KR101377097B1

KR101377097B1 - Mutant Corynebacterium glutamicum Strain with Enhanced L-Glutamic Acid Production

Info

Publication number: KR101377097B1
Application number: KR1020120128725A
Authority: KR
Inventors: 문민우; 한재춘; 박준석; 박동철
Original assignee: 대상 주식회사
Priority date: 2012-11-14
Filing date: 2012-11-14
Publication date: 2014-03-20
Also published as: KR20120140636A

Abstract

본 발명은 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주 및 이의 제조 방법을 제공한다. 본 발명은 L-글루탐산 고생산능을 갖는 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주에서 avtA 또는 alaT 유전자를 코딩하는 뉴클레오타이드를 불활성화시킴으로써 L-글루탐산의 생산량은 증가시킴과 동시에 알라닌의 생산은 효과적으로 감소시킨 균주이다. 본 발명은 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주에서의 발효 부산물인 알라닌의 생산능을 감소시킴으로써 L-글루탐산을 높은 순도로 정제할 수 있을 뿐 만 아니라 L-글루탐산의 회수율을 향상시켜 L-글루탐산의 생산 제조 원가를 크게 낮출 수 있다. 또한, 본 발명은 알라닌 생합성과 관련된 아미노트랜스퍼라제를 코딩하는 두 종류의 유전자 avtA 와 alaT 유전자를 각각 염색체 상에서 제거하는 방법에 의해, 알라닌 생합성에 이용되는 피루브산의 세포내 농도를 증가시키고 이에 대한 대사흐름을 바꿔 궁극적으로 L-글루탐산 생산성 향상에 기여할 수 있는 기회를 제공함으로 생산비용이 절감되는 효과를 제공할 수 있으며, 본 발명에 의해 제조된 L-글루탐산은 수식 과정을 거쳐 감칠맛 성분으로 풍미증진제 및 조미원료로 이용될 수 있다.The present invention provides L-glutamic acid high production Corynebacterium glutamicum mutant strains and a method for preparing the same. The present invention is avtA or alaT in Corynebacterium glutamicum mutant strain having high L- glutamic acid production capacity By inactivating the nucleotide encoding the gene, the production of L-glutamic acid is increased while at the same time the production of alanine is effectively reduced. The present invention can not only purify L-glutamic acid with high purity by reducing the production capacity of alanine, a fermentation by-product in the strain of Corynebacterium glutamicum, but also improve the recovery rate of L-glutamic acid to improve L-glutamic acid. Production costs can be significantly reduced. In addition, the present invention is to increase the intracellular concentration of pyruvic acid used for alanine biosynthesis and metabolic flow for alanine biosynthesis by a method of removing on the chromosome two kinds of genes, avtA and alaT , which encode aminotransferases related to alanine biosynthesis, respectively. It can provide the effect of reducing the production cost by providing an opportunity to ultimately contribute to the improvement of L- glutamic acid productivity, L-glutamic acid prepared by the present invention is a flavor enhancer and seasoning as a flavor component through the modification process It can be used as a raw material.

Description

Mutant Corynebacterium glutamicum Strain with Enhanced L-Glutamic Acid Production

본 발명은 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주에 관한 것이다.
The present invention relates to L-glutamic acid high productivity Corynebacterium glutamicum mutant strains.

L-글루탐산은 미생물 발효에 의해 생산되는 대표적인 아미노산으로, 2008년 현재 전세계 생산량은 210만 톤으로 의약품, 식품, 동물사료 등에 널리 이용되는 아미노산이다. L-glutamic acid is a representative amino acid produced by microbial fermentation. As of 2008, the world's production amount is 2.1 million tons, which is widely used in medicine, food and animal feed.

L-글루탐산의 발효경로를 간단하게 살펴보면, 포도당은 주로 해당경로(EMP)를 거치게 되나 일부는 6탄당 인산경로(HMP)를 거쳐서 2분자의 피루브산(pyruvic acid)으로 대사된다. 그 중 1분자는 CO₂를 고정하여 옥살로아세트산(oxaloacetic acid)으로 되고 다른 1분자는 피루브산으로부터 아세틸코에이(acetyl CoA)와 결합하여 구연산(citric acid)으로 된다. 다시 옥살로아세트산과 구연산은 시트르산 회로(TCA cycle)로 들어가 알파-케토글루타산(α-ketoglutaric acid)이 된다. 여기서, 알파-케토글루타산으로 부터 호박산(succinic acid)으로 산화되는 산화대사 경로가 결여되어 있고 또 이소시트레이트 디히드로겐아제(isocitrate dehydrogenase)와 글루타메이트 디히드로겐아제(glutamate dehydrogenase)가 밀접하게 관여하기 때문에 알파-케토글루타산의 환원적 아미노산화 반응이 능률적으로 진행되어 L-글루탐산이 생성된다.In brief, the fermentation pathway of L-glutamic acid, glucose is mainly through the glycolytic pathway (EMP), but part of it is metabolized to two molecules of pyruvic acid through the hexasaccharide phosphate pathway (HMP). One molecule is fixed to CO2 to oxaloacetic acid, and the other molecule is combined with acetyl CoA from pyruvic acid to be citric acid. Oxaloacetic acid and citric acid go back into the citric acid cycle (TCA cycle) to become alpha-ketoglutaric acid. There is a lack of metabolic pathways that oxidize from alpha-ketoglutaric acid to succinic acid, and isocitrate dehydrogenase and glutamate dehydrogenase are closely involved. Therefore, the reductive amino acid reaction of alpha-ketoglutamic acid proceeds efficiently to produce L-glutamic acid.

L-글루탐산를 생산하는 통상적인 방법으로는 주로 브레비박테리움(Brevibacterium) 이나 코리네박테리움 속 및 그 변이주를 포함한 코리네형(cornyeform) 박테리아를 이용해 발효를 통해 생산하며(Amino Acid Fermentation, Gakkai Shuppan Center: 195-215, 1986) 그 외에도 대장균(Escherichia coli), 고초균(Bacillus), 방선균(Streptomyces), 페니실리움(Penicillum) 속 및 크렙시엘라(Klebsiella), 어위니아(Erwinia), 판토에아(Pantoea) 속 등의 미생물을 이용하는 방법 등이 있다(미국 특허 제3,220,929호, 제 6,682,912 호). Conventional methods for producing L-glutamic acid are produced primarily by fermentation using corneform bacteria, including Brevibacterium or Corynebacterium genus and its strains (Amino Acid Fermentation, Gakkai Shuppan Center). : 195-215, 1986) Escherichia coli ), Bacillus, Streptomyces, Penicillium genus and Klebsiella, Erwinia, Pantoea genus, etc. (US Pat. Nos. 3,220,929, 6,682,912).

한편 L-글루탐산의 생산량을 증가시키기 위한 방법으로, pyc 유전자나 fasR 같은 특정 유전자의 증폭이나(미국특허 제 6,852,516호, 대한민국특허 제7,007,296호), gdh , gltA , icd , pdh 및 argG 유전자의 프로모터(promoter)부위 조작(미국특허 제6,962,805호) 그리고 dtsR1과 pyc 유전자를 동시 파쇄(J. Ind. Microbiol. Biotechnol., 36:911-921, 2009)함으로 L-글루탐산 생산량을 증가시킨바 있다. Meanwhile, as a way to increase the production of L- glutamic acid, the amplification of specific genes such as genes or pyc fasR or (U.S. Patent No. 6,852,516, Republic of Korea Patent No. 7007296), gdh, gltA, icd, pdh And argG Manipulation of promoter regions of genes (US Pat. No. 6,962,805) and simultaneous disruption of dtsR1 and pyc genes (J. Ind. Microbiol. Biotechnol., 36: 911-921, 2009) increased L-glutamic acid production. have.

코리네형 세균에 의한 L-글루탐산의 생산에 있어서, 누수모델(leak model)에서는 알파-케토글루타산의 산화반응을 통해 석시닐코에이(succinyl-CoA)를 생성하는 옥소글루타레이트 디히로로겐아제 복합체[(oxoglutarate dehydrogenase comlex(ODHC)]의 약한 활성으로, 세포내 알파-케토글루타산(α-ketoglutaric acid)의 농도가 높게 유지되고, L-글루탐산 합성으로 대사흐름(metabolic flux)이 유도된다고 생각해 왔다. 비오틴(biotin) 제한 조건에서는 막(membrane) 투과성이 정상적인 상태에서 보다 높고, 그로 인해 세포내의 L-글루탐산 농도는 낮게 유지되게 되고, 피드백 저해(feedback inhibition)가 해제되어 계속해서 L-글루탐산의 과 생산이 이루어지게 된다고 생각되었다.In the production of L-glutamic acid by coryneform bacteria, in the leak model, oxoglutarate dihydrogenase that produces succinyl-CoA through oxidation of alpha-ketoglutamic acid With the weak activity of the complex [(oxoglutarate dehydrogenase comlex (ODHC)], the concentration of intracellular alpha-ketoglutaric acid is maintained and the metabolic flux is induced by L-glutamic acid synthesis. Under biotin restriction conditions, membrane permeability is higher than normal, resulting in low intracellular L-glutamic acid concentrations, and feedback inhibition being released to continue the L-glutamic acid It was thought that production would take place.

최근의 연구에 의해 몇 가지 점에서 대치되는 연구 결과들이 나왔다. 첫째, 상당한 수준의 ODHC(2-oxoglutarate dehydrogenase complex) 활성이 코리네박테리움 글루타미쿰에서 발견되었고, L-글루탐산 생산시에도 시트르산 회로가 완전히 정지 되지 않는다는 것이 밝혀졌다. 둘째, L-글루탐산 생산 조건에서도 이온이나 아미노산 및 유기산들의 투과성이 변하지 않는다는 것이 밝혀졌다. 이로 인해 L-글루탐산 생산과 관련된 대사흐름의 변화에 대해 다시금 주목하게 되었다. 대장균에서도 ODHC 변이주에 의해 L-글루탐산의 과생산이 보고되었다. 코리네형 세균에 있어서 비오틴 제한 조건에서 40-60%의 ODHC활성의 감소가 보고되었으며 ODHC의 활성 감소는 비오틴 제한조건 이외에도 페니실린(penicillin)이나 계면 활성제의 첨가에 의해서도 확인되었다.Recent research has led to several conflicting findings. First, significant levels of 2-oxoglutarate dehydrogenase complex (ODHC) activity were found in Corynebacterium glutamicum, and it was found that the citric acid cycle did not completely stop during L-glutamic acid production. Second, it has been found that the permeability of ions, amino acids and organic acids does not change even under L-glutamic acid production conditions. This led to a renewed attention to changes in metabolic flow associated with L-glutamic acid production. Overproduction of L-glutamic acid has also been reported in E. coli by ODHC mutants. A decrease in ODHC activity of 40-60% in biotin-restricted conditions in coryneform bacteria was reported, and a decrease in ODHC activity was confirmed by addition of penicillin or surfactant in addition to biotin restriction.

이러한 점에서 볼 때 ODHC의 활성 감소가 코리네형 세균에 있어서 필수적인 요소임을 알 수 있다. 최근 연구에 의하면 코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC 13869 균주에서 유래된 odh A 유전자가 파쇄된 균주에 의해 비오틴 과잉조건에서도 결핍 조건에서와 같은 수준의 L-글루탐산 생산이 보고되었다. 또한 odh A 파쇄주의 지방산 조성도 야생주와 거의 동일함이 밝혀져 L-글루탐산 생산이 막의 구조 변화에 의해서 보다 L-글루탐산 합성으로의 대사흐름의 변화에 의해 유발됨이 알려졌다(Appl. Environ. Microbiol., 73(4): 13081319, 2007). 또한 앞서 기술한 누수모델과 대별되는 기작으로, 기계적 감각통로의 동족체(mechanosensitive channel homolog)로써 L-글루탐산 배출에 중요한 역할을 하는 YggB(Ncgl1221)에 의한 능동수송기작(active transport mechanism)이 보고되면서 이를 활용한 L-글루탐산 생산이 주목을 받고 있다(대한민국 특허 제 7,017,511호).In this regard, it can be seen that the reduction of ODHC activity is an essential factor in coryneform bacteria. Recent studies have shown that odh from Corynebacterium glutamicum ATCC 13869 strain The production of L-glutamic acid has been reported by the strain of A gene disrupted even in the case of biotin excess conditions. It was also found that the fatty acid composition of odh A crushed strain was almost the same as that of wild strain, suggesting that L-glutamic acid production is caused by the change of metabolic flow to L-glutamic acid synthesis rather than by the structural change of membrane (Appl. Environ. Microbiol. , 73 (4): 13081319, 2007). In addition, as a mechanism that is different from the leak model described above, an active transport mechanism by YggB (Ncgl1221), which plays an important role in the release of L-glutamic acid as a mechanosensitive channel homolog, is reported. L-glutamic acid production is attracting attention (Korean Patent No. 7,017,511).

한편, 코리네박테리움 글루타미쿰 균주의 배양 온도인 30℃ 보다 높은 37℃ 또는 45℃에서 배양 가능하며, L-글루탐산을 생산할 수 있는 균주로서 코리네박테리움 에피센스(C. efficens) YS-314 균주를 자연계에서 분리해 보고한 바 있다(Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 52: 11271131, 2002).Meanwhile, C. efficens YS- can be cultured at 37 ° C. or 45 ° C. higher than 30 ° C., which is a culture temperature of Corynebacterium glutamicum strain, and capable of producing L-glutamic acid. 314 strains have been isolated and reported in nature (Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 52: 11271131, 2002).

아미노산 생합성 및 분해에 관여하는 아미노트랜스퍼라제(aminotransferase)는 α-아미노산의 α-케토산으로의 전이를 촉매하는 효소로 이들 효소를 아미노기전이효소(transaminase)라 부르며, 일반적으로 다수의 아미노산의 α-아미노기를 α-케토글루타레이트에 보내 NH4⁺로 전환시킨다. 특히 코리네박테리움 글루타미쿰의 알라닌 생합성과 관계된 아미노트랜스퍼라제는 피루브산을 기질로 하여 L-발린에 의존적인 방법으로 L-알라닌과 2-옥소이소발레이트로 전환을 촉매하는 avtA(alanine-valine transaminase) 유전자와 피루브산을 기질로 하여 L-글루탐산에 의존적인 방법으로는 L-알라닌과 2-옥소글루타르산으로 전환반응을 촉매하는 alaT(alanine transaminase) 유전자가 존재하며, 이중 L-알라닌 합성에 주된 반응을 촉매하는 알라닌 아미노트랜스퍼라제는 alaT 이다(Appl. Environ. Microbiol., 74(24): 74577462,2008).
Aminotransferases involved in amino acid biosynthesis and degradation are enzymes that catalyze the transfer of α-amino acids to α-keto acids. These enzymes are called transaminases and are commonly referred to as α- The amino group is sent to α-ketoglutarate to be converted to NH 4 ⁺ . In particular, aminotransferases related to alanine biosynthesis of Corynebacterium glutamicum are avtA (alanine-valine transaminase) catalyzing the conversion of L-alanine and 2- oxoisovalate in a L-valine-dependent manner with pyruvate as a substrate. ) AlaT (alanine transaminase) catalyzes the conversion of L-alanine and 2-oxoglutaric acid into genes and pyruvic acid-dependent methods. The alanine aminotransferase, which has a gene and catalyzes a major reaction in the double L-alanine synthesis, is alaT (Appl. Environ. Microbiol., 74 (24): 74577462, 2008).

본 명세서 전체에 걸쳐 다수의 논문 및 특허문헌이 참조되고 그 인용이 표시되어 있다. 인용된 논문 및 특허문헌의 개시 내용은 그 전체로서 본 명세서에 참조로 삽입되어 본 발명이 속하는 기술 분야의 수준 및 본 발명의 내용이 보다 명확하게 설명된다.
Numerous papers and patent documents are referenced and cited throughout this specification. The disclosures of the cited papers and patent documents are incorporated herein by reference in their entirety to better understand the state of the art to which the present invention pertains and the content of the present invention.

본 발명자들은 L-글루탐산을 효율적으로 고생산할 수 있는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 개발하고자 예의 노력하였다. 그 결과, 유전자 재조합 기술을 이용하여 L-글루탐산 생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 균주에서 알라닌-발린 트랜스아미나아제(alanine-valine transaminase) 또는 알라닌 아미노트랜스퍼라제(alanine aminotransferase)를 불활성화시킴으로써 알라닌-발린 트랜스아미나아제 또는 알라닌 아미노트랜스퍼라제가 불활성화된 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주에서 발효 부산물인 알라닌의 생산은 감소됨과 동시에 L-글루탐산의 생산은 현저하게 증가됨을 규명함으로써, 본 발명을 완성하게 되었다.The present inventors made diligent efforts to develop L-glutamic acid high-producing Corynebacterium glutamicum mutant strains capable of efficiently producing high L-glutamic acid. As a result, it was possible to inactivate alanine-valine transaminase or alanine aminotransferase in L-glutamic acid producing Corynebacterium glutamicum strains using genetic recombination techniques. In the Corynebacterium glutamicum mutant strain in which valine transaminase or alanine aminotransferase is inactivated, the production of alanine as a by-product of fermentation is reduced while the production of L-glutamic acid is markedly increased, thereby completing the present invention. Was done.

따라서 본 발명의 목적은 불활성화 알라닌-발린 트랜스아미나아제를 포함하는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 제공하는 데 있다. Accordingly, it is an object of the present invention to provide a L-glutamic acid high productivity Corynebacterium glutamicum mutant strain comprising inactivated alanine-valine transaminase.

본 발명의 다른 목적은 불활성화 알라닌 아미노트랜스퍼라제를 포함하는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 제공하는 데 있다.Another object of the present invention is to provide a L-glutamic acid high-performance Corynebacterium glutamicum mutant strain comprising inactivated alanine aminotransferase.

본 발명의 또 다른 목적은 알라닌-발린 트랜스아미나아제를 불활성화 시키는 단계를 포함하는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주 제조방법을 제공하는 데 있다.Another object of the present invention is L-glutamic acid high productivity Corynebacterium glutamicum comprising the step of inactivating alanine-valine transaminase To provide a method for producing a variant strain.

본 발명의 또 다른 목적은 알라닌 아미노트랜스퍼라제를 불활성화 시키는 단계를 포함하는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주 제조방법을 제공하는 데 있다.Another object of the present invention is L-glutamic acid high productivity Corynebacterium glutamicum comprising the step of inactivating alanine aminotransferase To provide a method for producing a variant strain.

본 발명의 또 다른 목적은 불활성화 알라닌-발린 트랜스아미나아제를 포함하는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 배양시키는 단계를 포함하는 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주로부터의 고농도 L-글루탐산 생산방법을 제공하는 데 있다.Still another object of the present invention is to provide a method for culturing L-glutamic acid high productivity Corynebacterium glutamicum mutant strains comprising inactivated alanine-valine transaminase from a Corynebacterium glutamicum mutant strain. It is to provide a high concentration L- glutamic acid production method.

본 발명의 또 다른 목적은 불활성화 알라닌 아미노트랜스퍼라제를 포함하는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 배양시키는 단계를 포함하는 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주로부터의 고농도 L-글루탐산 생산방법을 제공하는 데 있다.
Another object of the present invention is a high concentration L from Corynebacterium glutamicum mutant strain comprising culturing L-glutamic acid high productivity Corynebacterium glutamicum mutant strain comprising inactivated alanine aminotransferase. To provide a method for producing glutamic acid.

본 발명의 다른 목적 및 이점은 하기의 발명의 상세한 설명, 청구범위 및 도면에 의해 보다 명확하게 된다.
Other objects and advantages of the present invention will become more apparent from the following detailed description of the invention, claims and drawings.

본 발명의 일 양태에 따르면, 본 발명은 불활성화 알라닌-발린 트랜스아미나아제를 포함하는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 제공한다.
According to one aspect of the present invention, the present invention provides L-glutamic acid high productivity Corynebacterium glutamicum mutant strains comprising inactivated alanine-valine transaminase.

본 발명의 다른 양태에 따르면, 본 발명은 불활성화 알라닌 아미노트랜스퍼라제를 포함하는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 제공한다.
According to another aspect of the present invention, the present invention provides L-glutamic acid high productivity Corynebacterium glutamicum mutant strains comprising inactivated alanine aminotransferase.

본 발명자들은 L-글루탐산을 효율적으로 고생산할 수 있는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 개발하고자 예의 노력하였으며, 그 결과, L-글루탐산 생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 균주에서 알라닌-발린 트랜스아미나아제(alanine-valine transaminase) 또는 알라닌 아미노트랜스퍼라제(alanine aminotransferase)를 불활성화 시킴으로써 알라닌-발린 트랜스아미나아제 또는 알라닌 아미노트랜스퍼라제가 불활성화된 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주에서 발효 부산물인 알라닌의 생산은 감소됨과 동시에 L-글루탐산의 생산은 현저하게 증가됨을 규명하였다.The present inventors have made intensive efforts to develop L-glutamic acid high-performance Corynebacterium glutamicum mutant strain capable of efficiently producing L-glutamic acid, and as a result, L-glutamic acid-producing Corynebacterium glutamicum strain Corynebacterium glutamicum mutant strain in which alanine-valine transaminase or alanine aminotransferase was inactivated by inactivating alanine-valine transaminase or alanine aminotransferase The production of alanine, a by-product of fermentation, decreased and the production of L-glutamic acid increased significantly.

본 발명자들은 유전자 재조합 기술을 이용하여 코리네박테리움 글루타미쿰 균주에서 알라닌-발린 트랜스아미나아제를 불활성화 시키는 경우 알라닌의 합성을 감소시킬 뿐 만 아니라 주요 기질로 이용되는 피루브산의 알라닌 생합성에 대한 이용을 저해해 L-글루탐산 등의 아미노산 생합성을 위한 기질로 이용되게 하고 궁극적으로 L-글루탐산의 생합성을 향상시킬 수 있음을 확인하였다. 또한 알라닌 아미노트랜스퍼라아제를 불활성화 시키는 경우 알라닌의 생합성은 감소될 뿐 만 아니라 주요 기질로 이용되는 피루부산의 알라닌 생합성에 대한 이용을 저해해 L-글루탐산 등의 아미노산 합성을 위한 기질로 이용되게 하고, 또 다른 기질인 L-글루탐산의 분해를 막아 세포내 L-글루탐산의 농도를 높일 수 있음을 규명하였다. The present inventors have found that inactivation of alanine-valine transaminase in Corynebacterium glutamicum strains using genetic recombination technology not only reduces the synthesis of alanine, but also utilizes alanine biosynthesis of pyruvate, which is used as a major substrate. It was confirmed that it can be used as a substrate for amino acid biosynthesis such as L-glutamic acid and ultimately improve the biosynthesis of L-glutamic acid. In addition, inactivation of alanine aminotransferase not only reduces the biosynthesis of alanine, but also inhibits the use of alanine biosynthesis of pyruvate, which is used as a major substrate, to be used as a substrate for amino acid synthesis such as L-glutamic acid. In addition, it was found that it is possible to increase the concentration of intracellular L-glutamic acid by preventing the degradation of another substrate, L-glutamic acid.

코리네박테리움 글루타미쿰 균주는 알라닌 생합성에 관계된 두 종류의 아미노트랜스퍼라아제를 이용하여 알라닌을 생합성 하며, 상기 두 종류의 아미노트랜스퍼라아제는 알라닌-발린 트랜스아미나아제와 알라닌 아미노트랜스퍼라아제로 구성된다. Corynebacterium glutamicum strains synthesize alanine using two types of aminotransferases involved in alanine biosynthesis, and the two aminotransferases are alanine-valine transaminase and alanine aminotransferase. It is composed.

알라닌-발린 트랜스아미나아제는 피루브산을 기질로 하여 L-발린에 의존적으로 L-알라닌과 2-옥소이소발레이트로 전환을 촉매하는 효소이고, 알라닌 아미노트랜스퍼라아제는 피루브산을 기질로 하여 L-글루탐산에 의존적으로 L-알라닌과 2-옥소글루타르산으로 전환시키는 효소이다. Alanine-valine transaminase is an enzyme that catalyzes the conversion of L-alanine and 2-oxoisovalate dependent on L-valine with pyruvic acid as a substrate, and alanine aminotransferase is used to form L-glutamic acid with pyruvate as a substrate. Dependently converts to L-alanine and 2-oxoglutaric acid.

본 발명은 코리네박테리움 글루타미쿰 균주에서의 알라닌-발린 트랜스아미나아제를 불활성화시킴으로써 피루브산을 기질로 하는 L-발린에 의존적인 알라닌의 생합성 경로를 차단하여 알라닌의 합성을 현저히 감소시킬 뿐 만 아니라 균주내 증가된 피루브산을 L-글루탐산의 생산에 이용하게 하는 대사흐름 변경을 통하여 L-글루탐산의 생산량을 매우 우수하게 증가시킬 수 있다.The present invention only significantly reduces alanine synthesis by inactivating alanine-valine transaminase in Corynebacterium glutamicum strains, thereby blocking the biosynthetic pathway of alanine dependent on pyruvate as a substrate. In addition, it is possible to increase the production of L-glutamic acid very well through the metabolic flow alteration that makes use of increased pyruvic acid in the strain to produce L-glutamic acid.

또한, 본 발명은 코리네박테리움 글루타미쿰 균주에서의 알라닌 아미노트랜스퍼라제를 불활성화시킴으로써 피루브산을 기질로 하는 L-글루탐산에 의존적인 알라닌의 생합성 경로를 차단하여 알라닌의 합성은 현저히 감소될 뿐 만 아니라 알라닌 생합성에 이용되지 않는 L-글루탐산은 축적되고 균주내 증가된 피루브산을 L-글루탐산의 생산에 이용하게 하는 대사흐름 변경을 통하여 궁극적으로 L-글루탐산의 생산량을 매우 우수하게 증가시킬 수 있는 효과를 발휘를 한다.In addition, the present invention blocks the biosynthetic pathway of alanine, which is dependent on pyruvic acid, by inactivating alanine aminotransferase in Corynebacterium glutamicum strains, thereby significantly reducing the synthesis of alanine. In addition, L-glutamic acid, which is not used for alanine biosynthesis, has the effect of ultimately increasing L-glutamic acid production through metabolic flow alterations that accumulate and make use of increased pyruvic acid in strains to produce L-glutamic acid. Exercising

본 발명에서 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 표현하면서 사용하는 용어 “불활성화”는 유전자를 코딩하는 뉴클레오타이드를 치환, 삽입, 결실 또는 이들의 조합을 통하여 단백질의 발현을 억제시키는 것을 의미한다.In the present invention, the term "inactivation" used while expressing a Corynebacterium glutamicum mutant strain means inhibiting the expression of a protein through substitution, insertion, deletion or a combination of nucleotides encoding a gene.

본 발명의 바람직한 구현 예에 따르면, 본 발명의 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주는 avtA 유전자를 코딩하는 뉴클레오타이드 서열을 치환, 삽입, 결실 또는 이들의 조합을 통하여 알라닌-발린 트랜스아미나아제가 불활성화 된 균주이며, 보다 바람직하게는 avtA 유전자를 코딩하는 뉴클레오타이드 서열의 완전 또는 부분 결실을 통하여 알라닌-발린 트랜스아미나아제가 불활성화 된 균주이고, 가장 바람직하게는 avtA 유전자를 코딩하는 뉴클레오타이드 서열의 부분 결실을 통하여 알라닌-발닌 트랜스아미나아제가 불활성화 된 균주이다.According to a preferred embodiment of the present invention, the Corynebacterium glutamicum mutant strain of the present invention inactivates alanine-valine transaminase by substitution, insertion, deletion or combination thereof of the nucleotide sequence encoding the avtA gene. and a strain, more preferably through a full or partial deletion of the nucleotide sequence coding for the avtA gene alanine - and a better valine trans amido I inactivated strains, a partial deletion of the nucleotide sequence most preferably encoding an avtA gene Alanine-Vanine transaminase is inactivated strain through.

또한, 본 발명의 바람직한 구현 예에 따르면, 본 발명의 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주는 alaT 유전자를 코딩하는 뉴클레오타이드 서열을 치환, 삽입, 결실 또는 이들의 조합을 통하여 알라닌 아미노트랜스퍼라제가 불활성화 된 균주이며, 보다 바람직하게는 alaT 유전자를 코딩하는 뉴클레오타이드 서열의 완전 또는 부분 결실을 통하여 알라닌 아미노트랜스퍼라제가 불활성화 된 균주이고, 가장 바람직하게는 alaT 유전자를 코딩하는 뉴클레오타이드 서열의 부분 결실을 통하여 알라닌 아미노트랜스퍼라제가 불활성화 된 균주이다.In addition, according to a preferred embodiment of the present invention, the Corynebacterium glutamicum mutant strain of the present invention inactivates alanine aminotransferase through substitution, insertion, deletion or a combination of nucleotide sequences encoding the alaT gene. and a strain, and more preferably alanine amino transferase I inactivated strain through the complete or partial deletion of the nucleotide sequence encoding the alaT gene, and most preferably alanine through a partial deletion of the nucleotide sequence encoding the alaT gene Aminotransferase is inactivated strain.

본 발명은 코리네박테리움 글루타미쿰 균주로부터 L-글루탐산 생산을 고효율 및 대량으로 생산하기 위하여 알라닌-발린 트랜스아미나아제 또는 알라닌 아미노트랜스퍼라제가 불활성화된 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 이용함으로써, 코리네박테리움 글루타미쿰으로 L-글루탐산을 생산 및 회수하는데 있어서 부산물인 알라닌의 생산을 현저하게 감소시킬 뿐 만 아니라 L-글루탐산을 고생산하여 매우 효율적으로 수득할 수 있는 균주이다.The present invention utilizes a Corynebacterium glutamicum mutant strain in which alanine-valine transaminase or alanine aminotransferase is inactivated in order to produce L-glutamic acid production in high efficiency and in large quantities from Corynebacterium glutamicum strains. By doing so, not only significantly reduces the production of alanine as a by-product in producing and recovering L-glutamic acid from Corynebacterium glutamicum, but also produces a highly efficient L-glutamic acid.

본 발명의 명세서에서 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 표현하면서 사용하는 표현 “알라닌의 생산능의 감소”는 야생형 또는 알라닌-발린 트랜스아미나아제 또는 알라닌 아미노트랜스퍼라제 활성을 포함하는 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주로부터 생산되는 알라닌의 생산량보다 감소된 양을 의미한다.The expression “decrease in alanine production” used in expressing Corynebacterium glutamicum mutant strains in the context of the present invention refers to Corynebacterium containing wild type or alanine-valine transaminase or alanine aminotransferase activity. By reduced amount of alanine produced from glutamicum mutant strains.

본 발명의 바람직한 구현 예에 따르면, 본 발명에서의 알라닌-발린 트랜스아미나아제 또는 알라닌 아미노트랜스퍼라제가 불활성화된 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주는 균주 배양액 1ℓ 당 38-50 g의 L-글루탐산을 생산할 수 있으며, 보다 바람직하게는 39-45 g의 L-글루탐산을 생산할 수 있고, 가장 바람직하게는 41-43 g의 L-글루탐산을 생산할 수 있다.According to a preferred embodiment of the present invention, the Corynebacterium glutamicum mutant strain in which alanine-valine transaminase or alanine aminotransferase is inactivated in the present invention is 38-50 g of L-glutamic acid per liter of strain culture. Can be produced, more preferably can produce 39-45 g of L-glutamic acid, and most preferably can produce 41-43 g of L-glutamic acid.

본 발명은 야생형(wild type) 또는 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 모균주로 하여 알라닌-발린 트랜스아미나아제 또는 알라닌 아미노트랜스퍼라제를 불활성화 시킨 균주이며, 알라닌-발린 트랜스아미나아제 또는 알라닌 아미노트랜스퍼라제를 발현 또는 효소 활성을 포함하고 있는 야생형 또는 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주라면 모균주로 제한 없이 이용이 가능하다.The present invention is a strain in which alanine-valine transaminase or alanine aminotransferase is inactivated using a wild type or Corynebacterium glutamicum mutant strain as a parent strain, and alanine-valine transaminase or alanine amino Wild type or Corynebacterium glutamicum mutant strains containing transferase expression or enzymatic activity can be used without limitation as a parent strain.

본 발명자들은 유전자 재조합(재조합 플라스미드) 기술을 이용하여 제조한 알라닌-발린 트랜스아미나아제 또는 알라닌 아미노트랜스퍼라제를 불활성화 시킨 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주들 중 부산물인 알라닌을 최소로 생산할 뿐 만 아니라 L-글루탐산을 고생산할 수 있는 불활성화 알라닌-발린 트랜스아미나아제 또는 불활성화 알라닌 아미노트랜스퍼라제를 포함하는 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 각각 DSB41002 및 DSB41003이라 명명하고, 국제미생물기탁기관인 한국생명공학연구원 유전자은행에 2010년 10월 27일자로 기탁하였으며, 기탁번호 KCTC11797BP 및 KCTC11798BP를 각각 부여받았다.We only produce a minimum of alanine, a by-product of the Corynebacterium glutamicum mutant strains inactivating alanine-valine transaminase or alanine aminotransferase prepared using genetic recombination (recombinant plasmid) technology. As well as Corynebacterium glutamicum mutant strains comprising inactivated alanine-valine transaminase or inactivated alanine aminotransferase capable of high production of L-glutamic acid, respectively, using DSB41002 and It was named DSB41003 and was deposited on October 27, 2010 by the Korea Biotechnology Research Institute, Genetic Bank, an international microbial deposit institution, and was assigned the accession numbers KCTC11797BP and KCTC11798BP, respectively.

본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 본 발명에서 불활성화 알라닌-발린 트랜스아미나아제를 포함하는 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주는 기탁번호 KCTC11797BP인 균주이다.According to a preferred embodiment of the present invention, the Corynebacterium glutamicum mutant strain comprising inactivated alanine-valine transaminase in the present invention is a strain having accession number KCTC11797BP.

또한, 본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 본 발명에서 불활성화 알라닌 아미노트랜스퍼라제를 포함하는 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주는 기탁번호 KCTC11798BP인 균주이다.In addition, according to a preferred embodiment of the present invention, the Corynebacterium glutamicum mutant strain comprising inactivated alanine aminotransferase in the present invention is a strain having accession number KCTC11798BP.

본 발명의 또 다른 양태에 따르면, 본 발명은 알라닌-발린 트랜스아미나아제(alanine-valine transaminase)를 불활성화시키는 단계를 포함하는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주 제조방법을 제공한다.According to another aspect of the invention, the invention is L-glutamic acid high productivity Corynebacterium glutamicum comprising the step of inactivating alanine-valine transaminase It provides a method for producing a variant strain.

본 발명의 또 다른 양태에 따르면, 본 발명은 알라닌 아미노트랜스퍼라제(alanine aminotransferase)를 불활성화시키는 단계를 포함하는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주 제조방법을 제공한다.According to another aspect of the invention, the invention is L-glutamic acid high productivity Corynebacterium glutamicum comprising the step of inactivating alanine aminotransferase It provides a method for producing a variant strain.

본 발명은 코리네박테리움 글루타미쿰 균주 및 변이 균주의 전배양 또는 종배양 하는데 있어서 공지된 배양 방법을 통해 배양할 수 있다.The present invention can be cultured through known culture methods in pre-culture or species culture of Corynebacterium glutamicum strains and variant strains.

배지로는 천연배지 또는 합성배지를 사용할 수 있으며, 배지의 탄소원으로는 예를 들어, 글루코오스, 수크로오스, 덱스트린, 글리세롤, 녹말 등이 사용될 수 있고, 질소원으로는 펩톤, 육류 추출물, 효모 추출물, 건조된 효모, 대두 케이크, 우레아, 티오우레아, 암모늄염, 나이트레이트 및 기타 유기 또는 무기 질소-함유 화합물이 사용될 수 있으나, 이러한 성분에 한정되는 것은 아니다. As the medium, natural medium or synthetic medium may be used, and as the carbon source of the medium, for example, glucose, sucrose, dextrin, glycerol, starch, etc. may be used, and as the nitrogen source, peptone, meat extract, yeast extract, dried Yeasts, soy cakes, ureas, thioureas, ammonium salts, nitrates and other organic or inorganic nitrogen-containing compounds may be used, but are not limited to these ingredients.

배지에 포함되는 무기염으로는 마그네슘, 망간, 포타슘, 칼슘, 철 등의 포스페이트, 나이트레이트, 카보네이트, 클로라이드 등이 사용될 수 있으나, 이들에 한정되는 것은 아니다. Examples of inorganic salts contained in the medium include, but are not limited to, phosphates such as magnesium, manganese, potassium, calcium and iron, nitrates, carbonates, chlorides and the like.

상기 탄소원, 질소원 및 무기염의 성분 이외에 아미노산, 비타민, 핵산 및 그와 관련된 화합물들이 배지에 첨가될 수 있다. Amino acids, vitamins, nucleic acids and related compounds may be added to the medium in addition to the carbon source, the nitrogen source and the components of the inorganic salt.

본 발명은 공지된 유전자 재조합 방법에 의하여 야생형 또는 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 알라닌-발린 트랜스아미나아제 또는 알라닌 아미노트랜스퍼라제를 불활성화 시키는 것이 가능하다. 알라닌 생합성에 관련된 아미노트랜스퍼라제를 암호화 하는 두 개의 유전자 avtA 및 alaT를 염색체상에서 각각 결실시키기 위해 제조한 재조합 플라스미드 pAV와 pAT를 이용한다(참조: 도 2 및 도 3).The present invention is capable of inactivating alanine-valine transaminase or alanine aminotransferase in wild-type or Corynebacterium glutamicum mutant strains by known genetic recombination methods. Recombinant plasmids pAV and pAT were used to delete two genes, avtA and alaT , encoding aminotransferases involved in alanine biosynthesis, respectively, on the chromosome (see FIGS. 2 and 3).

본 발명에서 야생형 또는 코리네박테리움 글루타미쿰 균주에 형질전환 시키는 단계는 공지된 방법을 통하여 실시될 수 있다. 예컨대, 전기 천공 방법 (van der Rest et al., Appl. Microbiol. Biotechnol., 52, 541-545, 1999) 등에 의해 실시될 수 있다.In the present invention, the step of transforming the wild-type or Corynebacterium glutamicum strain may be carried out through a known method. For example, by electroporation method (van der Rest et al., Appl. Microbiol. Biotechnol., 52, 541-545, 1999) and the like.

또한, 본 발명은 형질전환이 되지 않은 야생형 또는 코리네박테리움 글루타미쿰 균주로부터 형질 전환된 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 분리 및 수득하는 단계를 포함한다.The present invention also includes the steps of isolating and obtaining a transformed Corynebacterium glutamicum mutant strain from a non-transformed wild type or Corynebacterium glutamicum strain.

상기 본 발명에서 형질전환이 되지 않은 코리네박테리움 글루타미쿰 균주로부터 형질전환된 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 분리 및 수득하는 단계를 실시하는데 있어서 선택 표지된 벡터를 이용할 수 있다. In the present invention, a selective labeled vector may be used in performing the step of separating and obtaining the transformed Corynebacterium glutamicum mutant strain from the non-transformed Corynebacterium glutamicum strain.

또한, 본 발명에서 이용하는 벡터는 플라스미드 또는 파지(phage)를 포함하나, 이에 제한되지 않는다.In addition, the vector used in the present invention includes, but is not limited to, a plasmid or a phage.

본 발명에서 이용하는 선택 표지는 당업계에서 통상적으로 이용되는 카나마이신, 클로람페니콜 같은 항생제 내성 유전자와 고초균 유래 SacB 유전자의 산물인 레반슈크라제(levansucrase)를 포함한다.Selection markers used in the present invention include levansucrase, which is an antibiotic resistance gene such as kanamycin, chloramphenicol and the product of Sacb gene derived from Bacillus subtilis, which is commonly used in the art.

본 발명은 상기 불활성화 알라닌-발린 트랜스아미나아제 또는 불활성화 알라닌 아미노트랜스퍼라제를 포함하는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주와 동일한 균주를 제조하는 방법이므로, 이 둘 사이에 공통된 내용은 본 명세서의 과도한 복잡성을 피하기 위하여, 그 기재를 생략한다.
Since the present invention is a method for preparing the same strain as L-glutamic acid high productivity Corynebacterium glutamicum mutant strain comprising the inactivated alanine-valine transaminase or inactivated alanine aminotransferase, the common The description is omitted, in order to avoid excessive complexity of the present specification.

본 발명의 또 다른 양태에 따르면, 본 발명은 (a) 불활성화 알라닌-발린 트랜스아미나아제(alanine-valine transaminase)를 포함하는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 균주를 배양시키는 단계; 및 (b) 상기 코리네박테리움 글루타미쿰 균주 및 균주 배양액으로부터 L-글루탐산을 수득하는 단계를 포함하는 코리네박테리움 글루타미쿰 균주로부터의 고농도 L-글루탐산 생산방법을 포함한다.
According to another aspect of the invention, the present invention comprises the steps of (a) culturing the L- glutamic acid high production Corynebacterium glutamicum strain comprising inactivated alanine-valine transaminase; And (b) obtaining L-glutamic acid from the Corynebacterium glutamicum strain and the strain culture medium.

본 발명의 또 다른 양태에 따르면, 본 발명은 (a) 불활성화 알라닌 아미노트랜스퍼라제(alanine aminotransferase)를 포함하는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 균주를 배양시키는 단계; 및 (b) 상기 코리네박테리움 글루타미쿰 균주 및 균주 배양액으로부터 L-글루탐산을 수득하는 단계를 포함하는 코리네박테리움 글루타미쿰 균주로부터의 고농도 L-글루탐산 생산방법을 포함한다.
According to another aspect of the present invention, the present invention comprises the steps of (a) culturing a L- glutamic acid high production Corynebacterium glutamicum strain comprising inactivated alanine aminotransferase; And (b) obtaining L-glutamic acid from the Corynebacterium glutamicum strain and the strain culture medium.

본 발명의 명세서에서 코리네박테리움 글루타미쿰 균주로부터 L-글루탐산을 생산하는 방법을 표현하면 사용하는 표현 “고농도”는 야생형 또는 알라닌-발린 트랜스아미나아제 또는 알라닌 아미노트랜스퍼라제 활성을 포함하는 코리네박테리움 글루타미쿰 균주 또는 배양액에 포함된 L-글루탐산의 농도보다 높은 농도를 의미한다. 바람직하게는, 표현 “고농도”는 균주 배양액 1 ℓ 당 38 g 이상의 L-글루탐산 농도를 의미하며, 보다 바람직하게는 균주 배양액 1 ℓ 당 38-50 g의 L-글루탐산 농도를 의미한다.When expressing the method of producing L-glutamic acid from Corynebacterium glutamicum strain in the specification of the present invention, the expression “high concentration” used is coryne including wild type or alanine-valine transaminase or alanine aminotransferase activity. It means a concentration higher than the concentration of L- glutamic acid contained in the bacterium glutamicum strain or culture. Preferably, the expression “high concentration” means a concentration of at least 38 g L-glutamic acid per liter of strain culture, more preferably 38-50 g L-glutamic acid concentration per liter of strain culture.

본 발명은 상기 불활성화 알라닌-발린 트랜스아미나아제 또는 불활성화 알라닌 아미노트랜스퍼라제를 포함하는 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주와 동일한 균주 및 균주제조 방법을 이용하여 L-글루탐산을 생산하는 방법이므로, 이 둘 사이에 공통된 내용은 본 명세서의 과도한 복잡성을 피하기 위하여, 그 기재를 생략한다.
The present invention provides the L-glutamic acid using the same strain and strain production method as the L-glutamic acid high productivity Corynebacterium glutamicum mutant strain comprising the inactivated alanine-valine transaminase or inactivated alanine aminotransferase. As it is a method of production, the contents common between the two are omitted in order to avoid excessive complexity of the present specification.

본 발명의 특징 및 이점을 요약하면 다음과 같다:The features and advantages of the present invention are summarized as follows:

(ⅰ) 본 발명은 L-글루탐산 고생산능 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주 및 이의 제조방법을 제공한다.(Iii) The present invention provides L-glutamic acid high-producing Corynebacterium glutamicum mutant strains and a method for preparing the same.

(ⅱ) 본 발명은 L-글루탐산 고생산능을 갖는 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주에서 avtA 또는 alaT 유전자를 코딩하는 뉴클레오타이드를 불활성화시킴으로써 L-글루탐산의 생산량은 증가시킴과 동시에 알라닌의 생산은 효과적으로 감소시킨 균주이다. (Ii) The present invention inactivates the nucleotides encoding the avtA or alaT gene in the Corynebacterium glutamicum mutant strain having high L-glutamic acid production ability to increase the production of L-glutamic acid and at the same time effectively produce alanine. Reduced strain.

(ⅲ) 본 발명은 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주에서의 발효 부산물인 알라닌의 생산능을 감소시킴으로써 L-글루탐산을 높은 순도로 정제할 수 있을 뿐 만 아니라 L-글루탐산의 회수율을 향상시켜 L-글루탐산의 생산 제조 원가를 크게 낮출 수 있다.(Iii) The present invention can not only purify L-glutamic acid with high purity by reducing the production capacity of alanine, a fermentation by-product in the strain of Corynebacterium glutamicum, but also improve the recovery rate of L-glutamic acid. -Production cost of glutamic acid can be significantly lowered.

(ⅳ) 또한, 본 발명은 알라닌 아미노트랜스퍼라제를 코딩하는 두 종류의 유전자 avtA 와 alaT 유전자를 각각 염색체 상에서 제거하는 방법에 의해, 알라닌 생합성에 이용되는 피루브산의 세포내 농도를 증가시키고 이에 대한 대사흐름을 바꿔 궁극적으로 L-글루탐산 생산성 향상에 기여할 수 있는 기회를 제공함으로 생산비용이 절감되는 효과를 제공할 수 있으며, 본 발명에 의해 제조된 L-글루탐산은 수식 과정을 거쳐 감칠맛 성분으로 풍미증진제 및 조미원료로 이용될 수 있다.
(Iii) In addition, the present invention is to increase the intracellular concentration of pyruvic acid used for alanine biosynthesis and to metabolize the alanine biosynthesis by removing the two kinds of genes avtA and alaT genes encoding alanine aminotransferase, respectively. It can provide the effect of reducing the production cost by providing an opportunity to ultimately contribute to the improvement of L- glutamic acid productivity, L-glutamic acid prepared by the present invention is a flavor enhancer and seasoning as a flavor component through the modification process It can be used as a raw material.

도 1은 L-글루탐산을 생산하는 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 균주의 발효 종료액에 대한 아미노산과 유기산을 분석한 결과이다. 아스파테이트, 알라닌, 발린,
도 2는 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 유래 균주에서 avtA 유전자를 파쇄하기 위해 제조한 pAV 벡터의 지도이다.
도 3은 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 유래 균주에서 alaT 유전자를 파쇄하기 위해 제조한 pAT 벡터의 지도이다.
도 4는 재조합 플라스미드 pAV를 이용해 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 유래 균주의 염색체 상에서 avtA 유전자를 결실시켜 제조한 코리네박테리움 글루타미쿰 DSB41002 균주를 확인한 전기영동 이미지이다. 레인1은 사이즈 마커 이고, 레인2는 모주인 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 유래 균주의 avtA 유전자를 포함한 PCR 산물의 크기를 나타낸다. 레인3과 4는 avtA 유전자의 orf가 일부 결실된 코리네박테리움 글루타미쿰 DSB41002 균주의 avtA 유전자를 나타낸다.
도 5는 재조합 플라스미드 pAT를 이용해 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 유래 균주의 염색체 상에서 alaT 유전자를 결실시켜 제조한 코리네박테리움 글루타미쿰 DSB41003 균주를 확인한 전기영동 이미지이다. 레인1은 사이즈 마커이고, 레인2는 모주인 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 유래 균주의 alaT 유전자를 포함한 PCR 산물의 크기를 나타낸다. 레인3 내지 5는 alaT 유전자의 일부 orf가 결실된 코리네박테리움 글루타미쿰 DSB41003 균주의 alaT 유전자를 나타낸다.1 is a result of analyzing the amino acid and organic acid for the fermentation broth of Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP strain producing L- glutamic acid. Aspartate, alanine, valine,
2 is a map of a pAV vector prepared for disrupting the avtA gene in Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP derived strains.
Figure 3 is a map of the pAT vector prepared to disrupt the alaT gene in Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP derived strain.
Figure 4 is an electrophoresis image confirming the Corynebacterium glutamicum DSB41002 strain prepared by the deletion of the avtA gene on the chromosome of Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP derived strain using recombinant plasmid pAV. Lane 1 is the size marker and lane 2 represents the size of the PCR product containing the avtA gene of the parent strain Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP. Lanes 3 and 4 shows the avtA gene of a Corynebacterium glutamicum strain orf DSB41002 part deletion of the avtA gene.
Figure 5 is an electrophoresis image of the strain Corynebacterium glutamicum DSB41003 prepared by deleting the alaT gene on the chromosome of Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP derived strain using the recombinant plasmid pAT. Lane 1 is the size marker and lane 2 represents the size of the PCR product containing the alaT gene of the parent strain Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP. Lanes 3 through 5 shows a portion of the orf gene alaT the deletion of Corynebacterium glutamicum strain of DSB41003 alaT gene.

이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.
Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples. It is to be understood by those skilled in the art that these embodiments are only for describing the present invention in more detail and that the scope of the present invention is not limited by these embodiments in accordance with the gist of the present invention .

실시예Example

본 명세서 전체에 걸쳐, 특정 물질의 농도를 나타내기 위하여 사용되는 “%“는 별도의 언급이 없는 경우, 고체/고체는 (중량/중량) %, 고체/액체는 (중량/부피) %, 그리고 액체/액체는 (부피/부피) %이다.
Throughout this specification, "%" used to denote the concentration of a particular substance is intended to include solids / solids (wt / wt), solid / liquid (wt / The liquid / liquid is (vol / vol)%.

실시예Example 1 : One : 코리네박테리움Corynebacterium 글루타미쿰Glutamicum KCTCKCTC 11558 11558 BPBP 균주의 발효 종료액 부산물 분석 Analysis of By-product Fermentation Termination by Strains

하기 표 1에 표기한 발효배지로부터 배양온도 30-32℃, 교반속도 200-400 rpm, 통기량은 0.5-1.5 vvm, 배양 중 pH는 6.5-7.5로 조절하는 조건에서 25-30시간 동안 배양한 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 균주 발효 종료액을 다양한 위치에서 샘플링 하여 골고루 혼합하였다. 이를 12,000 rpm에서 5분 동안 원심분리 한 후 상등액을 여과하고, 적정한 비율로 희석한 뒤 아미노산과 유기산 분석을 실시하였다. 아미노산 분석은 아미노산 분석기를 사용하였으며, 유기산 분석은 Biorad HPX 87H 컬럼과 이동상으로 4 mM H₂SO₄를 사용하였으며, 분석조건은 컬럼 온도는 65℃ 및 유속은 1분당 0.6 ㎖로 흘려준 뒤 UV 검출기를 이용해 214 nm에서 흡광도를 측정하였다. 측정결과 도 1에서 나타낸 바와 같이 발효 부산물로 알라닌의 함량이 약 0.29%로 가장 높게 측정되었으며 락테이트가 0.27%, 아세테이트가 0.20%로 분석되었다.From the fermentation broth shown in Table 1, the culture temperature 30-32 ℃, agitation speed 200-400 rpm, aeration amount 0.5-1.5 vvm, the pH of the culture was incubated for 25-30 hours under conditions adjusted to 6.5-7.5 Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP strain fermentation broth was sampled at various locations and mixed evenly. After centrifugation at 12,000 rpm for 5 minutes, the supernatant was filtered, diluted to an appropriate ratio, and analyzed for amino acids and organic acids. The amino acid analysis was performed using an amino acid analyzer. The organic acid analysis was performed using a Biorad HPX 87H column and 4 mM H ₂ SO ₄ as the mobile phase. Absorbance was measured at 214 nm. As shown in FIG. 1, the content of alanine as the fermentation by-product was the highest as about 0.29%, and lactate was 0.27% and acetate was 0.20%.

배지badge 배지조성Medium composition 발효배지Fermentation medium 전처리 당밀 6.6%, 원당 용해액 2.3%, H₃PO₄(75%) 0.147%, 티아민-HCl 0.203mg, 비오틴 0.114 mg, CSL 0.041%, 계면활성제 0.2% 및 추가원당 30.5%Pretreated molasses 6.6%, raw sugar solution 2.3%, H ₃ PO ₄ (75%) 0.147%, thiamine-HCl 0.203 mg, biotin 0.114 mg, CSL 0.041%, surfactant 0.2% and 30.5% per additional source

실시예Example 2 : 2 : avtAavtA 유전자 파쇄 벡터의 제조Preparation of Gene Disruption Vectors

avtA 유전자(GenBank: AY238316) 파쇄를 위해 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 유래 균주의 염색체 DNA를 분리 및 정제 한 뒤 주형으로 사용하여 하기 표 2의 avtA-A 및 avtA-B 프라이머 세트와 avtA-C 및 avtA-D 프라이머 세트를 각각 이용하여 95℃에서 30초, 55℃에서 30초, 72℃에서 30초로 30 사이클로 반복하여 증폭하였다. PCR 산물은 통상의 방법으로 전기영동 하여 각각 약 600 bp의 밴드를 확인하였다. 정제된 각각의 PCR 산물은 다시 크로스오버 중합효소연쇄반응(crossover polymerase chain reaction(PCR))을 위한 주형으로 사용해 avtA-A와 avtA-D 프라이머로 크로스오버 PCR 기법(Bacteriol., 179: 6228-6237,1997)으로 다시 한 번 증폭 시켰다. avtA 유전자가 634 bp 결손된 형태의 약 1.2 kb PCR 산물은 정제한 뒤 HindⅢ와 BamHI 제한효소(Takara, 일본)로 절단하였고, 동일한 제한효소로 절단한 pK19mobSacB 벡터(Gene, 145: 69-73, 1994)에 클로닝하여 avtA 유전자 파쇄용 pAV 벡터를 제조하였다(도 2). Chromosomal DNA of Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP-derived strains for the disruption of the avtA gene (GenBank: AY238316) was isolated and purified and then used as a template and the avtA-A and avtA-B primer sets shown in Table 2 below. Amplification was repeated 30 cycles at 95 ° C., 30 seconds at 55 ° C., 30 seconds at 72 ° C., and 30 seconds at 72 ° C. using C and avtA-D primer sets, respectively. PCR products were electrophoresed in a conventional manner to identify a band of about 600 bp each. Each purified PCR product is again used as a template for the crossover polymerase chain reaction (PCR) and the crossover PCR technique (Bacteriol., 179: 6228-6237) with avtA-A and avtA-D primers. , 1997). avtA About 1.2 kb PCR product of 634 bp gene deficient form was purified and digested with Hind III and Bam HI restriction enzyme (Takara, Japan), and the pK19mobSacB vector (Gene, 145: 69-73, digested with the same restriction enzyme). 1994) to prepare a pAV vector for avtA gene disruption (Fig. 2).

프라이머primer 서열order avtA-AavtA-A 5’-ATT CAA GCT TGA CTG TGG TGT TGG CTT C-3’ 5'-ATT CAA GCT TGA CTG TGG TGT TGG CTT C-3 ' avtA-BavtA-B 5’-CCC ATC CAC TAA ACT TAA ACA TCA GGG TTG GTG TCT ACG-3’5'-CCC ATC CAC TAA ACT TAA ACA TCA GGG TTG GTG TCT ACG-3 ’ avtA-CavtA-C 5’-TGT TTA AGT TTA GTG GAT GGG CCT GAA ATC GGG CTT GGC-3’5'-TGT TTA AGT TTA GTG GAT GGG CCT GAA ATC GGG CTT GGC-3 ’ avtA-DavtA-D 5’-ATT CGG ATC CGC CCT TGT GGA TGT GCT C-3’ 5'-ATT CGG ATC CGC CCT TGT GGA TGT GCT C-3 '

실시예Example 3 : 3: alaTalaT 유전자 파쇄벡터의 제조Preparation of Gene Disruption Vectors

alaT 유전자(GenBank: AY238317) 파쇄를 위해 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 유래 균주의 염색체 DNA를 분리 정제한 뒤 기질로 하여 하기 표 3의 프라이머 alaT -A 및 alaT-B 프라이머 세트와 alaT-C, alaT-D 프라이머 세트를 각각 이용해 95℃에서 30초, 55℃에서 30초, 72℃에서 30초로 30 사이클 반복 증폭하였다. 정제된 각각의 PCR 산물은 다시 주형으로 사용해 alaT-A 및 alaT-D 프라이머를 이용해 크로스오버 PCR 기법으로 다시 한 번 증폭 시켰다. alaT 유전자가 595 bp 결손된 형태의 약 1.2 kb PCR 산물은 정제한 뒤 Pst I 제한효소(Takara, 일본)로 절단하였고, 동일한 제한효소로 절단한 pK19mobSacB 벡터에 클로닝 하여 alaT 유전자 파쇄를 위한 pAT 벡터를 제조하였다(도3). Chromosomal DNA of Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP-derived strains for the disruption of alaT gene (GenBank: AY238317) was isolated and purified as a substrate, and the primer alaT-A and alaT-B primer sets of Table 3 and alaT-C were used as substrates. The alaT-D primer set was used to repeat amplification for 30 cycles at 95 ° C. for 30 seconds, 55 ° C. for 30 seconds, and 72 ° C. for 30 seconds. Each purified PCR product was again used as a template and amplified again by crossover PCR using alaT-A and alaT-D primers. About 1.2 kb PCR product of 595 bp deleted alaT gene was purified and digested with Pst I restriction enzyme (Takara, Japan) and cloned into pK19mobSacB vector digested with the same restriction enzyme to generate pAT vector for alaT gene disruption. Prepared (Figure 3).

프라이머primer 염기 서열Base sequence alaT -AalaT -A 5’-ATT CCT GCA GGC AAG TAG CCT GGG TAT TC-3’ 5'-ATT CCT GCA GGC AAG TAG CCT GGG TAT TC-3 ’ alaT -BalaT -B 5’- CCC ATC CAC TAA ACT TAA ACA CCT TCA TCT TCT CCG ACT G-3’5'- CCC ATC CAC TAA ACT TAA ACA CCT TCA TCT TCT CCG ACT G-3 ’ alaT -CalaT -C 5’- TGT TTA AGT TTA GTG GAT GGG ATC CAC GAC GAC ACC CAA C-3’5'- TGT TTA AGT TTA GTG GAT GGG ATC CAC GAC GAC ACC CAA C-3 ’ alaT -DalaT -D 5’-ATT CCT GCA GCC TTC GCC CAC TTT CGC C-3’ 5'-ATT CCT GCA GCC TTC GCC CAC TTT CGC C-3 '

실시예Example 4 : 4 : 코리네박테리움Corynebacterium 글루타미쿰Glutamicum KCTCKCTC 11558 11558 BPBP 유래 균주의 형질전환 및 결손 변이주 제조 Transformation and Deletion of Derived Strains

코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 유래 균주의 형질전환을 위한 방법으로 van der Rest 등의 방법을 기본으로 수식한 일렉트로컴피턴트 셀(electrocompetent cell) 제조법을 사용하였다. As a method for transformation of a strain derived from Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP, an electrocompetent cell manufacturing method modified based on van der Rest et al. Was used.

상기 제조 방법은 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 유래 균주에 적용한 방법으로 다음과 같다: 2% 포도당이 첨가된 2YT 배지(트립톤 16 g/ℓ, 효모추출물 10 g/ℓ, 염화나트륨 5 g/ℓ) 100 ㎖에서 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 유래 균주를 1차 배양하고, 포도당을 제외한 동일 배지에 1 mg/㎖ 농도의 이소니코틴산 히드라진(isonicotinic acid hydrazine) 및 2.5% 글라이신(glycine)을 첨가하였다. 그 다음, OD₆₁₀값이 0.3이 되게 종배양액을 접종한 후, 18℃, 180 rpm으로 12-16시간 배양하여 OD₆₁₀값이 1.2-1.4가 되도록 하였다. 얼음에서 30분간 방치 한 후, 4℃, 4000 rpm으로 15분간 원심분리 하였다. 그 뒤 상등액을 버리고 침전된 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 유래 균주를 10 % 글리세롤 용액으로 4회 세척하고, 최종적으로 10 % 글리세롤 용액 0.5 ㎖에 재현탁 하였다. 일렉트로포레이션(Electroporation)은 바이오-라드(Bio-Rad) 일렉트로포레이터(electroporator)를 사용하였다. 일렉트로포레이션 큐벳(0.2 mm)에 상기 방법으로 제조한 컴피턴트 셀(competent cell)을 넣고 위에서 제조한 재조합 플라스미드(pAV 및 pAT)를 각각 첨가한 후, 2.5 kV, 200Ω 및 12.5㎌의 조건으로 전기충격을 가하였다. 전기충격이 끝난 즉시 재생(Regeneration) 배지(Brain Heart infusion 18.5 g/ℓ, 소비톨 0.5 M) 1 ㎖을 첨가하고 46℃에서 6분간 열처리하였다. 그 후 실온에서 식힌 뒤 15 ㎖ 캡 튜브로 옮겨 30℃에서 2시간 배양하고 선별 배지(트립톤 5 g/ℓ, NaCl 5 g/ℓ, 효모추출물 2.5 g/ℓ, Brain Heart infusion powder 18.5 g/ℓ, 아가 15 g/ℓ, 소비톨 91 g/ℓ, 카나마이신(kanamycine) 20 ㎍/ℓ)에 도말 하였다. 30℃에서 72시간 배양해 생성된 콜로니는 BHI 배지에서 정지기까지 배양하여 2차 재조합을 유도했으며 10^-5-10^-7까지 희석하여 항생제가 없는 평판(10% sucrose 함유)에 도말하여 카나마이신 내성도가 없고 10% 수크로오스가 포함된 배지에서 성장성이 있는 균주를 선별 하였다. 얻어진 콜로니를 상기 avtA-A와 avtA-D 프라이머 세트를 사용해 avtA 유전자가 결실된 코리네박테리움 글루타미쿰 DSB41002 균주를 확인하였으며(도 4), alaT-A와 alaT-D 유전자를 사용해 alaT 유전자가 결실된 코리네박테리움 글루타미쿰 DSB41003 균주를 확인하였다(도 5).
The preparation method was applied to the strain derived from Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP as follows: 2YT medium added 2% glucose (tryptone 16 g / L, yeast extract 10 g / L, sodium chloride 5 g / L) Firstly incubating strains derived from Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP in 100 ml, and isonicotinic acid hydrazine and 2.5% glycine in a concentration of 1 mg / ml in the same medium except glucose. Added. Then, after inoculating the seed culture solution so that the OD ₆₁₀ value is 0.3, the OD ₆₁₀ value was 1.2-1.4 by incubation at 18 ° C. and 180 rpm for 12-16 hours. After standing for 30 minutes on ice, centrifuged at 4 ℃, 4000 rpm for 15 minutes. The supernatant was then discarded and the precipitated Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP-derived strains were washed four times with 10% glycerol solution and finally resuspended in 0.5 ml of 10% glycerol solution. Electroporation was performed using a Bio-Rad electroporator. Into the electroporation cuvette (0.2 mm), a competent cell prepared by the above method was added, and the recombinant plasmids prepared above were added (pAV and pAT), respectively. Shock was applied. Immediately after the electric shock, 1 ml of Regeneration medium (Brain Heart infusion 18.5 g / L, sorbitol 0.5 M) was added and heat-treated at 46 ° C. for 6 minutes. After cooling at room temperature, transfer to a 15 ml cap tube and incubate at 30 ° C. for 2 hours, followed by selection medium (tryptone 5 g / l, NaCl 5 g / l, yeast extract 2.5 g / l, Brain Heart infusion powder 18.5 g / l). , 15 g / l of agar, 91 g / l of sorbitol, 20 μg / l of kanamycine). Colonies generated after 72 hours of incubation at 30 ° C. were incubated in BHI medium to a stationary phase to induce secondary recombination, diluted to 10 ⁻⁵ −10 ⁻⁷ , and plated on antibiotic-free plates (containing 10% sucrose) to kanamycin resistance. No growth strain was selected in the medium containing 10% sucrose. The resulting colonies were avtA using the avtA-A and avtA-D primer sets above. Corynebacterium glutamicum DSB41002 strains with gene deletion were identified (FIG. 4), and the Corynebacterium glutamicum DSB41003 strains with alaT gene deletion were identified using the alaT -A and alaT-D genes (FIG. 4). 5).

실시예Example 5 : 5: 최소배지를Minimum badge 이용한 생육저해 확인 Confirmation of growth inhibition

상기 실시예 4에서 제조된 avtA 및 alaT 유전자 결손주(코리네박테리움 글루타미쿰 DSB41002 및 DSB41003)와 모균주인 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 균주를 최소배지(포도당 20 g/ℓ, MgSO4 7H₂O 0.5 g/ℓ, FeSO₄7H₂O 20 mg/ℓ, MnSO₄5H₂O 20 mg/ℓ, urea 2.5 g/ℓ,(NH4)₂SO₄ 5 g/ℓ, KH₂PO₄ 1.5 g/ℓ, K₂HPO₄ 1.5 g/ℓ, 티아민-HCl 200 ㎍/ℓ, 비오틴 200 ㎍/ℓ, 니코티네이트 200 ㎍/ℓ, 리보플라빈 200 ㎍/ℓ, 시아노코발아민(cyanocobalamine) 100 ㎍/ℓ)에 도말하여 30℃에서 24시간 배양하여 생육 정도를 측정하였다. 아래 표 4에 표기한 바와 같이 알라닌이 첨가되지 않은 최소배지에서 코리네박테리움 글루타미쿰 DSB41003 균주의 생육이 상당히 저해를 받는 것으로 보아 기존에 보고된 것처럼 알라닌 생합성의 주된 아미노트랜스퍼라제를 코딩하는 유전자가 alaT 임을 확인하였다.The avtA and alaT gene deletion strains (Corynebacterium glutamicum DSB41002 and DSB41003) prepared in Example 4 and the parent strain Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP strains were minimal medium (glucose 20 g / L, MgSO4 7H ₂ O 0.5 g / L, FeSO ₄ 7H ₂ O 20 mg / L, MnSO ₄ 5H ₂ O 20 mg / L, urea 2.5 g / L, (NH4) ₂ SO ₄ 5 g / ℓ, KH ₂ PO ₄ 1.5 g / ℓ, K ₂ HPO ₄ 1.5 g / l, thiamine-HCl 200 µg / l, biotin 200 µg / l, nicotinate 200 µg / l, riboflavin 200 µg / l, cyanocobalamine 100 µg / l) The growth rate was measured by culturing for 24 hours at. Genes encoding major aminotransferases of alanine biosynthesis, as reported previously, have been shown to significantly inhibit the growth of the Corynebacterium glutamicum DSB41003 strain in minimal medium without alanine as shown in Table 4 below. It is confirmed that is alaT .

균주
배지Strain
badge KCTC 11558BPKCTC 11558BP DSB41002DSB41002 DSB41003DSB41003 최소배지Minimum badge ++++++++ ++++++ ++ 최소배지+알라닌(1mM)Minimum medium + Alanine (1 mM) ++++++++ ++++++++ ++++++

실시예Example 6 : 플라스크를 이용한 L-글루탐산 6: L-glutamic acid using a flask 역가Potency 실험 Experiment

상기 실시예 4에서 제조된 코리네박테리움 글루타미쿰 DSB41002와 DSB41003 균주에 대한 L-글루탐산 생산성을 평가하기 위해 역가 배지에서 생산성을 알아보았다. 대조군으로는 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 균주를 사용하였다. 먼저 활성 평판배지에 접종하여 30℃에서 24시간 배양한 뒤 플라스크 종배지 10 ㎖(100 ㎖ 플라스크)에 1 루프(loop) 접종하여 30℃에서 160 rpm으로 8시간 배양하였다. 그 뒤 역가배지 10 ㎖에 상기 종배지 배양액을 100 ㎕ 접종하여 30℃에서 160 rpm으로 20-22시간 배양하였다. 이때 소모되는 당 농도를 측정하여 최종 0.5-1.0%의 잔당이 남은 상태에서 배양을 중지하여 배양액중의 L-글루탐산의 양을 측정하였다.In order to evaluate the productivity of L-glutamic acid for the Corynebacterium glutamicum DSB41002 and DSB41003 strain prepared in Example 4, the productivity in titer medium was examined. Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP strain was used as a control. First, the plate was inoculated into the active plate medium and incubated at 30 ° C. for 24 hours, and then inoculated in a loop of 10 ml (100 ml flask) of the flask seed medium (loop) and incubated at 160 rpm at 30 ° C. for 8 hours. Thereafter, 100 μl of the seed medium culture was inoculated into 10 ml of the titer medium and incubated at 30 ° C. at 160 rpm for 20-22 hours. At this time, the amount of sugar consumed was measured and the culture was stopped in the state of the last 0.5-1.0% of the residual sugar to determine the amount of L-glutamic acid in the culture solution.

배지badge 배지조성Medium composition 활성 평판배지Active reputation badge 비프추출물 10 g/ℓ, 펩톤 10 g/ℓ, 효모추출물 5 g/ℓ, NaCl 2.5 g/ℓ, 아가(agar) 20 g/ℓBeef extract 10 g / l, peptone 10 g / l, yeast extract 5 g / l, NaCl 2.5 g / l, agar 20 g / l 종배지Species 포도당 40 g/ℓ, MgSO₄·7H₂O 0.4 g/ℓ, FeSO₄·7H₂O 10 mg/ℓ, MnSO₄·5H₂O 10 mg/ℓ, KH₂PO₄ 1 g/ℓ, urea 4 g/ℓ, 티아민(thiamine)-HCl 200 ㎍/ℓ, 비오틴 50 ㎍/ℓ, CSL 5 g/ℓ, pH 7.0Glucose 40 g / L, MgSO ₄ 7H ₂ O 0.4 g / L, FeSO ₄ 7H ₂ O 10 mg / L, MnSO ₄ 5H ₂ O 10 mg / L, KH ₂ PO ₄ 1 g / l, urea 4 g / l, thiamine-HCl 200 μg / l, biotin 50 μg / l, CSL 5 g / l, pH 7.0 역가배지Potency badge 포도당 70 g/ℓ, MgSO₄·7H₂O 0.4 g/ℓ, FeSO₄·7H₂O 10 mg/ℓ, MnSO₄·5H₂O 10 mg/ℓ, (NH₄)₂SO₄ 30 g/ℓ, KH₂PO₄ 1 g/ℓ, 티아민-HCl 200 ㎍/ℓ, 비오틴 2 ㎍/ℓ, CSL 5 g/ℓ, CaCO₃ 50 g/ℓ, pH 8.0Glucose 70 g / l, MgSO ₄ 7H ₂ O 0.4 g / l, FeSO ₄ 7H ₂ O 10 mg / l, MnSO ₄ 5H ₂ O 10 mg / l, (NH ₄ ) ₂ SO ₄ 30 g / ℓ, KH ₂ PO ₄ 1 g / l, thiamine-HCl 200 μg / l, biotin 2 μg / l, CSL 5 g / l, CaCO ₃ 50 g / l, pH 8.0

하기 표 6에서 보는 바와 같이 코리네박테리움 글루타미쿰 DSB41002와 DSB41003 균주는 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BP 균주 보다 높은 생산성을 보였다.As shown in Table 6, the Corynebacterium glutamicum DSB41002 and DSB41003 strains showed higher productivity than the Corynebacterium glutamicum KCTC 11558BP strain.

균주Strain L-글루탐산 생산량(g/ℓ)L-Glutamic Acid Production (g / ℓ) 코리네박테리움 글루타미쿰 KCTC 11558BPCorynebacterium glutamicum KCTC 11558BP 3535 코리네박테리움 글루타미쿰 DSB41002Corynebacterium glutamicum DSB41002 4141 코리네박테리움 글루타미쿰 DSB41003Corynebacterium glutamicum DSB41003 4343

한편, 발효 부산물인 알라닌을 최소로 생산하면서 L-글루탐산을 고생산할 수 있는 코리네박테리움 글루타미쿰 변이 균주를 분리하여 각각 DSB41002(avtA 변이주) 및 DSB41003(alaT 변이주)이라 명명하고, 국제미생물기탁기관인 한국생명공학연구원 유전자은행에 2010년 10월 27일자로 기탁하였으며, 기탁번호 KCTC11797BP 및 KCTC11798BP를 각각 부여받았다.
Meanwhile, Corynebacterium glutamicum mutant strains capable of producing high L-glutamic acid with minimal production of alanine, a fermentation by-product, were isolated and named DSB41002 ( avtA mutant) and DSB41003 ( alaT mutant), respectively. It was deposited on October 27, 2010 by the Korea Institute of Bioscience and Biotechnology, Gene Bank, and was assigned the accession numbers KCTC11797BP and KCTC11798BP, respectively.

이상으로 본 발명의 특정한 부분을 상세히 기술하였는바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 이러한 구체적인 기술은 단지 바람직한 구현예일 뿐이며, 이에 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백하다. 따라서 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항과 그의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.
While the present invention has been particularly shown and described with reference to exemplary embodiments thereof, it is to be understood that the same is by way of illustration and example only and is not to be construed as limiting the scope of the present invention. It is therefore intended that the scope of the invention be defined by the claims appended hereto and their equivalents.

한국생명공학연구원Korea Biotechnology Research Institute KCTC11797KCTC11797 2010102720101027 한국생명공학연구원Korea Biotechnology Research Institute KCTC11798KCTC11798 2010102720101027

Claims

delete

(a) culturing a Corynebacterium glutamicum mutant strain having L-glutamic acid producing ability comprising inactivated alanine aminotransferase; And (b) obtaining L-glutamic acid from the Corynebacterium glutamicum mutant strain and strain culture medium. L-glutamic acid production method from the Corynebacterium glutamicum mutant strain.

The method of claim 7, wherein the strain is a strain in which alanine aminotransferase is inactivated through substitution, insertion, deletion, or a combination of nucleotide sequences encoding the alaT gene.

8. The method of claim 7, wherein said strain is a Corynebacterium glutamicum mutant strain capable of producing 38-50 g of L-glutamic acid per liter.

The method of claim 7, wherein the strain is L- glutamic acid production method characterized in that the strain is Accession No. KCTC11798BP.