KR101288587B1 - A method of mass production of growth factors secreted stem cells by circulating filtration system - Google Patents

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Abstract

본 발명은 줄기세포로부터 분비된 성장 인자(growth factor)의 대량 분리 및 농축 방법에 관한 것으로서, 보다 상세하게는 인간 중간엽 줄기세포의 배양물로부터 다수의 순환 필터 시스템을 이용하여 분리하고자 하는 성장 인자를 대량으로 신속하게 분리 및 농축할 수 있는 방법에 관한 것이다. 본 발명의 줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 분리 및 농축 방법에 따르면, 유전자 재조합 방법에 의하지 않고도 줄기세포 유래의 원하는 성장 인자를 다량으로 신속하게 분리 및 농축할 수 있는 효과가 있다.The present invention relates to a method for mass separation and concentration of growth factors secreted from stem cells, and more particularly, growth factors to be separated from a culture of human mesenchymal stem cells using a plurality of circulating filter systems. To a method for rapidly separating and concentrating a large quantity. According to the method for isolating and enriching growth factors secreted from stem cells of the present invention, there is an effect that can rapidly separate and concentrate a large amount of a desired growth factor derived from stem cells without using a genetic recombination method.

Description

줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 대량 분리 및 농축 방법{A METHOD OF MASS PRODUCTION OF GROWTH FACTORS SECRETED STEM CELLS BY CIRCULATING FILTRATION SYSTEM}Mass separation and concentration method of growth factor secreted from stem cells {A METHOD OF MASS PRODUCTION OF GROWTH FACTORS SECRETED STEM CELLS BY CIRCULATING FILTRATION SYSTEM}

본 발명은 줄기세포로부터 분비된 성장 인자(growth factor)의 대량 분리 및 농축 방법에 관한 것으로서, 보다 상세하게는 인간 중간엽 줄기세포의 배양물로부터 다수의 순환 필터 시스템을 이용하여 분리하고자 하는 성장 인자를 대량으로 신속하게 분리 및 농축할 수 있는 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a method for mass separation and concentration of growth factors secreted from stem cells, and more particularly, growth factors to be separated from a culture of human mesenchymal stem cells using a plurality of circulating filter systems. To a method for rapidly separating and concentrating a large quantity.

줄기세포란 특정한 세포로 분화가 진행되지 않은 채 유지되다가, 필요한 경우 신경, 혈액, 연골 등 신체를 구성하는 모든 종류의 세포로 분화할 능력을 가진 세포를 말한다. Stem cells are cells that have been differentiated into specific cells without progress and, if necessary, have the ability to differentiate into all kinds of cells constituting the body such as nerves, blood, and cartilage.

이러한 줄기세포를 얻을 수 있는 방법은 크게 두 가지가 있는데, 첫째는 수정란으로부터 발생한 배아로부터 얻는 것(배아줄기세포)이고 둘째는 성인이 된 우리 몸의 각 부분에 간직되어 있는 줄기세포(성체줄기세포)를 회수하는 것이다. 기능적인 면에서 차이는 있지만 배아줄기세포나 성체줄기세포는 모두 여러 종류의 세포로 분화할 수 있는 특징을 가지고 있다.There are two ways to obtain such stem cells, firstly from embryos derived from fertilized eggs (embryonic stem cells) and secondly from stem cells (adult stem cells) stored in each part of our adult body. ) Is recovered. Although functionally different, embryonic stem cells and adult stem cells are characterized by differentiation into various cell types.

배아줄기세포는 분화능력이 매우 뛰어나고 텔로머가 긴 장점이 있으나, 윤리적인 문제를 안고 있고 세포를 다량 획득하는 것이 어려운 단점이 있는 반면, 성체줄기세포는 세포수를 많이 얻을 수 있으나 타인에게 이식할 때 감염의 위험이나 분화능력이 상대적으로 떨어지는 단점을 가지고 있다.Embryonic stem cells have very good differentiation ability and long telomers, but they have ethical problems and difficult to obtain large amounts of cells, while adult stem cells can obtain a large number of cells but can be transplanted to others. When the risk of infection or differentiation capacity is relatively low.

상기한 단점에도 불구하고 성체줄기세포는 의학적으로 적용하기에 대단히 안전한 것이 특징이다. 구체적으로, 장기재생을 위해 몸 안에 이식하여도 암이 발생되지 않으며, 성인의 몸속에 있었기 때문에 면역거부반응이 발생하지 않아 자기 자신의 세포를 사용하는 자가 이식(autologous transplantation)이 가능하다.Despite the above disadvantages, adult stem cells are characterized by a very safe medical application. Specifically, cancer does not occur even when transplanted into the body for long-term regeneration, and since the immune rejection reaction does not occur because it is in an adult body, autologous transplantation using its own cells is possible.

또한, 주변조직의 특성에 자신을 맞추어 분화하는 조직 특이적 분화능력(site-specific differentiation)이 있고, 미분화 상태에서 주입하여도 암을 유발하지 않기 때문에 이식된 이후 당장 필요한 세포를 만들어내는 것 이외에도 나중에 필요한 미분화 상태의 줄기세포를 다시 만들어서 저장하는 자가 재생산(self-renewal) 능력이 있는 장점이 있다.In addition, there is a site-specific differentiation ability to differentiate itself according to the characteristics of the surrounding tissue, and since injection does not cause cancer even when injected in the undifferentiated state, in addition to producing the cells needed immediately after transplantation The advantage is the ability to self-renewal to regenerate and store the necessary undifferentiated stem cells.

상기한 장점에 따라 성체줄기세포는 최근에 그 중요성이 부각되어지고 있으며 성체줄기세포를 생체 내에서 구하기 위한 여러 가지 연구가 진행 중에 있다.
According to the above advantages, adult stem cells have been recently highlighted in importance, and various studies are being conducted to obtain adult stem cells in vivo.

또한, 최근 들어 생화학 및 분자생물학의 발전을 기반으로 우리 생체 내에 존재하는 소량의 신호물질(성장인자)들을 발견하게 되었으며 이를 기반으로 한 생체 노화이론이 재정립되고 있는 중이다(Stanley Cohen, Nobel Lecture 1986, Dec, 8). 또한 이 신호물질(성장인자)은 나이가 증가함에 따라 생체 내에서 감소하게 되는데 바로 이 성장인자의 감소가 우리의 노화와 밀접한 관계가 있다는 것이 밝혀지고 있다(Sporn M and Roberts A, Handbook of Experimental Pharmacology, Vol. 1, Vol. 95/1, 1990, Springer-Verlag, DE, Berlin., pp. 667-698).In addition, based on recent advances in biochemistry and molecular biology, small amounts of signal substances (growth factors) present in our living organisms have been discovered, and the biological aging theory based on them has been redefined (Stanley Cohen, Nobel Lecture 1986, Dec, 8). In addition, this signal substance (growth factor) decreases in vivo with increasing age, and it is revealed that this growth factor is closely related to our aging (Sporn M and Roberts A, Handbook of Experimental Pharmacology). , Vol. 1, Vol. 95/1, 1990, Springer-Verlag, DE, Berlin., Pp. 667-698).

따라서, 생체의 성장인자를 외부에서 공급하게 되면 생체의 노화를 억제할 수 있다는 것이 연구되고 있으며, 그 물질의 구체적인 효과에 대해서도 연구가 진행되고 있다(GE Pierce and TA Mustoe, Annu Rev Med, 46. 467-481(1995)). Therefore, it has been studied that the supply of growth factors of the living body can inhibit the aging of the living body, and the specific effects of the material are being studied (GE Pierce and TA Mustoe, Annu Rev Med, 46. 467-481 (1995).

구체적으로, 이 신호물질(성장인자)의 구조와 합성에 대한 연구가 진행되었지만 대부분의 성장인자는 단백질의 구조를 가지고 있으며, 그 구조가 3차원적으로 복잡하여 화학적으로 합성하는데 여러 가지 문제점이 발생되고 있으며, 그러한 합성에 들어가는 비용 또한 매우 고가인 것이 현실이다.
Specifically, studies on the structure and synthesis of this signaling material (growth factor) have been conducted, but most growth factors have a protein structure, and the structure is three-dimensionally complex, causing various problems in chemical synthesis. In reality, the cost of such synthesis is also very expensive.

이에 본 발명자들은 인체 내에서의 활성을 유지하면서 낮은 가격에 활성형의 인간 성장인자를 획득하는 방법에 대해서 연구하던 중 중간엽 줄기세포가 성장인자를 분비한다는 사실에 주목하기에 이르렀다(Rehman, J. et al., Circulation, 109: 1292 - 1298 (2004)).The present inventors came to pay attention to the fact that mesenchymal stem cells secrete growth factors while studying how to obtain an active human growth factor at a low price while maintaining activity in the human body (Rehman, J.). et al., Circulation, 109: 1292-1298 (2004)).

그러나, 중간엽 줄기세포에 관한 연구는 대부분 그 세포 자체를 이용하는 것이나 분화에 관한 연구가 있을 뿐 이를 이용한 성장인자의 합성법에 대한 방법에 대해서는 연구가 거의 전무한 상태였다.However, most of the studies on mesenchymal stem cells use the cells themselves, but there are few studies on differentiation, and there is almost no research on the method of synthesizing growth factors using them.

이와 같이 중간엽 줄기세포를 이용한 성장인자의 합성에 대한 연구가 미진한 것은 성체줄기세포의 활용 방법이 다른 세포로의 분화를 통한 이용에 그 초점이 맞춰져 있으며 줄기세포의 세포적 차이점에 대해서는 그 연구가 미진한 부분이 있었기 때문으로 판단된다.As such, studies on the synthesis of growth factors using mesenchymal stem cells have been insufficient. The method of using adult stem cells is focused on the differentiation of cells into different cells. We believe this was because of some incompleteness.

또한, 앞에서 기술한 것과 같이 성장인자를 합성한 방법에 대해서는 한국특허등록 제101436호“재조합된 사람의 내피세포성장인자의 제조방법”, 한국특허등록 제62551호 “유전자 재조합기술에 의한 인간상피 성장인자의 제조방법”, 한국특허공개 제2003-45032호 “생물학적으로 활성인 인간 산성 섬유아세포 성장인자의 제조방법과 맥관형성 촉진을 위한 그 용도” 등 유전자 재조합기술에 의한 성장인자의 제조방법에 대해서만 연구되어져 왔다.
In addition, as described above, the method for synthesizing the growth factor is described in Korean Patent Registration No. 101436, "Method of Manufacturing Recombinant Human Endothelial Growth Factor," and Korean Patent Registration No. 6625, "Generation of Human Epithelium by Genetic Recombination Technology." Method for the production of growth factors by genetic recombination technology, such as the method for preparing the factor ", Korean Patent Publication No. 2003-45032" The method for producing biologically active human acid fibroblast growth factor and its use for promoting angiogenesis " Has been studied.

이에 본 연구자는 중간엽 줄기세포를 통한 성장인자의 대량 생산 방법에 대해서 다년간 연구하였으며 그 성과로 줄기세포 배양물에 존재하는 원하는 성장인자의 크기에 주목하여 이를 다중 필터 시스템에 적용하는 방법을 개발하였다.Therefore, this researcher has studied the mass production method of growth factors through mesenchymal stem cells for many years, and developed the method of applying them to the multi-filter system by paying attention to the size of the desired growth factors in the stem cell culture. .

본 발명은 상기와 같은 종래 기술의 문제점을 해결하기 위하여 안출된 것으로서, 본 발명에서 해결하고자 하는 과제는 줄기세포 배양액 중에 존재하는 분리하고자 하는 성장 인자를 다수의 순환 필터 시스템을 사용하여 분리 및 농축하는 방법을 제공하고자 하는 것이다.The present invention has been made to solve the problems of the prior art as described above, the problem to be solved in the present invention is to isolate and concentrate the growth factors to be separated in the stem cell culture using a plurality of circulation filter system To provide a way.

상기 과제를 해결하기 위하여, 본 발명은 분리하고자 하는 성장 인자(growth factor)의 분자량을 데이터 베이스를 통하여 확인하고, 줄기세포를 계대 배양하여 줄기세포 배양물을 수득하고, 상기 줄기세포 배양물을 데이터 베이스로부터 확인된 분자량을 갖는 성장 인자가 통과될 수 있는 필터 직경을 갖는 제 1 필터 시스템에 통과시키고, 상기 제 1 필터 시스템을 통과한 줄기세포 배양물을 데이터 베이스로부터 확인된 분자량을 갖는 성장 인자가 통과될 수 없는 필터 직경을 갖는 제 2 필터 시스템에 통과시키고, 상기 제 2 필터 시스템의 필터 상에 여과되지 않고 잔존하는 분리하고자 하는 분자량을 갖는 성장 인자를 수거하는 것을 특징으로 하는 줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 분리 및 농축 방법을 제공한다.
In order to solve the above problems, the present invention is to check the molecular weight of the growth factor (growth factor) to be separated through a database, subcultured stem cells to obtain a stem cell culture, and the stem cell culture data A growth factor having a molecular weight identified from the database is passed through a first filter system having a filter diameter through which a growth factor having a molecular weight identified from the base can be passed through, and the stem cell culture passed through the first filter system. Passed through a second filter system having a filter diameter that cannot be passed, and collecting growth factors having a molecular weight to be separated that remain unfiltered on the filters of the second filter system. Provided are methods for separating and concentrating growth factors.

상기 성장 인자는 산성 섬유아세포 성장인자(acidic FGF), 염기성 섬유아세포 성장인자(basic FGF), 인슐인-유사 성장인자-1(IGF-1), 인슐린-유사 성장인자-2(IGF-2), 각질형성세포 성장인자(KGF), 혈소판유래 성장인자(PDGF), 형질전환 성장인자-알파(TGF-α), 형질전환 성장인자-베타(TGF-β), 맥관내피세포 성장인자(VEGF), 표피세포 성장인자(EGF), 신경세포 성장인자(NGF) 및 인터류킨-1 패밀리 9(IL-1-f9)으로 이루어지는 군으로부터 선택된다.The growth factors are acidic FGF, basic FGF, insulin-like growth factor-1 (IGF-1), insulin-like growth factor-2 (IGF-2). , Keratinocyte growth factor (KGF), platelet derived growth factor (PDGF), transforming growth factor-alpha (TGF-α), transforming growth factor-beta (TGF-β), vascular endothelial growth factor (VEGF) , Epidermal growth factor (EGF), neuronal growth factor (NGF) and interleukin-1 family 9 (IL-1-f9).

상기 데이터 베이스는 젠뱅크(GenBank) 및 엑스파시(ExPASy)인 것이 바람직하다.
Preferably, the database is GenBank and ExPASy.

상기 줄기세포는 중간엽 줄기세포일 수 있다.The stem cells may be mesenchymal stem cells.

상기 중간엽 줄기세포는 개체로부터 분리된 골수, 제대혈, 태반 조직 유래인 것이 바람직하다.The mesenchymal stem cells are preferably derived from bone marrow, cord blood, placental tissue isolated from the individual.

상기 줄기세포는 인간 유래일 수 있다.
The stem cells may be derived from humans.

상기 제 1 필터 시스템은 줄기세포가 통과될 수 없는 필터 직경을 갖는 필터 시스템 내지 데이터 베이스로부터 확인된 분자량을 갖는 성장 인자가 통과될 수 있는 필터 직경을 갖는 필터 시스템을 필터 직경이 감소하는 순서로 적용되는 수 개의 필터 시스템일 수 있다.The first filter system applies a filter system having a filter diameter through which stem cells cannot pass, or a filter system having a filter diameter through which a growth factor having a molecular weight identified from a database can be passed, in order of decreasing filter diameter. There may be several filter systems.

상기 수 개의 필터 시스템은 3 내지 4개의 필터 시스템으로 이루어지는 것이 바람직하다.The several filter systems preferably consist of three to four filter systems.

상기 수 개의 필터 시스템은 순환(circulating) 필터 시스템인 것이 바람직하다.
The several filter systems are preferably circulating filter systems.

상기 제 2 필터 시스템은 분리하고자 하는 성장 인자 분자량의 40~60% 크기의 입자가 통과될 수 있는 필터 직경을 갖는 것이 바람직하다.The second filter system preferably has a filter diameter through which particles of size 40 to 60% of the growth factor molecular weight to be separated can pass.

상기 제 1 필터 시스템과 제 2 필터 시스템은 순환 필터 시스템인 것이 바람직하다.Preferably, the first filter system and the second filter system are circulating filter systems.

본 발명의 줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 분리 및 농축 방법에 따르면, 유전자 재조합 방법에 의하지 않고도 줄기세포 유래의 원하는 성장 인자를 다량으로 신속하게 분리 및 농축할 수 있는 효과가 있다.According to the method for isolating and enriching growth factors secreted from stem cells of the present invention, there is an effect that can rapidly separate and concentrate a large amount of a desired growth factor derived from stem cells without using a genetic recombination method.

도 1은 본 발명의 줄기세포 유래의 성장 인자의 분리 및 농축 방법의 흐름도를 나타낸 것이다. 1 내지 3은 제 1 필터 시스템을 나타내고, 4는 제 2 필터 시스템을 나타낸다.
도 2는 본 발명의 필터 시스템을 보여주는 사진이다.
Figure 1 shows a flow chart of the method for isolation and concentration of growth factors derived from stem cells of the present invention. 1 to 3 represent a first filter system and 4 to a second filter system.
2 is a photograph showing a filter system of the present invention.

이하, 본 발명을 상세하게 설명한다.
Hereinafter, the present invention will be described in detail.

본 발명은 줄기 세포 배양 시, 자연적으로 분화가 되면서 외부로 생산되는 성장인자(growth factor)를 간단하게 농축하는 방법에 대한 것이다. 즉, 인공적으로 유전자 조작을 실시하여 생산되는 후보 물질이 아닌, 줄기 세포에서 자연적으로 생산되는 물질을 대량으로 신속 분리하는 방법에 대한 것이다.
The present invention relates to a method of simply concentrating a growth factor (growth factor) that is produced externally while being naturally differentiated in stem cell culture. That is, the present invention relates to a method for rapidly separating a large amount of a naturally produced material from stem cells, rather than an artificially produced candidate material.

따라서, 본 발명은 분리하고자 하는 성장 인자의 분자량을 데이터 베이스를 통하여 확인하고, 줄기세포를 계대 배양하여 줄기세포 배양물을 수득하고, 상기 줄기세포 배양물을 데이터 베이스로부터 확인된 분자량을 갖는 성장 인자가 통과될 수 있는 필터 직경을 갖는 제 1 필터 시스템에 통과시키고, 상기 제 1 필터 시스템을 통과한 줄기세포 배양물을 데이터 베이스로부터 확인된 분자량을 갖는 성장 인자가 통과될 수 없는 필터 직경을 갖는 제 2 필터 시스템에 통과시키고, 상기 제 2 필터 시스템의 필터 상에 여과되지 않고 잔존하는 분리하고자 하는 분자량을 갖는 성장 인자를 수거하는 것을 특징으로 하는 줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 분리 및 농축 방법을 제공한다.
Therefore, the present invention is to check the molecular weight of the growth factor to be separated through a database, subcultured stem cells to obtain a stem cell culture, the stem cell culture growth factor having a molecular weight identified from the database Is passed through a first filter system having a filter diameter through which the stem cell culture passed through the first filter system cannot pass through a growth factor having a molecular weight identified from the database. 2 passing through a filter system and collecting growth factors having a molecular weight to be separated that remain unfiltered on the filter of the second filter system, wherein the growth factor secreted from the stem cells is provided. do.

본 발명의 분리하고자 하는 성장인자는 줄기세포로부터 분비되는 것으로서, 의약 분야에 응용될 수 있는 것이라면 그 종류에 제한이 없다. 바람직한 성장인자의 예로는 산성 섬유아세포 성장인자(acidic FGF), 염기성 섬유아세포 성장인자(basic FGF), 인슐인-유사 성장인자-1(IGF-1), 인슐린-유사 성장인자-2(IGF-2), 각질형성세포 성장인자(KGF), 혈소판유래 성장인자(PDGF), 형질전환 성장인자-알파(TGF-α), 형질전환 성장인자-베타(TGF-β), 맥관내피세포 성장인자(VEGF), 표피세포 성장인자(EGF), 신경세포 성장인자(NGF) 또는 인터류킨-1 패밀리 9(IL-1-f9)이다.
The growth factor to be separated of the present invention is secreted from stem cells, and if it is applicable to the medical field, there is no limitation in its kind. Examples of preferred growth factors include acidic FGF, basic FGF, insulin-like growth factor-1 (IGF-1), insulin-like growth factor-2 (IGF-) 2), keratinocyte growth factor (KGF), platelet derived growth factor (PDGF), transforming growth factor-alpha (TGF-α), transforming growth factor-beta (TGF-β), endothelial cell growth factor ( VEGF), epidermal growth factor (EGF), neuronal growth factor (NGF) or interleukin-1 family 9 (IL-1-f9).

분리하고자 하는 성장인자를 선택한 후, 이를 분리하기 위하여 먼저 분리하고자 하는 성장인자의 물리적 특성, 예를 들어, 분자량(Mw), 등전점(pI) 등을 조사한다. 이때 사용되는 데이터 베이스는 예를 들어 젠뱅크(GenBank) 및 엑스파시(ExPASy)인 것이 바람직하다. 젠뱅크는 http://www.ncbi.nlm.nih.gov/로부터 접속가능하며, 엑스파시는 http://www.expasy.ch/로부터 접속가능하다.
After selecting the growth factor to be separated, first to investigate the physical properties of the growth factor to be separated, for example, molecular weight (Mw), isoelectric point (pI) and the like. At this time, it is preferable that the databases used are, for example, GenBank and ExPASy. Zenbank is accessible from http://www.ncbi.nlm.nih.gov/ and Expasi can be accessed from http://www.expasy.ch/.

상기 줄기세포는 중간엽 줄기세포일 수 있다. 상기 중간엽 줄기세포는 개체로부터 분리된 골수, 제대혈, 태반 조직 유래인 것이 바람직하다. 상기 줄기세포는 인간 유래일 수 있다.The stem cells may be mesenchymal stem cells. The mesenchymal stem cells are preferably derived from bone marrow, cord blood, placental tissue isolated from the individual. The stem cells may be derived from humans.

본 발명에 따른 중간엽 줄기세포는 인간의 골수, 지방, 제대혈, 태반 내에 존재하는 세포 중에서 정제과정을 거쳐서 수득하는 것이 가능하다. 각각의 조직의 특성에 따라 줄기세포를 추출하는 과정은 이미 국내외 특허와 논문을 통하여 당업자에게 주지의 사실이고, 현재는 인간 유래 중간엽 줄기세포를 연구용 목적으로 사용 가능한 세포주를 판매하고 있어, 쉽고 용이하게 중간엽 줄기세포를 얻을 수 있다.Mesenchymal stem cells according to the present invention can be obtained through the purification process among the cells present in human bone marrow, fat, umbilical cord blood, placenta. The process of extracting stem cells according to the characteristics of each tissue is already well known to those skilled in the art through domestic and foreign patents and papers. Mesenchymal stem cells can be obtained.

바람직한 하나의 구체예로서, 본 발명에서는 중간엽 줄기세포를 이용한 시험관 내에서의 배양에 사용되는 배지는 다음과 같다.In one preferred embodiment, the medium used in the culture in vitro using mesenchymal stem cells is as follows.

세포배양의 시작에 앞서 주지의 방법으로 공급원으로부터 추출한 생검 즉, 골수, 태반 등은 일반적인 항생제를 포함한 세척배지를 이용한 반복적인 세척과정을 통해 후속배양에 있을 오염의 가능성을 최소한으로 감소시킬 수 있다.Prior to the start of cell culture, biopsies extracted from the source in a known manner, ie, bone marrow, placenta, etc., can be minimized through repeated washing procedures with wash media containing common antibiotics to minimize the potential for contamination in subsequent cultures.

본 발명에서는 중간엽 줄기세포에서 성장인자의 최대 합성과 분비를 유도하도록 배양 배지를 최적화한다.In the present invention, the culture medium is optimized to induce maximum synthesis and secretion of growth factors in mesenchymal stem cells.

구체적으로, 중간엽 줄기세포의 시험관 내 배양은 혈청배지에서 배양한 다음 무혈청배지에서 계대배양하는 단계를 순차 진행함으로써 성장인자의 합성량을 극대화한다.Specifically, in vitro culturing of mesenchymal stem cells is carried out by culturing in serum medium and then subcultured in serum-free medium to maximize the synthesis of growth factors.

혈청을 포함한 초기단계 세포배양을 위한 배지는 중간엽 줄기세포와 같은 세포형을 유지하고 보관하는데 적합한 목적의 배지인 것이 바람직하다.The medium for the early stage cell culture, including serum, is preferably a medium for the purpose of maintaining and storing cell types such as mesenchymal stem cells.

본 발명에서는 당업계에서 일반적으로 세포배양에 사용하는 Dulbecco's Modified Eagle's Medium(DMEM)을 기본으로 하고, 세포배양에 통상적으로 사용되는 혈청을 포함한다.The present invention is based on Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM), which is generally used in cell culture in the art, and includes serum commonly used in cell culture.

이 때 초기 배지에 7~10%의 디메틸 술폭시드(DMSO ; dimethyl sulfoxide)를 첨가하면 동결 배지일 수도 있고, 따라서 줄기세포를 동결한 다음 필요한 경우 해동하여 사용할 수 있다.In this case, when 7-10% of dimethyl sulfoxide (DMSO) is added to the initial medium, the medium may be a freezing medium. Therefore, the stem cells may be frozen and then thawed if necessary.

혈청은 0.1 내지 20%의 소 태아 혈청(FBS)을 첨가하는 것이 바람직하고, 항생제, 항진균제 및 오염을 야기하는 마이코플라스마의 성장을 예방하는 시제를 첨가하는 것이 더욱 바람직하다.Serum is preferably added 0.1-20% fetal bovine serum (FBS), more preferably antibiotics, antifungals and reagents that prevent the growth of mycoplasma causing contamination.

항생제로는 페니실린-스트렙토마이신 등 통상 세포배양에 사용되는 항생제를 모두 이용가능하며, 항진균제로는 암포테리신 B, 마이코플라스마 억제제로는 타일로신을 이용하는 것이 바람직하며 젠타마이신, 시프로플록사신, 아지트로마이신 등으로 마이코플라스마 오염을 방지할 수 있으며, 필요에 따라 글루타민 등의 산화영양소와 소디움 피루베이트등 에너지 대사물질을 더 첨가할 수 있다.As antibiotics, all antibiotics commonly used in cell culture such as penicillin-streptomycin can be used, and antifungal agents include amphotericin B and tyrosine as a mycoplasma inhibitor, and gentamicin, ciprofloxacin, azithromycin, etc. It is possible to prevent mycoplasma contamination, and if necessary, oxidative nutrients such as glutamine and energy metabolites such as sodium pyruvate can be added.

더욱 바람직한 배지는 1~2mM 의 글루타민, 0.5~1mM 소디움 피루베이트, 0.1~10% FBS, 1% 항생제(100 IU/ml)로 보충된 글루코오스 및 DMEM을 함유하는데 이를 완전혈청배지라 한다. 이 때 글루코스의 농도범주는 대략적으로 1g/L ~ 4.5g/L이다. 상기 완전혈청배지는 지방유래 줄기세포의 보관과 유지 및 시험관내 안정된 기본배양조건을 제공해 주며 효과적인 세포의 안정화를 보여준다.More preferred medium contains 1-2 mM glutamine, 0.5-1 mM sodium pyruvate, 0.1-10% FBS, glucose supplemented with 1% antibiotic (100 IU / ml) and is called complete serum medium. At this time, the concentration range of glucose is approximately 1 g / L to 4.5 g / L. The complete serum medium provides storage and maintenance of adipose derived stem cells and stable basic culture conditions in vitro and shows effective cell stabilization.

초기 배양의 일반적 배양조건은 세포배양에 가장 적합한 조건을 적용하여 습도 90~95%, 온도 35~39℃, 5~10% CO2 배양기에서 배양하고, 5~10% CO2 배양 시에는 최종농도가 0.17~0.22 중량%가 되게 소디움 바이카보네이트 등의 탄소 조절원을 첨가해준다.In general culture conditions, the initial culture is the applying conditions suitable to 90-95% humidity, temperature 35 ~ 39 ℃, 5 ~ cultured in 10% CO 2 incubator, and 5 ~ 10% CO 2, the final concentration during culture in cell culture Add carbon control sources such as sodium bicarbonate such that is 0.17 to 0.22% by weight.

초기배양 단계동안 조직단편은 배양 용기 바닥에 부착된 상태를 유지시키는게 바람직하며, 세포 배양의 표준 기술에 따른 트립신-EDTA 처리로 인한 짧은 자극으로 성장을 촉진할 수 있다.During the initial culture step, the tissue fragments are preferably attached to the bottom of the culture vessel and can promote growth with short stimulation due to trypsin-EDTA treatment according to standard techniques of cell culture.

누적집단배증시간 (doubling time)은 플라스크 내 배양중인 세포가 75~85% 합류(confluence) 때까지 유지하고 바람직하게 80% 합류시기에 세포를 채취하여 계대배양을 한다.Cumulative population doubling time (doubling time) is maintained until 75-85% confluence of the cells in culture in the flask and preferably passaged by collecting the cells at 80% confluence.

또한 본 발명에서는 중간엽 줄기세포에서 성장인자의 분화를 촉진하는 성장인자 분화용 무혈청배지를 제공한다.In another aspect, the present invention provides a serum-free medium for differentiation of growth factors to promote differentiation of growth factors in mesenchymal stem cells.

성장인자 분화용 무혈청배지를 이용한 계대배양은 배양액을 제거한 플라스크를 인산화 완충 용액으로 세척하고 트립신-EDTA로 세포를 떨어뜨린 후 세포부유액을 원심분리하여 획득한 펠렛을 인산화 완충 용액으로 세척하는데 세척 과정은 2~3번 반복하는 것이 바람직하다. 세척된 펠렛은 본 발명에서 개발된 무혈청 배지에 의해 부유시키고 세포 배양 플라스크에 대략 3배로 계대시킨다.Passage culture using serum-free medium for differentiation of growth factors is performed by washing the flask from which the culture medium has been removed with phosphorylation buffer solution, dropping the cells with trypsin-EDTA, and centrifuging the cell suspension with the phosphorylation buffer solution. It is preferable to repeat 2 or 3 times. The washed pellet is suspended by serum-free medium developed in this invention and passaged approximately three times in cell culture flasks.

본 발명의 무혈청배지는 페놀 레드 등의 pH 지시약이 첨가되지 않은 DMEM을 기본으로 하고 Ham's F-12 영양소 혼합액(SIGMA, Cancer Research Vol 47, Issue 1 275-280)을 대략 1: 0.5 ~ 2의 비율로 첨가한다. 이때 L-글루타민 등의 산화영양원, 소디움 피루베이트 등의 에너지 대사물질, 소디움 바이카보네이트 등의 탄소조절원을 첨가하는 것이 가능하고, 그 외에 본 발명에서 목적하고자 하는 성장인자가 아닌 다른 성장인자들과 성장호르몬등도 첨가할 수 있다.Serum-free medium of the present invention is based on DMEM without a pH indicator such as phenol red and Ham's F-12 nutrient mixture (SIGMA, Cancer Research Vol 47, Issue 1 275-280) at approximately 1: 0.5-2. Add in proportions. At this time, it is possible to add an oxidative nutrient such as L-glutamine, an energy metabolite such as sodium pyruvate, and a carbon regulator such as sodium bicarbonate, and other growth factors other than the growth factor to be aimed at in the present invention. Growth hormones can also be added.

본 발명의 무혈청배지의 고유성은 Ham's F-12 영양소 혼합액에서 찾아볼 수 있다. 본 혼합액은 세포의 성장과 항상성 유지를 돕고 지방유래 줄기세포의 초기배양 후 후기배양에 있어 세포의 안정성과 유지력 증진에 관여되는 여러 가지의 무기질과 아미노산들, 중간엽 줄기세포에서 분비되는 성장인자의 더 높은 생산을 촉진할 수 있는 비타민 계열의 영양소들과 다른 인자들이 일정한 비율로 혼합하여 형성한다. 본 발명의 Ham's F-12 혼합액을 포함한 무혈청배지에서 중간엽 줄기세포의 배양과 성장인자의 생산력은 일반적인 동물혈청을 포함하고 있는 혈청배지의 조건과 비교하였을 경우 전혀 감소된 현상 혹은 부정적인 효과를 볼 수 없으며, 일부 성장인자는 무혈청 배지에서 더 높은 생산력을 보이며, 혈청에 의한 미지의 성분을 가진 혈청배지와는 달리 배양 배지의 모든 성분 함량을 확인할 수 있다.The uniqueness of the serum-free medium of the present invention can be found in Ham's F-12 nutrient mixture. This mixed solution is a growth factor secreted from various minerals and amino acids and mesenchymal stem cells that are involved in the growth and homeostasis of the cells and in promoting the stability and maintenance of the cells in the early and post-culture of adipose derived stem cells. Vitamin-based nutrients and other factors, which can promote higher production, are formed by mixing in proportions. In the serum-free medium containing Ham's F-12 mixed solution of the present invention, the production of mesenchymal stem cells and growth factor were not significantly reduced or negative when compared to the conditions of serum medium containing animal serum. Some growth factors show higher productivity in serum-free media and, unlike serum media with unknown components by serum, can identify all component contents of the culture medium.

이는 혈청배지에 포함된 동물혈청에서 올 수 있는 여러 가지 변수들을 최소화할 수 있음을 시사하는 것이고, 거의 50% 정도의 적은 비용으로 본 발명이 목적하는 효능을 달성할 수 있는 이점이 있다.
This suggests that various variables that can come from animal serum included in serum medium can be minimized, and the present invention can achieve the desired efficacy at a cost as low as about 50%.

본 발명의 필터 시스템 중 1 필터 시스템은 줄기세포가 통과될 수 없는 필터 직경을 갖는 필터 시스템 내지 데이터 베이스로부터 확인된 분자량을 갖는 성장 인자가 통과될 수 있는 필터 직경을 갖는 필터 시스템을 필터 직경이 감소하는 순서로 적용되는 수 개의 필터 시스템일 수 있다. 상기 수 개의 필터 시스템은 3 내지 4개의 필터 시스템으로 이루어지는 것이 바람직하다. 상기 수 개의 필터 시스템은 순환(circulating) 필터 시스템인 것이 바람직하다. 상기 순환이라 함은 본 발명의 필터 시스템 상에 세포 배양물을 통과시키고, 상기 필터를 보다 작은 직경을 갖는 필터로 교체한 후 처음의 여과물을 다시 여과하고, 이러한 과정을 반복하는 것을 말한다. 이와 같이 필터 직경을 순차적으로 감소시켜 순환식으로 세포 배양물을 필터링함으로써 원하는 성장 인자 및 그 이하의 분자량을 갖는 물질들만을 빠른 시간 내에 효율적으로 분리할 수 있다.One filter system of the present invention reduces the filter diameter to a filter system having a filter diameter through which stem cells cannot pass or a filter system having a filter diameter through which a growth factor having a molecular weight identified from a database can be passed. There may be several filter systems applied in the order of The several filter systems preferably consist of three to four filter systems. The several filter systems are preferably circulating filter systems. The circulation refers to passing the cell culture on the filter system of the present invention, replacing the filter with a filter having a smaller diameter, then filtering the first filtrate again, and repeating this process. As such, by sequentially decreasing the filter diameter and filtering the cell culture in a circular manner, only materials having a desired growth factor and a molecular weight of less than can be efficiently separated in a short time.

본 발명의 필터 시스템 중 제 2 필터 시스템은 분리하고자 하는 성장 인자 분자량의 40~60% 크기의 입자가 통과될 수 있는 필터 직경을 갖는 것이 바람직하다. 이와 같이 분리하기를 원하는 성장 인자의 분자량 보다 직경이 적은 크기를 갖는 필터를 채택함으로써 분리하고자 하는 성장인자보다 작은 크기의 분자량을 갖는 물질들을 효과적으로 제거할 수 있어 원하는 성장인자만을 효율적으로 농축하는 것이 가능하다.The second filter system of the filter system of the present invention preferably has a filter diameter through which particles of 40 to 60% of the growth factor molecular weight to be separated can pass. By adopting a filter having a diameter smaller than the molecular weight of the growth factor to be separated as described above, it is possible to effectively remove substances having a molecular weight smaller than the growth factor to be separated, thereby efficiently concentrating only the desired growth factor. Do.

본 발명의 필터 시스템에서 상기 제 1 필터 시스템과 제 2 필터 시스템은 순환 필터 시스템인 것이 바람직하다. 결과적으로, 수 개의 제 1 필터 시스템과 제 2필터 시스템은 필터 직경이 다른 필터를 사용함으로써 순환 시스템이 가능하게 된다.In the filter system of the present invention, the first filter system and the second filter system are preferably circulating filter systems. As a result, several first filter systems and a second filter system enable circulation systems by using filters having different filter diameters.

바람직한 하나의 구체예에 있어서, 본 발명의 필터 시스템은 QuixStandTM Systems(GE helthcare, USA)일 수 있다(도 2 참고). 상기 시스템은 한번에 최대 10L의 세포 배양물의 적용이 가능하고, 이로부터 농축되는 부피는 30~50ml 정도이다. 상기 시스템은 원하는 크기의 필터로 간편하게 교체할 수 있는 장점이 있어 본 발명의 순환 필터 시스템에 적당하다.
In one preferred embodiment, the filter system of the present invention may be QuixStand Systems (GE helthcare, USA) (see FIG. 2). The system is capable of applying up to 10 L of cell culture at a time, with a volume of about 30-50 ml. The system has the advantage of being easily replaced with a filter of a desired size, which is suitable for the circulating filter system of the present invention.

상술된 본 발명의 필터 시스템을 채택함으로써 알고 있는 분자량을 갖는 특정의 분리하고자 하는 성장 인자만을 빠르고 효율적으로 농축할 수 있다. By employing the filter system of the present invention described above, only the specific growth factor to be separated having a known molecular weight can be concentrated quickly and efficiently.

이하에서는 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세하게 설명한다.
Hereinafter, the present invention will be described in more detail by way of examples.

<< 실시예Example >>

1. 성장인자의 분자량 예측1. Molecular weight prediction of growth factor

EGF를 농축하기 위하여, GenBank Accession number, ExPASy를 이용한 추정된 등전점(pI)과 분자량(Mw)을 얻었다. EGF는 Accession number AAS83395, pI 4.78, Mw 6.2kDa이었다.
In order to concentrate the EGF, the estimated isoelectric point (pI) and molecular weight (Mw) using GenBank Accession number, ExPASy were obtained. EGF was Accession number AAS83395, pi 4.78, Mw 6.2kDa.

2. 줄기 세포 배양액 제조2. Stem Cell Culture Preparation

골수유래 중간엽 줄기세포 hMSC는, Human Mesenchymal stem cells (Cambrex, PT-2501)에서 구매하였고, 19세 건강한 남자의 골수로부터 분리된 세포였다.Bone marrow-derived mesenchymal stem cells hMSCs were purchased from Human Mesenchymal stem cells (Cambrex, PT-2501) and were isolated from the bone marrow of a 19 year old healthy male.

골수유래 중간엽 줄기세포의 초기 세포배양은 DMEM을 사용하며, 10% FBS를 첨가하여 사용하였다. 또한 항생제로 1% 페니실린-스트렙토마이신(100 IU/ml,GIBCO)을 첨가하였고, 항진균제로 암포테리신 B(0.5ug/ml, Amresco), 마이코플라스마 억제제로 타일로신(10ug/ml, Serva, Heidelberg), 2 mM 글루타민과 1mM 소디움 피루베이트를 더 첨가하였다. 배양조건은 습도 95%, 37℃, 5% CO2 배양기에서 배양하고, 5% CO2 배양시에는 최종농도가 0.17%가 되게 소디움 바이카보네이트를 첨가해 주었다.Initial cell culture of bone marrow-derived mesenchymal stem cells was performed using DMEM and 10% FBS was added. In addition, 1% penicillin-streptomycin (100 IU / ml, GIBCO) was added as an antibiotic, amphotericin B (0.5ug / ml, Amresco) as an antifungal agent, and tyrosine (10ug / ml, Serva, as a mycoplasma inhibitor. Heidelberg), 2 mM glutamine and 1 mM sodium pyruvate were further added. Culture conditions were incubated in a 95% humidity, 37 ℃, 5% CO 2 incubator, sodium bicarbonate was added to the final concentration of 0.17% in 5% CO 2 culture.

누적집단배증시간 (doubling time)은 플라스크 내 배양중인 세포가 80% 합류(confluence) 때까지 유지하고 80% 합류시기에 계대배양을 수행하였다.Cumulative population doubling time was maintained until 80% confluence of the cells in culture in the flask and passage was performed at 80% confluence.

계대배양은 배양액을 제거한 플라스크를 PBS로 세척하고 0.25% Trypsin-EDTA(GIBCO)로 세포를 떨어뜨린 후 세포 부유액을 원심분리한 다음, 세포수 측정과 viability 검사한 뒤 다시 3배로 계대배양 하였다. 계대배양시 사용한 무혈청배지는 페놀 레드 등의 pH 지시약이 첨가되지 않은 DMEM을 기본으로 하고 Ham's F-12 영양소 혼합액(SIGMA)을 1:1의 비율로 첨가하고, 2mM L-글루타민, 1mM 소디움 피루베이트를 첨가한 후 0.1 중량%가 되게 소디움 바이카보네이트를 첨가하여 사용하였으며, 상기 과정을 3번 반복하였다.Subculture was washed with PBS to remove the culture medium, the cells were dropped with 0.25% Trypsin-EDTA (GIBCO), centrifuged the cell suspension, and then subcultured three times after measuring the cell number and viability. Serum-free medium used for subculture was based on DMEM without the addition of pH indicators such as phenol red and Ham's F-12 nutrient mixture (SIGMA) in a ratio of 1: 1, 2 mM L-glutamine and 1 mM sodium pyruvate. After addition of the bait, sodium bicarbonate was added to 0.1 wt%, and the process was repeated three times.

세포수의 측정과 viability 검사는 0.1ml의 세포부유액과 동량의 0.2% trypan blue(SIGMA)를 혼합한 후 hemocytometer를 이용하여 현미경 시야에서 염색된 세포와 안 된 세포를 세어 전체 세포중의 백분율을 구하였다.
Cell number measurement and viability test were performed by mixing 0.1 ml of cell suspension with the same amount of 0.2% trypan blue (SIGMA), and counting the stained and missing cells in the microscope field using a hemocytometer to determine the percentage of total cells. It was.

3. 성장 인자 확인3. Identify growth factors

상기 2로부터의 배양액 1 ml을 1200g에서 5분 동안 원심분리한 뒤 0.22mm 필터로 여과하여 세포 잔여물을 여과한 뒤, 여과물을 단계별로 희석하여 비특이반응이 일어나지 않는 최적 조건을 설정한 뒤 샌드위치 ELISA kit(Quantikine Human FGF basic Immunoassay, R&D systems)를 이용하여 배양액에 분비된 EGF의 농도를 측정하였다. 측정된 농도는 250pg/ml이었다.
After centrifuging 1 ml of the culture medium from 2 for 5 minutes at 1200 g, filtered with a 0.22 mm filter to filter out the cell residues, and diluting the filtrate step by step to set the optimum conditions for nonspecific reactions. The concentration of EGF secreted in the culture was measured using a sandwich ELISA kit (Quantikine Human FGF basic Immunoassay, R & D systems). The measured concentration was 250 pg / ml.

4. 필터 4. Filter 시스템 상에서의System 성장 인자의 농축 Enrichment of growth factors

상기 2의 세포 배양 방법에 따른 세포 배양물 1L를 얻었다. 얻어진 세포 배양물을 GE 사의 QuixstandTM을 이용하여 필터링하였다. 본 기계의 장점은 목표로 하는 용액 내 물질을 분자량에 따라 빠른 속도로 정확성이 높게 분리, 농축할 수 있다는 것이다. 다양한 사이즈의 분자량을 구분할 수 있는 필터시스템을 구축할 수 있으므로, 본 발명에서 획득하고자 하는 물질을 분리, 농축하는데 효과적으로 사용할 수 있다. 1 L of cell culture according to the cell culture method of 2 was obtained. The resulting cell culture was filtered using Quixstand from GE. The advantage of this machine is that the material in the target solution can be separated and concentrated with high accuracy and at high speed depending on the molecular weight. Since it is possible to build a filter system that can distinguish the molecular weight of various sizes, it can be effectively used to separate and concentrate the material to be obtained in the present invention.

먼저 상층액을 회수하여 가장 크기가 큰 줄기 세포를 제거하고, 다양한 사이즈의 debri와 후보 물질을 상층액과 함께 분리한다. 다음으로 사이즈가 100 kDa 이상인 debri를 제거하고 그 이하의 debri와 후보 물질을 분리한다. 다음으로 사이즈가 20 kDa 이상인 debri를 제거하고 그 이하의 후보 물질을 분리한다. EGF의 경우 분자량이 6.2 kDa에 해당하므로 3 kDa 필터를 장착하여 여과시킨 후, 필터에 잔존하는 EGF 후보 물질을 20ml의 부피로 농축하였다.
First, the supernatant is recovered to remove the largest stem cells, and various sizes of debris and candidates are separated together with the supernatant. Next, debris of size 100 kDa or more are removed, and debris of less than that size and candidate material are separated. Next, debris with size greater than 20 kDa are removed and candidate material less than that is isolated. Since EGF has a molecular weight of 6.2 kDa, a 3 kDa filter was mounted and filtered, and the remaining EGF candidate material in the filter was concentrated to a volume of 20 ml.

이상의 설명은 본 발명의 기술사상을 예시적으로 설명한 것에 불과하며, 본 발명이 속하는 기술분야의 당업자라면 본 발명의 본질적인 특성에서 벗어나지 않는 범위에서 다양한 수정 및 변형을 할 수 있을 것이다.The above description is merely illustrative of the technical spirit of the present invention, and those skilled in the art to which the present invention pertains may make various modifications and changes without departing from the essential characteristics of the present invention.

또한, 본 명세서에 개시된 실시예는 본 발명의 기술사상을 한정하기 위한 것이 아니라 설명하기 위한 것이고, 이러한 실시예에 의하여 본 발명의 기술사상의 범위가 한정되는 것은 아니다.In addition, the embodiments disclosed herein are not intended to limit the technical spirit of the present invention but to explain, and the scope of the technical spirit of the present invention is not limited by these embodiments.

그러므로 본 발명의 보호범위는 하기 청구범위에 의하여 해석되어야 하며, 그와 동등한 범위 내에 있는 모든 기술사상은 본 발명의 권리범위에 포함되는 것으로 해석되어야 할 것이다. Therefore, the protection scope of the present invention should be interpreted by the following claims, and all technical ideas within the equivalent scope will be construed as being included in the scope of the present invention.

Claims (11)

분리하고자 하는 성장 인자(growth factor)의 분자량을 데이터 베이스를 통하여 확인하고, 줄기세포를 계대 배양하여 줄기세포 배양물을 수득하고, 상기 줄기세포 배양물을 데이터 베이스로부터 확인된 분자량을 갖는 성장 인자가 통과될 수 있는 필터 직경을 갖는 제 1 필터 시스템에 통과시키고, 상기 제 1 필터 시스템을 통과한 줄기세포 배양물을 데이터 베이스로부터 확인된 분자량을 갖는 성장 인자가 통과될 수 없는 필터 직경을 갖는 제 2 필터 시스템에 통과시키고, 상기 제 2 필터 시스템의 필터 상에 여과되지 않고 잔존하는 분리하고자 하는 분자량을 갖는 성장 인자를 수거하고,
상기 제 1 필터 시스템은 줄기세포가 통과될 수 없는 필터 직경을 갖는 필터 시스템 내지 데이터 베이스로부터 확인된 분자량을 갖는 성장 인자가 통과될 수 있는 필터 직경을 갖는 필터 시스템을 필터 직경이 감소하는 순서로 적용되는 수 개의 필터 시스템인 것을 특징으로 하는 줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 분리 및 농축 방법.
The molecular weight of the growth factor to be isolated (growth factor) is confirmed through a database, the stem cells are passaged to obtain a stem cell culture, and the stem cell cultures have a growth factor having a molecular weight identified from the database. Passing through a first filter system having a filter diameter that can be passed through, and a stem cell culture that has passed through the first filter system having a filter diameter such that a growth factor having a molecular weight identified from the database cannot be passed through Passing through a filter system and collecting the growth factors with the molecular weight to be separated which remain unfiltered on the filters of the second filter system,
The first filter system applies a filter system having a filter diameter through which stem cells cannot pass, or a filter system having a filter diameter through which a growth factor having a molecular weight identified from a database can be passed, in order of decreasing filter diameter. Method for isolation and concentration of growth factors secreted from stem cells, characterized in that several filter systems.
제 1항에 있어서, 상기 성장 인자는 산성 섬유아세포 성장인자(acidic FGF), 염기성 섬유아세포 성장인자(basic FGF), 인슐인-유사 성장인자-1(IGF-1), 인슐린-유사 성장인자-2(IGF-2), 각질형성세포 성장인자(KGF), 혈소판유래 성장인자(PDGF), 형질전환 성장인자-알파(TGF-α), 형질전환 성장인자-베타(TGF-β), 맥관내피세포 성장인자(VEGF), 표피세포 성장인자(EGF), 신경세포 성장인자(NGF) 및 인터류킨-1 패밀리 9(IL-1-f9)으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 것을 특징으로 하는 줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 분리 및 농축 방법.The method of claim 1, wherein the growth factor is acidic fibroblast growth factor (acidic FGF), basic fibroblast growth factor (basic FGF), insulin-like growth factor-1 (IGF-1), insulin-like growth factor- 2 (IGF-2), keratinocyte growth factor (KGF), platelet derived growth factor (PDGF), transforming growth factor-alpha (TGF-α), transforming growth factor-beta (TGF-β), endothelial vessels Secreted from stem cells, characterized in that it is selected from the group consisting of cell growth factor (VEGF), epidermal cell growth factor (EGF), neuronal growth factor (NGF) and interleukin-1 family 9 (IL-1-f9). Method of isolation and concentration of growth factors. 제 1항에 있어서, 상기 데이터 베이스는 젠뱅크(GenBank) 및 엑스파시(ExPASy)인 것을 특징으로 하는 줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 분리 및 농축 방법.The method of claim 1, wherein the database is GenBank and ExPASy. 제 1항에 있어서, 상기 줄기세포는 중간엽 줄기세포인 것을 특징으로 하는 줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 분리 및 농축 방법.The method of claim 1, wherein the stem cells are mesenchymal stem cells. 제 4항에 있어서, 상기 중간엽 줄기세포는 개체로부터 분리된 골수, 제대혈, 태반 조직 유래인 것을 특징으로 하는 줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 분리 및 농축 방법.The method of claim 4, wherein the mesenchymal stem cells are derived from bone marrow, umbilical cord blood, and placental tissue isolated from an individual. 제 4항 또는 제 5항에 있어서, 상기 줄기세포는 인간 유래인 것을 특징으로 하는 줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 분리 및 농축 방법.The method of claim 4 or 5, wherein the stem cells are derived from a human, characterized in that the method for separating and enriching growth factors secreted from stem cells. 삭제delete 제 1항에 있어서, 상기 수 개의 필터 시스템은 3 내지 4개의 필터 시스템으로 이루어지는 것을 특징으로 하는 줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 분리 및 농축 방법.The method of claim 1, wherein the several filter systems comprise three to four filter systems. 제 1항 또는 제 8항에 있어서, 상기 수 개의 필터 시스템은 순환(circulating) 필터 시스템인 것을 특징으로 하는 줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 분리 및 농축 방법.9. The method of claim 1 or 8, wherein said several filter systems are circulating filter systems. 제 1항에 있어서, 상기 제 2 필터 시스템은 분리하고자 하는 성장 인자 분자량의 40~60% 크기의 입자가 통과될 수 있는 필터 직경을 갖는 것을 특징으로 하는 줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 분리 및 농축 방법. The method of claim 1, wherein the second filter system is characterized in that the separation of the growth factor secreted from the stem cells, characterized in that having a filter diameter that can pass through the particles of the size of 40 to 60% of the molecular weight of the growth factor to be separated Way. 제 1항에 있어서, 상기 제 1 필터 시스템과 제 2 필터 시스템은 순환(circulating) 필터 시스템인 것을 특징으로 하는 줄기세포로부터 분비된 성장 인자의 분리 및 농축 방법.The method of claim 1, wherein the first filter system and the second filter system are circulating filter systems.
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