JPWO2012036168A1 - Composition for treating muscular dystrophy - Google Patents
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Abstract
ＳＩＲＴ１活性化因子を有効成分として含んでいる、筋ジストロフィーを処置するための組成物を提供する。上記組成物は、ＳＩＲＴ１を核内移行させる因子をさらに含んでいてもよい。本発明は筋ジストロフィーの治療に有効である。Provided is a composition for treating muscular dystrophy comprising SIRT1 activator as an active ingredient. The composition may further contain a factor that causes SIRT1 to translocate into the nucleus. The present invention is effective for the treatment of muscular dystrophy.
Description
本発明は、筋ジストロフィーを処置するための組成物に関する。 The present invention relates to a composition for treating muscular dystrophy.
筋ジストロフィーは、骨格筋の変性および壊死が生じる疾患であり、臨床的には進行性の筋萎縮および筋力低下を呈する遺伝性の疾患である。筋ジストロフィーでは、筋細胞膜タンパク質の欠損および／または変異に起因して細胞膜が破壊され、次いで、筋細胞が崩壊して壊死する。筋ジストロフィーは種々のタイプが知られているが、いずれのタイプにおいても筋細胞の壊死によって特徴付けられる（非特許文献１参照）。 Muscular dystrophy is a disease in which skeletal muscle degeneration and necrosis occur, and clinically an inherited disease that exhibits progressive muscle wasting and weakness. In muscular dystrophy, the cell membrane is destroyed due to the loss and / or mutation of muscle cell membrane proteins, and then the muscle cells collapse and become necrotic. Various types of muscular dystrophy are known, and any type is characterized by myocyte necrosis (see Non-Patent Document 1).
筋ジストロフィーを有する患者では、血中のCK、LDH、GOT、GPT、アルドラーゼなどの筋細胞由来の酵素についての測定値が高い。筋ジストロフィーの患者では、筋細胞の細胞膜の安定化に関わるジストロフィンが欠損している。ジストロフィン以外の筋細胞膜タンパク質は、ジストロフィン結合蛋白質と総称され、ジストログリカン複合体（α、β）、サルコグリカン複合体（α、β、γ、δ）、シントロフィン複合体などが知られており、これらのタンパク質における変異もまた筋ジストロフィーにおいて観察される。 In patients with muscular dystrophy, measured values for enzymes derived from muscle cells such as CK, LDH, GOT, GPT, and aldolase in blood are high. Patients with muscular dystrophy are deficient in dystrophin, which is involved in the stabilization of muscle cell membranes. Muscle cell membrane proteins other than dystrophin are collectively called dystrophin-binding proteins, and dystroglycan complex (α, β), sarcoglycan complex (α, β, γ, δ), syntrophin complex, etc. are known. Mutations in these proteins are also observed in muscular dystrophy.
筋ジストロフィーは、ジストロフィンやサルコグリカンの原因タンパク質の異常によって生じ得る。近年、筋芽細胞の移植または注入、あるいは原因遺伝子の導入などの遺伝子治療が試みられている。しかしながら、筋ジストロフィーの有効な治療法は見出されていない。 Muscular dystrophy can be caused by abnormal dystrophin and sarcoglycan-causing proteins. In recent years, gene therapy such as transplantation or injection of myoblasts or introduction of a causative gene has been attempted. However, no effective treatment for muscular dystrophy has been found.
上記の課題を解決するために、本発明に係る組成物は、ＳＩＲＴ１活性化因子を有効成分として含んでいることを特徴としている。ＳＩＲＴ１活性化因子とは、Ｓｉｒ２ファミリータンパク質（すなわち、サーチュインタンパク質）を活性化する能力を有する因子である。ＮＡＤ依存性ヒストン脱アセチル化酵素であるＳｉｒ２ファミリータンパク質は、酵母および線虫において寿命延長作用を有しており、Ｓｉｒ２ファミリータンパク質の１つであるＳＩＲＴ１は、高等動物において、神経幹細胞、心筋細胞などに発現している。 In order to solve the above-mentioned problems, the composition according to the present invention is characterized by containing a SIRT1 activator as an active ingredient. A SIRT1 activator is a factor having the ability to activate a Sir2 family protein (ie, a sirtuin protein). Sir2 family protein which is NAD-dependent histone deacetylase has a life extension action in yeast and nematode, and SIRT1, which is one of Sir2 family proteins, is used in higher animals such as neural stem cells and cardiomyocytes. Is expressed.
本発明に係る組成物において、ＳＩＲＴ１活性化因子は、ポリフェノールであることが好ましく、フラボン、スティルベン、フラバノン、イソフラボン、カテキン、カルコン、タンニンおよびアントシアニンからなる群より選択される化合物、またはその誘導体であることがより好ましく、レスベラトロール（ＲＳＶ）、ブテイン、ピセアタンノール、イソリキリチゲニン、フィセチン、ルテオリン、テトラヒドロキシフラボンおよびケルセチンからなる群より選択される化合物、またはその誘導体であることがさらに好ましく、ＲＳＶ、またはその誘導体であることが最も好ましい。 In the composition according to the present invention, the SIRT1 activator is preferably a polyphenol, and is a compound selected from the group consisting of flavone, stilbene, flavanone, isoflavone, catechin, chalcone, tannin and anthocyanin, or a derivative thereof. More preferably, it is a compound selected from the group consisting of resveratrol (RSV), butein, piceatannol, isoliquiritigenin, fisetin, luteolin, tetrahydroxyflavone and quercetin, or a derivative thereof. RSV or a derivative thereof is most preferable.
上記構成を採用することによって、本発明は、筋ジストロフィーを処置することができる。また、本発明を用いれば、筋ジストロフィーにおける骨格筋の線維化状態を劇的に改善することができる。すなわち、本発明は、筋ジストロフィーにおける骨格筋の線維化を抑制するために用いられることが好ましい。 By adopting the above configuration, the present invention can treat muscular dystrophy. Moreover, if this invention is used, the fibrosis state of the skeletal muscle in a muscular dystrophy can be improved dramatically. That is, the present invention is preferably used for suppressing skeletal muscle fibrosis in muscular dystrophy.
本発明に係る組成物は、ＳＩＲＴ１を核内移行させる因子をさらに含んでいてもよい。本発明に係る組成物において、ＳＩＲＴ１を核内移行させる因子は、細胞内ｃＧＭＰを増加させる因子であることが好ましく、ｃＧＭＰの非水解性アナログ、またはホスホジエステラーゼ５（ＰＤＥ−５）の酵素活性を阻害する因子がより好ましく、ＣＰＴ−ｃＧＭＰまたはタダラフィル（Ｔａｄ）がさらに好ましい。 The composition according to the present invention may further contain a factor that translocates SIRT1 into the nucleus. In the composition according to the present invention, the factor that translocates SIRT1 into the nucleus is preferably a factor that increases intracellular cGMP, and inhibits the non-hydrolyzable analog of cGMP or the enzyme activity of phosphodiesterase 5 (PDE-5). CPT-cGMP or tadalafil (Tad) is more preferable.
本発明に係るキットは、ＳＩＲＴ１活性化因子を備えていることを特徴としている。上記構成を採用することによって、本発明は、筋ジストロフィーを処置することができる。本発明に係るキットは、ＳＩＲＴ１を核内移行させる因子をさらに備えていてもよい。また、本発明に係るキットは、筋ジストロフィーにおける骨格筋の線維化を抑制するために用いられることが好ましい。 The kit according to the present invention is characterized by comprising a SIRT1 activator. By adopting the above configuration, the present invention can treat muscular dystrophy. The kit according to the present invention may further include a factor for translocating SIRT1 into the nucleus. In addition, the kit according to the present invention is preferably used for suppressing skeletal muscle fibrosis in muscular dystrophy.
本発明を用いれば、筋ジストロフィーを処置することができ、特に、筋ジストロフィーにおける骨格筋の線維化状態を劇的に改善する。 With the present invention, muscular dystrophy can be treated, particularly dramatically improving the skeletal muscle fibrosis status in muscular dystrophy.
〔１〕筋ジストロフィーを処置するための有効成分としてのＳＩＲＴ１活性化因子
本発明は、細胞レベルおよび動物レベルでの実験系を用いて、ＳＩＲＴ１の活性化が筋ジストロフィーの処置に有効であることを見出して完成されたものである。すなわち、本発明は、筋ジストロフィーを処置するための、ＳＩＲＴ１活性化因子を用いる技術を提供する。本発明は、本発明者ら独自の新知見に基づいて完成されたものであり、従来の技術水準からは容易になし得なかった画期的な発明である。[1] SIRT1 activator as an active ingredient for treating muscular dystrophy The present invention has found that the activation of SIRT1 is effective for the treatment of muscular dystrophy using experimental systems at the cellular and animal levels. It has been completed. That is, the present invention provides a technique using a SIRT1 activator for treating muscular dystrophy. The present invention has been completed based on the inventors' new original knowledge, and is an epoch-making invention that could not be easily achieved from the prior art.
本発明者らはこれまでに心不全に関する研究を行っている。酸化ストレスは、慢性心不全における主要な役割を担い、ＮＡＤ＋依存性ヒストン／タンパク質デアセチラーゼ（ＳＩＲＴ１）は、核内に発現されている場合に酸化ストレス条件下での細胞の生存（抗アポトーシス作用）を促進する。また、本発明者らは、心臓におけるＳＩＲＴ１の機能的役割、および心不全に対する治療におけるＳＩＲＴ１の利用を検討し、ＳＩＲＴ１を活性化することが知られているレスベラトロール（ＲＳＶ）が、酸化ストレスに起因するアポトーシスを抑制するとともに、心不全モデルであるＴＯ−２ハムスターの心不全を抑制し得ることを見出している（非特許文献２参照）。このように、ＳＩＲＴ１を活性化することによって抗アポトーシス効果が得られることが、よく知られている。The present inventors have previously conducted research on heart failure. Oxidative stress plays a major role in chronic heart failure, and NAD + -dependent histone / protein deacetylase (SIRT1) promotes cell survival (anti-apoptotic effect) under oxidative stress conditions when expressed in the nucleus. Facilitate. In addition, the present inventors examined the functional role of SIRT1 in the heart and the use of SIRT1 in the treatment of heart failure, and resveratrol (RSV), which is known to activate SIRT1, is oxidatively stressed. It has been found that the heart failure of TO-2 hamster, which is a heart failure model, can be suppressed while suppressing the resulting apoptosis (see Non-Patent Document 2). Thus, it is well known that an anti-apoptotic effect can be obtained by activating SIRT1.
特許文献１には、ＳＩＲＴ１のデアセチラーゼ活性を増加させる作用物質を用いて、真核細胞内のｐ５３の活性を阻害し、アポトーシスから細胞を保護する方法、および寿命を延長させる方法が開示されている。特許文献２には、サーチュインの活性化を用いた、眼疾患の治療に関する技術が開示されており、サーチュインの活性化が、細胞死の予防、老化の予防、細胞死の治療、延命、寿命延長、癌発生の予防に利用可能であることも記載されている。特許文献３には、サーチュインの活性化を用いた、紅潮または体重増加を処置する技術が開示されている。 Patent Document 1 discloses a method for inhibiting the activity of p53 in a eukaryotic cell by using an agent that increases the deacetylase activity of SIRT1, thereby protecting the cell from apoptosis and a method for extending the life span. . Patent Document 2 discloses a technique related to the treatment of an eye disease using sirtuin activation, and the activation of sirtuin is prevention of cell death, prevention of aging, treatment of cell death, life extension, life extension. It is also described that it can be used for prevention of cancer development. Patent Document 3 discloses a technique for treating flushing or weight gain using sirtuin activation.
上述したように、筋ジストロフィーは、壊死（ネクローシス）によって特徴付けられる疾患である。ネクローシスがアポトーシスと同じ「細胞死」であるとはいえ、その発生機序が大きく異なることは周知である。特許文献１には、サーチュイン活性化化合物を、細胞死に関係する慢性疾患などの治療のために投与することができる旨が示唆されており、細胞死の観点から、筋ジストロフィーを例示されている。しかし、アポトーシスによって特徴付けられる疾患の改善に有効である物質が、壊死（ネクローシス）によって特徴付けられる疾患の状態改善に有効であるなどということは、技術常識でも技術水準でもない。よって、筋ジストロフィーが細胞死に関係する慢性疾患の例として特許文献１に挙げられているに過ぎず、抗アポトーシス技術の適用対象として特許文献１に挙げられているのではないことを、当業者は十分理解している。同様の理由により、当業者は、特許文献２に記載の細胞死がネクローシスではなくアポトーシスであることを、十分理解している。 As mentioned above, muscular dystrophy is a disease characterized by necrosis. Although necrosis is the same “cell death” as apoptosis, it is well known that its developmental mechanism is very different. Patent Document 1 suggests that a sirtuin-activating compound can be administered for the treatment of chronic diseases related to cell death, and muscular dystrophy is exemplified from the viewpoint of cell death. However, it is neither technical nor knowledge nor a state of the art that a substance effective for improving a disease characterized by apoptosis is effective for improving the condition of a disease characterized by necrosis (necrosis). Therefore, those skilled in the art are sufficiently aware that muscular dystrophy is only listed in Patent Document 1 as an example of a chronic disease related to cell death, and is not listed in Patent Document 1 as an application target of anti-apoptotic technology. I understand. For the same reason, those skilled in the art fully understand that the cell death described in Patent Document 2 is not necrosis but apoptosis.
活性化されたＳＩＲＴ１が筋ジストロフィーの改善に有効であることは、当業者が容易に予測し得ることではない。特に、筋ジストロフィーのモデルマウスにおいて観察される骨格筋の線維化状態が劇的に改善されることは、格別顕著な効果である。 It is not easily predictable by those skilled in the art that activated SIRT1 is effective in improving muscular dystrophy. In particular, the dramatic improvement in the fibrotic state of skeletal muscle observed in muscular dystrophy model mice is a particularly remarkable effect.
本発明者らは、ポリフェノールの１つのＲＳＶが、ＳＩＲＴ１を活性化することによってスーパーオキシドディスムターゼ（ＭｎＳＯＤ）を誘導して、細胞の酸化ストレス耐性を向上させ、その結果、遺伝的に心不全を生じるＴＯ−２ハムスターの寿命を優位に延長させることを見出している。すなわち、１つの局面において、「ＳＩＲＴ１活性化因子」は、ポリフェノールであり得、フラボン、スティルベン、フラバノン、イソフラボン、カテキン、カルコン、タンニンおよびアントシアニンからなる群より選択される化合物、またはその誘導体であり得る。好ましくは、「ＳＩＲＴ１活性化因子」は、ＲＳＶ、ブテイン、ピセアタンノール、イソリキリチゲニン、フィセチン、ルテオリン、テトラヒドロキシフラボンおよびケルセチンからなる群より選択される化合物、またはその誘導体であり、より好ましくは、ＲＳＶ、またはその誘導体である。ＲＳＶの誘導体としては、グリコシド配糖体が好ましく、より好ましくは、ＲＳＶの３−Ｏ−β−Ｄ−グリコシド（３Ｇ−ＲＳＶ）および４’−Ｏ−β−Ｄ−グリコシド（４’Ｇ−ＲＳＶ）が挙げられ、４’−Ｏ−β−Ｄ−グリコシド（４’Ｇ−ＲＳＶ）が最も好ましい。 We have found that one RSV of polyphenols induces superoxide dismutase (MnSOD) by activating SIRT1 to improve cellular oxidative stress tolerance, resulting in genetically heart failure -2 It has been found to prolong the life of hamsters. That is, in one aspect, the “SIRT1 activator” can be a polyphenol, and is a compound selected from the group consisting of flavone, stilbene, flavanone, isoflavone, catechin, chalcone, tannin and anthocyanin, or a derivative thereof. obtain. Preferably, the “SIRT1 activator” is a compound selected from the group consisting of RSV, butein, piceatannol, isoliquiritigenin, fisetin, luteolin, tetrahydroxyflavone and quercetin, or a derivative thereof. Is RSV or a derivative thereof. The derivative of RSV is preferably a glycoside glycoside, more preferably RSV 3-O-β-D-glycoside (3G-RSV) and 4′-O-β-D-glycoside (4′G-RSV). 4′-O-β-D-glycoside (4′G-RSV) is most preferable.
なお、他の局面において、ＳＩＲＴ１活性化因子は、天然から分離されたものであっても合成されたものであってもよく、以下に示すＳＲＴ１４６０、ＳＲＴ１７２０およびＳＲＴ２１８３、 In another aspect, the SIRT1 activator may be isolated from nature or synthesized, and SRT1460, SRT1720, and SRT2183 shown below,
ならびにＳＩＲＴ１活性化因子３（２−アミノ−Ｎ−シクロペンチル−１−（３−メトキシプロピル）−１Ｈ−ピロロ［２，３−ｂ］キノキサリン−３−カルボキサミド）（Nature 450(29): 712−716 (2007)およびJournal of Biomolecular Screening 11(8): 959−967 (2006)参照）、さらには特許文献１においてスクリーニングされたサーチュイン活性化剤もまた、ＳＩＲＴ１活性化因子に包含される。 And SIRT1 activator 3 (2-amino-N-cyclopentyl-1- (3-methoxypropyl) -1H-pyrrolo [2,3-b] quinoxaline-3-carboxamide) (Nature 450 (29): 712-716 (2007) and Journal of Biomolecular Screening 11 (8): 959-967 (2006)), and sirtuin activators screened in Patent Document 1 are also included in the SIRT1 activator.
当業者は、ＮＡＤおよびＳｉｒ２ファミリータンパク質（例えば、ＳＩＲＴ１）を含む酵素反応系を用いたスクリーニング法によって、ＳＩＲＴ１活性化因子を容易に取得し得る。 A person skilled in the art can easily obtain an SIRT1 activator by a screening method using an enzyme reaction system containing NAD and a Sir2 family protein (for example, SIRT1).
本発明者らは、ＳＩＲＴ１が核と細胞質との間を移動することによってその活性が調節されることなどを見出している。すなわち、さらなる局面において、「ＳＩＲＴ１活性化因子」は、ＳＩＲＴ１を核内移行させる因子であり得る。本明細書中にて使用される場合、ＳＩＲＴ１を核内移行させる因子は、Ｓｉｒ２ファミリータンパク質（すなわち、サーチュインタンパク質）を細胞質から核内へ移行させる能力を有する因子が意図される。後述する実施例にて示すように、細胞内ｃＧＭＰを増加させると骨格筋細胞におけるＳＩＲＴ１の核内移行が増強されて、ＳＩＲＴ１の活性化が促進される。すなわち、一実施形態において、ＳＩＲＴ１を核内移行させる因子は、細胞内ｃＧＭＰを増加させる因子であり得る。細胞内ｃＧＭＰを増加させる因子としては、ｃＧＭＰの非水解性アナログ（例えば、ＣＰＴ−ｃＧＭＰ）、ホスホジエステラーゼ５（ＰＤＥ−５）の酵素活性を阻害する因子（例えば、タダラフィル（Ｔａｄ））が挙げられるが、これらに限定されない。なお、Ｔａｄは、生体内でｃＧＭＰを分解するホスホジエステラーゼ５（ＰＤＥ−５）の酵素活性を阻害し、これにより、ＮＯ作動性神経に作用して血管を拡張させて、血流量を増加させる。Ｔａｄは、勃起不全の治療薬（Ｃｉａｌｉｓ（登録商標））としてもよく知られている。 The present inventors have found that the activity of SIRT1 is regulated by moving between the nucleus and the cytoplasm. That is, in a further aspect, the “SIRT1 activator” can be a factor that translocates SIRT1 into the nucleus. As used herein, a factor that translocates SIRT1 is intended to be a factor that has the ability to translocate a Sir2 family protein (ie, a sirtuin protein) from the cytoplasm into the nucleus. As shown in Examples described later, when intracellular cGMP is increased, SIRT1 translocation into nuclei is enhanced in skeletal muscle cells, and activation of SIRT1 is promoted. That is, in one embodiment, the factor that translocates SIRT1 into the nucleus can be a factor that increases intracellular cGMP. Examples of factors that increase intracellular cGMP include non-hydrolyzable analogs of cGMP (eg, CPT-cGMP) and factors that inhibit the enzyme activity of phosphodiesterase 5 (PDE-5) (eg, tadalafil (Tad)). However, it is not limited to these. Note that Tad inhibits the enzyme activity of phosphodiesterase 5 (PDE-5), which degrades cGMP in vivo, thereby acting on NO-operating nerves to dilate blood vessels and increase blood flow. Tad is also well known as a treatment for erectile dysfunction (Cialis®).
また、当業者は、培養細胞におけるＳＩＲＴ１の核内移行を検出する系を用いたスクリーニング法によって、ＳＩＲＴ１活性化因子を容易に取得し得る。 Moreover, those skilled in the art can easily obtain a SIRT1 activator by a screening method using a system that detects SIRT1 nuclear translocation in cultured cells.
本発明において、ＳＩＲＴ１活性化因子は単独で用いられても複数組み合わせて用いられてもよい。複数組み合わせて用いられる場合、ＳＩＲＴ１活性化因子の少なくとも１つがＳＩＲＴ１を核内移行させる因子であってもよい。 In the present invention, SIRT1 activators may be used alone or in combination. When used in combination, at least one of the SIRT1 activators may be a factor that translocates SIRT1 into the nucleus.
〔２〕有効成分の利用
（１）組成物
本発明は、筋ジストロフィーを処置するための有効成分を含有する組成物を提供する。本明細書中にて使用される場合、用語「処置」は、症状の軽減または排除が意図され、治療的（発症後）に行われ得るものだけでなく、予防的（発症前）に行われ得るものもまた包含される。「筋ジストロフィーを処置するための有効成分」は、上述したＳＩＲＴ１活性化因子が意図され、本明細書中にて「有効成分」と省略され得る。[2] Utilization of active ingredient (1) Composition The present invention provides a composition containing an active ingredient for treating muscular dystrophy. As used herein, the term “treatment” is intended to alleviate or eliminate symptoms and can be performed prophylactically (before onset) as well as what can be done therapeutically (after onset). What is obtained is also encompassed. The “active ingredient for treating muscular dystrophy” is intended to be the above-mentioned SIRT1 activator, and may be abbreviated as “active ingredient” in the present specification.
本発明に係る組成物中に使用されるキャリアおよび賦形剤は、薬学的に受容可能なものであれば特に限定されない。本明細書中にて使用される場合、「薬学的に受容可能なキャリア」は、組成物を受容した個体において有害な抗体の産生をそれ自体は誘導しない任意のキャリアが意図される。このようなキャリアは当業者に周知である。また、薬学的に受容可能な賦形剤については、当該分野において公知であり、例えば、ＲＥＭＩＮＧＴＯＮ‘Ｓ ＰＨＡＲＭＡＣＥＵＴＩＣＡＬ ＳＣＩＥＮＣＥＳ（Ｍｅｒｃｋ Ｐｕｂ．Ｃｏ．， Ｎ．Ｊ．１９９１）に十分に記載されている。さらに、本発明に係る組成物は、水、生理食塩水、グリセロール、またはエタノールのような１つ以上の成分をさらに含み得る。さらに、湿潤剤または乳化剤、ｐＨ緩衝化物質、安定化剤、抗酸化剤などのような補助物質が、本発明に係る組成物中に存在し得る。 The carrier and excipient used in the composition according to the present invention are not particularly limited as long as they are pharmaceutically acceptable. As used herein, “pharmaceutically acceptable carrier” intends any carrier that does not itself induce the production of harmful antibodies in an individual receiving the composition. Such carriers are well known to those skilled in the art. Also, pharmaceutically acceptable excipients are known in the art and are well described, for example, in REMINGTON'S PHARMACEUTICAL SCIENCES (Merck Pub. Co., NJ 1991). Furthermore, the composition according to the present invention may further comprise one or more components such as water, saline, glycerol or ethanol. In addition, auxiliary substances such as wetting or emulsifying agents, pH buffering substances, stabilizers, antioxidants and the like may be present in the composition according to the invention.
本発明に係る組成物は、経口投与に好ましい錠剤、カプセルなどの形態として調製され得る。また、本発明に係る組成物は、液体溶液もしくは懸濁液、または注射のための液体ビヒクル中の溶液もしくは懸濁液のために適切な固体形態、あるいは局所的に塗布されるクリームとしてとして調製され得る。そして、本発明に係る組成物の直接送達は、一般に、経口、注射（皮下、皮内、腹腔内、管腔内、胃内、腸内、静脈内または筋肉内）、または塗布により達成される。経口送達の場合、本発明に係る組成物は、タブレット状、顆粒状、カプセル状などの経口的に摂取可能な形状であり得、所望の作用を発現させる量の有効成分が含有されていれば、その形状が特に限定されない。 The composition according to the present invention can be prepared in the form of tablets, capsules and the like preferred for oral administration. The composition according to the invention is also prepared as a liquid solution or suspension, or a solid form suitable for solution or suspension in a liquid vehicle for injection, or as a topically applied cream. Can be done. And the direct delivery of the composition according to the invention is generally achieved by oral, injection (subcutaneous, intradermal, intraperitoneal, intraluminal, intragastric, intestinal, intravenous or intramuscular) or application. . In the case of oral delivery, the composition according to the present invention may be in an orally ingestible form such as a tablet, granule, capsule, etc., as long as it contains an active ingredient in an amount that exhibits a desired action. The shape is not particularly limited.
本発明に係る組成物は、製薬分野における公知の方法により製造することができる。本発明に係る組成物における有効成分の含有量は、投与形態、投与方法などを考慮し、当該組成物を用いて後述の投与量範囲で有効成分を投与できるような量であれば特に限定されない。また、本発明に係る組成物の投与量は、その製剤形態、投与方法、使用目的、および投与対象である患者の年齢、体重、症状によって適宜設定される。投与は、所望の投与量範囲内において、１日内において単回で、または数回に分けて行われてもよい。 The composition according to the present invention can be produced by a known method in the pharmaceutical field. The content of the active ingredient in the composition according to the present invention is not particularly limited as long as the active ingredient can be administered in the dosage range described later using the composition in consideration of the administration form, administration method and the like. . In addition, the dosage of the composition according to the present invention is appropriately set depending on the preparation form, administration method, purpose of use, and age, weight, and symptoms of the patient to be administered. Administration may be performed in a single dose or divided into several doses within a desired dose range.
（２）キット
本発明はまた、筋ジストロフィーを処置するための有効成分を備えているキットを提供する。本明細書中にて使用される場合、用語「キット」は、特定の材料を内包する容器（例えば、ボトル、プレート、チューブ、ディッシュなど）を備えた包装が意図される。好ましくは、上記材料を使用するための指示書を備えている。本明細書中にてキットの局面において使用される場合、「備えた（備えている）」は、キットを構成する個々の容器のいずれかの中に内包されている状態が意図される。また、本発明に係るキットは、複数の異なる組成物を１つに梱包した包装であってもよく、容器中に内包された溶液形態の組成物を梱包していてもよい。本発明に係るキットは、異なる２つ以上の物質を同一の容器に混合して備えても別々の容器に備えてもよい。「指示書」は、紙またはその他の媒体に書かれていても印刷されていてもよく、あるいは磁気テープ、コンピューター読み取り可能ディスクまたはテープ、CD−ROMなどのような電子媒体に付されてもよい。本発明に係るキットは、上述した組成物を構成するためにもちいられてもよく、上述した組成物に含まれる物質を別々に備えていても、上述した組成物とさらなる成分とを別々に備えていてもよい。(2) Kit The present invention also provides a kit comprising an active ingredient for treating muscular dystrophy. As used herein, the term “kit” intends a package with a container (eg, bottle, plate, tube, dish, etc.) containing a particular material. Preferably, an instruction for using the material is provided. As used herein in the context of a kit, “comprising” is intended to mean being contained within any of the individual containers that make up the kit. In addition, the kit according to the present invention may be a package in which a plurality of different compositions are packed together, or may be a solution in a form of a solution contained in a container. The kit according to the present invention may be provided with two or more different substances mixed in the same container or in separate containers. “Instructions” may be written or printed on paper or other media, or may be affixed to electronic media such as magnetic tape, computer readable disk or tape, CD-ROM, etc. . The kit according to the present invention may be used to constitute the above-described composition, and may comprise the above-described composition and additional components separately, even if the substance contained in the above-described composition is separately provided. It may be.
（３）筋ジストロフィーを処置する方法
本発明はさらに、筋ジストロフィーを処置するための方法を提供する。本発明に係る方法は、筋ジストロフィーを処置するための有効成分を被験体に投与する工程を包含する。本発明に係る方法における有効成分の適用は、上述した組成物およびキットの使用形態に準じればよいことを、本明細書を読んだ当業者は容易に理解する。(3) Method for treating muscular dystrophy The present invention further provides a method for treating muscular dystrophy. The method according to the present invention includes the step of administering to a subject an active ingredient for treating muscular dystrophy. Those skilled in the art who have read this specification will easily understand that the application of the active ingredient in the method according to the present invention may be in accordance with the use form of the composition and kit described above.
なお、本明細書中に記載された学術文献および特許文献の全てが、本明細書中にて参考として援用される。 In addition, all the academic literatures and patent literatures described in this specification are incorporated by reference in this specification.
本発明は、以下の実施例によってさらに詳細に説明されるが、これに限定されるべきではない。 The invention is illustrated in more detail by the following examples, but should not be limited thereto.
〔材料および方法〕
Ｃ５７ＢＬ１０マウス（Ｃ５７ＢＬ／１０−ＳｃＮ Ｊｉｃ）およびＭｄｘマウス（Ｃ５７ＢＬ／１０−ｍｄｘ Ｊｉｃ）を、株式会社ホクドーより購入した。マウスから単離した大腿二頭筋を液体窒素で凍結した後に、クリオスタットを用いて切片化した。得られた切片を、４％パラホルムアルデヒドを含む中性リン酸ナトリウム緩衝液で固定し、次いで、定法に従ってヒツジ抗フィブロネクチン抗体（ＡＨＰ０８，ＵＫ−Ｓｅｒｏｔｅｃ Ｌｔｄ）、およびＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ４８８標識したロバ抗ヒツジＩｇＧ抗体（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用いて免疫染色し、さらにアクチンをＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ５９４ラベルファロイジンで染色した。染色した切片を、コンフォーカル顕微鏡（Ｒａｄｉａｎｃｅ ２１００ＭＰ ＢｉｏＲａｄ社）を用いて観察した（図１上）。得られた画像をＡｄｏｂｅ Ｐｈｏｔｏｓｈｏｐ ＣＳ３で解析した。コントロールマウスのフィブロネクチン染色像の、１画像あたり蛍光ピクセル数の平均を１００として、他の画像の蛍光ピクセル数を表した。筋の横断径は、ファロイジンで染色された部分のピクセル数をＡｄｏｂｅ Ｐｈｏｔｏｓｈｏｐ Ｃｓ３によって解析した。各群に３匹のマウスを用い、一匹のマウス標本について８つの視野を撮影し、合計２４視野の平均をグラフに表示した（図１下）。上グラフについて、＊，未処置Ｍｄｘコントロール群と比較（ｐ＜０．０５）；＃，ＲＳＶ投与Ｍｄｘ群と比較（ｐ＜０．００１）；＋，未処置コントロールマウス群と比較（有意差なし）。下グラフについて、＊，未処置Ｍｄｘコントロール群と比較（ｐ＜０．０５）；＆，未処置コントロールマウス群と比較（ｐ＜０．０５），＃，ＲＳＶ投与Ｍｄｘ群と比較（有意差なし）；＋，未処置コントロールマウス群と比較（有意差なし）。〔Materials and methods〕
C57BL10 mice (C57BL / 10-ScN Jic) and Mdx mice (C57BL / 10-mdx Jic) were purchased from Hokudo. Biceps femoris isolated from mice were frozen in liquid nitrogen and then sectioned using a cryostat. The obtained sections were fixed with a neutral sodium phosphate buffer containing 4% paraformaldehyde, and then sheep anti-fibronectin antibody (AHP08, UK-Serotec Ltd) and Alexa Fluor 488-labeled donkey anti-sheep IgG antibody according to a conventional method. (Invitrogen) was used for immunostaining, and actin was further stained with Alexa Fluor594 labeled phalloidin. The stained section was observed using a confocal microscope (Radiance 2100MP BioRad) (upper figure 1). The obtained image was analyzed with Adobe Photoshop CS3. The average number of fluorescent pixels per image of the fibronectin-stained image of the control mouse was taken as 100, and the number of fluorescent pixels in other images was expressed. The transverse diameter of the muscle was analyzed by Adobe Photoshop Cs3 based on the number of pixels stained with phalloidin. Three mice were used in each group, and 8 fields of view were taken for one mouse specimen, and the average of a total of 24 fields was displayed on the graph (bottom of FIG. 1). About the upper graph, *, compared with untreated Mdx control group (p <0.05);#, compared with Mdx group treated with RSV (p <0.001); +, compared with untreated control mouse group (no significant difference) ). About the lower graph, *, compared with untreated Mdx control group (p <0.05);&, compared with untreated control mouse group (p <0.05), #, compared with Mdx group treated with RSV (no significant difference) ); +, Compared with untreated control mouse group (no significant difference).
Ｃ５７ＢＬ１０マウス（Ｃ５７ＢＬ／１０−ＳｃＮ Ｊｉｃ）およびＭｄｘマウス（Ｃ５７ＢＬ／１０−ｍｄｘ Ｊｉｃ）より単離した大腿二頭筋から、ＲＮｅａｓｙ（Ｑｕｉａｇｅｎ社）を用いてＲＮＡを分離した。得られたＲＮＡから逆転写酵素（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用いて変換したｃＤＮＡに対して、定量的ＰＣＲ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社）を行うことによって、フィブロネクチンｍＲＮＡ量を定量した。コントロールとして用いたβ−アクチンｍＲＮＡ量に対する割合を、未処置のコントロールマウスのデータを１００として表示した（図２）。それぞれの群に用いたマウスの数は、未処置コントロールマウス群、ＲＳＶ＋Ｔａｄ投与コントロールマウス群、および未処置Ｍｄｘマウス群はｎ＝３、Ｔａｄ投与Ｍｄｘマウス群はｎ＝５、ＲＳＶ＋Ｔａｄ投与Ｍｄｘマウス群はｎ＝６である。＊，未処置Ｍｄｘコントロール群と比較（ｐ＜０．０５）。 RNA was isolated from biceps femoris isolated from C57BL10 mice (C57BL / 10-ScN Jic) and Mdx mice (C57BL / 10-mdx Jic) using RNeasy (Qiagen). The amount of fibronectin mRNA was quantified by performing quantitative PCR (Applied Biosystems) on cDNA converted from the obtained RNA using reverse transcriptase (Invitrogen). The ratio with respect to the amount of β-actin mRNA used as a control was displayed with the data of untreated control mice as 100 (FIG. 2). The number of mice used in each group is n = 3 for the untreated control mouse group, the RSV + Tad-administered control mouse group, and the untreated Mdx mouse group, n = 5 for the Tad-administered Mdx mouse group, and the RSV + Tad-administered Mdx mouse group. n = 6. *, Compared with untreated Mdx control group (p <0.05).
Ｃ２Ｃ１２細胞（国立長寿医療研究センター研究所 古山達雄博士（現 香川県立保健医療大学）より供与された。）を、コラーゲン（Ｋｏｋｅｎ社）でコートしたガラス板（マツナミ社）上に散布し、次いで培養した。１００ｎＭ タダラフィル（Ｔｏｒｏｎｔｏ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ社）または１００μＭ ＣＰＴ（８−ＣＰＴ−ｃＧＭＰ，ナトリウム塩（８−（４−クロロフェニルチオ）グアノシン−３’，５’−サイクリックモノホルフェート） Ｂｉａｆｆｉｎ ＧｍｂＨ ＆ Ｃｏ ＫＧ．社）を培地に添加し、２８時間後に４％パラホルムアルデヒドを含む中性リン酸ナトリウム緩衝液を用いて細胞を固定した。コントロールを含め、細胞を、固定２４時間前に１５μＭアンチマイシンＡ（Ｓｉｇｍａ社）で処理した。固定した細胞に対して、ウサギ抗マウスＳＩＲＴ１抗体（Ｓａｋａｍｏｔｏ ｅｔ ａｌ． ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．５５６，２８１−２８６，２００４）およびＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ４８８標識したヒツジ抗ウサギ抗体（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用いた免疫染色と、ヘキスト３３３４２（Ｄｏｊｉｎｄｏ社）による核染色を行った。染色後の細胞を、コンフォーカル顕微鏡（Ｒａｄｉａｎｃｅ ２１００ＭＰ ＢｉｏＲａｄ社）を用いて観察した（図３上）。得られた画像をＡｄｏｂｅ Ｐｈｏｔｏｓｈｏｐ ＣＳ３を用いて解析した。核領域に存在するＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ４８８蛍光ピクセル数の平均について、コントロール細胞の値を１００％として表示した。各実験について８視野からデータを集め、３回同じ実験を繰り返し、合計２４視野分からの平均値をそれぞれの棒グラフに表した（図３下）。＊＊，コントロール群と比較（ｐ＜０．０１）。 C2C12 cells (provided by Dr. Tatsuo Furuyama (currently Kagawa Prefectural University of Health Sciences), National Longevity Medical Research Center) are spread on a glass plate (Matsunami) coated with collagen (Koken) and then cultured. did. 100 nM Tadalafil (Toronto Research Chemicals) or 100 μM CPT (8-CPT-cGMP, sodium salt (8- (4-chlorophenylthio) guanosine-3 ′, 5′-cyclic monoformate) Biaffin GmbH & Co KG. ) Was added to the medium, and after 28 hours, the cells were fixed with a neutral sodium phosphate buffer containing 4% paraformaldehyde. Cells, including controls, were treated with 15 μM antimycin A (Sigma) 24 hours prior to fixation. The fixed cells were immunostained with a rabbit anti-mouse SIRT1 antibody (Sakamoto et al. FEBS Lett. 556, 281-286, 2004) and Alexa Fluor 488-labeled sheep anti-rabbit antibody (Invitrogen), and Hoechst 33342. Nuclear staining with (Dojindo) was performed. The stained cells were observed using a confocal microscope (Radiance 2100MP BioRad) (upper FIG. 3). The obtained image was analyzed using Adobe Photoshop CS3. For the average number of Alexa Fluor 488 fluorescent pixels present in the nuclear region, the value of control cells was expressed as 100%. Data were collected from 8 fields for each experiment, and the same experiment was repeated 3 times, and the average values from a total of 24 fields were represented in each bar graph (bottom of FIG. 3). **, compared with control group (p <0.01).
コントロールＣ２Ｃ１２細胞および１００ｎＭタダラフィル（Ｔａｄ）を２８時間作用させた細胞について、核分画と細胞質とを分画するキット（ＰｒｏｔｅｏＥｘｔｒａｃｔ， Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ社）を用いて、各画分を得た。コントロール細胞およびＴａｄ処理細胞において、分画２４時間前に１５μＭアンチマイシンＡ（Ｓｉｇｍａ社）を作用させ、核内に存在するＳＩＲＴ１量を増加させた。各画分について、抗ＳＩＲＴ１抗体（Ｓａｋａｍｏｔｏ ｅｔ ａｌ．）、抗ラミンＡ／Ｃ抗体（Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ社）、および抗ＧＡＰＤＨ抗体（Ｓｉｇｍａ社）を用いたウエスタンブトット法によって、タンパク質をウエスタンブロットによって検討した（図４上）。画像を、ＮＩＨ Ｉｍａｇｅを用いて定量化した。３回の別々の実験を行い、定量化したデータをグラフに表した（図４下）。＊＊，コントロール群と比較（ｐ＜０．０１）。＊，コントロール群と比較（ｐ＜０．０５）。 For the cells treated with control C2C12 cells and 100 nM tadalafil (Tad) for 28 hours, each fraction was obtained using a kit (ProteoExtract, Calbiochem) for fractionating nuclear fraction and cytoplasm. In control cells and Tad-treated cells, 15 μM antimycin A (Sigma) was allowed to act 24 hours before fractionation to increase the amount of SIRT1 present in the nucleus. For each fraction, the protein was examined by Western blot using the Western Butt method using anti-SIRT1 antibody (Sakamoto et al.), Anti-lamin A / C antibody (Cell Signaling), and anti-GAPDH antibody (Sigma). (FIG. 4 top). Images were quantified using NIH Image. Three separate experiments were performed and the quantified data was represented in a graph (bottom of FIG. 4). **, compared with control group (p <0.01). *, Compared with control group (p <0.05).
Ｃ２Ｃ１２細胞に、１００ｎＭ タダラフィル（Ｔａｄ）または１００μＭ ＣＰＴを２４時間作用させた後に、定法に従ってＲＮＡを分離した。得られたＲＮＡからｃＤＮＡに変換し、ＰＣＲ法を用いてＳＩＲＴ１とＧＡＰＤＨを増幅させ、１％アガロースゲルにて電気泳動を行い、ゲルをエチジウムブロマイドで染色した（図５上）。また、細胞のタンパク質を、抗ＳＩＲＴ１抗体（Ｓａｋａｍｏｔｏ ｅｔ ａｌ．）と抗ＧＡＰＤＨ抗体（Ｓｉｇｍａ社）を用いたウエスタンブトット法で調べた（図５下）。同様の検討を合計３回行い、ＴａｄまたはＣＰＴの処理によってＳＩＲＴ１のｍＲＮＡ量およびタンパク質量が変化しないことを確認した。 C2C12 cells were allowed to act on 100 nM tadalafil (Tad) or 100 μM CPT for 24 hours, and then RNA was isolated according to a standard method. The obtained RNA was converted to cDNA, SIRT1 and GAPDH were amplified using the PCR method, electrophoresed on a 1% agarose gel, and the gel was stained with ethidium bromide (upper FIG. 5). In addition, cellular proteins were examined by Western Butt method using an anti-SIRT1 antibody (Sakamoto et al.) And an anti-GAPDH antibody (Sigma) (bottom of FIG. 5). The same examination was performed three times in total, and it was confirmed that the amount of mRNA and protein of SIRT1 was not changed by treatment with Tad or CPT.
Ｔａｄ（７０ｍｇ／ｋｇ粉末飼料）を７日間経口投与したｄｄＹマウス（三協ラボサービス（株））、およびコントロールマウスを、麻酔後に４％パラホルムアルデヒドを含む中性リン酸ナトリウム緩衝液で全身還流固定した。固定したマウスから大腿二頭筋を収集した。分離した骨格筋を、同じパラホルムアルデヒド溶液で再度一晩固定した。組織をシュクロース溶液（和光純薬）で脱水した後に凍結し、次いでクリオスタットを用いて切片を作製した。ＳＩＲＴ１抗体による免疫染色、およびヘキスト３３３４２による核染色を行った切片を、コンフォーカル顕微鏡で観察した（図６上）。コントロール群およびＴａｄ投与群の各３匹についてそれぞれ６視野を撮影し、ＳＩＲＴ１が核に優位に存在している細胞の数の、全体の細胞数に占める割合の平均を、グラフで表した（図６下）。＊＊＊，コントロール群と比較（ｐ＜０．００１）。 DdY mice (Sankyo Lab Service Co., Ltd.) orally administered with Tad (70 mg / kg powdered feed) for 7 days and control mice were fixed with whole body reflux with neutral sodium phosphate buffer containing 4% paraformaldehyde after anesthesia. did. Biceps femoris were collected from fixed mice. The separated skeletal muscle was again fixed overnight with the same paraformaldehyde solution. The tissue was dehydrated with a sucrose solution (Wako Pure Chemical Industries) and then frozen, and then a section was prepared using a cryostat. Sections subjected to immunostaining with SIRT1 antibody and nuclear staining with Hoechst 33342 were observed with a confocal microscope (upper part of FIG. 6). Six fields were photographed for each of three animals in the control group and the Tad administration group, and the average ratio of the number of cells in which SIRT1 predominates in the nucleus to the total number of cells was represented by a graph (Fig. 6 bottom). ***, compared with control group (p <0.001).
〔結果〕
〔１：筋ジストロフィーマウスにおける骨格筋の線維化に対するＲＳＶの効果〕
コントロールマウス（Ｃ５７ＢＬ１０）、および筋ジストロフィーのモデルマウスであるドゥシャンヌ筋ジストロフィ（Ｍｄｘ）マウスから収集した骨格筋をフィブロネクチン染色し、骨格筋にて生じている線維化を観察した（図１）。未処置のＭｄｘマウスでは、線維化された、白くスカスカの、特徴的な筋肉が観察された。ＲＳＶ（４ｇ／ｋｇ粉末飼料）を３２週間にわたって経口投与したＭｄｘマウス（Ｍｄｘ＋ＲＳＶ）では、骨格筋の線維化が抑制されていた。ＲＳＶ（４ｇ／ｋｇ飼料）とＴａｄ（７０ｍｇ／ｋｇ飼料）とを併用して３２週間にわたって経口投与したＭｄｘマウス（Ｍｄｘ＋ＲＳＶ＋Ｔａｄ）では、骨格筋の線維化がさらに抑制されており、筋線維の横断径も正常化していた。ただし、筋量においては、ＲＳＶによる効果をＴａｄが増強させることはなかった。なお、コントロールマウスでは、未処置のものも、ＲＳＶおよびＴａｄを投与したものも、骨格筋の線維化が生じていなかった。上段には、アクチンとフィブロネクチンとの二重染色像を示し、下段には、コントロールに対する、フィブロネクチン染色の割合および骨格筋の断面積の割合を示した。グラフにおいて、１は未処置のコントロールマウス、２はＲＳＶおよびＴａｄで処置したコントロールマウス、３は未処置のＭｄｘマウス、４はＲＳＶ投与したＭｄｘマウス、５はＲＳＶとＴａｄとを投与したＭｄｘマウスを示す。〔result〕
[1: Effect of RSV on skeletal muscle fibrosis in muscular dystrophy mice]
The skeletal muscle collected from the control mouse (C57BL10) and Dushanne muscular dystrophy (Mdx) mouse, which is a model mouse for muscular dystrophy, was stained with fibronectin to observe fibrosis occurring in the skeletal muscle (FIG. 1). In untreated Mdx mice, fibrotic, white, scary, characteristic muscles were observed. Skeletal muscle fibrosis was suppressed in Mdx mice (Mdx + RSV) to which RSV (4 g / kg powder feed) was orally administered for 32 weeks. In Mdx mice (Mdx + RSV + Tad) administered orally for 32 weeks in combination with RSV (4 g / kg diet) and Tad (70 mg / kg diet), skeletal muscle fibrosis is further suppressed, Was also normalizing. However, in muscle mass, Tad did not enhance the effect of RSV. In the control mice, neither untreated nor RSV and Tad administered had skeletal muscle fibrosis. The upper row shows a double-stained image of actin and fibronectin, and the lower row shows the ratio of fibronectin staining and the ratio of the cross-sectional area of skeletal muscle to the control. In the graph, 1 is an untreated control mouse, 2 is a control mouse treated with RSV and Tad, 3 is an untreated Mdx mouse, 4 is an Mdx mouse administered with RSV, 5 is an Mdx mouse administered with RSV and Tad Show.
このように、ＲＳＶはＭｄｘマウス骨格筋の線維化を抑制し、筋量を増加させる。そして、ＴａｄのＲＳＶとの併用は、ＲＳＶによる線維化抑制効果をさらに増強するが、ＲＳＶによる筋量増加効果には影響しないといえる。 Thus, RSV inhibits Mdx mouse skeletal muscle fibrosis and increases muscle mass. And, it can be said that the combined use of Tad with RSV further enhances the fibrosis suppression effect by RSV, but does not affect the muscle mass increase effect by RSV.
さらに、未処置のＭｄｘマウス、ＲＳＶ投与したＭｄｘマウス、およびＲＳＶとＴａｄとを投与したＭｄｘマウスから収集した骨格筋におけるフィブロネクチンｍＲＮＡの発現量を調べた。ＲＳＶを、単独もしくはＴａｄと併用によって、粉末状にした食餌に混合してＭｄｘマウスに３２週間投与し、続いて、大腿二頭筋のフィブロネクチンｍＲＮＡの発現量を定量ＰＣＲ法で検討した（図２）。図は、βアクチンｍＲＮＡに対する割合を示すグラフであり、グラフにおいて、１は未処置のコントロールマウス、２はＲＳＶおよびＴａｄで処置したコントロールマウス、３は未処置のＭｄｘマウス、４はＲＳＶ投与したＭｄｘマウス、５はＲＳＶとＴａｄとを投与したＭｄｘマウスを示す。示されるように、ＲＳＶ単独およびＲＳＶとＴａｄとの併用はいずれもフィブロネクチンｍＲＮＡレベルを減少させた。１、２、４および５におけるｍＲＮＡレベルは、３におけるｍＲＮＡレベルと有意に差があった（ｐ＜０．０５）。 Furthermore, the expression level of fibronectin mRNA in skeletal muscle collected from untreated Mdx mice, Mdx mice administered with RSV, and Mdx mice administered with RSV and Tad was examined. RSV alone or in combination with Tad was mixed with powdered diet and administered to Mdx mice for 32 weeks, and then the expression level of fibronectin mRNA in biceps femoris was examined by quantitative PCR (FIG. 2). ). The figure is a graph showing the ratio to β-actin mRNA, wherein 1 is an untreated control mouse, 2 is a control mouse treated with RSV and Tad, 3 is an untreated Mdx mouse, and 4 is an RSV-administered Mdx. Mice and 5 are Mdx mice administered with RSV and Tad. As shown, both RSV alone and the combination of RSV and Tad reduced fibronectin mRNA levels. The mRNA levels at 1, 2, 4 and 5 were significantly different from the mRNA levels at 3 (p <0.05).
このように、ＲＳＶは、タンパク質レベルだけではなくｍＲＮＡレベルにおいても、Ｍｄｘマウス骨格筋の線維化を抑制する。上述したように、ＲＳＶはＳＩＲＴ１を活性化することが知られている。すなわち、ＳＩＲＴ１が活性化されることによって、Ｍｄｘマウス骨格筋の線維化が抑制されたといえる。また、ＴａｄのＲＳＶとの併用は、ＲＳＶによる線維化抑制効果をさらに増強する。 Thus, RSV suppresses fibrosis of Mdx mouse skeletal muscle not only at the protein level but also at the mRNA level. As described above, RSV is known to activate SIRT1. That is, it can be said that fibrosis of Mdx mouse skeletal muscle was suppressed by activating SIRT1. Moreover, the combined use of Tad with RSV further enhances the fibrosis suppression effect by RSV.
〔２：骨格筋細胞におけるＳＩＲＴ１の活性化〕
上述したように、ＳＩＲＴ１は、心筋細胞において細胞質から核内へ移行した後にその活性を示すことが知られている。骨格筋細胞においてもまた、ＳＩＲＴ１が細胞質から核内へ移行して活性化している可能性がある。そこで、骨格筋細胞におけるＳＩＲＴ１の局在およびその変化を調べた。[2: Activation of SIRT1 in skeletal muscle cells]
As described above, SIRT1 is known to show its activity after translocation from the cytoplasm into the nucleus in cardiomyocytes. In skeletal muscle cells, SIRT1 may also be activated by moving from the cytoplasm into the nucleus. Therefore, the localization of SIRT1 in skeletal muscle cells and changes thereof were examined.
図３に示すように、骨格筋細胞（Ｃ２Ｃ１２細胞）においても、ＳＩＲＴ１は細胞質にて発現していることがわかった。そして、Ｔａｄを用いて細胞を前処理することによって核内でのＳＩＲＴ１の発現が増加した。上述したように、Ｔａｄは、生体内でｃＧＭＰを分解するホスホジエステラーゼ５（ＰＤＥ−５）の酵素活性を阻害する。そこで、ｃＧＭＰキナーゼを活性化させるｃＧＭＰアナログであるＣＰＴ−ｃＧＭＰ（ＣＰＴ）を用いて、同様に細胞を前処理したところ、Ｔａｄの場合と同様に、核内でのＳＩＲＴ１の発現が増加した。図には、ＳＩＲＴ１抗体を用いた免疫染色像（上）、および核内のＳＩＲＴ１の相対値（下）を示した。 As shown in FIG. 3, it was found that SIRT1 was also expressed in the cytoplasm in skeletal muscle cells (C2C12 cells). And the expression of SIRT1 in the nucleus increased by pretreating the cells with Tad. As described above, Tad inhibits the enzyme activity of phosphodiesterase 5 (PDE-5), which degrades cGMP in vivo. Therefore, when CPT-cGMP (CPT), which is a cGMP analog that activates cGMP kinase, was pretreated in the same manner, SIRT1 expression in the nucleus increased as in the case of Tad. The figure shows an immunostained image using SIRT1 antibody (upper) and the relative value of SIRT1 in the nucleus (lower).
さらに、イムノブロッティング法を用いて、図３に示した免疫染色の結果を検証した（図４）。図には、細胞分画法で分画した細胞質画分と核画分とに対するウエスタンブロットの結果（上）、および核画分または細胞質画分におけるＳＩＲＴ１の相対値（下）を示した。核画分については、ラミニンを核タンパク質のコントロールとして、細胞質画分については、ＧＡＰＤＨを細胞質タンパク質のコントロールとして用いた。示されるように、Ｃ２Ｃ１２細胞に対してＴａｄを前処理しておくことによって細胞質でのＳＩＲＴ１の発現は有意に減少し、逆に、核でのＳＩＲＴ１の発現が有意に増加したことがわかる。 Furthermore, the immunostaining results shown in FIG. 3 were verified using an immunoblotting method (FIG. 4). The figure shows the results of Western blotting for the cytoplasmic fraction and the nuclear fraction (top) fractionated by the cell fractionation method, and the relative value of SIRT1 in the nuclear fraction or cytoplasmic fraction (bottom). For the nuclear fraction, laminin was used as a nuclear protein control, and for the cytoplasmic fraction, GAPDH was used as a cytoplasmic protein control. As shown, it can be seen that pretreatment of Tad on C2C12 cells significantly reduced SIRT1 expression in the cytoplasm and conversely increased SIRT1 expression in the nucleus.
これらのことから、細胞内ｃＧＭＰを増加させると、骨格筋細胞におけるＳＩＲＴ１の核での発現が増強されるといえる。ただし、ＴａｄまたはＣＰＴを前処理しても、細胞全体におけるＳＩＲＴ１の総発現量（ｍＲＮＡおよびタンパク質の両方）には変化がない（図５）。これにより、細胞内ｃＧＭＰを増加させると骨格筋細胞におけるＳＩＲＴ１の核内移行が増強されており、ＳＩＲＴ１の活性化が促進されているということがわかった。 From these facts, it can be said that increasing intracellular cGMP enhances the expression of SIRT1 in skeletal muscle cells in the nucleus. However, pretreatment with Tad or CPT does not change the total expression level (both mRNA and protein) of SIRT1 in the whole cell (FIG. 5). Thus, it was found that increasing intracellular cGMP enhanced SIRT1 nuclear translocation in skeletal muscle cells and promoted SIRT1 activation.
〔３：マウス骨格筋におけるＳＩＲＴ１の活性化〕
培養細胞において観察された、ＴａｄによるＳＩＲＴ１の核内移行が、マウス生体内にて生じるか否かを確認した。Ｔａｄ（７０ｍｇ／ｋｇ粉末飼料）を１週間ｄｄｙマウスに経口投与した後に、マウスから骨格筋を収集し、ＳＩＲＴ１による免疫染色を行った（図６）。Ａには、骨格筋におけるＳＩＲＴ１の免疫染色像（左）およびその結果を数値化したグラフを示す。示されるように、マウス骨格筋においても、ＳＩＲＴ１の核での発現量が、コントロールマウスと比較してＴａｄ投与マウスにおいて優位に増加していた。これにより、細胞内ｃＧＭＰを増加させると骨格筋細胞におけるＳＩＲＴ１の核内移行が増強されており、ＳＩＲＴ１の活性化が促進されているということがわかった。[3: Activation of SIRT1 in mouse skeletal muscle]
It was confirmed whether SIRT1 translocation into the nucleus by Tad observed in cultured cells occurred in the mouse body. After Tad (70 mg / kg powdered feed) was orally administered to ddy mice for 1 week, skeletal muscle was collected from the mice and immunostained with SIRT1 (FIG. 6). A shows an immunostained image of SIRT1 in skeletal muscle (left) and a graph in which the results are digitized. As shown, also in mouse skeletal muscle, the expression level of SIRT1 in the nucleus was significantly increased in Tad-administered mice compared to control mice. Thus, it was found that increasing intracellular cGMP enhanced SIRT1 nuclear translocation in skeletal muscle cells and promoted SIRT1 activation.
〔４：ＲＳＶ配糖体の抗酸化活性〕
ＲＳＶ、ならびにＲＳＶ配糖体である３−Ｏ−β−Ｄ−グリコシド（３Ｇ−ＲＳＶ）および４’−Ｏ−β−Ｄ−グリコシド（４’Ｇ−ＲＳＶ）の構造を図７に示す。ＲＳＶおよびＲＳＶ配糖体のラジカル消去活性（抗酸化活性）を調べた。[4: Antioxidant activity of RSV glycoside]
FIG. 7 shows the structures of RSV and the RSV glycosides 3-O-β-D-glycoside (3G-RSV) and 4′-O-β-D-glycoside (4′G-RSV). The radical scavenging activity (antioxidant activity) of RSV and RSV glycosides was examined.
ＲＳＶ配糖体を以下のように調製した。Ｍｕｒａｓｈｉｇｅ−Ｓｋｏｏｇ（ＭＳ）基本培地に、３％スクロース、２，４−ｄｉｃｈｌｏｒｏｐｈｅｎｏｘｙａｃｅｔｉｃ ａｃｉｄを最終濃度１ｐｐｍで添加した液体培地（１００ｍＬ）に、新鮮重量２０ｇの植物培養細胞を移し、１２０ｒｐｍにて２５℃で４日間振盪培養した。その後、ＤＭＳＯ（１００μＬ）に溶解した４０μｍｏｌ ＲＳＶ（東京化成）を液体培地に添加し、同一条件下にて２日間培養した。 RSV glycosides were prepared as follows. A 20 g fresh weight of plant culture cells was transferred to a liquid medium (100 mL) to which 3% sucrose and 2,4-dichlorophenoxyacetic acid were added at a final concentration of 1 ppm to a Murashige-Skoog (MS) basic medium, and 120 rpm at 25 ° C. Cultured with shaking for 4 days. Thereafter, 40 μmol RSV (Tokyo Kasei) dissolved in DMSO (100 μL) was added to the liquid medium and cultured under the same conditions for 2 days.
培養後、ナイロンメッシュで培地と培養細胞とを濾別し、濾液を水飽和ｎ−ブタノールで分配抽出し、細胞をホモジナイズした後にメタノールで静置抽出した。それぞれの有機相を減圧下にて濃縮し、メタノールで５．０ｍＬに調製したものをサンプルとした。 After the culture, the medium and the cultured cells were separated by filtration with a nylon mesh, the filtrate was partitioned and extracted with water-saturated n-butanol, and the cells were homogenized and then statically extracted with methanol. Each organic phase was concentrated under reduced pressure and adjusted to 5.0 mL with methanol as a sample.
得られたサンプルを逆相ＨＰＬＣにて分析し、変換物を確認した。この変換物を分取ＨＰＬＣで単離・精製し、ＬＣ／ＭＳおよびＮＭＲを用いて構造解析を行って、３Ｇ−ＲＳＶおよび４’Ｇ−ＲＳＶであることを確認した。 The obtained sample was analyzed by reverse phase HPLC to confirm the conversion product. This converted product was isolated and purified by preparative HPLC, and subjected to structural analysis using LC / MS and NMR, and confirmed to be 3G-RSV and 4'G-RSV.
図８に、１，１−ジフェニル−２−ピクリルヒドラジル（ＤＰＰＨ）を用いた、ＲＳＶ、３Ｇ−ＲＳＶおよび４’Ｇ−ＲＳＶのラジカル消去活性を示す。ＤＰＰＨは、５１７ｎｍに特異的な吸収波長を有している。抗酸化物質によってラジカルが奪われると、５１７ｎｍの吸収が減少する。この反応を用いて、ラジカルの消去率を測定し、測定値に基づいて５０％阻害濃度（ＩＣ５０）を算出し、抗酸化活性を比較した。ＤＤＰＨをメタノールに溶解し、０．１５ｍＭに調整した。ＲＳＶおよびＲＳＶ配糖体の二倍段階希釈（１／２〜１／５１２）の希釈系列サンプルを作製し、これらのサンプルとＤＤＰＨ溶液とを５００μＬずつ混合／撹拌し、暗所にて室温で３０分間反応させた後に、５１７ｎｍにおける吸収を測定した。FIG. 8 shows the radical scavenging activity of RSV, 3G-RSV and 4′G-RSV using 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH). DPPH has a specific absorption wavelength at 517 nm. When radicals are deprived by antioxidants, the absorption at 517 nm decreases. Using this reaction, the radical scavenging rate was measured, 50% inhibitory concentration (IC 50 ) was calculated based on the measured value, and the antioxidant activity was compared. DDPH was dissolved in methanol and adjusted to 0.15 mM. Dilution series samples of 2-fold serial dilutions (1/2 to 1/512) of RSV and RSV glycosides were prepared, and 500 μL of these samples and DDPH solution were mixed / stirred at room temperature in the dark at room temperature. After reacting for minutes, the absorption at 517 nm was measured.
図８に示すように、ＲＳＶ、３Ｇ−ＲＳＶおよび４’Ｇ−ＲＳＶのＩＣ５０は、それぞれ７９μＭ、１１０μＭおよび２５０μＭであった。このように、３Ｇ−ＲＳＶはＲＳＶに匹敵する高いラジカル消去活性を示すが、４’Ｇ−ＲＳＶのラジカル消去活性はこれらよりもかなり低いことがわかった。As shown in FIG. 8, the IC 50 of RSV, 3G-RSV and 4′G-RSV was 79 μM, 110 μM and 250 μM, respectively. Thus, although 3G-RSV shows a high radical scavenging activity comparable to RSV, it was found that the radical scavenging activity of 4′G-RSV is considerably lower than these.
〔５：ＲＳＶ配糖体のヒストンＨ３脱アセチル化活性〕
ＲＳＶ配糖体がＲＳＶと同様にヒストンＨ３脱アセチル化活性を有しているか否かを調べた。[5: Histone H3 deacetylation activity of RSV glycoside]
It was examined whether RSV glycosides have histone H3 deacetylation activity as in RSV.
マウス由来の筋肉芽細胞であるＣ２Ｃ１２細胞を、１０％ ＦＢＳ（ＭＰ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌｓ Ｉｎｃ）および１％ ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃ−ａｎｔｉｍｙｃｏｔｉｃ ｍｉｘｅｄ ｓｔｏｃｋ ｓｏｌｕｔｉｏｎ（Ｎａｃａｌａｉ Ｔｅｓｑｕｅ）を含む高グルコースのＤＭＥＭ培地（Ｗａｋｏ）を用いて、３７℃、５％ＣＯ２の環境下にて培養した。C2C12 cells, which are myoblasts derived from mice, were cultured at 37 ° C. using a high glucose DMEM medium (Wako) containing 10% FBS (MP Biomedicals Inc) and 1% antibiotic-mixed stock solution (Nacalai Tesque). The culture was performed in an environment of 5% CO 2 .
Ｗｅｓｔｅｒｎ Ｂｌｏｔｔｉｎｇのために、培養したＣ２Ｃ１２細胞を、最終濃度１００μＭのＲＳＶおよびＲＳＶ配糖体の存在下にて１８時間培養し、１００μＭアンチマイシン（ＡＡ）を添加して６時間培養することによって、酸化ストレスを細胞に与えた。引き続く手順は定法に従った。用いた抗体は以下のとおりである：Monoclonal Anti- GAPDH Clone GAPDH-71.1 (SIGMA)、Anti-Histone H3 Acetylated (1-20) Rabbit pAb (Calbiochem)、Histone H3 antibody-ChIP Grade (ab1791) (Abcam)。 For Western Blotting, cultured C2C12 cells were cultured for 18 hours in the presence of RSV and RSV glycosides at a final concentration of 100 μM, and cultured for 6 hours with the addition of 100 μM antimycin (AA). Stress was applied to the cells. Subsequent procedures followed the standard method. The following antibodies were used: Monoclonal Anti-GAPDH Clone GAPDH-71.1 (SIGMA), Anti-Histone H3 Acetylated (1-20) Rabbit pAb (Calbiochem), Histone H3 antibody-ChIP Grade (ab1791) (Abcam) .
図９に示されるように、コントロール群（図中ＡＡ）に対して、３Ｇ−ＲＳＶ処置群においてはヒストンＨ３脱アセチル化の促進作用が確認できなかったが、ＲＳＶ処置群において、アセチル化ヒストンＨ３の有意な減少が観察され、４’Ｇ−ＲＳＶ処置群では、ＲＳＶ処置群よりも優れたヒストンＨ３脱アセチル化活性が観察された。このように、４’Ｇ−ＲＳＶが３Ｇ−ＲＳＶと比較してヒストンＨ３脱アセチル化を有意に促進することがわかった。 As shown in FIG. 9, the 3G-RSV treatment group did not confirm the action of promoting histone H3 deacetylation relative to the control group (AA in the figure), but the acetylated histone H3 in the RSV treatment group. A significant decrease was observed, and in the 4′G-RSV treatment group, histone H3 deacetylation activity superior to that in the RSV treatment group was observed. Thus, it was found that 4'G-RSV significantly promotes histone H3 deacetylation compared to 3G-RSV.
上述したように、ＳＩＲＴ１活性化因子は、ＮＡＤ依存性ヒストン脱アセチル化酵素であるＳｉｒ２ファミリータンパク質（すなわち、サーチュインタンパク質）を活性化する能力を有する因子であり、生体内においてサーチュインタンパク質が活性化されると、ヒストンＨ３の脱アセチル化が引き起こされる。ＲＳＶは、抗酸化物質としても知られているが、ＲＳＶと同程度の抗酸化活性を有する３Ｇ−ＲＳＶによって、ヒストンＨ３の脱アセチル化は引き起こされない。これらのことは、本実施例にて実証した筋ジストロフィーの治療効果があくまでもＲＳＶのＳＩＲＴ１活性化因子としての機能に基づくものであり、抗酸化物質としての機能に基づくものではないことを、本明細書を読んだ当業者は容易に理解する。そして、本実施例にてＳＩＲＴ１活性化因子としてＲＳＶを用いて本発明を説明しているが、本発明に利用可能なＳＩＲＴ１活性化因子はＲＳＶに限定されないことを、本明細書を読んだ当業者は容易に理解する。 As described above, the SIRT1 activator is a factor having an ability to activate a Sir2 family protein (that is, a sirtuin protein) that is an NAD-dependent histone deacetylase, and the sirtuin protein is activated in vivo. Then, deacetylation of histone H3 is caused. Although RSV is also known as an antioxidant substance, deacetylation of histone H3 is not caused by 3G-RSV having the same level of antioxidant activity as RSV. These facts indicate that the therapeutic effect of muscular dystrophy demonstrated in this example is based solely on the function of RSV as a SIRT1 activator and not on the function as an antioxidant. Those skilled in the art will readily understand. In the present example, the present invention is described using RSV as the SIRT1 activator. However, the present specification has read that the SIRT1 activator usable in the present invention is not limited to RSV. Contractors understand easily.
本発明は上述した各実施形態に限定されるものではなく、請求項に示した範囲で種々の変更が可能であり、異なる実施形態にそれぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態についても本発明の技術的範囲に含まれる。 The present invention is not limited to the above-described embodiments, and various modifications are possible within the scope shown in the claims, and embodiments obtained by appropriately combining technical means disclosed in different embodiments. Is also included in the technical scope of the present invention.
本発明を用いれば、筋ジストロフィーを処置することができ、特に、筋ジストロフィーにおける骨格筋の線維化状態を劇的に改善することができる。このように優れたツールを提供する本発明は、医学、薬学の分野において利用可能であり、医薬品、生化学試薬の開発に大いに寄与することができる。 By using the present invention, muscular dystrophy can be treated, and in particular, the fibrosis state of skeletal muscle in muscular dystrophy can be dramatically improved. The present invention providing such an excellent tool can be used in the fields of medicine and pharmacy and can greatly contribute to the development of pharmaceuticals and biochemical reagents.
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