KR101747266B1 - Method and kit for identifying origin of sesame using single nucleotide polymorphism markers - Google Patents
Method and kit for identifying origin of sesame using single nucleotide polymorphism markers Download PDFInfo
- Publication number
- KR101747266B1 KR101747266B1 KR1020160081363A KR20160081363A KR101747266B1 KR 101747266 B1 KR101747266 B1 KR 101747266B1 KR 1020160081363 A KR1020160081363 A KR 1020160081363A KR 20160081363 A KR20160081363 A KR 20160081363A KR 101747266 B1 KR101747266 B1 KR 101747266B1
- Authority
- KR
- South Korea
- Prior art keywords
- seq
- primer set
- nos
- oligonucleotides
- sesame
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
- C12Q1/6888—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
- C12Q1/6895—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for plants, fungi or algae
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2537/00—Reactions characterised by the reaction format or use of a specific feature
- C12Q2537/10—Reactions characterised by the reaction format or use of a specific feature the purpose or use of
- C12Q2537/143—Multiplexing, i.e. use of multiple primers or probes in a single reaction, usually for simultaneously analyse of multiple analysis
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
- C12Q2600/156—Polymorphic or mutational markers
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
- C12Q2600/16—Primer sets for multiplex assays
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Botany (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
본 발명은 프라이머 세트를 이용한, 참깨 품종식별용 키트 및 참깨 품종을 식별하는 방법에 관한 것이다. 보다 상세하게는 공지된 참깨 123개의 품종에 대해 다형성을 보이는, 참깨 품종식별용 단일염기다형성 프라이머 세트를 이용한 키트 및 이를 이용하여 식별하는 방법에 관한 것이다. 본 발명에 따른 프라이머 세트를 참깨 품종식별용 단일염기다형성 마커로 사용함으로써, 참깨 품종의 진위성 규명, 원산지 규명 및 품종보호 출원품종의 대조품종 선정 등과 같은 다양한 분야에 크게 기여할 수 있다. The present invention relates to a kit for identifying sesame breeds and a method for identifying sesame varieties using a primer set. More particularly, the present invention relates to kits using a set of single-nucleotide polymorphic primers for identification of sesame varieties, which are polymorphic to known varieties of sesame seeds, and a method for identifying them using the same. By using the primer set according to the present invention as a single base polymorphism marker for sesame breed identification, it can greatly contribute to various fields such as identification of authenticity of sesame breeds, identification of origin and selection of a control varietal for varieties protected varieties.
Description
본 발명은 다형성 마커를 이용한 참깨 품종식별 방법에 관한 것이다. 보다 상세하게는, 참깨 품종을 식별하기 위한 프라이머 세트, 상기 프라이머 세트를 포함하는 키트, 및 상기 프라이머 세트를 이용한 참깨 품종의 식별 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a method for identifying a sesame variety using a polymorphic marker. More particularly, the present invention relates to a primer set for identifying sesame cultivars, a kit including the primer set, and a method for identifying sesame cultivars using the primer set.
DNA 마커는 게놈상에서 다형성 여부를 판단할 수 있는 특정 염기서열 단편을 의미한다. DNA 마커는 작물 육종분야에서 형질과 연관된 마커의 개발과 이를 이용한 marker assisted selection (MAS), 유전자 지도 작성, 양적 형질 유전자좌 분석, 순도 검정, 유전적 다양성 분석 및 품종식별 등의 분야에 활용되고 있다. A DNA marker refers to a specific nucleotide sequence fragment that can be used to determine whether a polymorphism is present on the genome. DNA markers have been used in the field of crop breeding for the development of markers related to traits and marker assisted selection (MAS), gene mapping, quantitative trait locus analysis, purity testing, genetic diversity analysis and breed identification.
일반적으로 식물 품종을 식별하는 방법은 크게 재배시험을 통한 형태적 특성 검정과 품종간 동위효소의 차이를 통한 검정, DNA 분석 방법으로 나뉜다. 이 중 DNA 분석 방법은 표현형에 근거한 식별방법에 비해 재배환경 및 작물의 생장단계에 영향을 받지 않아 객관적이며 재현성 또한 높다는 장점이 있다. 국제 신품종 보호 연맹(UPOV)은 DNA 마커를 신품종의 특성 조사와 식물 품종 보호권 부여에 활용하기 위한 논의를 진행 중이다. 다양한 연구에서 유전자 수준에서의 염기서열 차이를 이용하여 품종식별을 위한 분자마커로 활용할 수 있는 가능성을 제안하고 있다. 구체적으로 분자마커 종류 중 품종간 다형성 정도, 분석의 재현성, 염색체 상의 분포 정도를 고려할 때 SSR(Simple Sequence Repeat), SNP(Single Nucleotide Polymorphism) 방법을 활용하는 것을 제안하고 있다. In general, methods for identifying plant cultivars are divided into two stages: morphological characterization through cultivation tests, assays based on differences between isoenzymes and DNA analysis methods. DNA analysis method is advantageous in that it is objective and reproducible because it is not influenced by cultivation environment and crop growth stage as compared with phenotype-based identification method. The International Union for the Protection of New Varieties (UPOV) is conducting discussions to utilize DNA markers to investigate the characteristics of new varieties and to grant plant varieties protection rights. Various studies have suggested the possibility of using the nucleotide sequence differences at the gene level as molecular markers for breed identification. Specifically, SSR (Simple Sequence Repeat) and SNP (Single Nucleotide Polymorphism) methods have been proposed in consideration of the polymorphism degree, the reproducibility of analysis, and the distribution of chromosomal patterns among the types of molecular markers.
국내에서 품종식별에 대한 DNA 분석 개발 및 활용 현황을 살펴보면, 농촌진흥청에서 벼, 콩 등에 대한 SSR 분자마커 및 참깨에 대한 CAPS 분자마커를 이용한 품종식별 기술을 보고한 바 있다. 국립 종자원은 SSR 분자마커를 이용하여 고추, 배추, 수박 등에 대한 작물의 DNA 프로파일 및 SNP 분자마커를 이용하여 구기자 등에 대한 작물의 DNA 프로파일을 데이터베이스화하였으며, 종자 분쟁 발생시 이를 중재하기 위한 수단으로서 분자마커를 활용하여 품종보호 출원품종에 대한 대조품종 선정에 유전자 분석 결과를 활용하고 있는 추세이다. In Korea, RDA has reported the technology for identification of varieties using SSR molecular markers for rice and soybean and CAPS molecular markers for sesame seeds. Using the SSR molecular marker, the National Seed Source has database of the DNA profile of the crop for the goji, etc. using the DNA profile of the crop and the SNP molecular marker for pepper, Chinese cabbage, watermelon, etc., and as a means to intervene in case of seed dispute, It is a tendency to utilize genetic analysis results in selection of control varieties for varieties of protected varieties using markers.
국내에서 품종식별에 대한 DNA 분석 개발 및 활용 현황의 다른 예를 살펴보면, 시판 고추 F1 품종식별을 위한 SNP 마커(등록특허 10-0974821), 국내외산 벼 품종식별 SNP 마커(등록특허 10-0713669) 등 유전자 마커를 이용한 다양한 분석법이 농업적으로 활용되고 있다. Another example of the development and utilization of DNA analysis for identification of varieties in Korea is as follows: SNP markers (Patent No. 10-0974821) for identification of commercially available pepper F1 varieties, domestic SNP markers for domestic rice varieties (Patent No. 10-0713669) A variety of assays using genetic markers are being used agriculturally.
이처럼 유전물질 (DNA)를 이용한 개체간의 차이에 대한 연구가 꾸준히 진행되어 왔고, 최근 분자유전학 및 DNA 분석기술의 발달로 분자생물학적 수준에서 경제형질 관련 유전자 탐색 및 질병관련 유전자 발굴 등 SNP를 포함한 유전자마커(genetic marker) 개발이 활발히 진행되고 있다.The development of molecular genetics and DNA analysis techniques has led to the development of genetic markers including SNPs such as searching genes related to economic traits and discovering disease related genes at molecular level. (genetic marker) has been actively developed.
핵산을 이용한 유전자 증폭 기술 (PCR, Polymorase chain reaction)등 다양한 DNA 분석 기법이 발전함에 따라 종판별 및 개체식별 등 다양한 산업 전반에 걸쳐 활용되고 있다. 특히, 대립유전자 특이적 중합효소연쇄반응 (Allele-specific PCR : AS-PCR)은 유전자 증폭을 위하여 사용되는 프라이머 말단에 SNP가 위치하며, 프라이머 말단에 인위적인 돌연변이를 디자인하여 프라이머 끝(3` end)부분의 단일 염기가 결합되거나 결합되지 못하는 특징을 이용함으로써 유전자 증폭 산물의 형성 유무를 통해 개체별 SNP형을 확인하는 방법이다. As various DNA analysis techniques such as PCR and polymorase chain reaction have been developed, they have been utilized in various industries such as species discrimination and individual identification. In allele-specific PCR (AS-PCR), SNPs are located at the ends of the primers used for gene amplification. An artificial mutation at the ends of the primers is designed so that primer ends (3 'end) And the SNP type of each individual is confirmed by the presence or absence of the gene amplification product by using the characteristic that the single base of the part can not be bound or bound.
한편, 인류는 기원전 3,000년경부터 참깨를 이용하여 왔으며, 참깨는 작물의 기능성의 이유로 건강식품으로 널리 재배되어 왔다. 참깨는 2015년 12월 현재 국립종자원에 신품종보호 등록된 품종수는 38품종, 국내 생산수입판매신고 건수는 72건으로 국내 품종보호 출원 및 생산수입 판매신고 건수가 증가하고 있는 추세이다. 또한 수입산 참깨의 수입으로 인한 국내산 참깨의 보호가 시급한 상황이다. 참깨의 품종보호를 위한 검정을 위해서는 재배시험을 수행해야 하며 재배시험 시 재배 환경의 영향을 받고, 특성 검정에 많은 시간이 소요되기 때문에 분자마커를 이용한 육종과 품종식별 방법 개발의 중요성이 증대되고 있다. 따라서 신속하고 경제적으로 참깨의 품종 및 원산지를 판별할 수 있는 기술이 요구되고 있으며, 본 발명에서는 단일염기다형성(SNP) 등의 변이를 이용하여 참깨 품종을 식별하고자 하였다.On the other hand, human beings have been using sesame seeds since about 3,000 BC, and sesame has been widely cultivated as a health food for reasons of crop function. As of December 2015, the number of registered varieties of registered varieties was 38 varieties, and the number of declarations of domestic production import sales was 72. As a result, the number of varieties of varieties and the number of declarations of production imports are increasing. In addition, it is urgent to protect domestic sesame seeds from imported sesame seeds. In order to test for the protection of sesame varieties, cultivation tests should be conducted. The cultivation environment is affected by the cultivation environment and it takes much time to characterize, so the importance of developing breeding and breeding methods using molecular markers is increasing . Therefore, a technique for quickly and economically discriminating the variety and origin of sesame has been demanded. In the present invention, sesame varieties were identified by using variations such as SNP.
본 발명은 참깨 품종식별용 프라이머 세트를 제공한다.The present invention provides a primer set for identifying sesame varieties.
본 발명은 상기 프라이머 세트를 포함하는 참깨 품종식별용 키트를 제공한다.The present invention provides a kit for identifying sesame varieties comprising the primer set.
본 발명은 상기 프라이머 세트를 이용하여 참깨의 품종을 식별하는 방법을 제공한다.The present invention provides a method of identifying a variety of sesame seeds using the primer set.
본 발명은 참깨의 품종식별을 위한 유전자분석 시스템을 확립하는 것이다. 시스템 개발에 사용한 단일염기다형성(SNP) 마커는 종간 또는 연령간, 성별간, 염색체가 갖고 있는 염기서열 중 개체 또는 품종간의 편차를 나타내는 염기변이를 말하며, 한 염기쌍(single base-pare variation)의 차이로 DNA 서열의 다형성 중에서 가장 많은 빈도로 존재한다. 이러한 특징을 이용하여, 품종을 판별하기 위한 유전자 마커를 선별하였고, 선별한 마커들 중에서 변별력이 있고 특이도 및 민감도에서 우수한 결과를 나타낸 마커들을 사용하여 품종식별에 사용하였다.The present invention establishes a gene analysis system for breed identification of sesame seeds. The SNP markers used in the development of the system are base variants that show variations in individual or varieties of species or interspecies, between sexes, or between nucleotide sequences of chromosomes, and the difference in single base-pare variation Of the polymorphisms of the DNA sequence. Using these characteristics, genetic markers were selected to discriminate the cultivars. Markers were selected from among the selected markers and discriminated by using markers having excellent results in specificity and sensitivity.
본 발명은, 서열번호 1 및 2의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh2 프라이머 세트; 서열번호 3 및 4의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh4 프라이머 세트; 서열번호 5 및 6의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh5 프라이머 세트; 서열번호 7 및 8의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh7 프라이머 세트; 서열번호 9 및 10의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh8 프라이머 세트; 서열번호 11 및 12의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh10 프라이머 세트; 서열번호 13 및 14의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh14 프라이머 세트; 서열번호 15 및 16의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh21 프라이머 세트; 서열번호 17 및 18의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh24 프라이머 세트; 서열번호 19 및 20의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh26 프라이머 세트; 서열번호 21 및 22의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh31 프라이머 세트; 및 서열번호 23 및 24의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh33 프라이머 세트를 포함하는, 참깨 품종식별용 프라이머 세트를 제공한다. The present invention relates to an SSKh2 primer set comprising oligonucleotides of SEQ ID NOS: 1 and 2; An SSKh4 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 3 and 4; An SSKh5 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 5 and 6; An SSKh7 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 7 and 8; An SSKh8 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 9 and 10; An SSKh10 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 11 and 12; An SSKh14 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 13 and 14; An SSKh21 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 15 and 16; An SSKh24 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 17 and 18; An SSKh26 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 19 and 20; An SSKh31 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 21 and 22; And a set of SSKh33 primers consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOs: 23 and 24.
상기 프라이머 세트는 공지된 참깨 품종에 대해 높은 다형성을 나타낼 수 있다. 따라서, 상기 프라이머 세트는 참깨 품종을 식별하기 위해 이용될 수 있다. 상기 프라이머 세트는 예를 들면, 하기 표 2에 기재된 참깨 품종 중 하나 이상의 품종을 식별하기 위해 이용되는 것일 수 있다.The primer set may exhibit high polymorphism for known sesame varieties. Thus, the primer set can be used to identify sesame varieties. The primer set may be used, for example, to identify one or more of the sesame varieties described in Table 2 below.
본 발명의 서열번호 1 내지 서열번호 24의 올리고뉴클레오티드를 포함하는 12쌍의 프라이머 세트를 하기 표 1에 나타내었다. 본 명세서에서 '마커'는 각 프라이머 세트를 통해 얻어진 증폭 산물 또는 각 프라이머 세트 자체를 의미하는 것일 수 있다.12 pairs of primer sets containing the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 1 to 24 of the present invention are shown in Table 1 below. As used herein, 'marker' may refer to an amplification product obtained through each primer set or each primer set itself.
이름Marker
name
상기 프라이머 세트를 구성하는 올리고뉴클레오티드는 포스포로티오에이트(phosphorothioate), 알킬포스포로티오에이트와 같은 뉴클레오티드 유사체(analogue), 펩티드 핵산(peptide nucleic acid) 또는 삽입 물질(intercalating agent)을 포함할 수 있다. 상기 올리고뉴클레오티드는 형광, 인광 또는 방사성을 발하는 표지 물질을 더 포함할 수 있다. 상기 형광 표지 물질은 VIC, NED, FAM, PET, 또는 이들의 조합일 수 있다. 상기 표지 물질은 상기 올리고뉴클레오티드의 5' 말단에 표지될 수 있다. 또한, 방사성 표지 물질은, 32P 또는 35S 와 같은 방사성 동위원소가 첨가된 PCR 반응액을 이용한 PCR 반응을 통해 증폭 산물에 혼입될 수 있다.The oligonucleotide constituting the primer set may include a nucleotide analogue such as phosphorothioate, alkylphosphorothioate, a peptide nucleic acid or an intercalating agent. The oligonucleotide may further comprise fluorescent, phosphorescent or radioactive labeling substance. The fluorescent labeling substance may be VIC, NED, FAM, PET, or a combination thereof. The labeling substance may be labeled at the 5 ' end of the oligonucleotide. In addition, the radioactive labeling substance can be incorporated into the amplification product through PCR reaction using a PCR reaction solution in which a radioisotope such as 32 P or 35 S is added.
본 발명의 프라이머 세트를 이용하여 PCR 또는 AS-PCR에 의해 생성되는 증폭 산물의 유무 및 크기 따라 단일염기다형성 유전자형을 구별하거나 또는 삽입-결실(indel)을 식별할 수 있다.The primer sets of the present invention can be used to distinguish single nucleotide polymorphic genotypes or to identify insert-deletions (indeles) according to the presence and size of amplification products generated by PCR or AS-PCR.
상기 서열번호 1 및 2의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh2 프라이머 세트는 서열번호 27의 378 번째 염기인 T와 C를 구별하고, The SSKh2 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 1 and 2 distinguishes T and C, which are the 378th nucleotides of SEQ ID NO: 27,
서열번호 3 및 4의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh4 프라이머 세트는 서열번호 28의 30번째 염기인 단일염기다형성 T와 A를 구별하고, The SSKh4 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 3 and 4 distinguishes the single base polymorph T, which is the 30 < th > base of SEQ ID NO: 28 from A,
서열번호 5 및 6의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh5 프라이머 세트는 서열번호 29의 153번째 염기인 단일염기다형성 G와 C를 구별하고, 및 163번째 염기인 단일염기다형성 A와 G를 구별하고, The SSKh5 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 5 and 6 distinguishes the single base polymorphism G and C, which is the 153rd base of SEQ ID NO: 29, and distinguishes the single base polymorphism A and G,
서열번호 7 및 8의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh7 프라이머 세트는 서열번호 30의 30번째 염기인 단일염기다형성 G와 C를 구별하고,The SSKh7 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 7 and 8 distinguishes the single base polymorphism G and C, which is the 30 < th > base of SEQ ID NO:
서열번호 9 및 10의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh8 프라이머 세트는 서열번호 31의 26번째 염기인 단일염기다형성 T와 C를 구별하고, The SSKh8 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 9 and 10 distinguishes the single base polymorphism T and C, which is the 26 < th > base of SEQ ID NO:
서열번호 11 및 12의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh10 프라이머 세트는 서열번호 32의 26번째 염기인 단일염기다형성 T와 G를 구별하고, 및 28번째 염기인 단일염기다형성 A와 G를 구별하고, The SSKh10 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 11 and 12 distinguishes the single base polymorphism T and G, which is the 26 th base of SEQ ID NO: 32, and distinguishes the single base polymorphism A and G,
서열번호 13 및 14의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh14 프라이머 세트는 서열번호 33의 26번째 염기인 단일염기다형성 T와 A를 구별하고, The SSKh14 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 13 and 14 distinguishes the single base polymorphism T, which is the 26 < th > base of SEQ ID NO: 33 from A,
서열번호 15 및 16의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh21 프라이머 세트는 서열번호 34의 29번째 염기인 단일염기다형성 T와 G를 구별하고, The SSKh21 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 15 and 16 distinguishes the single base polymorphism T and G, which is the 29 < th > base of SEQ ID NO:
서열번호 17 및 18의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh24 프라이머 세트는 서열번호 35의 182번째 내지 196번째 염기의 삽입-결실(indel)를 식별하고, The SSKh24 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 17 and 18 identifies the insert-deletion indent of the 182nd to 196th bases of SEQ ID NO: 35,
서열번호 19 및 20의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh26 프라이머 세트는 서열번호 36의 264번째 염기인 단일염기다형성 G와 C를 구별하고,The SSKh26 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 19 and 20 discriminates single base polymorphism G and C, which is the 264th base of SEQ ID NO: 36,
서열번호 21 및 22의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh31 프라이머 세트는 서열번호 37의 17번째 내지 27번째 염기의 삽입-결실을 식별하고, The SSKh31 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 21 and 22 identifies the insertion-deletion of the 17th to 27th bases of SEQ ID NO: 37,
및 서열번호 23 및 24의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh33 프라이머 세트는 서열번호 38의 144번째 내지 149번째 염기의 삽입-결실을 식별할 수 있다.And the SSKh33 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 23 and 24 can identify insertion-deletion of the 144th to 149th bases of SEQ ID NO: 38.
또한, 본 발명은 SSKh2 프라이머 세트, SSKh4 프라이머 세트, SSKh5 프라이머 세트, SSKh7 프라이머 세트, SSKh8 프라이머 세트, SSKh10 프라이머 세트, SSKh14 프라이머 세트, SSKh21 프라이머 세트, SSKh24 프라이머 세트, SSKh26 프라이머 세트, SSKh31 프라이머 세트, 및 SSKh33 프라이머 세트를 포함하는, 참깨 품종식별용 키트를 제공한다. 상기 키트는 DNA 중합 효소, dNTP 및 PCR 완충용액을 더 포함할 수 있다. 또한, PCR, 구체적으로 AS-PCR 또는 증폭 산물의 확인에 필요한 구성 성분이 상기 키트에 추가로 포함될 수 있다. 상기 PCR 완충용액은 KCl, Tris-HCl 및 MgCl2를 함유할 수 있다. 상기 키트는 안내서를 포함할 수 있다. 안내서는 키트 사용법, 예를 들면, PCR 완충액 제조 방법, 제시되는 반응 조건 등을 설명하는 인쇄물이다. 안내서는 팜플렛 또는 전단지 형태의 안내 책자, 키트에 부착된 라벨, 및 키트를 포함하는 패키지의 표면상에 설명을 포함한다. 또한, 안내서는 인터넷과 같이 전기 매체를 통해 공개되거나 제공되는 정보를 포함한다.In addition, the present invention relates to a primer set, an SSKh2 primer set, a SSKh4 primer set, A kit for identifying sesame varieties, comprising a set of SSKh33 primers. The kit may further comprise DNA polymerase, dNTP and PCR buffer solution. In addition, components necessary for PCR, specifically AS-PCR or confirmation of amplification products, can be further included in the kit. The PCR buffer may contain KCl, Tris-HCl and MgCl 2. The kit may include a brochure. The manual is a printed document that explains how to use the kit, for example, how to prepare PCR buffer, the reaction conditions presented, and so on. The brochure includes instructions on the surface of the package including the brochure or leaflet in the form of a brochure, a label attached to the kit, and a kit. In addition, the brochure includes information that is disclosed or provided through an electronic medium such as the Internet.
또한, 본 발명은 참깨로부터 유래된 게놈 DNA를 주형으로 하고, SSKh2 프라이머 세트, SSKh4 프라이머 세트, SSKh5 프라이머 세트, SSKh7 프라이머 세트, SSKh8 프라이머 세트, SSKh10 프라이머 세트, SSKh14 프라이머 세트, SSKh21 프라이머 세트, SSKh24 프라이머 세트, SSKh26 프라이머 세트, SSKh31 프라이머 세트, 및 SSKh33 프라이머 세트를 프라이머로 사용하여 핵산을 증폭하는 단계; 및 얻어진 증폭 산물로부터 상기 참깨의 품종을 결정하는 단계를 포함하는, 참깨 품종을 식별하는 방법을 제공한다. The present invention also relates to a method for screening a genomic DNA of the present invention using genomic DNA derived from sesame as a template and comprising a primer set selected from the group consisting of SSKh2 primer set, SSKh4 primer set, SSKh4 primer set, SSKh5 primer set, SSKh5 primer set, SSKh7 primer set, SSKh8 primer set, SSKh10 primer set, SSKh14 primer set, Amplifying the nucleic acid using primer set, SSKh26 primer set, SSKh31 primer set, and SSKh33 primer set as primers; And determining the varieties of sesame seeds from the resulting amplification products.
상기 게놈 DNA는 상기 참깨의 잎, 줄기, 또는 그의 조합으로부터 유래된 것일 수 있다. 상기 게놈 DNA는 식물체로부터 DNA를 채취하는 통상적인 방법을 이용하여 수득될 수 있다. 상기 게놈 DNA는 예를 들면, 페놀 추출 방법을 이용하여 수득될 수 있다.The genomic DNA may be derived from the leaves, stems, or combinations thereof. The genomic DNA can be obtained using a conventional method for obtaining DNA from a plant. The genomic DNA can be obtained, for example, using a phenol extraction method.
상기 방법에서, 핵산의 증폭은 PCR을 이용하여 수행될 수 있다. 구체적으로, 핵산의 증폭은 AS-PCR을 이용하여 수행될 수 있다. 핵산의 증폭은 SSKh2 프라이머 세트, SSKh4 프라이머 세트, SSKh5 프라이머 세트, SSKh7 프라이머 세트, SSKh8 프라이머 세트, SSKh10 프라이머 세트, SSKh14 프라이머 세트, SSKh21 프라이머 세트, SSKh24 프라이머 세트, SSKh26 프라이머 세트, SSKh31 프라이머 세트, 및 SSKh33 프라이머 세트를 모두 사용하여 수행되는 것일 수 있다. In this method, amplification of the nucleic acid can be performed using PCR. Specifically, amplification of the nucleic acid can be performed using AS-PCR. The amplification of the nucleic acid was carried out using the SSKh2 primer set, SSKh4 primer set, SSKh5 primer set, SSKh5 primer set, SSKh7 primer set, SSKh8 primer set, SSKh8 primer set, SSKh8 primer set, SSKh10 primer set, SSKh14 primer set, SSKh21 primer set, SSKh21 primer set, May be performed using all of the primer sets.
PCR 또는 AS-PCR 방법에 대해서는 당업계에 잘 알려져 있으며, 상업적으로 이용가능한 키트를 이용할 수 있다. PCR 또는 AS-PCR 반응은 당업계에 PCR 또는 AS-PCR 반응에 필요한 것으로 알려진 여러 성분을 포함하는 반응액을 이용하여 수행될 수 있다. 상기 반응액은 예를 들면, 분석하고자 하는 참깨로부터 유래된 게놈 DNA, 본 발명의 프라이머 세트, DNA 중합 효소(예를 들면, Taq polymerase), dNTP 혼합물, PCR 완충용액 및 물을 포함하는 것일 수 있다. PCR or AS-PCR methods are well known in the art and commercially available kits can be used. The PCR or AS-PCR reaction can be carried out using a reaction solution containing various components known to be required for PCR or AS-PCR reaction in the art. The reaction solution may be, for example, a genomic DNA derived from sesame to be analyzed, a primer set of the present invention, a DNA polymerase (for example, Taq polymerase), a dNTP mixture, a PCR buffer solution and water .
상기 방법은, 얻어진 증폭 산물을 DNA 칩, 겔 전기영동, 방사성 측정, 형광 측정 또는 인광 측정을 통해 검출하는 단계를 포함할 수 있다. 겔 전기영동을 통해 검출할 경우, 증폭 산물의 크기에 따라 아가로스 겔 전기영동 또는 아크릴아미드 겔 전기영동을 이용할 수 있다. 형광 측정을 통해 검출할 경우, 형광 물질로 표지된 본 발명의 프라이머 세트를 이용하여 PCR을 수행한 후 형광 측정기를 이용하여 형광을 측정할 수 있다. 방사성 측정을 통해 검출할 경우, 방사성 물질을 PCR 반응액에 첨가하여 증폭 산물을 표지한 후, 가이거 계수기(Geiger counter) 또는 액체섬광계수기(liquid scintillation counter)와 같은 방사성 측정기를 이용하여 방사성을 측정할 수 있다.The method may include detecting the resulting amplification product by DNA chip, gel electrophoresis, radioactivity measurement, fluorescence measurement or phosphorescence measurement. When detected by gel electrophoresis, agarose gel electrophoresis or acrylamide gel electrophoresis can be used depending on the amplification product size. In the case of detection through fluorescence measurement, fluorescence can be measured using a fluorescence meter after carrying out PCR using the primer set of the present invention labeled with a fluorescent substance. When detecting by radioactivity, the radioactive material is added to the PCR reaction solution to label the amplified product, and radioactivity is measured using a radioactivity meter such as a Geiger counter or a liquid scintillation counter .
상기 방법에서, 얻어진 증폭 산물로부터 상기 참깨의 품종을 결정하는 단계는, 얻어진 증폭 산물을, SSKh2 프라이머 세트, SSKh4 프라이머 세트, SSKh5 프라이머 세트, SSKh7 프라이머 세트, SSKh8 프라이머 세트, SSKh10 프라이머 세트, SSKh14 프라이머 세트, SSKh21 프라이머 세트, SSKh24 프라이머 세트, SSKh26 프라이머 세트, SSKh31 프라이머 세트, 및 SSKh33 프라이머 세트에 의해 공지된 참깨 품종의 핵산을 증폭한 결과와 비교함으로써 수행되는 것일 수 있다. In the above method, the step of determining the sesame breed from the obtained amplification product comprises amplifying the obtained amplification product by amplifying the obtained amplification product with a primer set selected from the group consisting of SSKh2 primer set, SSKh4 primer set, SSKh5 primer set, SSKh7 primer set, SSKh8 primer set, SSKh10 primer set, SSKh14 primer set , The SSKh21 primer set, the SSKh24 primer set, the SSKh26 primer set, the SSKh31 primer set, and the SSKh33 primer set.
구체적으로, 상기 증폭된 산물로부터 참깨 품종을 결정하는 단계는 자동 염기서열 분석기를 이용하여 증폭 산물(밴드)의 크기를 컴퓨터 프로그램에 의해 확인함으로써 수행되는 것일 수 있다. 예를 들면, 공지된 참깨 품종에 대하여 본 발명의 프라이머 세트를 통해 증폭된 산물(각 대립유전자에 해당함)의 유무 및 크기를 미리 하나의 표로 정리한다. 구체적으로, 두개의 대립유전자 단일염기다형성이 존재하는 경우, 증폭된 산물 유무에 따라 어느 하나의 대립유전자 유전자형을 "1"로 나타내고 다른 하나의 대립유전자 유전자형을 "0"으로 나타낼 수 있다. A 및 G의 단일염기다형성이 존재하는 경우, A 유전자형을 "1"로 나타내고 G 유전자형을 "0"으로 나타낼 수 있다.Specifically, the step of determining the sesame cultivar from the amplified product may be performed by confirming the size of the amplified product (band) using an automatic nucleotide sequencer by a computer program. For example, the presence and size of products (corresponding to each allele) amplified through the primer set of the present invention for known sesame cultivars are summarized in one table in advance. Specifically, when two allele single nucleotide polymorphisms are present, one allele genotype can be represented by "1" and the other allele genotype can be represented by "0" according to the presence or absence of the amplified product. If there is a single nucleotide polymorphism of A and G, the A genotype may be represented by "1 " and the G genotype may be represented by" 0 ".
즉, 품종을 식별하고자 하는 참깨로부터 게놈 DNA를 분리한 후, 본 발명의 프라이머 세트를 이용하여 증폭하고 증폭된 산물의 크기를 분석한 다음, 이 분석 결과를 상기 공지된 참깨 품종의 핵산을 증폭한 결과와 통계 프로그램을 이용하여 비교함으로써 참깨의 품종을 결정할 수 있다.That is, genomic DNA was isolated from sesame seeds for breed identification, amplified using the primer set of the present invention, analyzed for the size of the amplified product, and the result of the analysis was amplified from the nucleic acid of the known sesame variety By comparing the results with statistical programs, we can determine the varieties of sesame seeds.
본 발명은 국내 및 외국에서 수집된 참깨 품종을 대상으로 분자마커를 이용한 참깨 품종식별 방법 및 체계를 확립하였다. 본 발명에 따르면, 국내산 및 수입산 참깨 품종을 식별할 수 있으므로, 농산물 원산지표시제에도 활용할 수 있다. 나아가, 참깨 품종의 진위성 규명, 종자분쟁의 중재 및 품종보호 출원품종의 대조품종 선정 등과 같은 분야에 기여할 수 있다.The present invention has established a method and system for identifying sesame varieties using molecular markers in domestic and foreign sesame cultivars. According to the present invention, since it is possible to identify domestic and imported sesame varieties, the present invention can be utilized for agricultural products origin markers. Furthermore, it can contribute to such fields as identification of the authenticity of sesame seeds, arbitration of seed conflicts, and selection of control varieties for varieties.
도 1은 대립유전자 특이적 중합효소연쇄반응 (AS-PCR)을 수행하기 위한 프라이머의 모식도이다.
도 2a, 2b 및 2c는 참깨 품종을 식별하기 위한 27 쌍의 프라이머 세트를 이용하여 단일 PCR (Single PCR)을 수행한 결과이다.
도 3은 참깨 품종을 식별하기 위한 12 쌍의 프라이머 세트를 이용하여 다중 PCR (Mulitiplex PCR)을 수행한 결과이다.
도 4는 참깨 품종을 식별하기 위한 12 쌍의 프라이머 세트를 이용한 증폭 산물을 확인한 결과이다. 도 4a는 SSKh2 프라이머 세트를 이용한 증폭 산물, 도 4b는 SSKh4 프라이머 세트, 도 4c는 SSKh5 프라이머 세트를 이용한 증폭 산물, 도 4d는 SSKh7 프라이머 세트를 이용한 증폭 산물, 도 4e는 SSKh8 프라이머 세트를 이용한 증폭 산물, 도 4f는 SSKh10 프라이머 세트를 이용한 증폭 산물, 도 4g는 SSKh14 프라이머 세트를 이용한 증폭 산물, 도 4h는 SSKh21 프라이머 세트를 이용한 증폭 산물, 도4i는 SSKh24 프라이머 세트를 이용한 증폭 산물, 도 4j는 SSKh26 프라이머 세트를 이용한 증폭 산물, 도 4k는 SSKh31 프라이머 세트를 이용한 증폭 산물, 및 도 4l는 SSKh33 프라이머 세트를 이용한 증폭 산물을 확인한 결과이다.
도 5는 참깨 품종을 식별하기 위한 12쌍의 프라이머 세트에 의해 분석된 품종의 대립유전자 유전자형을 1 또는 0으로 코드화한 결과이다.
도 6a은 참깨 품종을 식별하기 위한 12 쌍의 프라이머 세트에 의해 분석된 국내산 참깨 품종간의 유전적 유사도이며, 도 6b는 참깨 품종을 식별하기 위한 12 쌍의 프라이머 세트에 의해 분석된 국내산 및 수입산 참깨 품종간의 유전적 유사도를 나타낸다.1 is a schematic diagram of a primer for performing an allele-specific polymerase chain reaction (AS-PCR).
FIGS. 2A, 2B, and 2C show the result of performing a single PCR using 27 pairs of primer sets for discriminating sesame cultivars.
FIG. 3 shows results of multiplex PCR (Mulitiplex PCR) using 12 pairs of primer sets to identify sesame varieties.
FIG. 4 shows the result of confirming amplification products using 12 pairs of primer sets for discriminating sesame cultivars. FIG. 4A shows the amplification product using the SSKh2 primer set, FIG. 4B shows the SSKh4 primer set, FIG. 4C shows the amplification product using the SSKh5 primer set, , FIG. 4F shows the amplification product using the SSKh10 primer set, FIG. 4G shows the amplification product using the SSKh14 primer set, FIG. 4H shows the amplification product using the SSKh21 primer set, FIG. 4I shows the amplification product using the SSKh24 primer set, FIG. 4K shows the amplification products using the SSKh31 primer set, and FIG. 4L shows the amplification products using the SSKh33 primer set.
FIG. 5 is a result of coding allelic genotypes of varieties analyzed by 12 pairs of primer sets to identify sesame varieties as 1 or 0.
FIG. 6a shows the genetic similarity between domestic sesame varieties analyzed by 12 pairs of primer sets to identify sesame varieties. FIG. 6b shows the genetic similarities between domestic and imported sesame varieties analyzed by 12 pairs of primer sets to identify sesame varieties Lt; / RTI >
본 발명은 하기 실시예에 의하여 더욱 구체적으로 설명한다. 그러나, 하기 실시예는 본 발명의 이해를 돕기 위한 것일 뿐, 어떤 의미로든 본 발명의 범위가 이러한 실시예에 의하여 한정되는 것은 아니다.The present invention will be described in more detail with reference to the following examples. However, the following examples are provided to aid understanding of the present invention, and the scope of the present invention is not limited by these examples in any sense.
실시예Example 1 : 참깨 품종식별을 위한 1: for sesame breed identification 마커의Marker 평가 evaluation
(1) 참깨 시료(1) Sesame samples
본 발명에서는 하기 표에 기재된 참깨 123 품종을 참깨 품종식별 가능성 검정을 위해 사용하였다. 구체적으로, 참깨의 유전자 염기서열 분석 및 유전자 변이 발굴을 위한 시료는 국립종자원에서 보관중인 품종보호출원품종 36 종, 국내품종생산·수입판매신고 35 종, 농촌진층청 유전자원센터의 수입산 유전자원 52 종을 대상으로 하였다.In the present invention,
(2) 참깨 게놈 DNA 분리(2) Sesame genomic DNA isolation
참깨 게놈 DNA는 NucleoSpin® Plant 게놈 키트 (MN Co. Germany)를 이용하여 분리하였다. 참깨 시료를 분쇄한 후, 분쇄된 참깨 시료에 용해 버퍼(lysis buffer) 225 ㎕를 첨가하고, 60 ℃에서 40분간 반응시켰다. 반응이 끝난 시료를 8,000 x g에서 3분간 원심분리하고, 원심분리한 시료에서 상층액 200 ㎕를 취하였다. 상층액 200 ㎕에 용해 버퍼 175 ㎕와 에탄올 250 ㎕를 첨가하여 15초간 균질하게 혼합한 후, 컬럼(column)에 통과시켜 불순물을 제거하였다. 컬럼을 세척 버퍼(wash buffer) 700 ㎕로 3회 세척(washing)한 후, 멸균증류수 50 ㎕를 이용하여 컬럼으로부터 게놈 DNA를 회수하였다. 추출된 게놈 DNA는 ND-1000 UV-Vis 분광광도계 (spectrophotometer) (NanoDrop Technologies, USA)를 이용하여 농도와 순도를 측정한 후, 차세대염기서열분석에 사용하였다.Sesame genomic DNA was isolated using the NucleoSpin ® Plant Genome Kit (MN Co. Germany). After the sesame sample was pulverized, 225 μl of a lysis buffer was added to the ground sesame sample, and the mixture was reacted at 60 ° C. for 40 minutes. The reacted sample was centrifuged at 8,000 xg for 3 minutes, and 200 μl of the supernatant was taken from the centrifuged sample. 175 μl of the dissolution buffer and 250 μl of ethanol were added to 200 μl of the supernatant, and the mixture was homogenized for 15 seconds and then passed through a column to remove impurities. The column was washed three times with 700 [mu] l of wash buffer and genomic DNA was recovered from the column using 50 [mu] l of sterile distilled water. The extracted genomic DNA was analyzed for concentration and purity using a ND-1000 UV-Vis spectrophotometer (NanoDrop Technologies, USA) and used for next-generation sequencing.
(3) 참깨 염기서열 분석 및 유전자 변이 탐색(3) Sesame sequence analysis and gene mutation search
참깨는 2n = 26으로 약 354 Mbp의 게놈을 가지고 있으며, 참깨의 품종식별을 위한 SNP 및 InDel을 탐색하기 위하여 이미 확보된 유전체 정보가 필요하였다. 미국국립생물정보센터 (NCBI)의 홈페이지 (www.ncbi.nlm.nih.gov)로부터, 참깨 품종식별에 가능한 SNP 및 InDel 정보를 수집하였다. 국내산 참깨 품종에 적용이 가능한 유전자 변이를 탐색하기 위하여, 염기서열 분석을 위한 136 개의 프라이머를 제작하였다. 이 프라이머를 이용하여 주요 국내산 참깨 7 종 (유미, 안산, 슈퍼안산, 중모5002, 갈미, 참황, 강흑)에 대한 염기서열 분석을 실시하였다. 품종식별용 SNP 위치를 찾기 위해, 품종별 염기서열분석 결과를 DNASTAR 컴퓨터 프로그램 (www. dnastar.com)을 이용한 ClustalW 방법으로 분석하였다. 총 37 개의 SNP 및 InDel이 확인되었으며, 이 중 참깨 품종식별에 용이한 27 개의 SNP를 1차 선발하였다. Sesame has about 354 Mbp genome with 2n = 26, and genome information already obtained is needed to search SNP and InDel for breed identification of sesame. SNP and InDel information for sesame breed identification were collected from the National Biological Information Center (NCBI) website (www.ncbi.nlm.nih.gov). 136 primers were prepared for sequence analysis in order to search for mutations that could be applied to domestic sesame varieties. Using these primers, we analyzed the nucleotide sequences of seven major domestic sesame seeds (Yumi, Ansan, Super Ansan, 5002, Grammy, Persimmon, Kinta). In order to find the SNP location for breed identification, the results of analysis of the nucleotide sequence by variety were analyzed by ClustalW method using DNASTAR computer program (www. Dnastar.com). A total of 37 SNPs and InDel were identified. Of these, 27 SNPs were selected for easy identification of sesame seeds.
(4) 대립유전자 특이 (4) allele specific PCRPCR 프라이머primer 제작 making
InDel 마커는 두 개의 플랭킹 프라이머(flanking primers)로 InDel을 포함하는 DNA 단편을 증폭하여 분석하였다. SNP 프라이머를 제작하기 위해 대립유전자 특이 PCR 방법을 참조하였다(Drenkard, E. et al., 2000 Plant Physiol 124, 1483-1492, Kwok, S. et al., 1990 Nucleic Acids Res 18, 999-1005) (도 1 참조). The InDel marker amplified DNA fragments containing InDel with two flanking primers. 2000 Plant Physiol 124, 1483-1492, Kwok, S. et al., 1990
참깨 품종을 식별하기 위한 대립유전자 특이 PCR을 위한 프라이머를 제작하기 위해, 3` 말단으로부터 2 내지 5번째 위치의 염기 중 어느 하나 또는 두 개의 염기를 변이시킨 변형 서열을 제작하였다. 염기서열에서 3` 말단으로부터 2 내지 5번째 위치의 염기 중 어느 하나가 A, T, G, C 중 어느 하나로 변이된 변형 서열을 참깨 품종식별을 위한 마커로 사용한 결과, 특정 대립유전자에 대하여는 PCR 증폭을 방해하지 아니하면서 타 품종과 식별을 가능한 것을 확인할 수 있었다. 그리하여, 참깨 품종을 식별하기 위한 마커를 개발함에 있어서, SNP 또는 Indel 위치는 3` 말단이고, 3번째 염기에 인위적인 불일치가 유도되도록 센스 프라이머와 안티센스 프라이머를 제작하였다. SNP 마커의 결합 온도는 60 ℃, 크기는 116 내지 490 bp가 되도록 제작하였다. 참깨 품종별 유전자형은 아가로즈 겔 상에서 PCR 산물의 증폭 유무로 결정하였다 (도 2 참조). 그로부터, 국내산 참깨 71 품종 및 수입산 52 품종을 포함하여, 총 123 품종을 식별하기에 용이한 참깨 품종식별용 27 쌍의 프라이머 세트를 제작하였다. 27쌍의 프라이머 세트는 하기 표 3과 같다.In order to prepare a primer for allele-specific PCR for discriminating sesame cultivars, a modified sequence in which any one or two bases of the bases at
(5) (5) 탐색된Explored 유전변이에 대한 염기서열 재분석(re-sequencing) 및 Sequence re-sequencing of genetic mutations and 유전자마커Gene marker 선발 Selection
국내산 참깨 시료 71 종을 대상으로, 27 개의 SNP에 대한 염기서열 재분석(re-sequencing)을 진행하였다. 염기서열 재분석을 위한 PCR은, 반응 산물이 약 700 bp가 되도록 프라이머를 합성하고, PCR 반응 후, 반응 산물은 다중-웰 여과 플레이트(Multi-well filter plate) (Pall Corporation, USA)로 정제한 후 BigDyeⓡ Terminator (v3.1) Cycle 시퀀싱 키트(squencing Kit) (Applied Biosystems, UK)을 사용하여 수행하였다. Re-sequencing of 27 SNPs was conducted on 71 domestic sesame seed samples. For PCR, the primers were synthesized so that the reaction product was about 700 bp. After the PCR reaction, the reaction products were purified with a multi-well filter plate (Pall Corporation, USA) And using a BigDyeⓡ Terminator (v3.1) Cycle Sequencing Kit (Applied Biosystems, UK).
정제한 PCR 산물 2 ㎕에 5X 버퍼 1.75 ㎕, Big Dye 0.5 ㎕ 및 프라이머(primer) 5 pmol/㎕를 첨가한 후, 총 10 ㎕가 되도록 멸균증류수를 첨가하였다. 반응은, 96℃에서 10초간 가열한 후, 50℃에서 5초, 60℃에서 4분간, 34회 반복하여 수행하였다. PCR 반응 후 에탄올로 정제하고 건조한 뒤, 건조된 시료에 Hi-DiTM 포름아미드(Formamide) 8 ㎕를 첨가하고, 95℃에서 2분간 반응시킨 후 염기서열 분석 장비인 ABI 3730xl(Applied Biosystems)을 통해, 각 품종의 염기서열을 결정하였다. 염기서열 분석을 통해 얻어진 유전자 염기서열은 SNP 확인을 위하여 Lasergene SeqMan program (DNASTAR, Inc., USA)을 이용 분석하였다.To 2 μl of the purified PCR product, 1.75 μl of 5 × buffer, 0.5 μl of Big Dye and 5 pmol / μl of a primer were added, followed by addition of sterilized distilled water to a total of 10 μl. The reaction was carried out by heating at 96 占 폚 for 10 seconds, then repeating 34 times at 50 占 폚 for 5 seconds and at 60 占 폚 for 4 minutes. After PCR reaction, the reaction mixture was purified with ethanol and dried. To the dried sample, 8 μl of Hi-Di ™ formamide was added, reacted at 95 ° C. for 2 minutes, and analyzed by ABI 3730xl (Applied Biosystems) The nucleotide sequences of each variety were determined. Sequence analysis was performed using the Lasergene SeqMan program (DNASTAR, Inc., USA) to identify SNPs.
염기서열 재분석 결과, 참깨 품종식별에 용이한 27개의 SNP 마커가 확인되었다. 나아가, 효율적인 품종식별을 위하여 최종 12개의 SNP 마커를 선별하였다. 이를 이용하여 다중 PCR 조건을 추가적으로 확립하였다. 도 3a 및 3b를 참조하면, 12쌍의 프라이머 세트를 이용하여, 유미, 갈미 및 중모5002 품종의 DNA를 증폭한 후, 증폭 산물을 밴드로 확인한 결과로부터 품종 특이적인 증폭 산물이 형성된 것을 알 수 있다. 또한, 품종식별의 정확성을 향상시키고자 필요에 따라 염록체에 위치한 RBCL 유전자를 대상으로 대조군 마커를 제작하여 이용하였다. As a result of the base sequence reanalysis, 27 SNP markers which are easy to identify sesame variety were identified. Furthermore, the final 12 SNP markers were selected for efficient breed identification. And multiplex PCR conditions were further established using this. Referring to FIGS. 3A and 3B, DNA of 5002 varieties of Yumi, Gramineae and midworm were amplified using 12 pairs of primer sets, and the amplification products were confirmed by bands. As a result, a product-specific amplification product was formed . In order to improve the accuracy of breed identification, control markers were constructed and used for the RBCL gene located in the chloroplasts as needed.
(6) 대립유전자 특이적 (6) Allele specific 중합효소연쇄반응Polymerase chain reaction (AS- (AS- PCRPCR )을 이용한 참깨 식별) To identify sesame seeds
참깨 품종을 식별하기 위해 12개의 단일염기다형성(SNP) 마커와 내재 대조군 마커 (RBCL)로서 염록체에 위치한 RBCL 유전자를 대상으로, 대립유전자 특이적 중합효소연쇄반응 (AS-PCR)을 수행하였으며, 하기 표 4에 기재된 서열번호 1부터 26의 프라이머 (SSKh2 프라이머 세트, SSKh4 프라이머 세트, SSKh5 프라이머 세트, SSKh7 프라이머 세트, SSKh8 프라이머 세트, SSKh10 프라이머 세트, SSKh14 프라이머 세트, SSKh21 프라이머 세트, SSKh24 프라이머 세트, SSKh26 프라이머 세트, SSKh31 프라이머 세트, SSKh33 프라이머 세트 및 RBCL 프라이머 세트)를 이용하였다.Allele-specific polymerase chain reaction (AS-PCR) was performed on the RBCL gene located in the salt rock as 12 single nucleotide polymorphism (SNP) markers and an internal control marker (RBCL) (SSKh2 primer set, SSKh4 primer set, SSKh5 primer set, SSKh5 primer set, SSKh7 primer set, SSKh7 primer set, SSKh8 primer set, SSKh10 primer set, SSKh10 primer set, SSKh14 primer set, SSKh21 primer set, SSKh24 primer set, SSKh26 Primer set, SSKh31 primer set, SSKh33 primer set and RBCL primer set) were used.
12개 SNP 마커의 개별 분석을 위한 PCR (대립유전자 특이적 중합효소연쇄반응)은 게놈 DNA 50 ng에 10 x 버퍼 2.5 ㎕, dNTP (각 2.5mM) 1 ㎕, 10 pmol로 희석한 정방향 및 역방향 프라이머 각 0.5 ㎕와 중합효소 (Taq polymerase, Takara, Japan) 2U을 첨가한 후, 멸균 증류수로 최종 25 ㎕가 되도록 증액하였다. 유전자의 증폭반응은 GeneAmp PCR System 9700(Applied Biosystems, USA)을 이용하였으며, 94 ℃에서 15분간 변성 후, 94 ℃ 30초, 60 ℃ 30초, 72 ℃ 1분 20초 동안 반응을 30회 반복 수행하였다. PCR 증폭 산물은 3% 아가로즈 겔(agarose gel) 상에서 전기영동을 통해 확인하였다. 단일 PCR의 결과는 도 2와 동일하였다.PCR (allele-specific polymerase chain reaction) for the individual analysis of 12 SNP markers was performed by adding 2.5 μl of 10 × buffer, 1 μl of dNTP (2.5 mM each), 50 μl of forward and reverse primer 0.5 μl of each, and 2 U of polymerase (Taq polymerase, Takara, Japan) were added, and the final amount was increased to 25 μl with sterilized distilled water. Gene amplification was carried out using GeneAmp PCR System 9700 (Applied Biosystems, USA). After denaturation at 94 ° C for 15 minutes, the reaction was repeated 30 times at 94 ° C for 30 seconds, 60 ° C for 30 seconds, and 72 ° C for 1 minute and 20 seconds Respectively. PCR amplification products were confirmed by electrophoresis on 3% agarose gel. The results of the single PCR were the same as in Fig.
(7) (7) 마커의Marker 참깨 품종식별 가능성 검정 Sesame variety identification test
본 발명에 따른 마커의 참깨 품종식별 가능성을 조사하였다. 하기 식 1을 사용하여 PIC (polymorphism information content)값을 산출하였다. 하기 식 1에서 K는 각 대립유전자의 총 밴드수이며, Pi는 마커의 밴드 중에서 i 번째 공통 밴드패턴의 빈도수를 나타낸다 (Anderson et al. 1993).The possibility of identification of the sesame variety of the marker according to the present invention was examined. Polymorphism information content (PIC) values were calculated using the following equation (1). K is the total number of alleles of each allele, and Pi is the frequency of the i-th common band pattern in the marker band (Anderson et al. 1993).
< 식 1 ><
증폭 산물의 크기(bp) 및 PIC 값을 하기 표 4에 나타내었다.The amplification products (bp) and PIC values are shown in Table 4 below.
(bp)size
(bp)
산물의
크기
(bp)Amplification
Product
size
(bp)
종류transition
Kinds
(℃)Annealing temperature
(° C)
SSKh33
166
INDEL
60
TAATGC
0.500
대조군 마커
(rbcL)immanence
Control markers
(rbcL)
500
상기 표 4에 나타난 바와 같이, 본 발명에 따른 참깨 품종식별용 프라이머 세트, 서열번호 1과 2 (마커명: SSKh2), 서열번호 3과 4 (마커명: SSKh4), 서열번호 5과 6 (마커명: SSKh5), 서열번호 7와 8 (마커명: SSKh7), 서열번호 9와 10 (마커명: SSKh8), 서열번호 11와 12 (마커명: SSKh10), 서열번호 13와 14 (마커명: SSKh14), 서열번호 15와 16 (마커명: SSKh21), 서열번호 17와 18 (마커명: SSKh24), 서열번호 19와 20 (마커명: SSKh26), 서열번호 21와 22 (마커명: SSKh31), 및 서열번호 23와 24 (마커명: SSKh33)의 12개 마커의 평균 PIC값은 0.406으로, 본 발명의 마커를 통해 참깨 품종의 식별이 충분히 가능함을 확인하였다. 본 발명에 따른 마커의 대립유전자 (밴드) 유무를 정확하게 판별하기 위하여, 내재 대조군 마커로 서열번호 25과 26 (마커명: RBCL)을 사용함으로써 참깨 품종을 식별하는데 정확도를 기하였다.1 and 2 (marker name: SSKh2), SEQ ID NO: 3 and 4 (marker name: SSKh4), SEQ ID NO: 5 and 6 (
대립유전자 특이적 중합효소연쇄반응 (AS-PCR)을 통해 12개 SNP 마커의 유전자 증폭 산물을 도 5의 데이터베이스와 비교하여 품종을 식별하며 또한 원산지를 판별할 수 있다. 본 발명에 따른 마커에 대해 대립유전자 (밴드) 유무를 판별하여 밴드가 존재할 경우에는 점수 "1"로 코드화하고, 밴드가 존재하지 않을 경우에는 "0"으로 코드화 하였다. 도 5는 참깨 123개 품종 (국내산 71 및 수입산 52)을 대상으로, 본 발명에 따른 참깨 품종식별용 프라이머 세트를 사용하여 확인된 대립유전자의 유무를 코드화한 결과이다. 품종을 식별하고자 하는 참깨로부터 게놈 DNA를 분리한 후, 본 발명의 프라이머 세트를 이용하여 증폭하고 증폭 산물과 도 5의 결과를 비교 분석함으로써 참깨 품종 및 원산지를 식별할 수 있다. 구체적으로, 본 발명은 12개의 단일염기다형성 마커 (SNP marker)를 이용하여 공지된 123 품종 가운데 국내산 71 품종과 수입산 52 품종 (중국산 10, 우즈베키스탄 23, 수단 3 및 인도 16)을 식별할 수 있으므로, 국내산과 수입산 간의 원산지를 판별하는 방법을 제공하며, 국내산 67 품종의 식별이 가능하다. The gene amplification products of 12 SNP markers can be compared with the database of FIG. 5 through allele-specific polymerase chain reaction (AS-PCR) to identify the breeds and to determine the origin. The presence or absence of alleles (bands) in the marker according to the present invention is determined. When there is a band, the score is coded as "1", and when there is no band, it is coded as "0". FIG. 5 is a result of coding the presence or absence of alleles identified by using the sesame breed identification primer set according to the present invention on 123 varieties of sesame (71 domestic and 52 imported). Genomic DNA is isolated from the sesame seeds for which the breed is to be identified, amplified using the primer set of the present invention, and compared with the result of the amplification product and the result of FIG. 5, thereby identifying the sesame variety and the country of origin. Specifically, the present invention can identify 71 domestic varieties and 52 imported varieties (10 from China, 23 from Uzbekistan, 3 from India and 16 from India) among 123 known varieties using 12 single nucleotide polymorphic markers (SNP markers) It provides a method to distinguish the origin of domestic and imported products, and it is possible to identify 67 domestic varieties.
대립유전자의 유무를 NTSYS pc(version 2.10b)(Rohlf, 2000) 컴퓨터 프로그램에 입력하고 Jaccard's 방법(Sneath and Sokal, 1973)에 준하여 유전적 유사도 값을 계산하였다. 계산된 유전적 유사도를 이용하여 UPGMA(Unweighted Pair-group Method with Arithmetical Average)(Sneath and Sokal, 1973)에 의해 집괴 분석하여 계통도(dendrogram)를 작성하고 그 결과를 도 6에 나타내었다. 도 6은 본 발명에 따른 참깨 품종식별용 프라이머 세트에 의해 분석된 각 참깨 품종의 유전적 유사도를 나타낸다. 이를 통해, 본 발명의 프라이머 세트를 이용하여 원산지 및 품종의 구별이 가능함을 확인할 수 있었다.Genetic similarity values were calculated according to Jaccard's method (Sneath and Sokal, 1973) by inputting the presence of an allele into a computer program of NTSYS pc (version 2.10b) (Rohlf, 2000). Using the calculated genetic similarity, an aggregate analysis was performed by UPGMA (Unweighted Pair-group Method with Arithmetical Average) (Sneath and Sokal, 1973) to prepare a dendrogram, and the results are shown in FIG. FIG. 6 shows the genetic similarity of each sesame variety analyzed by the primer set for discriminating sesame cultivars according to the present invention. As a result, it was confirmed that it is possible to distinguish the origin and the breed using the primer set of the present invention.
<110> Republic of Korea <120> Method and kit for identifying origin of sesame using single nucleotide polymorphism markers <130> PN114803 <160> 38 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh2 F-primer <400> 1 atctaaggaa agctcggaca ggac 24 <210> 2 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh2 R-primer <400> 2 agaagcacgg cctttcaaaa g 21 <210> 3 <211> 30 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh4 F-primer <400> 3 acaatgacga taaagagaag taagaaagct 30 <210> 4 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh4 R-primer <400> 4 tggttatgtg gagactgatg agtgc 25 <210> 5 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh5 F-primer <400> 5 tctcatgctt gaaaagaaca acagc 25 <210> 6 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh5 R-primer <400> 6 agccagctta ttttcgtttt acttttc 27 <210> 7 <211> 30 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh7 F-primer <400> 7 tcttacaagt atatcaatga aagtttgcgg 30 <210> 8 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh7 R-primer <400> 8 tcaatgccag ctgaattttc agag 24 <210> 9 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh8 F-primer <400> 9 atgcaagttg tgctgttctg ctctat 26 <210> 10 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh8 R-primer <400> 10 aagagacccc caagacagat acatg 25 <210> 11 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh10 F-primer <400> 11 tgttgagatt gagagggaga gaatatca 28 <210> 12 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh10 R-primer <400> 12 atcccttcac tgtttttgtg tttaacc 27 <210> 13 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh14 F-primer <400> 13 ccatggcatc atagataaag cttact 26 <210> 14 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh14 R-primer <400> 14 tcaccaatgt ccatcacccc 20 <210> 15 <211> 29 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh21 F-primer <400> 15 aaagtggaac acaacaagaa aaataacat 29 <210> 16 <211> 29 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh21 R-primer <400> 16 cagccttcaa acaagaaata tagaatctg 29 <210> 17 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh24 F-primer <400> 17 tcaaagcttt ttcaaaagaa tatcagag 28 <210> 18 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh24 R-primer <400> 18 tggaacagtt catcactttg tgg 23 <210> 19 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh26 F-primer <400> 19 agagcggccg taagagctg 19 <210> 20 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh26 R-primer <400> 20 tcacttttct cttctccttc tccc 24 <210> 21 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh31 F-primer <400> 21 cacgaaaagg accaaactat aacc 24 <210> 22 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh31 R-primer <400> 22 tagagtcatt agttttcatg catcttg 27 <210> 23 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh33 F-primer <400> 23 aaatcttcaa ttggacaaga aaaatg 26 <210> 24 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh33 R-primer <400> 24 gattggagga acatagtgca ttaac 25 <210> 25 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> RBCL F-primer <400> 25 tcttcatatc caccgtgcaa 20 <210> 26 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> RBCL R-primer <400> 26 agcagctaat tcaggactcc 20 <210> 27 <211> 398 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 27 atctaaggaa agctcggaca ggacgatgtg taatgcttga gatccaatta gctcattcac 60 agcacagggt ctcctggatc tcagcaactg gtttgacctg agattggttt tgctcaaatg 120 catcaacagt tgagttcaga cagcaggacc aaattgccat ggtttcactc aatttcaatg 180 ggaagaatat tgtgttaagc acatatacac ttcttcctgc atgtctgtct tgccatcaaa 240 atatacatag gacaaatcta taaagagcat cataaccaat ctgaagatga ccaccgctcc 300 cataattgac acatttcttg tgtcgctcaa cattggcttc aaaactggtg gtcctgatat 360 ctttcctgtt tttcttcttg ttgaaaggcc gtgcttct 398 <210> 28 <211> 216 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 28 acaatgacga taaagagaag taagaaatct gagtaattac cttcaccagc agcaagattg 60 aagtaaaggt caacaatgtt ggggcaatta tggtagcaag caggcgagca aaggcttgag 120 atgaattcag gtgtcaggaa ggcatcggag gatattccga caaagttacg gtcaacacca 180 catgcattca cgcactcatc agtctccaca taacca 216 <210> 29 <211> 179 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 29 tctcatgctt gaaaagaaca acagcaggaa atctacatga gcaaagacac acagtggttg 60 tacccattag aggtattgca gctctggggc tcactaattg aactttgtgc tgcagcaata 120 tcatgaactt gcagatcgcg aacatgtata tagacaagta aaacgaaaat aagctggct 179 <210> 30 <211> 313 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 30 tcttacaagt atatcaatga aagtttgggg caaaatatga agcatttgga atcaatatac 60 tgatcaactc tgaacatcaa tgcccaatag cctatatcat caatcaagat tcaagaatca 120 atcagaagaa actcgtattc tgagttcaaa aggggatgga aactgaagac tttgaggtga 180 aggcttcaat ttctttgtca tccatccact cggttttcca ttgagaaata atatcagaga 240 cattaatggt agttttgccg tccggcccaa ctgggtaata tggtgaatcc tctgaaaatt 300 cagctggcat tga 313 <210> 31 <211> 399 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 31 atgcaagttg tgctgttctg ctccattctg acccccaaaa cgagcgcgat cagtacrcat 60 cgacgttctt taggcacaag ttggcggaga tgaagtcttt gagaagccag ttgagtgcca 120 agaaacagcg ggatgagggg gaagaagcgc attatagaca gatggagatg gaggcagagt 180 tgcagcgaag gaggcacaac atgcacatgc agcagctgca gcgaatgtcc gattctatcg 240 attttatggg acaaattggg acttcgacca attacactta cagatacttc tgaatatgat 300 gaatattggt tcttgatgtt cagttcggtc cggtctatgt taaatttcga atgttgttgt 360 tggtttgatt tgttcatgta tctgtcttgg gggtctctt 399 <210> 32 <211> 269 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 32 tgttgagatt gagagggaga gaatataact cctcactcct cgtatcggtc ttgtaagacc 60 ggaacttgtc ccaccaatgc atgcctctgt ccttcctcgt tgtgttgtcc ttggggggca 120 gcgttacatc cagaaccagc gccaacactc ccgcaacgaa tggctcagac gagaaaggaa 180 cgttgatcat gtcattgaac tggcaagagc catgaaaacg ttacaaattc agacataaga 240 gtggttaaac acaaaaacag tgaagggat 269 <210> 33 <211> 200 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 33 ccatggcatc atagataaag cttcctaact tgatgtatat ctatccaaac agtccaactt 60 gagccagtct agataaaaac gaaaagaaaa ggtcaatagg accgaacaag tggttgaggt 120 agtcgagcat gggataatgg tgtatggcat gggtgttcta tgctgaggca aaggttttgg 180 ggggtgatgg acattggtga 200 <210> 34 <211> 281 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 34 aaagtggaac acaacaagaa aaataaaatc atagcatacc acagcatgcc aatattacat 60 cactcaccaa ccccatgctt tgggatttat aatgcatgct ctacaatgca aatctgaaaa 120 agctgaaatt ttctctgcta ttctcccact acaaacaatc actattcttg gatccataaa 180 accagagatc ccatctttca tctttcgtat atatcccaat gcttaatctc cagtgctgat 240 actaaggcac cacagattct atatttcttg tttgaaggct g 281 <210> 35 <211> 203 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 35 tcaaagcttt ttcaaaagaa tatcagagta atttaccgaa aaaagaatat cagagtaaaa 60 agatagtgtt agagctaata ttattcattc ttccaagcat acaaaatcaa agaaaatcca 120 agacctggca attcagcctc cctgaaactc cctgggcagc tccaagaaga ggcaggtgaa 180 ccacaaagtg atgaactgtt cca 203 <210> 36 <211> 287 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 36 agagcggccg taagagctga aacacctggc cggacacgtc agcttcttct tgtaacacgg 60 gcccttctca ctgcacacaa aagaagtcct tattatgcca tgtttagagt ggcctccaga 120 cgggccccca taccctgatc cataccctcc accgaaaccc ggcccaaacc ccggtatgtt 180 gaacccgcct ccgggaccca agaatccgcc aggcccagca tcaggttggg gtcgggttgc 240 aagggagagg gtggcggaga ttaggaagaa ggagaagaga aaagtga 287 <210> 37 <211> 116 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 37 cacgaaaagg accaaacttt aaccaaagtt ttggcacaaa cccataccca taccagcagc 60 agaagatcat tagtagaaaa tttgatgcac aagatgcatg aaaactaatg actcta 116 <210> 38 <211> 166 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 38 aaatcttcaa ttggacaaga aaaatgaagg aaaaaacact aaaagggtca aagatattat 60 cattttaagt gaataagtat ttttctcaag aaccaaacag tcacacattg gtggtataat 120 ataaaaaagg ggaagcctca agttaatgca ctatgttcct ccaatc 166 <110> Republic of Korea <120> Method and kit for identifying origin of sesame using single nucleotide polymorphism markers <130> PN114803 <160> 38 <170> KoPatentin 3.0 <210> 1 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh2 F-primer <400> 1 atctaaggaa agctcggaca ggac 24 <210> 2 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh2 R-primer <400> 2 agaagcacgg cctttcaaaa g 21 <210> 3 <211> 30 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh4 F-primer <400> 3 acaatgacga taaagagaag taagaaagct 30 <210> 4 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh4 R-primer <400> 4 tggttatgtg gagactgatg agtgc 25 <210> 5 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh5 F-primer <400> 5 tctcatgctt gaaaagaaca acagc 25 <210> 6 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh5 R-primer <400> 6 agccagctta ttttcgtttt acttttc 27 <210> 7 <211> 30 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh7 F-primer <400> 7 tcttacaagt atatcaatga aagtttgcgg 30 <210> 8 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh7 R-primer <400> 8 tcaatgccag ctgaattttc agag 24 <210> 9 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh8 F-primer <400> 9 atgcaagttg tgctgttctg ctctat 26 <210> 10 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh8 R-primer <400> 10 aagagacccc caagacagat acatg 25 <210> 11 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh10 F-primer <400> 11 tgttgagatt gagagggaga gaatatca 28 <210> 12 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh10 R-primer <400> 12 atcccttcac tgtttttgtg tttaacc 27 <210> 13 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh14 F-primer <400> 13 ccatggcatc atagataaag cttact 26 <210> 14 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh14 R-primer <400> 14 tcaccaatgt ccatcacccc 20 <210> 15 <211> 29 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh21 F-primer <400> 15 aaagtggaac acaacaagaa aaataacat 29 <210> 16 <211> 29 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh21 R-primer <400> 16 cagccttcaa acaagaaata tagaatctg 29 <210> 17 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh24 F-primer <400> 17 tcaaagcttt ttcaaaagaa tatcagag 28 <210> 18 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh24 R-primer <400> 18 tggaacagtt catcactttg tgg 23 <210> 19 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh26 F-primer <400> 19 agagcggccg taagagctg 19 <210> 20 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh26 R-primer <400> 20 tcacttttct cttctccttc tccc 24 <210> 21 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh31 F-primer <400> 21 cacgaaaagg accaaactat aacc 24 <210> 22 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh31 R-primer <400> 22 tagagtcatt agttttcatg catcttg 27 <210> 23 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh33 F-primer <400> 23 aaatcttcaa ttggacaaga aaaatg 26 <210> 24 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> SSKh33 R-primer <400> 24 gattggagga acatagtgca ttaac 25 <210> 25 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> RBCL F-primer <400> 25 tcttcatatc caccgtgcaa 20 <210> 26 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> RBCL R-primer <400> 26 agcagctaat tcaggactcc 20 <210> 27 <211> 398 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 27 atctaaggaa agctcggaca ggacgatgtg taatgcttga gatccaatta gctcattcac 60 agcacagggt ctcctggatc tcagcaactg gtttgacctg agattggttt tgctcaaatg 120 catcaacagt tgagttcaga cagcaggacc aaattgccat ggtttcactc aatttcaatg 180 ggaagaatat tgtgttaagc acatatacac ttcttcctgc atgtctgtct tgccatcaaa 240 atatacatag gacaaatcta taaagagcat cataaccaat ctgaagatga ccaccgctcc 300 cataattgac acatttcttg tgtcgctcaa cattggcttc aaaactggtg gtcctgatat 360 ctttcctgtt tttcttcttg ttgaaaggcc gtgcttct 398 <210> 28 <211> 216 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 28 acaatgacga taaagagaag taagaaatct gagtaattac cttcaccagc agcaagattg 60 aagtaaaggt caacaatgtt ggggcaatta tggtagcaag caggcgagca aaggcttgag 120 atgaattcag gtgtcaggaa ggcatcggag gatattccga caaagttacg gtcaacacca 180 catgcattca cgcactcatc agtctccaca taacca 216 <210> 29 <211> 179 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 29 tctcatgctt gaaaagaaca acagcaggaa atctacatga gcaaagacac acagtggttg 60 tacccattag aggtattgca gctctggggc tcactaattg aactttgtgc tgcagcaata 120 tcatgaactt gcagatcgcg aacatgtata tagacaagta aaacgaaaat aagctggct 179 <210> 30 <211> 313 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 30 tcttacaagt atatcaatga aagtttgggg caaaatatga agcatttgga atcaatatac 60 tgatcaactc tgaacatcaa tgcccaatag cctatatcat caatcaagat tcaagaatca 120 atcagaagaa actcgtattc tgagttcaaa aggggatgga aactgaagac tttgaggtga 180 aggcttcaat ttctttgtca tccatccact cggttttcca ttgagaaata atatcagaga 240 cattaatggt agttttgccg tccggcccaa ctgggtaata tggtgaatcc tctgaaaatt 300 cagctggcat tga 313 <210> 31 <211> 399 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 31 atgcaagttg tgctgttctg ctccattctg acccccaaaa cgagcgcgat cagtacrcat 60 cgacgttctt taggcacaag ttggcggaga tgaagtcttt gagaagccag ttgagtgcca 120 agaaacagcg ggatgagggg gaagaagcgc attatagaca gatggagatg gaggcagagt 180 tgcagcgaag gaggcacaac atgcacatgc agcagctgca gcgaatgtcc gattctatcg 240 attttatggg acaaattggg acttcgacca attacactta cagatacttc tgaatatgat 300 gaatattggt tcttgatgtt cagttcggtc cggtctatgt taaatttcga atgttgttgt 360 tggtttgatt tgttcatgta tctgtcttgg gggtctctt 399 <210> 32 <211> 269 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 32 tgttgagatt gagagggaga gaatataact cctcactcct cgtatcggtc ttgtaagacc 60 ggaacttgtc ccaccaatgc atgcctctgt ccttcctcgt tgtgttgtcc ttggggggca 120 gcgttacatc cagaaccagc gccaacactc ccgcaacgaa tggctcagac gagaaaggaa 180 cgttgatcat gtcattgaac tggcaagagc catgaaaacg ttacaaattc agacataaga 240 gtggttaaac acaaaaacag tgaagggat 269 <210> 33 <211> 200 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 33 ccatggcatc atagataaag cttcctaact tgatgtatat ctatccaaac agtccaactt 60 gagccagtct agataaaaac gaaaagaaaa ggtcaatagg accgaacaag tggttgaggt 120 agtcgagcat gggataatgg tgtatggcat gggtgttcta tgctgaggca aaggttttgg 180 ggggtgatgg acattggtga 200 <210> 34 <211> 281 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 34 aaagtggaac acaacaagaa aaataaaatc atagcatacc acagcatgcc aatattacat 60 cactcaccaa ccccatgctt tgggatttat aatgcatgct ctacaatgca aatctgaaaa 120 agctgaaatt ttctctgcta ttctcccact acaaacaatc actattcttg gatccataaa 180 accagagatc ccatctttca tctttcgtat atatcccaat gcttaatctc cagtgctgat 240 actaaggcac cacagattct atatttcttg tttgaaggct g 281 <210> 35 <211> 203 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 35 tcaaagcttt ttcaaaagaa tatcagagta atttaccgaa aaaagaatat cagagtaaaa 60 agatagtgtt agagctaata ttattcattc ttccaagcat acaaaatcaa agaaaatcca 120 agacctggca attcagcctc cctgaaactc cctgggcagc tccaagaaga ggcaggtgaa 180 ccacaaagtg atgaactgtt cca 203 <210> 36 <211> 287 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 36 agagcggccg taagagctga aacacctggc cggacacgtc agcttcttct tgtaacacgg 60 gcccttctca ctgcacacaa aagaagtcct tattatgcca tgtttagagt ggcctccaga 120 cgggccccca taccctgatc cataccctcc accgaaaccc ggcccaaacc ccggtatgtt 180 gaacccgcct ccgggaccca agaatccgcc aggcccagca tcaggttggg gtcgggttgc 240 aagggagagg gtggcggaga ttaggaagaa ggagaagaga aaagtga 287 <210> 37 <211> 116 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 37 cacgaaaagg accaaacttt aaccaaagtt ttggcacaaa cccataccca taccagcagc 60 agaagatcat tagtagaaaa tttgatgcac aagatgcatg aaaactaatg actcta 116 <210> 38 <211> 166 <212> DNA <213> Unknown <220> <223> sesame <400> 38 aaatcttcaa ttggacaaga aaaatgaagg aaaaaacact aaaagggtca aagatattat 60 cattttaagt gaataagtat ttttctcaag aaccaaacag tcacacattg gtggtataat 120 ataaaaaagg ggaagcctca agttaatgca ctatgttcct ccaatc 166
Claims (8)
서열번호 3 및 4의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh4 프라이머 세트;
서열번호 5 및 6의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh5 프라이머 세트;
서열번호 7 및 8의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh7 프라이머 세트;
서열번호 9 및 10의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh8 프라이머 세트;
서열번호 11 및 12의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh10 프라이머 세트;
서열번호 13 및 14의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh14 프라이머 세트;
서열번호 15 및 16의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh21 프라이머 세트;
서열번호 17 및 18의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh24 프라이머 세트;
서열번호 19 및 20의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh26 프라이머 세트;
서열번호 21 및 22의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh31 프라이머 세트;및
서열번호 23 및 24의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh33 프라이머 세트를 포함하는, 참깨 품종식별용 프라이머 세트.An SSKh2 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 1 and 2;
An SSKh4 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 3 and 4;
An SSKh5 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 5 and 6;
An SSKh7 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 7 and 8;
An SSKh8 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 9 and 10;
An SSKh10 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 11 and 12;
An SSKh14 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 13 and 14;
An SSKh21 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 15 and 16;
An SSKh24 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 17 and 18;
An SSKh26 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 19 and 20;
An SSKh31 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 21 and 22;
A set of SSKh33 primers consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 23 and 24;
[표]
.The sesame variety identification primer set according to claim 1, wherein the sesame variety includes one or more of the varieties described in the following table
[table]
.
서열번호 3 및 4의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh4 프라이머 세트는 서열번호 28의 30번째 염기인 단일염기다형성 T와 A를 구별하고,
서열번호 5 및 6의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh5 프라이머 세트는 서열번호 29의 153번째 염기인 단일염기다형성 G와 C를 구별하고, 및 163번째 염기인 단일염기다형성 A와 G를 구별하고,
서열번호 7 및 8의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh7 프라이머 세트는 서열번호 30의 30번째 염기인 단일염기다형성 G와 C를 구별하고,
서열번호 9 및 10의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh8 프라이머 세트는 서열번호 31의 26번째 염기인 단일염기다형성 T와 C를 구별하고,
서열번호 11 및 12의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh10 프라이머 세트는 서열번호 32의 26번째 염기인 단일염기다형성 T와 G를 구별하고, 및 28번째 염기인 단일염기다형성 A와 G를 구별하고,
서열번호 13 및 14의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh14 프라이머 세트는 서열번호 33의 26번째 염기인 단일염기다형성 T와 A를 구별하고,
서열번호 15 및 16의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh21 프라이머 세트는 서열번호 34의 29번째 염기인 단일염기다형성 T와 G를 구별하고,
서열번호 17 및 18의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh24 프라이머 세트는 서열번호 35의 182번째 내지 196번째 염기의 삽입-결실(indel)를 식별하고,
서열번호 19 및 20의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh26 프라이머 세트는 서열번호 36의 264번째 염기인 단일염기다형성 G와 C를 구별하고,
서열번호 21 및 22의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh31 프라이머 세트는 서열번호 37의 17번째 내지 27번째 염기의 삽입-결실을 식별하고, 및
서열번호 23 및 24의 올리고뉴클레오티드로 이루어지는 SSKh33 프라이머 세트는 서열번호 38의 144번째 내지 149번째 염기의 삽입-결실을 식별하는 것인, 참깨 품종식별용 프라이머 세트.The SSKh2 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 1 and 2 distinguishes between T and C, which is the 378th nucleotide of SEQ ID NO: 27,
The SSKh4 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 3 and 4 distinguishes the single base polymorph T, which is the 30 < th > base of SEQ ID NO: 28 from A,
The SSKh5 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 5 and 6 distinguishes the single base polymorphism G and C, which is the 153rd base of SEQ ID NO: 29, and distinguishes the single base polymorphism A and G,
The SSKh7 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 7 and 8 distinguishes the single base polymorphism G and C, which is the 30 < th > base of SEQ ID NO:
The SSKh8 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 9 and 10 distinguishes the single base polymorphism T and C, which is the 26 < th > base of SEQ ID NO:
The SSKh10 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 11 and 12 distinguishes the single base polymorphism T and G, which is the 26 th base of SEQ ID NO: 32, and distinguishes the single base polymorphism A and G,
The SSKh14 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 13 and 14 distinguishes the single base polymorphism T, which is the 26 < th > base of SEQ ID NO: 33 from A,
The SSKh21 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 15 and 16 distinguishes the single base polymorphism T and G, which is the 29 < th > base of SEQ ID NO:
The SSKh24 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 17 and 18 identifies the insert-deletion indent of the 182nd to 196th bases of SEQ ID NO: 35,
The SSKh26 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 19 and 20 discriminates single base polymorphism G and C, which is the 264th base of SEQ ID NO: 36,
The SSKh31 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 21 and 22 identifies the insertion-deletion of the 17th to 27th bases of SEQ ID NO: 37, and
Wherein the SSKh33 primer set consisting of the oligonucleotides of SEQ ID NOS: 23 and 24 identifies the insertion-deletion of the 144th to 149th bases of SEQ ID NO: 38.
얻어진 증폭 산물로부터 상기 참깨의 품종을 결정하는 단계를 포함하는, 참깨 품종을 식별하는 방법.Amplifying the nucleic acid using the genomic DNA derived from sesame as a template and the primer set for discriminating sesame variety according to claim 1 as a primer; And
And determining the varieties of sesame from the resulting amplification products.
[표]
.[Claim 6] The method according to claim 5, wherein the step of determining the varieties of sesame from the obtained amplification product comprises comparing the amplification product obtained with the result of amplifying the nucleic acid of the sesame variety described in the following table by the primer set for discriminating sesame varieties according to claim 1 How to Identify Sesame Varieties That Are Performed
[table]
.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
KR1020160081363A KR101747266B1 (en) | 2016-06-29 | 2016-06-29 | Method and kit for identifying origin of sesame using single nucleotide polymorphism markers |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
KR1020160081363A KR101747266B1 (en) | 2016-06-29 | 2016-06-29 | Method and kit for identifying origin of sesame using single nucleotide polymorphism markers |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
KR101747266B1 true KR101747266B1 (en) | 2017-06-14 |
Family
ID=59218056
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
KR1020160081363A KR101747266B1 (en) | 2016-06-29 | 2016-06-29 | Method and kit for identifying origin of sesame using single nucleotide polymorphism markers |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
KR (1) | KR101747266B1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN112501337A (en) * | 2020-12-10 | 2021-03-16 | 中国农业科学院油料作物研究所 | KASP molecular marker related to sesame drought resistance character and application thereof |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR100781206B1 (en) | 2004-11-22 | 2007-12-03 | 강원대학교산학협력단 | SSR primer isolated from Sesamum sp. and use thereof |
KR101532566B1 (en) | 2011-12-28 | 2015-06-30 | 대한민국 | Primer for the Identification of Sesame Cultivar and Method for Identifying Sesame Cultivar |
-
2016
- 2016-06-29 KR KR1020160081363A patent/KR101747266B1/en active IP Right Grant
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR100781206B1 (en) | 2004-11-22 | 2007-12-03 | 강원대학교산학협력단 | SSR primer isolated from Sesamum sp. and use thereof |
KR101532566B1 (en) | 2011-12-28 | 2015-06-30 | 대한민국 | Primer for the Identification of Sesame Cultivar and Method for Identifying Sesame Cultivar |
Non-Patent Citations (7)
Title |
---|
Am J Bot. 2012 Oct;99(10):e394-8. |
BMC Genet. 2014 Mar 19;15:35. |
BMC Genomics. 2012 Jul 16;13:316. |
BMC Plant Biology201414:274 |
Mol Breeding., vol.34, pp.2205-2217 (2014) |
Molecules. 2014 Apr 22;19(4):5150-62. |
Plant Methods. 2012 Aug 24;8(1):34. |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN112501337A (en) * | 2020-12-10 | 2021-03-16 | 中国农业科学院油料作物研究所 | KASP molecular marker related to sesame drought resistance character and application thereof |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
KR101883117B1 (en) | SNP marker for selecting tomato cultivars resistant to tomato Bacterial wilt and use thereof | |
CN106282394A (en) | The method of high throughput testing Semen Maydis south rust resistance gene type and test kit thereof | |
KR20140039866A (en) | Ssr primer sets for discrimination of oriental melon line or cultivar and uses thereof | |
KR101858960B1 (en) | Method and kit for identifying variety of Cabbage using single nucleotide polymorphism markers | |
Li et al. | Comparison of AFLP and SSR for genetic diversity analysis of Brassica napus hybrids | |
KR100956323B1 (en) | Multiplex real time pcr method for discrimination of rice cultivar | |
KR101826732B1 (en) | Method and Kit for identifying variety of Chrysanthemum using single nucleotide polymorphism markers | |
KR101286990B1 (en) | Multiplex real time pcr method for discrimination of rice cultivar | |
KR101747266B1 (en) | Method and kit for identifying origin of sesame using single nucleotide polymorphism markers | |
KR101826735B1 (en) | Method and Kit for identifying variety of Blueberry using single nucleotide polymorphism markers | |
CN104593510A (en) | Primer, probe and method for detecting SNP allele variation of peanut FAD2 genes | |
KR20160086177A (en) | Random Amplified Polymorphic DNA primer for discrimination of tobacco cultivars | |
KR101858962B1 (en) | Method and kit for identifying variety of Persimmon using single nucleotide polymorphism markers | |
KR101766274B1 (en) | A method for identifying blueberry varieties using microsatellites markers | |
KR102267332B1 (en) | SNP marker for discriminating cultivars of sweet potatoes and method for discriminating cultivars using the marker | |
KR101695053B1 (en) | Universal primer set COS0264 for discrimination of Brassicaceae sp. and molecular marker comprising the same | |
KR101695051B1 (en) | Universal primer set COS0842 for discrimination of Brassicaceae sp. and molecular marker comprising the same | |
KR101354041B1 (en) | Primer set, method and kit for selecting PepMoV-resistant pepper cultivar | |
KR101794701B1 (en) | Primer set for Pyeonganok identification and method for identification | |
KR102477985B1 (en) | SNP genetic markers and primer sets for discriminating the cultivar of 7 certificated species (Saegeumgang, Baekgang, Goso, Suan, Baekjung, Jojo, and Geumgang) which are major domestic wheats and uses thereof | |
CN109161606B (en) | Development and application of SNP molecular marker of rice blast resistance gene Pi9 | |
KR20230033245A (en) | Molecular marker set for line or breed identification including soybean fishy smell removal genotypes and uses thereof | |
KR101760066B1 (en) | Primer set for Kwangpyeongok identification and method for identification | |
KR101760048B1 (en) | Primer set for Heukjinjuchal identification and method for identification | |
JPH1057073A (en) | Microsattelite marker for discriminating rice plant cultivar and test for purity of plant seed |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
E701 | Decision to grant or registration of patent right | ||
GRNT | Written decision to grant |