KR101289655B1 - Method for producing polyploid of Miscanthus sinensis - Google Patents

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Abstract

본 발명은 야생 억새를 산업용이나 환경개선용 또는 사료용 식물 바이오매스로서 사용이 가능하도록 형질향상을 위한 야생형 참억새의 게놈 조성 변형 방법 및 상기 방법으로 생산된 참억새에 관한 것이다. 야생형 2배체 참억새를 사용하여 인위적 배수체로 유도한 결과 4배체 게놈의 참억새와 2배체 및 4배체의 세포가 공존하는 혼성배수체 게놈을 가진 배수체 참억새를 개발하였다. 상기 유도된 배수체 참억새의 배수성과 게놈 조성을 검정한 결과 배수성임을 확인하였다.
본 발명의 방법에 따른 배수성 유전체 게놈 조성을 갖는 신규 배수체 참억새는 바이오매스용으로 비경작지에 재배를 함으로써 지구의 온난화와 탄소 배출에 대한 대체 에너지를 생산할 수 있는 경제성이 높고 귀중한 탄소 소재 공급용 바이오매스의 자원으로 활용할 수 있다.
The present invention relates to a method for modifying the genome composition of wild type pampas antelope for transformation, and the pampas antelope produced by the method so that the wild pamper can be used as an industrial, environmental improvement or feed plant biomass. Using wild-type diploids, we induced an artificial diploid and developed a diploid with a hybrid diploid genome in which the pampas genome and the cells of diploid and tetraploid coexist. As a result of assaying the ploidy and genome composition of the induced haploid pampas grass, it was confirmed that the ploidy.
The new drainage pampas grasses with drainage genome genome composition according to the method of the present invention are grown on non-cultivated land for biomass, and are a resource of biomass for supplying valuable carbon materials for economical and precious carbon materials that can produce alternative energy for global warming and carbon emission. Can be used as

Description

참억새의 배수체 생산방법{Method for producing polyploid of Miscanthus sinensis}Method for producing polyploid of Miscanthus sinensis

본 발명은 자생하는 야생형 참억새를 농업경작용 목적으로 사용하기 위해 생산성이 높은 형질을 가진 2배체 이상 혹은 4배체(4n)의 배수성 유전체 게놈 조성을 갖는 배수체 참억새를 생산하는 방법, 상기 방법에 의해 생산된 배수체 참억새 식물, 상기 식물의 종자, 화분 및 배주, 상기 식물로부터 생산된 바이오매스 및 상기 식물 생산용 조성물에 관한 것이다.The present invention provides a method for producing a diploid pampas antelope having a diploid genomic composition of at least a diploid or tetraploid (4n) having a highly productive trait for use in native wild type pampas grasses for agricultural farming purposes. It relates to a drainage pampas grass plant, seeds of the plant, pollen and pear, biomass produced from the plant and a composition for producing the plant.

화석연료인 석유와 석탄의 과소비로 발생된 온실가스를 감축하기 위하여 신재생에너지의 개발과 사용은 필수적이다. 현재 화석연료의 대부분을 차지하고 있는 수송용연료와 화학소재들을 대체할 수 있는 것은 바이오에너지 작물이 대안이다. 이러한 화학의 소재는 바이오매스 [Biomass]의 대량확보가 우선적으로 실행되어야 한다. 바이오매스란 태양에너지를 받아 이산화탄소를 고정하는 광합성 작용에 의하여 증식되는 미생물, 식물체 및 균체와 이를 먹고 살아가는 동물체를 포함하는 생물유기체들을 지칭한다. 이러한 바이오매스를 이용하여 고체(목질계), 액체(연료 바이디젤, 에탄올), 기체(바이오가스) 등을 만든다. 이러한 바이오매스 원료는 바이오리파이너리(Biorefinery)의 공정을 통하여 바이오연료나 정밀화학의 소재로 산업화된다. 바이오리파이너리(Biorefinery)란 바이오기술(생촉매)을 이용해 바이오기반 화학제품(유기산, 아미노산, 폴리올, 바이오폴리머 등) 또는 바이오연료(바이오에탄올, 바이오디젤, 바이오부탄올) 등을 생산하는 분야로 바이오리파이너리를 이용한 화학소재 생산, 바이오플라스틱/바이오에너지, 기능성 바이오소재/바이오공정기술 등을 포함한다. 바이오연료 (Biofuel)란 바이오매스(Biomass)에서 얻는 연료로 살아 있는 유기체뿐 아니라 동물의 배설물 등 대사활동에서 나오는 부산물을 연료로 사용하거나, 화석연료와는 다른 신재생에너지로 바이오에탄올과 바이오디젤, 바이오개스 등이 있다. The development and use of renewable energy is essential to reduce the greenhouse gases generated by the excessive consumption of fossil fuel oil and coal. Bioenergy crops are an alternative to transport fuels and chemicals that currently make up the bulk of fossil fuels. For such chemical materials, the mass production of biomass should be carried out first. Biomass refers to bioorganisms including microorganisms, plants, and microorganisms that are propagated by photosynthesis to fix carbon dioxide by receiving solar energy and animals that live on them. The biomass is used to make solids (wood), liquids (fuel diesel, ethanol), gases (biogas), and the like. Such biomass raw materials are industrialized as biofuels or fine chemicals through a process of biorefinery. Biorefinery is a field for producing bio-based chemical products (organic acids, amino acids, polyols, biopolymers) or biofuels (bioethanol, biodiesel, biobutanol) using biotechnology (biocatalyst). Chemical material production, bioplastics / bioenergy, and functional biomaterials / bioprocessing technology. Biofuel is a fuel obtained from biomass. It uses not only living organisms but also by-products from metabolic activities such as animal excretion as fuels, or bioethanol, biodiesel, Biogas and the like.

셀룰로오스 바이오매스 중에서 초본계 식물은 비경지 면적 즉 작물 재배에 부적합한 환경에서도 적은 재배비용으로 높은 수확성을 담보할 수 있는 장점이 있어서 중요한 바이오매스 작물로 부각되고 있으며 이들 식물에서 가장 바이오매스가 식물이 억새이다. 억새는 경작용식물이 아니며 야생의 잡초로서 구분이 되어있고 기후가 북반구의 척박한 산과 들판의 토양 조건에서도 군락을 이루는 강인한 초본이다. 억새는 가장 친환경적인 바이오소재이며 다용도로 활용이 가능한 작물로 개발하는 것이 바람직하다. 억새는 한국을 포함한 동북아시아가 원산지로서 전 세계적으로 약 17종이 보고되어 있다. 억새는 2배체인 참억새(Miscanthus sinensis)와 물억새 (M. sacchariflorus)가 대분이다. 바이오매스 연구용으로 선발된 자연교잡 3배체종인 M. x giganteus(M. sinensis x M. sacchariflorus )이 바이오매스 생산용으로 연구되고 있다. 억새는 저온성 C4 식물로서 셀룰로오스 함량이 43-70%가 되고, ha당 잠재적 최고 생산량은 35t이 가능하고, 밀식재배가 가능하므로 바이오매스 생산용 식물자원으로 많은 관심을 받고 있으나, 야생에 자라고 있는 억새는 생산속도 및 건조중량이 바이오매스로서의 대량생산과 경제성을 충족시키지 못하므로 건조중량, 생산량, 성장속도가 개선된 새로운 억새의 개발이 요구된다.Among the cellulosic biomass, herbaceous plants have emerged as important biomass crops because they have the advantage of ensuring high harvestability with low cultivation cost even in the unsuitable area, i.e., the environment unsuitable for crop cultivation. It is silver grass. Pampas grass is not a cultivated plant and is classified as a wild weed and is a strong herb that colonizes the soil conditions of the low mountains and fields of the northern hemisphere. Pampas grass is the most environmentally friendly biomaterial and it is desirable to develop it as a versatile crop. It is native to Northeast Asia including Korea, and about 17 species have been reported worldwide. Pampas grasses are mainly double genus Miscanthus sinensis and M. sacchariflorus . M. x giganteus ( M. sinensis x M. sacchariflorus ) , a natural hybrid triploid selected for biomass research, has been studied for biomass production. Pampas vulgaris is a low-temperature C4 plant with 43-70% cellulose content, a potential maximum yield of 35 tons per ha, and wheat cultivation, so it is attracting much attention as a plant resource for biomass production. Since the speed and dry weight of silver grass do not meet the mass production and economic feasibility of biomass, the development of new silver grass with improved dry weight, yield and growth rate is required.

배수성 식물의 경우 농업경제 형질 발현이 우세하며 수확량 증가 또는 불임으로 종자가 없는 등의 유용한 형질이 반수체나 이배체의 동일 식물보다 월등히 높아 신품종 육종과 산업화에 주로 사용되고 있다. 그러므로 바이오매스용 식물로서 적합한 특성을 갖고 있는 자연에 존재하는 야생억새를 게놈의 수적 조성이 배가시켜 바이오매스 생산목적의 산업용 식물로 개발이 필요하다. In the case of drainage plants, the expression of agricultural economic dominance is predominant, and the useful traits such as seedlessness due to increased yield or infertility are much higher than those of haploid or diploid, which are mainly used for breeding and industrializing new varieties. Therefore, it is necessary to develop wild grass that exists in nature that has suitable characteristics as a plant for biomass, and to develop it as an industrial plant for the purpose of producing biomass by doubling the numerical composition of the genome.

본 발명에서 사용한 배수체 육종기술은 많은 노력과 시간을 투여하여 바이오매스의 대량생산에 적합한 기술로 개발하였다. 산업용으로 사용 될 대량의 탄소 소재용 바이오매스 공급의 수요를 충족시키기 위하여 야생잡초인 참억새(Miscanthus sinensis 2n=2x=38)를 사용하여 4배체(4n)의 게놈 조성을 가진 유도 4배체(tetrapolyploid) 억새를 개발하였다. 현재까지 참억새(Miscanthus sinensis)의 인공적인 배수체 작성에 관해 공개된 바는 전혀 없다.The drainage breeding technique used in the present invention was developed into a technique suitable for mass production of biomass by administering a lot of effort and time. Induced tetrapolyploid pterygium with a tetraploid (4n) genome composition using the wild weed, Miscanthus sinensis 2n = 2x = 38, to meet the demand of large quantities of biomass for carbon materials for industrial use. Developed. Miscanthus to date There is no public disclosure of artificial drainage in sinensis ).

본 발명은 상기와 같은 요구에 의해 안출된 것으로서, 본 발명에서는 기존의 야생 참억새로부터 산업용이나 환경개선용 또는 바이오매스로 사용이 가능하도록 건조중량의 증가나 경작이 가능하도록 형질이 개선된 배수체 식물을 분화시키기 위한 효과적인 염색체 배가 시스템을 개발하였다. The present invention has been made in accordance with the requirements as described above, in the present invention is a drainage plant with improved traits to increase the dry weight or cultivation to be used for industrial or environmental improvement or biomass from the existing wild pampas grass An effective chromosomal doubling system has been developed for differentiation.

상기 과제를 해결하기 위해, 본 발명은 참억새(Miscanthus sinensis, 2n=2X)의 배수체를 생산하는 방법을 제공한다. In order to solve the above problems, the present invention is a Miscanthus sinensis , to provide a drainage of 2n = 2X).

또한, 본 발명은 상기 방법에 의해 생산된 배수체 참억새 식물을 제공한다.The present invention also provides a drainage pampas grass plant produced by the above method.

또한, 본 발명은 상기 배수체 참억새 식물의 종자를 제공한다.The present invention also provides a seed of the above-mentioned drainage pampas grass plant.

또한, 본 발명은 상기 배수체 참억새 식물의 화분을 제공한다.In addition, the present invention provides a pollen of the drainage pampas grass plant.

또한, 본 발명은 상기 배수체 참억새 식물의 배주를 제공한다.In addition, the present invention provides an pear of the drainage Pampas grass plant.

또한, 본 발명은 상기 배수체 참억새 식물로부터 생산된 바이오매스를 제공한다.In addition, the present invention provides a biomass produced from the drainage Pampas grass plant.

또한, 본 발명은 상기 배수체 참억새 식물 생산용 조성물을 제공한다.In addition, the present invention provides a composition for producing the Drainage Pampas grass.

본 발명의 배수체 참억새 식물은 야생형에 비해 근경이 더 발달하고, 분얼의 수가 많고, 잎의 길이가 길고, 잎의 면적이 더 큰 특징이 있어 높은 바이오매스 생산성을 나타내므로 생물연료(biofuel)/바이오에너지(bioenergy) 작물로서의 이용가치가 높다. Drainage pampas grass plants of the present invention is characterized by a higher development of rhizome, higher number of buns, longer leaf length, and larger leaf area than the wild type, resulting in high biomass productivity. High value as a bioenergy crop.

도 1의 A-D는 참억새 종자로부터의 캘러스 형성 및 식물체로의 재분화가 되는 과정의 무균식물체 작성을 보여준다(A: 캘러스 유도, B: 캘러스로부터의 신초 유도, C:신초의 성장, D: 개별 식물체의 성장). 도 1의 E-H는 콜히친 처리된 캘러스로부터의 염색체 배가 식물체의 재분화 유도 과정을 보여준다(E: 콜히친 처리된 캘러스, F: 처리된 캘러스로부터의 신초 유도, G:신초의 성장, H: 염색체 배가 추정 식물체의 성장).
도 2는 콜히친 처리된 종자 유래 캘러스로부터 발생된 식물체의 염색체 배가 여부를 확인하기 위하여 어린잎에서 단일세포를 추출하여 핵내의 게놈의 양 또는 염색체양을 측정하여 염색체의 배가 여부를 결정하는 세포분석기(flow cytometer)로 분석한 그래프의 도면이다. 2 배체를 분광광도계(spectrophotometer)의 최대 흡수점을 약 50을 기준으로 정했을때 4배체의 경우 흡수점은 100과 그 이상을 나타내고 있다.
도 3은 콜히친 처리된 종자로부터 새롭게 발생된 식물체의 염색체 배가 여부를 확인하기 위하여 어린잎에서 단일세포 내의 염색체 양을 유세포분석기(flow cytometer)로 분석한 그래프의 도면으로서 3n, 4n의 식물체를 나타낸다.
도 4는 콜히친 처리된 캘러스로부터 새롭게 발생된 식물체의 염색체 배가 여부를 확인하기 위하여 어린잎에서 단일세포내의 염색체 양을 유세포분석기(flow cytometer)로 분석한 그래프의 도면으로서 4n, 5n 그리고 6n의 식물체를 나타낸다.
도 5는 콜히친 처리된 캘러스 유래 재분화체로부터 새롭게 발생된 식물체의 염색체 배가 여부를 확인하기 위하여 어린잎에서 단일세포내의 염색체 양을 유세포분석기(flow cytometer)로 분석한 그래프의 도면으로서 4n, 5n 그리고 6n의 식물체를 나타낸다.
도 6은 본 발명에 사용한 종자 유래 캘러스의 재분화체와 콜히친 처리 후의 염색체 배가 식물체를 유도하는 과정을 보여준다. A: 콜히친 농도별 처리된 재분화체, B: 처리된 재분화체의 배양, C: 처리된 재분화로부터의 분얼 유도, D: 새로운 분얼 발생.
도 7은 콜히친 처리된 기내유묘로부터 새롭게 발생된 식물체의 염색체 배가 여부를 확인하기 위하여 어린잎에서 단일세포내의 염색체 양을 유세포분석기(flow cytometer)로 분석한 그래프의 도면으로서 4n의 식물체를 나타낸다.
도 8은 콜히친 처리하지 않은 모본 식물체 2n과 콜히친 처리하여 염색체 배가된 배수체 식물체 중 2n, 4n 혼수체와 4n 염색체 배가 식물체의 성장 비교 사진이다. 염색체 배가 식물체가 모본 식물체보다 더 크고 분얼이 많은 것을 확인할 수 있다.
1 shows the production of sterile plants in the process of callus formation and regeneration into plants (A: callus induction, B: shoot induction from callus, C: growth of shoots, D: of individual plants) growth). EH in FIG. 1 shows the process of inducing regeneration of chromosomal doubling plants from colchicine treated callus (E: colchicine treated callus, F: induction of shoots from treated callus, G: shoot growth, H: chromosome doubling plant Growth).
Figure 2 is a cell analyzer to determine whether the chromosome doubled by measuring the amount or chromosome amount of the genome in the nucleus by extracting a single cell from the young leaves in order to determine whether the chromosome doubled from the plant derived from colchicine-treated seed-derived callus ( A graph of a graph analyzed by a flow cytometer. When the diploid is determined based on the maximum absorption point of the spectrophotometer of about 50, the quadruple shows an absorption point of 100 or more.
3 is a diagram of a graph of chromosome multiplication of single cells in young leaves by flow cytometer to confirm whether or not chromosome doubled from newly generated plants from colchicine treated seeds, showing plants of 3n and 4n.
4 is a graph of chromosome multiplication of single cells in young leaves from a colchicine-treated callus by flow cytometer, showing the plant of 4n, 5n and 6n. Indicates.
FIG. 5 is a graph of chromosomal amplification of single cells in young leaves by flow cytometer in order to confirm whether chromosome doubled from newly-developed plants from colchicine-treated callus-derived differentiators. 4n, 5n and 6n Represents a plant.
Figure 6 shows the process of inducing the regeneration of seed-derived callus used in the present invention and the chromosomal doubling plants after colchicine treatment. A: Treated redifferentiated by colchicine concentration, B: Culture of treated redifferentiated, C: Induced dialect from treated redifferentiated, D: Generated new bullet.
FIG. 7 is a diagram of a graph of a chromosome analysis of single cells in young leaves with a flow cytometer in order to confirm whether chromosomal multiplication of newly generated plants from colchicine treated seedlings is shown.
8 is a growth comparison picture of 2n, 4n coma and 4n chromosome doubling plants among colchicine-treated parent plants 2n and colchicine-treated ploidy doubled plants. You can see that the chromosomal doubling plants are larger and have more bulking than the parent plants.

본 발명의 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 참억새(Miscanthus sinensis)의 배수체를 생산하는 방법을 제공한다.In order to achieve the object of the present invention, the present invention is a Miscanthus sinensis ) provides a method for producing drainage.

참억새의 배수체를 생산하는 방법은 The way to produce the pampas drainage

(1) 참억새 종자의 종피를 제거하는 단계; (1) removing the seed of the pampas grass seed;

(2) 상기 종자에 콜히친(colchicine)을 처리하여 체세포분열을 저지하는 단계; (2) treating columine (colchicine) on the seed to prevent somatic cell division;

(3) 상기 콜히친 처리된 종자를 멸균수로 수세하는 단계; (3) washing the colchicine treated seeds with sterile water;

(4) 상기 수세된 종자를 상토에 파종하여 발아를 유도하는 단계; 및(4) inducing germination by sowing the washed seeds onto the soil; And

(5) 상기 발아된 유묘를 선발하여 화분에 옮기고 온실에서 키우는 단계를 포함한다. (5) selecting and transferring the germinated seedlings to pots and growing them in a greenhouse.

상기 (5) 단계 후, 유세포분석으로 식물체의 배수성을 확인할 수 있다. After step (5), the flow cytometry can determine the ploidy of the plant.

참억새의 배수체를 생산하는 또 다른 방법은 Another way to produce the pampas drainage

(1) 참억새 종자의 종피를 제거하는 단계; (1) removing the seed of the pampas grass seed;

(2) 상기 종자를 멸균하는 단계; (2) sterilizing the seed;

(3) 상기 종자를 1/2MS 기본배지에 파종하여 발아를 유도하는 단계; (3) inducing germination by sowing the seeds in a 1 / 2MS base medium;

(4) 상기 발아된 유묘를 선발하는 단계; (4) selecting the germinated seedlings;

(5) 상기 선발된 유묘에 콜히친(colchicine)을 처리하여 체세포분열을 저지하는 단계; (5) treating somatic cell division by treating colchicine with the selected seedlings;

(6) 상기 콜히친 처리된 유묘를 멸균수로 수세한 후 1/2MS 기본배지로 옮기고, 새로운 분얼을 유도하는 단계; 및(6) washing the colchicine-treated seedlings with sterile water and then transferring to a 1 / 2MS base medium to induce new powder; And

(7) 상기 유도된 식물체를 화분에 옮겨 온실에서 키우는 단계를 포함한다. (7) transferring the derived plants to pots and growing them in a greenhouse.

상기 (7) 단계 후, 유세포분석으로 식물체의 배수성을 확인할 수 있다. After step (7), flow cytometry can confirm the ploidy of the plant.

참억새의 배수체를 생산하는 또 다른 방법은 Another way to produce the pampas drainage

(1) 참억새 종자의 종피를 제거하는 단계; (1) removing the seed of the pampas grass seed;

(2) 상기 종자를 멸균하는 단계; (2) sterilizing the seed;

(3) 상기 종자를 캘러스(callus) 유도배지에서 배양하는 단계; (3) culturing the seed in a callus induction medium;

(4) 상기 유도된 캘러스를 캘러스 유지배지에서 계대 배양하여 캘러스를 선발하는 단계; (4) selecting the callus by culturing the induced callus in a callus holding medium;

(5) 상기 선발된 캘러스에 콜히친(colchicine)을 처리하여 체세포분열을 저지하는 단계; (5) treating somatic cell division by treating colchicine with the selected callus;

(6) 상기 콜히친 처리된 캘러스를 멸균수로 수세한 후 재분화 배지로 옮겨 신초(shoots)를 분화시키는 단계; (6) washing the colchicine-treated callus with sterile water and then transferring to regeneration medium to differentiate shoots;

(7) 상기 분화된 신초(shoots)를 1/2MS 기본배지로 옮겨, 발근을 유도하는 단계; 및(7) transferring the differentiated shoots to a 1 / 2MS base medium to induce rooting; And

(8) 상기 발근된 식물체를 화분에 옮겨 온실에서 키우는 단계를 포함한다. (8) transferring the rooted plant to a pot and growing in a greenhouse.

상기 (8) 단계 후, 유세포분석으로 식물체의 배수성을 확인할 수 있다. After step (8), flow cytometry can confirm the ploidy of the plant.

참억새의 배수체를 생산하는 다른 방법은 Another way to produce the pampas drainage

(1) 참억새 종자의 종피를 제거하는 단계; (1) removing the seed of the pampas grass seed;

(2) 상기 종자를 멸균하는 단계; (2) sterilizing the seed;

(3) 상기 종자를 캘러스(callus) 유도배지에서 배양하는 단계; (3) culturing the seed in a callus induction medium;

(4) 상기 유도된 캘러스를 캘러스 유지배지에서 계대 배양하여 캘러스를 선발하는 단계; (4) selecting the callus by culturing the induced callus in a callus holding medium;

(5) 상기 선발된 캘러스를 재분화 배지로 옮겨 신초(shoots)와 발근(rooting)을 유도하는 단계; (5) transferring the selected callus to regeneration medium to induce shoots and rooting;

(6) 상기 재분화된 유묘에 콜히친(colchicine)을 처리하여 체세포분열을 저지하는 단계; (6) treating colchicine with the re-differentiated seedlings to prevent somatic cell division;

(7) 상기 콜히친 처리된 유묘를 멸균수로 수세한 후, 1/2MS 기본배지로 옮겨 새로운 분얼을 유도하는 단계; 및(7) washing the colchicine treated seedlings with sterile water, and then transferring to a 1 / 2MS base medium to induce new powder; And

(8) 상기 식물체를 화분에 옮겨 온실에서 키우는 단계를 포함한다. (8) transferring the plant to a pot and growing in a greenhouse.

상기 (8) 단계 후, 유세포분석으로 식물체의 배수성을 확인할 수 있다. After step (8), flow cytometry can confirm the ploidy of the plant.

구체적으로는, 상기 캘러스 유도배지는 1~3mg/L의 2,4-D 및 30 g/L의 서당을 포함하는 MS 배지일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 바람직하게는, 상기 캘러스 유도배지는 2~3mg/L의 2,4-D 및 30 g/L의 서당을 포함하는 MS 배지일 수 있으며, 가장 바람직하게는, 상기 캘러스 유도배지는 3mg/L의 2,4-D 및 30 g/L의 서당을 포함하는 MS 배지일 수 있다. Specifically, the callus induction medium may be MS medium containing 1 to 3 mg / L of 2,4-D and 30 g / L of sucrose, but is not limited thereto. Preferably, the callus induction medium may be MS medium containing 2 to 3 mg / L of 2,4-D and 30 g / L of sucrose, and most preferably, the callus induction medium of 3 mg / L MS medium comprising 2,4-D and 30 g / L of sucrose.

구체적으로는, 상기 콜히친 처리는 100~800μM의 콜히친을 1~3일 처리하는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 상기 콜히친 처리는 바람직하게는, 각각 300 또는 600μM의 콜히친을 1일 또는 2일 처리하는 것일 수 있다. Specifically, the colchicine treatment may be one to three days of 100 ~ 800 μM colchicine, but is not limited thereto. Preferably, the colchicine treatment may be one or two days treatment of 300 or 600 μM of colchicine, respectively.

구체적으로는, 상기 캘러스 재분화배지는 1~3mg/L의 BA 및 30 g/L의 서당을 포함하는 MS 배지일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 바람직하게는, 상기 캘러스 재분화배지는 2mg/L의 BA 및 30 g/L의 서당을 포함하는 MS 배지일 수 있다. Specifically, the callus regeneration medium may be MS medium containing 1 to 3 mg / L of BA and 30 g / L of sucrose, but is not limited thereto. Preferably, the callus regeneration medium may be MS medium containing 2 mg / L BA and 30 g / L Sucrose.

상기 콜히친은 세포분열을 저해함으로써 염색체 배가(doubling)를 유도하기 위한 목적으로 식물 조직에 처리한 세포분열 저해제로서, 동일한 효과를 나타내는 임의의 세포분열 저해제로 대체될 수 있다. 상기 세포분열 저해제는 오리잘린, 디니트로아닐린 및 에탈플루랄린 (N-메틸-N-2-메틸-2-프로페닐)-2,6-디니트로-4-(트리플루오로메틸)벤자닌일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. The colchicine is a cell division inhibitor treated to plant tissues for the purpose of inducing chromosomal doubling by inhibiting cell division, and may be replaced with any cell division inhibitor having the same effect. The cell division inhibitors are oralzaline, dinitroaniline and etafluralin (N-methyl-N-2-methyl-2-propenyl) -2,6-dinitro-4- (trifluoromethyl) benzaninyl May be, but is not limited thereto.

"식물조직" 은 재배 또는 배양 시의 식물의 모든 조직이다. 상기 용어에는 전체 식물, 식물세포, 식물기관, 원형질체, 세포배양물, 또는 구조적 및 기능적 유니트로 조성되는 식물세포의 그룹이 모두 포함될 수 있다. "Plant tissue" is all tissues of a plant at the time of cultivation or culture. The term may include all plants, plant cells, plant organs, protoplasts, cell cultures, or groups of plant cells composed of structural and functional units.

세포분열 저해제는 파종 전에 종자에 처리할 수 있다. 종자를 맑은 물속에 5~6 시간 동안 침지시킨 다음, 상기 종자를 콜히친 용액 또는 디니티로아닐린 용액 속에 24 시간 동안 침지시킨다. 상기 종자를 파종 전에 수세한다. 건조 종자는 물속에서의 예비-침지 없이 화학약품 용액 속에 바로 침지시킬 수 있다. Cell division inhibitors may be treated on the seed prior to sowing. Seeds are soaked in clear water for 5-6 hours, and then the seeds are soaked in a colchicine solution or dinitiroaniline solution for 24 hours. The seeds are washed with water before sowing. Dry seeds can be directly immersed in the chemical solution without pre-immersion in water.

또한, 세포분열 저해제는 새로 생긴 모종에 처리할 수 있다. 파종 후 발아를 위해 토양 온도를 29~31℃로 유지한다. 콜히친 또는 디니트로아닐린 용액 한 방울을, 모종이 토양으로부터 나오자마자, 자엽 사이의 신초 정단부(shoot apex)에 가한다. 콜히친 용액을 3일 연속으로 아침 또는 저녁에 생장점에 바른다. In addition, cell division inhibitors can be treated to new seedlings. Soil temperature is maintained at 29 ~ 31 ℃ for germination after sowing. A drop of colchicine or dinitroaniline solution is added to the shoot apex between the cotyledon as soon as the seedlings emerge from the soil. The colchicine solution is applied to the growing point in the morning or evening for three consecutive days.

또한, 세포분열 저해제를 발아된 종자의 신초 정단부에 처리한 후, 발아된 종자를 토양에 심을 수 있다. 종자를 30℃의 항온처리기 내에서 발아시켜, 상기 발아된 종자의 배축 상부를 뒤집어서 콜히친 또는 디니트로아닐린 용액 속에 10~15 시간 동안 30℃의 항온처리기 내에서 침지시킨다. In addition, after treating a cell division inhibitor to the apical tip of the germinated seed, the germinated seed can be planted in the soil. Seeds are germinated in an incubator at 30 ° C., the tops of the germinal seeds of the germinated seeds are inverted and soaked in a 30 ° C. incubator for 10-15 hours in a colchicine or dinitroaniline solution.

바람직하게는, 참억새 종자의 종피를 제거한 후, 상기 종자를 100~400μM의 콜히친에 2일 동안 교반하면서 처리할 수 있다. 상기 콜히친 처리된 종자를 멸균수로 수세하여, 상기 수세한 종자를 상토에 파종하여 발아를 유도할 수 있다. Preferably, after removing the seed of the pampas grass seed, the seed may be treated with 100 ~ 400μM colchicine with stirring for 2 days. The colchicine treated seeds may be washed with sterile water, and the washed seeds may be sown in the soil to induce germination.

바람직하게는, 참억새 종자의 종피를 제거한 후, 70% 에탄올에서 15분간 교반하면서 표면 멸균하고, 멸균수로 3회 세정할 수 있다. 다시 0.8% NaOCl 용액을 첨가하여 30분간 교반하면서 표면 멸균하고, 멸균수로 5회 세정한 다음 멸균된 여과지로 옮겨 물기를 제거한 후, 상기 종자를 1/2MS 기본배지에 파종하여 발아를 유도할 수 있다. 상기 발아된 유묘를 계대 배양하여 유묘를 선발하고, 상기 선발된 유묘에 100~800μM의 콜히친을 24시간 처리할 수 있다. 상기 콜히친 처리된 유묘를 멸균수로 수세한 후 0.01~0.1mg/L IAA 및 15g/L 서당이 첨가된 1/2MS 발근 유도 배지로 옮겨, 새로운 분얼을 유도할 수 있다.Preferably, after removing the seed of the pampas grass seed, it can be surface sterilized with stirring for 15 minutes in 70% ethanol and washed three times with sterile water. Then, 0.8% NaOCl solution was added and surface sterilized with stirring for 30 minutes, washed 5 times with sterile water, transferred to sterile filter paper to remove water, and then seeded on 1 / 2MS base medium to induce germination. have. The seedlings may be passaged to select seedlings, and 100 to 800 μM colchicine may be treated for 24 hours. The colchicine treated seedlings were washed with sterile water and then transferred to 1 / 2MS rooting induction medium to which 0.01-0.1 mg / L IAA and 15 g / L sucrose were added to induce new powder.

바람직하게는, 참억새 종자의 종피를 제거한 후, 70% 에탄올에서 15분간 교반하면서 표면 멸균하고, 멸균수로 3회 세정할 수 있다. 다시 0.8% NaOCl 용액을 첨가하여 30분간 교반하면서 표면 멸균하고, 멸균수로 5회 세정한 다음 멸균된 여과지로 옮겨 물기를 제거한 후, 1~3mg/L 2,4-D 및 30 g/L 서당이 첨가된 MS 배지에 치상하여 캘러스를 유도할 수 있다. 상기 유도된 캘러스를 캘러스 증식 배지에서 계대 배양하여 캘러스를 선발하여, 상기 선발된 캘러스를 300~600μM의 콜히친이 포함된 액체의 캘러스 증식 배지 상에 1~2일 동안 둘 수 있다. 상기 콜히친 처리된 캘러스를 멸균수로 수세한 후 1~3mg/L의 BA 및 30 g/L의 서당을 포함하는 MS 배지로 옮겨 신초(shoots)를 분화시킬 수 있으며, 분화된 신초는 0.01~0.1mg/L IAA 및 15g/L 서당이 첨가된 1/2 MS 발근 유도 배지로 옮겨 신초의 뿌리를 유도할 수 있다. Preferably, after removing the seed of the pampas grass seed, it can be surface sterilized with stirring for 15 minutes in 70% ethanol and washed three times with sterile water. Then, 0.8% NaOCl solution was added and surface sterilized with stirring for 30 minutes, washed 5 times with sterile water and transferred to sterilized filter paper to remove water, followed by 1-3 mg / L 2,4-D and 30 g / L Sudose. Callus can be induced by densification on the added MS medium. The induced callus may be passaged in a callus growth medium to select callus, and the selected callus may be placed on a callus growth medium of liquid containing 300 to 600 μM of colchicine for 1 to 2 days. The colchicine-treated callus was washed with sterile water and then transferred to MS medium containing 1 to 3 mg / L of BA and 30 g / L of sucrose to differentiate shoots, and differentiated shoots were 0.01 to 0.1. Roots of shoots can be induced by transferring to 1/2 MS rooting induction medium with mg / L IAA and 15 g / L Sucrose added.

바람직하게는, 참억새 종자의 종피를 제거한 후, 70% 에탄올에서 15분간 교반하면서 표면 멸균하고, 멸균수로 3회 세정할 수 있다. 다시 0.8% NaOCl 용액을 첨가하여 30분간 교반하면서 표면 멸균하고, 멸균수로 5회 세정한 다음 멸균된 여과지로 옮겨 물기를 제거한 후, 1~3mg/L 2,4-D 및 30 g/L 서당이 첨가된 MS 배지에 치상하여 캘러스를 유도할 수 있다. 상기 유도된 캘러스를 캘러스 증식배지에서 계대 배양하여 캘러스를 선발하여, 1~3mg/L의 BA 및 30 g/L의 서당을 포함하는 MS 배지로 옮겨 신초(shoots)를 유도하고, 유도된 신초는 0.01~0.1mg/L IAA 및 15g/L 서당이 첨가된 1/2 MS 발근 유도 배지로 옮겨 신초의 뿌리를 유도할 수 있다. 상기 재분화된 유묘를 200~800μM의 콜히친이 포함된 액체의 1/2 MS 기본배지 상에 1~3일 동안 둘 수 있다. 상기 콜히친 처리된 유묘를 멸균수로 수세한 후, 0.01~0.1mg/L IAA 및 15g/L 서당이 첨가된 1/2 MS 발근 유도 배지로 옮겨 새로운 분얼을 유도할 수 있다. Preferably, after removing the seed of the pampas grass seed, it can be surface sterilized with stirring for 15 minutes in 70% ethanol and washed three times with sterile water. Then, 0.8% NaOCl solution was added and surface sterilized with stirring for 30 minutes, washed 5 times with sterile water and transferred to sterilized filter paper to remove water, followed by 1-3 mg / L 2,4-D and 30 g / L Sudose. Callus can be induced by densification on the added MS medium. The induced callus was passaged in a callus growth medium to select callus, transferred to MS medium containing 1 to 3 mg / L of BA and 30 g / L of sucrose to induce shoots, and induced shoots Roots of shoots can be induced by transferring to 1/2 MS rooting induction medium with 0.01-0.1 mg / L IAA and 15 g / L sucrose. The re-differentiated seedlings may be placed on 1/2 MS basal medium of liquid containing 200-800 μM colchicine for 1-3 days. The colchicine treated seedlings were washed with sterile water, and then transferred to 1/2 MS rooting induction medium to which 0.01-0.1 mg / L IAA and 15 g / L sucrose were added to induce new powder.

또한, 본 발명은 상기 방법에 의해 생산된 배수체 참억새 식물을 제공한다. 상기 배수체 참억새 식물은 야생형에 비해 근경이 더 발달하고, 분얼의 수가 많고, 잎의 길이가 길고, 잎의 면적이 더 큰 특징이 있다. The present invention also provides a drainage pampas grass plant produced by the above method. Compared with the wild type, the drainage pampas fern plant has more features of rhizome, a large number of buns, a long leaf length, and a larger leaf area.

또한, 본 발명은 상기 생산된 배수체 참억새 식물의 종자를 제공한다. In addition, the present invention provides a seed of the produced Drainage Pampas grass plant.

또한, 본 발명은 상기 생산된 배수체 참억새 식물의 화분을 제공한다. In addition, the present invention provides a pollen of the produced drainage pampas grass plant.

또한, 본 발명은 상기 생산된 배수체 참억새 식물의 배주를 제공한다. In addition, the present invention provides the circumference of the produced drainage pampas grass plants.

또한, 본 발명은 상기 생산된 배수체 참억새 식물로부터 생산된 바이오매스를 제공한다.In addition, the present invention provides a biomass produced from the produced Drainage Pampas grass plant.

또한, 본 발명은 콜히친을 함유하는, 배수체 참억새 식물 생산용 조성물을 제공한다. 상기 배수체 참억새 식물 생산용 조성물은 100~800 μM의 콜히친을 함유할 수 있으며, 바람직하게는 각각 300 또는 600μM의 콜히친을 함유할 수 있다.
In addition, the present invention provides a composition for the production of drainage pampas grass, containing colchicine. The drainage pampas quince plant production composition may contain 100 to 800 μM of colchicine, preferably 300 or 600 μM of colchicine, respectively.

이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하기로 한다. 이들 실시 는 단지 본 발명을 예시하기 위한 것이므로, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.
Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples. These implementations are only intended to illustrate the present invention, and the content of the present invention is not limited to the following examples.

재료의 선발Selection of materials

본 발명에 사용한 억새는 한반도에 자생하는 참억새(Miscanthus sinensis)의 식물체와 그 종자이다 (표 1). Pampas grass used in the present invention is a wild grass that grows on the Korean peninsula ( Miscanthus sinensis ) and its seeds (Table 1).

참억새(Miscanthus sinensis)의 유전자원 목록Pampas Grass ( Miscanthus) sinensis ) 's List of Genes 번호number 라인line 채집일 (년.월.일)Collection date (year, month, day) 채집물Collection 채집지Collection 014014 참억새Prairie 2010.06.102010.06.10 종자strain 경상남도 김해1Gimhae 1, Gyeongsangnam-do South Korea 027027 참억새Prairie 2010.11.272010.11.27 종자, 근경Seed, rhizome 경상남도 밀양1Miryang 1, Gyeongsangnam-do South Korea

실시예Example 1: 억새의 성숙 종자를 이용한 효율적인 조직배양 체계 확립 1: Establishment of efficient tissue culture system using mature seeds of pampas grass

1. 식물 재료 및 종자멸균 1. Plant Materials and Seed Sterilization

참억새(Miscanthus sinensis)의 조직배양을 위한 식물 재료는 국내 자생종 억새의 성숙 종자를 사용하였다(표 1). 캘러스 유도를 위한 종자의 멸균은 종피를 제거한 후, 70% 에탄올에서 15분간 교반하면서 표면 멸균하였고, 멸균수로 3회 세정하였다. 다시 0.8% NaOCl 용액을 첨가하여 30분간 교반하면서 표면 멸균하였고, 멸균수로 5회 세정한 다음 멸균된 여과지로 옮겨 물기를 제거한 후, 캘러스 유도배지에 치상하였다.
As plant material for tissue culture of Miscanthus sinensis , mature seeds of Korean native species were used (Table 1). Sterilization of the seed for callus induction was surface sterilized with stirring for 15 minutes in 70% ethanol after removing the seed, and washed three times with sterile water. Then, 0.8% NaOCl solution was added and the surface was sterilized for 30 minutes with stirring. After washing 5 times with sterile water, it was transferred to sterilized filter paper to remove water, and then healed in callus induction medium.

2. 2. 배발생Embryonic development 캘러스Callus 유도 Judo

억새의 성숙 종자로부터 캘러스를 유도하기 위한 기본적인 캘러스 유도배지는 30g/L 서당이 첨가된 MS(Murashige and Skoog, 1962) 배지와 0.8% 아가(agar)를 사용하였다. 또한 2,4-D(2,4-dichlorophenoxyacetic acid)는 단자엽식물에서 배발생 캘러스 유도에 많이 사용된다(Tishu et al. 1987 Plant Cell, Tissue and Organ Culture 9: 245-252, Oldach. et al. 2001 Plant Cell Rep. 20: 416-421). 본 실험에서도 배발생 캘러스 유도 효율을 조사하기 위하여 식물생장조절 물질인 옥신(auxin)류의 2,4-D를 상기 배지에 농도별로 처리하였다. 배지에 멸균된 종자를 치상한 다음, 24±2℃ 배양기에서 암배양하였다.The basic callus induction medium to induce callus from mature seeds of P. falciparus was MS (Murashige and Skoog, 1962) medium added with 30 g / L sucrose and 0.8% agar. In addition, 2,4-D (2,4-dichlorophenoxyacetic acid) is widely used to induce embryogenic callus in monocots (Tishu et al. 1987 Plant Cell, Tissue and Organ Culture 9: 245-252, Oldach. Et al. 2001 Plant Cell Rep. 20: 416-421). In this experiment, 2,4-D of auxin (auxin), a plant growth regulator, was treated in different concentrations in the medium to investigate the efficiency of induction of embryogenic callus. Sterilized seeds in the medium were wound and then cultured in a 24 ± 2 ℃ incubator.

억새의 종자 배양에 있어서 캘러스 유도배지에 첨가되는 2,4-D의 농도에 따른 최적의 배양효과를 조사하기 위하여 멸균된 억새 성숙 종자를 2,4-D 1~3mg/L의 농도로 첨가된 캘러스 유도배지에서 배양한 결과 억새 종류별 2,4-D 농도별 캘러스 발생 효율이 다르게 나타났다 (표 2).In order to investigate the optimum cultivation effect according to the concentration of 2,4-D added to callus induction medium, Cultured in callus-induced medium, callus generation efficiency was different according to 2,4-D concentration according to the type of Pampas grass (Table 2).

참억새의 경우 2,4-D 농도별 처리 시 3mg/L에서 61.7%로 캘러스 발생 효율이 가장 높게 나타났으며, 2mg/L에서 60.3%, 1mg/L에서 55.6%로 2,4-D 농도가 높아질수록 캘러스 발생이 증가하는 경향을 보였다. 이와 같이 참억새 성숙 종자로부터의 캘러스 유도는 2,4-D 3mg/L가 가장 적절한 농도인 것으로 나타났다.In case of Pampas oleracea, callus development efficiency was the highest at 3mg / L at 61.7% at 2,4-D concentration, and 60.3% at 2mg / L and 55.6% at 1mg / L. The higher the callus tends to increase. Thus, 2,4-D 3mg / L was the most appropriate concentration of callus induction from pampas grass mature seeds.

참억새 종자로부터 캘러스 유도를 위한 2,4-D 농도 조건2,4-D Concentration Conditions for Callus Induction from Pampas Seeds 라인line 2,4-D(mg/L)2,4-D (mg / L) 치상한 종자의 수(개) Number of bad seeds () 유도된 캘러스의 수(개) Number of callus induced () 캘러스 유도율(%)Callus induction rate (%) 참억새Prairie 1One 5454 3030 55.655.6 22 5858 3535 60.360.3 33 6060 3737 61.761.7

3. 식물체 재분화3. Plant regeneration

억새의 성숙 종자 유래 캘러스로부터 식물체를 재분화 시키기 위하여 30 g/L 서당이 첨가된 MS(Murashige and Skoog, 1962) 배지와 아가 0.8%를 사용하였다. 식물체 재분화 효율을 조사하기 위해 4주령의 배발생 캘러스를 사용하였다. 또한 억새의 여러 조직을 사용한 캘러스 유도와 재분화에 대한 연구로서 적정 식물생장조절물질의 종류와 농도를 조사하기 위하여 옥신류인 2,4-D와 시토키닌류인 BA를 단독 또는 혼용 처리하였다. 캘러스를 상기 배지에 치상한 후 24±2℃, 16시간 명소/8시간 암소 조건에서 4주간 배양하였다. 배양 후 각각의 처리구에서 형성된 신초(shoot)를 재분화 개체로 조사하였다.In order to regenerate the plant from the callus derived from the blue-grown seeds, 0.8% of MS (Murashige and Skoog, 1962) medium with 30 g / L sucrose and agar were used. Four-week-old embryogenic callus was used to investigate plant regeneration efficiency. In addition, as a study of callus induction and regeneration using various tissues of silver grass, auxin 2,4-D and cytokinin BA were treated alone or in combination to investigate the type and concentration of proper plant growth regulator. Callus was placed on the medium and incubated for 4 weeks at 24 ± 2 ° C., 16 hours of spot / 8 hours of dark conditions. After incubation, shoots formed in each treatment group were examined by redifferentiated individuals.

억새의 성숙 종자 유래 캘러스로부터 식물체 재분화 효율을 조사하기 위해 식물생장조절물질의 옥신류인 2,4-D와 사이토키닌류인 BA를 단독 또는 혼용 처리한 결과 식물생장조절물질의 종류에 따라 재분화 효율이 다르게 나타났다 (표 3, 도 1).In order to investigate the efficiency of plant regeneration from the callus derived from mature seeds, the regeneration efficiency according to the types of plant growth regulators was determined by treating alone or in combination with auxin 2,4-D and cytokinin BA. It appeared differently (Table 3, FIG. 1).

참억새의 경우 BA 2mg/L 처리 시 50.0%로 재분화 효율이 가장 높게 나타났으며, BA 2mg/L와 2,4-D 1mg/L의 혼용 처리 시 20.0%로 BA와 2,4-D 혼용 처리보다 BA의 단독 처리가 효과적임을 확인하였다. 이와 같이 참억새의 성숙 종자 유래 캘러스로부터의 재분화는 BA 2mg/L가 가장 적절한 농도인 것으로 나타났다.In case of Pampas oleracea, the re-differentiation efficiency was the highest at 50.0% when BA 2mg / L was treated, and when mixed with BA 2mg / L and 2,4-D 1mg / L, it was 20.0% at BA and 2,4-D. It was confirmed that treatment of BA alone was more effective. As such, regeneration of the pampas grass from mature seed-derived callus showed that BA 2 mg / L was the most appropriate concentration.

참억새 종자로부터 유도한 캘러스의 재분화 조건Condition of Regeneration of Callus Induced from Pampas Seed 라인line 식물생장조절물질
(mg/L)
Plant growth regulator
(mg / L)
치상한
캘러스의 수(개)
Dirty
Number of callus ()
캘러스 유래 신초의 수(개) Number of callus-derived shoots () 식물체 재분화율(%)Plant regeneration rate (%)
참억새Prairie BA 2BA 2 1010 55 50.050.0 BA 2; 2,4-D 1BA 2; 2,4-D 1 1010 22 20.020.0

실시예Example 2: 콜히친을 이용한 동질 배수체 참억새 유도 2: Induction of homogenous drainage pampas grasses using colchicine

1. 참억새 종자와 콜히친을 이용한 염색체 배가 식물체 유도 Induction of Chromosome Double Plants Using Pampas Seed and Colchicine

참억새(Miscanthus sinensis)의 염색체 배가 식물체를 유도하기 위하여 종자에 콜히친(Sigma Co., USA)을 처리 후 그린하우스에서 발아시켰으며 파종 4일 후 발아가 시작되었고, 대조구와 처리구 간의 큰 차이는 없었다. 파종 4주 후 지상부가 40~50cm 이상 성장하였고, 각 실험구마다 우량한 개체를 기준으로 10개체씩 선발하여 가식하였다. 콜히친 처리구의 식물체가 대조구에 비하여 잎이 더 길고 넓은 것을 확인할 수 있었다. 또한 염색체의 배가 여부를 가식 2주 후, 대조구 3개체와 처리구 27개체, 총 30개체의 잎을 채취하여 유세포분석(flow cytometric analysis)을 실행하였다. 도 3의 유세포분석기로 분석한 그래프는 어린잎에서 단일세포를 추출하여 핵내의 게놈의 양 또는 염색체양을 측정하여 염색체의 배가여부를 결정하는 도면이다. 2배체를 분광광도계의 최대 흡수점을 약 50을 기준으로 정했을 때 4배체의 경우 흡수점은 100과 그 이상을 나타낸다(도 2). 유세포분석을 통하여 참억새의 염색체가 2n인 것을 정확히 확인하였으며 100uM 처리구에서 1개체, 400uM 처리구에서 1개체를 획득하였다 (표 4, 도 3). Pampas Grass ( Miscanthus) In order to induce the chromosomal embryos of sinensis ), seeds were treated with colchicine (Sigma Co., USA) and germinated in the green house, and germination began 4 days after sowing, and there was no significant difference between the control and the control. After 4 weeks of sowing, the ground part grew more than 40 ~ 50cm, and 10 individuals were selected and planted based on the superior individuals in each experimental section. Plants of the colchicine treatment was longer and broader than the control. In addition, two weeks after the gestation of chromosomes, flow cytometric analysis was performed by collecting leaves of three controls, 27 treatments, and a total of 30 leaves. The graph analyzed by the flow cytometer of FIG. 3 is a diagram for determining whether the chromosome is doubled by extracting single cells from young leaves and measuring the amount or chromosome amount of the genome in the nucleus. In the case of tetraploid, when the maximum absorption point of the spectrophotometer is set to about 50, the absorption point of the tetraploid shows 100 and higher (FIG. 2). Flow cytometry confirmed exactly that the chromosome of the pampas grass was 2n, and one in 100uM treatment, one in 400uM treatment (Table 4, Figure 3).

참억새 종자를 이용한 콜히친 처리 후의 염색체 배가 식물체 유도Induction of Chromosomal Doping Plants after Colchicine Treatment with Pampas Grass Seeds 라인line 콜히친 처리 농도
(μM )
Colchicine treatment concentration
(μM)
처리한 종자의 수
(개)
Number of seeds treated
(dog)
배수체 검정한 식물체의 수(개) Drainage Number of plants tested 염색체 배가 식물체의 수(개)Number of chromosomal doubling plants
참억새Prairie 00 100100 33 00 100100 200200 99 1One 200200 200200 99 00 400400 200200 99 1One

2. 참억새 종자 유래 2. Origin of Pampas Seeds 캘러스와Callus and 콜히친을 이용한 염색체 배가 식물체 유도  Induction of Chromosomal Dope Plants Using Colchicine

참억새(Miscanthus sinensis)의 성숙 종자로부터 캘러스를 유도하여, 콜히친을 농도별 처리, 3~4주 후 각각의 처리구의 캘러스에서 발생된 신초의 수를 조사하였고, 발생된 신초들을 완전한 식물체로 분화시켜 그 중 일부를 유세포분석을 실시하여 염색체 배가 여부를 확인하였다 (표 5, 도 1).Pampas Grass ( Miscanthus) Induction of callus from mature seeds of sinensis ), we investigated the number of shoots generated in callus of each treatment group after concentration treatment, 3 ~ 4 weeks, and differentiated shoots into complete plants. Flow cytometry was performed to determine whether the chromosome doubled (Table 5, Figure 1).

참억새는 콜히친을 1일 처리한 경우, 콜히친을 처리하지 않은 대조구의 캘러스 유래 신초 발생 효율은 3.0%으로 가장 낮게 나타났고, 300uM 콜히친 처리구의 신초 발생률은 18.2%로 가장 높게 나타났다. 그러나 이와는 반대로 콜히친을 2일 처리한 경우의 대조구의 캘러스 유래 신초 발생 효율은 15.2%로 가장 높게 나타났으며, 300uM 콜히친 처리구의 신초 발생률은 3.0%로 가장 낮게 나타났다. 600uM 콜히친 처리구는 1일 처리구나 2일 처리구 모두에서 12.1%로 동일하게 나타났다. 또한 발생된 신초는 발근을 유도, 완전한 식물체로 분화시켜서 총 31개체를 획득하였고, 이를 유세포분석을 통하여 염색체 배가 여부를 확인한 결과 콜히친 1일 처리구의 300uM 처리구에서 4개체, 600uM 처리구에서 9개체, 총 13개체의 염색체 배가 참억새를 획득하였다 (도 4).For 1 day treatment of colchicine, the callus-derived efficiency of callus-derived non-colchicine-treated control was the lowest at 3.0%, and the highest incidence was 18.2% at 300uM colchicine. On the contrary, the callus-derived efficiency of callus-derived shoots was highest at 15.2%, and the lowest at 3.0uM of 300uM colchicine. The 600uM colchicine treatment was the same as 12.1% in both the 1 day treatment and 2 days treatment. In addition, the shoots induced rooting and induced differentiation into a complete plant to obtain a total of 31 individuals, and as a result of confirming whether the chromosomal doubled through flow cytometry, four in 300uM treatment group and 9 in 600uM treatment group, total Thirteen chromosomal embryos obtained Pampas ventus (FIG. 4).

이와 같이 콜히친을 처리하지 않은 대조구의 1일 처리의 경우는 캘러스 유래 신초 발생 효율이 콜히친 처리구보다 낮은 것으로 나타났고, 이와는 반대로 2일 처리구의 경우는 콜히친 처리구보다 신초 발생률이 가장 높게 나타났다. 이는 콜히친을 처리하지 않은 1일 처리 대조구의 경우는 콜히친을 처리한 처리구보다 캘러스의 상처가 심하여 신초 유도를 저해하는 것으로 생각된다. 또한 콜히친을 농도별로 처리한 처리구의 경우는 300uM 콜히친의 1일 처리구에서 가장 높은 신초 발생률과 염색체 배가 식물의 발생률을 보였다. 이와 같은 결과 300uM의 콜히친을 1일 동안 처리하는 것이 캘러스와 콜히친을 이용한 염색체 배가 유도에 가장 유리한 조건임을 확인하였다.As such, in the case of the daily treatment of the control group not treated with colchicine, the callus-derived efficiency was lower than that of the colchicine treatment. On the contrary, in the two-day treatment, the incidence of shoot growth was higher than that of the colchicine treatment. It is thought that in the daily treatment control group not treated with colchicine, callus was more severe than the treatment treated with colchicine to inhibit shoot induction. In addition, the treatment group treated with colchicine by concentration showed the highest shoot rate and chromosome doubling rate in the daily treatment of 300uM colchicine. As a result, it was confirmed that the treatment of 300 μM colchicine for 1 day was the most favorable condition for inducing chromosome doubling using callus and colchicine.

참억새 캘러스를 이용한 콜히친 처리 후의 염색체 배가 식물체 유도Induction of Chromosomal Doping Plants after Colchicine Treatment with Pampas Callus 라인line 콜히친 처리농도(uM)Colchicine Treatment Concentration ( u M) 콜히친 처리기간(일수)Colchicine Processing Period (Days) 처리한 캘러스의 수(개)Number of callus processed () 캘러스에서 발생한 신초 수(갯)Number of shoots in callus 배수성 검정한 식물체의 수(개)Number of plants tested for ploidy 염색체 배가
식물체의
수(개)
Chromosome doubling
Vegetative
several)
참억새




Pampas Grass




00 1

One

3333 1(3.0%)1 (3.0%) 22 00
300300 3333 6(18.2%)6 (18.2%) 1313 44 600600 3333 4(12.1%)4 (12.1%) 1313 99 00 2

2

3333 5(15.2%)5 (15.2%) 22 00
300300 3333 1(3.0%)1 (3.0%) -- -- 600600 3333 4(12.1%)4 (12.1%) 1One 00

3. 참억새 3. Pampas Grass 캘러스Callus 유래  origin 재분화체와With subdivided bodies 콜히친을 이용한 염색체 배가 식물체 유도 Induction of Chromosomal Dope Plants Using Colchicine

참억새(Miscanthus sinensis)의 성숙 종자로부터 캘러스의 재분화체를 유도하여, 콜히친을 농도별 처리, 4주 후 각각의 처리구에서 새롭게 발생된 분얼수를 조사하였고, 발생된 분얼들을 완전한 식물체로 분화시켜 그 중 일부를 유세포분석을 실시하여 염색체 배가 여부를 확인하였다 (표 6, 도 5). Pampas Grass ( Miscanthus) Induction of callus regeneration from mature seeds of sinensis ), 4 weeks after colchicine treatment, concentrations of newly generated water in each treatment were investigated. Analysis was performed to determine whether the chromosome doubled (Table 6, Figure 5).

콜히친을 처리하지 않은 대조구에서는 20%의 분얼 발생 효율을 나타냈으며, 콜히친 농도별 처리구에서는 200uM에서만 10%의 분얼 발생 효율을 나타냈다. 또한 발생된 분얼은 발근을 유도, 완전한 식물체로 분화시켜서 총 4개체를 획득하였고, 이를 유세포분석을 통하여 염색체 배가 여부를 확인한 결과 4개체 모두 염색체 배가 식물체로 나타났다 (도 6). 그러나 콜히친 400, 800uM 농도에서 분얼이 발생하지 않았으며 그 이유는 콜히친을 3일간 처리하여 처리기간이 너무 길었기 때문으로 생각된다. 그러므로 억새 유묘를 이용한 콜히친 처리 시에는 높은 농도로 장기간 처리하는 것보다는 낮은 농도로 장기간 처리하거나 높은 농도일 경우는 단기간 처리하는 것이 효율적임을 확인하였다.In the control group not treated with colchicine, the powder generation efficiency was 20%, and the colchicine treatment group showed 10% powder generation efficiency only at 200 uM. In addition, the generated powder was obtained by inducing rooting and differentiating into a complete plant to obtain a total of four individuals, and as a result of confirming whether the chromosome was doubled through flow cytometry, all four were chromosomal doubled plants (FIG. 6). However, no powdering occurred at the concentrations of colchicine 400 and 800 uM, which is thought to be because the treatment period was too long after three days of colchicine treatment. Therefore, it was confirmed that colchicine treatment with silver seedlings is more effective for long-term treatment at low concentration or for short-term treatment at higher concentration than for long-term treatment at high concentration.

참억새 캘러스 유래 재분화체를 이용한 콜히친 처리 후의 염색체 배가 식물체 유도Induction of Chromosome Doping Plants after Colchicine Treatment Using Callus Derivatives 콜히친 처리
농도(uM)
Colchicine treatment
Concentration ( uM )
처리한 식물체의 수(개)Number of plants treated 발생한 분얼의 수(개)Number of messages generated 배수성 검정한 식물체의 수(개)Number of plants tested for ploidy 염색체 배가
식물체의
수(개)
Chromosome doubling
Vegetative
several)
00 1010 22 44 00 200200 1010 1One 44 44 400400 1010 00 -- -- 800800 1010 00 -- --

4. 참억새 기내 4. Pampas Grass 유묘와With seedlings 콜히친을 이용한 염색체 배가 식물체 유도 Induction of Chromosomal Dope Plants Using Colchicine

참억새(Miscanthus sinensis)의 성숙 종자로부터 기내유묘를 유도하여, 콜히친을 농도별 처리, 4주 후 각각의 처리구에서 새롭게 발생된 분얼수를 조사하였고, 발생된 분얼들을 완전한 식물체로 분화시켜 그 중 일부를 유세포분석 실시하여 염색체 배가 여부를 확인하였다. 그 결과 400uM 처리구에서 1개체, 800uM 처리구에서 1개체를 획득하여 총 2개체의 염색체 배가 식물체를 확보하였다(표 7, 도 7).By inducing seedlings from mature seeds of Miscanthus sinensis , the colchicine was treated by concentration, and after 4 weeks, the number of newly produced cereals was examined in each treatment group, and the generated powders were differentiated into complete plants. Flow cytometry was performed to determine whether chromosome doubled. As a result, one individual was obtained from the 400 uM treatment group and one individual from the 800 uM treatment group to secure a total of two chromosomal doubling plants (Table 7, FIG. 7).

참억새 기내유묘를 이용한 콜히친 처리 후의 염색체 배가 식물체 유도Induction of Chromosomal Doping Plants after Colchicine Treatment Using Pampas Seedling 콜히친 처리 농도(uM)Colchicine concentration (u M) 처리한 식물체의 수(개)Number of plants treated 발생한 분얼의 수(개)Number of messages generated 배수성 검정한 식물체의 수(개)Number of plants tested for ploidy 염색체 배가
식물체의
수(개)
Chromosome doubling
Vegetative
several)
00 6060 2222 22 00 200200 6060 1515 99 00 400400 6060 1010 99 1One 800800 6060 1212 99 1One

실시예Example 3: 배수체 참억새의 배수성 게놈 조성 확인 3: Confirmation of Drainage Genome Composition of Drainage Pampas Grass

배수체 유도를 위하여 콜히친 처리된 참억새의 염색체의 배가 여부를 조사하기 위하여 염색체의 수적 변이를 염색체분석기인 유세포분석(Flow cytometric analysis, Partec GmbH, Munster, Germany)을 이용하여 염색체 배가 여부를 검정하였다. 염색체 배가 참억새 유도 방법별로 대조구 개체와 처리구 개체의 잎을 채취하여 유세포분석을 실시하였다 (표 8). To investigate the doubling of chromosomes of colchicine-treated Pampas oleracea for ploidy induction, chromosome doubling was assayed using flow cytometric analysis (Part cytometry, Partec GmbH, Munster, Germany). The chromosomal doubling was performed by flow cytometry analysis of leaves of control and treatment individuals for each method of induction of pampas grass (Table 8).

유세포분석을 통하여 참억새의 염색체를 정확히 확인할 수 있었다. 종자에 콜히친을 처리한 경우는 배수성 결과가 극히 적었으나 기내 종자 유래 캘러스에 처리한 후 신초를 유도한 경우 염색체 배가의 효율이 높았다. 또한 캘러스의 재분화체에 처리한 경우에도 배수체 유도율이 높았다. 무처리 대조구의 경우 모두 2n으로 나타났으나 배수체가 된 것은 2n과 4n 혹은 4n 조성의 염색체 배가 식물체를 획득하였다 (표 8). 또한 대조구에 비하여 염색체 배가 식물체는 초장이 더 길게 나타났으며 분얼수 또한 매우 증가한 것을 확인하였다 (도 8).Flow cytometry was able to accurately identify the chromosomes of Pampas grass. When the colchicine was treated with seed, the result of ploidy was very small, but the efficiency of chromosome doubling was high when the shoot was induced after treatment with the seed-derived callus. In addition, the induction rate of the drainage was high even when the callus was treated in the regeneration body. All of the untreated controls showed 2n, but the ploidy was obtained from chromosomal doubled plants with 2n and 4n or 4n composition (Table 8). In addition, compared to the control chromosomal doubling plants showed a longer elongation and the number of minutes was also found to increase significantly (Fig. 8).

참억새 염색체 배가 결과Pampas chromosome doubling results 일련
번호
series
number
콜히친 처리농도(uM)Colchicine Treatment Concentration (uM) 염색체수 및 게놈조성a Chromosome Number and Genome Composition a 염색체 배가여부b Chromosome doubling b 염색체 배가 방법Chromosome doubling method
M1M1 00 2n2n -- 캘러스를 이용한 콜히친 처리법Treatment of colchicine using callus M3M3 300300 4n4n oo M5M5 300300 4n4n oo M7M7 300300 4n4n oo M12M12 300300 4n4n oo M18M18 600600 4n4n oo M24M24 600600 4n4n oo M27M27 600600 4n4n oo M30M30 600600 6n6n oo M31M31 600600 4n4n oo M32M32 600600 4n4n oo M34M34 600600 4n4n oo M35M35 600 600 4n4n oo M36M36 600600 4n, 5n4n, 5n oo M40M40 00 2n2n -- 캘러스 유래 재분화체를 이용한 콜히친 처리법Colchicine Treatment Using Callus-derived Regeneration System M44M44 200200 2n, 4n2n, 4n oo M45M45 200200 4n4n oo M46M46 200200 2n, 4n2n, 4n oo M47M47 200200 4n4n oo MC01MC01 00 2n2n -- 종자를 이용한 콜히친 처리법Treatment of colchicine with seeds MC06MC06 100100 3n3n oo MC25MC25 400400 4n4n oo MC31MC31 00 2n2n -- 기내유묘를 이용한 콜히친 처리법Colchicine treatment using inflight seedlings MC45MC45 400400 4n4n oo MC58MC58 800800 4n4n oo a유세포분석기로 배수성 분석
b배수성 (o), 변화없음 (-)
Drainage analysis with a flow cytometer
b Drainage (o), no change (-)

Claims (13)

삭제delete 삭제delete 참억새(Miscanthus sinensis)의 배수체를 생산하는 방법에 있어서,
(1) 참억새 종자의 종피를 제거하는 단계;
(2) 상기 종자를 멸균하는 단계;
(3) 상기 종자를 캘러스(callus) 유도배지에서 배양하는 단계;
(4) 상기 유도된 캘러스를 캘러스 유지배지에서 계대 배양하여 캘러스를 선발하는 단계;
(5) 상기 선발된 캘러스에 300~600μM의 콜히친(colchicine)을 1~3일 동안 처리하여 체세포분열을 저지하는 단계;
(6) 상기 콜히친 처리된 캘러스를 멸균수로 수세한 후 캘러스 재분화 배지로 옮겨 신초(shoots)를 분화시키는 단계;
(7) 상기 분화된 신초(shoots)를 1/2MS 기본배지로 옮겨, 발근을 유도하는 단계; 및
(8) 상기 발근된 식물체를 화분에 옮겨 온실에서 키우는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 참억새의 배수체 생산 방법.
In the method of producing a drainage of Miscanthus sinensis ,
(1) removing the seed of the pampas grass seed;
(2) sterilizing the seed;
(3) culturing the seed in a callus induction medium;
(4) selecting the callus by culturing the induced callus in a callus holding medium;
(5) inhibiting somatic cell division by treating the selected callus with 300 to 600 μM of colchicine for 1 to 3 days;
(6) washing the colchicine treated callus with sterile water and transferring the callus regeneration medium to differentiate shoots;
(7) transferring the differentiated shoots to a 1 / 2MS base medium to induce rooting; And
(8) a method for producing a pampas drainage, comprising transferring the rooted plant to a pot and growing in a greenhouse.
삭제delete 제3항에 있어서, 상기 캘러스 유도배지는 1~3mg/L의 2,4-D 및 30 g/L의 서당을 포함하는 MS 배지인 것을 특징으로 하는 방법.The method of claim 3, wherein the callus induction medium is MS medium comprising 1 to 3 mg / L of 2,4-D and 30 g / L of sucrose. 삭제delete 제3항에 있어서, 상기 캘러스 재분화 배지는 1~3mg/L의 BA 및 30 g/L의 서당을 포함하는 MS 배지인 것을 특징으로 하는 방법. The method of claim 3, wherein the callus regeneration medium is characterized in that the MS medium containing 1-3 mg / L BA and 30 g / L Sucrose. 제3항에 따른 방법에 의해 생산된 배수체 참억새 식물. Drainage Pampas grass plant produced by the method according to claim 3. 제8항에 따른 배수체 참억새 식물의 종자. Seed of a Drainage Pampas Grass Plant according to claim 8. 제8항에 따른 배수체 참억새 식물의 화분.Pollen of drainage pampas grass plants according to claim 8. 제8항에 따른 배수체 참억새 식물의 배주.Distribution of drainage pampas grass plants according to claim 8. 제8항에 따른 배수체 참억새 식물로부터 생산된 바이오매스.Biomass produced from the Drainage Pampas grass plant according to claim 8. 삭제delete
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