KR100532860B1 - Protein preserving medium comprising cathodic electrolyzed water and method of preserving protein using the same - Google Patents

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KR100532860B1
KR100532860B1 KR1020040058180A KR20040058180A KR100532860B1 KR 100532860 B1 KR100532860 B1 KR 100532860B1 KR 1020040058180 A KR1020040058180 A KR 1020040058180A KR 20040058180 A KR20040058180 A KR 20040058180A KR 100532860 B1 KR100532860 B1 KR 100532860B1
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이미영
류근걸
김윤경
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이미영
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    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts
    • A01N1/0205Chemical aspects
    • A01N1/021Preservation or perfusion media, liquids, solids or gases used in the preservation of cells, tissue, organs or bodily fluids

Abstract

본 발명은 환원전리수(cathodic electrolyzed water)를 포함하는 단백질 보존액 및 그를 이용한 단백질 보존방법에 관한 것이다. 본 발명에 따른 환원전리수를 포함한 단백질 보존액은 단백질의 분해를 방지하고 단백질의 구조적 안정화에 기여하는 간편하고 경제적이며 환경친화적인 보존액으로서 생명공학 분야의 반응세정액으로 응용될 수 있다.The present invention relates to a protein preservation solution containing cathodic electrolyzed water and a protein preservation method using the same. The protein preservation solution including the reduced ionization water according to the present invention can be applied as a reaction cleaning solution in the field of biotechnology as a simple, economical and environmentally friendly preservation solution that prevents degradation of the protein and contributes to the structural stabilization of the protein.

Description

환원전리수를 포함하는 단백질 보존액 및 그를 이용한 단백질 보존방법{Protein preserving medium comprising cathodic electrolyzed water and method of preserving protein using the same} Protein preserving medium comprising cathodic electrolyzed water and method of preserving protein using the same

본 발명은 환원전리수를 포함하는 단백질 보존액 및 그를 이용한 단백질 보존방법에 관한 것이다.The present invention relates to a protein preservation solution containing a reduced ionized water and a protein preservation method using the same.

물에 직류전압을 가하면 이온의 이동에 의해 pH를 변화시킬 수 있는 전리수(electrolyzed water)를 만들 수 있다. 양극에서 생성되는 물은 H+ 이온의 증가로 pH가 감소되며, 산화·환원전위(oxidation-reduction potential)가 증가하게 되어 강한 산화성의 상태가 되고, 음극에서는 OH­ 이온의 증가로 pH가 상승하여 환원성의 상태가 된다 (Ryoo, K., Kang, B. and Sumida, S., Electrolyzed water as an alternative for environmentally-benign semiconductor cleaning. Material Research Society, 17(6), pp.1298-1304, 2002). 전리수의 산화환원전위는 다른 수용액보다 매우 강한 pH 의존성을 나타내고 있다. 일반적으로, pH 2인 전리수의 산화환원전위는 +1200mV 이상의 높은 산화전위를 나타내고 있는 반면 산성수용액의 경우 +600mV 정도의 산화환원전위를 나타낸다. pH 11의 전리수의 산화환원전위는 -850mV 이하의 환원전위를 가지고 있으나, 알칼리성 수용액의 경우 +20mV를 나타내고 있다.Applying a direct voltage to the water creates electrolyzed water that can change pH by the movement of ions. The water produced at the anode decreases in pH due to the increase of H + ions, and the oxidation-reduction potential increases, resulting in a strong oxidative state. ­ The pH rises due to the increase of ions and becomes a reducing state (Ryoo, K., Kang, B. and Sumida, S., Electrolyzed water as an alternative for environmentally-benign semiconductor cleaning. Material Research Society, 17 (6), pp. 1298-1304, 2002). The redox potential of ionized water shows a much stronger pH dependence than other aqueous solutions. In general, the redox potential of the ionized water at pH 2 shows a high oxidation potential of +1200 mV or more, while the acidic aqueous solution shows a redox potential of about +600 mV. The redox potential of the ionized water at pH 11 has a reduction potential of -850 mV or less, but +20 mV for alkaline aqueous solutions.

전리수가 가지고 있는 특성으로는 미생물에 대한 살균력을 들 수 있으며(Fabrizio, K. A. and Cutter, C. N., Stability of electrolyzed oxidizing water and its efficacy against cell suspensions of Salmonella typhimurium and Listeria monocytogenes. J. Food Prot., 66(8), pp.1384-1397, 2003; Sharma, R. R. and Demirci, A., Treatment of Escherichia coli O157:H7 inoculated alfalfa seeds and sprouts with electrolyzed oxidizing water. Int. J. Food Microbiol., 86(3), pp.231-237, 2003), 전리수로 실험쥐의 상처와 화상을 치료할 수 있고(Xin, H., Zheng, Y. J., Hajime, N. and Han, Z. G., Effect of electrolyzed oxidizing water and hydrocolloid occlusive dressings on excised burn-wounds in rats. Chin. J. Traumatol., 6(4), pp.234-237, 2003) 당뇨 등의 질병 치료에 긍정적인 효과를 나타낸다고 보고되었다(Huang, K. C., Yang, C. C., Lee, K. T. and Chien, C. T., Reduced hemodialysis-induced oxidative stress in end-stage renal disease patients by electrolyzed reduced water. Kidney Int., 64(2), pp.704-714, 2003). 또한, 환원전리수(cathodic electrolyzed water)가 DNA의 산화적 손상을 억제할 수 있는데, 그 이유는 환원전리수가 항산화활성을 가지고 있기 때문이라고 보고된 바 있다(Sanetaka, S., Shigeru K., Mariko, N., Takumi, M., Kenichi, K., Miho, G., Hidemitsu, H., Kazumichi, O., Shinkatsu, M. and Yoshinori, K., Electrolyzed-reduced water scavenges active oxygen species and protects DNA from oxidative damage. Biochemical and Biophysical Research Communications, 234, pp. 269-274, 1997). 뿐만 아니라, pH나 산화환원전위를 조절한 전리수는 고체 표면에 부착한 불순물질을 효과적으로 제거 할 수 있다. 전기분해 조건을 다양하게 변화시켜 친수성 또는 친지성 등의 표면상태를 조절하게 되면 미세한 구조 및 반응물의 처리를 용이하게 할 수 있으므로 다양한 목적의 유효한 세정 매체를 만들어 낼 수 있다(강병두. 환경친화적 전리수를 이용한 반도체 세정연구. 순천향대학교, pp.21-23, 2001). The characteristics of the ionizing water include bactericidal activity against microorganisms (Fabrizio, KA and Cutter, CN, Stability of electrolyzed oxidizing water and its efficacy against cell suspensions of Salmonella typhimurium and Listeria monocytogenes. J. Food Prot., 66 ( 8), pp. 1384-1397, 2003; Sharma, RR and Demirci, A., Treatment of Escherichia coli O157: H7 inoculated alfalfa seeds and sprouts with electrolyzed oxidizing water.Int. J. Food Microbiol., 86 (3), pp.231-237, 2003), and the treatment of wounds and burns in mice (Xin, H., Zheng, YJ, Hajime, N. and Han, ZG, Effect of electrolyzed oxidizing water and hydrocolloid occlusive dressings) on excised burn-wounds in rats.Chin.J. Traumatol., 6 (4), pp.234-237, 2003) It has been reported to have a positive effect on the treatment of diseases such as diabetes (Huang, KC, Yang, CC, Lee, KT and Chien, CT, Reduced hemodialysis-induced oxidative stress in end-stage renal disease patients by electrolyzed reduced water Kidney Int., 64 (2), pp.704-714, 2003). It has also been reported that cathodic electrolyzed water can inhibit oxidative damage of DNA because it has antioxidant activity (Sanetaka, S., Shigeru K., Mariko). , N., Takumi, M., Kenichi, K., Miho, G., Hidemitsu, H., Kazumichi, O., Shinkatsu, M. and Yoshinori, K., Electrolyzed-reduced water scavenges active oxygen species and protects DNA from oxidative damage.Biochemical and Biophysical Research Communications, 234, pp. 269-274, 1997). In addition, the ionized water by adjusting pH or redox potential can effectively remove impurities attached to the solid surface. By varying the electrolysis conditions and controlling the surface conditions such as hydrophilicity or lipophilic, it is possible to facilitate the treatment of the fine structure and the reactants, thereby creating an effective cleaning medium for various purposes (Kang, Byung-Doo. Semiconductor Cleaning Using Soonchunhyang University, pp.21-23, 2001).

한편, 단백질의 입체 구조는 결합력이 강한 아미노산 잔기간의 펩타이드 결합과 결합력이 약한 이온 결합·수소결합·소수결합 등의 구조 유지력에 의해 유지된다. 이 때문에 2차구조 이상의 고차구조는 열·산·알칼리·유기용매·자유 라디칼 등에 의해 비교적 쉽게 그 구조 유지력을 잃어 입체 구조를 유지할 수가 없고 그 단백질 본래의 기능을 수행 할 수 없게 되어 분해되고 만다. On the other hand, the three-dimensional structure of a protein is maintained by the structure holding | maintenance force, such as the peptide bond between amino acid residues with strong binding force, and the ionic bond, hydrogen bond, and minor bond which are weak in binding force. For this reason, the higher-order structure of secondary or higher structure loses its structure holding power relatively easily by heat, acid, alkali, organic solvent, free radicals, etc. and cannot maintain its three-dimensional structure, and cannot decompose its original function.

외부 환경에 대하여 불안정한 단백질의 안정화(stability)를 향상시키기 위하여 다양한 연구가 진행되어 왔다.Various studies have been conducted to improve the stability of proteins that are unstable to the external environment.

냉동건조 방식에 의한 단백질 안정화 방법은 단백질 용액을 냉동 시킨 상태에서 진공을 가하여 얼음을 승화시켜서 건조하는 공정으로 단백질을 상하지 않고 건조할 수 있는 장점을 갖고 있다. 일단 건조에 성공하면 대부분의 단백질 변성이 일어나지 않기 때문에 약한 단백질의 제품을 오랫동안 보존할 수 있는 방법으로 사용되고 있다. 구체적으로는, -20℃에서 20 내지 50%의 글리세롤 또는 에틸렌글리콜이 첨가된 용액을 사용하는 방법, -20℃ 내지 -80℃의 액체 질소에서 동결건조하는 방법 등이 공지되어 있으나, 상기 방법들은 멸균공정 또는 항균제를 첨가하거나 냉동공정을 필요로 한다는 문제점 및 많은 단백질들의 건조과정에 변성되어 다시 용액상태로 만들었을 때 역가를 환원하기 어렵다는 문제점이 있다. The protein stabilization method by the freeze-drying method is a process of subliming ice by applying vacuum in a frozen state of a protein solution and drying the protein without damaging the protein. Once successfully dried, most protein denaturation does not occur, so it is used as a method of preserving weak protein products for a long time. Specifically, a method using a solution in which 20 to 50% of glycerol or ethylene glycol is added at -20 ° C, a method of lyophilizing in liquid nitrogen at -20 ° C to -80 ° C, and the like are known. There is a problem in that a sterilization process or an antimicrobial agent is added or a freezing process is required, and when a protein is denatured during drying, it is difficult to reduce the titer when the solution is made again.

서스펜션(suspention) 안정화 방법은 단백질 안정화 방법으로서 상용되는 방법은 아니지만, 인슐린을 안정화시켜 액상의 제품으로 완성하는데 매우 큰 기여를 한 방법이다. 인슐린도 매우 불안정한 단백질에 분류될 정도로 저장하기에 힘든 단백질로 알려졌으나 아연과 같은 금속 성분을 첨가하여 콜로이드 상태의 침전을 만들어 그 안정성을 급격히 증가시킬 수 있었다. 그러나, 이 방법도 침전된 단백질 입자가 주사 후 다시 역가를 유지하는 단백질로 용해되어야 하나, 상당히 많은 단백질들이 불활성화 되어 침전 상태에서 되돌아올 수 없고 침전된 단백질들은 주사 부위에 부작용을 일으키거나 항체의 생산을 유발할 수 있다는 점 및 단백질의 농도가 낮은 제품에만 적용된다는 단점이 있었다.Suspension stabilization is not a commonly used method of protein stabilization, but it is a method that contributed to stabilizing insulin and completing a liquid product. Insulin is also known to be a protein that is difficult to store as it is classified as a very unstable protein, but metals such as zinc can be added to create a colloidal precipitate that can dramatically increase its stability. However, this method also requires that the precipitated protein particles dissolve into proteins that maintain their titer again after injection, but a significant number of proteins are inactivated and cannot be returned from the precipitation state, and the precipitated proteins cause side effects at the injection site or It has the disadvantage of being able to cause production and of being applied only to products of low protein concentration.

일반적으로 산화적 변성 (Oxidative modification)에 의하여 쉽게 분해 되는 단백질들이 알려져 있는데 구조 내에 헴(heme)이 있는 헤모프로틴(hemoprotein)의 경우 단백질의 분해는 가속화된다. 이는 헴(heme)내의 Fe 부근에서 활성 산소종의 생성이 활발하게 일어나기 때문이다. 이러한 산화적 변성에 의한 단백질의 분해는 활성 산소종 소거제에 의하여 억제된다고 알려져 있다(Lee Mi Young, Kim Soung Soo, Inactivation and cleavage of radish peroxidase by various reducing agents. Phytochemistry, Vol. 49, No.1, pp. 23-27, 1998; Kim, K. H., Rhee, S. G. and Stadtman, E. R., Journal of Biological Chemistry, 1985, 260, 15394).Generally, proteins that are easily degraded by oxidative modification are known. In the case of hemoproteins with heme in the structure, the degradation of proteins is accelerated. This is because active oxygen species are actively produced near Fe in the heme. The degradation of proteins by such oxidative degeneration is known to be inhibited by reactive oxygen species scavenger (Lee Mi Young, Kim Soung Soo, Inactivation and cleavage of radish peroxidase by various reducing agents.Phytochemistry, Vol. 49, No. 1 , pp. 23-27, 1998; Kim, KH, Rhee, SG and Stadtman, ER, Journal of Biological Chemistry, 1985, 260, 15394).

통상적으로, 단백질을 보존하는 매질로서 4℃ 이하의 3차 증류수를 사용하는 방법이 있으나, 이 경우 단백질의 역가는 유동성이 있는 3차 구조에 의존하는 만큼 미세한 조건에서도 쉽게 변성하는 단점을 가지고 있으며, 특히 산화적 변성으로 인한 단백질간 결합(aggregation)이 문제점으로 지적되어 왔다. 상기 문제점을 해결하기 위한 방편으로 당류, 아미노산, 혹은 염류 등의 첨가제를 사용하기도 하나, 첨가제의 농도가 목적하는 용도로 사용하기에 부적합할 정도로 높은 경우가 많아 그 응용이 제한되어 있다. Generally, there is a method of using tertiary distilled water of 4 ° C. or lower as a medium for preserving protein, but in this case, the titer of the protein has a disadvantage in that it is easily denatured even under minute conditions as it depends on the flowable tertiary structure. In particular, protein aggregation due to oxidative degeneration has been pointed out as a problem. In order to solve the above problems, an additive such as sugars, amino acids, or salts may be used, but the concentration of the additive is often so high that it is unsuitable for use in the intended use, and its application is limited.

한편, 전리수의 경우는 산성(산성전리수) 또는 알칼리성(환원전리수)을 나타내므로 산과 알칼리에 민감한 단백질에 구조적 불안정을 부여하여 단백질을 분해할 것이라 예상되었다. 그러나, 이러한 예상과는 달리, 환원전리수는 단백질의 구조적 안정성에 영향을 미치지 않아 단백질 분해에 대한 뛰어난 보호 작용을 나타내므로 경제적이면서도 환경친화적인 단백질 보존액으로 사용될 수 있다는 놀라운 사실을 발견하고, 본 발명을 완성하기에 이르렀다.On the other hand, since the ionized water exhibits acidic (acidic ionized water) or alkaline (reduced ionized water), it is expected to decompose the protein by giving structural instability to proteins sensitive to acid and alkali. Contrary to these expectations, however, it has been found that the reduced ionizing water does not affect the structural stability of the protein and thus exhibits an excellent protection against protein degradation and thus can be used as an economical and environmentally friendly protein preservative. Came to complete.

본 발명의 목적은 단백질 보존력이 뛰어나면서도 환경친화적이며 경제적인 단백질 보존액 및 그를 이용한 단백질 보존방법을 제공하는 것이다. It is an object of the present invention to provide a protein preservation solution having excellent protein preservation ability and being environmentally friendly and economical and a protein preservation method using the same.

본 발명은 환원전리수를 포함한 단백질 보존액을 제공한다.The present invention provides a protein preservation solution including reduced ionized water.

본원에 사용된 용어 "전리수(electrolyzed water)"는 전기분해에 의해서 pH나 산화·환원전위(oxidation-reduction potential)를 조절한 수용액이다. 물의 전기분해는 전기화학 현상 중의 하나로서, 물의 특성을 변화시켜 새로운 화학물질을 제공하며, 애노드(anode) 및 캐쏘드(cathode)에서 상이한 전리산물인 전리 알칼리수(캐쏘드 전리수) 및 전리산성수(애노드 전리수)을 생성한다. 전기분해 현상은 정량적으로 취급될 수 있어 산업에서 다양한 적용에 이용된다. 본원에 사용된 "환원전리수(cathodic electrolyzed water)"는 물을 전기분해할 때 캐쏘드로부터 수거되는 환원수를 의미한다.As used herein, the term "electrolyzed water" is an aqueous solution in which pH or oxidation-reduction potential is adjusted by electrolysis. Electrolysis of water is one of the electrochemical phenomena, which changes the properties of water to provide new chemicals, and ionizing alkaline water (cathode ionizing water) and ionizing water, which are different ionizing products at the anode and the cathode. Create an anode ionizer. Electrolysis phenomena can be handled quantitatively and are used in a variety of applications in the industry. As used herein, "cathodic electrolyzed water" means reduced water collected from a cathode when electrolyzing water.

본 발명의 단백질 보존액에 포함되는 환원전리수는 물을 전기분해시키는 다양한 장치 및 공지된 방법을 이용하여 제조될 수 있다. 전리수를 생성하는 전리수 생성기는 분리막에 의해 애노드 및 캐쏘드가 배치되는 2개의 부분(area)으로 구분되는 전해조를 가지며, 양극에 전류를 흐르게 하면 캐쏘드 부분에서는 전리 알칼리수가 생성되며 애노드 부분에서는 전리 산성수가 생성된다. 통상적으로, 2 내지 3 볼트 이상의 분해전압 이상의 전압을 공급하고, 애노드와 캐쏘드를 분리하기 위한 격막 또는 이온교환막을 설치하며 전기분해를 촉진시키기 위한 전해물질(예: NaCl, KCl 등)을 첨가한다. 수돗물을 직접적으로 전기분해시켜 환원전리수를 생성하기 위한 많은 장치들이 시판되고 있다. 전리수의 연속 생성 장치는 활성 목탄 등과 같은 흡착 매질을 사용하여 수돗물을 여과시킨 후 정제수를 전해조에 연속적으로 공급하여 전리수가 연속 생성되도록 한다. 또한, 애노드 및 캐쏘드 챔버를 포함하는 전리수를 생성하기 위한 배치형 장치도 널리 공지되어 있다.The reduced ionized water contained in the protein preservation solution of the present invention can be prepared using various apparatuses and known methods for electrolyzing water. The ionizer generator for generating ionized water has an electrolytic cell divided into two areas in which an anode and a cathode are disposed by a separator. When an electric current flows through the anode, ionized alkaline water is generated at the cathode and ionized at the anode. Acidic water is produced. Typically, a voltage of at least 2 to 3 volts or higher is supplied, a diaphragm or ion exchange membrane is installed to separate the anode and the cathode, and an electrolytic material (eg, NaCl, KCl, etc.) is added to promote electrolysis. . Many devices are commercially available for producing electrolyzed tap water by directly electrolyzing tap water. The continuous generation of ionizing water is filtered by tap water using an adsorption medium such as activated charcoal, and then purified water is continuously supplied to the electrolytic cell so that the ionizing water is continuously generated. In addition, batch devices for producing ionized water comprising an anode and a cathode chamber are also well known.

다양한 적용에 부합하는 환원수를 제조하기 위한 장치들이 연구 개발되고 있으며, 구체적인 일례로서 전해액 제조 탱크에 순수를 공급한 후 소정의 NH4OH 몰농도 또는 HCl 몰농도를 가지는 전해액을 제조한 다음, 애노드 전극과 캐쏘드 전극 사이에 소정 크기의 전압을 인가하여 전해방의 전해액을 전기분해하여 캐쏘드로부터 목적하는 pH를 지닌 환원수를 제조할 수 있다. 상기의 방법 이외에도, 고효율로 대량의 전리수를 연속적으로 생성할 수 있는 장치로서, 전해조내에 유로규제수단을 구비하여 원료수가 음극판과 양극판과의 접촉을 길게 유지하도록 작용하도록 하고, 상기 음극판과 양극판의 간격을 대단히 좁게 한 전리수 생성 장치가 공지되어 있다.Apparatuses for producing reduced water for various applications have been researched and developed. As a specific example, after supplying pure water to an electrolyte preparation tank, an electrolyte having a predetermined molar concentration of NH 4 OH or HCl is prepared, and then an anode electrode. By applying a voltage having a predetermined magnitude between the cathode and the cathode, electrolytic solution of the electrolytic cell may be electrolyzed to produce reduced water having a desired pH from the cathode. In addition to the above-described method, a device capable of continuously generating a large amount of ionized water with high efficiency, comprising a flow restricting means in an electrolytic cell so that the raw water can maintain a long contact between the negative electrode plate and the positive electrode plate. BACKGROUND OF THE INVENTION There are known ionizing water generating apparatuses which have a very narrow interval.

본 발명에서 "단백질"이란 아미노산의 카르복시기와 다른 아미노산의 아미노기가 탈수 축합하여 만들어지는 유기 중합체를 말하며, 올리고펩타이드, 폴리펩타이드를 포함하는 분자를 총칭하는 것이다. 상기 단백질은 화학적 조성이나 용해도에 따라 단순단백질, 복합단백질 및 유도단백질로 분류할 수 있다. 이는 하기의 예를 포함하는데, 이에 한정되지는 않는다:In the present invention, the term "protein" refers to an organic polymer produced by dehydration condensation of a carboxyl group of an amino acid and an amino group of another amino acid, and refers to a molecule including an oligopeptide and a polypeptide. The protein can be classified into simple protein, complex protein and derived protein according to chemical composition or solubility. This includes, but is not limited to:

(a) 단순단백질(a) simple protein

가수분해하면 아미노산만 생성되는 단백질을 말하며, 물에 녹고 열에 의하여 응고되는 단백질로 동식물 세포 및 체액에 존재하는 알부민(예를 들어, 혈청 알부민, 락트알부민, 난백알부민 등); 물에 녹지 않고 묽은 염류용액에 녹는 단백질로 대부분이 열에 의하여 응고되는 글로불린(혈청 글로불린, β-락토글루불린 등); 글루탐산 함량이 높은 단백질로 곡류의 종자에 많이 함유되어 있는 글루테닌(glutenin) 및 오리제닌(oryzenin); 프롤아민(글리아딘, 제인 등); 알부미노이드(콜라겐, 케라틴, 엘라스틴 등); 히스톤; 프로타민 등이 있다.Refers to a protein that generates only amino acids when hydrolyzed, and is an albumin (eg, serum albumin, lactalbumin, egg white albumin, etc.) present in animal and plant cells and body fluid as a protein that is dissolved in water and coagulated by heat; Globulins (serum globulin, β-lactoglobulin, etc.), most of which are proteins that are soluble in dilute salt solution without being dissolved in water; Glutenin and oryzenin, which are high in glutamic acid and are contained in grain seeds; Prolamine (gliadine, zein, etc.); Albuminoids (collagen, keratin, elastin and the like); Histones; Protamine.

(b) 복합단백질 (b) complex proteins

단순단백질과 보조인자(cofactor)가 결합하고 있는 단백질로서, DNA와 단백질의 복합체인 데옥시리보뉴클레오단백질 및 리보뉴클레오프로틴과 같은 핵단백질(nucleoprotein); 단백질에 인산이 에스테르 형태로 함유되어 있는 카제인, 비텔린(vitellin), 포스비틴(phosvitin)과 같은 인단백질(phosphoprotein); 지질과 단백질의 복합체인 트롬보플라스틴, 리포비텔린(lipovitellin)과 같은 리포단백질(lipoprotein); 금속이 직접 단백질과 결합한 것으로, 페레독신, 트랜스페린(transferrin), 페리틴(ferritin)과 같이 heme을 함유하고 있는 철단백질, 플라스토시아닌(plastocyanin), 아스코베이트 옥시다제와 같은 구리단백질, 피루베이트 카복실라제와 같은 망간단백질 등의 금속단백질(metalloprotein); 아비딘(avidin), 뮤신, 티로글로불린(thyroglobulin)과 같은 당단백질(glycoprotein) 등이 있다.As a protein to which a simple protein and a cofactor bind, Nucleoproteins such as deoxyribonucleoprotein and ribonucleoprotein, which are complexes of DNA and protein; Phosphoproteins such as casein, vitellin, and phosvitin, in which the phosphoric acid is contained in ester form in the protein; Lipoproteins such as thromboplastin and lipoitellin, complexes of lipids and proteins; Metals directly bind to proteins, iron proteins containing heme, such as ferredoxin, transferrin, ferritin, platocyanin, copper proteins such as ascorbate oxidase, pyruvate carboxylase Metalloproteins such as manganese proteins such as; Glycoproteins such as avidin, mucin and thyroglobulin.

(c) 유도 단백질(c) inducing proteins

단백질이 가수분해 되는 동안의 중간 생성체로서, 프로테오스, 펩톤, 다이펩티드, 트리펩티드 등이 있다.Intermediates during protein hydrolysis include proteases, peptones, dipeptides, tripeptides and the like.

또한, 본 발명에 따른 단백질 보존액은 아미노산들이 펩타이드 결합으로 긴 사슬구조를 이룬 1차 구조, 펩타이드 사슬이 입체적으로 알파-헬릭스(나선구조)와 베타-쉬트(병풍구조)가 일정하게 반복적으로 나타나는 2차 구조, 2차 구조들이 서로 떨어져 있는 아미노산 사이의 수소결합, 소수성결합, 이온결합 및 이황화 결합에 의해 구성되는 3차 구조 및 이러한 결합들이 더욱 더 복잡하게 얽혀 입체구조를 이룬 4차 구조를 가진 단백질의 보존에 사용될 수 있다.In addition, the protein preservation solution according to the present invention has a primary structure in which amino acids form a long chain structure with peptide bonds, and peptide chains appear in a repetitive manner in which alpha-helix (helix) and beta-sheet (screen structure) are uniformly three-dimensionally. Tertiary structure consisting of hydrogen, hydrophobic, ionic and disulfide bonds between amino acids with secondary structures separated from one another, and proteins with quaternary structures in which these bonds are more intricately intertwined Can be used for the preservation of

또한, 본 발명에 따른 단백질 보존액은 안정제, 근육이완제, 항우울제, 항염증제 등과 같이 치료학적으로 활성이 있는 단백질; 갑상선 자극 호르몬, 여포 자극 호르몬, 성장 호르몬 등과 같은 단백질성 호르몬, 기타 다양한 효소들의 보존에 사용될 수 있다.In addition, the protein preservation solution according to the present invention is a therapeutically active protein, such as stabilizers, muscle relaxants, antidepressants, anti-inflammatory agents; It can be used for the preservation of proteinaceous hormones such as thyroid stimulating hormone, follicle stimulating hormone, growth hormone and the like and various other enzymes.

본 발명의 단백질 보존액의 사용이 특히 바람직한 단백질은, 인슐린, SOD(superoxide dismutase), 인터페론, 성장호르몬, 퍼옥시다제, 아스파라기나제, 글루타마제, 아기나제, 소마토메틴, 소마토스타틴, 바소프레신, RNA 분해효소 등과 같은 불안정한 단백질이며, 보다 바람직하게는 산화적 변성에 의하여 쉽게 분해되는 단백질이며, 가장 바람직하게는 헴을 포함하는 헤모프로틴이다.Especially preferred proteins for use of the protein preservative of the present invention include insulin, superoxide dismutase (SOD), interferon, growth hormone, peroxidase, asparaginase, glutamase, aginanase, somatomethine, somatostatin, vasopressin, RNA It is an unstable protein such as an enzyme, more preferably a protein that is easily degraded by oxidative denaturation, and most preferably a hemoprotein containing heme.

환원전리수의 산화환원전위와 pH는 상호 연관성을 나타내며 산화환원전위가 음의 값으로 커질수록 환원력도 커지게 되는 특성을 가지고 있다. 산화환원전위가 약 -200 mV인 경우 pH는 6 내지 7이고, 산화환원전위가 -800 mV인 경우 pH는 8.5 내지 10이다. 본 발명에서, 단백질 보존에 사용되는 환원전리수의 산화환원전위는 -200mV 이하, 바람직하게는 -1000mV 내지 -200mV, 보다 바람직하게는 -900mV 내지 -800mV, 가장 바람직하게는 -840mV 내지 -860mV이며, pH는 6이상, 바람직하게는 6 내지 11, 보다 바람직하게는 8.5 내지 11, 가장 바람직하게는 10 내지 11이다. 환원전리수의 산화환원전위가 -200mV 이상인 경우에는 단백질이 분해되어 단백질 보존력이 감소하게 되는 문제가 발생하게 된다.The redox potential and pH of the reduced ionization water are correlated and the reducing power is increased as the redox potential becomes negative. The pH is 6-7 when the redox potential is about -200 mV, and the pH is 8.5-10 when the redox potential is -800 mV. In the present invention, the redox potential of the reduced ionized water used for protein preservation is -200 mV or less, preferably -1000 mV to -200 mV, more preferably -900 mV to -800 mV, and most preferably -840 mV to -860 mV. , pH is 6 or more, preferably 6 to 11, more preferably 8.5 to 11, most preferably 10 to 11. When the redox potential of the reduced ionized water is -200 mV or more, the protein is decomposed to reduce the protein retention.

본 발명자는 환원전리수가 단백질의 보존에 미치는 영향을 조사하기 위하여, 보존기간과 온도를 달리하여 단백질의 분해를 관측하였다.In order to investigate the effect of reducing ionization on the preservation of the protein, the inventors observed the degradation of the protein by varying the retention period and temperature.

도 1은 산성전리수와 환원전리수의 단백질 보존 효과를 10분 동안 반응시킨 후 단백질이 분해된 결과를 나타내고 있다. 사용된 단백질은 호스래디쉬 퍼옥시다제(horseradish peroxidase)이며, 이를 대조군인 3차 증류수와 산성전리수 및 환원전리수에 용해하여 10분 동안 반응시킨 후 전기영동을 하였다. 실험 결과, 환원전리수에서 반응시킨 단백질은 분해가 일어나지 않은 반면, 3차 증류수에 녹인 단백질은 약 26 kDa 띠가 형성되었으며 산성전리수에 녹인 단백질도 약 26 kDa과 35 kDa에 띠가 형성되었다.Figure 1 shows the result of the protein decomposition after the reaction of the protein preservation effect of the acidic ionized water and reduced ionized water for 10 minutes. The protein used was horseradish peroxidase, which was dissolved in tertiary distilled water, acidic ionized water and reduced ionized water as a control, and reacted for 10 minutes, followed by electrophoresis. As a result, the protein reacted in the reduced ionized water did not decompose, whereas the protein dissolved in the tertiary distilled water formed about 26 kDa band, and the protein dissolved in the acidic ionized water also formed bands at about 26 kDa and 35 kDa.

도 2는 보존 시간을 7일로 하면서 동시에 온도에 의한 영향을 살펴보기 위하여 각각 4℃와 25℃에서 단백질의 분해 정도를 관측한 결과이다. 7일이 경과된 경우, 환원전리수에 반응시킨 단백질은 분해되지 않은 반면, 3차 증류수와 산성전리수에 녹여 반응시킨 단백질은 10분 동안 반응시킨 경우에서 나타났던 동일한 부분의 단백질띠가 형성되었고, 그 단백질의 분해가 더욱 진행되었음을 확인할 수 있었다.FIG. 2 shows the results of observing the degree of degradation of the protein at 4 ° C. and 25 ° C., respectively, in order to examine the effect of temperature while maintaining the retention time as 7 days. After 7 days, the protein reacted with the reduced ionized water did not decompose, whereas the protein dissolved in the tertiary distilled water and the acidic ionized water reacted for 10 minutes. It was confirmed that the degradation of the protein proceeded further.

도 3은 보존 시간을 10일로 하면서 동시에 각각 4℃와 25℃에서 단백질의 분해 정도를 관측한 결과이다. 10일이 경과된 경우에도 4℃와 25℃ 조건의 환원전리수에서의 단백질 분해는 나타나지 않았다. 그러나, 4℃와 25℃ 조건의 3차 증류수의 경우 처음에 분해되어 나타났던 약 26 kDa의 단백질띠가 계속 유지되었으며, 산성전리수에서는 약 26 kDa, 35 kDa의 단백질띠를 포함한 약 17 kDa, 22 kDa, 38 kDa의 단백질 띠가 형성되었으며 25℃에서 반응시킨 단백질띠가 4℃에서 반응시킨 것보다 분해정도가 더 높았다. 3 shows the results of observing the degree of degradation of proteins at 4 ° C. and 25 ° C., respectively, with a retention time of 10 days. Even after 10 days, protein degradation was not observed in the reduced ionized water at 4 ° C and 25 ° C. However, in the case of the tertiary distilled water at 4 ° C and 25 ° C, the protein band of about 26 kDa, which was initially decomposed, was maintained, and about 17 kDa including protein band of 26 kDa and 35 kDa in acidic ionized water. Protein bands of 22 kDa and 38 kDa were formed, and the protein bands reacted at 25 ° C were more degradable than those reacted at 4 ° C.

이러한 결과를 통하여 환원전리수에서 반응시킨 단백질은 전 반응시간 동안 온도변화에 영향을 받지 않고 거의 분해되지 않음을 확인할 수 있었다. 따라서, 환원전리수는 단백질 분해에 대한 강력한 보호 작용을 하고 있으며 단백질의 구조적 안정화에 기여하는 단백질 보존액으로서, 장기간, 바람직하게는 4주 이상, 보다 바람직하게는 10일 이상의 단백질 보존에 사용할 수 있으며, 바람직하게는 30℃ 이하, 보다 바람직하게는 25??이하, 보다 더 바람직하게는 4℃ 내지 25℃의 단백질 보존에 사용할 수 있다.Through these results, it was confirmed that the protein reacted in the reduced ionized water was hardly decomposed without being affected by the temperature change during the entire reaction time. Therefore, the reduced ionized water has a strong protection against protein degradation and contributes to the structural stabilization of the protein, and can be used for long term, preferably at least 4 weeks, more preferably at least 10 days of protein preservation. Preferably it is 30 degrees C or less, More preferably, it is 25 degrees C or less, More preferably, it can be used for protein storage of 4 degreeC-25 degreeC.

본 발명의 추가의 양태로서, 본 발명의 단백질 보존액은 보존기간을 늘이기 위하여 단백질 저해제, 금속 킬레이트, DTT(dithiothreitol), 2-메르캅토에탄올과 같은 환원제 등을 환원전리수에 추가로 첨가할 수 있다. As a further aspect of the present invention, the protein preservative of the present invention may further add protein inhibitors, metal chelates, dithiothreitol (DTT), reducing agents such as 2-mercaptoethanol, etc. to the reduced ionized water to increase the shelf life. .

본 발명의 단백질 보존액은 단백질 보존력이 뛰어나므로, 생명공학 분야, 예를 들어 ELISA(enzyme linked immunosorbent assay), 웨스턴 블롯팅(western blotting), 단백질의 분리 및 정제, 효소의 대량 생산 등의 반응세정액으로 사용될 수 있다. Since protein preservatives of the present invention are excellent in protein preservation, biotechnology, such as ELISA (enzyme linked immunosorbent assay), Western blotting (western blotting), separation and purification of proteins, mass production of enzymes, etc. Can be used.

본 발명의 환원전리수에서 보존되는 단백질이 효소인 경우에는 단백질이 분해되지 않아야 할 뿐만 아니라 후속 효소반응에서도 불리한 영향을 끼치지 않아야 한다. 하기 실시예 2의 표 1 및 표 2에서는 환원전리수에서의 호스래디쉬 퍼옥시다제의 효소 활성을 측정한 결과를 나타내고 있다. 상기 실험 결과는 효소의 활성이 급격하게 감소하는 산성전리수의 경우와 달리 본 발명의 환원전리수는 효소단백질 분해를 방지할 뿐만 아니라 효소의 활성을 보호하는 우수한 효과를 나타내었다.If the protein preserved in the reduced ionized water of the present invention is an enzyme, not only the protein should be degraded, but also it should not adversely affect subsequent enzymatic reactions. Table 1 and Table 2 of Example 2 below show the results of measuring the enzyme activity of horseradish peroxidase in reduced ionized water. The experimental results show that, unlike the acidic ionized water in which the activity of the enzyme is sharply reduced, the reduced ionized water of the present invention not only prevents the degradation of the enzyme protein but also shows an excellent effect of protecting the activity of the enzyme.

또 다른 양태로서, 본 발명은 환원전리수를 이용한 단백질 보존방법을 제공한다. 상기한 도 1 내지 도 3으로부터 입증되는 바와 같이, 환원전리수는 보관기간과 보관온도에 영향을 받지 않으면서 단백질의 분해를 방지하고 구조적 안정화에 기여하여 단백질 보존 효과가 우수하였다.In still another aspect, the present invention provides a protein preservation method using reduced ionized water. As demonstrated from FIG. 1 to FIG. 3, the reduced ionized water prevented protein degradation and contributed to structural stabilization without affecting the storage period and storage temperature, and thus the protein preservation effect was excellent.

이하, 본 발명을 실시예에 의하여 더욱 상세하게 설명한다. 단, 하기 실시예들은 본 발명을 예시하는 것으로 본 발명의 내용이 실시예에 의해 한정이 되는 것은 아니다.Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples. However, the following examples are illustrative of the present invention, and the contents of the present invention are not limited by the examples.

<실시예 1> 환원전리수의 단백질 보존성Example 1 Protein Preservation of Reduction Ionized Water

단백질 분해에 대한 영향을 알아보기 위해 정제된 호스래디쉬 퍼옥시다제(Sigma-Aldrich Co.) (40 kDa) 1 mg을 대조군인 3차 증류수, 비교군인 산성전리수와 환원전리수(ORP -850 mV, pH 11) 1 ml에 완전히 녹인 후 4℃와 25℃에서 10일 동안 방치하였다. 1, 7, 10일 간격으로 호스래디쉬 퍼옥시다제 25 ㎍을 각각 대조군과 비교군에서 채취하여 단백질 분해정도를 알아보기 위해 SDS-폴리아크릴아미드 (Laemmli 1970) 전기영동법에 의하여 스태킹 겔(stacking gel) 5%와 분리 겔(separating gel) 12.5%로 만들어 전개시킨 후 비교하였으며, 표준단백질로 미오신 (205 kDa), β-갈락토시다제 (116 kDa), 포스포릴라제 b (97 kDa), 프룩토스-6-포스페이트 키나아제 (84 kDa), 알부민 (66 kDa), 글루탐산 탈수소효소(glutamic dehydrogenase) (55 kDa), 난백 알부민(ovalbumin) (45 kDa), 글리세알데히드-3-포스페이트 탈수소효소(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase) (36 kDa), 카보닉 안히드라제(carbonic anhydrase) (29 kDa), 트립시노겐 (24 kDa), 트립신 저해제 (20 kDa), α-락트알부민 (14.2 kDa), 아프로티닌(aprotinin) (6.5 kDa)이 혼합된 시그마사 마커를 사용하였다. To determine the effect on proteolysis, 1 mg of purified horseradish peroxidase (Sigma-Aldrich Co.) (40 kDa) was added to control distilled water, control acidic ionized water and reduced ionized water (ORP -850). mV, pH 11) completely dissolved in 1 ml and left for 10 days at 4 ℃ and 25 ℃. 25 μg of horseradish peroxidase at 1, 7, and 10 days intervals were collected from the control and control groups, respectively, to determine the degree of protein degradation. Stacking gel by SDS-polyacrylamide (Laemmli 1970) electrophoresis ) 5% and 12.5% separation gel (separating gel) was developed and compared, compared with the standard protein myosin (205 kDa), β-galactosidase (116 kDa), phosphorylase b (97 kDa), Fructose-6-phosphate kinase (84 kDa), albumin (66 kDa), glutamic dehydrogenase (55 kDa), egg white albumin (ovalbumin) (45 kDa), glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (glyceraldehyde) -3-phosphate dehydrogenase (36 kDa), carbonic anhydrase (29 kDa), trypsinogen (24 kDa), trypsin inhibitor (20 kDa), α-lactalbumin (14.2 kDa), apro A sigma marker mixed with aprotinin (6.5 kDa) was used.

10분의 짧은 시간 동안 반응시킨 후 전기영동을 하였을 경우 대조군인 3차 증류수와 산성전리수에 녹인 호스래디쉬 퍼옥시다제는 단백질이 분해되기 시작하면서 약 26 kDa 띠가 형성되었으며, 산성전리수에 녹인 단백질도 분해되기 시작하여 약 26 kDa과 35 kDa에 띠가 형성되었지만 환원전리수에서 반응시킨 단백질은 분해가 일어나지 않았다(도 1).When reacted for a short time of 10 minutes and electrophoresis, horseradish peroxidase dissolved in tertiary distilled water and acidic ionized water as a control, about 26 kDa band was formed as the protein began to decompose, The dissolved protein also began to degrade and a band was formed at about 26 kDa and 35 kDa, but the protein reacted in the reduced ionized water did not degrade (FIG. 1).

각각 4℃와 25℃에서 7일 동안에 3차 증류수와 산성전리수에 녹여 반응시킨 단백질도 처음에 나타났던 동일한 부분의 단백질띠가 형성되었고, 그 분해 정도가 확연하게 증가한 것으로 나타났다(도 2).Proteins dissolved in the tertiary distilled water and the acidic ionized water for 7 days at 4 ° C. and 25 ° C., respectively, formed the same protein bands as the first ones, and the degree of degradation was remarkably increased (FIG. 2).

각각 4℃와 25℃ 조건의 3차 증류수에서 10일째 반응시킨 단백질은 처음에 분해되었던 약 26 kDa의 단백질띠가 계속 유지되었고 더 이상의 분해는 일어나지 않았다. 산성전리수에서는 약 26 kDa, 35 kDa의 단백질띠를 포함한 약 17 kDa, 22 kDa, 38 kDa의 단백질 띠가 형성되었으며 25℃에서 반응시킨 각 조건의 단백질띠는 4℃에서 반응시킨 것보다 분해정도가 더 높은 것으로 보아 산성전리수의 단백질 분해 작용은 온도에 영향을 받을 수 있다는 것을 추측할 수 있었고, 환원전리수에서 반응시킨 단백질은 전 반응시간 동안 온도 변화에 영향없이 거의 분해되지 않았다(도 3). Proteins reacted at 10 days in tertiary distilled water at 4 ° C. and 25 ° C. conditions, respectively, retained a protein band of about 26 kDa that was initially degraded, and no further degradation occurred. In acidic ionized water, about 17 kDa, 22 kDa, 38 kDa protein bands were formed, including about 26 kDa and 35 kDa protein bands. It can be inferred that the higher the temperature, the proteolytic effect of the acidic ionized water may be affected by the temperature, and the protein reacted in the reduced ionized water was hardly decomposed without affecting the temperature change during the entire reaction time (Fig. 3). ).

이러한 결과를 통하여, 산성전리수는 in vitro에서 단백질의 변성 또는 분해를 유발할 수 있음을 보여줌으로써 장시간 동안의 산성전리수에의 노출은 동물 조직세포이나 단백질 등의 생체물질을 변성시킬 수 있을 것으로 생각되는 반면에, 환원전리수는 3차 증류수와 산성전리수와 달리 단백질 분해에 대한 보호 작용을 확인할 수 있었다.These results suggest that acidic ionized water may induce degeneration or degradation of proteins in vitro , suggesting that prolonged exposure to acidic ionized water may denature animal tissue cells or proteins. On the other hand, the reduced ionized water was able to confirm the protective action against protein degradation unlike the distilled water and the acidic ionized water.

<실시예 2> 환원전리수가 효소 활성에 미치는 영향Example 2 Effect of Reduction Ionize on Enzyme Activity

본 발명의 환원전리수가 효소 활성에 미치는 영향을 조사하기 위하여, 호스래디쉬 퍼옥시다제의 효소 활성을 측정하였다. 150 mM 인산나트륨 완충용액(pH 6.0)에서 제 1기질인 구아이아콜(guaiacol)의 최종농도가 15 mM, 제 2기질인 H2O2의 최종농도가 5 mM가 되게 하여 호스래디쉬 퍼옥시다제에 의한 효소반응에 의하여 470 nm에서 1분 동안 변화하는 흡광도의 변화량을 4℃와 25℃ 에서 각각 측정하였다(표 1, 표 2). 효소의 비활성도는 일정한 양의 효소단백질이 가지는 활성을 의미한다.In order to investigate the effect of the reduced ionization number on the enzyme activity, the enzyme activity of horseradish peroxidase was measured. In the 150 mM sodium phosphate buffer (pH 6.0), the final concentration of the first substrate, guaiacol, was 15 mM, and the final concentration of H 2 O 2 , the second substrate, was 5 mM. The amount of change in absorbance changed at 470 nm for 1 minute by enzymatic reaction by multiple agents was measured at 4 ° C. and 25 ° C., respectively (Table 1 and Table 2). The activity of an enzyme refers to the activity of a certain amount of enzyme protein.

4 ℃에서 반응시간에 따른 상대적 효소활성도Relative enzyme activity according to reaction time at 4 ℃ 4 ℃4 ℃ 상대적 효소비활성도 (%)         Relative enzyme inactivity (%) 10 분10 minutes 7 일7 days 10 일10 days 3차증류수3rd distilled water 100100 100100 100100 산성전리수Acid ionized water 61.361.3 13.5313.53 9.39.3 환원전리수Reduction ionization 101.8101.8 102.7102.7 103.2103.2

25 ℃에서 반응시간에 따른 상대적 효소활성도Relative enzyme activity with reaction time at 25 ℃ 25℃25 ℃ 상대적 효소비활성도 (%)         Relative enzyme inactivity (%) 10 분10 minutes 7 일7 days 10 일10 days 3차증류수3rd distilled water 100100 100100 100100 산성전리수Acid ionized water 61.361.3 00 00 환원전리수Reduction ionization 101.8101.8 102.0102.0 102.4102.4

상기한 바로부터 알 수 있는 바와 같이, 환원전리수는 효소단백질 분해에 대하여 보호작용을 할 뿐만 아니라 효소의 활성손실에 대해서도 3차 증류수와 유사한 탁월한 보호효과를 나타내었다. As can be seen from the above, the reduced ionized water showed an excellent protective effect similar to tertiary distilled water as well as protecting against enzyme protein degradation.

이상에서 상세히 설명하고 입증하였듯이, 본 발명의 환원전리수를 이용한 단백질 보존액은 단백질의 분해를 방지하고 단백질의 구조적 안정화에 기여하므로 간편하고 경제적이며 환경친화적인 보존액으로서 생명공학 분야의 반응세정액으로 응용될 수 있다.As described and demonstrated in detail above, the protein preservation solution using the reduced ionization water of the present invention prevents degradation of the protein and contributes to the structural stabilization of the protein, so that it is a simple, economical and environmentally friendly preservative solution, and can be applied as a reaction washing solution in the biotechnology field. Can be.

도 1은 산성전리수와 환원전리수의 단백질 보존 효과를 분석하기 위하여 10분 경과 후의 단백질의 분해에 대하여 전기영동을 실시한 결과이다.Figure 1 shows the results of electrophoresis on the degradation of protein after 10 minutes in order to analyze the protein preservation effect of acidic and reduced ionized water.

도 2는 산성전리수와 환원전리수의 단백질 보존 효과를 분석하기 위하여 7일 경과 후의 단백질의 분해에 대하여 전기영동을 실시한 결과이다.Figure 2 is the result of electrophoresis for the degradation of protein after 7 days in order to analyze the protein preservation effect of acidic and reduced ionized water.

도 3은 산성전리수와 환원전리수의 단백질 보존 효과를 분석하기 위하여 10일 경과 후의 단백질의 분해에 대하여 전기영동을 실시한 결과이다.Figure 3 is the result of electrophoresis of the degradation of the protein after 10 days in order to analyze the protein preservation effect of the acidic and reduced ionized water.

* 도 1 내지 도 3의 도면기호에 대한 설명 * Description of reference numerals of FIGS. 1 to 3

1 레인 : 마커Lane 1: marker

2 레인 : 4℃ 3차 증류수Lane 2: 4 ° C tertiary distilled water

3 레인 : 4℃ 산성전리수 Lane 3: acidic ionized water at 4 ℃

4 레인 : 4℃ 환원전리수Lane 4: 4 ℃ reduced ionized water

5 레인 : 25℃ 3차 증류수Lane 5: 25 ° C tertiary distilled water

6 레인 : 25℃ 산성전리수Lane 6: acidic ionized water at 25 ℃

7 레인 : 25℃ 환원전리수Lane 7: 25 ℃ reduced ionized water

Claims (7)

환원전리수를 포함하는 단백질 보존액.Protein preservation solution containing reduced ionized water. 제1항에 있어서, 환원전리수의 산화환원전위가 -1000mV 내지 -200mV인 단백질 보존액.The protein preservation liquid of Claim 1 whose redox potential of a reduced ionization water is -1000mV--200mV. 제1항에 있어서, 환원전리수의 pH가 6 내지 11인 단백질 보존액.The protein preservative of claim 1, wherein the pH of the reduced ionized water is 6-11. 제1항에 있어서, 단백질 저해제, 금속 킬레이트, DTT(dithiothreitol), 2-메르캅토에탄올로 이루어진 군으로부터 하나 이상 선택된 것을 추가로 포함하는 단백질 보존액.The protein preservative of claim 1, further comprising at least one selected from the group consisting of a protein inhibitor, a metal chelate, dithiothreitol (DTT), and 2-mercaptoethanol. 환원전리수를 이용하여 단백질을 보존하는 방법.Preservation of protein using reduced ionization water. 제5항에 있어서, 환원전리수의 산화환원전위가 -1000mV 내지 -200mV인 방법.The method according to claim 5, wherein the redox potential of the reduced ionization water is -1000 mV to -200 mV. 제5항에 있어서, 환원전리수의 pH가 6 내지 11인 방법.The method of claim 5 wherein the pH of the reduced ionized water is 6-11.
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Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4663289A (en) * 1984-06-22 1987-05-05 Veech Richard L Electrolyte solutions and in vitro use thereof
US4961928A (en) * 1986-03-19 1990-10-09 American Red Cross Synthetic, plasma-free, transfusible storage medium for red blood cells and platelets
US5674537A (en) * 1990-05-23 1997-10-07 Medical Discoveries, Inc. Electrolyzed saline solution containing concentrated amounts of ozone and chlorine species
JPH11292701A (en) * 1998-04-03 1999-10-26 Shimizu Pharmaceutical Co Ltd Cell protecting liquid
KR20040019772A (en) * 2002-08-29 2004-03-06 대한민국(관리부서:국립수산과학원) A solution for sterilizing pathogenic bacteria in fish and a method for producing the same , and a method for neutralizing thereof

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4663289A (en) * 1984-06-22 1987-05-05 Veech Richard L Electrolyte solutions and in vitro use thereof
US4961928A (en) * 1986-03-19 1990-10-09 American Red Cross Synthetic, plasma-free, transfusible storage medium for red blood cells and platelets
US5674537A (en) * 1990-05-23 1997-10-07 Medical Discoveries, Inc. Electrolyzed saline solution containing concentrated amounts of ozone and chlorine species
JPH11292701A (en) * 1998-04-03 1999-10-26 Shimizu Pharmaceutical Co Ltd Cell protecting liquid
KR20040019772A (en) * 2002-08-29 2004-03-06 대한민국(관리부서:국립수산과학원) A solution for sterilizing pathogenic bacteria in fish and a method for producing the same , and a method for neutralizing thereof

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