KR100599824B1 - A Novel Stress Resistance Protein Originated from Soybean a Gene Enconding the Same and Use Thereof - Google Patents

A Novel Stress Resistance Protein Originated from Soybean a Gene Enconding the Same and Use Thereof Download PDF

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Abstract

본 발명은 콩에서 유래된 저온 및/또는 염 저항성 단백질, 상기 단백질을 코딩하는 유전자, 상기 유전자를 함유하는 재조합벡터, 상기 재조합벡터로 형질전환된 미생물 및 상기 유전자로 형질감염된 저온 및/또는 염 저항성 식물에 관한 것이다.The present invention relates to a low temperature and / or salt resistant protein derived from soybean, a gene encoding the protein, a recombinant vector containing the gene, a microorganism transformed with the recombinant vector, and a low temperature and / or salt resistance transfected with the gene. It is about a plant.

본 발명에 따른 스트레스(저온 및 염) 저항성 유전자는 연구용뿐만 아니라 산업적으로 스트레스 저항성 형질전환 식물체를 제조하는데 유용하다.The stress (low temperature and salt) resistance genes according to the invention are useful for preparing stress resistant transgenic plants as well as for research.

콩, 저온, 염, 저항성, 스트레스, 형질전환 식물체Soybean, low temperature, salt, resistant, stress, transgenic plant

Description

콩 유래 신규 스트레스 저항성 단백질, 이를 코딩하는 유전자 및 그 용도{A Novel Stress Resistance Protein Originated from Soybean, a Gene Enconding the Same, and Use Thereof} A Novel Stress Resistance Protein Originated from Soybean, a Gene Enconding the Same, and Use Thereof}             

도 1은 저온 및 각종 스트레스를 처리한 콩으로부터 분리된 전체 RNA의 Northern blot 결과를 나타낸 것이다.1 shows Northern blot results of total RNA isolated from soybeans treated with low temperature and various stresses.

도 2는 본 발명에 따른 저온 저항성 유전자를 함유하는 재조합 벡터의 제작과정을 나타낸 것이다.Figure 2 shows the construction of a recombinant vector containing a low temperature resistant gene according to the present invention.

도 3은 본 발명에 따른 저온 저항성 유전자를 함유하는 재조합 전이벡터의 지도이다.3 is a map of a recombinant transition vector containing a low temperature resistant gene according to the present invention.

도 4는 형질전환된 대장균에서 발현된 저온 저항성 단백질의 전기영동(SDS-PAGE) 결과를 나타낸 것이다.Figure 4 shows the results of electrophoresis (SDS-PAGE) of cold-resistant protein expressed in transformed Escherichia coli.

도 5는 형질전환된 대장균에서 발현된 재조합 저온 저항성 단백질을 친화 크로마토그래피를 이용하여 정제한 사진이다.5 is a photograph of purified recombinant low temperature resistant protein expressed in transformed E. coli using affinity chromatography.

도 6은 초 저온에서 저온 저항성 유전자를 포함하고 있는 대장균(SLTI66)과 포함하고 있지 않는 대장균(vector)의 생존율을 비교분석한 결과이다. Figure 6 is a result of comparing the survival rate of E. coli (SLTI66) containing a low temperature resistant gene and E. coli (vector) that does not contain at a very low temperature.

도 7은 저항성 유전자를 포함하고 있는 대장균(SLTI66)과 포함하고 있지 않 는 대장균(vector)의 생존율을 염의 농도에 따른 OD값으로 비교분석한 결과이다.7 is a result of comparing and comparing the survival rate of E. coli (SLTI66) containing a resistance gene and E. coli (vector) not included in the OD value according to the concentration of salt.

본 발명은 콩에서 유래된 저온 및/또는 염 저항성 단백질, 상기 단백질을 코딩하는 유전자, 상기 유전자를 함유하는 재조합벡터, 상기 재조합벡터로 형질전환된 미생물 및 상기 유전자로 형질감염된 저온 및/또는 염 저항성 식물에 관한 것이다.The present invention relates to a low temperature and / or salt resistant protein derived from soybean, a gene encoding the protein, a recombinant vector containing the gene, a microorganism transformed with the recombinant vector, and a low temperature and / or salt resistance transfected with the gene. It is about a plant.

콩은 전세계적으로 볼 때, 다양한 기후환경에서 재배되고 있으며. 그러한 기후환경조건 중에서도 기온에 대한 영향을 가장 많이 받는 것으로 알려져 있다. 그 중에서도 저온에 의한 것으로 알려져 있다. 그래서 진화상으로 볼 때 식물은 그 환경적인 요인을 극복하기 위하여 그에 따르는 생존전략으로 그 환경에 적응하는 물질을 만들어 내면서 그에 따른 내성을 증가시켜 왔다. 주요 연구에 따르면 식물체에 있어서 저온의 영향은 원형질과 세포막 사이의 결빙에 의해 수분 포텐셜의 불균형으로 인한 세포내의 수분이 세포 밖으로 빠져나옴으로써 수분 결핍현상이 나타나는 것으로 알려져 있다. 이로 인하여 세포 결빙에 따른 조직의 기계적 파괴와 수분의 불균형으로 인한 세포의 대사작용에 영향을 줌으로서 식물체의 생장저해와 조직이 죽어가는 결과를 초래한다. Soybeans are grown in a variety of climates around the world. Among such climatic environmental conditions, it is known that it is most affected by temperature. Especially, it is known that it is due to low temperature. So in evolution, plants have increased their resistance by creating materials that adapt to their environment with their survival strategies to overcome their environmental factors. According to the main research, the effect of low temperature in the plant is known to be water deficiency phenomenon as the intracellular water escapes out of the cell due to the imbalance of the moisture potential by freezing between the plasma and the cell membrane. This affects the mechanical breakdown of tissues due to freezing of cells and the metabolism of cells due to the imbalance of moisture, resulting in the loss of plant growth and the death of tissues.

그러나 저온에 대한 저항성을 가지고 있는 식물체는 세포의 결빙으로 인한 기계적 파괴를 줄이고, 세포내 수분 포텐셜을 유지하는 능력을 높임으로서 세포내 수분결핍을 막아 정상적인 대사작용을 이어가는 것으로 알려져 있다. 이러한 저항성을 띠는 단백질을 만들어 내는 DNA가 많이 알려져 있으며, 그 종류 또한 다양하게 알려져 있다. 그러한 예로서 저온이나 수분부족에 의한 스트레스로 인한 유도되는 DNA로 KIN (cold inducible), LTI (low-temperature induced), COR (cold regulated), ERD(early responsive to dehydration) 및 RD (responsive to dehydration)가 알려져 있다. 또한 목화에서 발견된 후 여러가지 식물체 종에서 발견된 lea (late embryogenesis abundant) 단백질은 친수성 아미노산으로 이루어져 있으며, 스트레스 초반에 다량으로 유도되는 것으로 알려져 있다. 그리고 수분부족에 의해서도 다량 유도되어 세포막 부위에서 세포를 보호하는 것으로 알려져 있다. 그러나, 콩에서 저온 스트레스 저항성 단백질에 대한 보고는 거의 없다.However, plants that are resistant to low temperatures are known to continue normal metabolism by preventing intracellular water deficiency by reducing the mechanical breakdown caused by freezing of cells and increasing the ability to maintain intracellular water potential. There are many known DNAs that produce these resistant proteins, and their variety is also known. Examples of such DNA are cold inducible (KIN), low-temperature induced (LTI), cold regulated (COR), early responsive to dehydration (ERD), and responsive to dehydration (RD). Is known. In addition, lea (late embryogenesis abundant) protein, found in cotton and then in various plant species, is composed of hydrophilic amino acids and is known to be induced in large amounts early in stress. It is also known to protect cells at the cell membrane site by inducing a large amount due to lack of moisture. However, there are few reports of cold stress resistant proteins in soybeans.

이에, 본 발명자들은 콩의 스트레스(저온, 염)에 의하여 유도된 단편의 cDNA 유전자 라이브러리로부터 RACE PCR 기법을 통하여 스트레스 저항성 신규 유전자를 분리하고 상기 유전자를 재조합 대장균에서 발현시킨 다음, 분리정제된 재조합 단백질이 대장균에서 저온과 염에 내성을 나타내는 것을 검정함으로써 저온 및 염 스트레스에서 저항성을 띠는 유전자임을 확인하고 본 발명을 완성하게 되었다.Therefore, the present inventors isolated stress-resistant novel genes from the cDNA gene library of fragments induced by soybean stress (low temperature, salt) through RACE PCR technique and expressed the genes in recombinant E. coli, and then purified the recombinant protein. Assaying resistance to low temperature and salt in E. coli confirmed that the gene is resistant to low temperature and salt stress, and the present invention was completed.

본 발명의 주된 목적은 콩 유래 저온 스트레스 저항성 유전자 및 그 단백질을 제공하는데 있다. The main object of the present invention is to provide a soybean-derived low temperature stress resistance gene and its protein.                         

본 발명의 다른 목적은 상기 저온 저항성 유전자를 함유하는 재조합벡터 및 상기 재조합벡터로 형질전환된 미생물을 제공하는데 있다.Another object of the present invention is to provide a recombinant vector containing the low temperature resistance gene and a microorganism transformed with the recombinant vector.

본 발명의 또 다른 목적은 상기 유전자로 형질감염된 스트레스 저항성 식물을 제공하는데 있다.
Still another object of the present invention is to provide a stress resistant plant transfected with the gene.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 서열번호 2의 아미노산 서열을 가지는 저온 및/또는 염 저항성 단백질 및 이를 코딩하는 유전자(Gmslti66)를 제공한다. 본 발명에 있어서, 상기 유전자는 서열번호 1의 염기서열을 가지는 것을 특징으로 할 수 있고, 상기 유전자는 저온 및/또는 염 저항성 단백질을 코딩하는 것임을 특징으로 하는 할 수 있다.In order to achieve the above object, the present invention provides a low temperature and / or salt resistant protein having an amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 and a gene encoding the same ( Gmslti66 ). In the present invention, the gene may be characterized by having a nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1, the gene may be characterized in that for encoding a low temperature and / or salt resistance protein.

본 발명은 또한, 상기 유전자를 함유하는 재조합벡터 및 상기 재조합 벡터를 박테리아, 효모 및 곰팡이로 구성된 군에서 선택된 숙주세포에 도입하여 수득되는 형질전환된 미생물을 제공한다.The present invention also provides a recombinant vector containing the gene and a transformed microorganism obtained by introducing the recombinant vector into a host cell selected from the group consisting of bacteria, yeast and fungi.

본 발명에서, "벡터 (vector)"는 적합한 숙주 내에서 DNA를 발현시킬 수 있는 적합한 조절 서열에 작동가능하게 연결된 DNA 서열을 함유하는 DNA 제조물을 의미한다. 벡터는 플라스미드, 파지 입자, 또는 간단하게 잠재적 게놈 삽입물일 수 있다. 적당한 숙주로 형질전환되면, 벡터는 숙주 게놈과 무관하게 복제하고 기능할 수 있거나, 또는 일부 경우에 게놈 그 자체에 통합될 수 있다. 플라스미드가 현재 벡터의 가장 통상적으로 사용되는 형태이므로, 본 발명의 명세서에서 "플라스미드 (plasmid)" 및 "벡터 (vector)"는 때로 상호 교환적으로 사용된다. 본 발명의 목적상, 플라스미드 벡터를 이용하는게 바람직하다. 이러한 목적에 사용될 수 있는 전형적인 플라스미드 벡터는 (a) 숙주세포당 수백 개의 플라스미드 벡터를 포함하도록 복제가 효율적으로 이루어지도록 하는 복제 개시점, (b) 플라스미드 벡터로 형질전환된 숙주세포가 선발될 수 있도록 하는 항생제 내성 유전자 및 (c) 외래 DNA 절편이 삽입될 수 있는 제한효소 절단부위를 포함하는 구조를 지니고 있다. 적절한 제한효소 절단부위가 존재하지 않을지라도, 통상의 방법에 따른 합성 올리고뉴클레오타이드 어댑터(oligonucleotide adaptor) 또는 링커(linker)를 사용하면 벡터와 외래 DNA를 용이하게 라이게이션(ligation)할 수 있다. In the present invention, "vector" refers to a DNA preparation containing a DNA sequence operably linked to a suitable regulatory sequence capable of expressing DNA in a suitable host. The vector may be a plasmid, phage particles, or simply a potential genomic insert. Once transformed into the appropriate host, the vector can replicate and function independently of the host genome, or in some cases can be integrated into the genome itself. Since plasmids are the most commonly used form of current vectors, "plasmid" and "vector" are sometimes used interchangeably in the context of the present invention. For the purposes of the present invention, it is preferred to use plasmid vectors. Typical plasmid vectors that can be used for this purpose include (a) a replication initiation point that allows for efficient replication to include hundreds of plasmid vectors per host cell, and (b) host cells transformed with the plasmid vector. It has a structure comprising an antibiotic resistance gene and (c) a restriction enzyme cleavage site into which foreign DNA fragments can be inserted. Although no appropriate restriction enzyme cleavage site is present, the use of synthetic oligonucleotide adapters or linkers according to conventional methods facilitates ligation of the vector and foreign DNA.

라이게이션 후에, 벡터는 적절한 숙주세포로 형질전환 되어야 한다. 본 발명에 있어서, 선호되는 숙주세포는 원핵세포이다. 적합한 원핵 숙주세포는 E. coli DH5α, E. col JM101, E. coli K12, E. coli W3110, E. coli X1776, E. coli XL-1Blue(Stratagene), E. coli B, E. coli B21 등을 포함한다. 그러나 FMB101, NM522, NM538 및 NM539와 같은 E. coli 균주 및 다른 원핵생물의 종(speices) 및 속(genera)등이 또한 사용될 수 있다. 전술한 E. coli에 덧붙여, 아그로박테리움 A4와 같은 아그로박테리움 속 균주, 바실루스 섭틸리스(Bacillus subtilis)와 같은 바실리(bacilli), 살모넬라 타이피뮤리움(Salmonella typhimurium) 또는 세라티아 마르게센스(Serratia marcescens)와 같은 또 다른 장내세균 및 다양한 슈도모나스(Pseudomonas) 속 균주가 숙주세포로서 이용될 수 있다.After ligation, the vector should be transformed into the appropriate host cell. In the present invention, preferred host cells are prokaryotic cells. Suitable prokaryotic host cells include E. coli DH5α, E. col JM101, E. coli K12, E. coli W3110, E. coli X1776, E. coli XL-1Blue (Stratagene), E. coli B, E. coli B21, and the like. It includes. However, E. coli strains such as FMB101, NM522, NM538 and NM539 and other prokaryotic species and genera may also be used. In addition to the aforementioned E. coli , strains of the genus Agrobacterium, such as Agrobacterium A4, bacilli , such as Bacillus subtilis , Salmonella typhimurium or Serratia marghesen another variety of enteric bacteria and Pseudomonas (Pseudomonas) in strains such as marcescens) may be used as host cells.

원핵세포의 형질전환은 Sambrook et al., supra의 1.82 섹션에 기술된 칼슘 클로라이드 방법을 사용해서 용이하게 달성될 수 있다. 선택적으로, 전기천공법(electroporation)(Neumann et al., EMBO J., 1:841, 1982) 또한 이러한 세포들의 형질전환에 사용될 수 있다.Prokaryotic transformation can be readily accomplished using the calcium chloride method described in section 1.82 of Sambrook et al., Supra. Alternatively, electroporation (Neumann et al., EMBO J., 1: 841, 1982) can also be used for transformation of these cells.

본 발명에 따른 유전자의 과발현을 위하여 사용되는 벡터는 당업계에 공지된 발현 벡터가 사용될 수 있으며, pET 계열 벡터(Novagen)를 사용하는 것이 바람직하다. 상기 pET 계열 벡터를 사용하여 클로닝을 수행하면, 발현되는 단백질의 말단에 히스티딘기들이 결합되어 나오므로, 상기 단백질을 효과적으로 정제할 수 있다. 클로닝된 유전자로부터 발현된 단백질을 분리하기 위해서는 당업계에 공지된 일반적인 방법이 이용될 수 있으며, 구체적으로, Ni-NTA His-결합 레진(Novagen)을 사용하는 크로마토그래피 방법을 이용하여 분리할 수 있다. 본 발명에 있어서, 상기 재조합벡터는 pET-SLTI66인 것을 특징으로 할 수 있고, 상기 숙주세포는 대장균 또는 아그로박테리움인 것을 특징으로 할 수 있다.As the vector used for overexpression of the gene according to the present invention, an expression vector known in the art may be used, and it is preferable to use a pET family vector (Novagen). When the cloning is performed using the pET family vector, histidine groups are bound to the ends of the expressed protein, and thus the protein can be effectively purified. In order to separate the expressed protein from the cloned gene, a general method known in the art may be used, and specifically, it may be separated by a chromatographic method using Ni-NTA His-binding resin (Novagen). . In the present invention, the recombinant vector may be characterized in that the pET-SLTI66, the host cell may be characterized in that E. coli or Agrobacterium.

본 발명은 또한, 상기 형질전환된 미생물을 배양하는 것을 특징으로 하는 서열번호 2의 아미노산 서열을 가지는 저온 및/또는 염 저항성 단백질의 제조방법을 제공한다. 보다 구체적으로 본 발명은, (a) 서열번호 2의 아미노산 서열을 가지는 저온 저항성 단백질을 코딩하는 DNA 서열을 이 DNA 서열에 작동가능하게 연결되어(operatively linked) 그의 발현을 조절하는 하나 또는 그 이상의 발현 조절 서열(expression control sequence)을 포함하는 벡터에 삽입시키는 단계; (b) 이로부터 형성된 재조합 발현 벡터로 숙주를 형질전환시키는 단계; (c) 생성된 형질전환체를 상기 DNA 서열이 발현되도록 하기에 적절한 배지 및 조건하에서 배양하는 단계; (d) 배양물로부터 실질적으로 순수한 저온 저항성 단백질을 회수하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는, 저온 및/또는 염 저항성 단백질의 제조방법을 제공한다.The present invention also provides a method for producing a low temperature and / or salt resistant protein having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2, characterized in that the culture of the transformed microorganism. More specifically, the present invention provides a method of controlling the expression of (a) a DNA sequence encoding a low temperature resistant protein having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 operatively linked to the DNA sequence to regulate its expression Inserting into a vector comprising an expression control sequence; (b) transforming the host with a recombinant expression vector formed therefrom; (c) culturing the resulting transformants under medium and conditions appropriate for causing the DNA sequence to be expressed; (d) recovering the substantially pure low temperature resistant protein from the culture, the method for producing a low temperature and / or salt resistant protein.

본 발명에서 "발현 조절 서열 (expression control sequence)"이라는 표현은 특정한 숙주 생물에서 작동가능하게 연결된 코딩 서열의 발현에 필수적인 DNA 서열을 의미한다. 이러한 조절 서열은 전사를 실시하기 위한 프로모터, 그러한 전사를 조절하기 위한 임의의 오퍼레이터 서열, 적합한 mRNA 리보좀 결합 부위를 코딩하는 서열 및 전사 및 해독의 종결을 조절하는 서열을 포함한다. 예를 들면, 원핵생물에 적합한 조절 서열은 프로모터, 임의로 오퍼레이터 서열 및 리보좀 결합 부위를 포함한다. 진핵세포는 프로모터, 폴리아데닐화 시그날 및 인핸서가 이에 포함된다. 플라스미드에서 유전자의 발현 양에 가장 영향을 미치는 인자는 프로모터이다. 고 발현용의 프로모터로서 SRα 프로모터와 사이토메가로바이러스 (cytomegalovirus) 유래 프로모터 등이 바람직하게 사용된다. 본 발명의 DNA 서열을 발현시키기 위하여, 매우 다양한 발현 조절 서열중 어느 것이라도 벡터에 사용될 수 있다. 유용한 발현 조절서열에는, 예를 들어, SV40 또는 아데노바이러스의 초기 및 후기 프로모터들, lac 시스템, trp 시스템, TAC 또는 TRC 시스템, T3 및 T7 프로모터들, 파지 람다의 주요 오퍼레이터 및 프로모터 영역, fd 코드 단백질의 조절 영역, 3-포스포글리세레이트 키나제 또는 다른 글리콜분해 효소에 대한 프로모터, 상기 포스파타제의 프로모터들, 예를 들어, Pho5, 효모 알파-교배 시스템의 프로모터 및 원핵세포 또는 진핵 세포 또는 바이러스의 유전자 발현을 조절하는 것으로 알려진 기타 다른 서열 및 이들의 여러 조합이 포함된다. T7 프로모터는 대장균에서 본 발명의 단백질을 발현시키는데 유용하게 사용될 수 있다.The expression “expression control sequence” in the present invention means a DNA sequence essential for the expression of a coding sequence operably linked in a particular host organism. Such regulatory sequences include promoters for performing transcription, any operator sequence for regulating such transcription, sequences encoding suitable mRNA ribosomal binding sites, and sequences that control the termination of transcription and translation. For example, suitable control sequences for prokaryotes include promoters, optionally operator sequences, and ribosomal binding sites. Eukaryotic cells include promoters, polyadenylation signals, and enhancers. The factor that most influences the amount of gene expression in the plasmid is the promoter. As the promoter for high expression, an SRα promoter, a promoter derived from cytomegalovirus, and the like are preferably used. To express the DNA sequences of the invention, any of a wide variety of expression control sequences can be used in the vector. Useful expression control sequences include, for example, early and late promoters of SV40 or adenovirus, lac system, trp system, TAC or TRC system, T3 and T7 promoters, major operator and promoter regions of phage lambda, fd code protein Regulatory region of, promoter for 3-phosphoglycerate kinase or other glycolysis enzymes, promoters of the phosphatase such as Pho5, promoter of yeast alpha-crossing system and gene expression of prokaryotic or eukaryotic cells or viruses Other sequences known to modulate and various combinations thereof. The T7 promoter can be usefully used to express the proteins of the invention in E. coli.

핵산은 다른 핵산 서열과 기능적 관계로 배치될 때 "작동가능하게 연결 (operably linked)"된다. 이것은 적절한 분자 (예를 들면, 전사 활성화 단백질)은 조절 서열(들)에 결합될 때 유전자 발현을 가능하게 하는 방식으로 연결된 유전자 및 조절 서열(들)일 수 있다. 예를 들면, 전서열(pre-sequence) 또는 분비 리더 (leader)에 대한 DNA는 폴리펩타이드의 분비에 참여하는 전단백질로서 발현되는 경우 폴리펩타이드에 대한 DNA에 작동가능하게 연결되고; 프로모터 또는 인핸서는 서열의 전사에 영향을 끼치는 경우 코딩서열에 작동가능하게 연결되거나; 또는 리보좀 결합 부위는 서열의 전사에 영향을 끼치는 경우 코딩 서열에 작동가능하게 연결되거나; 또는 리보좀 결합 부위는 번역을 용이하게 하도록 배치되는 경우 코딩 서열에 작동가능하게 연결된다. 일반적으로, "작동가능하게 연결된"은 연결된 DNA 서열이 접촉하고, 또한 분비 리더의 경우 접촉하고 리딩 프레임 내에 존재하는것을 의미한다. 그러나, 인핸서 (enhancer)는 접촉할 필요가 없다. 이들 서열의 연결은 편리한 제한 효소 부위에서 라이게이션(연결)에 의해 수행된다. 그러한 부위가 존재하지 않는 경우, 통상의 방법에 따른 합성 올리고뉴클레오티드 어댑터 (oligonucleotide adaptor) 또는 링커(linker)를 사용한다. Nucleic acids are "operably linked" when placed in a functional relationship with other nucleic acid sequences. This may be genes and regulatory sequence (s) linked in such a way as to allow gene expression when appropriate molecules (eg, transcriptional activating proteins) bind to regulatory sequence (s). For example, the DNA for a pre-sequence or secretion leader is operably linked to the DNA for the polypeptide when expressed as a shear protein that participates in the secretion of the polypeptide; A promoter or enhancer is operably linked to a coding sequence when it affects the transcription of the sequence; Or the ribosomal binding site is operably linked to a coding sequence when it affects the transcription of the sequence; Or the ribosomal binding site is operably linked to a coding sequence when positioned to facilitate translation. In general, "operably linked" means that the linked DNA sequence is in contact, and in the case of a secretory leader, is in contact and present within the reading frame. However, enhancers do not need to touch. Linking of these sequences is performed by ligation (linking) at convenient restriction enzyme sites. If such sites do not exist, synthetic oligonucleotide adapters or linkers according to conventional methods are used.

본원 명세서에 사용된 용어 "발현 벡터"는 통상 이종의 DNA의 단편이 삽입된 재조합 캐리어 (recombinant carrier)로서 일반적으로 이중 가닥의 DNA의 단편을 의미한다. 여기서, 이종 DNA는 숙주 세포에서 천연적으로 발견되지 않는 DNA인 이형 DNA를 의미한다. 발현 벡터는 일단 숙주 세포내에 있으면 숙주 염색체 DNA와 무 관하게 복제할 수 있으며 벡터의 수 개의 카피 및 그의 삽입된 (이종) DNA가 생성될 수 있다.As used herein, the term “expression vector” generally refers to a fragment of DNA that is generally double stranded as a recombinant carrier into which fragments of heterologous DNA have been inserted. Here, heterologous DNA refers to heterologous DNA, which is DNA not naturally found in host cells. Once the expression vector is in a host cell, it can replicate independently of the host chromosomal DNA and several copies of the vector and the inserted (heterologous) DNA thereof can be produced.

당업계에 주지된 바와 같이, 숙주세포에서 형질감염 유전자의 발현 수준을 높이기 위해서는, 해당 유전자가, 선택된 발현 숙주 내에서 기능을 발휘하는 전사 및 해독 발현 조절 서열에 작동가능하도록 연결되어야만 한다. 바람직하게는 발현 조절서열 및 해당 유전자는 세균 선택 마커 및 복제 개시점 (replication origin)을 같이 포함하고 있는 하나의 발현 벡터 내에 포함되게 된다. 숙주세포가 진핵세포인 경우에는, 발현 벡터는 진핵 발현 숙주 내에서 유용한 발현 마커를 더 포함하여야만 한다.As is well known in the art, to raise the expression level of a transfected gene in a host cell, the gene must be operably linked to transcriptional and translational expression control sequences that function in the selected expression host. Preferably, the expression control sequence and the gene of interest are included in one expression vector including the bacterial selection marker and the replication origin. If the host cell is a eukaryotic cell, the expression vector must further comprise an expression marker useful in the eukaryotic expression host.

상술한 발현 벡터에 의해 형질전환 또는 형질감염된 숙주 세포는 본 발명의 또 다른 측면을 구성한다. 본원 명세서에 사용된 용어 "형질전환"은 DNA를 숙주로 도입하여 DNA가 염색체외 인자로서 또는 염색체 통합완성에 의해 복제 가능하게 되는 것을 의미한다. 본원 명세서에 사용된 용어 "형질감염"은 임의의 코딩 서열이 실제로 발현되든 아니든 발현 벡터가 숙주 세포에 의해 수용되는 것을 의미한다. Host cells transformed or transfected with the expression vectors described above constitute another aspect of the present invention. As used herein, the term “transformation” means introducing DNA into a host so that the DNA is replicable as an extrachromosomal factor or by chromosomal integration. As used herein, the term "transfection" means that the expression vector is accepted by the host cell whether or not any coding sequence is actually expressed.

물론 모든 벡터와 발현 조절 서열이 본 발명의 DNA 서열을 발현하는데 모두 동등하게 기능을 발휘하지는 않는다는 것을 이해하여야만 한다. 마찬가지로 모든 숙주가 동일한 발현 시스템에 대해 동일하게 기능을 발휘하지는 않는다. 그러나, 당업자라면 과도한 실험적 부담없이 본 발명의 범위를 벗어나지 않는 채로 여러 벡터, 발현 조절 서열 및 숙주 중에서 적절한 선택을 할 수 있다. 예를 들어, 벡터를 선택함에 있어서는 숙주를 고려하여야 하는데, 이는 벡터가 그 안에서 복제되어야 만 하기 때문이다. 벡터의 복제 수, 복제 수를 조절할 수 있는 능력 및 당해 벡터에 의해 코딩되는 다른 단백질, 예를 들어 항생제 마커의 발현도 또한 고려되어야만 한다. 발현 조절 서열을 선정함에 있어서도, 여러 가지 인자들을 고려하여야만 한다. 예를 들어, 서열의 상대적 강도, 조절가능성 및 본 발명의 DNA 서열과의 상용성 등, 특히 가능성있는 이차 구조와 관련하여 고려하여야 한다. 단세포 숙주는 선정된 벡터, 본 발명의 DNA 서열에 의해 코딩되는 산물의 독성, 분비 특성, 단백질을 정확하게 폴딩시킬 수 있는 능력, 배양 및 발효 요건들, 본 발명 DNA 서열에 의해 코딩되는 산물을 숙주로부터 정제하는 것의 용이성 등의 인자를 고려하여 선정되어야만 한다. 이들 변수의 범위내에서, 당업자는 본 발명의 DNA 서열을 발효 또는 대규모 동물 배양에서 발현시킬 수 있는 각종 벡터/발현 조절 서열/숙주 조합을 선정할 수 있다. 발현 클로닝에 의해 본 발명에 따른 단백질의 cDNA를 클로닝하려고 할 때의 스크리닝법으로서 바인딩법(binding법), 페닝법(panning법), 필름에멀션법(film emulsion 법)등이 적용될 수 있다.Of course, it should be understood that not all vectors and expression control sequences function equally in expressing the DNA sequences of the present invention. Likewise not all hosts function equally for the same expression system. However, those skilled in the art can make appropriate choices among various vectors, expression control sequences and hosts without departing from the scope of the present invention without undue experimental burden. For example, in selecting a vector, the host must be taken into account because the vector must be replicated in it. The number of copies of the vector, the ability to control the number of copies, and the expression of other proteins encoded by the vector, such as antibiotic markers, must also be considered. In selecting expression control sequences, several factors must be considered. For example, the relative strength of the sequence, the controllability, and the compatibility with the DNA sequences of the present invention should be considered, particularly with regard to possible secondary structures. Single cell hosts may be selected from a host for the selected vector, the toxicity of the product encoded by the DNA sequence of the invention, the secretory properties, the ability to accurately fold the protein, the culture and fermentation requirements, the product encoded by the DNA sequence of the invention from the host. It should be selected in consideration of factors such as the ease of purification. Within the scope of these variables, one skilled in the art can select a variety of vector / expression control sequence / host combinations capable of expressing the DNA sequences of the invention in fermentation or large scale animal culture. As a screening method when cloning the cDNA of a protein according to the present invention by expression cloning, a binding method (binding method), a panning method, a film emulsion method and the like can be applied.

본 발명의 정의상 "실질적으로 순수한"이란 본 발명에 따른 단백질 및 이를 코딩하는 DAN 서열이 박테리아로부터 유래된 다른 단백질을 실질적으로 포함하지 않는 것을 의미한다.By "substantially pure" in the definition of the present invention is meant that the protein according to the invention and the DAN sequence encoding it are substantially free of other proteins derived from bacteria.

본 발명은 또한, 상기 유전자로 형질감염된 저온 및/또는 염 저항성 식물을 제공한다. 식물체의 형질감염은 아그로박테리움이나 바이러스 벡터 등을 이용한 통상의 방법에 의해 달성할 수 있다. 예컨대, 본 발명에 따른 유전자를 함유하는 재조합벡터로 아그로박테리움 속 미생물을 형질전환시킨 다음, 상기 형질전환된 아그 로박테리움 속 미생물을 대상 식물의 조직 등에 감염시켜 형질감염된 식물을 수득할 수 있다. 보다 구체적으로, (a) 대상 식물의 외식체(explant)를 전 배양(pre-culture)한 다음, 이를 상기 형질전환된 아그로박테리움과 공동배양하여 형질감염시키는 단계; (b) 형질감염된 외식체를 캘러스 유도배지에서 배양하여, 캘러스를 수득하는 단계; 및 (c) 수득된 캘러스를 절단하고, 이를 신초 유도배지에서 배양하여 신초를 형성시키는 단계를 거쳐 형질감염된 식물을 제조할 수 있다. The present invention also provides low temperature and / or salt resistant plants transfected with the gene. Transfection of plants can be achieved by conventional methods using Agrobacterium, viral vectors and the like. For example, after transforming the microorganism of the genus Agrobacterium with a recombinant vector containing a gene according to the present invention, the transformed Agrobacterium microorganisms can be infected by tissues of the target plant, etc. to obtain a transfected plant. . More specifically, (a) pre-culture the explant of the plant (preplant), and then transfected by co-culture with the transformed Agrobacterium; (b) culturing the transfected explants in a callus induction medium to obtain callus; And (c) cutting the obtained callus, and culturing it in shoot induction medium to form shoots, thereby producing a transfected plant.

본 발명에서 '외식체(explant)'라 함은 식물체에서 잘라낸 조직의 절편을 말하는 것으로, 자엽(cotyledon) 또는 하배축(hypocotyl)을 포함한다. 본 발명의 방법에 사용되는 식물의 외식체로는 자엽 또는 하배축을 사용할 수 있으며, 식물의 종자를 소독하고 세척한 후, MS 배지에서 발아시켜 얻은 자엽을 사용하는 것이 보다 바람직하다. In the present invention, the term "explant" refers to a slice of tissue cut out of a plant, and includes cotyledon or hypocotyl. The explants of the plant used in the method of the present invention may be cotyledons or hypocotyls, it is more preferable to use the cotyledons obtained by germinating in MS medium after disinfecting and washing the seeds of the plants.

본 발명에서 이용가능한 형질감염 대상 식물로는 담배, 토마토, 고추, 콩, 벼, 옥수수 등을 들 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 또한, 형질전환에 사용되는 식물이 유성번식 식물이라 할지라도, 조직배양 등에 의해 무성적으로 반복생식 시킬 수 있다는 것은 당업자에게 자명하다 할 것이다.Transfection target plants usable in the present invention include, but are not limited to, tobacco, tomatoes, peppers, beans, rice, corn, and the like. In addition, even if the plant used for transformation is a sexually propagating plant, it will be apparent to those skilled in the art that it can be repeatedly reproduced by tissue culture or the like.

본 발명에 의하여 밝혀진 유전자는 lea DNA의 특징을 가지는 것으로서 저온과 염 스트레스에 의해서 다량으로 유도되는 DNA로, 지금까지 알려진 것과 달리, 식물체에서 저온이나 다른 스트레스에 강한 저항성을 나타내는 것을 재조합 대장균에서 밝혔으며, 실질적으로 다른 식물체에 적용하여 스트레스 저항성 식물체를 제 조하는데 산업적으로 유용하다.The gene revealed by the present invention is a DNA having a characteristic of lea DNA, which is induced in a large amount by low temperature and salt stress. Unlike so far, it is revealed in recombinant E. coli that exhibits strong resistance to low temperature or other stress in plants. It is industrially useful for producing stress resistant plants by applying them to practically other plants.

이하 본 발명을 실시예에 의하여 더욱 상세하게 설명한다. 이들 실시예는 단지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 국한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 자명할 것이다.Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples. These examples are only for illustrating the present invention in more detail, it will be apparent to those skilled in the art that the scope of the present invention is not limited to these examples.

실시예 1: 콩 유래 스트레스 저항성 유전자의 염기서열 및 아미노산 서열분석Example 1: Nucleotide sequence and amino acid sequence analysis of soybean-derived stress resistance gene

생육상에서 3주 이상 키운 콩에 스트레스와 스트레스를 가하지 않은 잎에서 poly(A+) mRNA를 추출한 다음, PCR-Select cDNA Subtraction(Clontech 사)을 이용하여 스트레스(저온, 염)에 의해서만 발현되는 단편의 cDNA를 확보하였다. 확보된 cDNA를 subcloning 벡터인 pCR2.1 (Invitrogen 사)에 클로닝한 다음, plasmid purification kit (NucleoGen 사 구입)를 이용하여 플라스미드 DNA를 분리하였다. 염기서열 분석은 마크로젠에 의뢰하여 수행하였다. 염기서열 분석결과를 토대로 RACE PCR를 통하여 전체 염기서열을 분석하였다. 그 결과, 본 발명에 따른 스트레스 저항성 유전자의 cDNA는 전체 270bp의 염기서열(서열번호 1)로 구성되어 있었고, 이를 연역한 결과, 의해 90개의 아미노산(서열번호 2)으로 구성되어 있었다. NCBI, GenBank, EMBL 및 SwissProt databases에서 제공된 DNASIS 및 BLAST 프로그램을 통해 비교·조사한 결과, 상기 염기서열 및 아미노산 서열은 저온 저항성에 관한 새로운 유전자(Gmslti66)로 판명되었다. Poly (A +) mRNA was extracted from stressed and unstressed leaves in soybeans grown for 3 weeks or longer, and then cDNA expressed only by stress (cold, salt) using PCR-Select cDNA Subtraction (Clontech). Secured. The obtained cDNA was cloned into pCR2.1 (Invitrogen), which is a subcloning vector, and plasmid DNA was isolated using a plasmid purification kit (purchased by NucleoGen). Sequencing was performed by requesting macrogen. Based on the sequencing results, the entire nucleotide sequence was analyzed by RACE PCR. As a result, the cDNA of the stress resistance gene according to the present invention was composed of a total of 270 bp nucleotide sequence (SEQ ID NO: 1), and deduced it, it was composed of 90 amino acids (SEQ ID NO: 2). As a result of comparison and investigation through DNASIS and BLAST programs provided by NCBI, GenBank, EMBL and SwissProt databases, the nucleotide sequence and amino acid sequence were found to be a new gene for low temperature resistance ( Gmslti66 ).

실시예 2: 저온 저항성 유전자의 발현Example 2: Expression of Low Temperature Resistance Genes

생육상에서 3주 이상 재배한 콩에 각종 스트레스와 호르몬 그리고 3일, 7일째되는 seedling을 떡잎과 줄기를 분리하여 전체 RNA를 HOT 페놀법을 이용하여 분리하였다. 분리한 전체 RNA를 1.0% 포름알데히드 겔 (formaldehyde gel)에 전기영동한 후, 겔을 20×SSC 용액 (3M NaCl, 0.3M sodium citrate)으로 나일론 막 (Schleicher & Schuell 사)에 전이시키고 방사성 동위원소 [α-32P]dCTP로 표식된 저온 저항성 유전자(270bp cDNA)를 탐침으로 하여 Northern blot 분석을 수행하였다.Soybeans grown for more than 3 weeks in growth were subjected to various stresses, hormones, and seedlings on the 3rd and 7th days, and the total RNA was separated by HOT phenol method. The whole RNA was electrophoresed on 1.0% formaldehyde gel, and then the gel was transferred to a nylon membrane (Schleicher & Schuell) with 20 × SSC solution (3M NaCl, 0.3M sodium citrate) and radioisotope. Northern blot analysis was performed using a low temperature resistance gene (270 bp cDNA) labeled with [α- 32 P] dCTP as a probe.

그 결과, 잎에서 각종 스트레스 중 저온 (5℃) 24시간(LT 24hr), 염 6시간(NaCl 6hr), 한발 24시간(Dr 24hr) 및 호르몬 처리에 있어서는 ABA 6시간(ABA 6hr)에서 전사체를 확인할 수 있었고, 조직 특이적으로는 seedling의 떡잎에서만 전사체를 확인할 수 있었다 (도 1). 이 결과로부터 본 발명에 따른 저온 저항성 유전자는 일부 스트레스와 호르몬(ABA) 그리고 조직 특이적으로 발현된다는 것을 확인할 수 있었다. As a result, transcripts at low temperature (5 ° C) 24 hours (LT 24hr), salt 6 hours (NaCl 6hr), drought 24 hours (Dr 24hr), and ABA 6 hours (ABA 6hr) for hormone treatment in leaves. The transcripts were confirmed only in the cotyledon of seedling as tissue specificity (FIG. 1). From this result, it was confirmed that the low temperature resistance gene according to the present invention is expressed in some stress and hormone (ABA) and tissue-specific.

실시예 3: 재조합 대장균에서 스트레스 저항성 단백질의 발현Example 3: Expression of Stress Resistant Proteins in Recombinant Escherichia Coli

대장균에서도 저온이나 염의 농도에 따라 저항성을 띠는 지를 알아보기 위하여 상기 실시예 1에서 분리된 저온 저항성 유전자를 대장균 발현 벡터중 pET42a (Novagen 사)에 삽입하였다. 상기 유전자 cDNA와 발현벡터 pET42a를 각각 제한효소 EcoRⅠ과 HindⅢ로 처리한 다음, 라이게이션하여 재조합 전이벡터 pET-SLTI66를 제작하였다 (도 2 및 도 3). 상기 재조합 전이벡터는 T7 프로모터와 IPTG 조절하에 재조합 융합 단백질 발현의 발현이 유도되는 특성을 가지고 있다.In order to determine whether E. coli is resistant to low temperature or salt concentration, the low temperature resistant gene isolated in Example 1 was inserted into pET42a (Novagen) of the E. coli expression vector. The gene cDNA and the expression vector pET42a were treated with restriction enzymes Eco Ri and Hind III, respectively, and then ligated to construct a recombinant transfer vector pET-SLTI66 (FIGS. 2 and 3). The recombinant transfer vector has a characteristic of inducing expression of recombinant fusion protein expression under the control of the T7 promoter and IPTG.

콩의 저온 저항성 유전자를 대장균에서 발현하기 위하여, 상기 재조합 전이벡터 pET-SLTI66 5㎍를 대장균 BL21 50㎍에 온도충격(42℃)으로 삽입하여 형질전환된 대장균을 제작하였다. 상기 형질전환된 대장균을 가나마이신 50㎍/ml이 들어있는 LB (Luria-Bertani) 액체 배지에 1시간 배양한 다음, LB-Kana 고체배지에 도말하여 37℃에 16시간 이상 배양하였다. 배양결과로 확보된 균을 LB-Kana 50ml 액체배지에서 OD 0.6 (1.0 × 106 cell)까지 배양한 후, 0.5mM IPTG를 첨가하고 28℃에서 3시간 동안 배양하였다.In order to express the low temperature resistant gene of soybean in E. coli, transformed E. coli was prepared by inserting 5 μg of the recombinant transfer vector pET-SLTI66 into 50 μg of E. coli BL21 at a temperature shock (42 ° C.). The transformed Escherichia coli was cultured in LB (Luria-Bertani) liquid medium containing 50 µg / ml of kanamycin for 1 hour, and then plated in LB-Kana solid medium and cultured at 37 ° C. for 16 hours or more. The resulting bacteria were incubated to OD 0.6 (1.0 × 10 6 cells) in LB-Kana 50ml liquid medium, 0.5mM IPTG was added and incubated for 3 hours at 28 ℃.

배양 후 3000rpm에서 5분간 원심분리하여 세포를 모은 후, 50mM Tris-HCl (pH 8.0) 완충용액을 1.7ml 넣고 세포 파쇄기를 이용하여 세포를 파괴한 후 5000rpm에서 5분간 원심분리 하였다. 원심분리 후 상층액을 분리하여 다시 12,000rpm에서 10분동안 원심분리 후 수용성 단백질과 비 수용성 단백질을 분리하여 12% SDS-단백질 전기영동 (Laemmli, Nature, 227:680, 1970)을 수행하여 재조합 융합 저온 저항성 단백질 발현을 분석하였다 (도 4 및 도 5). 그 결과, 도 5에 나타난 바와 같이, 약 43kDa 재조합 융합 단백질 밴드를 확인할 수 있었다. 레인 4내지 6은 각각 전체 단백질, 수용성 단백질, 비 수용성 단백질을 나타낸다.After incubation, cells were collected by centrifugation at 3000 rpm for 5 minutes, and then 1.7 ml of 50 mM Tris-HCl (pH 8.0) buffer was added. The cells were disrupted using a cell crusher and centrifuged at 5000 rpm for 5 minutes. After centrifugation, the supernatant was separated and again centrifuged at 12,000 rpm for 10 minutes to separate the water-soluble and non-water-soluble proteins, followed by 12% SDS-protein electrophoresis (Laemmli, Nature, 227: 680, 1970) to perform recombinant fusion. Cold resistant protein expression was analyzed (FIG. 4 and FIG. 5). As a result, as shown in Figure 5, about 43kDa recombinant fusion protein bands could be confirmed. Lanes 4 to 6 represent total protein, water soluble protein and non water soluble protein, respectively.

실시예 4: 저온 저항성 유전자를 함유하는 재조합 대장균에서 저온 저항성과 염의 내성 측정Example 4 Determination of Low Temperature Resistance and Salt Resistance in Recombinant Escherichia Coli Containing a Low Temperature Resistance Gene

상기 실시예 3에서 발현된 재조합 융합 단백질이 대장균에서 저온 및 염의 저항성을 띠는 지를 대조구와 비교 분석하였다. 스트레스 저항성 단백질이 다량 발현된 대장균과 벡터만 발현시킨 대조구를 각각 초저온과 염(NaCl) 농도별로 스트레스를 가하고 배양하였다.Whether the recombinant fusion protein expressed in Example 3 is resistant to low temperature and salt in E. coli was analyzed and compared with the control. Escherichia coli expressing a large amount of the stress-resistant protein and a control group expressing only the vector were incubated with stress at each cryogenic and NaCl concentration.

초저온은 액체 질소를 이용하여 급냉시켰으며, 실온(25℃)에서 완전히 녹였다. 이러한 방법을 이용하여 세번의 급냉과 녹임을 반복한 다음 각각 고체 배지에 일정 비율로 배양하였다. 스트레스 저항성 유전자가 다량 발현된 대장균의 경우, 대조구보다 40-50%의 높은 생존율을 보였다 (도 6). Cryogenic was quenched with liquid nitrogen and completely dissolved at room temperature (25 ° C.). Using this method, three quenching and dissolving cycles were repeated, followed by culturing at a constant rate in solid medium. In the case of Escherichia coli expressing a large amount of stress-resistant genes, the survival rate was 40-50% higher than that of the control (FIG. 6).

또한, 염의 내성에 대한 실험은 액체 배지에 염(NaCl)의 농도를 3%, 5%로 하여 0-10시간까지 배양하여 각 시간별로 OD값을 체크하였다. 그 결과, 3% 이상의 염이 존재할 경우, 대조구에 비해 현격히 높은 생존율을 나타냈다 (도 7).In addition, the experiment for the resistance of the salt was incubated for 0-10 hours with the concentration of salt (NaCl) in 3%, 5% in a liquid medium to check the OD value for each time. As a result, when more than 3% of the salt is present, the survival rate was significantly higher than that of the control (Fig. 7).

이 결과로부터 콩으로부터 분리된 새로운 스트레스 저항성 유전자는 기능적으로 저온 및 염에 저항성을 가진다는 것을 확인할 수 있었다.From this result, it was confirmed that the new stress resistance gene isolated from soybean is functionally resistant to low temperature and salt.

이상 상세히 기술한 바와 같이, 본 발명은 저온 및 염 저항성 단백질, 상기 단백질을 코딩하는 유전자, 상기 유전자를 함유하는 재조합벡터, 상기 재조합벡터로 형질전환된 미생물 및 상기 유전자로 형질감염된 저온 및 염 저항성 식물을 제 공하는 효과가 있다. 또한 본 발명에 따른 스트레스 저항성 유전자는 연구용뿐만 아니라 산업적으로 스트레스 저항성 식물체를 제조하는데 유용하다.
As described in detail above, the present invention provides a low temperature and salt resistant protein, a gene encoding the protein, a recombinant vector containing the gene, a microorganism transformed with the recombinant vector and a low temperature and salt resistant plant transfected with the gene. It provides the effect. In addition, the stress resistant gene according to the present invention is useful for producing stress resistant plants not only for research but also industrially.

이상으로 본 발명 내용의 특정한 부분을 상세히 기술하였는 바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서, 이러한 구체적 기술은 단지 바람직한 실시양태일 뿐이며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백할 것이다. 따라서 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항들과 그것들의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.Having described the specific part of the present invention in detail, it is obvious to those skilled in the art that such a specific description is only a preferred embodiment, thereby not limiting the scope of the present invention. something to do. Thus, the substantial scope of the present invention will be defined by the appended claims and their equivalents.

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Claims (12)

서열번호 2의 아미노산 서열을 가지는 저온 및/또는 염 저항성 단백질.A low temperature and / or salt resistant protein having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2. 서열번호 2의 아미노산 서열을 코딩하는 유전자.A gene encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO. 제2항에 있어서, 상기 유전자는 서열번호 1의 염기서열을 가지는 것을 특징으로 하는 유전자.The gene according to claim 2, wherein the gene has a nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1. 제2항 또는 제3항에 있어서, 상기 유전자는 저온 및/또는 염 저항성 단백질을 코딩하는 것임을 특징으로 하는 유전자.The gene according to claim 2 or 3, wherein the gene encodes a low temperature and / or salt resistant protein. 제2항의 유전자를 함유하는 재조합벡터.Recombinant vector containing the gene of claim 2. 제5항에 있어서, pET-SLTI66인 것을 특징으로 하는 재조합벡터.The recombinant vector according to claim 5, which is pET-SLTI66. 제5항의 재조합 벡터를 박테리아, 효모 및 곰팡이로 구성된 군에서 선택된 숙주세포에 도입하여 수득되는 형질전환된 미생물.A transformed microorganism obtained by introducing the recombinant vector of claim 5 into a host cell selected from the group consisting of bacteria, yeast and fungi. 제7항에 있어서, 숙주세포는 대장균 또는 아그로박테리움인 것을 특징으로 하는 형질전환된 미생물.8. The transformed microorganism according to claim 7, wherein the host cell is Escherichia coli or Agrobacterium. 제7항의 형질전환된 미생물을 배양하는 것을 특징으로 하는 제1항에 따른 저온 및/또는 염 저항성 단백질의 제조방법.A method for producing the low temperature and / or salt resistant protein according to claim 1, wherein the microorganism of claim 7 is cultured. 제9항에 있어서, (a) 서열번호 2의 아미노산 서열을 가지는 저온 저항성 단백질을 코딩하는 DNA 서열을 이 DNA 서열에 작동가능하게 연결되어(operatively linked) 그의 발현을 조절하는 하나 또는 그 이상의 발현 조절 서열(expression control sequence)을 포함하는 벡터에 삽입시키는 단계; (b) 이로부터 형성된 재조합 발현 벡터로 숙주를 형질전환시키는 단계; (c) 생성된 형질전환체를 상기 DNA 서열이 발현되도록 하기에 적절한 배지 및 조건하에서 배양하는 단계; 및 (d) 배양 물로부터 실질적으로 순수한 저온 저항성 단백질을 회수하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는, 저온 및/또는 염 저항성 단백질의 제조방법.10. The method of claim 9, wherein (a) one or more expression modulators that operably linked to a DNA sequence encoding a cold resistant protein having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 are operatively linked to the DNA sequence. Inserting into a vector comprising an expression control sequence; (b) transforming the host with a recombinant expression vector formed therefrom; (c) culturing the resulting transformants under medium and conditions appropriate for causing the DNA sequence to be expressed; And (d) recovering the substantially pure low temperature resistant protein from the culture. 삭제delete 삭제delete
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염기서열

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