KR101869686B1 - 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 항염증 약학 조성물 - Google Patents
사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 항염증 약학 조성물 Download PDFInfo
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Abstract
과제: 부작용이 적거나 없으며, 효과가 우수한 염증 치료용 약제를 제공하는 것.
해결수단: 본 발명은 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1(CIAPIN1) 융합단백질을 포함하는 항염증 약학 조성물에 관한 것으로서, CIAPIN1 융합단백질은 투여량 및 처리시간 의존적으로 세포 내로 투과하였고, 투과된 CIAPIN1 융합단백질은 세포 내에서 24시간 동안 현저한 수준을 나타내었다. 또한, CIAPIN1 융합단백질은 LPS로 유도된 염증반응을 억제하였고, 세포로 투과되어 LPS 처리한 세포에서 염증을 완화하여 세포 보호효과를 나타내었다. 그뿐만 아니라, CIAPIN1 융합단백질은 동물모델에서 TPS로 유발된 피부 부종을 저해하여 피부 염증을 개선하였다. 이는 투과된 Tat-CIAPIN1 융합단백질이 세포사멸로부터 세포 보호효과가 있으며, 염증 치료효과가 있음을 말해준다.
해결수단: 본 발명은 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1(CIAPIN1) 융합단백질을 포함하는 항염증 약학 조성물에 관한 것으로서, CIAPIN1 융합단백질은 투여량 및 처리시간 의존적으로 세포 내로 투과하였고, 투과된 CIAPIN1 융합단백질은 세포 내에서 24시간 동안 현저한 수준을 나타내었다. 또한, CIAPIN1 융합단백질은 LPS로 유도된 염증반응을 억제하였고, 세포로 투과되어 LPS 처리한 세포에서 염증을 완화하여 세포 보호효과를 나타내었다. 그뿐만 아니라, CIAPIN1 융합단백질은 동물모델에서 TPS로 유발된 피부 부종을 저해하여 피부 염증을 개선하였다. 이는 투과된 Tat-CIAPIN1 융합단백질이 세포사멸로부터 세포 보호효과가 있으며, 염증 치료효과가 있음을 말해준다.
Description
본 발명은 세포투과성 CIAPIN1 융합단백질을 포함하는 항염증 약학 조성물에 관한 것이다.
활성산소종 (ROS; Reactive Oxygen Species)은 산소와의 상호작용 및 거대분자의 손상을 포함한 다양한 세포 대사과정의 부산물로 자연스럽게 생성된다. 활성산소종의 생성과 소멸 과정의 불균형으로 세포의 구조와 기능을 바꿈으로써 세포는 손상을 받으며, 장기간 활성산소종에 노출되면 과산화 지방질 생성, DNA 손상, 세포의 염증 및 사멸, 더 나아가 암, 알츠하이머병, 파킨슨병, 헌팅턴병, 염증반응 등 여러 가지 질환이 발병한다. 세포의 산화반응 조절 기능을 하는 활성산소종은 그것의 생성과 소멸이 균형을 맞추면서 면역 체계에 중요한 역할을 한다. 많은 연구자는 활성산소종에 의해 나타나는 염증 및 노화에 초점을 맞추고 있다. LPS (Lipopolysaccharide)는 그람 음성균 외부 막 구성요소로, 염증반응과 COX-2 (cyclooxygenase-2), 사이토카인 (IL-1β; IL-1 및 IL-6), TNF-α 및 활성산소종 생산을 유도한다. 이러한 염증성 매개자들은 다양한 염증성 질환의 발병과 밀접하게 관련되어 있다.
단백질 전달기술은 PTD (Protein Transduction Domain) 또는 CPP (Cell penetrating Peptide)라 불리는 대개 5~30개의 아미노산으로 구성된 펩타이드를 단백질이나 유전자 등의 고분자와 융합하여 포유류 세포 또는 조직 안으로 손쉽게 전달할 수 있는 새로운 개념의 전달 시스템이다. 비록 PTD 융합단백질의 구체적인 메커니즘은 아직 정확히 밝혀지지 않았지만, 치료용 단백질을 인 비트로와 인 비보로 전달하는데 사용되어 왔으며 매우 다양한 PTDs가 알려져 있다.
사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1(Cytokine induced apoptosis inhibitor 1; CIAPIN1)은 성장호르몬 의존적 조혈세포의 변이에서 발현되는 단백질로 처음 확인되었다. 또한, 최근의 연구결과는 CIAPIN1이 세포사멸 조절에서 중요한 역할을 수행하며, 마우스 분화 중 최종적인 혈액생성에 필수적인 세포사멸 결정인자로 여겨진다. 또한, CIAPIN1은 중추신경계에 널리 분포하고 있다. 그러나 CIAPIN1은 세포사멸에 있어 중요한 역할을 한다고 알려져 있을 뿐 염증에 대한 메커니즘 및 기능은 알려지지 않았다.
본 발명은 피부염증을 비롯한 염증관련 질환에 유용한 항염증 약학 조성물을 제공하는 것을 목표로 한다.
본 발명자들은 세포 투과 도메인 중 하나인 HIV Tat을 CIAPIN1 단백질과 재조합하여 염증 동물 모델에서 산화 스트레스에 대하여 Tat-CIAPIN1 융합단백질의 보호효과에 대해 연구하였다. 그 결과, Tat-CIAPIN1 융합단백질이 산화 스트레스로 인한 세포사멸에 대해 보호효과를 나타냄을 확인하였으며 염증 질환 치료에 유용하게 쓰일 수 있는 가능성을 탐색하였다.
본 발명자들은 CIAPIN1 융합단백질이 세포 및 조직 내로 잘 투과하여 LPS로 유도되는 염증 및 산화 스트레스에 보호작용을 나타내는지를 시험하였다. 그 결과, Tat-CIAPIN1 융합단백질은 효과적으로 Raw264.7 세포 내로 투과하여 LPS로 유도되는 염증 및 세포사멸에 대해 현저한 세포 보호작용을 나타내었다. 그뿐만 아니라, 국소적용된 Tat-CIAPIN1 융합단백질은 TPA (12-O-tetradecanoylphorbol-13-acetate)로 유도된 귀 부종에 대해 현저한 개선효과를 나타냄으로써 Tat-CIAPIN1 융합단백질이 염증 질병에 대한 치료제로 이용 가능함을 밝혔다.
본 발명은 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1(CIAPIN1)의 N 말단 및/또는 C 말단 에 단백질 수송도메인이 공유결합된 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 항염증 약학 조성물, 염증 개선 화장료 조성물 및 염증 개선 효과를 나타내는 건강 기능성 식품 조성물에 관한 것이다.
본 발명은 상기 단백질 수송 도메인이 HIV Tat 펩타이드, Pep-1 펩타이드, 올리고라이신, 올리고아르기닌, 올리고(라이신, 아르기닌) 중 선택된 1종임을 특징으로 하는 CIAPIN1 융합단백질을 포함하는 염증 치료제 조성물에 관한 것이다.
그뿐만 아니라, 본 발명은 상기 CIAPIN1 융합단백질의 아미노산 서열이 서열번호 2임을 특징으로 하는 CIAPIN1 융합단백질을 포함하는 염증 치료제 조성물에 관한 것이다.
사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1(CIAPIN1) 융합단백질을 유효성분으로 함유하는 약제학적 조성물은 약제학적 분야에서 통상적으로 허용되는 담체와 함께 배합하여 통상적인 방법에 의해 경구, 외용제 또는 주사 형태로 제형화할 수 있다. 경구용 조성물로는 예를 들면 정제 및 젤라틴 캡슐이 있으며, 이들은 활성 성분 이외에도 희석제(예: 락토스, 덱스트로스, 수크로스, 만니톨, 솔비톨, 셀룰로즈 및/또는 글리신), 활탁제(예: 실리카, 탤크, 스테아르산 및 그의 마그네슘 또는 칼슘염 및/또는 폴리에틸렌 글리콜)를 함유하고, 정제는 또한 결합제(예: 마그네슘 알루미늄 실리케이트, 전분 페이스트, 젤라틴, 메틸셀룰로스, 나트륨 카복시메틸셀룰로스 및/또는 폴리비닐피롤리돈)를 함유하며, 경우에 따라서 붕해제(예: 전분, 한천, 알긴산 또는 그의 나트륨염) 또는 비등 혼합물 및/또는 흡수제, 착색제, 향미제 및 감미제를 함유하는 것이 바람직하다. 주사용 조성물은 등장성 수용액 또는 현탁액이 바람직하고, 언급한 조성물은 멸균되고/되거나 보조제(예: 방부제, 안정화제, 습윤제 또는 유화제 용액 촉진제, 삼투압 조절을 위함 염/또는 완충제)를 함유한다. 또한, 이들은 기타 치료적으로 유용한 물질을 함유할 수 있다.
이와 같이 제조된 약제학적 제제는 목적하는 바에 따라 경구로 투여하거나, 비경구 방식 즉, 정맥 내, 피하, 복강 내 투여 또는 국소적용할 수 있다. 용량은 일일 투여량 0.01㎍~100㎎/㎏을 1 내지 수회에 나누어 투여할 수 있다. 특정 환자에 대한 투여용량 수준은 환자의 체중, 연령, 성별, 건강상태, 투여시간, 투여방법, 배설율, 질환의 중증도 등에 따라 변화될 수 있다.
나아가, 본 발명은 상기 CIAPIN1 융합단백질을 유효성분으로 하고 약학적으로 허용되는 담체를 포함하는 것을 특징으로 하는 염증 치료에 유용한 약제학적 조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은 또한 CIAPIN1 단백질을 세포 내로 효율적으로 전달하기 위한 방법을 제공한다. 본 발명에 따른 CIAPIN1 단백질 분자의 세포 내 전달은 HIV Tat 단백질 수송 도메인이 공유결합된 형태의 융합단백질을 구성하여 수행된다. 그러나, 본 발명의 단백질 수송 도메인이 HIV Tat 펩타이드로만 한정되는 것은 아니고, HIV Tat의 아미노산 서열 일부 치환이나 부가, 결여로 HIV Tat 펩타이드와 유사한 기능을 하는 펩타이드를 제조하는 것이 본 발명이 속하는 분야에서 통상의 지식을 가진 당업자에게는 용이하므로, 7~15개의 아미노산으로 구성되고, 라이신 또는 아르기닌을 4개 이상 다수 포함하는 단백질 수송 도메인과 이로부터 아미노산 일부 치환으로 동일·유사한 단백질 수송기능을 수행하는 단백질 수송 도메인을 이용한 융합단백질도 본 발명의 범위에 속함은 자명하다고 할 것이다.
또한, 본 발명은 CIAPIN1 융합단백질을 유효성분으로 함유하는 화장료 조성물을 비롯한 피부 외용제 조성물을 제공한다. 본 발명의 CIAPIN1 융합단백질을 유효성분으로 하는 도포제는 통상적인 제조방법에 따라 어떤 형태로든 용이하게 제조할 수 있다. 일례로서 크림형 도포제를 제조함에 있어서는 일반적인 수중유형(O/W) 또는 유중수형(W/O)의 크림 베이스에 본 발명의 CIAPIN1 융합단백질을 함유하고 여기에 향료, 킬레이트제, 색소, 산화방지제, 방부제 등을 필요에 따라 사용하는 한편, 물성개선을 목적으로 단백질, 미네랄, 비타민 등 합성 또는 천연소재를 병용할 수 있다.
그뿐만 아니라, 본 발명의 CIAPIN1 융합단백질은 화장료로서 이용할 수 있는데, pH 조절제, 향료, 유화제, 방부제 등을 필요에 따라 부가하여 통상의 화장료 제조 방법으로 화장수, 젤, 수용성 파우더, 지용성 파우더, 수용성 리퀴드, 크림 또는 에센스 등으로 제형화할 수 있다.
그뿐만 아니라, 본 발명의 CIAPIN1 융합단백질은 염증 개선용 건강기능성 식품 조성물로 이용할 수 있으며, 해당 분야의 통상의 지식을 가진 자가 CIAPIN1 융합단백질에 일반적으로 건강기능성 식품 조성물에 널리 이용되는 곡물 분말, 채소, 해초, 과일 등의 분말, 기타 건강증진성분 및 필요에 따라 감미료 등을 가하여 분말상, 액상, 고형 등 다양한 제형의 건강기능성 식품 조성물을 제조할 수 있다.
본 발명의 상세한 설명 등에서 사용되는 주요 용어의 정의는 다음과 같다.
"Tat-CIAPIN1 융합단백질"이란 단백질 수송 도메인과 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1을 포함하며, 수송 도메인과 목표 단백질(즉, 본 발명에서는 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1을 의미함)의 유전적 융합이나 화학 결합으로 형성된 공유결합 복합체를 의미한다. 본 명세서에서는 "Tat-CIAPIN1", "Tat-CIAPIN1 융합단백질", "CIAPIN1 융합단백질", "사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질"과 혼용하였다.
"목표 단백질"이란 본래 표적 세포로 들어갈 수 없거나, 본래 유용한 속도로 표적 세포로 들어갈 수 없는 수송도메인 또는 이의 단편이 아닌 분자로서, 수송도메인과 융합되기 전의 분자 그 자체 또는 수송도메인-목표 단백질 복합체의 목표 단백질 부분을 의미한다. 목표 단백질로서는 폴리펩티드, 단백질, 펩타이드를 포함하며, 본 발명에서는 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1을 의미한다.
"융합단백질"이란 수송도메인 및 한 개 이상의 목표 단백질 부분을 포함하며, 수송도메인과 목표 단백질의 유전적 융합이나 화학 결합으로 형성된 복합체를 의미한다.
또한, 상기 "유전적 융합"이란 단백질을 코딩하는 DNA 서열의 유전적 발현을 통해서 형성된 선형, 공유결합으로 이루어진 연결을 의미한다.
또한, "표적 세포"란 수송도메인에 의해 목표 단백질이 전달되는 세포를 의미하는 것으로서, 표적 세포는 체내 또는 체외의 세포를 말한다. 즉, 표적 세포는 체내 세포, 다시 말하여 살아있는 동물 또는 인간의 장기 또는 조직을 구성하는 세포 또는 살아있는 동물 또는 인간에서 발견되는 미생물을 포함하는 의미이다. 또한, 표적 세포는 체외 세포, 즉 배양된 동물세포, 인체 세포 또는 미생물을 포함하는 의미이다.
본 발명에서의 "단백질 수송 도메인"은 고분자 유기화합물, 예컨대 펩타이드, 단백질 등과 공유결합을 이루어 별도의 수용체나 운반체, 에너지를 필요로 하지 않고 상기 유기화합물들을 세포 내로 도입시킬 수 있는 것을 말한다.
또한, 본 명세서에서는 단백질, 펩타이드, 유기화합물을 세포 내로 "도입"하는 것에 대하여 "운반", "침투", "수송", "전달", "투과", "통과"한다는 표현들과 혼용하였다.
본 발명은 또한, silent change에 따라 서열 내에서 하나 이상의 아미노산이 기능적으로 동등하게 작용하는 유사한 극성의 다른 아미노산(들)로 치환될 수 있다. 서열 내 아미노산 치환은 그 아미노산이 속하는 클래스의 다른 구성원들로부터 선택될 수 있다.
예컨대, 소수성 아미노산 분류는 알라닌, 발린, 류이신, 이소류이신, 페닐알라닌, 발린, 트립토판, 프롤린 및 메티오닌을 포함한다. 극성 중성 아미노산은 글리신, 세린, 트레오닌, 시스테인, 티로신, 아스파라긴 및 글루타민을 포함한다. 양성 염기성 아미노산은 아르기닌, 라이신 및 히스티딘을 포함한다. 음성 전하를 띤 산성 아미노산은 아스파르트산 및 글루탐산을 포함한다. 또한, 본 발명의 융합단백질과 아미노산 서열 간의 일정 범위의 상동성 예컨대 85-100% 범위 내의 동일 유사한 생물학적 활성을 갖는 절편 또는 이들의 유도체들도 본 발명의 권리범위에 포함된다.
본 발명에서 정의되는 염증질환이란 아토피 피부염을 포함하는 피부염증질환, 신경교종세포 등 신경세포 염증질환, 척추염, 요도염, 방광염, 신염, 신우신염, 혈관염, 비염, 인후염, 편도염, 급성통증 또는 염증성 장질환 등을 포괄적으로 이르는 표현이며, 바람직하게는 피부염증질환, 요도염, 방광염, 신염, 신우신염, 비염, 인후염, 편도염 또는 염증성 장질환 등을 포함하는 넓은 의미의 염증질환을 말한다.
본 발명의 CIAPIN1 융합단백질은 투여량 및 처리시간 의존적으로 세포 내로 투과하였고, 투과된 CIAPIN1 융합단백질은 세포 내에서 24시간 동안 현저한 수준을 나타내었다.
본 발명의 CIAPIN1 융합단백질은 LPS로 유도된 염증반응을 억제하였다.
또한, 본 발명의 CIAPIN1 융합단백질은 세포로 투과되어 LPS 처리한 세포에서 염증을 완화하여 세포 보호효과를 나타내었다.
그뿐만 아니라, 본 발명의 CIAPIN1 융합단백질은 동물모델에서 TPS로 유발된 피부 부종을 저해하여 피부 염증을 개선하였다.
도 1은 Tat-CIAPIN1 융합단백질의 발현 및 정제를 나타낸다. (A) Tat-CIAPIN1 융합단백질 구축 맵과 발현된 Tat-CIAPIN1 융합단백질의 다이아그램이다. (B) 정제된 Tat-CIAPIN1 융합단백질과 CIAPIN1 단백질은 12% SDS-PAGE와 토끼 항 폴리히스티딘 항체를 이용한 웨스턴 블롯으로 분석하였다.
도 2a 내지 도 2c는 Raw264.7 세포로의 Tat-CIAPIN1 융합단백질의 투과를 나타낸다. (도 2a) Tat-CIAPIN1 융합단백질 및 CIAPIN1 단백질(0.5~3μM)을 60분 동안 배양 배지에 처리하고, Tat-CIAPIN1 융합단백질 및 CIAPIN1 단백질(3μM)을 15~60분 동안 배양 배지에 처리하여 웨스턴 블롯으로 분석하였다. (도 2b) Tat-CIAPIN1 융합단백질의 안정성에 대하여 나타내었다. Raw264.7 세포는 1시간 동안 3μM의 Tat-CIAPIN1 융합단백질을 전처리하여 웨스턴 블롯으로 분석하였다. (도 2c) Tat-CIAPIN1 융합단백질의 세포 내 분포를 공초점 형광 현미경으로 가시화하였다. 크기 막대 = 50 ㎛.
도 3은 LPS로 유도된 활성산소종에 대한 Tat-CIAPIN1 융합단백질의 억제효과를 나타낸다. Raw264.7 세포는 Tat-CIAPIN1 융합단백질로 선처리한 후 LPS (1μM/㎖)를 가하였다. 세포 내 활성산소종 수준은 DCF-DA 염색 후 측정하였다. 형광 현미경 (Nikon eclipse 80i, Japan)을 이용하여 사진을 촬영하였고, 세포 내 형광강도는 ELISA 플레이트 판독기 (Labsystems Oy, Helsinki, Finland)로 측정하였다. 크기 막대 = 50 ㎛. *P < 0.01은 LPS 처리한 세포와 비교한 값이다.
도 4는 TPA로 유도되는 귀 부종에 대한 Tat-CIAPIN1 융합단백질의 저해효과를 나타낸다. 마우스 귀를 TPA (귀 한 쪽에 1 ㎍)로 하루 한 번 3일 동안 처리하였다. Tat-CIAPIN1 융합단백질은 TPA 처리 한 시간 후 3일간 마우스 귀에 국소 도포하였다. 조직학적 분석을 위해 귀 피부 절편을 제조하고, 헤마토자일린과 에오신으로 염색하였다. 크기 막대 = 25 ㎛.
도 2a 내지 도 2c는 Raw264.7 세포로의 Tat-CIAPIN1 융합단백질의 투과를 나타낸다. (도 2a) Tat-CIAPIN1 융합단백질 및 CIAPIN1 단백질(0.5~3μM)을 60분 동안 배양 배지에 처리하고, Tat-CIAPIN1 융합단백질 및 CIAPIN1 단백질(3μM)을 15~60분 동안 배양 배지에 처리하여 웨스턴 블롯으로 분석하였다. (도 2b) Tat-CIAPIN1 융합단백질의 안정성에 대하여 나타내었다. Raw264.7 세포는 1시간 동안 3μM의 Tat-CIAPIN1 융합단백질을 전처리하여 웨스턴 블롯으로 분석하였다. (도 2c) Tat-CIAPIN1 융합단백질의 세포 내 분포를 공초점 형광 현미경으로 가시화하였다. 크기 막대 = 50 ㎛.
도 3은 LPS로 유도된 활성산소종에 대한 Tat-CIAPIN1 융합단백질의 억제효과를 나타낸다. Raw264.7 세포는 Tat-CIAPIN1 융합단백질로 선처리한 후 LPS (1μM/㎖)를 가하였다. 세포 내 활성산소종 수준은 DCF-DA 염색 후 측정하였다. 형광 현미경 (Nikon eclipse 80i, Japan)을 이용하여 사진을 촬영하였고, 세포 내 형광강도는 ELISA 플레이트 판독기 (Labsystems Oy, Helsinki, Finland)로 측정하였다. 크기 막대 = 50 ㎛. *P < 0.01은 LPS 처리한 세포와 비교한 값이다.
도 4는 TPA로 유도되는 귀 부종에 대한 Tat-CIAPIN1 융합단백질의 저해효과를 나타낸다. 마우스 귀를 TPA (귀 한 쪽에 1 ㎍)로 하루 한 번 3일 동안 처리하였다. Tat-CIAPIN1 융합단백질은 TPA 처리 한 시간 후 3일간 마우스 귀에 국소 도포하였다. 조직학적 분석을 위해 귀 피부 절편을 제조하고, 헤마토자일린과 에오신으로 염색하였다. 크기 막대 = 25 ㎛.
아래에서는 구체적인 실시예를 들어 본 발명의 구성을 좀 더 자세히 설명한다. 그러나 본 발명의 범위가 실시예의 기재에만 한정되는 것이 아님은 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 자명하다.
재료
12-O-TPA (tetradecanoylphorbol-13-acetate)는 Sigma-Aldrich (St. Louis, MO, USA)에서 구입하였고, Ni2 + 나이트릴로트리아세트산 세파로즈 수퍼플로우 (Ni2 +-nitrilotri-acetic acid Sepharose superflow)는 Qiagen (Valencia, CA, USA)에서 구입하였다. DMEM (Dulbecco''s modified Eagle's medium)은 Lonza (Walkersville, MD, USA)에서 구입하였고, FBS와 항생제는 Gibco BRL에서 구입하였다. 합성 HIV-Tat 펩타이드는 Peptron (Daejeon, Korea)에서 구입하였고, 기본 항체와 액틴은 각각 Cell Signaling Technology (Beverly MA, USA) 및 Santa Cruz Biotechnology (Santa Cruz, CA, USA)에서 구입하였다. 다른 화학물질 및 시약들은 입수 가능한 최상급의 제품을 이용하였다.
Tat-
CIAPIN1
융합단백질
발현 및 정제
세포 침투성 HIV-1 Tat 발현 벡터는 종래 기술에 따라 본 연구실에서 제조하였다 (Kwon et al., 2000). 인간 CIAPIN1 단백질은 PCR로 증폭하였다. PCR 산물은 절단하여 용출하고 TA-클로닝 벡터에 연결하였다. 인간 CIAPIN1 cDNA를 포함하는 정제된 TA 벡터는 여섯 개의 히스티딘 오픈리딩 프레임과 함께 발현 벡터 내로 연결되어 발현벡터를 제조하였고, 이. 콜라이 DH5α 세포 내로 클로닝하였다. 유사한 방법으로 Tat 펩타이드를 융합하지 않은 대조군 CIAPIN1 단백질을 구축하고 발현하였다.
재조합 Tat-CIAPIN1 플라스미드는 이.콜라이 BL21 세포 (Novagen)로 형질변환되어 0.1mM의 IPTG (Duchefa, Haarlem, Netherlands)로 18℃에서 18시간 동안 발현을 유도하였다. 하비스트한 세포는 초음파 처리로 용균하고, Tat-CIAPIN1 융합단백질은 Ni2 +-나이트릴로트리아세트산 세파로즈 친화 크로마토그래피로 정제하였다. 염은 PD-10 컬럼 크로마토그래피 (Amersham, Brauncschweig, Germany)로 제거하였다. 단백질 농도는 소 혈청 알부민을 표준물질로 이용하여 브래드포드법으로 측정하였다 (Bradford, 1976).
Raw264
.7 세포에 Tat-
CIAPIN1
융합단백질의
형질도입
계대 배양한 Raw264.7 세포를 60mm 접시에 분주하여 37℃, 95% 습도, 5% CO2 조건에서 배양하였다. Tat-CIAPIN1 융합단백질 및 CIAPIN1 단백질의 세포투과 능력을 확인하기 위하여 1시간 동안 단백질을 다양한 농도 (0.5~3 μM)로 처리하였다. 또한, 단백질 (3 μM)을 처리 시간을 달리하여 15~60분간 처리하였다. Raw264.7 세포 내에 Tat-CIAPIN1 융합단백질이 얼마 동안 남아있는지 알아보기 위해 3 μM Tat-CIAPIN1 융합단백질을 처리하고, 특정 시간 (1~24시간)이 지난 후에 세포를 회수하였다.
웨스턴 블롯 분석
30~50 ㎍의 단백질을 5X 시료 완충액과 혼합하여 2분간 끓여 단백질 시료를 준비한 다음 15% 미니젤 (Hoefer Scientific , San Francisco, CA, USA) SDS-PAGE (sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis)를 이용하여 분자량에 따라 분리하였다. 전기영동이 끝난 후 나이트로셀룰로스 막으로 전기이동하고, 막은 0.1% Tween 20을 함유하는 TBS 완충액에 녹인 5% 탈지분유로 상온에서 1시간 동안 블로킹하였다. 단백질의 발현을 측정하기 위해 1차 항체를 1:500으로 PBS에 희석하여 상온에서 3시간 동안 반응시킨 후 TBS-T로 세정하였다. 2차 항체로는 호스래디쉬 퍼옥시데이즈가 결합된 항-토끼 IgG 또는 항-마우스 IgG를 1:10,000으로 PBS에 희석하여 상온에서 1시간 반응시켰다. TBS-T로 세척 후에 탐지 시약을 이용하여 각 단백질의 발현량을 확인하였다.
공촛점
형광 현미경 관찰
24 웰 플레이트에 커버 글라스를 각각 넣고 그 위에 세포를 분주하여 2시간 동안 배양하였다. 0.1 nM Tat-CIAPIN1 융합단백질과 CIAPIN1 단백질을 2시간 동안 Raw264.7 세포에 형질도입한 후, PBS로 3번 세척하였다. 각 웰에 4% 파라포름알데하이드를 넣고 5분 동안 세포를 고정한 후, PBS를 넣어 짧게 세 번 세척하였다. 3% BSA, 0.1% Triton X-100이 함유된 PBS (PBS-BT)로 실온에서 40분간 블로킹하고, PBS-BT로 3번 세척하였다. 1차 항체 (His-probe, Santa Cruz Biotechnology)는 1:2,000 비율로 희석하고, 4℃에서 12시간 동안 배양하였다. 2차 항체 (Alexa Fluor 488)는 1:10,000 비율로 희석하고 어둡게 하여 1시간 동안 반응시키고, PBS-BT로 5분 동안 3번 세척하였다. 웰에서 커버 글라스를 분리하여 모서리 부분의 물기를 제거하고 마운팅하였다. 공촛점 형광 현미경으로 관찰하고 영상분석기를 이용하여 형광 발현을 확인하였다.
동물모델 제조
ICR 마우스(수컷 8주령)를 23℃, 습도 60% 그리고 고정적으로 12시간의 빛/12시간 어둠 주기로 음식물과 물을 자유롭게 섭취할 수 있는 곳에서 사육하였다. 동물 관리를 포함한 모든 실험 절차는 한림대학교 의료센터기관 동물 관리 및 사용위원회에서 국립수의과학검역원의 실험동물 관리 및 사용에 대한 가이드라인을 따라 실험하였다.
통계 분석
모든 데이터는 실험 결과의 평균값이며, 통계학적인 차이는 student's t-test 분석법을 이용하여 비교하였고, p<0.05일 때 통계적으로 유의하다고 판정하였다.
결과 1: Tat-CIAPIN1 융합단백질 발현과 정제
본 발명자들은 세포 투과성 Tat-CIAPIN1 융합단백질을 제조하기 위해 PTD (Protein Transduction Domain)의 일종인 HIV-Tat이 포함된 Tat-벡터와 CIAPIN1 유전자를 재조합하였다 (도 1a). 또한, 대장균에서 상기 재조합 유전자를 과대 발현시켜 Ni²-나이트릴로트리아세트산 세파로즈 친화 크로마토그래피 컬럼과 PD-10 컬럼 크로마토그래피를 이용하여 정제하였고, SDS-PAGE와 웨스턴 블롯 분석법을 통하여 Tat-CIAPIN1 융합단백질이 정제된 것을 확인하였다 (도 1b).
결과 2: Raw264.7 세포 내로 Tat-
CIAPIN1
융합단백질의
투과
시간 및 농도별로 Tat-CIAPIN1 융합단백질의 Raw264.7 세포 내 투과 정도를 측정하였다. 그 결과, Tat-CIAPIN1 융합단백질은 시간 및 농도 의존적으로 세포 내 투과가 효과적으로 일어났으며, CIAPIN1 단백질은 투과가 일어나지 않았다 (도 2a). 또한, 세포 내로 투과한 Tat-CIAPIN1 융합단백질의 안정성을 확인한 결과, 24시간 동안 안정되게 유지됨을 알 수 있었다 (도 2b). 또한, 공촛점 현미경을 이용하여 DAPI로 세포핵을 염색하고, Tat-CIAPIN1 융합단백질을 녹색 형광으로 염색하여 효과적으로 세포 내로 투과되는 것을 확인하였다 (도 2c).
결과 3 :
LPS로
인해 유도된 세포 내
활성산소종
표지자인
DCF
-DA 염색에서 Tat-CIAPIN1
융합단백질의
보호 효과
LPS로 인해 생겨난 세포 내 활성산소종 표지자인 H2DCF-DA (2',7'-dichlorofluorescin diacetate)는 비극성 분자로 세포 내로 들어가면서 가수분해되어 H2DCF (2',7'-dichlorofluorescin)가 되고, 세포 내의 활성산소종에 의해 녹색형광을 나타내는 DCF (2',7'-dichlorofluorescin)로 변한다. 이로써 세포 내의 활성산소종 정도를 확인해 보았다.
LPS만 처리한 그룹에서의 녹색으로 염색된 강도가 매우 강하게 발색됨을 확인할 수 있었는데, 이는 LPS에 의해 활성산소종이 생겨난 것을 의미한다. 그러나 Tat-CIAPIN1 융합단백질을 1uM 처리한 그룹에서는 그 정도가 매우 감소하였고, 대조군 CIAPIN1를 처리한 그룹에서는 보호효과를 확인하지 못했다. 이런 결과를 통해 Tat-CIAPIN1가 Raw264.7 세포에서 활성산소종 생성을 억제하는 역할을 수행함을 확인하였다.
결과 4: TPA로 유도된 염증 동물모델에서의 Tat-
BLVRA
융합단백질로
인한 염증 완화 효과
Tat-CIAPIN1 융합단백질이 피부 염증에 대하여 완화 효과가 있는지를 알아보기 위해 마우스 귀에 TPA를 바르고 염증을 유발하였다. Tat-CIAPIN1 융합단백질과 CIAPIN1 단백질을 처리한 후 마우스의 귀 두께와 무게를 측정하고 면역조직화학적 분석을 수행하였다. 그 결과, Tat-CIAPIN1 융합단백질은 피부 염증에서 초기에 일어나는 단핵구 (Monocyte)와 같은 염증세포의 침투를 현저히 저해하였다. 하지만, CIAPIN1 단백질은 이와 같은 효과를 나타내지 않았다 (도 4).
<110> Industry Academic Cooporation Foundation, Hallym University
<120> Pharmaceutical composition for treating cerebral ischemia
containing CIAPIN1 fusion protein
<130> HALLYM-SYCHOI-CIAPIN1-ischemia
<160> 2
<170> KoPatentIn 3.0
<210> 1
<211> 979
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Polynucleotide coding Tat-CIAPIN1 fusion protein
<400> 1
taggaagaag cggagacagc gacgaagact cgagatggca gattttggga tctctgctgg 60
ccagtttgtg gcagtggtct gggataagtc atccccagtg gaggctctga aaggtctggt 120
ggataagctt caagcgttaa ccggcaatga gggccgcgtg tctgtggaaa acatcaagca 180
gctgttgcaa tctgcccaca aagaatccag ctttgacatt attttgtcag gtttagtccc 240
aggaagcacc actctgcaca gtgctgagat tttggctgaa atcgcccgga tccttcggcc 300
tggtggatgt ctttttctga aggagccagt agagacagct gtagataaca atagcaaagt 360
gaagacagca tctaagctgt gttcagccct gactctttct ggtcttgtgg aagtgaaaga 420
gctgcagcgg gagcccctaa cccctgagga agtacagtct gttcgagaac accttggtca 480
tgaaagtgac aacctgctgt ttgttcagat cacaggcaaa aaaccaaact ttgaagtggg 540
ttcttctagg cagcttaagc tttccatcac caagaagtct tctccttcag tgaaacctgc 600
tgtggaccct gctgctgcca agctgtggac cctctcagcc aacgatatgg aggacgacag 660
catggatctc attgactcag atgagctgct ggatccagaa gatttgaaga agccagatcc 720
agcttccctg cgggctgctt cttgtgggga agggaaaaag aggaaggcct gtaagaactg 780
cacctgtggc cttgccgaag aactggaaaa agagaagtca agggaacaga tgagctccca 840
acccaagtca gcttgtggaa actgctacct gggcgatgcc ttccgctgtg ccagctgccc 900
ctaccttggg atgccagcct tcaaacctgg ggaaaaggtg cttctgagtg atagcaatct 960
tcatgatgcc tagggatcc 979
<210> 2
<211> 323
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Tat-CIAPIN1 fusion protein
<400> 2
Arg Lys Lys Arg Arg Gln Arg Arg Arg Leu Glu Met Ala Asp Phe Gly
1 5 10 15
Ile Ser Ala Gly Gln Phe Val Ala Val Val Trp Asp Lys Ser Ser Pro
20 25 30
Val Glu Ala Leu Lys Gly Leu Val Asp Lys Leu Gln Ala Leu Thr Gly
35 40 45
Asn Glu Gly Arg Val Ser Val Glu Asn Ile Lys Gln Leu Leu Gln Ser
50 55 60
Ala His Lys Glu Ser Ser Phe Asp Ile Ile Leu Ser Gly Leu Val Pro
65 70 75 80
Gly Ser Thr Thr Leu His Ser Ala Glu Ile Leu Ala Glu Ile Ala Arg
85 90 95
Ile Leu Arg Pro Gly Gly Cys Leu Phe Leu Lys Glu Pro Val Glu Thr
100 105 110
Ala Val Asp Asn Asn Ser Lys Val Lys Thr Ala Ser Lys Leu Cys Ser
115 120 125
Ala Leu Thr Leu Ser Gly Leu Val Glu Val Lys Glu Leu Gln Arg Glu
130 135 140
Pro Leu Thr Pro Glu Glu Val Gln Ser Val Arg Glu His Leu Gly His
145 150 155 160
Glu Ser Asp Asn Leu Leu Phe Val Gln Ile Thr Gly Lys Lys Pro Asn
165 170 175
Phe Glu Val Gly Ser Ser Arg Gln Leu Lys Leu Ser Ile Thr Lys Lys
180 185 190
Ser Ser Pro Ser Val Lys Pro Ala Val Asp Pro Ala Ala Ala Lys Leu
195 200 205
Trp Thr Leu Ser Ala Asn Asp Met Glu Asp Asp Ser Met Asp Leu Ile
210 215 220
Asp Ser Asp Glu Leu Leu Asp Pro Glu Asp Leu Lys Lys Pro Asp Pro
225 230 235 240
Ala Ser Leu Arg Ala Ala Ser Cys Gly Glu Gly Lys Lys Arg Lys Ala
245 250 255
Cys Lys Asn Cys Thr Cys Gly Leu Ala Glu Glu Leu Glu Lys Glu Lys
260 265 270
Ser Arg Glu Gln Met Ser Ser Gln Pro Lys Ser Ala Cys Gly Asn Cys
275 280 285
Tyr Leu Gly Asp Ala Phe Arg Cys Ala Ser Cys Pro Tyr Leu Gly Met
290 295 300
Pro Ala Phe Lys Pro Gly Glu Lys Val Leu Leu Ser Asp Ser Asn Leu
305 310 315 320
His Asp Ala
Claims (7)
- 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1의 N 말단 또는 C 말단 중 한 곳 이상에 단백질 수송도메인이 공유결합된 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 항염증 약학 조성물.
- 청구항 1에 있어서,
상기 단백질 수송 도메인은 HIV-Tat 펩타이드, Pep-1 펩타이드, 올라고라이신, 올리고아르기닌, 올리고(라이신, 아르기닌) 중 선택된 것임을 특징으로 하는, 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 항염증 약학 조성물.
- 청구항 1에 있어서,
상기 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질은 그 아미노산 서열이 서열번호 2임을 특징으로 하는, 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 항염증 약학 조성물.
- 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1의 N 말단에 단백질 수송도메인이 공유결합된 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 염증 완화 기능을 수행하는 화장료 조성물.
- 청구항 4에 있어서,
상기 단백질 수송 도메인은 HIV-Tat 펩타이드, Pep-1 펩타이드, 올라고라이신, 올리고아르기닌, 올리고(라이신, 아르기닌) 중 선택된 것임을 특징으로 하는, 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 염증 완화 기능을 수행하는 화장료 조성물.
- 청구항 4에 있어서,
상기 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질은 그 아미노산 서열이 서열번호 2임을 특징으로 하는, 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 염증 완화 기능을 수행하는 화장료 조성물.
- 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1의 N 말단 및 C 말단 중 적어도 어느 한 쪽에 단백질 수송도메인이 공유결합된 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 염증 완화 기능을 수행하는 건강 기능성 식품 조성물.
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| KR1020170021996A KR101869686B1 (ko) | 2017-02-20 | 2017-02-20 | 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 항염증 약학 조성물 |
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| KR1020170021996A KR101869686B1 (ko) | 2017-02-20 | 2017-02-20 | 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 항염증 약학 조성물 |
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|---|---|
| KR (1) | KR101869686B1 (ko) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR101947281B1 (ko) * | 2017-09-27 | 2019-05-08 | 한림대학교 산학협력단 | 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 파킨슨병 예방 또는 치료용 약학 조성물 |
| KR20220141992A (ko) * | 2021-04-14 | 2022-10-21 | 한림대학교 산학협력단 | 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 당뇨병 예방 또는 치료용 약학 조성물 |
-
2017
- 2017-02-20 KR KR1020170021996A patent/KR101869686B1/ko active IP Right Grant
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| Circ Res. 2010 Sep 17;107(6):737-46 * |
| Exp Cell Res. 2015 Apr 10;333(1):60-72. * |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR101947281B1 (ko) * | 2017-09-27 | 2019-05-08 | 한림대학교 산학협력단 | 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 파킨슨병 예방 또는 치료용 약학 조성물 |
| KR20220141992A (ko) * | 2021-04-14 | 2022-10-21 | 한림대학교 산학협력단 | 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 당뇨병 예방 또는 치료용 약학 조성물 |
| KR102581677B1 (ko) | 2021-04-14 | 2023-09-21 | 한림대학교 산학협력단 | 사이토카인 유도 세포자기사멸 저해제 1 융합단백질을 포함하는 당뇨병 예방 또는 치료용 약학 조성물 |
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