KR100421779B1 - Korean entomopathogenic nematode, steinernema carpocapsae gsn 1 and control method for insect - Google Patents
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Abstract
본 발명은 한국산 곤충병원성 선충 및 그에 의한 방제법에 관한 것으로, 농림 해충에 대한 곤충병원성 선충인 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1(Steinernama carpocapsaeGSN 1)와 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1에 의한 방제방법에 관한 것이다. 본 발명의 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1(Steinernama carpocapsaeGSN 1)는 해충에 대한 치사효과가 매우 높아 농림해충에 대한 방제용으로 사용할 수 있을 뿐만 아니라 화학적 방제의 단점을 극복할 수 있는 새로운 환경친화형 해충 방제 인자이다.The present invention relates to a Korean insect pathogenic nematode and a method for controlling the same, and a method for controlling insects by a Steinernama carpocapsae GSN 1 and a Steinernama carpocapsae GSN 1 which are insect pathogenic nematodes against agricultural and forest pests. It is about. Steinernama carpocapsae GSN 1 (Stainerama carpocapsae GSN 1) of the present invention has a very high lethal effect on pests can be used for the control of agricultural pests as well as a new environmentally friendly to overcome the disadvantages of chemical control Type is pest control factor.
Description
본 발명은 한국산 곤충병원성 선충 및 그에 의한 방제법에 관한 것으로서,더욱 상세하게는 우리 나라 토양으로부터 분리한 선충을 이용하여 우리 나라의 중요 농림해충들에 대한 환경친화적인 생물학적 방제방법에 관한 것이다.The present invention relates to a Korean insect pathogenic nematode and a method for controlling the same, and more particularly, to an environmentally friendly biological control method for the important agricultural pests of our country by using a nematode isolated from the soil of our country.
지금까지 우리나라의 해충방제는 주로 화학살충제에 의존하여 왔고 그로 인하여 저항성 해충의 출현, 잠재해충의 해충화, 환경오염에 의한 생태계 파괴, 국민 건강 저해 등 많은 부작용이 초래되고 있다. 따라서 새로운 해충 방제법이 요구된다.To date, pest control in Korea has been mainly dependent on chemical pesticides, which has caused many side effects such as the emergence of resistant pests, pests of latent pests, destruction of ecosystems caused by environmental pollution, and impairment of public health. Therefore, new pest control methods are required.
새로운 해충 방제법으로 가장 효과적인 방법으로는 곤충병원성 선충에 의한 해충의 미생물적 방제법이 있다.The most effective method for controlling new pests is the microbial control of pests by insect pathogenic nematodes.
곤충병원성 선충은 기주에게 패혈증을 일으켜 24시간 내지 48시간의 짧은 시간에 기주를 치사시킬 수 있는 활용가능성 높은 생물농약이다. 그 외에도 곤충병원성 선충은 높은 병원성, 효과의 지속성, 대량생산성, 광범위한 기주범위, 유용동식물에 대한 안전성, 살포의 용이함, 다른 방제인자와의 혼용 가능성 등으로 인하여 방제방법으로 무한한 가능성을 가진다. 특히, 최근에는 경제성장에 따른 국민생활의 질적 향상으로 인한 식품안전과 환경오염에 대한 사회적 관심의 증대, 재배자의 고령화에 따른 농약 살포의 회피, 외래 유입 해충에 대한 효과적인 농약의 부재, 과다한 살충제의 남용으로 인한 저항성 해충의 출현, 농약처리에 의한 값비싼 수분매개 곤충의 피해 등에 현명하게 대체할 수 있는 방제 수단이 요구되고 있으며, 이러한 시대적 상황에 가장 현실적으로 접근할 수 있는 해충방제법이 바로 생물농약인 곤충병원성 선충을 이용한 생물적 방제법이라 할 수 있다. 또한 특정 지역에 분포하고 있는 고유 곤충병원성 선충일 경우는 이미 지역해충들과 함께 생태적으로 공존해 왔을 뿐만 아니라, 유용 유기체에 대하여 안전할 수 있기 때문에 이용상의 장점이 있다.Insect pathogenic nematodes are highly available biopesticides that can cause sepsis on the host and kill the host in as little as 24 to 48 hours. In addition, entomopathogenic nematodes have unlimited potential as control methods due to their high pathogenicity, sustainability of effect, mass productivity, wide host range, safety for useful plants and animals, ease of spreading, and the possibility of mixing with other control factors. In particular, recently, the social interest in food safety and environmental pollution due to the improvement of the quality of people's life due to economic growth, the avoidance of pesticide application due to the aging of growers, the absence of effective pesticide against the invasive pests, and the excessive pesticide The emergence of resistant pests caused by abuse and the treatment of expensive pollinated insects caused by pesticide treatment are required to control them wisely, and pest control methods that can most realistically approach these times are biological pesticides. It can be called a biological control method using insect pathogenic nematodes. In addition, indigenous insect pathogenic nematodes distributed in a specific region has advantages in that they can not only coexist ecologically with local pests but also can be safe for useful organisms.
현재, 미국을 비롯한 몇몇 외국에서 해충의 생물적 방제를 위하여 곤충병원성 선충에 대한 연구를 하고 있으며, 이들 중 몇몇은 이미 상품화되는 것도 있다. 국내 출원된 것으로는 출원번호 제 1999-015472호의 등얼룩풍뎅이 유충 방제용 바실러스 파필리애 및 그를 이용한 방제방법이 있으나 곤충병원성 선충을 이용한 해충의 생물적 방제에 관한 연구는 거의 전무한 실정이다.Currently, several foreign countries, including the United States, are studying insect pathogenic nematodes for the biological control of pests, some of which are already commercialized. The domestic application has a Bacillus papylia for the control of dorsal beetle larvae of the application No. 1999-015472 and the control method using the same, but there is almost no research on the biological control of pests using insect pathogenic nematodes.
따라서, 본 발명은 한국산 곤충병원성 선충을 제공하는 것을 목적으로 한다.Therefore, an object of the present invention is to provide a Korean insect pathogenic nematode.
또한 본 발명은 한국산 곤충병원성 선충을 활용한 방제방법을 제공하는 것을 목적으로 한다.It is another object of the present invention to provide a method for controlling insects using Korean insect pathogenic nematodes.
도 1은 본 발명의 선충(Steinernema carpocapsaeGSN 1)이 거세미나방 유충을 치사시킨 뒤 유충 체내에서 성충이 된 모습을 나타낸 광학현미경 사진이고,1 is an optical micrograph of the nematode ( Stainernema carpocapsae GSN 1) of the present invention became adult in the larvae after killing the macroscopic larvae,
도 2는 본 발명의 선충(Steinernema carpocapsaeGSN 1)을 작은뿌리파리 유충에 처리한 다음 치사된 작은뿌리파리를 해부하였을 때 증식된 선충 모습을 나타내는 사진이고,Figure 2 is a photograph showing the appearance of the nematode propagated when the nematode ( Stainernema carpocapsae GSN 1) of the present invention treated small root flies larvae and then dissected the dead root flies,
도 3은 본 발명의 선충(Steinernema carpocapsaeGSN 1)에 의한 작은뿌리파리 유충 방제능을 확인한 것으로, 작은뿌리파리 유충이 있는 수박 모종에 선충을 처리하거나 처리하지 않은 후 수박 모종의 성장상태를 비교한 사진이고,Figure 3 confirms the ability to control small root fly larvae by the nematode ( Stainernema carpocapsae GSN 1) of the present invention, compared to the growth status of watermelon seedlings after treatment or not treated to the watermelon seedlings with small root fly larvae It is a photograph,
도 4는 본 발명의 선충(Steinernema carpocapsaeGSN 1)을 느타리버섯 재배사에 처리한 후, 선충에 의해 긴수염버섯파리가 치사되어 건강하게 자란 느타리버섯과 피해를 받은 무처리구 재배상을 비교한 사진이다.Figure 4 is a picture comparing the cultivated cultivation of healthy cultivars and the damaged cultivated oyster mushroom flies by killing nematode mushroom fly by nematodes after treatment of nematode ( Stainernema carpocapsae GSN 1) of the present invention.
상기의 목적을 달성하기 위하여 본 발명은 농림 해충에 대한 곤충병원성 선충인 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1 KCTC 0981BP(Steinernama carpocapsaeGSN 1)를 제공한다.In order to achieve the above object, the present invention provides a Steinernama carpocapsae GSN 1 (Stainerama carpocapsae GSN 1), which is an insect pathogenic nematode GSN 1 KCTC 0981BP for agricultural and forest pests.
또한 본 발명은 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1 KCTC 0981BP(Steinernama carpocapsaeGSN 1)를 이용한 해충의 방제방법을 제공한다.In another aspect, the present invention provides a pest control method using a Steinernama carpocapsae GSN 1 (Stainerama carpocapsae GSN 1 KCTC 0981BP).
이하 본 발명을 상세하게 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in detail.
본 발명자들은 신규한 곤충병원성 선충을 우리 나라 토양으로부터 분리하여 분류하였고, 이를 이용한 해충의 방제효과를 확인하여 본 발명을 완성하였다.The inventors separated and classified the new insect pathogenic nematodes from the soil of our country, and completed the present invention by confirming the control effect of pests using the same.
본 발명의 곤충병원성 선충은 토양에서 분리된 것으로, 꿀벌부채명나방유충을 미끼로 하여 분리되었다. 본 발명은 선충은 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1(teinernama carpocapsaeGSN 1)으로 유전자은행에 KCTC 0981BP로 기탁되었다.Insect pathogenic nematodes of the present invention have been separated from the soil, it was isolated by the honey bee moth larva as bait. In the present invention, nematodes have been deposited as KCTC 0981BP in the GenBank as a Steinerman carpocapsae GSN 1 ( teinernama carpocapsae GSN 1).
스테이너나마 카르포캅새 GSN 1는 꿀벌부채명나방 노숙 유충에서 증식시켜 이용하는데 배양조건은 18 내지 30 ℃이고, 보관방법은 8 ℃ 내외의 냉장보관이다. Steinermacarpocapus GSN 1 is used to grow in homeless larvae bee beetle moth culture conditions are 18 to 30 ℃, the storage method is refrigerated storage of about 8 ℃.
상기 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1 수컷 성충은 교접자 끝이 뽀족하며, 꼬리부분의 생식돌기가 6쌍인 형태적인 특징을 갖는다. 교접자의 평균 길이는 75 ㎛이하이고, 암컷의 경우 음문에 이중 덮게가 없다. 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1의 생활사는 알, 1령충, 2령충, 3령충, 4령충, 성충의 단계로, 토양에서 3령 유충(감염태 유충)의 상태로 기주 곤충에 침입하여 성충이 되어 기주 곤충의 체내에서 교미 후 2-3세대를 경과한다. 이후 충체내에서 탈출하여 토양으로 나와 다른 기주에 감염을 일으키는 생활환을 가지는데 기주를 치사시키는데는 24시간에서 48시간이 소요되고 이후 충체 내에서 증식되는 것은 온도와 수분 조건 등에 따라 다르나 25 ℃에서 7일정도 소요된다.The Steinama carpocap vulture GSN 1 male adult has a morphological characteristic of 6 pairs of genital processes in the tail and a sharp end. The average length of the ligator is 75 μm or less, and the female has no double covering on the vulva. The life cycle of GSN 1 in Stenamacarpocapsae GSN 1 is at the stage of eggs, 1 worm, 2 worms, 3 worms, 4 worms, and adults. 2 to 3 generations after mating in the host insect body. It then takes 24 hours to 48 hours to kill the host and escapes from the cell to the soil and infects other hosts. The growth in the body afterwards depends on temperature and moisture conditions. It takes about 7 days.
인위적으로는 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1 선충에 감염된 치사충을 화이트 트랩(White trap)에 올려놓고, 25 ℃에서 2일이 경과되면 충외로 나오는 선충을 수득할 수 있다. 수득한 성충은 증식을 위하여 미끼곤충인 꿀벌부채명나방 노숙유충에 접종시키면 유충 한 마리 당 10만마리 내외의 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1 선충을 수확할 수 있다.Artificially, the dead worms infected with the Steinermacarcapac GSN 1 nematodes can be placed in a white trap, and nematodes can be obtained after 2 days at 25 ° C. The obtained adult insects can be harvested by inoculation into homeless larvae, beetle moths, which are bait insects for propagation.
스테이너나마 카르포캅새 GSN 1 선충은 하기의 방법으로 저장할 수 있다.Steinermacarpocapsa GSN 1 nematodes can be stored by the following method.
[스테이너나마 카르포캅새 GSN 1의 저장방법][Storage method of carpocapus GSN 1]
1. 냉장보관 : 100 ㎖ 세포배양용기에 멸균수, 트라이톤 엑스-100과 함께 20-30 ㎖(전체 선충의 농도는 10만 마리 이하)의 양으로 10 ℃내외의 냉장보관한다.1. Refrigerated Storage: Refrigerate around 10 ℃ in the amount of 20-30ml (total nematode concentration less than 100,000) with sterile water and Triton X-100 in 100ml cell culture vessel.
2. 액체질소 냉동보관 : 22 % 글리세롤에 2×105㎖ 농도로 접종 후 25 ℃ 로터리세이크에 100 rpm으로 24시간 유지시킨 후 1000 rpm으로 원심분리하여 70 % 메탄올(0 ℃)에 넣어 얼음 위에서 10분간 유지시키고, 이것을 1.5 ㎖ 튜브에 1 ㎖씩 넣어 -190 ℃의 액체 질소에 냉동보관한다.2. Freeze liquid nitrogen: Inoculate 2 × 10 5 ㎖ in 22% glycerol, maintain at 24 rpm for 24 hours in rotary shake at 25 ℃, centrifuge at 1000 rpm and put in 70% methanol (0 ℃) on ice. Hold for 10 minutes, and place it in 1 ml of 1.5 ml tube and freeze in -190 ℃ liquid nitrogen.
3. 보관제를 이용한 냉장보관 : 고체형 보관제와 함께 넣어 10 ℃ 내외의 냉장보관한다.3. Refrigerated storage using a storage agent: Store with a solid storage agent refrigerated around 10 ℃.
상기 방법 중 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1는 냉장보관(1)으로 보관하는 것이 가장 바람직하다.Among the above methods, it is most preferable to store the Steinermacarcapac GSN 1 in the cold storage (1).
본 발명의 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1(KCTC 0981BP)는 해충에 대하여 병원성을 가지며, 더욱 구체적으로는 대상 해충의 체내에 침입하여 공생세균이 패혈증을 유발시켜 해충을 치사시킨다. 상기 해충은 농림해충이 바람직하고, 더욱 바람직하게는 작은뿌리파리, 긴수염버섯파리, 명주달팽이 및 거세미나방이다.Steinermacarpocapsae GSN 1 (KCTC 0981BP) of the present invention is pathogenic to pests, and more specifically, invades the body of the target pests and causes septicemia to kill the pests. The pests are preferably agricultural and forest pests, and more preferably, small root flies, long mustard mushroom flies, silk snails, and castella moths.
도 1 및 도 2에서는 본 발명의 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1(KCTC 0981BP)가 해충을 치사시킨 다음 증식하여, 성충이 된 모습을 나타내었다.In Figures 1 and 2, the Steinermacarpocapus GSN 1 (KCTC 0981BP) of the present invention showed the appearance of becoming an adult after killing the pest.
또한 본 발명은 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1를 이용한 해충 방제법을 제공한다. 상기 해충 방제법은 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1(KCTC 0981BP)를 농작물 또는 농림해충에 적용하는 것을 특징으로 한다. 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1(KCTC 0981BP)를 식물의 토양, 종자, 묘, 경엽, 또는 뿌리에 지상살포, 수면 또는 토양처리, 침지처리하고, 제형은 액체 상태로 물에 희석하여 사용하거나 수용성 고형 제형을 이용하는 것 등이 바람직하다. 더욱 바람직하게는 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1(KCTC 0981BP)를 물에 현탁하여 1 헥타르 당 105내지 1015마리로 분무하는 것이 좋다. 가장 바람직하게는 108∼1010마리/ha를 처리하는 것이다.In another aspect, the present invention provides a pest control method using the Steinerman carpocapsae GSN 1. The pest control method is characterized in that the application of the Steinerman carpocap bird GSN 1 (KCTC 0981BP) to crops or agricultural pests. Stainernape Carcapacus GSN 1 (KCTC 0981BP) is sprayed onto the soil, seeds, seedlings, foliage, or roots of plants by ground spraying, water surface treatment or soil treatment, and the formulation is diluted or diluted with water in liquid form. It is preferable to use a solid dosage form. More preferably, Steinermacarcapac GSN 1 (KCTC 0981BP) is suspended in water and sprayed at 10 5 to 10 15 per hectare. Most preferably, 10 8-10 10 grains / ha are processed.
스테이너나마 카르포캅새 GSN 1를 이용한 해충 방제는 파종기, 이앙기, 유묘기, 개화기, 등숙기, 수확기, 휴한기 등의 시기에 실시하는 것이 바람직하고, 가장 바람직하게는 유묘기 시기에 실시하는 것이다.Pest control using the Steinernacarcapacus GSN 1 is preferably carried out at the time of planting, rice transplanting, seedling, flowering, ripening, harvesting, resting, and most preferably at the seedling stage.
또한 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1를 이용한 해충 방제는 농림해충에 대하여 실시하는 것이 바람직하고, 더욱 바람직하게는 작은뿌리파리, 긴수염버섯파리, 명주달팽이 및 거세미나방이다. 또한 적용식물은 배추, 버섯, 잔디, 과채류 식물이다.In addition, pest control using the stainer nacarcapacus GSN 1 is preferably performed on agricultural and forest pests, and more preferably, small root flies, long mustard mushroom flies, silk snails, and castella moths. Also applied are cabbages, mushrooms, grasses, and vegetable plants.
또한 해충 방제법은 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1에 농약 또는 비료를 더욱 혼합하여 사용할 수 있다.In addition, the pest control method can be used by further mixing pesticides or fertilizers with Stenamann carpocapsae GSN 1.
이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 바람직한 실시예를 제시한다. 그러나 하기의 실시예는 본 발명을 보다 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐 본 발명이 하기의 실시예에 한정되는 것은 아니다.Hereinafter, preferred examples are provided to aid in understanding the present invention. However, the following examples are provided only to more easily understand the present invention, and the present invention is not limited to the following examples.
[실시예] 선충의 분리 및 동정EXAMPLES Isolation and Identification of Nematodes
경기도 포천의 잣나무림에서 토양을 채취하여 꿀벌부채명나방유충을 미끼로 하여 분리하였다. 300 ㏄의 플라스틱 용기에 채집한 토양을 고루 섞어 200 ㏄넣고, 인공사료에서 사육한 꿀벌부채명나방 노숙유충 10마리씩을 넣었다. 그리고 7일 후에 선충에 의한 치사 유무를 조사하였고, 선충의 병원성 검정을 위하여 페트리 접시에 여과지 한 장을 깔고 이 선충을 재접종하여 병원성 선충임을 확인하였다. 이것을 화이트 트랩(White trap)을 설치하여 수확한 후 8 ℃ 내외의 냉장고에 보관하였다.Soil was harvested from the pine forests of Pocheon, Gyeonggi-do, Korea. The soil collected in a 300 플라스틱 plastic container was mixed with 200 토양 and 10 homeless larvae of bee-flying moths were bred from artificial feed. After 7 days, the presence of lethal nematodes was examined, and the nematode was re-inoculated with a sheet of filter paper in a Petri dish for pathogenicity test. This was harvested by installing a white trap (White trap) and stored in a refrigerator around 8 ℃.
분리된 선충은 도 1에서와 같이 길쭉한 실모양의 형태를 하고 있다. 상기 선충은 동정한 결과 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1(Steinernama carpocapsaeGSN 1)로 분류되었으며, 유전자은행에 KCTC 0981BP로 기탁하였다.The isolated nematodes are in the form of elongated threads as in FIG. 1. The nematode was identified as Steinernama carpocapsae GSN 1 (Stainerama carpocapsae GSN 1) as a result of identification, and deposited as KCTC 0981BP in the GenBank.
[실험예]Experimental Example
실험1. 작은뿌리파리 유충에 대한 병원성Experiment 1. Pathogenicity to Small Root Fly Larva
작은뿌리파리 유충은 경남 진주시 소재 육묘장에서 트레이 셀(tray cell)의 상토에 있는 유충을 채집하여 사용하였다.Small root fly larvae were used to collect the larvae in the top of the tray cell (tray cell) in the nursery of Jinju, Gyeongnam.
상기 실시예의 곤충병원성 선충의 작은뿌리파리에 대한 병원성을 알아보기 위하여 반수치사농도(LC50)를 조사하였다. 플라스틱 페트리접시의 PDA배지에서 20일 동안 원형느타리버섯 균사를 키운 다음, 직경 15 × 높이 20 ㎜의 멀티웰 조직배양플레이트(multiwell tissue culture plate)에 코르르 끌(cork borer)로 PDA배지를 떼어 넣었다. 여기에 작은뿌리파리 유충을 령기별로 2, 3, 4령 구분하여 넣고, 실시예의 선충을 0, 5, 10, 20, 40, 80, 160마리 농도로 0.5 ㎖씩 처리하여 각각 18, 24, 30 ℃의 항온기에 두었다. 선충은 살균 증류수로 희석 하여 사용하였다. 선충 처리 후 24시간 간격으로 해부현미경 하에서 치사유무를 확인하였고, 결과는 하기 표 1에 나타내었다. 하기 반수치사농도는 작은뿌리파리의 반수가 치사하는데 요구되는 선충의 마리수이다. 반수치사농도는 PROBIT 분석이라는 통계 프로그램을 이용하여 조사하였고, 50 %가 치사될 수 있는 농도를 컴퓨터로 추정하였다. 또한 95 % 신뢰한계는 자연과학에서 통계적으로 인정하는 확율의 범위로, 95 %의 범위에서 다른 처리의 결과와 차이를 비교하기 위하여 분석하였다. To determine the pathogenicity of small root flies of the insect pathogenic nematodes of the above embodiment50) Was investigated. The circular elder mushroom mycelia were grown on a PDA in a plastic petri dish for 20 days, and then the PDA medium was removed by cork borer into a multiwell tissue culture plate having a diameter of 15 x 20 mm in height. . Here, small root fly larvae are divided into 2, 3 and 4 ages by age, and the nematodes of Examples were treated with 0, 5, 10, 20, 40, 80 and 160 concentrations of 0.5 ml each to 18, 24 and 30, respectively. Placed in a thermostat at < RTI ID = 0.0 > Nematodes were used diluted with sterile distilled water. After nematode treatment, the presence or absence of lethality was examined under a dissecting microscope at 24 hour intervals, and the results are shown in Table 1 below. The following half lethal concentration is the number of nematodes required to kill half the small root flies. Semi-lethal concentrations were investigated using a statistical program called PROBIT analysis, and a computer estimate of the concentration at which 50% could be killed. In addition, the 95% confidence limit is a range of statistically accepted probabilities in the natural sciences, which was analyzed in the 95% range to compare the results with other treatments.
상기 표 1의 결과는 18 ℃에서 3령충과 4령충의 반수치사농도는 18.4와 14.9로 차이가 있지만 95 % 신뢰한계는 11.0-27.5, 8.4-22.5로 두 령기에서 신뢰한계의 범위가 겹친다. 따라서, 선충의 치사율이 4령충에 비하여 3령충에서 유의하게 효과가 있다고 할 순 없다. 그러나 2령충과 3령충 간의 비교를 하면 신뢰한계의 범위가 겹치지 않기 때문에 3령충에 대한 치사율이 유의하게 높다.The results of Table 1 show that the semi-lethal concentrations of the third and fourth insects at 18 ° C. differ between 18.4 and 14.9, but the 95% confidence limits are 11.0-27.5 and 8.4-22.5. Therefore, the nematode mortality rate can not be said to be significantly effective in three nymphs compared to four nymphs. However, in comparison between the second and third worms, the mortality rate for the third worm is significantly higher because the range of confidence limits does not overlap.
또한, 육묘장에서 작은뿌리파리 유충의 방제율을 알아보기 위하여 수박 묘종이 심어 있는 온실 육묘장의 32공 트레이셀(tray cell)에서 각 셀내의 작은뿌리파리의 밀도를 조사한 다음 각 셀에 600마리 농도로 실시예의 선충을 처리하였다. 처리 1, 2, 3주 후 작은뿌리파리의 밀도를 조사하여 유충 감소율을 구하였고 하기 표 2에 나타내었다.In addition, in order to determine the control rate of small root fly larvae in nursery nursery, the density of small root fly flies in each cell was investigated in a 32-hole tray cell of a greenhouse nursery where watermelon seedlings were planted. The nematodes of the examples were treated. After 1, 2 and 3 weeks of treatment, the density of small root flies was examined to determine the larval reduction rate, and is shown in Table 2 below.
도 3은 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1에 의한 작은뿌리파리 유충의 방제를 확인한 것으로, 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1를 처리한 수박모종은(a) 건강하게 자라는 반면, 처리하지 않은 수박 모종(b)은 건강하지 않았다.Figure 3 confirms the control of small-root fly larvae by the Steinama carpocap bird GSN 1, watermelon seedlings treated with the Steinerman carpocap bird GSN 1 (a) grows healthy, untreated watermelon seedlings (b) was not healthy.
플러그 트레이(Plug tray) 내에서 실시예의 선충 생존정도를 확인하기 위하여 플러그 육묘장의 1.5 ×40 m 크기의 벤치에 선충을 108마리/ha 농도로 호스형 분무기로 살포한 다음 처리 35일과 42일 후에 각 10개의 트레이에서 상토를 채취하였다. 꿀벌부채명나방 유충을 상토에 넣어 꿀벌부채명나방 유충의 치사유무로 선충의 생존율을 조사하였고, 그 결과는 하기 표 3에 나타내었다.To confirm the nematode viability of the examples in a plug tray, nematodes were sprayed with a hose sprayer at a concentration of 10 8 birds / ha on a 1.5 × 40 m bench in a plug nursery, followed by 35 and 42 days after treatment. Topsoil was taken from each of the 10 trays. The survival rate of nematodes with or without lethal beetle moth larvae was put into the soil, and the results are shown in Table 3 below.
실험2.긴수염버섯파리에 대한 병원성 Experiment 2. Pathogenicity to Long-Beard Mushroom Flies
실시예 1의 선충의 긴수염버섯파리에 대한 병원성을 알아보기 위하여 반수치사농도(LC50)를 조사하였다. 긴수염버섯파리는 경남 진주시 인근 버섯재배사에서 긴수염버섯파리가 발생한 배지를 떼어내어 0.2 mm 체에 거른다음 분리한 것을 사용하였다. 플라스틱 페트리접시의 PDA배지에서 20일 동안 원형느타리버섯 균사를 키운 다음 직경 15 × 높이 20 ㎜의 멀티웰 조직배양플레이트에 배지를 넣은 다음, 긴수염버섯파리 유충을 령기별로 2, 3, 4령 구분하여 넣었다. 여기에 선충을 0, 5, 10, 20, 40, 80, 160마리 농도로 0.1 ㎖씩 처리하여 각각 20, 25 ℃의 항온기에 두었다. 선충 처리 후 24시간 간격으로 해부현미경 하에서 치사유무를 확인하여 하기 표 4에 나타내었다.In order to determine the pathogenicity of the nematode of the nematode of the nematode of Example 1, the half lethal concentration (LC 50 ) was investigated. As for the long beard mushroom fly, a medium in which a long beard mushroom fly was generated was removed from a mushroom cultivator near Jinju-si, Gyeongnam, and then separated into a 0.2 mm sieve. Growing circular hyphae mycelium for 20 days in a PDA of plastic petri dishes, and then placing the medium in a multiwell tissue culture plate 15 mm in diameter and 20 mm in height, and then distinguishing larvae of caterpillar fly larvae by age. Put it in. The nematodes were treated with 0.1 ml at concentrations of 0, 5, 10, 20, 40, 80 and 160, and placed in a thermostat at 20 and 25 ° C., respectively. After nematode treatment, the presence or absence of lethality under a dissecting microscope at 24 hour intervals is shown in Table 4 below.
또한 강원도 춘천시 소재 느타리버섯 재배사에 1 ×1.5 m 크기의 시험구를 5회 반복 완전 임의배치법으로 구성한 다음 선충 2.25 ×109마리/ha, 4.5 ×109마리/ha 농도로 4 L 살포하였다. 무처리구는 물만 4 L 살포하였다. 처리 7일째와 14일째 각 구에서 긴수염버섯파리 유충 밀도를 조사하여 감소율을 조사하여 표 5에 나타내었다.In addition, 1 × 1.5 m sized test plots were formed in the cultivated mushrooms of Chuncheon, Gangwon-do in five repeated complete randomization, and then 4 L was sprayed at a concentration of 2.25 × 10 9 / ha and 4.5 × 10 9 / ha. The untreated section was sprayed with 4 L of water only. On the 7th and 14th day of treatment, the density of larvae were examined in each sphere, and the reduction rate was examined.
도 4는 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1에 의한 긴수염버섯파리 유충의 방제를 확인한 것으로, 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1를 처리한 느타리버섯은(a) 건강하게 자라는 반면, 처리하지 않은 느타리버섯(b)은 건강하지 않았다.Figure 4 confirms the control of the long-bearing mushroom fly larva by the Steinerna carpocape GSN 1, the oyster mushroom treated with the Steinerma carpocape GSN 1 (a) grows healthy, but not Mushroom (b) was not healthy.
또한 느타리버섯 재배사내에서 선충의 생존을 알아보기 위하여 강원도 춘천시 소재 느타리버섯 재배사에 1 ×1.5 m 크기의 시험구를 5반복 완전 임의배치법으로 만들었다. 여기에 선충을 2.25 ×109마리/ha, 4.5×109마리/ha 농도로 4 L 살포하였다. 무처리구는 물만 4 L 살포하였다. 처리 7일째와 14일째 각 구에서 버섯배지 10 ×10 ×10 ㎤를 샘플링하여 실험실로 가져와 고루 섞은 다음, 직경 9 ㎝ ×높이 7.5 ㎝ 폴리에틸렌 컵에 넣었다. 여기에 꿀벌부채명나방 노숙 유충 5마리씩을 넣고 7일 후 치사유무를 조사하여 선충의 생존율을 확인하였다. 그 결과는 하기 6과 같으며, 선충은 처리 1주 후와 2주 후에 모두 100 %의 생존율을 보였다.In addition, in order to examine the survival of nematodes in cultivated mushrooms, a 1 × 1.5 m-sized test plot was made with 5 repeated complete randomization methods in cultivated mushrooms in Chuncheon, Gangwon-do. Nematodes were sprayed 4 L at a concentration of 2.25 × 10 9 birds / ha and 4.5 × 10 9 birds / ha. The untreated section was sprayed with 4 L of water only. On the 7th and 14th day of treatment, the mushroom medium 10 × 10 × 10 cm 3 was sampled, brought to the laboratory, mixed well, and placed in a polyethylene cup of 9 cm in diameter and 7.5 cm in height. Five homeless larvae of bee-flying moths were added to it, and after 7 days, the presence of lethal was checked to confirm the survival rate of nematodes. The results are as shown below, and nematodes showed a survival rate of 100% both after 1 week and 2 weeks after treatment.
실험3. 명주달팽이의 방제Experiment 3. Silk Snail Control
채소류의 해충인 명주달팽이에 대한 선충의 병원성을 확인하였다. 명주달팽이는 경남 진주의 배추포장에서 채집하였다. 수돗물로 모래를 깨끗이 씻은 다음48시간 말리고, 다시 850 ㎛ 체로 친 후 살균기에 넣어 2회 살균하였다. 살균된 모래를 다시 48시간 건조시킨 후 살균수로 수분을 13 %로 포함시킨 다음, 12 g씩 55 ×15 ㎜ 페트리 접시에 넣었다. 여기에 직경 50 ㎜로 자른 배추잎을 놓고 선충을 20, 40, 80, 160, 320, 640마리 농도로 물에 혼합하여 현탁액을 제조하고, 마이크로피펫으로 1 ㎖씩 접종하였다. 무처리는 살균수만 1 ㎖ 접종하였다. 처리 후 각 페트리 접시에 유패와 성패인 명주달팽이를 1마리씩 넣고 7일 후 해부현미경하에서 선충에 의한 감염 치사 여부를 조사하였다. 10개의 페트리 접시를 한세트로 4회 반복 실험하였다. 실험 결과 유패에서는 21.2마리, 성패에서는 24.1마리의 반수치사농도를 보였다.The pathogenicity of nematodes to silk snails, a pest of vegetables, was confirmed. Silken snails were collected from the cabbage packaging of Gyeongnam Pearl. The sand was washed with tap water, dried for 48 hours, again sifted in a 850 μm sieve and sterilized twice. The sterilized sand was dried again for 48 hours, and then, 13% of water was included in sterilized water, and then 12 g each was placed in a 55 × 15 mm Petri dish. Cabbage leaves cut to 50 mm in diameter were placed therein, and nematodes were mixed with water at 20, 40, 80, 160, 320, and 640 concentrations to prepare a suspension, and inoculated by 1 ml each with a micropipette. Untreated was inoculated with only 1 ml of sterile water. After the treatment, one petiole and one silk silk snail were put into each Petri dish, and 7 days later, the nematode infection was examined under a dissecting microscope. Ten Petri dishes were repeated four times in one set. Experimental results showed that hemi-concentrations were 21.2 in milk and 24.1 in milk.
또한 시설하우스 내에서 선충의 명주달팽이에 대한 병원성을 알아보기 위하여 경남 진주시 소재 25일된 배추가 있는 비닐하우스에 0.4 ×3 m구를 설정한 후 선충을 109마리/ha의 농도로 5 L씩 물조리개로 살포하였다. 실험은 3회 반복으로 수행하였으며, 무처리는 물만 5 L씩 물조리개로 살포하였다. 7일 후 각 처리구에서 달팽이를 회수하여 치사유무를 조사하였다. 실험결과는 표 8과 같이 유패에서는 63 %의 치사율을 나타내었고, 성패에서는 48 %의 치사율을 보였다.In addition, in order to examine the pathogenicity of the nematode's silkworm snail in the facility house, a 0.4 × 3 m sphere was set in a 25-day-old Chinese cabbage house in Jinju-si, Gyeongnam, and watered by 5 L at a concentration of 10 9 birds / ha. Sprayed with iris. The experiment was carried out in three iterations, and only 5 L of water was sprayed with a water stopper. After 7 days, the snails were collected from each treatment and examined for mortality. As shown in Table 8, the mortality rate was 63% in the case of fat loss and 48% in the case of success.
실험4. 거세미나방 유충 방제효과Experiment 4. Control effect of caterpillar moth
잔디 및 일반 채소 해충인 거세미나방 유충에 대한 선충의 병원성을 확인하였다. 야외에서 채집한 거세미나방 2∼3령충을 9 ㎝ 페트리접시에 여과지를 한 장 깔고, 10마리씩 넣었다. 여기에 선충을 100, 200, 400마리/㎖ 농도로 1 ㎖씩 접종한 후 폴리에틸렌 필름으로 봉하여 25 ℃ 항온기에 둔 다음 7일 후에 치사유무를 조사하였다. 대조구는 물만 1 ㎖씩 접종하였는데 3회 반복으로 실험하였다.The pathogenicity of nematodes to grassworms and common vegetable pests, macroscopic larvae, was confirmed. Two or three insecticides, collected outdoors, were placed on a 9 cm Petri dish with a sheet of filter paper, and 10 animals were placed. Nematodes were inoculated 1 ml at a concentration of 100, 200, 400 / ml, sealed with polyethylene film, placed at 25 ° C. incubator, and examined for mortality after 7 days. The control group was inoculated with 1 ml of water only and tested three times.
실험 결과 100마리/㎖ 농도에서는 76.7 %의 사충율을 나타냈고, 200, 400마리/㎖ 농도에서는 100 %의 치사율을 나타내었다.(표 9)Experimental results showed 76.7% mortality at 100 / ml concentrations and 100% mortality at 400 / ml concentrations (Table 9).
또한 선충을 야외에 처리하였을 때 방제효과를 알아보기 위하여 부산 동래베네스트골프장 연습장내에서 실험을 수행하였다. 60 ×60 ㎠ 크기의 시험구를 완전 임의배치법으로 배치한 다음 각 구에 있는 유충의 밀도를 조사하였다. 밀도조사 후 선충을 109마리/ha 농도로 물조리개로 3.74 L 살포하였다. 무처리구는 물만 3.74 L 살포하였다. 처리 일주일 후 거세미나방 유충 밀도를 조사하여 무처리구와 비교하였다. 조사 결과는 표 10과 같이 선충 처리구에서 83 %의 밀도 감소 효과가 있었다.In addition, experiments were conducted at the Dongnae Benest Golf Course in Busan to find out the control effect when nematodes were treated outdoors. Test specimens of 60 × 60 cm 2 size were placed in full randomization and the density of larvae in each bulb was examined. After density testing, the nematodes were sprayed with 3.74 L with a water stop at a concentration of 10 9 / ha. No treatment was sprayed with 3.74 L of water alone. After one week of treatment, the density of castor larvae was examined and compared with the untreated group. As a result of the investigation, the nematode treatment group showed a 83% density reduction effect as shown in Table 10.
상기에 언급한 바와 같이, 본 발명의 선충, 스테이너나마 카르포캅새 GSN 1 KCTC 0981BP(Steinernama carpocapsaeGSN 1)는 해충에 대한 치사효과가 매우 높아 농림해충에 대한 방제용으로 사용할 수 있다. 또한 본 발명은 화학적 방제의 단점을 극복하고 새로운 환경친화형 해충 방제 인자를 제공한다.As mentioned above, the nematode of the present invention, Steinernama carpocapsae GSN 1 KCTC 0981BP ( Steinernama carpocapsae GSN 1) is very high lethal effect on pests can be used for the control of agricultural and forest pests. The present invention also overcomes the disadvantages of chemical control and provides new environmentally friendly pest control factors.
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