KR101855919B1 - Active Material Stabilized in Plant Cell and Method for Manufacturing the Same - Google Patents
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Abstract
본 발명은 안정화된 활성 물질을 포함하는 식물 세포를 함유하는 조성물, 활성 물질을 안정화시키는 방법 및 안정화된 활성 물질을 포함하는 식물 세포를 제조하는 방법에 관한 것으로서, 본 발명의 조성물을 이용하며, 활성 물질의 안정화를 높여줄 수 있으며, 기능성 화장료 및 피부외용제의 성분으로 사용될 때 안정성이 높아, 활성성분의 효과를 극대화 할 수 있다.The present invention relates to a composition containing plant cells containing a stabilized active substance, a method of stabilizing the active substance, and a method of producing plant cells containing the stabilized active substance, The stability of the substance can be enhanced, and when it is used as a component of functional cosmetics and external preparations for skin, stability is high and the effect of the active ingredient can be maximized.
Description
본 발명은 식물 세포 내에 안정화된 활성 물질을 포함하는 화장료 조성물, 활성 물질을 안정화시킨 후 안정화된 활성 물질을 포함하는 식물 세포를 제조하는 방법에 관한 것이다.
The present invention relates to a cosmetic composition comprising an active substance stabilized in a plant cell, and a method for producing a plant cell containing the active substance stabilized after stabilizing the active substance.
천연에 존재하는 동, 식물에는 각기 다른 수많은 활성 물질이 내재되어 있으며, 그 종류 또한 플라보노이드, 플라보놀, 페놀, 아미노산, 리그난, 알칼로이드, 비타민, 카테킨 화합물 등 무수한 종류로 이루어져 있다. 이러한 활성 물질들은 각각 서로 다른 약리적 작용을 가지며, 많은 연구가 진행되고 있다. 이러한 인체 내 생리학적 특성에 있어서 유용한 기능을 가지는 활성성분의 우수한 효과에도 불구하고 대부분의 활성 물질들은 그 안정성 면에서 자유롭지 못하며, 최근 이들의 안정성 및 약물전달 개선을 위해 활성 물질에 인지질 혹은 계면활성제를 이용한 리포좀, 세라마이드를 이용한 안정화된 세라좀, 액정구조로 안정화시킨 액정좀, 모노글리세라이드를 이용한 입방상 큐보좀 적용 등 많은 시도가 이루어지고 있다. 그러나 상기 방법들은 제조방법이 복잡하거나 화합물을 사용하여 생체적합성이 떨어지는 문제점이 있다.
There are many different kinds of active substances in natural plants and plants, and they are also made up of a myriad of flavonoids, flavonols, phenols, amino acids, lignans, alkaloids, vitamins and catechin compounds. These active substances each have different pharmacological actions, and many studies are under way. Despite the excellent effects of active ingredients having useful functions in human body physiological properties, most of the active substances are not free from the stability. Recently, in order to improve their stability and drug delivery, phospholipids or surfactants Many attempts have been made to use liposome, stabilized cerasoma using ceramide, liquid crystal stabilized with liquid crystal structure, and cubic cubosome using monoglyceride. However, these methods have problems in that the manufacturing method is complicated or the biocompatibility is deteriorated by using a compound.
본 발명자들은 보다 간편하면서도 생체 적합성이 높은 활성 물질을 안정화 시키는 방법을 개발하고자 노력하였다. 그 결과 식물 세포 내에 특히 세포벽 내에 활성 물질을 인입시키는 경우 활성 물질의 안정성이 높아진다는 것을 규명함으로써 본 발명을 완성하게 되었다.The present inventors have sought to develop a method for stabilizing a simpler but more biocompatible active substance. As a result, the present inventors have completed the present invention by confirming that the stability of the active substance is enhanced when the active substance is introduced into the cell wall, particularly within the cell wall.
따라서 본 발명의 목적은 식물 세포 내에 안정화된 활성 물질을 포함하는 화장료 조성물을 제공하는 것을 목적으로 한다.It is therefore an object of the present invention to provide a cosmetic composition comprising an active substance stabilized in plant cells.
본 발명의 다른 목적은 활성 물질을 안정화시킨 후 안정화된 활성 물질을 포함하는 식물 세포를 제조하는 방법을 제공하는 것을 목적으로 한다.
It is another object of the present invention to provide a method for producing a plant cell comprising a stabilized active substance after stabilizing the active substance.
상기 목적을 달성하기 위하여 본 발명의 일 실시예는 안정화된 활성 물질을 포함하는 식물 세포를 함유하는 화장료 조성물을 제공한다.To achieve the above object, an embodiment of the present invention provides a cosmetic composition containing plant cells containing a stabilized active substance.
또한, 본 발명의 일 실시예에서 상기 화장료 조성물의 활성 물질은 친수성 물질 및 소수성 물질로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상일 수 있다.In one embodiment of the present invention, the active material of the cosmetic composition may be at least one selected from the group consisting of a hydrophilic substance and a hydrophobic substance.
또한, 본 발명의 일 실시예에서 상기 화장료 조성물의 활성 물질은 갈릭산(Gallic acid), 아미노산, 피트산(Phytic acid), 비타민 C, L-아스코르브산(L-Ascorbic acid), 알부틴, 프룩토스 디포스페이트, 트리소듐 프룩토스, 1, 6-디포스페이트 아데노신, 나이아신아마이드, 제니스테인(Genistein), 플라보노이드, 에피갈로카테킨 갈레이트(EGCG), 레티놀, 헤스페리딘, 올레아노릭산(Oleanolic Acid), 폴리메틸 메타크리레이트, 티몰트리메톡시신나메이트(Thymol Trimethoxycinnamate), 홍삼 사포닌, 하이드롤라이즈드 인삼사포닌 및 아스코빌글루코사이드로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상일 수 있다.In one embodiment of the present invention, the active material of the cosmetic composition is selected from the group consisting of gallic acid, amino acid, phytic acid, vitamin C, L-ascorbic acid, arbutin, fructose (EGCG), retinol, hesperidin, oleanolic acid, polymethylmethacrylate (EGCG), dicarboxylic acid, dibutyl phthalate, diphosphate, trisodium fructose, 1,6-diphosphate adenosine, niacinamide, genistein, flavonoids, epigallocatechin gallate Methacrylate, thymol trimethoxycinnamate, red ginseng saponin, hydrolized ginseng saponin, and ascorbyl glucoside.
또한, 본 발명의 일 실시예에서 상기 식물 세포는 세포벽을 이용하는 것이 바람직하다. Also, in one embodiment of the present invention, the plant cell preferably uses a cell wall.
또한, 본 발명의 일 실시예는 다음의 단계를 포함하는 활성 물질을 안정화시킨 후 안정화된 활성 물질을 포함하는 식물 세포를 제조하는 방법을 제공한다.In addition, one embodiment of the present invention provides a method for preparing a plant cell comprising stabilizing an active substance comprising a stabilized active substance, comprising the steps of:
(a) 1 - 100 MPa 의 조건에서 식물 세포 내에 활성 물질을 인입시키는 단계.(a) introducing the active substance into plant cells under the condition of 1 - 100 MPa;
(b) 활성 물질이 인입된 식물 세포로부터 역삼투화를 이용해 탈수반응을 일으키는 단계 ; 및(b) causing a dehydration reaction using reverse osmosis from the plant cell into which the active substance is introduced; And
(c) 활성 물질이 인입된 식물 세포를 수득하는 단계(c) obtaining a plant cell into which an active substance has been introduced
또한, 본 발명의 일 실시예에서 상기 식물 세포를 제조하는 방법의 활성 물질은 친수성 물질 및 소수성 물질로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상일 수 있다.In addition, in one embodiment of the present invention, the active substance of the method for producing plant cells may be at least one selected from the group consisting of hydrophilic substances and hydrophobic substances.
또한, 본 발명의 일 실시예에서 상기 식물 세포를 제조하는 방법의 활성 물질은 갈릭산(Gallic acid), 아미노산, 피트산(Phytic acid), 비타민 C, L-아스코르브산(L-Ascorbic acid), 알부틴, 프룩토스 디포스페이트, 트리소듐 프룩토스, 1, 6-디포스페이트 아데노신, 나이아신아마이드, 제니스테인(Genistein), 플라보노이드, 에피갈로카테킨 갈레이트(EGCG), 레티놀, 헤스페리딘, 올레아노릭산(Oleanolic Acid), 폴리메틸 메타크리레이트, 티몰트리메톡시신나메이트(Thymol Trimethoxycinnamate), 홍삼 사포닌, 하이드롤라이즈드 인삼사포닌 및 아스코빌글루코사이드로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상일 수 있다.In addition, in one embodiment of the present invention, the active substance of the method for producing plant cells is selected from the group consisting of gallic acid, amino acid, phytic acid, vitamin C, L-ascorbic acid, But are not limited to, arbutin, fructose diphosphate, trisodium fructose, 1,6-diphosphate adenosine, niacinamide, genistein, flavonoids, epigallocatechin gallate (EGCG), retinol, hesperidin, oleanolic acid ), Polymethyl methacrylate, thymol trimethoxycinnamate, red ginseng saponin, hydrolized ginseng saponin, and ascorbyl glucoside.
또한, 본 발명의 일 실시예에서 상기 식물 세포를 제조하는 방법의 식물 세포는 세포벽을 이용하는 것이 바람직하다.
In one embodiment of the present invention, the plant cell of the method for producing the plant cell is preferably a cell wall.
본 발명의 식물 세포 내에 안정화된 활성 물질을 포함하는 화장료 조성물은 종래의 방법보다 간편한 방법을 사용하여 활성 물질의 안정화를 높여줄 수 있으며, 기능성 화장료 및 피부외용제의 성분으로 사용하면 안정성이 높아, 활성성분의 효과를 극대화 할 수 있다.
The cosmetic composition containing the active substance stabilized in the plant cell of the present invention can enhance the stabilization of the active substance by using a simple method than the conventional method, and when used as a component of the functional cosmetic preparation and the external preparation for skin, The effect of the component can be maximized.
도 1은 활성 물질을 식물 세포 내에 인입하여 안정화시키는 과정을 보여주는 프루우 차트이다.
도 2a 내지 2d는 본 발명에 사용된 친수성 활성 물질인 시료 1 내지 시료 4에 대하여 고속액체크로마토그래피를 이용하여 성분분석을 한 결과 각각의 표준시약과 비교한 결과를 보여주는 그래프이다.
도 3a 내지 도 3c는 본 발명에 사용된 소수성 활성 물질인 시료 5 내지 시료 7에 대하여 HPLC 크로마토그램을 이용하여 성분분석을 한 결과 각각의 표준시약과 비교한 결과를 보여주는 그래프이다.
도 4a 내지 도 4d는 본 발명의 친수성 활성 물질을 식물 세포 내에 인입한 후 제형 안정도 결과를 보여주는 그래프이다.
도 5a 내지 도 5c는 본 발명의 소수성 활성 물질을 식물 세포 내에 인입한 후 제형 안정도 결과를 보여주는 그래프이다.
도 6은 식물 세포내에서 안정화된 상태로 인입된 갈릭산 시료에 대한 현미경 사진이다.FIG. 1 is a flow chart showing a process of introducing and stabilizing an active substance into a plant cell.
FIGS. 2A to 2D are graphs showing results of comparison of each of the standard reagents as a result of analyzing the
FIGS. 3A to 3C are graphs showing the results of analyzing the
4A to 4D are graphs showing the results of the formulation stability after the hydrophilic active material of the present invention is introduced into plant cells.
5A to 5C are graphs showing the formulation stability results after the hydrophobic active material of the present invention is introduced into a plant cell.
6 is a photomicrograph of a gallic acid sample that has been taken in a stabilized state in a plant cell.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 식물 세포 내에 안정화된 활성 물질을 포함하는 화장료 조성물을 제공한다.According to one embodiment of the present invention, there is provided a cosmetic composition comprising an active substance stabilized in a plant cell.
본 발명에서 식물 세포는 당업계에서 선택할 수 있는 어떠한 종류의 식물 세포도 이용될 수 있다.The plant cell in the present invention may be any kind of plant cell that can be selected in the art.
본 발명에서 식물 세포는 붙어 있는 다 세포를 효소의 조합을 통한 전처리를 통하여 단일 세포로 만든 후 이용하는 것이 바람직하다.In the present invention, it is preferable that the plant cells are made into a single cell through pre-treatment with a combination of enzymes.
본 발명에서 상기 효소는 당업계에서 선택할 수 있는 어떠한 종류의 효소도 이용될 수 있다.In the present invention, the enzyme may be any kind of enzyme that can be selected in the art.
본 발명에서 용어 “활성 물질”이란 생체의 기능을 증진시키거나 혹은 억제시키는 물질을 말하며, 본 발명의 일 실시예에 따르면, 활성 물질은 친수성 물질 및 소수성 물질로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상일 수 있다. The term " active substance " in the present invention refers to a substance that enhances or inhibits the function of a living body. According to one embodiment of the present invention, the active substance may be at least one selected from the group consisting of a hydrophilic substance and a hydrophobic substance.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 활성 물질은 친수성 물질일 수 있다. 본 발명의 친수성 활성 물질은 갈릭산(Gallic acid), 아미노산, 피트산(Phytic acid), 비타민 C, L-아스코르브산(L-Ascorbic acid), 알부틴, 프룩토스 디포스페이트, 트리소듐 프룩토스, 1, 6-디포스페이트 아데노신 및 나이아신아미드로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상일 수 있으며, 바람직하게는 갈릭산(Gallic acid), 아미노산, 피트산(Phytic acid) 및 비타민 C로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상일 수 있으나 이에 한정되는 것은 아니다. According to one embodiment of the present invention, the active substance may be a hydrophilic substance. The hydrophilic active material of the present invention may be selected from the group consisting of gallic acid, amino acid, Phytic acid, vitamin C, L-ascorbic acid, arbutin, fructose diphosphate, , 6-diphosphate adenosine, and niacinamide, and preferably at least one selected from the group consisting of gallic acid, amino acid, phytic acid and vitamin C, But is not limited thereto.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 활성 물질은 소수성 물질일 수 있다. 본 발명의 소수성 활성 물질은 제니스테인(Genistein), 플라보노이드, 에피갈로카테킨 갈레이트(EGCG), 레티놀, 헤스페리딘, 올레아노릭산(Oleanolic Acid), 폴리메틸 메타크리레이트, 티몰트리메톡시신나메이트(Thymol Trimethoxycinnamate), 홍삼 사포닌, 하이드롤라이즈드 인삼사포닌 및 아스코빌글루코사이드로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상일 수 있으나 이에 한정되는 것은 아니다.According to one embodiment of the present invention, the active substance may be a hydrophobic substance. The hydrophobic active material of the present invention may be selected from the group consisting of genistein, flavonoids, epigallocatechin gallate (EGCG), retinol, hesperidin, oleanolic acid, polymethylmethacrylate, thymol trimethoxycinnamate Trimethoxycinnamate), red ginseng saponin, hydrolized ginseng saponin, and ascorbyl glucoside, but the present invention is not limited thereto.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 식물 세포는 세포벽을 이용하는 것이 바람직하다.According to one embodiment of the present invention, the plant cell preferably utilizes a cell wall.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 다음의 단계를 포함하는 활성 물질을 안정화시킨 후 안정화된 활성 물질을 포함하는 식물 세포를 제조하는 방법을 제공한다.According to one embodiment of the present invention, there is provided a method of preparing a plant cell comprising a stabilized active substance after stabilizing an active substance comprising the steps of:
(a) 1 - 100 MPa 의 조건에서 식물 세포 내에 활성 물질을 인입시키는 단계.(a) introducing the active substance into plant cells under the condition of 1 - 100 MPa;
(b) 활성 물질이 인입된 식물 세포로부터 역삼투화를 이용해 탈수반응을 일으키는 단계 ; 및(b) causing a dehydration reaction using reverse osmosis from the plant cell into which the active substance is introduced; And
(c) 활성 물질이 인입된 식물 세포를 수득하는 단계(c) obtaining a plant cell into which an active substance has been introduced
본 발명에서 사용되는 용어 ‘가용용매’는 활성 물질을 녹일 수 있는 모든 용매를 지칭하는것으로 물, 에탄올, 에틸아세테이트, 뷰틸렌글라이콜, 메탄올, 프로판다이올등을 말한다.As used herein, the term 'soluble solvent' refers to any solvent capable of dissolving the active material, and refers to water, ethanol, ethyl acetate, butyleneglycol, methanol, propanediol, and the like.
본 발명의 활성 물질을 가용용매에 용해시키는 단계에 있어서, 상기 가용용매는 물, 에탄올, 메탄올, 부탄올, 프로판올, 프로판디올, 부틸렌글리콜, 프로필렌글리콜, 펜틸렌글리콜, 헥산디올, 클로로포름, 에틸아세테이트, 디클로로메탄, 헥산, 페트로레움에테르 및 디에틸에테르로 이루어진 군으로부터 선택된 1종인 용매 또는 2이상의 혼합용매일 수 있으며, 바람직하게는 물, 에탄올, 메탄올, 더욱 바람직하게는 물, 에탄올이다.In the step of dissolving the active material of the present invention in a solvent, the solvent is selected from the group consisting of water, ethanol, methanol, butanol, propanol, propanediol, butylene glycol, propylene glycol, pentylene glycol, hexanediol, chloroform, ethyl acetate , A solvent selected from the group consisting of dichloromethane, hexane, petroleum ether and diethyl ether, or a mixture of two or more solvents, preferably water, ethanol, methanol, more preferably water and ethanol.
본 발명의 활성 물질 용액을 식물 세포와 함께 혼합하는 단계에 있어서 혼합방법은 당업계에서 2이상의 물질을 혼합하기 위해 통상적으로 사용되는 방법으로 행하여 질 수 있다. 보다 구체적으로는 활성 물질과 식물 세포는 동시에 또는 순차적으로 용기에 투입하여 혼합할 수 있다.In the step of mixing the active substance solution of the present invention with the plant cells, the mixing method may be performed by a method commonly used for mixing two or more substances in the art. More specifically, the active substance and the plant cell can be mixed in a container simultaneously or sequentially.
상기 용해공정을 통해 형성된 활성 물질 가용물은 식물 세포와 함께 수용액상에서 혼합되어 교반에 의한 자연 삼투압으로 용액 상태에서 평형화 되는데, 본 발명에 의한 식물 세포의 함량은 총 중량대비 0.1 - 30 중량%의 비율인 것이 바람직하다. 0.1 중량% 이하의 경우 식물 세포 삼투압율 저하문제가 있으며, 30 중량% 이상의 경우 식물 세포로 인입되는 액티브 물질 함량감소의 문제가 있기 때문이다. 활성 물질의 최적의 함량은 총 중량대비 0.01 - 10 중량%인 것이 바람직하다. 활성 물질에 따라서 효능을 나타내는 최적의 농도가 각기 다르고, 이 임계 범위에서 효과를 발휘한다.The active substance-solubilized substance formed through the dissolution process is mixed with the plant cells in an aqueous solution and equilibrated in a solution state by natural osmotic pressure by stirring. The content of plant cells according to the present invention is 0.1 to 30% by weight based on the total weight . When the content is less than 0.1% by weight, there is a problem of lowering the plant cell osmotic pressure ratio. When the content is more than 30% by weight, there is a problem of reduction in the amount of the active substance introduced into plant cells. The optimal content of the active material is preferably 0.01 to 10% by weight based on the total weight. Depending on the active substance, the optimum concentrations for different efficacies are different and exert their effect in this critical range.
상기 활성 물질 용액을 식물 세포와 함께 혼합하는 단계에서 활성 물질이 식물 세포 내로 일부 인입되며, 본 발명의 고압의 조건에서 식물 세포 내에 활성 물질을 인입시키는 단계에서 있어서, 고압을 가함으로써 활성 물질의 인입율이 높아지게 된다. In the step of mixing the active substance solution with the plant cells, the active substance is partially introduced into the plant cells. In the step of introducing the active substance into the plant cells under the high pressure condition of the present invention, The higher the rate.
본 발명에서 사용되는 용어 ‘고압의 조건’은 식물 세포 내에 활성 물질의 인입이 일어나는데 적절한 조건을 의미하며, 구체적으로는 0.01 MPa - 500 MPa, 보다 바람직하게는 0.1 MPa - 100 MPa, 가장 바람직하게는 0.5 MPa - 20 MPa이다. 0.5 MPa 이하일 때에는 활성 물질의 인입이 효과적으로 일어나지 않으며, 20 MPa 이상일 때에는 세포벽의 파괴 문제가 있을 수 있기 때문이다. 본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 활성 물질을 안정화시키는 방법에 있어서 활성 물질의 인입율을 보다 높이기 위하여 활성 물질이 인입된 식물 세포로부터 탈수반응을 일으키는 단계를 추가로 포함할 수 있으며, 활성 물질이 인입된 식물 세포를 수득하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. The term 'high pressure condition' used in the present invention means conditions suitable for introducing an active substance into plant cells, specifically 0.01 MPa - 500 MPa, more preferably 0.1 MPa - 100 MPa, and most preferably, 0.5 MPa to 20 MPa. When the pressure is less than 0.5 MPa, the introduction of the active material is not effected effectively, and when the pressure is 20 MPa or more, the cell wall may be broken. According to a preferred embodiment of the present invention, in the method of stabilizing the active material, a step of dehydrating from the plant cell into which the active material is introduced may further include a step of raising the rate of introduction of the active material, Further comprising the step of obtaining an introduced plant cell.
본 발명에서 사용되는 용어 ‘탈수반응’이란 유기화합물의 분자 내에서 물이 분리되는 반응 및 유기화합물 2분자에서 물이 이탈하여 축합하는 반응을 의미한다. 탈수반응은 친수성 물질을 이용하거나 가열하는 등 당업계에서 통상적으로 행해지는 방법에 의해 수행될 수 있으나 본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 탈수반응은 역삼투화를 이용할 수 있다. The term " dehydration reaction " used in the present invention means a reaction in which water is separated in the molecule of an organic compound and a reaction in which water is separated from two molecules of the organic compound to condense. The dehydration reaction can be performed by a method commonly used in the art, such as using a hydrophilic substance or heating, but according to a preferred embodiment of the present invention, the dehydration reaction can utilize reverse osmosis.
본 발명에서 사용되는 용어 ‘역삼투화’란 용질의 농도가 낮은 쪽에 삼투압보다 더 큰 압을 가하여 용매를 용질의 농도가 낮은 쪽으로 보내는 과정을 의미한다(Reverse Osmosis (R/O): Selecting a Reverse Osmosis Unit By Arthur Fisher et. al. 참조). 본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 나트륨 또는 칼륨 원소를 포함하는 염을 첨가하여 역삼투화시키는 방법을 이용할 수 있다.As used herein, the term 'reverse osmosis' refers to a process in which the solute is sent to a lower concentration of solute by applying a pressure greater than osmotic pressure to the lower solute concentration (Reverse Osmosis (R / O): Selecting a Reverse Osmosis Unit By Arthur Fisher et al.). According to a preferred embodiment of the present invention, a method of reverse osmosis by adding a salt containing sodium or potassium element may be used.
역삼투화를 시키는 과정에서 식물 세포 내에 활성 물질을 남겨둔 채 저농도(식물 세포 내의 액장)에서 고농도(혼합액)로 탈수가 일어나게 되는데, 본 발명에 의한 최적의 가용성 염 첨가는 총 중량대비 0.5 - 40 중량%의 비율로 식물 세포 밖으로의 탈수를 유도하여 세포 내에 인입율을 극대화 한다. 자연상태에서는 바깥에 있는 물이 세포벽안으로 들어가는 것(삼투압)이 정상이지만 인위적으로 세포밖에 염을 첨가하여 세포 내에 있는 물을 탈수 시키는 것이 역삼투압이다.In the process of reverse osmosis, dehydration occurs at a low concentration (liquid in a plant cell) and at a high concentration (mixture liquid) while leaving active substances in plant cells. The optimal soluble salt addition according to the present invention is 0.5 to 40 wt% To induce dehydration outside of the plant cell to maximize the rate of entry into the cell. In the natural state, it is normal that the water in the outside enters the cell wall (osmotic pressure), but it is reverse osmotic pressure to artificially add salt outside the cell to dehydrate the water in the cell.
활성 물질이 인입된 식물 세포를 수득하는 단계는 통상적으로 사용되는 세포수득을 위한 방법을 포함하나 필터 또는/및 원심분리를 통한 수득 방법을 이용할 수 있다. 필터를 사용하는 경우 1.2 - 50 um 및 40 - 200 mesh가 바람직하며, 원심분리를 사용하는 경우 100 - 9,000 rpm, 0 - 25℃가 바람직하다.The step of obtaining the plant cell into which the active substance has been introduced includes a method for obtaining cells which are conventionally used, but a method of obtaining by filtration and / or centrifugation may be used. When using a filter, 1.2 - 50 μm and 40 - 200 mesh are preferable, and when centrifuging is used, 100 - 9,000 rpm, 0 - 25 ° C. are preferable.
본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 상기 회수 공정을 통해 수득된 활성 물질이 인입된 식물 세포는 표면의 불순물 및 인입되지 못한 활성 물질을 제거하는 세척단계를 추가로 포함할 수 있다. 이 경우 증류수에 0.1 - 20 중량%의 염이 포함된 용액을 사용하는 것이 바람직하나 이에 한정되는 것은 아니다.According to a preferred embodiment of the present invention, the plant cell in which the active material obtained through the recovery process is introduced may further include a washing step of removing impurities on the surface and active substances not introduced. In this case, it is preferable to use a solution containing 0.1 to 20% by weight of salt in distilled water, but not limited thereto.
본 발명의 화장료 조성물에 있어 상기 식물 세포 내에 안정화된 활성 물질의 함량은 화장료 조성물 전체 중량 대비 0.001 내지 10 중량%을 함유하는 것이 바람직하며, 0.001% 이하에서는 활성을 나타내지 못하며 10% 이상에서는 제형의 사용감과 안정도에 영향을 미친다.In the cosmetic composition of the present invention, the content of the stabilized active substance in the plant cell is preferably 0.001 to 10% by weight, more preferably 0.001 to 10% by weight, And stability.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.
Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples. It is to be understood by those skilled in the art that these embodiments are only for describing the present invention in more detail and that the scope of the present invention is not limited by these embodiments in accordance with the gist of the present invention .
실시예Example
친수성 활성 물질의 안정화Stabilization of hydrophilic active material
<실시예 1> 페놀성 화합물 갈릭산의 안정화Example 1 Stabilization of Phenolic Compound Galic Acid
갈릭산(>99%, Sigma, USA)을 3차 증류수에 10 중량%로 가하여 30분간 교반하였다. 그 후, 갈릭산 가용물 10 중량%와 검은 콩 식물 단세포(Black soybean unicell, Healthy food ingredient Co., Ltd., JPN) 10 중량%를 증류수 80 중량%에 넣고, 프로펠러 믹서(BL3000, Heidon, JPN)을 이용하여 800 rpm, 20℃, 조건으로 1시간 동안 교반하였다. 교반 뒤 식물 세포 혼합액을 고압 장치(TFS-2L, TOYO KOATSU CO., LTD., JPN)를 이용하여 20 MPa, 25℃, 1시간 조건으로 고압을 가하였다. 고압을 거친 식물 세포 혼합액에 염화나트륨(Sodium Chloride, NaCl)을 2 중량% 넣고 프로펠러 믹서(BL3000, Heidon, JPN)을 이용하여 800rpm, 20℃, 조건으로 1시간 동안 역삼투를 유도, 탈수반응 시켰다. 그 후, 원심분리기(Supra 22K, Hanil, KOR)를 이용하여 9,000 rpm, 15℃ 조건으로 20분간 고속 원심분리하여 활성 물질이 인입된 식물 세포를 수득하였다. 이렇게 얻어진 식물 세포에 100배의 생리식염수(0.9 % NaCl 수용액)를 이용하여 표면을 세척 후 다시 원심분리기(Supra 22K, Hanil, KOR)를 이용하여 9,000 rpm, 15℃ 조건으로 20분간 고속 원심분리하여 시료를 수득하였다. 이와 같이 수득된 것을 "시료 1"이라 하고, 하기 시험예에서 사용하였다.Galactic acid (> 99%, Sigma, USA) was added to tertiary distilled water at 10% by weight and stirred for 30 minutes. 10 wt% of gallic acid soluble matter and 10 wt% of black soybean unicell (Healthy food ingredient Co., Ltd., JPN) were added to 80 wt% of distilled water, and the mixture was mixed with a propeller mixer (BL3000, Heidon, JPN) At 800 rpm and 20 < 0 > C for 1 hour. After stirring, the plant cell mixture was pressurized at 20 MPa and 25 ° C for 1 hour using a high-pressure apparatus (TFS-2L, TOYO KOATSU CO., LTD., JPN). 2% by weight of sodium chloride (NaCl) was added to the mixed plant cell mixture under high pressure, and dehydration reaction was induced by using a propeller mixer (BL3000, Heidon, JPN) at 800 rpm and 20 ° C for 1 hour. Subsequently, high-speed centrifugation was carried out using a centrifuge (Supra 22K, Hanil, KOR) at 9,000 rpm and 15 ° C for 20 minutes to obtain plant cells into which the active material was introduced. The plant cells thus obtained were washed with 100-fold physiological saline (0.9% NaCl aqueous solution) and then centrifuged at a speed of 9,000 rpm at 15 ° C for 20 minutes using a centrifuge (Supra 22K, Hanil, KOR) A sample was obtained. The sample thus obtained was called "
<실시예 2> 아미노산의 안정화Example 2 Stabilization of Amino Acids
아미노산(AAS, Agilent, USA)을 3차 증류수에 20 중량%로 가하여 30분간 교반하였다. 그 후, 아미노산 가용물 20 중량%와 검은 콩 식물 단세포(Black soybean unicell, Healthy food ingredient Co., Ltd., JPN) 1 중량%를 증류수 79 중량%에 넣고 프로펠러 믹서(BL3000, Heidon, JPN)를 이용하여 800rpm, 20℃, 조건으로 1시간 동안 교반하였다. 교반 뒤 식물 세포 혼합액을 고압 장치(TFS-2L, TOYO KOATSU CO., LTD., JPN)를 이용하여 20 MPa, 25℃, 1시간 조건으로 고압을 가하였다. 고압을 거친 식물 세포 혼합액에 염화나트륨(Sodium Chloride, NaCl)을 2 중량% 넣고 프로펠러 믹서(BL3000, Heidon, JPN)를 이용하여 800rpm, 20℃, 조건으로 1시간 동안 역삼투를 유도, 탈수반응 시켰다. 그 후, 원심분리기(Supra 22K, Hanil, KOR)를 이용하여 9,000 rpm, 15℃ 조건으로 20분간 고속 원심분리하여 활성 물질이 인입된 식물 세포를 수득하였다. 이렇게 얻어진 식물 세포에 100배의 생리식염수(0.9 % NaCl 수용액)를 이용하여 표면을 세척 후 다시 원심분리기(Supra 22K, Hanil, KOR)를 이용하여 9,000 rpm, 15℃ 조건으로 20분간 고속 원심분리하여 시료를 수득하였다. 이와 같이 수득된 것을 "시료 2"라 하고, 하기 시험예에서 사용하였다.Amino acid (AAS, Agilent, USA) was added to the third distilled water at 20 wt% and stirred for 30 minutes. Thereafter, 20 wt% of the amino acid solubles and 1 wt% of black soybean unicell (Healthy food ingredient Co., Ltd., JPN) were added to 79 wt% of distilled water and the mixture was blended with a propeller mixer (BL3000, Heidon, JPN) And the mixture was stirred at 800 rpm and 20 ° C for 1 hour. After stirring, the plant cell mixture was pressurized at 20 MPa and 25 ° C for 1 hour using a high-pressure apparatus (TFS-2L, TOYO KOATSU CO., LTD., JPN). 2% by weight of sodium chloride (NaCl) was added to the mixed plant cell mixture under high pressure and reverse osmosis was induced for 1 hour at 800 rpm and 20 ° C using a propeller mixer (BL3000, Heidon, JPN). Subsequently, high-speed centrifugation was carried out using a centrifuge (Supra 22K, Hanil, KOR) at 9,000 rpm and 15 ° C for 20 minutes to obtain plant cells into which the active material was introduced. The plant cells thus obtained were washed with 100-fold physiological saline (0.9% NaCl aqueous solution) and then centrifuged at a speed of 9,000 rpm at 15 ° C for 20 minutes using a centrifuge (Supra 22K, Hanil, KOR) A sample was obtained. The thus obtained sample was called "
<실시예 3> 유기산 피트산의 안정화≪ Example 3 > Stabilization of organic acid phytic acid
피트산(50 %(w/w), Sigma, USA)을 3차 증류수에 10 중량%로 가하여 30분간 교반하였다. 그 후, 피트산 가용물 10 중량%와 검은 콩 식물 단세포(Black soybean unicell, Healthy food ingredient Co., Ltd., JPN) 10 중량%를 증류수 80 중량%에 넣고 프로펠러 믹서(BL3000, Heidon, JPN)를 이용하여 800rpm, 20℃, 조건으로 1시간 동안 교반하였다. 교반 뒤 식물 세포 혼합액을 고압 장치(TFS-2L, TOYO KOATSU CO., LTD., JPN)를 이용하여 20 MPa, 25℃ 조건에서 1시간 동안 고압을 가하였다. 고압을 거친 식물 세포 혼합액에 염화나트륨(Sodium Chloride, NaCl)을 2 중량% 넣고 프로펠러 믹서(BL3000, Heidon, JPN)를 이용하여 800rpm, 20℃, 조건으로 1시간 동안 역삼투를 유도, 탈수반응 시켰다. 그 후, 원심분리기(Supra 22K, Hanil, KOR)를 이용하여 9,000 rpm, 15℃ 조건으로 20분간 고속 원심분리하여 활성 물질이 인입된 식물 세포를 수득하였다. 이렇게 얻어진 식물 세포에 100배의 생리식염수(0.9 % NaCl 수용액)를 이용하여 표면을 세척한 후 다시 원심분리기(Supra 22K, Hanil, KOR)를 이용하여 9,000 rpm, 15℃ 조건으로 20분간 고속 원심분리하여 시료를 수득하였다. 이와 같이 수득된 것을 "시료 3"이라 하고, 하기 시험예에서 사용하였다.(50% (w / w), Sigma, USA) was added to tertiary distilled water in an amount of 10% by weight and stirred for 30 minutes. Then, 10 wt% of phytic acid soluble matter and 10 wt% of black soybean unicell (Healthy food ingredient Co., Ltd., JPN) were added to 80 wt% of distilled water, and a propeller mixer (BL3000, Heidon, JPN) And the mixture was stirred at 800 rpm and 20 캜 for 1 hour. After stirring, the plant cell mixture was subjected to high pressure for 1 hour at 20 MPa and 25 ° C using a high-pressure apparatus (TFS-2L, TOYO KOATSU CO., LTD., JPN). 2% by weight of sodium chloride (NaCl) was added to the mixed plant cell mixture under high pressure and reverse osmosis was induced for 1 hour at 800 rpm and 20 ° C using a propeller mixer (BL3000, Heidon, JPN). Subsequently, high-speed centrifugation was carried out using a centrifuge (Supra 22K, Hanil, KOR) at 9,000 rpm and 15 ° C for 20 minutes to obtain plant cells into which the active material was introduced. The plant cells thus obtained were washed with 100 times physiological saline solution (0.9% NaCl solution) and centrifuged at a speed of 9,000 rpm at 15 ° C for 20 minutes using a centrifuge (Supra 22K, Hanil, KOR) To obtain a sample. The sample thus obtained was called "
<실시예 4> 수용성 비타민 L-아스코르브산(L-Ascorbic acid)의 안정화Example 4 Stability of Water-Soluble Vitamin L-Ascorbic Acid
L-아스코르브산(>99%, Samchun, KOR)을 3차 증류수에 20 중량%로 가하여 30분간 교반하였다. 그 후, 아스코르브산 가용물 10 중량%와 검은 콩 식물 단세포(Black soybean unicell, Healthy food ingredient Co., Ltd., JPN) 10 중량%를 증류수 80 중량%에 넣고 프로펠러 믹서(BL3000, Heidon, JPN)를 이용하여 800rpm, 20℃, 조건으로 1시간 동안 교반하였다. 교반 뒤 식물 세포 혼합액을 고압 장치(TFS-2L, TOYO KOATSU CO., LTD., JPN)를 이용하여 20 MPa, 25℃ 조건에서 1시간 동안 고압을 가하였다. 고압을 거친 식물 세포 혼합액에 염화나트륨(Sodium Chloride, NaCl)을 2 중량% 넣고 프로펠러 믹서(BL3000, Heidon, JPN)를 이용하여 800rpm, 20℃, 조건으로 1시간 동안 역삼투를 유도, 탈수반응 시켰다. 그 후, 원심분리기(Supra 22K, Hanil, KOR)를 이용하여 9,000 rpm, 15℃ 조건으로 20분간 고속 원심분리하여 활성 물질이 인입된 식물 세포를 수득하였다. 이렇게 얻어진 식물 세포에 100배의 생리식염수(0.9 % NaCl 수용액)를 이용하여 표면을 세척 후 다시 원심분리기(Supra 22K, Hanil, KOR)를 이용하여 9,000 rpm, 15℃ 조건으로 20분간 고속 원심분리하여 시료를 수득하였다. 이와 같이 수득된 것을 "시료 4"라 하고, 하기 시험예에서 사용하였다.L-ascorbic acid (> 99%, Samchun, KOR) was added to the third distilled water in an amount of 20% by weight and stirred for 30 minutes. 10% by weight of ascorbic acid soluble substance and 10% by weight of black soybean unicell (Healthy food ingredient Co., Ltd., JPN) were added to 80% by weight of distilled water, and a propeller mixer (BL3000, Heidon, JPN) And the mixture was stirred at 800 rpm and 20 캜 for 1 hour. After stirring, the plant cell mixture was subjected to high pressure for 1 hour at 20 MPa and 25 ° C using a high-pressure apparatus (TFS-2L, TOYO KOATSU CO., LTD., JPN). 2% by weight of sodium chloride (NaCl) was added to the mixed plant cell mixture under high pressure and reverse osmosis was induced for 1 hour at 800 rpm and 20 ° C using a propeller mixer (BL3000, Heidon, JPN). Subsequently, high-speed centrifugation was carried out using a centrifuge (Supra 22K, Hanil, KOR) at 9,000 rpm and 15 ° C for 20 minutes to obtain plant cells into which the active material was introduced. The plant cells thus obtained were washed with 100-fold physiological saline (0.9% NaCl aqueous solution) and then centrifuged at a speed of 9,000 rpm at 15 ° C for 20 minutes using a centrifuge (Supra 22K, Hanil, KOR) A sample was obtained. The thus obtained sample was referred to as "
소수성 활성 물질의 안정화Stabilization of hydrophobic active material
<실시예 5> 이소플라본 제니스테인(Genistein)의 안정화Example 5 Stabilization of Isoflavonan Genistein
제니스테인(>99%, Sigma, USA)을 99.5 % 에틸알코올(Ethyl Alcohol,Ethanol)에 5 중량%로 가하여 30분간 교반하였다. 그 후, 제니스테인 가용물 10 중량%와 검은 콩 식물 단세포(Black soybean unicell, Healthy food ingredient Co., Ltd., JPN) 10 중량%를 증류수 80 중량%에 넣고 프로펠러 믹서(BL3000, Heidon, JPN)를 이용하여 800rpm, 20℃, 조건으로 1시간 동안 교반하였다. 교반 뒤 식물 세포 혼합액을 고압 장치(TFS-2L, TOYO KOATSU CO., LTD., JPN)를 이용하여 20 MPa, 25℃ 조건에서 1시간 동안 고압을 가하였다. 고압을 거친 식물 세포 혼합액에 염화나트륨(Sodium Chloride, NaCl)을 2 중량% 넣고 프로펠러 믹서(BL3000, Heidon, JPN)를 이용하여 800rpm, 20℃, 조건으로 1시간 동안 역삼투를 유도, 탈수반응 시켰다. 그 후, 원심분리기(Supra 22K, Hanil, KOR)를 이용하여 9,000 rpm, 15℃ 조건으로 20분간 고속 원심분리하여 활성 물질이 인입된 식물 세포를 수득하였다. 이렇게 얻어진 식물 세포에 100배의 생리식염수(0.9 % NaCl 수용액)를 이용하여 표면을 세척 후 다시 원심분리기(Supra 22K, Hanil, KOR)를 이용하여 9,000 rpm, 15℃ 조건으로 20분간 고속 원심분리하여 시료를 수득하였다. 이와 같이 수득된 것을 "시료 5"라 하고, 하기 시험예에서 사용하였다.5% by weight of genistein (> 99%, Sigma, USA) was added to 99.5% ethyl alcohol (Ethanol) and stirred for 30 minutes. 10 wt% of genistein solubles and 10 wt% of black soybean unicell (Healthy food ingredient Co., Ltd., JPN) were added to 80 wt% of distilled water, and the mixture was treated with a propeller mixer (BL3000, Heidon, JPN) And the mixture was stirred at 800 rpm and 20 ° C for 1 hour. After stirring, the plant cell mixture was subjected to high pressure for 1 hour at 20 MPa and 25 ° C using a high-pressure apparatus (TFS-2L, TOYO KOATSU CO., LTD., JPN). 2% by weight of sodium chloride (NaCl) was added to the mixed plant cell mixture under high pressure and reverse osmosis was induced for 1 hour at 800 rpm and 20 ° C using a propeller mixer (BL3000, Heidon, JPN). Subsequently, high-speed centrifugation was carried out using a centrifuge (Supra 22K, Hanil, KOR) at 9,000 rpm and 15 ° C for 20 minutes to obtain plant cells into which the active material was introduced. The plant cells thus obtained were washed with 100-fold physiological saline (0.9% NaCl aqueous solution) and then centrifuged at a speed of 9,000 rpm at 15 ° C for 20 minutes using a centrifuge (Supra 22K, Hanil, KOR) A sample was obtained. The sample thus obtained was referred to as "
<실시예 6> 플라보노이드 에피갈로카테킨 갈레이트(EGCG)의 안정화Example 6 Stabilization of a flavonoid epigallocatechin gallate (EGCG)
에피갈로카테킨 갈레이트(>99%, Sigma, USA)를 70% 에틸알코올(Ethyl Alcohol,Ethanol) 수용액에 5 중량%로 가하여 30분간 교반하였다. 그 후, 에피갈로카테킨 갈레이트(EGCG) 가용물 10 중량%와 검은 콩 식물 단세포(Black soybean unicell, Healthy food ingredient Co., Ltd., JPN) 10 중량%를 증류수 80 중량%에 넣고 프로펠러 믹서(BL3000, Heidon, JPN)를 이용하여 800rpm, 20℃, 조건으로 1시간 동안 교반하였다. 교반 뒤 식물 세포 혼합액을 고압 장치(TFS-2L, TOYO KOATSU CO., LTD., JPN)를 이용하여 20 MPa, 25℃, 1시간 조건으로 고압을 가하였다. 고압을 거친 식물 세포 혼합액에 염화나트륨(Sodium Chloride, NaCl)을 2 중량% 넣고 프로펠러 믹서(BL3000, Heidon, JPN)를 이용하여 800rpm, 20℃, 조건으로 1시간 동안 역삼투를 유도, 탈수반응 시켰다. 그 후, 원심분리기(Supra 22K, Hanil, KOR)를 이용하여 9,000 rpm, 15℃ 조건으로 20분간 고속 원심분리하여 활성 물질이 인입된 식물 세포를 수득하였다. 이렇게 얻어진 식물 세포에 100배의 생리식염수(0.9 % NaCl 수용액)을 이용하여 표면을 세척 후 다시 원심분리기(Supra 22K, Hanil, KOR)를 이용하여 9,000 rpm, 15℃ 조건으로 20분간 고속 원심분리하여 시료를 수득하였다. 이와 같이 수득된 것을 "시료 6"이라 하고, 하기 시험예에서 사용하였다.Epigallocatechin gallate (> 99%, Sigma, USA) was added to an aqueous solution of 70% ethyl alcohol (Ethyl alcohol, Ethanol) in an amount of 5% by weight and stirred for 30 minutes. Then, 10 wt% of epigallocatechin gallate (EGCG) solubles and 10 wt% of black soybean unicell (Healthy food ingredient Co., Ltd., JPN) were added to 80 wt% of distilled water, BL3000, Heidon, JPN) at 800 rpm and 20 ° C for 1 hour. After stirring, the plant cell mixture was pressurized at 20 MPa and 25 ° C for 1 hour using a high-pressure apparatus (TFS-2L, TOYO KOATSU CO., LTD., JPN). 2% by weight of sodium chloride (NaCl) was added to the mixed plant cell mixture under high pressure and reverse osmosis was induced for 1 hour at 800 rpm and 20 ° C using a propeller mixer (BL3000, Heidon, JPN). Subsequently, high-speed centrifugation was carried out using a centrifuge (Supra 22K, Hanil, KOR) at 9,000 rpm and 15 ° C for 20 minutes to obtain plant cells into which the active material was introduced. The plant cells thus obtained were washed with 100-fold physiological saline (0.9% NaCl aqueous solution) and centrifuged at 9,000 rpm and 15 ° C for 20 minutes using a centrifuge (Supra 22K, Hanil, KOR) A sample was obtained. The sample thus obtained was referred to as "
<실시예 7> 지용성 비타민 레티놀의 안정화<Example 7> Stabilization of fat-soluble vitamin retinol
레티놀(>99%, Sigma, USA)을 99.5 % 에틸알코올(Ethyl Alcohol,Ethanol) 수용액에 5 중량%로 가하여 30분간 교반하였다. 그 후, 레티놀 가용물 10 중량%와 검은 콩 식물 단세포(Black soybean unicell, Healthy food ingredient Co., Ltd., JPN) 10 중량%를 증류수 80 중량%에 넣고 프로펠러 믹서(BL3000, Heidon, JPN)를 이용하여 800rpm, 20℃, 조건으로 1시간 동안 교반하였다. 교반 뒤 식물 세포 혼합액을 고압 장치(TFS-2L, TOYO KOATSU CO., LTD., JPN)를 이용하여 20 MPa, 25℃ 조건에서 1시간 동안 고압을 가하였다. 고압을 거친 식물 세포 혼합액에 염화나트륨(Sodium Chloride, NaCl)을 2 중량% 넣고 프로펠러 믹서(BL3000, Heidon, JPN)을 이용하여 800rpm, 20℃, 조건으로 1시간 동안 역삼투를 유도, 탈수반응 시켰다. 그 후, 원심분리기(Supra 22K, Hanil, KOR)를 이용하여 9,000 rpm, 15℃ 조건으로 20분간 고속 원심분리하여 활성 물질이 인입된 식물 세포를 수득하였다. 이렇게 얻어진 식물 세포에 100배의 생리식염수(0.9 % NaCl 수용액)를 이용하여 표면을 세척 후 다시 원심분리기(Supra 22K, Hanil, KOR)를 이용하여 9,000 rpm, 15℃ 조건으로 20분간 고속 원심분리하여 시료를 수득하였다. 이와 같이 수득된 것을 "시료 7"이라 하고, 하기 시험예에서 사용하였다.5% by weight of retinol (> 99%, Sigma, USA) was added to an aqueous solution of 99.5% ethyl alcohol (Ethanol) and stirred for 30 minutes. Then, 10 wt% of retinol-soluble matter and 10 wt% of black soybean unicell (Healthy food ingredient Co., Ltd., JPN) were added to 80 wt% of distilled water and the mixture was blended with a propeller mixer (BL3000, Heidon, JPN) And the mixture was stirred at 800 rpm and 20 ° C for 1 hour. After stirring, the plant cell mixture was subjected to high pressure for 1 hour at 20 MPa and 25 ° C using a high-pressure apparatus (TFS-2L, TOYO KOATSU CO., LTD., JPN). 2% by weight of sodium chloride (NaCl) was added to the mixed plant cell mixture under high pressure, and dehydration reaction was induced by using a propeller mixer (BL3000, Heidon, JPN) at 800 rpm and 20 ° C for 1 hour. Subsequently, high-speed centrifugation was carried out using a centrifuge (Supra 22K, Hanil, KOR) at 9,000 rpm and 15 ° C for 20 minutes to obtain plant cells into which the active material was introduced. The plant cells thus obtained were washed with 100-fold physiological saline (0.9% NaCl aqueous solution) and then centrifuged at a speed of 9,000 rpm at 15 ° C for 20 minutes using a centrifuge (Supra 22K, Hanil, KOR) A sample was obtained. The sample thus obtained was called "
[시험예 1] 고속액체크로마토그래피(HPLC) 성분분석[Test Example 1] High-performance liquid chromatography (HPLC) component analysis
본 발명의 식물 세포 내에 안정화된 활성 물질의 봉입효율 및 성분분석을 위해 하기와 같이 분석을 실시하였다.
In order to analyze the efficiency and components of the active substance stabilized in plant cells of the present invention, analysis was conducted as follows.
[친수성 활성 물질][Hydrophilic active substance]
(1) 페놀성 화합물 갈릭산(1) Phenolic Compound Glaric Acid
본 발명의 식물 세포 내에 안정화된 갈릭산의 봉입효율 및 성분분석을 위하여 고속액체크로마토그래피(HPLC)를 이용해 분석을 수행하였다. 시료는 각 용매로 적당 농도를 제조 하여 0.2 um 디스크 필터에 여과, 전처리 후 기기에 주입하였다. 기기는 고속액체크로마토그래피(Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA)를 사용하여 UV 254 ~ 340 nm영역에서 분석하였으며, C18컬럼(Zorbax XDB-C18 4.6 x 250mm, Agilent, USA)을 사용하여 2% 아세트산용매와 아세토나이트릴(ACN)용매를 사용한 기울기 용법으로 분석하였다. 분석에 사용된 용매는 HPLC급 시약을 사용하였으며, 표준물질로는 갈릭산(>99%, Sigma, USA)를 사용하여 성분분석을 수행하였다. 분석결과는 [도 2a], [표 1]과 같다.
The analysis was carried out using high performance liquid chromatography (HPLC) for the gallic acid inclusion efficiency and component analysis in the plant cells of the present invention. Samples were prepared at appropriate concentrations with each solvent and filtered into a 0.2 μm disk filter, pre-treated and injected into the instrument. The instrument was analyzed in the UV 254 to 340 nm region using high performance liquid chromatography (Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA) and analyzed using a C18 column (Zorbax XDB-C18 4.6 x 250 mm, Agilent, USA) Acetic acid solvent and acetonitrile (ACN) solvent. The analytical solvents used were HPLC grade reagents and component analysis was performed using gallic acid (> 99%, Sigma, USA) as a standard. The analysis results are shown in [Figure 2a] and [Table 1].
(2) 아미노산(2) Amino acid
본 발명의 식물 세포 내에 안정화된 아미노산의 봉입효율 및 성분분석을 위하여 시료를 각 용매로 적당 농도를 제조하여 0.2 um 디스크 필터에 여과, 전처리 후 o-프탈알데히드(o-phthalaldehyde, OPA Agilent), 9-풀루오레닐메틸클로로포름(9-fluorenylmethylchloroformate.FMOC) 유도체를 사용하여 형광을 띄는 이소인돌(isoindole)을 형성시킨 후 고속액체크로마토그래피(Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA)를 이용한 형광검출기(FLD, Agilent Technologies, USA)에서 아미노산을 검출하였으며 표준물질로 250 pM 표준 아미노산 분석(Amino acid Analysis Standard; AAS, Agilent, USA)을 사용하여 검량선을 작성하고, 성분분석을 수행하였다. 분석결과는 [도 2b], [표 1]에 나타내었다.
In order to analyze the efficiency and components of the stabilized amino acid in the plant cells of the present invention, a sample was prepared at a proper concentration, filtered through a 0.2 μm disk filter, pre-treated with o-phthalaldehyde (OPA Agilent) Fluorescence detector (FLD) using high performance liquid chromatography (Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA) after forming fluorescence isoindole by using 9-fluorenylmethylchloroformate (FOC) , Agilent Technologies, USA). Amino acid analysis was performed using 250 pM standard amino acid analysis standard (AAS, Agilent, USA) as a reference material. The analysis results are shown in [Figure 2b] and [Table 1].
(3) 유기산 피트산(3) Organic acid phytic acid
본 발명의 식물 세포 내에 안정화된 피트산의 봉입효율 및 성분분석을 위하여 시료를 각 용매로 적당 농도를 제조하여 0.2 um 디스크필터(disk filter)에 여과, 전처리 후 고속액체크로마토그래피(Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA)를 이용한 증기화광산란검출기(Eraporative Light Scaterring Detector; ELSD 3300, Alltech, USA)를 통해 피트산을 검출하였으며 용출액은 3차 증류수, 컬럼온도는 25℃, 유속은 0.5 ml/min, 가스유속은 1.4 L/min, 게인(Gain)은 1로 고정하고, 표준물질로 피트산(Sigma, USA)을 사용하여 검량선을 작성하고, 성분분석을 수행하였다. 분석결과는 [도 2c], [표 1]에 나타내었다.
In order to analyze the filling efficiency and components of the stabilized phytic acid in the plant cells of the present invention, the samples were prepared at appropriate concentrations with each solvent, filtered and pre-treated on a 0.2 μm disk filter, and then subjected to high performance liquid chromatography (Agilent Technologies 1200 Series HPLC analysis was carried out using an evaporative light scattering detector (ELSD 3300, Alltech, USA) using HPLC, Agilent, USA. The eluent was tertiary distilled water, the column temperature was 25 ° C, the flow rate was 0.5 ml / min , The gas flow rate was fixed at 1.4 L / min and the gain was set at 1, and a calibration curve was prepared using a standard substance (Sigma, USA), and component analysis was performed. The results of the analysis are shown in [Figure 2c] and [Table 1].
(4) 수용성 비타민 비타민 C(4) Water-soluble vitamin Vitamin C
본 발명의 식물 세포 내에 안정화된 비타민 C의 봉입효율 및 성분분석을 위하여 시료를 각 용매로 적당 농도를 제조하여 0.2 um 디스크 필터에 여과, 전처리 후 고속액체크로마토그래피(Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA)를 이용하여 다이오드 배열 검출기(Diode Array Detector, DAD; UV, 254nm)로 분석하였고, 이동상은 0.05M KH2PO4 : ACN = 60 : 40 (v/v)으로 고정하여 1.0 ml/min의 유속으로 흘려주었다. 표준물질로 L-아스코르브산(>99%, Samchun, KOR)를 사용하여 검량선을 작성하고, 성분분석을 수행하였다. 분석결과는 [도 2d], [표 1]에 나타내었다. 고속액체크로마토그래피(Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA)를 이용한 친수성 활성 물질 식물 세포 내에 안정화 시료의 함량은 하기 표 1과 같으며, 봉입효율은 하기 수학식 1에 의거하여 계산하여 나타내었다.
For the analysis of the efficiency and components of the stabilized vitamin C in the plant cells of the present invention, samples were filtered with a 0.2 μm disk filter and purified by high performance liquid chromatography (Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, The mobile phase was fixed with 0.05M KH 2 PO 4 : ACN = 60:40 (v / v) and the concentration of 1.0 ml / min was measured using a diode array detector (DAD; Flow rate. Calibration curves were prepared using L-ascorbic acid (> 99%, Samchun, KOR) as a reference material and component analysis was performed. The results of the analysis are shown in [Figure 2d] and [Table 1]. The content of the stabilized sample in the plant cell of the hydrophilic active substance using the high performance liquid chromatography (Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA) is shown in Table 1 below and the filling efficiency was calculated by the following formula (1).
[수학식 1][Equation 1]
※
※
[소수성 활성 물질][Hydrophobic active material]
(5) 이소플라본 제니스테인(Genistein)(5) Isoflavones Genistein
본 발명의 식물 세포 내에 안정화된 제니스테인의 봉입효율 및 성분분석을 위하여 고속액체크로마토그래피(HPLC)를 이용해 분석을 수행하였다. 시료는 각 용매로 적당 농도를 제조 하여 0.2 um 디스트 필터에 여과, 전처리 후 기기에 주입하였다. 기기는 고속액체크로마토그래피(Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA)를 사용하여 UV 254 ~ 340 nm영역에서 분석하였으며, C18컬럼(Zorbax XDB-C18 4.6 x 250mm, Agilent, USA)을 사용하여 2% 아세트산 용매와 아세토나이트릴(Acetonitrile, ACN)용매를 사용한 기울기 용법으로 분석하였다. 분석에 사용된 용매는 고속액체크로마토그래피급 시약을 사용하였으며, 표준물질로는 제니스테인(>99%, Sigma, USA)를 사용하여 성분분석을 수행하였다. 분석결과는 [도 3a], [표 2]과 같다.
Analysis was carried out by means of high performance liquid chromatography (HPLC) in order to analyze the encapsulation efficiency and components of stabilized genistein in plant cells of the present invention. Samples were prepared at appropriate concentrations with each solvent, filtered through a 0.2 um distill filter, and pretreated and injected into the instrument. The instrument was analyzed in the UV 254 to 340 nm region using high performance liquid chromatography (Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA) and analyzed using a C18 column (Zorbax XDB-C18 4.6 x 250 mm, Agilent, USA) Acetic acid solvent and acetonitrile (ACN) solvent. The solvent used for the analysis was high-performance liquid chromatography reagent, and component analysis was performed using genistein (> 99%, Sigma, USA) as a reference material. The analysis results are shown in [Figure 3a] and [Table 2].
(6) 플라보노이드 에피갈로카테킨 갈레이트(EGCG)(6) Flavonoids Epigallocatechin gallate (EGCG)
본 발명의 식물 세포 내에 안정화된 에피갈로카테킨 갈레이트(EGCG)의 봉입효율 및 성분분석을 위하여 고속액체크로마토그래피(HPLC)를 이용해 분석을 수행하였다. 시료는 각 용매로 적당 농도를 제조 하여 0.2 um 디스크 필터에 여과, 전처리 후 기기에 주입하였다. 기기는 고속액체크로마토그래피(Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA)를 사용하여 UV 254 ~ 340 nm영역에서 분석하였으며, C18컬럼(Zorbax XDB-C18 4.6 x 250mm, Agilent, USA)을 사용하여 2% 아세트산용매와 아세토나이트릴(Acetonitrile, ACN)용매를 사용한 기울기 용법으로 분석하였다. 분석에 사용된 용매는 고속액체크로마토그래피급 시약을 사용하였으며, 표준물질로는 에피갈로카테킨 갈레이트(>99%, Sigma, USA)를 사용하여 성분분석을 수행하였다. 분석결과는 [도 3b], [표 2]와 같다.
Analysis was performed using high performance liquid chromatography (HPLC) for the analysis of the encapsulation efficiency and composition of epigallocatechin gallate (EGCG) stabilized in plant cells of the present invention. Samples were prepared at appropriate concentrations with each solvent and filtered into a 0.2 μm disk filter, pre-treated and injected into the instrument. The instrument was analyzed in the UV 254 to 340 nm region using high performance liquid chromatography (Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA) and analyzed using a C18 column (Zorbax XDB-C18 4.6 x 250 mm, Agilent, USA) Acetic acid solvent and acetonitrile (ACN) solvent. The solvent used for the analysis was a high-performance liquid chromatography reagent, and the component analysis was performed using epigallocatechin gallate (> 99%, Sigma, USA) as a reference material. The analysis results are shown in [Figure 3b] and [Table 2].
(7) 지용성 비타민 레티놀(7) fat soluble vitamin retinol
본 발명의 식물 세포 내에 안정화된 레티놀의 봉입효율 및 성분분석을 위하여 고속액체크로마토그래피(HPLC)를 이용해 분석을 수행하였다. 시료는 각 용매로 적당 농도를 제조 하여 0.2 um 디스크 필터에 여과, 전처리 후 기기에 주입하였다. 기기는 고속액체크로마토그래피(Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA)를 사용하여 UV 325 nm영역에서 분석하였으며, 유속 1 ml/min, 컬럼온도 25℃, C18컬럼(Zorbax XDB-C18 4.6 x 150mm, Agilent, USA)을 사용하여 90% 메탄올(MeOH) 수용액 용매를 사용하여 분석하였다. 분석에 사용된 용매는 고속액체크로마토그래피급 시약을 사용하였으며, 표준물질로는 레티놀(>99%, Sigma, USA)를 사용하여 성분분석을 수행하였다. 분석결과는 [도 3c], [표 2]과 같다. 고속액체크로마토그래피(Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA)를 이용한 소수성 활성 물질 식물 세포 내에 안정화 시료의 함량은 하기 표 2와 같으며, 봉입효율은 상기 수학식 1에 의거하여 계산하여 나타내었다.
Analysis was carried out using high performance liquid chromatography (HPLC) for the purpose of analyzing the retention efficiency and components of stabilized retinol in plant cells of the present invention. Samples were prepared at appropriate concentrations with each solvent and filtered into a 0.2 μm disk filter, pre-treated and injected into the instrument. The instrument was analyzed in the UV 325 nm region using high performance liquid chromatography (Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA) and analyzed on a C18 column (Zorbax XDB-C18 4.6 x 150 mm, Agilent, USA) using a 90% methanol (MeOH) aqueous solution. The solvent used for the analysis was high-performance liquid chromatography reagent and component analysis was performed using retinol (> 99%, Sigma, USA) as a reference material. The analysis results are shown in [Figure 3c] and [Table 2]. The content of the stabilized sample in the plant cell of the hydrophobic active material using the high-performance liquid chromatography (Agilent Technologies 1200 Series HPLC, Agilent, USA) is shown in Table 2 below and the filling efficiency was calculated according to the formula (1).
[제형실시예 1 및 제형비교예 1][Formulation Example 1 and Formulation Comparative Example 1]
상기 실시예 1에 따른 식물 세포 내에 안정화된 갈릭산를 포함한 영양크림의 성분구성을 하기 [표 3]과 같이 구성하여 제조하였다.
The composition of the nutritional cream containing galactic acid stabilized in plant cells according to Example 1 was prepared as shown in Table 3 below.
상기 표 3의 조성으로 구성된 성분 중에서 먼저 원료 12 내지 18의 수성성분을 80 ℃로 가온하여 완전 용해시킨 다음, 원료 1내지 11을 80 ℃로 가온하여 상기 원료 12 내지 18의 용액에 투입하고 호모믹서(Homo Mixer Mark Ⅱ, Primix, JPN)를 이용하여 3000 rpm에서 15분간 유화시켰다. 그 후, 원료 19를 투입하여 5분간 교반 시킨 후 실온으로 냉각하였다.
First, the aqueous components of the
[제형실시예 2 및 제형비교예 2][Formulation Example 2 and Formulation Comparative Example 2]
상기 실시예 2에 따른 식물 세포 내에 안정화된 아미노산을 포함한 영양크림의 성분구성을 하기 [표 4]와 같이 구성하여 제조하였다.
The composition of the nutritional cream containing the amino acid stabilized in the plant cell according to Example 2 was prepared as shown in Table 4 below.
상기 표 4의 조성으로 구성된 성분 중에서 먼저 원료 12 내지 18의 수성성분을 80 ℃로 가온하여 완전 용해시킨 다음, 원료 1내지 11을 80 ℃로 가온하여 상기 원료 12 내지 18의 용액에 투입하고 호모믹서(Homo Mixer Mark Ⅱ, Primix, JPN)를 이용하여 3000 rpm에서 15분간 유화시켰다. 그 후, 원료 19를 투입하여 5분간 교반 시킨 후 실온으로 냉각하였다.
First, the aqueous components of
[제형실시예 3 및 제형비교예 3][Formulation Example 3 and Formulation Comparative Example 3]
상기 실시예 3에 따른 식물 세포 내에 안정화된 피트산를 포함한 영양크림의 성분구성을 하기 [표 5]와 같이 구성하여 제조하였다.
The composition of the nutritional cream containing the phytic acid stabilized in the plant cell according to Example 3 was constructed as shown in Table 5 below.
상기 표 5의 조성으로 구성된 성분 중에서 먼저 원료 12 내지 18의 수성성분을 80 ℃로 가온하여 완전 용해시킨 다음, 원료 1내지 11을 80 ℃로 가온하여 상기 원료 12 내지 18의 용액에 투입하고 호모믹서(Homo Mixer Mark Ⅱ, Primix, JPN)를 이용하여 3000 rpm에서 15분간 유화시켰다. 그 후, 원료 19를 투입하여 5분간 교반 시킨 후 실온으로 냉각하였다.
First, the aqueous components of the
[제형실시예 4 및 제형비교예 4][Formulation Example 4 and Formulation Comparative Example 4]
상기 실시예 4에 따른 식물 세포 내에 안정화된 비타민C를 포함한 영양크림의 성분구성을 하기 [표 6]과 같이 구성하여 제조하였다.
The composition of the nutritional cream containing vitamin C stabilized in plant cells according to Example 4 was prepared as shown in Table 6 below.
상기 표 6의 조성으로 구성된 성분 중에서 먼저 원료 12 내지 18의 수성성분을 80 ℃로 가온하여 완전 용해시킨 다음, 원료 1내지 11을 80 ℃로 가온하여 상기 원료 12 내지 18의 용액에 투입하고 호모믹서(Homo Mixer Mark Ⅱ, Primix, JPN)를 이용하여 3000 rpm에서 15분간 유화시켰다. 그 후, 원료 19를 투입하여 5분간 교반 시킨 후 실온으로 냉각하였다.
First, the aqueous components of
[제형실시예 5 및 제형비교예 5][Formulation Example 5 and Formulation Comparative Example 5]
상기 실시예 5에 따른 식물 세포 내에 안정화된 제니스테인을 포함한 영양크림의 성분구성을 하기 [표 7]과 같이 구성하여 제조하였다.
The composition of the nutritional cream containing the stabilized genistein in the plant cell according to Example 5 was prepared as shown in Table 7 below.
상기 표 7의 조성으로 구성된 성분 중에서 먼저 원료 12 내지 16, 18의 수성성분을 80 ℃로 가온하여 완전 용해시킨 다음, 원료 1내지 11, 17을 80 ℃로 가온하여 상기 원료 12 내지 16, 18의 용액에 투입하고 호모믹서(Homo Mixer Mark Ⅱ, Primix, JPN)를 이용하여 3000 rpm에서 15분간 유화시켰다. 그 후, 원료 19를 투입하여 5분간 교반 시킨 후 실온으로 냉각하였다.
The aqueous components of the
[제형실시예 6 및 제형비교예 6][Formulation Example 6 and Formulation Comparative Example 6]
상기 실시예 6에 따른 식물 세포 내에 안정화된 에피갈로카테킨 갈레이트(EGCG)를 포함한 영양크림의 성분구성을 하기 [표 8]과 같이 구성하여 제조하였다.
The composition of the nutritional cream containing epigallocatechin gallate (EGCG) stabilized in the plant cell according to Example 6 was prepared as shown in Table 8 below.
상기 표 8의 조성으로 구성된 성분 중에서 먼저 원료 12 내지 18의 수성성분을 80 ℃로 가온하여 완전 용해시킨 다음, 원료 1내지 11을 80 ℃로 가온하여 상기 원료 12 내지 18의 용액에 투입하고 호모믹서(Homo Mixer Mark Ⅱ, Primix, JPN)를 이용하여 3000 rpm에서 15분간 유화시켰다. 그 후, 원료 19를 투입하여 5분간 교반 시킨 후 실온으로 냉각하였다.
First, the aqueous components of the
[제형실시예 7 및 제형비교예 7][Formulation Example 7 and Formulation Comparative Example 7]
상기 실시예 7에 따른 식물 세포 내에 안정화된 레티놀을 포함한 영양크림의 성분구성을 하기 표 9와 같이 구성하여 제조하였다.
The composition of the nutritional cream containing retinol stabilized in the plant cell according to Example 7 was prepared as shown in Table 9 below.
상기 표 9의 조성으로 구성된 성분 중에서 먼저 원료 12 내지 16, 18의 수성성분을 80 ℃로 가온하여 완전 용해시킨 다음, 원료 1내지 11, 17을 80 ℃로 가온하여 상기 원료 12 내지 16, 18의 용액에 투입하고 호모믹서(Homo Mixer Mark Ⅱ, Primix, JPN)를 이용하여 3000 rpm에서 15분간 유화시켰다. 그 후, 원료 19를 투입하여 5분간 교반 시킨 후 실온으로 냉각하였다.
The aqueous components of the
[시험예 2] 제형 안정도 실험[Test Example 2] Formulation stability experiment
본 발명의 식물 세포 내에 안정화된 활성 물질의 제형 내에 안정도 실험을 위해 상기와 같이 제조된 각 제형실시예 및 제형비교예를 90℃ 가혹조건 하에 시간별로 샘플링하여 고속액체크로마토그래피 분석 후 시간 흐름에 따른 활성성분의 임의적 단위(Arbitary unit. A.U.) 감소로 안정도를 나타내었다(도 4a 내지 도 4d 및 도 5a 내지 도 5c 참조).
For the stability test in the formulation of the active substance stabilized in the plant cell of the present invention, each of the formulation examples and the formulation comparative examples prepared as described above were sampled under the harsh condition at 90 캜 under the harsh conditions and analyzed according to the time course after high performance liquid chromatography analysis And showed stability by decreasing the arbitrary unit (Arbitary unit. AU) of the active ingredient (see Figs. 4A to 4D and Figs. 5A to 5C).
[시험예 3] 염색법에 의한 현미경 세포관찰 [Test Example 3] Observation of microscopic cells by staining method
본 발명의 식물 세포 내에 안정화된 활성 물질의 세포관찰을 위해 하기와 같이 현미경 관찰을 수행하였다. 현미경 관찰은 염색법을 이용하여 수행하였다. 시료 1을 100배의 3차 증류수로 희석, 30초간 실험용 교반기를 이용하여 섞은(Vortexing) 후 메틸렌블루(Sigma, USA)를 이용하여 염색을 하였다. 염색 후 광학 현미경(Eclipse E600, Nikon, JPN)을 이용하여 최종배율 100배에서 관찰하였으며, 영상을 캡쳐하여 [도 6]에 나타내었다.
In order to observe cells of the active substance stabilized in plant cells of the present invention, microscopic observation was carried out as follows. Microscopic observations were performed using staining.
이하, 본 발명의 제형예로서 유연 화장수, 수렴화장수, 영양 화장수, 마사지 크림, 에센스 및 팩을 예시하나 본 발명의 화장료 조성물의 제형은 이에 제한되는 것으로 해석해서는 안 되며, 본 발명의 범위 내에서 당업자의 통상적인 변화가 가능하다.
Examples of formulations of the present invention are a soft lotion, a convergent lotion, a nutritional lotion, a massage cream, an essence and a pack, but the formulation of the cosmetic composition of the present invention should not be construed as being limited thereto. Lt; / RTI > is possible.
표 10은 유연화장수 제형예를 나타낸다[제형예1].Table 10 shows an example of a softening longevity formulation [Formulation Example 1].
표 11은 수렴화장수의 제형예를 나타낸다[제형예2].Table 11 shows a formulation example of convergent lotion [Formulation Example 2].
표 12는 영양화장수의 제형예를 나타낸다[제형예3].Table 12 shows a formulation example of a nutritional lotion [Formulation Example 3].
표 13은 에센스의 제형예를 나타낸다[제형예4].Table 13 shows a formulation example of essence [Formulation Example 4].
표 14는 팩의 제형예를 나타낸다[제형예5].Table 14 shows a formulation example of a pack [Formulation Example 5].
Claims (8)
A cosmetic composition comprising plant cells in which an active substance is introduced into a cell wall.
상기 활성 물질은 친수성 물질 및 소수성 물질로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상인 것을 특징으로 하는 화장료 조성물.
The method according to claim 1,
Wherein the active material is at least one selected from the group consisting of a hydrophilic substance and a hydrophobic substance.
상기 활성 물질은 갈릭산(Gallic acid), 아미노산, 피트산(Phytic acid), L-아스코르브산(L-Ascorbic acid), 알부틴, 프룩토스 디포스페이트, 트리소듐 프룩토스, 1, 6-디포스페이트 아데노신, 나이아신아마이드, 제니스테인(Genistein), 플라보노이드, 에피갈로카테킨 갈레이트(EGCG), 레티놀, 헤스페리딘, 올레아노릭산(Oleanolic Acid), 폴리메틸 메타크리레이트, 티몰트리메톡시신나메이트(Thymol Trimethoxycinnamate), 홍삼 사포닌, 하이드롤라이즈드 인삼사포닌 및 아스코빌글루코사이드로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상인 것을 특징으로 하는 화장료 조성물.
The method according to claim 1,
The active substance may be selected from the group consisting of gallic acid, amino acid, Phytic acid, L-Ascorbic acid, arbutin, fructose diphosphate, trisodium fructose, 1,6- , Niacinamide, genistein, flavonoids, epigallocatechin gallate (EGCG), retinol, hesperidin, oleanolic acid, polymethylmethacrylate, thymol trimethoxycinnamate, Wherein the cosmetic composition is at least one selected from the group consisting of red ginseng saponin, hydrolized ginseng saponin, and ascorbyl glucoside.
(a) 1-100 MPa 의 조건에서 식물 세포 내에 활성 물질을 인입시키는 단계 ;
(b) 활성 물질이 인입된 식물 세포로부터 역삼투화를 이용해 탈수반응을 일으키는 단계 ; 및
(c) 활성 물질이 인입된 식물 세포를 수득하는 단계.
A method for producing a plant cell comprising an active substance through the following manufacturing steps.
(a) introducing an active substance into plant cells under conditions of 1-100 MPa;
(b) causing a dehydration reaction using reverse osmosis from the plant cell into which the active substance is introduced; And
(c) obtaining a plant cell into which the active substance has been introduced.
상기 활성 물질은 친수성 및 소수성으로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상인 것을 특징으로 하는 식물 세포를 제조하는 방법.
6. The method of claim 5,
Wherein the active material is at least one selected from the group consisting of hydrophilic and hydrophobic.
상기 활성 물질은 갈릭산(Gallic acid), 아미노산, 피트산(Phytic acid), L-아스코르브산(L-Ascorbic acid), 알부틴, 프룩토스 디포스페이트, 트리소듐 프룩토스, 1, 6-디포스페이트 아데노신, 나이아신아마이드, 제니스테인(Genistein), 플라보노이드, 에피갈로카테킨 갈레이트(EGCG), 레티놀, 헤스페리딘, 올레아노릭산(Oleanolic Acid), 폴리메틸 메타크리레이트, 티몰트리메톡시신나메이트(Thymol Trimethoxycinnamate), 홍삼 사포닌, 하이드롤라이즈드 인삼사포닌 및 아스코빌글루코사이드로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상인 것을 특징으로 하는 식물 세포를 제조하는 방법.6. The method of claim 5,
The active substance may be selected from the group consisting of gallic acid, amino acid, Phytic acid, L-Ascorbic acid, arbutin, fructose diphosphate, trisodium fructose, 1,6- , Niacinamide, genistein, flavonoids, epigallocatechin gallate (EGCG), retinol, hesperidin, oleanolic acid, polymethylmethacrylate, thymol trimethoxycinnamate, Wherein the plant cell is at least one selected from the group consisting of red ginseng saponin, hydrolized ginseng saponin, and ascorbyl glucoside.
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