 DNA를 주형으로 하고 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 이용하여 증폭을 수행하는 단계; 및 (c) 상기 (b)의 증폭 산물에 대한 서열을 분석하는 단계; 를 포함하는 두족류 분석 방법을 제공한다.In another aspect, the present invention (a) extracting the DNA of the sample; (b) performing amplification using a primer set consisting of the nucleotide sequences represented by SEQ ID NOs: 1 and 2 as a template of the DNA of (a); And (c) analyzing the sequence for the amplification product of (b); Provides a cephalopod analysis method comprising a.

상기 (b) 단계의 증폭은 중합효소연쇄반응(Polymerase Chain Reaction), 다중 중합효소연쇄반응(multiplex Polymerase Chain Reaction, multiplexPCR), 경쟁적 중합효소연쇄반응(competitive Polymerase Chain Reaction), 실시간 중합효소연쇄반응(real-time Polymerase Chain Reaction), 정량적 중합효소연쇄반응(Real-time QuantitativePolymerase Chain Reaction), DNA 칩(DNA chip), 등온증폭법(Loop-mediated isothermal amplification) 및 이들의 조합으로 이루어진 군으로부터 선택된 어느 하나의 방법을 이용할 수 있다.The amplification of step (b) includes polymerase chain reaction, multiplex polymerase chain reaction, multiplex PCR, competitive polymerase chain reaction, and real time polymerase chain reaction. any one selected from the group consisting of real-time polymerase chain reaction, real-time quantitative polymer chain reaction, DNA chip, loop-mediated isothermal amplification, and combinations thereof Can be used.

상기 (b)단계의 증폭은 PCR을 이용하여 15 내지 30회를 반복할 수 있으며, 바람직하게는 총 28회 반복하여 수행할 수 있다. 초기 변성은 94℃에서 30초; 변성은 94℃에서 30초, 51℃에서 30초, 72 ℃에서 30초씩 28회 반복 수행하였고, 최종 연장은 72℃에서 5분간 수행 할 수 있으나 이에 제한되지 않는다.The amplification of step (b) may be repeated 15 to 30 times using PCR, and preferably, a total of 28 times may be repeated. Initial denaturation at 94 ° C. for 30 seconds; The denaturation was repeated 30 times at 94 ° C., 30 seconds at 51 ° C., and 30 seconds at 72 ° C., and the final extension may be performed at 72 ° C. for 5 minutes, but is not limited thereto.

상기 (c) 단계에서 증폭 산물에 대한 서열의 분석은 차세대 시퀀서(NGS)를 이용할 수 있고, 상기 NGS의 분석 장비는 사용하는 화학 반응 및 염기서열 검출 원리 등 세부 기술에 따라 고유의 특성 및 장단점에 따라 다양한 플랫폼이 출시되었고, 그 예로, Illumina MiSeq sequencer, Illumina의 HiSeq sequencer, Roche 454 GS FLX+ sequencer, Thermo Fisher사의 Ion Torrent PGM sequencer 또는 Illumina Genome Analyser IIx sequencer 등이 있다.In the step (c), the analysis of the sequence for the amplification product may use a next-generation sequencer (NGS), and the analysis equipment of the NGS may have unique characteristics and advantages and disadvantages according to specific techniques such as chemical reaction and sequencing principle. Various platforms have been released, such as Illumina MiSeq sequencer, Illumina HiSeq sequencer, Roche 454 GS FLX + sequencer, Ion Torrent PGM sequencer from Thermo Fisher, or Illumina Genome Analyser IIx sequencer.

본 발명의 목적 상, Illumina MiSeq sequencer을 이용할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.For the purposes of the present invention, Illumina MiSeq sequencer can be used, but is not limited thereto.

본 발명에 있어서 상기 "Illumina Miseq sequencer"는 기존의 Sanger 방식과 달리 대량의 병렬 데이터 생산이 가능한 차세대 또는 제2세대 시퀀서(Next Generation Sequencer, 2nd Generation Sequencer) 기법을 이용하는 것 중 하나이다. 상기 NGS는 DNA 서열에 대한 증폭을 하고 그 후 형광 표식 등을 카메라로 찍어 이미지 처리를 하는 과정을 거쳐 염기를 읽어내는 것으로, 본 발명의 Illumina Miseq sequencer는 고체상 증폭(solid-phase amplification)을 사용한다. 본 발명의 Illumina Miseq sequencer는 대용량 시퀀서인 HiSeq의 기법 (chemistry)을 그대로 유지하면서 장비의 가격이 낮고 다양한 응용성을 가지고 있어 경제적이다. 기존의 454 sequencer를 이용했을 때 하나의 cyt.b-ND6 서열을 읽는데 드는 비용이 1센트 정도이라면 본 발명에서 적용하는 Illumina Miseq sequencer는 2 x 300bp 에서 0.02 센트로 약 50배 정도의 가격 경쟁력을 가지게 된다. In the present invention, the "Illumina Miseq sequencer" is one of using a next generation or second generation sequencer technique capable of producing a large amount of parallel data, unlike the conventional Sanger method. The NGS amplifies the DNA sequence, and then reads the base through a process of taking an image of a fluorescent marker or the like image, and the Illumina Miseq sequencer of the present invention uses solid-phase amplification. . Illumina Miseq sequencer of the present invention is economical because it has a low price and various applications while maintaining the chemistry of HiSeq, which is a large-capacity sequencer. If the cost of reading one cyt.b-ND6 sequence is about 1 cent using the existing 454 sequencer, the Illumina Miseq sequencer applied in the present invention is 2 x 300bp. At 0.02 cents, it is about 50 times more competitive.

또한 본 발명은 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 포함하는, 두족류 분석을 위한 유전자 라이브러리 제작용 조성물을 제공한다.In another aspect, the present invention provides a composition for preparing a gene library for cephalopod analysis, comprising a primer set consisting of the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 and 2.

상기 프라이머 세트를 이용하여 두족류 분석을 위한 두족류 DNA 유전자 풀(pool), 즉 유전자 라이브러리를 생성할 수 있다. 본 발명에서 ‘유전자 풀’은, 다수의 유전자로 구성된 유전자 집단을 말하며, 유전자 라이브러리와 상호교환하여 사용할 수 있다. 이때, 검색 대상인 유전자에서 변이 유전자의 존재 비율은 묻지 않는다. 예를 들어, 100%가 야생형 유전자일수 있고, 50%가 야생형 유전자이고 나머지 50%가 변이 유전자일 수 있다. 본 발명의 프라이머 세트는 1 내지 100종의 두족류의 유전자를 공통적으로 증폭함으로써, 두족류 분석을 위한 두족류 DNA 유전자 라이브러리를 효과적으로 형성하고 이를 이후 차세대 시퀀서를 이용한 분석 등에 사용할 수 있도록 할 수 있다.The primer set can be used to generate a cephalopod DNA gene pool, ie, a gene library, for cephalopod analysis. In the present invention, the "gene pool" refers to a gene population composed of a plurality of genes, and may be used interchangeably with a gene library. At this time, the presence ratio of the mutant gene in the gene to be searched is not asked. For example, 100% may be a wild type gene, 50% may be a wild type gene and the remaining 50% may be a variant gene. By primer amplification of 1 to 100 kinds of cephalopod genes in common, the primer set of the present invention can effectively form a cephalopod DNA gene library for cephalopod analysis and then use it for analysis using next-generation sequencers.

또한 본 발명은 (a) 샘플의 DNA를 추출하는 단계; (b) 상기 (a)의 DNA를 주형으로 하고 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 이용하여 증폭을 수행하는 단계; 및 (c) 상기 (b)의 증폭 산물에 대한 서열을 분석하는 단계; 를 포함하는, 두족류 분석용 유전자 라이브러리 제작 방법을 제공한다. The present invention also comprises the steps of (a) extracting the DNA of the sample; (b) performing amplification using a primer set consisting of the nucleotide sequences represented by SEQ ID NOs: 1 and 2 as a template of the DNA of (a); And (c) analyzing the sequence for the amplification product of (b); Provided, a method for producing a gene library for cephalopod analysis.

이하, 실시예를 통해 본 발명을 자세히 설명하도록 한다. 하기 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로서, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 자명할 것이다.Hereinafter, the present invention will be described in detail through examples. The following examples are only for illustrating the present invention in more detail, and the scope of the present invention is not limited by these examples according to the gist of the present invention to those skilled in the art. Will be self-evident.

실시예Example 1.  One. CPDCPD 범용  General purpose 프라이머primer 세트의 제작 및 두족류 종 분석 가부 확인 Fabrication of Set and Analysis of Cephalopod Species

1.1 샘플의 채집 및 DNA 추출1.1 Sample Collection and DNA Extraction

2016년 한국 해역의 258개의 정점에서 봉고 네트 (333 ㎛)를 이용하여 채집된 총 739개의 동물플랑크톤 샘플을 사용하였으며, 샘플을 채집한 정점을 도 1에 나타내었다. 알코올로 고정된 상기 채집된 샘플을 흐르는 물에 충분히 탈수 시켜준 후 전체 습중량의 1/2 무게에 대한 6배의 1X Lysis buffer를 넣어 균질화한 뒤 샘플의 genomic DNA를 추출하였다.In 2016, a total of 739 zooplankton samples collected using bongo nets (333 μm) were used at 258 vertices in Korea, and the vertices from which the samples were collected are shown in FIG. 1. The collected sample fixed with alcohol was sufficiently dehydrated in running water, homogenized with 6x 1X Lysis buffer with respect to 1/2 of the total wet weight and homogenized to extract genomic DNA of the sample.

1.2 1.2 CPDCPD 범용  General purpose 프라이머primer 세트의 설계 Design of sets

두족류를 분석하기 위하여 프라이머 세트를 디자인하였다. 비교하는 서열이 길면 길수록 더 많은 종, 혹은 개체군의 비교가 가능하기 때문에 Illumina Miseq sequencer를 이용한 최대의 길이를 확보하는 것이 중요하다. 따라서 Miseq 분석 시스템의 최대 판독 서열은 600 bp (300 + 300)인 바, 약 300~600 bp로 증폭하는 프라이머 세트에 대하여 두족류만을 특이적으로 분류 및 검출할 수 있는 영역을 찾았다. 구체적으로, 두족류 특이적 범용 프라이머를 디자인하기 위해 시퀀스 데이터를 이용하여, 두족류를 특이적으로 검출할 수 있는 두족류의 분류학적 위치 및 종을 분류하기에 충분한 매우 가변적인 미토콘드리아 DNA의 cytochrome b와 ND6 영역을 증폭하도록 CPD 범용 프라이머 세트를 설계하였다. 설계된 프라이머 세트를 서열번호 1 및 2로 나타내었다.Primer sets were designed to analyze cephalopods. The longer the sequence is compared, the more species or populations can be compared, so it is important to secure the maximum length using the Illumina Miseq sequencer. Therefore, the maximum reading sequence of the Miseq analysis system was 600 bp (300 + 300), and thus, a region capable of specifically classifying and detecting only cephalopods was found for a primer set amplifying at about 300 to 600 bp. Specifically, cytochrome b and ND6 regions of highly variable mitochondrial DNA sufficient to classify the taxonomic location and species of cephalopods capable of specifically detecting cephalopods using sequence data to design cephalopod specific universal primers. A CPD universal primer set was designed to amplify. The designed primer sets are shown in SEQ ID NOs: 1 and 2.

1.3 1.3 CPDCPD 범용  General purpose 프라이머primer 세트를 이용한 두족류의 진단 Diagnosis of Cephalopods Using Sets

그리고 상기 실시예 1.2에서 설계한 프라이머 세트를 사용하면 타겟인 두족류의 종을 보다 높은 분류학적 수준으로 진단할 수 있는지를 확인하기 위하여, 기존의 프라이머 세트인 16Sar, 16Sbr(Simon et al., 1994)과 본 발명의 프라이머 세트인 CPD 범용 프라이머 세트 간 샘플 내 두족류의 진단 수준을 측정하는 실험을 수행하였다. 상기 두쌍의 프라이머 세트의 종 간 유전적 거리를 계산하였으며, 이를 표 2에 나타내었다.In addition, in order to confirm whether the primer set designed in Example 1.2 can diagnose a target cephalopod species at a higher taxonomic level, the existing primer sets 16Sar and 16Sbr (Simon et al., 1994) Experiment was performed to measure the diagnostic level of cephalopods in the sample between the primer set of the present invention and the CPD universal primer set. Genetic distances between species of the two pairs of primer sets were calculated and are shown in Table 2.

[표 2]TABLE 2

Figure 112018021606536-pat00002
Figure 112018021606536-pat00002

표 2에서 나타난 바와 같이, 16Sar 및 16Sbr 프라이머 세트는 분석할 수 있는 두족류의 목(order), 과(family), 속(genus)의 평균 수준이 각각 0.084±0.012, 0.081±0.012, 0.083±0.011로 나타났으며, 본원 발명의 프라이머 세트 지역은 차례대로 0.131±0.015, 0.127±0.015, 0.116±0.014로 나타나는 것을 확인하였다. 평균 유전적 거리 값을 측정한 결과, 본원 발명의 프라이머 세트의 종 간 변이가 기존의 16S rRNA 영역보다 높은 것을 확인하였다. 따라서, cytocrome b 영역을 타겟으로 증폭하는 본원 발명의 프라이머 세트가 두족류 내의 종 간 식별을 우수한 수준으로 가능케 하는 것을 확인하였다. As shown in Table 2, the 16Sar and 16Sbr primer sets have an average level of 0.084 ± 0.012, 0.081 ± 0.012, and 0.083 ± 0.011, which can be analyzed for cephalopod order, family, and genus, respectively. It was confirmed that the primer set region of the present invention appears in order of 0.131 ± 0.015, 0.127 ± 0.015, 0.116 ± 0.014. As a result of measuring the average genetic distance value, it was confirmed that the species variation of the primer set of the present invention was higher than the existing 16S rRNA region. Therefore, it was confirmed that the primer set of the present invention, which amplifies the cytocrome b region as a target, enables an excellent level of identification between species in cephalopods.

실시예Example 2.  2. CPDCPD 범용  General purpose 프라이머primer 세트의 특이성 평가 Specificity evaluation of sets

상기 실시예 1.2에서 디자인한 프라이머 세트의 두족류에 대한 특이성과 효율성을 평가하기 위해 PCR을 수행하였다. PCR 조건은 94 ℃에서 3분, 94 ℃에서 30 초, 51℃ 에서 30초, 72 ℃에서 30초로 하는 사이클로 28회를 반복하였고, 마지막으로 72 ℃에서 5분을 두었다. Template는 두족류 플랑크톤 개체와 2016 년 한국 해역에서 채집된 난자치어 샘플의 각 genomic DNA 200ng을 사용하였다. CPD 범용 프라이머 세트 1 ㎕, 2 ㎕의 dNTPs(10 mM), 0.2 ㎕ 의 Ex Taq Hot Start Version(Takara Bio Inc. Japan), 2 ㎕의 10X Ex Taq buffer(TakaraBio Inc. Japan), 1 ㎕의 DMSO를 혼합하여 3차 증류수로 최종 볼륨을 20 ㎕에 맞춰 PCR을 수행하였다. 이후 PCR product를 AccuPrep  Gel PurificationKit (Bioneer. Korea)를 이용하여 정제한 후, 시퀀스를 얻어 염기서열 분석을 진행하였으며, 4개의 두족류 플랑크톤 개체와 4개의 혼합된 동물플랑크톤 샘플에 대하여 본 발명의 프라이머 세트를 이용하여 증폭한 PCR product를 1.5% 아가로스 겔에 두고 전기영동을 수행하였고, 이를 도 2에 나타내었다. PCR was performed to evaluate the specificity and efficiency of the cephalopods of the primer set designed in Example 1.2. PCR conditions were repeated 28 times in a cycle of 3 minutes at 94 ° C, 30 seconds at 94 ° C, 30 seconds at 51 ° C, and 30 seconds at 72 ° C, and finally 5 minutes at 72 ° C. The template used 200ng of each genomic DNA of cephalopod plankton individuals and eggs samples collected from Korean waters in 2016. 1 μl CPD universal primer set, 2 μl dNTPs (10 mM), 0.2 μl Ex Taq Hot Start Version (Takara Bio Inc. Japan), 2 μl 10X Ex Taq buffer (TakaraBio Inc. Japan), 1 μl DMSO PCR was performed by mixing 20 μl of the final volume with distilled water. AccuPrep PCR product   After purification using Gel PurificationKit (Bioneer. Korea), the sequence was obtained and subjected to sequencing. The PCR amplified using the primer set of the present invention on four cephalopod plankton individuals and four mixed zooplankton samples. The product was placed on a 1.5% agarose gel and subjected to electrophoresis, which is shown in FIG. 2.

도 2에 나타난 바와 같이, 본 발명의 CPD 범용 프라이머 세트를 이용하면 4개의 두족류 플랑크톤 개체와 4개의 혼합된 동물플랑크톤 샘플에서 모두 길이가 일정한 하나의 특이적인 amplicon이 나타나는 것을 확인하였다. 또한, 시퀀싱을 분석한 결과 레인 1번과 2번은 살오징어(Todarodes pacificus), 3번과 4번은 좀귀오징어(Sepiola birostrata)로 나타났으며, 5번 내지 6번 레인의 동물플랑크톤 샘플에서는 좀귀오징어가 69%, 살오징어가 24%, 매오징어(Watasenia scintillans)가 1%를 차지하는 것으로 나타났다. 즉, 본 발명의 CPD 범용 프라이머 세트를 이용하면 해양 생물이 혼재된 샘플에서 두족류만을 특이적으로 검출할 수 있으며, 또한 샘플을 구성하는 두족류의 종의 분석이 가능하여 혼재된 샘플 내에서 두족류만의 정성 및 정량적 분석이 가능함을 확인하였다. As shown in Figure 2, using the CPD universal primer set of the present invention it was confirmed that one specific amplicon of constant length in all four cephalopod plankton individuals and four mixed zooplankton samples. In addition, sequencing analysis indicated that lanes 1 and 2 were Todarodes. pacificus ), Nos. 3 and 4 were Sepiola birostrata , and in the zooplankton samples of lanes 5 to 6, 69% of squid, 24% of squid, and squid ( Watasenia) scintillans ) accounted for 1%. That is, using the CPD universal primer set of the present invention, it is possible to specifically detect only cephalopods in a sample mixed with marine organisms, and also to analyze the species of cephalopods constituting the sample so that only cephalopods in the mixed sample can be detected. It was confirmed that qualitative and quantitative analysis is possible.

실시예Example 3. 대용량 염기서열 분석 ( 3. Large sequencing NGSNGS )을 통한 한국 해역에 서식하는 두족류의 종 다양성 확인Species Diversity of Cephalopods in the Korean Sea

3.1 3.1 CPDCPD 범용  General purpose 프라이머primer 세트를 이용한 한국 해역 내 두족류의 종 월별 종 다양성의 진단 Diagnosis of Species Monthly Diversity of Cephalopods in the Korean Sea Area

본 발명의 CPD 범용 프라이머 세트를 이용하여 한국 해역에 서식하는 두족류의 종 다양성을 확인하기 위하여 실험을 수행하였다. 1차 PCR 조건은 94 ℃에서 3분, 94 ℃에서 30 초, 51℃ 에서 30초, 72 ℃에서 30초로 하는 사이클로 28회를 반복하였고, 마지막으로 72 ℃에서 5분을 두었다. 또한 PCR은 2016 년에 채집된 난자치어 샘플의 genomic DNA 200 ng과 각 1 ㎕, CPD 범용 프라이머 세트 1 ㎕, 2 ㎕의 dNTPs(10 mM), 0.2 ㎕ 의 Ex Taq Hot Start Version(Takara Bio Inc. Japan), 2 ㎕의 10X Ex Taq buffer(TakaraBio Inc. Japan), 1 ㎕의 DMSO를 혼합하여 3차 증류수로 최종 볼륨을 20 ㎕에 맞춰서 수행하였다. 이후 PCR product를 AccuPrep  Gel PurificationKit (Bioneer. Korea)를 이용하여 정제하고, 2차 PCR에 사용하였다. 2차 PCR 온도조건을 annealing 온도 55℃를 제외하고 1차 PCR과 조건을 동일하게 하여 PCR을 수행하였으며, 15회 반복하여 증폭하였다. 이후, 증폭하여 수득한 PCR product는 1.5% 아가로스 겔 전기영동 후 겔을 잘라 AccuPrep  Gel PurificationKit (Bioneer, Korea) 로 정제하였다. MiSeq 플랫폼 (lllumina. USA)을 사용하여 염기서열 분석하기 위해 Nextera XT index Kit(lllumina, USA)를 사용하여 라이브러리를 제작하였으며 lllumina MiSeq (2 X 300 bp pair-ends)를 사용하여 염기서열 분석을 수행하였다. BLASTn 검색은 NCBI nt 데이터베이스를 이용하였고, 99 % 이상의 염기서열 동일성을 갖는 OTU의 경우 종(species)으로 지정하고, 90 %에서 98 % 사이의 염기서열들은 속 (genus)으로 지정하였다. 90 % 미만의 염기서열 동일성을 갖는 OTU는 "미확인(unidentified)"으로 지정하였다. 상기 염기서열 분석 수행한 결과를 표 3 및 도 3에 나타내었다. Experiments were carried out to identify species diversity of cephalopods inhabiting Korean waters using the CPD universal primer set of the present invention. The first PCR conditions were repeated 28 times in a cycle of 3 minutes at 94 ° C, 30 seconds at 94 ° C, 30 seconds at 51 ° C, and 30 seconds at 72 ° C, and finally 5 minutes at 72 ° C. In addition, PCR was carried out in 2016, 200 ng of genomic DNA and 1 μl each of the larval larvae samples, 1 μl of CPD universal primer set, 2 μl of dNTPs (10 mM), 0.2 μl of Ex Taq Hot Start Version (Takara Bio Inc. Japan), 2 μl of 10 × Ex Taq buffer (TakaraBio Inc. Japan), 1 μl of DMSO, were mixed with tertiary distilled water to a final volume of 20 μl. AccuPrep PCR product   Purification was performed using Gel PurificationKit (Bioneer. Korea) and used for secondary PCR. The PCR was performed under the same conditions as the first PCR except the annealing temperature of 55 ° C., and the amplification was repeated 15 times. Thereafter, the PCR product obtained by amplification was purified by AccuPrep Gel PurificationKit (Bioneer, Korea) after cutting the gel after 1.5% agarose gel electrophoresis. Libraries were prepared using the Nextera XT index Kit (lllumina, USA) for sequencing using the MiSeq platform (lllumina. USA) and sequencing was performed using lllumina MiSeq (2 X 300 bp pair-ends). It was. The BLASTn search was performed using the NCBI nt database, and in the case of OTUs having more than 99% sequence identity, the species was designated as a species, and the sequences between 90% and 98% were designated as the genus. OTUs with less than 90% sequence identity were designated "unidentified". The results of the sequencing analysis are shown in Table 3 and FIG. 3.

[표 3]TABLE 3

Figure 112018021606536-pat00003
Figure 112018021606536-pat00003

표 3 및 도 3에 나타난 바와 같이, NGS를 이용하여 시퀀싱을 수행한 결과, 월별 난자치어 샘플에서 6개의 과 수준, 10개의 속 수준, 6개의 종 수준으로 두족류를 분석할 수 있었다. 전체적으로 매오징어의 비율이 전체의 65 %로 높게 나타났으며, 16 %의 좀귀오징어, 9 %의 살오징어 순으로 비율이 나타나 국내 해역에 상기와 같은 비율로 두족류가 존재하고 있음을 확인하였다. 작은 꼴뚜기(Loliolus uyii)는 8월에만 나타났으며, 8월이 종 다양성을 나타내는 Shannon-Wiener index 지수가 1.271로 가장 높아 다양한 두족류 종이 서식하는 달임을 확인하였다. 상기와 같은 결과로, 분류학적으로 다앙한 생물이 혼재된 샘플에서 본 발명의 CPD 범용 프라이머 세트를 이용하면 cross-reactivity없이 한국 해역에 서식하는 두족류의 종 다양성 분석이 가능함을 확인하였다. As shown in Table 3 and FIG. 3, sequencing was performed using NGS. As a result, the cephalopods could be analyzed at six oval levels, ten genus levels, and six species levels in the monthly egg fry samples. In general, the percentage of squid was high in 65% of the whole, followed by 16% of the squid and 9% of the cuttlefish. Small locust uyii ) appeared only in August, confirming that August is the month in which various cephalopod species live, with the highest Shannon-Wiener index index of 1.271. As a result, it was confirmed that species diversity analysis of cephalopods inhabiting Korean waters without cross-reactivity was possible using the CPD universal primer set of the present invention in samples mixed with various taxonomic organisms.

3.2 3.2 CPDCPD 범용  General purpose 프라이머primer 세트를 이용한 한국 해역 내 두족류의 계통학적 분석 Phylogenetic Analysis of Cephalopods in the Korean Waters Using the Set

상기 실시예 3.1에서 분석한 종 다양성을 기초로 한국 해역 내 존재하는 두족류의 데이터베이스 구축을 위하여 두족류를 계통학적으로 분석하였다. 월별로 분석한 샘플의 전체 contig의 10 % 이상을 차지하는 genotype을 표준 OTU로 선정하여 계통수(phylogenetic tree)를 작성하였으며, 이를 도 4에 나타내었다.  Cephalopods were systematically analyzed to build a database of cephalopods existing in Korean waters based on the species diversity analyzed in Example 3.1. Genotypes occupying more than 10% of the total contig of the samples analyzed monthly were selected as the standard OTU to prepare a phylogenetic tree, which is shown in FIG. 4.

도 4에서 나타난 바와 같이, 본 발명의 CPD 범용 프라이머 세트를 이용하면 총 50개의 표준 OTU를 각 분류군에 따라 두족류를 총 7개 과와 상기 과의 하위 속 및 종으로 구분하여 분석할 수 있음을 확인하였다. As shown in Figure 4, using the CPD universal primer set of the present invention, a total of 50 standard OTU can be analyzed by dividing the cephalopods into a total of seven families and sub-genus and species of the family according to each taxonomy It was.

3.3 3.3 CPDCPD 범용  General purpose 프라이머primer 세트를 이용한 한국 해역 내 두족류 우점종 3종에 대한 단상형( Single Phases of Three Cephalopod Dominant Species in the Korean Sea haplotypehaplotype ) 진단) Diagnosis

한국 해역 내 주요 두족류 우점종 3종에 대하여 월 별로 어떤 haplotype이 표준 haplotype인지 확인하기 위하여 본 발명의 CPD 프라이머 세트를 이용하여 그 비율을 분석하였다. 표준 haplotype은 우점종 3종에 대해 월별로 분석한 샘플의 전체 contig의 10 % 이상을 차지하는 genotype을 표준 haplotype으로 선정하였으며, 그 월별 비율을 확인한 결과를 도 5에 나타내었다. To determine which haplotype is the standard haplotype for each of the three major cephalopod dominant species in Korea, the ratio was analyzed using the CPD primer set of the present invention. As a standard haplotype, genotypes that occupy more than 10% of the total contig of monthly samples of three dominant species were selected as standard haplotypes, and the results of confirming the monthly ratio are shown in FIG. 5.

도 5에 나타난 바와 같이, 살오징어 (Todarodes pacificus)의 경우 11월에는 하나의 표준 haplotype만을 가지는 것으로 나타났고, 또한 11월의 genotype들은 다른 달과는 뚜렷이 구분되면서 11월의 population이 다른 달의 population과는 확연하게 차이가 나는 것을 확인하였다. 또한 매오징어 (Watasenia scintillans)의 경우 표준 haplotype이 5종으로 가장 다양한 표준 haplotype이 나타나는 것을 확인하였다. 좀귀오징어 (Sepiola birostrata)의 경우, 표준 haplotype 2가 6월에 70%정도 차지하였으며, 11월에는 표준 haplotype 3이 특이적으로 많이 차지하는 것을 확인하였다. 따라서, 상기와 같은 결과를 바탕으로 본원 발명의 CPD 범용 프라이머 세트를 이용하면 두족류에 있어 특정 기간의 두족류에서 표준 haplotype까지 분석할 수 있는 것을 확인할 수 있었다. As shown in Figure 5, cuttlefish ( Todarodes pacificus ) showed only one standard haplotype in November, and the genotypes of November were distinct from other months, and the population of November was clearly different from that of other months. In the case of squid ( Watasenia scintillans ), five standard haplotypes were identified as the most diverse standard haplotypes. Little Squid ( Sepiola) In case of birostrata ), the standard haplotype 2 accounted for 70% in June and the standard haplotype 3 occupied in November. Therefore, based on the above results, using the CPD universal primer set of the present invention, it was confirmed that cephalopods can be analyzed from the cephalopods of a specific period to the standard haplotype.

상기 실험으로부터 본원 발명의 CPD 범용 프라이머 세트는 두족류의 목, 과, 속, 종 수준까지 분석이 가능하며, 다수의 종이 혼재되어 있는 샘플로부터 두족류만을 특이적으로 검출함과 동시에 샘플 내에 포함된 양까지 검출할 수 있음을 확인하였다. 또한 본 발명의 CPD 범용 프라이머 세트는 두족류의 분석을 위한 유전자 라이브러리 제작용 조성물로 이용할 수 있으며, 동시에 두족류에 관하여 유전적 다양성의 연구에 활용될 수 있음을 확인하였다. From the above experiments, the CPD universal primer set of the present invention can be analyzed up to the neck, family, genus, and species level of cephalopods, and specifically detects only cephalopods from a mixture of multiple species, up to the amount contained in the sample. It was confirmed that it could be detected. In addition, the CPD universal primer set of the present invention can be used as a composition for preparing a genetic library for the analysis of cephalopods, and at the same time it was confirmed that it can be used for the study of genetic diversity with respect to cephalopods.

비록 본 발명이 상기에 언급된 바람직한 실시예로서 설명되었으나, 발명의 요지와 범위로부터 벗어남이 없이 다양한 수정이나 변형을 하는 것이 가능하다. 또한 첨부된 청구 범위는 본 발명의 요지에 속하는 이러한 수정이나 변형을 포함한다.Although the present invention has been described as the preferred embodiment mentioned above, it is possible to make various modifications or variations without departing from the spirit and scope of the invention. The appended claims also cover such modifications and variations as fall within the spirit of the invention.

<110> Pukyong National University Industry-University Cooperation Foundation <120> The primer set for analysis of Cephalopoda and methods for their qualitative and quantitative analysis <130> 1-49P <160> 2 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 17 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward primer sequence of cephalopod-specific universal primer set <400> 1 gayatytgnc cycadgg 17 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse primer sequence of cephalopod-specific universal primer set <400> 2 atttgytayt aytgtgangg 20 <110> Pukyong National University Industry-University Cooperation Foundation <120> The primer set for analysis of Cephalopoda and methods for their          qualitative and quantitative analysis <130> 1-49P <160> 2 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 17 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward primer sequence of cephalopod-specific universal primer          set <400> 1 gayatytgnc cycadgg 17 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> Reverse primer sequence of cephalopod-specific universal primer          set <400> 2 atttgytayt aytgtgangg 20

Claims (12)

서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 포함하고, 상기 프라이머 세트는 차세대 시퀀서(Next Generation Sequencer, NGS) 분석용이며, 두족류의 종류, 두족류의 비율, 및 두족류의 표준 단상형(haplotype) 분석으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 분석하는 것인, 두족류 분석용 조성물.A primer set consisting of the nucleotide sequences represented by SEQ ID NOs: 1 and 2, wherein the primer set is for analysis of Next Generation Sequencer (NGS) and includes the types of cephalopods, the ratio of cephalopods, and the standard single-phase type of cephalopods ( haplotype) to analyze at least one selected from the group consisting of, cephalopod analysis composition. 제1항에 있어서, 상기 프라이머 세트는 두족류의 미토콘드리아 DNA의 사이토크롬 비(cytochrome b) 및 ND6(NADH dehydrogenase subunit6)영역을 증폭하는 것을 특징으로 하는, 두족류 분석용 조성물.The cephalopod analysis composition according to claim 1, wherein the primer set amplifies the cytochrome b and ND6 (NADH dehydrogenase subunit6) regions of the cephalopod mitochondrial DNA. 제1항에 있어서, 상기 프라이머 세트는 300 내지 600bp의 PCR 산물을 증폭하는 것을 특징으로 하는, 두족류 분석용 조성물. According to claim 1, wherein the primer set is characterized in that for amplifying the PCR product of 300 to 600bp, cephalopod analysis composition. 제1항에 있어서, 상기 프라이머 세트는 1 내지 100종 두족류의 유전자를 증폭하는 것을 특징으로 하는, 두족류 분석용 조성물. The cephalopod analysis composition of claim 1, wherein the primer set amplifies a gene of 1 to 100 cephalopods. 제1항에 있어서, 상기 프라이머 세트는 하기 표 1에서 선택된 1종 이상의 두족류 유전자를 증폭하는 것을 특징으로 하는, 두족류 분석용 조성물.
[표 1]
Figure 112018021606536-pat00004
According to claim 1, wherein the primer set is characterized in that for amplifying one or more cephalopod genes selected from Table 1, cephalopod analysis composition.
TABLE 1
Figure 112018021606536-pat00004
삭제delete 삭제delete 제1항 내지 제5항 중 어느 한 항의 조성물을 포함하며, 두족류의 종류, 두족류의 비율, 및 두족류의 표준 단상형(haplotype) 분석으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 분석하는 것인 두족류 분석용 키트.
For analysis of cephalopods comprising the composition of any one of claims 1 to 5 and analyzing one or more selected from the group consisting of cephalopod types, proportions of cephalopods, and standard haplotype analysis of cephalopods. Kit.
(a) 샘플의 DNA를 추출하는 단계;
(b) 상기 (a)단계의 DNA를 주형으로 하고 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 이용하여 증폭을 수행하는 단계; 및
(c) 상기 (b)단계의 증폭 산물에 대한 서열을 차세대 시퀀서(Next Generation Sequencer, NGS)를 이용하여 분석하는 단계; 를 포함하는 두족류의 종류, 두족류의 비율, 및 두족류의 표준 단상형(haplotype) 분석으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 분석하는 것인 두족류 분석 방법.
(a) extracting the DNA of the sample;
(b) performing amplification using a primer set consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NOs: 1 and 2 as a template using the DNA of step (a); And
(c) analyzing the sequence for the amplification product of step (b) using a Next Generation Sequencer (NGS); Cephalopod analysis method comprising the analysis of one or more selected from the group consisting of the type of cephalopods, cephalopods, and the standard haplotype analysis of cephalopods.
삭제delete 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 포함하고, 상기 프라이머 세트는 차세대 시퀀서(Next Generation Sequencer, NGS) 분석용이며, 두족류의 종류, 두족류의 비율, 및 두족류의 표준 단상형(haplotype) 분석으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 분석하는 것인 두족류 분석을 위한 유전자 라이브러리 제작용 조성물.
A primer set consisting of the nucleotide sequences represented by SEQ ID NOs: 1 and 2, wherein the primer set is for analysis of Next Generation Sequencer (NGS) and includes the types of cephalopods, the ratio of cephalopods, and the standard single-phase type of cephalopods ( Haplotype) A composition for preparing a genetic library for cephalopod analysis that analyzes one or more selected from the group consisting of.
(a) 샘플의 DNA를 추출하는 단계;
(b) 상기 (a)단계의 DNA를 주형으로 하고 서열번호 1 및 2로 표시되는 염기서열로 이루어진 프라이머 세트를 이용하여 증폭을 수행하는 단계; 및
(c) 상기 (b)단계의 증폭 산물에 대한 서열을 차세대 시퀀서(Next Generation Sequencer, NGS)를 이용하여 분석하는 단계; 를 포함하는, 두족류의 종류, 두족류의 비율, 및 두족류의 표준 단상형(haplotype) 분석으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 분석하는 것인 두족류 분석용 유전자 라이브러리 제작 방법.
(a) extracting the DNA of the sample;
(b) performing amplification using a primer set consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NOs: 1 and 2 as a template using the DNA of step (a); And
(c) analyzing the sequence for the amplification product of step (b) using a Next Generation Sequencer (NGS); Method for producing a gene library for cephalopod analysis comprising a, a type of cephalopod, the ratio of cephalopods, and one or more selected from the group consisting of the standard haplotype analysis of cephalopods.
KR1020180025365A 2018-01-12 2018-03-02 The primer set for analysis of cephalopods and methods for their qualitativeand quantitative analysis KR102017236B1 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR20180004206 2018-01-12
KR1020180004206 2018-01-12

Publications (2)

Publication Number Publication Date
KR20190086333A KR20190086333A (en) 2019-07-22
KR102017236B1 true KR102017236B1 (en) 2019-09-02

Family

ID=67469182

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020180025365A KR102017236B1 (en) 2018-01-12 2018-03-02 The primer set for analysis of cephalopods and methods for their qualitativeand quantitative analysis

Country Status (1)

Country Link
KR (1) KR102017236B1 (en)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR102494431B1 (en) * 2020-12-03 2023-02-06 주식회사 바이오티엔에스 Composition for detecting cephalopod

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010004890A (en) 2009-08-24 2010-01-14 Nissin Foods Holdings Co Ltd Primer and method for detecting specific animal

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101196640B1 (en) * 2009-10-20 2012-11-02 (주)지노첵 Identifying Method of origin and species about squids, Polynucleotide Probe, DNA Chip and Kit for Identifying The Same
KR101802034B1 (en) * 2015-11-02 2017-11-27 롯데쇼핑주식회사 Method and kit for identifying species of squids using real-time PCR

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010004890A (en) 2009-08-24 2010-01-14 Nissin Foods Holdings Co Ltd Primer and method for detecting specific animal

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Maria Jose Chapela et al., Eur. Food. Res. Technol., 217, p.524-529, 2003.*
Sayed A. M. AMER et al., Biosci. Biotechnol. Biochem., 77(3), pp.577-581, 2013

Also Published As

Publication number Publication date
KR20190086333A (en) 2019-07-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Jensen et al. Genome‐scale target capture of mitochondrial and nuclear environmental DNA from water samples
Pappalardo et al. Geographically widespread swordfish barcode stock identification: a case study of its application
Persis et al. COI (cytochrome oxidase-I) sequence based studies of Carangid fishes from Kakinada coast, India
West et al. Development of a 16S metabarcoding assay for the environmental DNA (eDNA) detection of aquatic reptiles across northern Australia
Ratcliffe et al. Quantitative assessment of fish larvae community composition in spawning areas using metabarcoding of bulk samples
Domingues et al. From molecule to conservation: DNA-based methods to overcome frontiers in the shark and ray fin trade
KR101151757B1 (en) Identifying Method of jellyfish in Southern Sea of Korea, Polynucleotide Probe, DNA Chip and Kit for Identifying The Same
Sektiana et al. Characterization of the complete mitochondrial genome of Mauritian sardinella, Sardinella jussieu (Lacepède, 1803), collected in the Banten Bay, Indonesia
Lin et al. AFLP analysis on genetic diversity and population structure of small yellow croaker Larimichthys polyactis
KR102017236B1 (en) The primer set for analysis of cephalopods and methods for their qualitativeand quantitative analysis
KR101849993B1 (en) The primer set for analysis of zooplankton taxa and method of analyzing thereof
Stoeckle et al. GoFish: a streamlined environmental DNA presence/absence assay for marine vertebrates
McCusker et al. Microsatellite markers discriminate three species of North Atlantic wolffishes (Anarhichas spp.)
Barua et al. Molecular characterization and phylogenetic analysis of crabs (Crustacea: Decapoda: Brachyura) based on mitochondrial COI and 16S rRNA genes
Carvalho et al. Genomics in the discovery and monitoring of marine biodiversity
Andriyono et al. Molecular Identification and Phylogenetic Tree Reconstruction of Marine Fish Species from the Fishing Port of Kutaradja, Banda Aceh
Park et al. Development of a simple, rapid multiplex PCR method using the 16S rRNA gene to determine the country of origin of brackish water bivalve Corbicula japonica
Bolaji et al. DNA barcoding and misidentification of some marine fish species in Nigerian industrial trawl fishery
Shukla et al. Investigating the genetic diversity and presence of forensically informative nucleotide sequences in Indian antelope (Antilope cervicapra) using multiple genes of the mitochondrial genome
Jaser et al. Assessing illegal fishing and trade of Atlantic billfish and swordfish by DNA-based identification
Carreon-Martinez et al. The use of polymerase chain reaction for the identification of sciaenid eggs
KR102692154B1 (en) Composition for discriminating Cenchrus longispinus, and use thereof
Min et al. MiSebastes: An eDNA metabarcoding primer set for rockfishes (genus Sebastes)
Akbar John et al. DNA Barcoding of Rays from the South China Sea
Medlin et al. Molecular techniques to estimate biodiversity with case studies from the marine phytoplankton

Legal Events

Date Code Title Description
A201 Request for examination
E902 Notification of reason for refusal
E701 Decision to grant or registration of patent right
GRNT Written decision to grant