JPWO2011052089A1 - In vivo drug sustained release carrier material comprising hydrogel crosslinked with ionizing radiation and method for producing the same - Google Patents

In vivo drug sustained release carrier material comprising hydrogel crosslinked with ionizing radiation and method for producing the same Download PDF

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Abstract

リニア放出性と2段階放出性との2種類の薬剤放出プロファイルを制御でき、化学架橋された生体内分解性高分子水溶性物質よりも薬剤吸着能力が優れ、最適な治療効果が認められる架橋された生体内分解性高分子水溶性物質に由来する生体内薬剤徐放用担体材料及びその製造方法を提供する。ゼラチン等の生体内分解性高分子水溶性物質を電離性放射線によって窒素等の不活性気体雰囲気下で架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料であって、該ヒドロゲルが、40℃の水に可溶性である未架橋部分と架橋部分とを、質量比で95:5〜5:95、好ましくは、95:5〜55:45で有し、かつ、該担体材料が、薬剤を担持して生体内に埋め込んだ後、2段階放出性を示す生体内薬剤徐放用担体材料、または、該ヒドロゲルを水で洗浄処理した実質的に未架橋部分を含まない生体内薬剤徐放用担体材料、並びにこれら担体材料の製造方法。Two types of drug release profiles, linear release and two-stage release, can be controlled, and the drug adsorption capacity is superior to chemically cross-linked biodegradable polymer water-soluble substances. In addition, a carrier material for sustained release of an in vivo drug derived from a biodegradable polymer water-soluble substance and a method for producing the same are provided. A biomaterial sustained release carrier material comprising a hydrogel obtained by crosslinking a biodegradable polymer water-soluble substance such as gelatin in an inert gas atmosphere such as nitrogen with ionizing radiation, the hydrogel having a temperature of 40 ° C. It has an uncrosslinked portion and a crosslinked portion that are soluble in water in a mass ratio of 95: 5 to 5:95, preferably 95: 5 to 55:45, and the carrier material carries a drug. In vivo drug sustained release carrier material that exhibits two-stage release properties after being embedded in the living body, or in vivo drug sustained release carrier material that is substantially free of uncrosslinked portions obtained by washing the hydrogel with water And methods for producing these carrier materials.

Description

本発明は、主に医療分野で用いられる電離性放射線で架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料及びその製造方法に関する。   The present invention relates to a carrier material for sustained release of an in vivo drug composed of a hydrogel crosslinked with ionizing radiation mainly used in the medical field, and a method for producing the same.

ゼラチンなどの生体内分解性高分子水溶性物質は、生体安全性が高く、しかも生体内で分解性を示すため、医療品や化粧品の用途に適した水溶性高分子材料である。ゼラチンなどの生体内分解性高分子水溶性物質は、架橋することにより、架橋ゼラチンなどの架橋物を形成することができる。架橋ゼラチンなどの架橋物は、板状、円柱状、角柱状、シート状、ディスク状、球状などの各種形状に成形することができる。架橋ゼラチンなどの架橋物は、水分を吸収してヒドロゲルを形成する。そのため、例えば、架橋ゼラチンは、架橋ゼラチンゲルと呼ばれることがある。   A biodegradable polymer water-soluble substance such as gelatin is a water-soluble polymer material suitable for medical and cosmetic applications because it has high biosafety and exhibits degradability in vivo. Biodegradable polymer water-soluble substances such as gelatin can form a crosslinked product such as crosslinked gelatin by crosslinking. Cross-linked products such as cross-linked gelatin can be formed into various shapes such as plate, columnar, prismatic, sheet, disc, and spherical. Cross-linked products such as cross-linked gelatin absorb water and form hydrogels. Thus, for example, cross-linked gelatin is sometimes referred to as cross-linked gelatin gel.

架橋ゼラチンなどの架橋物は、生体内に存在する酵素、例えばプロテアーゼで分解性を示し、その分解速度は、架橋度によって制御することができる。架橋ゼラチンなどの架橋物の架橋度は、その含水率にほぼ逆比例する。架橋ゼラチンなどの架橋物の含水率が小さいほど、その架橋度が高いことを示す。   Cross-linked products such as cross-linked gelatin are degradable by enzymes present in the living body, such as protease, and the degradation rate can be controlled by the degree of cross-linking. The degree of cross-linking of a cross-linked product such as cross-linked gelatin is almost inversely proportional to its water content. The smaller the moisture content of a crosslinked product such as crosslinked gelatin, the higher the degree of crosslinking.

架橋ゼラチンなどの架橋物は、生体適合性が良好である上、生理活性因子などの薬剤を担持させることができる。成長因子等の生理活性因子を担持した架橋ゼラチンなどの架橋物を生体内に投与すると、架橋ゼラチンなどの架橋物が生体内で分解するにつれて、担持した生理活性因子が徐々に放出される。   Cross-linked products such as cross-linked gelatin have good biocompatibility and can carry a drug such as a bioactive factor. When a cross-linked product such as cross-linked gelatin carrying a bioactive factor such as a growth factor is administered in vivo, the supported bioactive factor is gradually released as the cross-linked product such as cross-linked gelatin is decomposed in vivo.

生理活性因子としては、例えば、成長因子である血管新生誘導効果を持つ塩基性線維芽細胞増殖因子(bFGF)が知られている。このような生理活性因子を、水溶液としてヒトなどの生体内に投与すると、比較的短期間で失活したり、生体から排除されたりして、その効果が低下するため、治療目的を達成することが困難である。これに対して、生理活性因子を担持した架橋ゼラチンなどの架橋物を、生体内に埋め込んだり、注射器を用いて生体内に注入したりする方法により投与すると、該生理活性因子が徐放されるため、該生理活性因子を水溶液で投与した場合に比べて、長期間にわたって効果を持続させることができる。   As a physiologically active factor, for example, basic fibroblast growth factor (bFGF) having an angiogenesis-inducing effect, which is a growth factor, is known. When such a physiologically active factor is administered as an aqueous solution in a living body such as a human, it is deactivated in a relatively short period of time or eliminated from the living body, and its effect is reduced. Is difficult. In contrast, when a cross-linked product such as cross-linked gelatin carrying a bioactive factor is administered by a method in which it is embedded in the living body or injected into the living body using a syringe, the bioactive factor is gradually released. Therefore, the effect can be maintained over a long period of time compared to the case where the physiologically active factor is administered as an aqueous solution.

生体内分解性高分子水溶性物質としては、キチン、キトサン、ヒアルロン酸、アルギン酸、デンプン等の多糖類、ゼラチン、コラーゲン等のタンパク質、ポリ−γ−グルタミン酸、ポリ−L−リジン等のポリアミノ酸、及びそれらの誘導体、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリ乳酸、ポリカプロラクトン、ラクチドとグリコリドとの共重合体などがあるが、そのうち、ゼラチンは、コラーゲンを親物質とする動物性タンパク質である。そのため、架橋ゼラチンは、薬剤徐放用担体材料としての用途だけではなく、化粧品への用途展開も期待されている。このほか、架橋ゼラチンは、工業用などの広範な用途に用いることができる。しかし、従来の架橋ゼラチンには、解決すべき重要な諸問題が残されている。   Biodegradable polymer water-soluble substances include chitin, chitosan, hyaluronic acid, alginic acid, starch and other polysaccharides, gelatin, collagen and other proteins, poly-γ-glutamic acid, poly-L-lysine and other polyamino acids, And their derivatives, polyethylene glycol, polyvinyl alcohol, polyvinyl pyrrolidone, polylactic acid, polycaprolactone, copolymers of lactide and glycolide, etc. Among them, gelatin is an animal protein having collagen as a parent substance. Therefore, the crosslinked gelatin is expected not only for use as a carrier material for sustained drug release but also for use in cosmetics. In addition, the crosslinked gelatin can be used for a wide range of applications such as industrial use. However, the conventional cross-linked gelatin still has important problems to be solved.

最大の問題は、従来のゼラチンなどの生体内分解性高分子水溶性物質の架橋方法が、実質的に、架橋剤を用いる化学架橋法に限定されていることにある。化学架橋法は、生産性に劣ることや架橋度の正確な制御が困難であることに加えて、残留する架橋剤や反応停止剤などの化学物質による生体への悪影響が懸念されるという問題を有している。   The biggest problem is that the conventional crosslinking method of biodegradable polymer water-soluble substances such as gelatin is substantially limited to the chemical crosslinking method using a crosslinking agent. The chemical cross-linking method has a problem that in addition to being inferior in productivity and difficult to accurately control the degree of cross-linking, there are concerns about adverse effects on the living body due to residual chemicals such as cross-linking agents and reaction terminators. Have.

国際公開第1994/27630号(特許文献1)には、ゼラチンを架橋して得られた架橋ゼラチンに、bFGFを担持させた架橋ゼラチンゲル製剤が提案されている。特許文献1には、ゼラチンの架橋には、架橋剤を用いた化学架橋法のほかに、熱処理または紫外線照射によっても架橋できると記載されている。しかし、特許文献1の実施例には、グルタルアルデヒドや1−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩などの架橋剤を用いた化学架橋法が示されているだけである。   International Publication No. 1994/27630 (Patent Document 1) proposes a crosslinked gelatin gel preparation in which bFGF is supported on a crosslinked gelatin obtained by crosslinking gelatin. Patent Document 1 describes that the gelatin can be crosslinked by heat treatment or ultraviolet irradiation in addition to the chemical crosslinking method using a crosslinking agent. However, the Examples of Patent Document 1 only show a chemical crosslinking method using a crosslinking agent such as glutaraldehyde or 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride.

ゼラチンの化学架橋法では、化学物質からなる架橋剤を使用して架橋反応を行い、かつ、架橋反応を終了させるため、反応系内に化学物質からなる反応停止剤を加える必要がある。低毒性の架橋剤や反応停止剤を用いた場合であっても、これらは、化学物質であるため、微量であっても生体への悪影響のおそれがある。そのため、架橋ゼラチンに架橋剤や反応停止剤が残留しないように十分に精製するなど、安全性の確保に注意する必要がある。特許文献1には、架橋剤を用いて得られた架橋ゼラチンを、蒸留水や有機溶媒で洗浄することが記載されている。具体的には、特許文献1の実施例1には、架橋ゼラチンを、蒸留水により、37℃で12時間洗浄したことが記載されている。特許文献1の実施例1では、架橋反応にも24時間という長時間を費やしている。したがって、架橋剤を用いた架橋ゼラチンの製造方法は、架橋反応や安全性の確保に多大の時間と労力を要する。   In the chemical crosslinking method of gelatin, it is necessary to add a reaction terminator made of a chemical substance in the reaction system in order to carry out a crosslinking reaction using a crosslinking agent made of a chemical substance and to terminate the crosslinking reaction. Even when a low-toxic crosslinking agent or reaction terminator is used, since these are chemical substances, there is a risk of adverse effects on the living body even in a trace amount. Therefore, it is necessary to pay attention to ensuring safety, for example, by sufficiently purifying the crosslinked gelatin so that no crosslinking agent or reaction terminator remains. Patent Document 1 describes that a crosslinked gelatin obtained using a crosslinking agent is washed with distilled water or an organic solvent. Specifically, Example 1 of Patent Document 1 describes that crosslinked gelatin was washed with distilled water at 37 ° C. for 12 hours. In Example 1 of Patent Document 1, a long time of 24 hours is also spent for the crosslinking reaction. Therefore, the method for producing a crosslinked gelatin using a crosslinking agent requires a great amount of time and labor for ensuring a crosslinking reaction and safety.

他方、ゼラチンに紫外線を照射して架橋する方法では、光反応開始剤を用いて架橋反応を開始させ、そして、架橋反応を終了させるには、反応停止剤を添加して光反応開始剤の活性を停止させる必要がある。光反応開始剤や反応停止剤は、化学物質であるため、化学架橋法と同様の問題を有している。   On the other hand, in the method of crosslinking by irradiating gelatin with ultraviolet rays, a photoinitiator is used to initiate a cross-linking reaction, and to terminate the cross-linking reaction, a reaction terminator is added to activate the photoinitiator activity. Need to be stopped. Since photoreaction initiators and reaction terminators are chemical substances, they have the same problems as the chemical crosslinking method.

熱処理によりゼラチンを架橋する方法は、架橋に長時間を要する上、架橋度の制御が難しく、所望の架橋度を持つ架橋ゼラチンを安定的に得ることが困難である。そのため、熱処理により得られた架橋ゼラチンに生理活性因子などの薬剤を担持させても、所望の徐放性を安定して発揮する架橋ゼラチンゲル製剤を得ることが困難である。   In the method of crosslinking gelatin by heat treatment, it takes a long time for crosslinking, and it is difficult to control the degree of crosslinking, and it is difficult to stably obtain crosslinked gelatin having a desired degree of crosslinking. Therefore, it is difficult to obtain a crosslinked gelatin gel preparation that stably exhibits a desired sustained release property even when a drug such as a physiologically active factor is supported on the crosslinked gelatin obtained by heat treatment.

また、薬剤を担持した架橋ゼラチンなどの架橋物は、投与手段によっては粒子の形状であることが望ましいことがある。例えば、架橋ゼラチン粒子は、他成分との均一な混合が容易であるため、化粧品などの用途にも適している。しかし、従来の架橋ゼラチンなど生体内分解性高分子水溶性物質の架橋物の製造方法では、有害な残留化学物質を含まず、所望の架橋度を有する架橋ゼラチンなどの架橋物を、粒子の形状で効率的に製造することが困難であった。   In addition, the cross-linked product such as cross-linked gelatin carrying a drug may be desirably in the form of particles depending on the administration means. For example, cross-linked gelatin particles are suitable for cosmetic applications because they can be easily mixed with other components. However, in the conventional method for producing a crosslinked product of a biodegradable polymer water-soluble substance such as crosslinked gelatin, a crosslinked product such as crosslinked gelatin that does not contain harmful residual chemical substances and has a desired degree of crosslinking is formed into a particle shape. It was difficult to manufacture efficiently.

すなわち、特許文献1に開示されている架橋剤を用いた架橋ゼラチン粒子の製造方法は、架橋反応と精製による安全性の確保に多大の時間と労力を要し、製品コストの低減化に限界があった。特許文献1に教示されている紫外線の照射や熱処理による架橋方法を採用して、架橋ゼラチン粒子を製造したとしても、このような製造方法は、前述のごとき諸問題を抱えている。   That is, the method for producing crosslinked gelatin particles using the crosslinking agent disclosed in Patent Document 1 requires a great deal of time and labor to ensure safety by crosslinking reaction and purification, and there is a limit to reducing the product cost. there were. Even if the crosslinked gelatin particles are produced by adopting the crosslinking method by ultraviolet irradiation or heat treatment taught in Patent Document 1, such production method has various problems as described above.

架橋ゼラチンの製造方法としては、化学架橋、紫外線の照射、熱処理などの外に、電子線架橋による方法が知られている。   As a method for producing cross-linked gelatin, in addition to chemical cross-linking, ultraviolet irradiation, heat treatment, etc., a method using electron beam cross-linking is known.

国際公開第2008/016163号(特許文献2)には、ゼラチンまたはゼラチン誘導体が酸素雰囲気下で電子線の照射により架橋された架橋ゼラチンゲル層の複数層が、互いに隣接して配置された層構成を有する架橋ゼラチンゲル多層構造体と、その製造方法が開示されている。しかし、2枚のシートの接着性向上に主眼を置き、空気中など酸素含有雰囲気下で電子線を照射する方法であるため、薬剤の吸着性、徐放性については未だ改良の余地があった。   International Publication No. 2008/016163 (Patent Document 2) discloses a layer configuration in which a plurality of crosslinked gelatin gel layers in which gelatin or a gelatin derivative is crosslinked by electron beam irradiation in an oxygen atmosphere are arranged adjacent to each other. A cross-linked gelatin gel multilayer structure having the following and a method for producing the same are disclosed. However, the focus is on improving the adhesiveness of the two sheets, and this is a method of irradiating an electron beam in an oxygen-containing atmosphere such as the air, so there is still room for improvement in the adsorptivity and sustained release of the drug. .

更に、特開2004−339395号公報(特許文献3)には、ゼラチンを含む原料と水もしくは緩衝液とを混合し、5〜50%濃度の混合物を形成し、加圧成形して所要形状とした後、1kGy以上200kGy未満の照射量で電離性放射線を照射するゼラチンから成る成形体の製造方法が記載されている。特許文献3には、この成形体は、フィルム、容器等として従来プラスチックで成形されている製品の代替品として用いられることが記載され、加えて、細胞培養担体や、熱傷、創傷、褥瘡、擦過傷または皮膚潰瘍などの皮膚欠損剤等の医用基材として用いることが記載されている。しかし、この成形体を、生体内薬剤徐放用担体材料として使用することについては何ら示唆がない。   Furthermore, in Japanese Patent Application Laid-Open No. 2004-339395 (Patent Document 3), a raw material containing gelatin and water or a buffer solution are mixed to form a mixture having a concentration of 5 to 50%, and pressure-molded to obtain a required shape. After that, a method for producing a molded body made of gelatin that is irradiated with ionizing radiation at an irradiation dose of 1 kGy or more and less than 200 kGy is described. Patent Document 3 describes that this molded body can be used as a substitute for products conventionally molded from plastic as a film, container, etc. In addition, cell culture carriers, burns, wounds, pressure ulcers, scratches, etc. Alternatively, it is described that it is used as a medical substrate such as a skin defect agent such as a skin ulcer. However, there is no suggestion that this molded body is used as a carrier material for sustained release of an in vivo drug.

国際公開第1994/27630号International Publication No. 1994/27630 国際公開第2008/16163号International Publication No. 2008/16163 特開2004−339395号公報JP 2004-339395 A

本発明の課題は、生体に対する安全性に優れ、かつ、生理活性因子等の薬剤の担体として有用である、生体内分解性高分子水溶性物質を架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料と、その製造方法を提供することにある。   An object of the present invention is an in vivo drug sustained-release carrier comprising a hydrogel obtained by crosslinking a biodegradable polymer water-soluble substance, which is excellent in safety for a living body and is useful as a carrier for a drug such as a bioactive factor. It is to provide a material and a manufacturing method thereof.

特に、本発明の課題は、2種類の薬剤放出プロファイルを得ることができる、生体内分解性高分子水溶性物質の架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料とその製造方法を提供することにある。すなわち、生体内薬剤徐放用担体材料においては、担持している生理活性因子等の薬剤の種類如何により、大別すると、生体内に埋め込んでから短時間に大量の薬剤が放出される初期バーストが望まれるものと、生体内に埋め込んでから長期間にわたって一定量の薬剤が放出され続けることが望まれるものがあり、本発明は、この2種類の薬剤放出プロファイルの要求に応えるものである。   In particular, an object of the present invention is to provide a carrier material for sustained release of an in vivo drug comprising a cross-linked hydrogel of a biodegradable polymer water-soluble substance capable of obtaining two types of drug release profiles, and a method for producing the same. There is. In other words, in the carrier material for sustained release of in vivo drugs, an initial burst in which a large amount of drug is released in a short time after implantation in the living body, depending on the type of drug such as a physiologically active factor carried. There are those that are desired, and those that are desired to continue to release a certain amount of drug over a long period of time after being implanted in a living body, and the present invention meets the requirements of these two types of drug release profiles.

更に、本発明の課題は、化学架橋品と比較して薬剤吸着能が優れている、架橋ゼラチンなどの生体内分解性高分子水溶性物質の架橋物から成る生体内薬剤徐放用担体材料とその製造方法を提供することにある。   Furthermore, an object of the present invention is to provide a carrier material for sustained release of an in vivo drug comprising a cross-linked product of a biodegradable polymer water-soluble substance such as cross-linked gelatin, which has an excellent drug adsorbing ability compared with a chemically cross-linked product. It is in providing the manufacturing method.

本発明者らは、前記課題を解決するために鋭意研究する中で、電離性放射線で架橋した架橋ゼラチンゲルシートなどの、生体内分解性高分子水溶性物質の架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料に薬剤を担持させて水溶液中における薬剤の放出特性を確認した。本発明者らは、その際、初期段階(架橋状態によっては数秒から数時間)で架橋ゼラチンゲルシートに担持させた薬剤の半分以上が架橋ゼラチンゲルシートから溶出することがあること、溶出した物質を調べたところ、架橋ゼラチンゲルシートには低分子量のゼラチンの未架橋部分が存在しており、かつ、このゼラチンの未架橋部分にも薬剤が担持されていること、を見出した。そこで、本発明者らは、架橋ゼラチンゲルのゼラチンの未架橋部分を利用して、薬剤放出性を制御することにより、大きく分けて初期バーストを含む2段階放出の薬剤放出タイプ(以下、「2段階放出性」ということがある。)、及び、長期間にわたって一定量の薬剤が放出され続けるリニア放出の薬剤放出タイプ(以下、「リニア放出性」ということがある。)を、所望により選択することができる架橋ゼラチンゲルなどの生体内分解性高分子水溶性物質の架橋したヒドロゲルを得ることを想到した。   In order to solve the above-mentioned problems, the present inventors have conducted an in vivo drug slowdown comprising a hydrogel crosslinked with a biodegradable polymer water-soluble substance, such as a crosslinked gelatin gel sheet crosslinked with ionizing radiation. The release characteristics of the drug in an aqueous solution were confirmed by loading the drug on a release carrier material. In this case, the inventors investigated that the eluted substance may be eluted from the cross-linked gelatin gel sheet in an initial stage (a few seconds to several hours depending on the cross-linked state). As a result, it was found that the cross-linked gelatin gel sheet has an uncrosslinked portion of gelatin having a low molecular weight, and the uncrosslinked portion of the gelatin carries a drug. Therefore, the present inventors control the drug release by utilizing the uncrosslinked portion of the gelatin of the crosslinked gelatin gel to roughly divide the two-stage drug release type including the initial burst (hereinafter referred to as “2”). And a linear release drug release type (hereinafter, also referred to as “linear release”) that is continuously released over a long period of time. It was conceived to obtain a crosslinked hydrogel of a biodegradable polymer water-soluble substance such as a crosslinked gelatin gel.

具体的には、ゼラチンなどの生体内分解性高分子水溶性物質を、不活性気体雰囲気下で電離性放射線を照射して架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料として、架橋部分と未架橋部分とを利用することにより、生体内薬剤徐放用担体材料のシートを積層することなく、1層とした場合でも担持した薬剤の2段階放出性を示す架橋ゼラチンシートを想到した。また、ゼラチンなどの生体内分解性高分子水溶性物質を、不活性気体雰囲気下で電離性放射線を照射して架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料に対して水による洗浄処理を行って、実質的に未架橋部分が存在しない生体内薬剤徐放用担体材料を得て、この生体内薬剤徐放用担体材料に薬剤を担持させることにより、担持した薬剤を長期的に一定量放出し続けることができるリニア放出性を示す架橋ゼラチンシートを想到した。   Specifically, a biodegradable polymer water-soluble substance such as gelatin is irradiated with ionizing radiation in an inert gas atmosphere and crosslinked as a carrier material for sustained release of an in vivo drug. By utilizing the uncrosslinked portion, a cross-linked gelatin sheet having a two-stage release property of the loaded drug was conceived even when it was formed as a single layer without laminating sheets of the carrier material for sustained release of in vivo drugs. In addition, biodegradable polymer water-soluble substances such as gelatin are irradiated with ionizing radiation in an inert gas atmosphere and the carrier material for sustained release of in vivo drugs consisting of a hydrogel is washed with water. To obtain a carrier material for sustained release of an in vivo drug that is substantially free of uncrosslinked portions, and by loading the drug on the carrier material for sustained release of the in vivo drug, a constant amount of the supported drug is obtained over a long period of time. A cross-linked gelatin sheet having a linear release property that can be continuously released has been conceived.

かくして、本発明によれば、
生体内分解性高分子水溶性物質に不活性気体雰囲気下に電離性放射線を照射して架橋したヒドロゲルから成る、生体内薬剤徐放用担体材料であって、
該ヒドロゲルが、40℃の水に可溶性である未架橋部分と架橋部分とを、質量比で95:5〜5:95の範囲で有し、かつ、
該担体材料が、薬剤を担持して生体内に埋め込んだ後、1日経過するまでに担持する薬剤の55質量%以上が体内に放出され、担持する薬剤の残部が2日目以降に徐放される、2段階放出性を示すものである、
生体内薬剤徐放用担体材料、が提供される。
Thus, according to the present invention,
An in vivo biodegradable polymer water-soluble substance comprising a hydrogel crosslinked by irradiating with ionizing radiation in an inert gas atmosphere,
The hydrogel has an uncrosslinked portion and a crosslinked portion that are soluble in water at 40 ° C. in a mass ratio of 95: 5 to 5:95, and
After the carrier material carries the drug and is implanted in the living body, 55% by mass or more of the drug to be carried is released into the body until one day has passed, and the rest of the carried drug is gradually released from the second day onward. Which exhibits a two-stage release property,
In vivo drug sustained release carrier materials are provided.

また、本発明によれば、
前記2段階放出性を示す生体内薬剤徐放用担体材料に、水によって洗浄処理を行って成る、
実質的に未架橋部分を含まない、架橋したヒドロゲルから成る、リニア放出性を示す生体内薬剤徐放用担体材料、が提供される。
Moreover, according to the present invention,
The carrier material for in-vivo drug sustained release exhibiting the two-stage release property is washed with water,
There is provided a carrier material for sustained release of an in-vivo drug that exhibits linear release and is composed of a crosslinked hydrogel substantially free of uncrosslinked portions.

更に、本発明によれば、
生体内分解性高分子水溶性物質を架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料の製造方法であって、
不活性気体雰囲気下に電離性放射線を照射して架橋する電離性放射線照射工程を有するとともに、
該ヒドロゲルが、40℃の水に可溶性である未架橋部分と架橋部分とを、質量比で95:5〜5:95の範囲で有し、かつ、
該担体材料が、薬剤を担持して生体内に埋め込んだ後、1日経過するまでに担持する薬剤の55質量%以上が体内に放出され、担持する薬剤の残部が2日目以降に徐放される、2段階放出性を示すものである、
生体内薬剤徐放用担体材料の製造方法、並びに、
前記電離性放射線照射工程の後に、水による洗浄工程を更に有する、
実質的に未架橋部分を含まない、架橋したヒドロゲルから成る、リニア放出性を示す生体内薬剤徐放用担体材料の製造方法、が提供される。
Furthermore, according to the present invention,
A method for producing a carrier material for sustained release of an in vivo drug comprising a hydrogel obtained by crosslinking a biodegradable polymer water-soluble substance,
While having an ionizing radiation irradiation step of crosslinking by irradiating ionizing radiation in an inert gas atmosphere,
The hydrogel has an uncrosslinked portion and a crosslinked portion that are soluble in water at 40 ° C. in a mass ratio of 95: 5 to 5:95, and
After the carrier material carries the drug and is implanted in the living body, 55% by mass or more of the drug to be carried is released into the body until one day has passed, and the rest of the carried drug is gradually released from the second day onward. Which exhibits a two-stage release property,
A method for producing a carrier material for sustained release of an in vivo drug, and
After the ionizing radiation irradiation step, further comprising a washing step with water,
There is provided a method for producing a carrier material for sustained release of an in-vivo drug that exhibits linear release and is composed of a crosslinked hydrogel that is substantially free of uncrosslinked portions.

本発明の電離性放射線で架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料は、従来行われている化学架橋法で使用される有害な架橋剤を用いることがないので、生体への安全性が高く、化学架橋で行われていた煩雑な工程を大幅に省略できる。   Since the carrier material for sustained release of an in vivo drug comprising a hydrogel crosslinked with ionizing radiation according to the present invention does not use the harmful crosslinking agent used in the conventional chemical crosslinking method, it is safe for the living body. Therefore, complicated steps that have been performed by chemical crosslinking can be largely omitted.

また、本発明の電離性放射線で架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料は、化学架橋された生体内分解性高分子水溶性物質と比較して薬剤吸着能が優れているため、薬剤徐放の制御性が高まり、製剤設計を効率的に行うことができる。なお、化学架橋させた担体材料では、側鎖の官能基を利用して化学架橋反応が進む結果、薬剤のバインディングサイトである官能基が減少するので、薬剤担持吸着能力が低く、また、担体材料の架橋体の生分解によらない薬剤放出も生ずるため、時間当たりの薬剤放出の能力が低い。   In addition, the biomedical sustained release carrier material comprising a hydrogel cross-linked with ionizing radiation of the present invention has superior drug adsorption ability compared to a chemically cross-linked biodegradable polymer water-soluble substance, The controllability of the sustained release of the drug is enhanced, and the formulation design can be performed efficiently. In the case of a chemically cross-linked carrier material, the chemical cross-linking reaction proceeds using the functional group of the side chain. As a result, the functional group that is the binding site of the drug is reduced, so that the drug-carrying adsorption capacity is low. Since the drug release is not caused by the biodegradation of the crosslinked product, the ability of drug release per hour is low.

薬剤bFGFを吸着担持したゼラチンヒドロゲルの徐放性を示す図。The figure which shows the sustained release property of the gelatin hydrogel which carry | supported the chemical | medical agent bFGF. サケDNAの吸着性と放出性の評価を示す図。The figure which shows the adsorptivity and discharge | release property of salmon DNA. 未架橋部分の洗浄除去と生体内残留率を示す図。The figure which shows the washing | cleaning removal of an unbridged part, and the in-vivo residual rate. BMP−2徐放による骨形成の検討を示す図。The figure which shows examination of the bone formation by BMP-2 sustained release.

A.生体内薬剤徐放用担体材料
本発明の生体内薬剤徐放用担体材料は、生体内分解性高分子水溶性物質に不活性気体雰囲気下で電離性放射線を照射して架橋したヒドロゲルから成る、生体内薬剤徐放用担体材料である。
A. In vivo drug sustained release carrier material The in vivo drug sustained release carrier material of the present invention is composed of a hydrogel crosslinked by irradiating a biodegradable polymer water-soluble substance with ionizing radiation in an inert gas atmosphere. It is a carrier material for sustained drug release in vivo.

1.生体内分解性高分子水溶性物質
本発明に用いる生体内分解性高分子水溶性物質としては、不活性気体雰囲気下で電離性放射線を照射して架橋できるものであれば特に制限はなく、一般に入手できる市販品でよいが、例えば、ゼラチン、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリ乳酸、ポリカプロラクトン、ラクチドとグリコリドとの共重合体などが挙げられる。また、本発明に用いる生体内分解性高分子水溶性物質としては、通常、水に1〜80質量%の濃度で溶解し得るものである。
1. Biodegradable polymer water-soluble substance The biodegradable polymer water-soluble substance used in the present invention is not particularly limited as long as it can be cross-linked by irradiation with ionizing radiation in an inert gas atmosphere. Commercially available products may be used, and examples thereof include gelatin, polyethylene glycol, polyvinyl alcohol, polyvinyl pyrrolidone, polylactic acid, polycaprolactone, and a copolymer of lactide and glycolide. The biodegradable polymer water-soluble substance used in the present invention is usually one that can be dissolved in water at a concentration of 1 to 80% by mass.

これらの生体内分解性高分子水溶性物質の中でも、安全性、水に対する溶解性、電離性放射線による架橋性、架橋ゲル製剤や化粧品の成分としての用途への適性などの観点から、ゼラチンが特に好ましい。そこで、以下、生体内分解性高分子水溶性物質として、主としてゼラチンを取り上げて説明するが、ゼラチンに適用可能な技術的事項は、電離性放射線の照射により架橋可能な他の生体内分解性高分子水溶性物質にも適用することができる。   Among these biodegradable polymer water-soluble substances, gelatin is particularly preferable from the viewpoints of safety, solubility in water, cross-linkability by ionizing radiation, suitability for use as a cross-linked gel preparation and cosmetic ingredients, and the like. preferable. Thus, hereinafter, gelatin will be mainly described as the biodegradable polymer water-soluble substance, but technical matters applicable to gelatin are other biodegradable highly biodegradable materials that can be cross-linked by irradiation with ionizing radiation. It can also be applied to molecular water-soluble substances.

本発明において、生体内分解性高分子水溶性物質として好ましく用いられるゼラチンには、アルカリ処理ゼラチン、酸処理ゼラチン、及びゼラチン誘導体が含まれる。   In the present invention, the gelatin preferably used as the biodegradable polymer water-soluble substance includes alkali-treated gelatin, acid-treated gelatin, and gelatin derivatives.

すなわち、ゼラチンは、主として、牛骨、牛皮、及び豚皮を原料として生産されている。これらの原料の中でゼラチンに転化される親物質は、コラーゲンと呼ばれるタンパク質である。水に難溶性の物質であるコラーゲンを酸やアルカリで前処理した後、加熱すると、3本鎖螺旋の分子構造が壊れて、ランダムな3本の分子に分かれる。このようにしてゼラチンを熱変性し、可溶化されたコラーゲンを狭義のゼラチンと呼ぶ。コラーゲン原料からゼラチンを抽出するために、塩酸や硫酸などの無機酸または石灰(アルカリ)を用いて、原料の前処理を行う。原料の前処理条件により、前者を酸処理ゼラチン、後者をアルカリ処理ゼラチンと称する。両性電解質であるゼラチンとしては、分子内の正と負がつり合い、全体として荷電がゼロとなるときのpHである等電点に関して、例えば、等電点が5付近のアルカリ処理ゼラチン、及び等電点が9付近の酸処理ゼラチンが含まれる。   That is, gelatin is mainly produced from cow bone, cow skin, and pig skin. Among these raw materials, the parent substance that is converted into gelatin is a protein called collagen. When collagen, which is a poorly soluble substance in water, is pretreated with acid or alkali and then heated, the molecular structure of the triple-stranded helix is broken and separated into three random molecules. Gelatin thus heat-denatured and solubilized is called narrowly defined gelatin. In order to extract gelatin from a collagen raw material, the raw material is pretreated with an inorganic acid such as hydrochloric acid or sulfuric acid or lime (alkali). The former is called acid-treated gelatin and the latter is called alkali-treated gelatin, depending on the raw material pretreatment conditions. As the amphoteric electrolyte gelatin, positive and negative in the molecule are balanced, and with respect to the isoelectric point which is the pH when the charge becomes zero as a whole, for example, alkali-treated gelatin having an isoelectric point of about 5, and isoelectric point Acid-treated gelatin with a point around 9 is included.

ゼラチン誘導体は、ゼラチン側鎖を変性または修飾したものであり、酸処理ゼラチンに、エチレンジアミン、スペルミジンまたはスペルミンをカルボジイミドでグラフト重合したカチオン化ゼラチン誘導体;ゼラチンの側鎖にコハク酸を導入したサクシニル化ゼラチン誘導体;などが代表的なものである。   A gelatin derivative is a modified or modified gelatin side chain, a cationized gelatin derivative obtained by graft polymerization of ethylenediamine, spermidine or spermine with carbodiimide on acid-treated gelatin; Derivatives; etc. are typical ones.

本発明では、生体内分解性高分子水溶性物質として、アルカリ処理ゼラチン、酸処理ゼラチン、カチオン化ゼラチン誘導体、及びサクシニル化ゼラチン誘導体からなる群より選ばれる少なくとも一種のゼラチンまたはゼラチン誘導体を用いることが好ましい。   In the present invention, as the biodegradable polymer water-soluble substance, at least one gelatin or gelatin derivative selected from the group consisting of alkali-treated gelatin, acid-treated gelatin, cationized gelatin derivatives, and succinylated gelatin derivatives is used. preferable.

市販のゼラチンとしては、例えば、新田ゼラチン株式会社製の等電点が4.9または5.0のアルカリ処理ゼラチン;新田ゼラチン株式会社製の等電点が9.0の酸処理ゼラチン;カチオン化ゼラチン誘導体(等電点が9.0の酸処理ゼラチンにエチレンジアミンをカルボジイミドでグラフトしたゼラチン誘導体);などが挙げられる。   Examples of commercially available gelatin include alkali-treated gelatin having an isoelectric point of 4.9 or 5.0 manufactured by Nitta Gelatin Co., Ltd .; acid-treated gelatin having an isoelectric point of 9.0 manufactured by Nitta Gelatin Co., Ltd .; And cationized gelatin derivatives (gelatin derivatives obtained by grafting ethylenediamine with carbodiimide to acid-treated gelatin having an isoelectric point of 9.0).

2.電離性放射線
本発明は、ゼラチンなどの生体内分解性高分子水溶性物質に不活性気体雰囲気下で電離性放射線を照射して架橋したヒドロゲルを得るものである。電離性放射線としては、電子線、α線、β線、及びγ線などの電離性放射線を意味するが、具体的には、取り扱いの容易さなどから、通常、電子線またはγ線が使用され、特に、電子線が好ましい。なお、紫外線は、電離性放射線に包含されるものではない。
2. Ionizing radiation The present invention is to obtain a crosslinked hydrogel by irradiating a biodegradable polymer water-soluble substance such as gelatin with ionizing radiation in an inert gas atmosphere. Ionizing radiation means ionizing radiation such as electron beam, α ray, β ray, and γ ray. Specifically, electron beam or γ ray is usually used for ease of handling. In particular, an electron beam is preferable. Ultraviolet rays are not included in ionizing radiation.

3.不活性気体
本発明において、電離性放射線を照射する際に、不活性気体雰囲気を形成する不活性気体としては、窒素、ヘリウム、アルゴン及びクリプトンなどが使用できるが、窒素が好ましく使用される。なお、酸素雰囲気下で電離性放射線を照射すると、オゾンの発生、架橋反応効率の低下、製造される担体材料の表面接着性の上昇などにより、生体内への埋め込みの作業性が低下したり、得られる架橋ゼラチンゲルの未架橋部分の割合を制御することが難しくなることがあるので、本発明では、酸素雰囲気下で電離性放射線を照射することはしない。
3. Inert Gas In the present invention, nitrogen, helium, argon, krypton, and the like can be used as the inert gas that forms an inert gas atmosphere when ionizing radiation is irradiated. Nitrogen is preferably used. In addition, when ionizing radiation is irradiated in an oxygen atmosphere, the workability of implantation in a living body decreases due to generation of ozone, decrease in the crosslinking reaction efficiency, increase in surface adhesion of the produced carrier material, In the present invention, ionizing radiation is not irradiated in an oxygen atmosphere because it may be difficult to control the proportion of the uncrosslinked portion of the resulting crosslinked gelatin gel.

4.生体内薬剤徐放用担体材料
本発明における生体内薬剤徐放用担体材料は、薬剤を担持させることができ、薬剤を担持して生体内に埋め込んだ後に、担持する薬剤が徐々に放出されるものであれば、形状は特に限定されない。例えば、円柱状、角柱状、シート状、ディスク状、球状、粒子状などの任意の形状とすることができる。
4). In vivo drug sustained release carrier material The in vivo drug sustained release carrier material of the present invention can carry a drug, and after the drug is loaded and implanted in the living body, the carried drug is gradually released. If it is a thing, a shape will not be specifically limited. For example, any shape such as a columnar shape, a prismatic shape, a sheet shape, a disk shape, a spherical shape, or a particle shape can be used.

薬剤として、生理活性因子を担持した架橋ゼラチンゲルなどの生体内薬剤徐放用担体材料は、通常、手術により生体内に埋め込む方式で用いられ、特にシート状のものが好ましいが、粒子状のものは、注射による投与も可能である。   As a drug, a carrier material for sustained release of an in vivo drug such as a crosslinked gelatin gel carrying a physiologically active factor is usually used in a method of being embedded in the living body by surgery, and in particular, a sheet-like material is preferable, but a particulate material Can also be administered by injection.

本発明の架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料がシート状である場合、架橋度が異なる2つのシートを組み合わせることなく、2段階放出性が実現可能であるため、通常は多層構造のシートとする必要はない。しかし、特にシートの厚さを6mm以上とする必要がある場合や初期に放出される薬剤量が多いことが必要な場合には、多層の積層シートとしてもよい。   When the carrier material for sustained release of an in vivo drug comprising the crosslinked hydrogel of the present invention is in the form of a sheet, a two-stage release property can be realized without combining two sheets having different degrees of crosslinking. It is not necessary to have a sheet. However, in particular, when the thickness of the sheet needs to be 6 mm or more, or when it is necessary that the amount of drug released in the initial stage is large, a multilayer laminated sheet may be used.

5.40℃の水に可溶性である未架橋部分
本発明の生体内薬剤徐放用担体材料は、40℃の水に可溶性である未架橋部分と架橋部分とを有するものである。本発明における40℃の水に可溶性である未架橋部分(以下、単に「未架橋部分」ということがある。)とは、生体内分解性高分子水溶性物質に不活性気体雰囲気下で電離性放射線を照射して架橋したヒドロゲルの中の架橋されていない部分であって、40℃の水に可溶性である未架橋部分を指す。該未架橋部分は、生体内では、体温で架橋ゼラチンゲルなどの生体内分解性高分子水溶性物質の架橋したヒドロゲルから容易に放出される。
5. Uncrosslinked part soluble in water at 40 ° C. The carrier material for sustained release of an in vivo drug of the present invention has an uncrosslinked part and a crosslinked part soluble in water at 40 ° C. In the present invention, an uncrosslinked portion that is soluble in water at 40 ° C. (hereinafter, simply referred to as “uncrosslinked portion”) is an ionizable substance in a biodegradable polymer water-soluble substance in an inert gas atmosphere. It refers to an uncrosslinked portion in a hydrogel that has been crosslinked by irradiation with radiation and is soluble in water at 40 ° C. The uncrosslinked portion is readily released from a crosslinked hydrogel of a biodegradable polymer water-soluble substance such as a crosslinked gelatin gel at body temperature in vivo.

40℃の水に可溶性である未架橋部分の割合の測定は、乾燥質量比で調べる。すなわち、電子線架橋後の架橋したヒドロゲルの一定量を取り出して、凍結乾燥等により乾燥させて質量(A)を測定した後、40℃の超純水中で1日間静置して、架橋したヒドロゲル中の未架橋部分を除去し、更に、50℃で1日間乾燥して、未架橋部分除去後の質量(B)を測定する。40℃の水に可溶性である未架橋部分の割合を、次の式(1)により求める。   The ratio of the uncrosslinked portion that is soluble in water at 40 ° C. is determined by the dry mass ratio. That is, a certain amount of the crosslinked hydrogel after electron beam crosslinking was taken out, dried by freeze-drying, etc., measured for mass (A), then allowed to stand in ultrapure water at 40 ° C. for 1 day for crosslinking. The uncrosslinked portion in the hydrogel is removed and further dried at 50 ° C. for 1 day, and the mass (B) after removal of the uncrosslinked portion is measured. The ratio of the uncrosslinked portion that is soluble in water at 40 ° C. is determined by the following equation (1).

40℃の水に可溶性である未架橋部分の割合(%)=(A−B)/A×100(%)……(1)   Ratio of uncrosslinked portion soluble in water at 40 ° C. (%) = (A−B) / A × 100 (%) (1)

本発明において、「実質的に未架橋部分を含まない」とは、架橋ゼラチンゲルなどの生体内分解性高分子水溶性物質の架橋したヒドロゲルを、40℃の水または体温付近の温度の生理食塩水や血液等の水に準じた液体と接触したときに、未架橋部分の放出がないか、あるいは僅かしか認められない状態を意味するものであり、具体的には、前記ヒドロゲルが、40℃の水に溶解する未架橋部分が、未架橋部分と架橋部分との合計に対して5質量%未満であることを意味する。放出される未架橋部分、すなわち、40℃の水に溶解する未架橋部分の割合は、好ましくは3質量%未満、さらに好ましくは1質量%未満、特に好ましくは0.5質量%未満である。   In the present invention, “substantially free of uncrosslinked portion” means that a hydrogel obtained by crosslinking a biodegradable polymer water-soluble substance such as a crosslinked gelatin gel is water at 40 ° C. or physiological saline at a temperature near body temperature. It means a state where there is no or only a slight release of uncrosslinked parts when contacted with a liquid based on water such as water or blood. Specifically, the hydrogel has a temperature of 40 ° C. This means that the uncrosslinked portion dissolved in water is less than 5% by mass based on the total of the uncrosslinked portion and the crosslinked portion. The proportion of the uncrosslinked portion to be released, that is, the uncrosslinked portion dissolved in water at 40 ° C., is preferably less than 3% by mass, more preferably less than 1% by mass, and particularly preferably less than 0.5% by mass.

6.薬剤
本発明の架橋ゼラチンゲルなどの生体内薬剤徐放用担体材料に担持させる薬剤は、生体内に埋め込んだ後に、徐放されることが望まれるものであれば特に限定されないが、生理活性因子が好ましい。
6). Drug The drug to be carried on the in vivo drug sustained release carrier material such as the cross-linked gelatin gel of the present invention is not particularly limited as long as it is desired to be sustained released after being embedded in the living body. Is preferred.

生理活性因子(「生理活性物質」ともいう。)としては、生物に対して生理作用ないしは薬理作用を発現する物質であり、担体材料に担持させて生体内へ埋設または投与することによって、薬剤を徐放させる目的の範囲内で、自由に選択することができる。その際、同じ薬剤であっても、期待する生理活性によって、求められる薬剤の放出プロファイルが異なることがある。   A physiologically active factor (also referred to as “physiologically active substance”) is a substance that expresses a physiological action or pharmacological action on a living organism, and is embedded in or administered to a living body while being supported on a carrier material. It can be freely selected within the range of the purpose of sustained release. In this case, even for the same drug, the required drug release profile may differ depending on the expected physiological activity.

生理活性因子の代表例として、塩基性線維芽細胞増殖因子(basic Fibroblast Growth Factor;bFGF)を挙げることができる。bFGFは、線維芽細胞ばかりでなく、血管内皮細胞、血管平滑筋細胞、角膜内皮細胞、骨芽細胞、軟骨細胞などの多種類の細胞に対する細胞増殖を刺激することが明らかとなっている物質である。例えば、bFGFを架橋ゼラチンゲルに担持させて、血管新生を誘発する場合は、2段階放出性の放出プロファイルが期待されることがある。   A representative example of the physiologically active factor is basic fibroblast growth factor (bFGF). bFGF is a substance that has been shown to stimulate cell proliferation not only to fibroblasts but also to many types of cells such as vascular endothelial cells, vascular smooth muscle cells, corneal endothelial cells, osteoblasts, and chondrocytes. is there. For example, when bFGF is supported on a cross-linked gelatin gel to induce angiogenesis, a two-stage release profile may be expected.

その他の生理活性因子として、例えば、トランスフォーミング増殖因子(TGF−β1)、肝細胞増殖因子(HGF)、血小板由来増殖因子(PDGF−BB)、角化細胞増殖因子(KGF)、骨形成因子(BMP−2)、血管内皮増殖因子(VEGF)、これらをコードするプラスミドDNAなどが含まれる。例えば、BMP−2を架橋ゼラチンゲルに担持させて、骨形成を誘発する場合は、できるだけ長期間にわたって無駄なく安定的に薬剤が放出されるリニア放出性の放出プロファイルが期待されることがある。   Other physiologically active factors include, for example, transforming growth factor (TGF-β1), hepatocyte growth factor (HGF), platelet derived growth factor (PDGF-BB), keratinocyte growth factor (KGF), bone morphogenetic factor ( BMP-2), vascular endothelial growth factor (VEGF), plasmid DNA encoding these, and the like are included. For example, when BMP-2 is supported on a crosslinked gelatin gel to induce bone formation, a linear release profile in which the drug is stably released without waste for as long as possible may be expected.

また、生理活性因子として、抗癌剤(アドリアマイシン)、臓器保護や降圧用にアンジオテンシンII受容体拮抗剤〔テルミサルタン:ミカルディス(ベーリンガーインゲルハイム)、カンデサルタン(武田薬品工業株式会社)、バルサルタン(ノバルティスファーマ社)〕やエリスロポエチン(タンパク製剤、造血ホルモン)等も挙げられる。これらの薬剤を、架橋ゼラチンゲルに担持させる際には、既に述べたように、2段階放出性が期待される場合と、できるだけ長期間にわたって無駄なく安定的に薬剤が放出されるリニア放出性が期待される場合との両方がある。   In addition, as a bioactive factor, an anticancer agent (adriamycin), an angiotensin II receptor antagonist for organ protection and antihypertensive [Telmisartan: Micardis (Boehringer Ingelheim), Candesartan (Takeda Pharmaceutical Co., Ltd.), Valsartan (Novartis Pharma)] And erythropoietin (protein preparation, hematopoietic hormone) and the like. When these drugs are supported on a cross-linked gelatin gel, as described above, there are cases where two-stage release properties are expected and linear release properties in which drugs are stably released without waste for as long as possible. There are both expected cases.

生体内薬剤徐放用担体材料に担持させる生理活性因子は、必要に応じて、1種類または2種類以上を選択することができる。なお、多層シートである場合は、シートごとに異なる生理活性因子を担持させることができる。   As the physiologically active factor to be carried on the in vivo drug sustained release carrier material, one type or two or more types can be selected as necessary. In the case of a multilayer sheet, a different physiologically active factor can be carried for each sheet.

B.2段階放出の薬剤放出性とリニア放出の薬剤放出性
本発明の架橋ゼラチンゲルなどの生体内分解性高分子水溶性物質の架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料は、担持する薬剤の放出性を制御するため、未架橋部分を利用することを特徴とする。
B. Two-stage release drug release and linear release drug release The carrier material for sustained release of an in vivo drug comprising a cross-linked hydrogel of a biodegradable polymer water-soluble substance such as the cross-linked gelatin gel of the present invention is a drug to be carried. In order to control the release property, an uncrosslinked portion is used.

本発明の架橋ゼラチンゲルなどの生体内分解性高分子水溶性物質の架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料は、未架橋部分の利用により、大きく分けて、担持した薬剤の2段階放出性の薬剤放出性、またはリニア放出性の薬剤放出性のいずれかを選択することができる。
1.薬剤担持性能
The carrier material for sustained release of an in vivo drug comprising a hydrogel crosslinked with a biodegradable polymer water-soluble substance such as a crosslinked gelatin gel of the present invention is roughly divided into two stages according to the use of the uncrosslinked portion. Either a releasable drug release or a linear release drug release can be selected.
1. Drug carrying performance

薬剤担持性能は、本発明の生体内薬剤徐放用担体材料に薬剤を担持して、生体内に埋め込んだ後の、埋め込み初期から所定期間経過するまでの間に、残存している薬剤の量を測定することによって求めることができる。   The drug-carrying performance is defined as the amount of drug remaining between the initial stage of implantation after the drug is carried on the carrier material for sustained release of the in-vivo drug of the present invention and implanted in the living body. Can be determined by measuring.

電離性放射線を照射して架橋したゼラチンゲルは、化学架橋したゼラチンゲルと比較して薬剤吸着能が高いことが判明し、より効率的に薬剤を活用できる点でも電離性放射線を照射する架橋方法が優れていることが分かった。詳細な機序は不明であるが、化学架橋したゼラチンゲルは、官能基が架橋によって減少し、吸着能力が減少しているものと推察される。   Crosslinking method that irradiates ionizing radiation because gelatin gel cross-linked by irradiation with ionizing radiation has been found to have higher drug adsorption capacity than chemically cross-linked gelatin gel, and can use the drug more efficiently Was found to be excellent. Although the detailed mechanism is unknown, it is assumed that the chemically cross-linked gelatin gel has reduced functional groups due to cross-linking and reduced adsorption capacity.

2.2段階放出性
本発明において、2段階放出性を示す生体内薬剤徐放用担体材料は、ゼラチンなどの生体内分解性高分子水溶性物質に、不活性気体雰囲気下で電離性放射線を照射して架橋した架橋ゼラチンゲルなどの生体内薬剤徐放用担体材料であって、40℃の水に可溶性である未架橋部分と架橋部分とを、質量比で95:5〜5:95の範囲で有するヒドロゲルである。未架橋部分と架橋部分との両方に、薬剤を吸着などにより担持させることにより、2段階放出性を有することが可能となる。
2.2 Step Release In the present invention, a carrier material for sustained release of an in vivo drug exhibiting two steps of release is a biodegradable polymer water-soluble substance such as gelatin, which is irradiated with ionizing radiation in an inert gas atmosphere. A carrier material for sustained release of an in-vivo drug such as a crosslinked gelatin gel that has been irradiated and crosslinked, wherein an uncrosslinked portion and a crosslinked portion that are soluble in water at 40 ° C. have a mass ratio of 95: 5 to 5:95. A hydrogel having a range. It is possible to have a two-step release property by loading the drug on both the uncrosslinked portion and the crosslinked portion by adsorption or the like.

2段階放出性とは、初期バーストを示す、すなわち、前記ヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料に薬剤を担持させて生体内に埋め込んだ後、初期(架橋度合いにより若干長短があるが、通常は1日(24時間)を経過するまでを意味する)に架橋ゼラチンゲルに担持する薬剤の55質量%以上が放出される、好ましくは57質量%以上、より好ましくは60質量%以上が生体内に放出されるとともに、後期(2日目以降)には担持した薬剤の残部が持続的に徐放されることを意味する。生体内では、体温で、薬剤を担持する未架橋部分が架橋ゼラチンゲルから溶出されるのに伴い、必要な患部や組織に対して初期の段階から後期の段階にかけて薬剤が届けられる。この結果、電離性放射線を照射して架橋した架橋ゼラチンゲルは、最長4週間程度の期間、持続的に薬剤を放出することが可能である。生体内薬剤徐放用担体材料に薬剤を担持させて生体内に埋め込んだ後、1日(24時間)を経過するまでに架橋ゼラチンゲルが担持する薬剤の55質量%以上が体内に放出されない場合は、初期バーストを欠く結果、所期の薬剤効果が奏されないことがある。初期バーストで放出される薬剤の量の上限は、後期(2日目以降)に担持した薬剤の残部が持続的に徐放される限り、特にないが、通常は80質量%以下、好ましくは75質量%、より好ましくは70質量%である。   The two-stage release property indicates an initial burst, that is, after the drug is supported on the in vivo drug sustained-release carrier material composed of the hydrogel and embedded in the living body, the initial stage (although it is slightly longer or shorter depending on the degree of crosslinking, Usually 55 days or more of the drug carried on the cross-linked gelatin gel is released, preferably 57% or more, more preferably 60% or more by weight. In addition to being released into the body, it means that the rest of the carried drug is sustainedly released in the latter period (after the second day). In the living body, as the uncrosslinked portion carrying the drug is eluted from the crosslinked gelatin gel at body temperature, the drug is delivered from the initial stage to the later stage to the necessary affected part or tissue. As a result, the cross-linked gelatin gel cross-linked by irradiation with ionizing radiation can continuously release the drug for a period of up to about 4 weeks. When 55% by mass or more of the drug carried by the cross-linked gelatin gel is not released into the body after 1 day (24 hours) after the drug is loaded on the carrier material for sustained release in the living body and embedded in the living body As a result of lack of an initial burst, the desired drug effect may not be achieved. The upper limit of the amount of the drug released in the initial burst is not particularly limited as long as the remaining part of the drug carried in the latter period (after the second day) is sustainedly released, but usually 80% by mass or less, preferably 75 % By mass, more preferably 70% by mass.

通常、電子線照射によって得られる架橋ゼラチンゲルは、架橋部分と未架橋部分とを含んだ状態となり、架橋部分と未架橋部分との両方に生理活性因子等の薬剤を吸着させて担持させることにより、2段階放出性を示すものとなる。   Usually, a crosslinked gelatin gel obtained by electron beam irradiation is in a state containing a crosslinked part and an uncrosslinked part, and by adsorbing and supporting a drug such as a bioactive factor on both the crosslinked part and the uncrosslinked part. Two-stage release is exhibited.

3.リニア放出性
一方、薬剤の種類によって、長期間にわたって一定量の薬剤が放出され続けるリニア放出性が望まれるときは、生体内分解性高分子水溶性物質に電離性放射線を照射して架橋して得た未架橋部分と架橋部分とを有する架橋ゼラチンゲルなどの架橋ゲルに対して、水による洗浄処理を行って、実質的に未架橋部分を含まないものとすればよい。実質的に未架橋部分を含まない架橋ゼラチンゲルに薬剤を吸着などにより担持させることによって、担持する薬剤のリニア放出が可能となり、安定的な薬効を発現することが可能となる。
3. On the other hand, depending on the type of drug, when linear release that keeps a certain amount of drug released over a long period of time is desired, the biodegradable polymer water-soluble substance can be crosslinked by irradiating it with ionizing radiation. The obtained cross-linked gel such as a cross-linked gelatin gel having an uncross-linked portion and a cross-linked portion may be washed with water so as not to substantially contain the uncross-linked portion. By supporting the drug on a crosslinked gelatin gel that does not substantially contain an uncrosslinked portion by adsorption or the like, it becomes possible to linearly release the drug to be supported and to exhibit a stable drug effect.

リニア放出性とは、ヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料に薬剤を担持させて生体内に埋め込んだ後、生体内に埋め込んだ日から7日目以降にかけて、持続的にほぼ直線的に、すなわちほぼ定率で、架橋ゼラチンゲルなどの生体内分解性高分子水溶性物質の架橋ゲルから担持した薬剤が放出されることを意味する。すなわち、実質的に未架橋部分を含まない架橋ゼラチンゲルにおいては、担持する薬剤の初期バーストがなく、主に生体内の代謝による架橋ゼラチンゲルの分解に伴って担持する薬剤が放出されるため、なだらかな放出プロファイルとなり、薬剤を持続的に放出させることができる。   Linear release means that a drug is supported on a carrier material for sustained release of an in-vivo drug composed of a hydrogel, embedded in the living body, and continuously and substantially linear from the date of implantation in the living body to the seventh day and thereafter. That is, it means that the drug carried from the crosslinked gel of the biodegradable polymer water-soluble substance such as crosslinked gelatin gel is released at a substantially constant rate. That is, in the crosslinked gelatin gel substantially free of uncrosslinked portions, there is no initial burst of the drug to be carried, and the drug to be carried is released mainly due to the degradation of the crosslinked gelatin gel by metabolism in the living body. The release profile is gentle and the drug can be released continuously.

ただし、実質的に未架橋部分を含まない架橋ゼラチンゲルなどの生体内分解性高分子水溶性物質の架橋ゲルであっても、生体内に埋め込んだ後、1日(24時間)経過するまでに、担持する薬剤の10〜30質量%程度が体内に放出されることが判明している。これは、架橋ゼラチンゲルに担持させる薬剤の中に、架橋ゼラチンゲルに十分吸着されていないものが含まれていることや、架橋ゼラチンゲルの架橋部分の中の比較的低分子量の架橋部分があり体内で早めに分解を受けること、などに伴って起きるものと推察される。   However, even a cross-linked gel of a biodegradable polymer water-soluble substance such as a cross-linked gelatin gel that substantially does not contain an uncross-linked portion is embedded in the living body until one day (24 hours) elapses. It has been found that about 10 to 30% by mass of the drug carried is released into the body. This is because some of the drugs to be supported on the crosslinked gelatin gel include those that are not sufficiently adsorbed on the crosslinked gelatin gel, and there are relatively low molecular weight crosslinked portions in the crosslinked portion of the crosslinked gelatin gel. It is presumed that this occurs due to early degradation in the body.

したがって、本発明において、リニア放出性とは、特に、生体内に埋め込んだ後、2日目以降からの薬剤放出性がほぼ直線的である薬剤の放出プロファイルが得られることを意味する。   Therefore, in the present invention, the linear release property means that a drug release profile is obtained in which the drug release property from the second day onward is almost linear after being implanted in the living body.

リニア放出性としては、薬剤の放出プロファイルが、好ましくは1〜20質量%/日、より好ましくは2〜15質量%/日の範囲内で定率の部分を有するとよい。この結果、実質的に未架橋部分を含まない架橋ゼラチンゲルは、最長4週間程度の期間、持続的に薬剤を放出することが可能である。なお、現時点で得られている化学架橋によるゼラチンゲルでは、薬剤を担持させて生体内に埋め込んだ直後から2日間の間に、担持した薬剤の少なくとも55質量%程度が放出されてしまい、直線的な一定量の薬剤放出とはならないことが判明している。   For linear release, the drug release profile preferably has a constant rate portion within the range of 1 to 20% by mass / day, more preferably 2 to 15% by mass / day. As a result, the crosslinked gelatin gel substantially free of uncrosslinked portions can release the drug continuously for a period of up to 4 weeks. In addition, in the gelatin gel obtained by chemical crosslinking obtained at present, at least about 55% by mass of the loaded drug is released within two days immediately after the drug is loaded and embedded in the living body. It has been found that this does not result in a certain amount of drug release.

C.生体内薬剤徐放用担体材料の製造方法
本発明の生体内薬剤徐放用担体材料を製造する方法は、以下のとおりである。
C. Method for Producing In vivo Drug Sustained Release Carrier Material The method for producing the in vivo drug sustained release carrier material of the present invention is as follows.

1.塗工層の形成
シート状の生体内薬剤徐放用担体材料を製造するためには、先ず、ゼラチンまたはゼラチン誘導体など生体内分解性高分子水溶性物質の水溶液の塗工層を形成する(塗工層形成工程)。具体的には、ゼラチンまたはゼラチン誘導体の水溶液を、15〜80℃、好ましくは20〜70℃、より好ましくは40〜60℃の温度に調温し、該ゼラチンまたはゼラチン誘導体水溶液を、所定形状の鋳型(容器)内に、所望の厚みになる容量で流延して塗工層を形成する。水溶液の温度が低すぎると、流延が困難となり、均一な厚さの塗工層を形成することができないことがある。水溶液の温度が高すぎると、水分の揮発が多くなり所望の濃度を維持することが困難となる。
1. Formation of a coating layer In order to produce a sheet-form carrier material for sustained release of an in vivo drug, first, a coating layer of an aqueous solution of a biodegradable polymer water-soluble substance such as gelatin or a gelatin derivative is formed (coating). Construction layer formation process). Specifically, an aqueous solution of gelatin or a gelatin derivative is adjusted to a temperature of 15 to 80 ° C., preferably 20 to 70 ° C., more preferably 40 to 60 ° C. The coating layer is formed by casting in a mold (container) with a desired capacity. When the temperature of the aqueous solution is too low, casting becomes difficult, and a coating layer having a uniform thickness may not be formed. If the temperature of the aqueous solution is too high, the volatilization of moisture increases and it becomes difficult to maintain a desired concentration.

鋳型(容器)としては、ゼラチンまたはゼラチン誘導体の水溶液を流延したときに、水溶液をはじかない表面材質のものが好ましく、ガラス、金属または各種プラスチック材料などを使用することができる。また、鋳型(容器)の形状は、所望の厚みの均一な厚さの塗工層を形成することができれば、特に限定はなく、断面が円形、四角形など、適宜選定することができる。   The mold (container) is preferably a surface material that does not repel the aqueous solution when an aqueous solution of gelatin or a gelatin derivative is cast, and glass, metal, or various plastic materials can be used. Further, the shape of the mold (container) is not particularly limited as long as a coating layer having a desired thickness and a uniform thickness can be formed.

生体内分解性高分子水溶性物質の水溶液の濃度は、一般に1〜80質量%であり、好ましくは3〜60質量%、より好ましくは5〜50質量%、更に好ましくは7〜40質量%、特に好ましくは10〜30質量%の範囲内である。水溶液の濃度は、ゼラチン種など生体内分解性高分子水溶性物質の種類に応じて、それぞれに適した範囲内とすることが好ましい。例えば、平均分子量が100,000以上の高分子量ゼラチンの場合は、溶液粘度が高いため、その水溶液の濃度は、5〜30質量%の範囲内が好ましい。ゼラチン誘導体は、一般に溶液粘度が低いため、その水溶液の濃度は、好ましくは7〜60質量%、より好ましくは10〜50質量%、特に好ましくは15〜40質量%の範囲内である。水溶液の濃度が薄すぎると、架橋ゼラチンゲルの架橋密度が小さすぎて、十分な薬剤担持性能を備えることが困難となることがある。水溶液の濃度が濃すぎると、流延時に均一な厚さの塗工層を形成することが困難となることがある。   The concentration of the aqueous solution of the biodegradable polymer water-soluble substance is generally 1 to 80% by mass, preferably 3 to 60% by mass, more preferably 5 to 50% by mass, still more preferably 7 to 40% by mass, Especially preferably, it exists in the range of 10-30 mass%. The concentration of the aqueous solution is preferably within a range suitable for each biodegradable polymer water-soluble substance such as gelatin species. For example, in the case of high molecular weight gelatin having an average molecular weight of 100,000 or more, since the solution viscosity is high, the concentration of the aqueous solution is preferably in the range of 5 to 30% by mass. Since gelatin derivatives generally have low solution viscosity, the concentration of the aqueous solution is preferably 7 to 60% by mass, more preferably 10 to 50% by mass, and particularly preferably 15 to 40% by mass. If the concentration of the aqueous solution is too low, the crosslinking density of the crosslinked gelatin gel is too small, and it may be difficult to provide sufficient drug carrying performance. If the concentration of the aqueous solution is too high, it may be difficult to form a coating layer having a uniform thickness during casting.

塗工層の厚みは、照射する電離性放射線の線量や架橋ゼラチンゲルの未架橋部分の割合などを考慮して、最適な範囲が選択されるが、通常、50μm〜8mmの範囲であり、好ましくは200μm〜6mm、より好ましくは300μm〜5mm、特に好ましくは500μm〜3mmである。塗工層の厚みが薄すぎると、電離性放射線を照射して架橋した生体内薬剤徐放用担体材料の薬剤担持能力が十分なものとならなかったり、未架橋部分と架橋部分との比率を調整することが困難となることがある。塗工層の厚みが厚すぎると、加速電圧を過度に大きくする必要が生じたり、未架橋部分と架橋部分との比率を調整することが困難となることがある。なお、塗工層の厚みは、電離性放射線を照射して架橋した後にも実質的に保持されている。   The thickness of the coating layer is selected in consideration of the dose of ionizing radiation to be irradiated and the ratio of the uncrosslinked portion of the crosslinked gelatin gel, but is usually in the range of 50 μm to 8 mm, preferably Is 200 μm to 6 mm, more preferably 300 μm to 5 mm, and particularly preferably 500 μm to 3 mm. If the coating layer is too thin, the in vivo drug sustained release carrier material crosslinked by irradiation with ionizing radiation will not have sufficient drug carrying capacity, or the ratio between the uncrosslinked part and the crosslinked part will be reduced. It may be difficult to adjust. If the thickness of the coating layer is too thick, it may be necessary to increase the acceleration voltage excessively, or it may be difficult to adjust the ratio between the uncrosslinked portion and the crosslinked portion. The thickness of the coating layer is substantially maintained even after crosslinking by irradiating with ionizing radiation.

2.電離性放射線の照射
その後、塗工層に、不活性気体雰囲気下で電離性放射線を照射して、架橋ゼラチンゲルを得る(電離性放射線照射工程)。電離性放射線としては、電子線が好ましく用いられる。
2. Irradiation of ionizing radiation Thereafter, the coating layer is irradiated with ionizing radiation in an inert gas atmosphere to obtain a crosslinked gelatin gel (ionizing radiation irradiation step). As the ionizing radiation, an electron beam is preferably used.

塗工層への電子線の照射は、汎用の電子線照射装置を用いることができる。例えば、株式会社NHVコーポレーション製の電子線照射装置「走査型電子照射装置 EPS−800」を用いた加速電圧上限800kVでの照射を挙げることができるが、この装置に限定されるものではない。電子線の照射は、塗工層に、電子流(mA)と照射域の被照射体移動速度(m/min)から規定される所望の照射線量(kGy)を照射して、ゼラチン等の生体内分解性高分子水溶性物質を架橋させる。   A general-purpose electron beam irradiation apparatus can be used to irradiate the coating layer with the electron beam. For example, irradiation at an acceleration voltage upper limit of 800 kV using an electron beam irradiation apparatus “scanning electron irradiation apparatus EPS-800” manufactured by NHV Corporation can be exemplified, but the present invention is not limited to this apparatus. Electron beam irradiation is performed by irradiating the coating layer with a desired irradiation dose (kGy) defined by the electron current (mA) and the moving speed of the irradiated object (m / min) in the irradiation area, Crosslink biodegradable polymer water-soluble substances.

電子線の照射は、生体内分解性高分子水溶性物質の種類や形状、塗工層の厚み等によって、最適条件を選択すればよく、例えば、窒素雰囲気下で、加速電圧100kV〜3MV、好ましくは500kV〜1MVの範囲内で、照射線量2〜500kGy、好ましくは3〜300kGyの範囲内で行う。一般的には塗工層の厚みが大きいときは、加速電圧を大きくしたり、照射線量を大きくする必要があるが、塗工層の厚み方向で生じることがある電子線エネルギーの減衰が、単純な比例関係ではないので、加速電圧及び照射線量の調整が必要である。電子線の照射は1回行うことが通例であるが、加速電圧を変更し、数回に分けて電子線の照射を行うこともできる。   Irradiation with an electron beam may be performed by selecting optimum conditions depending on the type and shape of the biodegradable polymer water-soluble substance, the thickness of the coating layer, and the like. For example, in a nitrogen atmosphere, an acceleration voltage of 100 kV to 3 MV is preferable. Is performed within a range of 500 kV to 1 MV, and an irradiation dose of 2 to 500 kGy, preferably 3 to 300 kGy. Generally, when the thickness of the coating layer is large, it is necessary to increase the acceleration voltage or increase the irradiation dose. However, the attenuation of electron beam energy that may occur in the thickness direction of the coating layer is simple. Since it is not a proportional relationship, it is necessary to adjust the acceleration voltage and the irradiation dose. The electron beam irradiation is usually performed once, but the acceleration voltage can be changed and the electron beam irradiation can be performed in several times.

なお、電離性放射線としてγ線を照射するときは、電子線の照射に準じて、最適範囲を選定すればよい。   In addition, when γ-rays are irradiated as ionizing radiation, an optimal range may be selected according to electron beam irradiation.

また、シート状の架橋ゼラチンゲルの多層構造体を得る場合は、架橋したシート状のゼラチンゲル層の上に、上記と同様にゼラチンまたはゼラチン誘導体水溶液を流延し、次いで、電子線を照射して架橋させる操作を繰り返し行うことにより、所望の層数と合計厚みを持つ架橋ゼラチンゲル多層構造体を得ることができる。   When obtaining a multilayer structure of a sheet-like crosslinked gelatin gel, a gelatin or gelatin derivative aqueous solution is cast on the crosslinked sheet-like gelatin gel layer in the same manner as described above, and then irradiated with an electron beam. By repeatedly performing the crosslinking operation, a crosslinked gelatin gel multilayer structure having a desired number of layers and a total thickness can be obtained.

3.シート状の担体材料の回収
電離性放射線を照射して架橋させた架橋ゼラチンゲルを鋳型から取り出し、シート状の生体内薬剤徐放用担体材料を回収する。
3. Recovery of sheet-like carrier material The cross-linked gelatin gel that has been cross-linked by irradiation with ionizing radiation is taken out of the mold, and the carrier material for sustained release of the in-vivo drug in the body is recovered.

2段階放出性のシート状の生体内薬剤徐放用担体材料を回収するに際しては、通常、超純水、蒸留水またはイオン交換水などの水による架橋ゼラチンゲルの洗浄処理を行わない。   When recovering the carrier material for sustained release of an in vivo drug in a two-stage release form, the crosslinked gelatin gel is generally not washed with water such as ultrapure water, distilled water or ion exchange water.

しかし、薬剤の放出性制御のために、水による洗浄処理を行うことによって、未架橋部分を一定量除くこともできる。例えば、電離性放射線を照射して生体内分解性高分子水溶性物質を架橋した後、超純水、蒸留水またはイオン交換水などの水による洗浄処理を行って未架橋部分の特定量を除き、40℃の水に可溶性である未架橋部分と架橋部分との質量比が95:5〜5:95の範囲、好ましくは95:5〜20:80、より好ましくは95:5〜30:70の範囲、更に好ましくは、未架橋部分が過半を占める95:5〜55:45の範囲に調整することで、前述の体内での薬剤放出プロファイルを本発明の範囲内とすることができる。   However, in order to control the drug release, a certain amount of uncrosslinked parts can be removed by washing with water. For example, after irradiating with ionizing radiation to crosslink the biodegradable polymer water-soluble substance, it is washed with water such as ultrapure water, distilled water or ion exchange water to remove a specific amount of the uncrosslinked portion. The mass ratio between the uncrosslinked portion and the crosslinked portion soluble in water at 40 ° C. is in the range of 95: 5 to 5:95, preferably 95: 5 to 20:80, more preferably 95: 5 to 30:70. And, more preferably, the drug release profile in the body can be within the range of the present invention by adjusting the uncrosslinked portion to the range of 95: 5 to 55:45 in which the majority is uncrosslinked.

回収後のシート状の担体材料は、そのまま保管してもよいが、減圧乾燥または凍結乾燥(フリーズドライ)しておくと、比較的長期間の保存が可能となる。   The recovered sheet-like carrier material may be stored as it is, but if it is vacuum-dried or freeze-dried (freeze-dried), it can be stored for a relatively long period of time.

4.粒子状の担体材料の製造
球状、粒子状、粒状(以下、これらをまとめて「粒子状」ということがある。)の架橋ゼラチンゲルを製造する場合は、オイル中にゼラチン水溶液を分散させて、該ゼラチン水溶液の液滴が分散したW/O型エマルジョン(油相中に水相が分散してなるエマルジョン)を調製する方法を好適に採用することができる。W/O型エマルジョンにおける水相の分散サイズを調整することにより、得られる粒子状の架橋ゼラチンゲルのサイズを所望の範囲に設計できる。
4). Production of particulate carrier material When producing a spherical, particulate, granular (hereinafter, collectively referred to as “particulate”) crosslinked gelatin gel, an aqueous gelatin solution is dispersed in oil, A method of preparing a W / O type emulsion in which droplets of the gelatin aqueous solution are dispersed (an emulsion in which an aqueous phase is dispersed in an oil phase) can be suitably employed. By adjusting the dispersion size of the aqueous phase in the W / O type emulsion, the size of the obtained particulate crosslinked gelatin gel can be designed within a desired range.

油相を形成させるために使用するオイルは、植物性のものが好ましく、オリーブオイル、ダイズオイル、コーンオイル等を例示できる。W/O型エマルジョンの調製は、エマルジョンの形成方法として従来公知である方法を用いて行うことができる。たとえば、オイルにゼラチン水溶液を添加した後、攪拌を1分間以上行うことが好ましく、より好ましくは5分間以上、更に好ましくは10分間以上行えばよい。この場合、特に分散が均一なW/O型エマルジョンを得ることができる。分散の均一性の点では、エマルジョンの形成における攪拌時間は長い方が好ましいが、攪拌時間が長過ぎると、ゼラチンのゲル化能力などの物性が劣化する場合があるため、攪拌時間は24時間以下、好ましくは12時間以下、より好ましくは5時間以下とすればよい。   The oil used for forming the oil phase is preferably a vegetable oil, and examples thereof include olive oil, soybean oil, and corn oil. Preparation of a W / O type emulsion can be performed using the method conventionally known as an emulsion formation method. For example, after adding the gelatin aqueous solution to the oil, stirring is preferably performed for 1 minute or more, more preferably 5 minutes or more, and even more preferably 10 minutes or more. In this case, a W / O emulsion having a particularly uniform dispersion can be obtained. In terms of uniformity of dispersion, it is preferable that the stirring time in the formation of the emulsion is long. However, if the stirring time is too long, physical properties such as gelatin gelation ability may deteriorate, so the stirring time is 24 hours or less. , Preferably 12 hours or less, more preferably 5 hours or less.

具体的には、撹拌用モーターとフッ素樹脂製撹拌用プロペラを三つ口丸底フラスコに取り付け、これらを固定した装置に、ゼラチン水溶液を入れ、ここにオリーブ油等の油を加えて200〜600rpm程度の速度で撹拌し、W/O型エマルジョンとすることができる。   Specifically, a stirring motor and a fluororesin stirring propeller are attached to a three-necked round bottom flask, and a gelatin aqueous solution is put into a device in which these are fixed, and then oil such as olive oil is added to about 200 to 600 rpm. It can be made into a W / O type emulsion by stirring at a speed of.

次いで、このエマルジョンに電子線などの電離性放射線を照射した後に、遠心分離により粒子状の架橋ゼラチンを所定のメッシュ間隔のフィルターで濾別して回収し、アセトン、酢酸エチル、IPA、エタノール等で洗浄することによって、粒子状の架橋ゼラチンゲルを得ることができる。   Next, the emulsion is irradiated with ionizing radiation such as an electron beam, and then particulate crosslinked gelatin is collected by centrifugation through a filter having a predetermined mesh interval, and washed with acetone, ethyl acetate, IPA, ethanol or the like. As a result, a particulate crosslinked gelatin gel can be obtained.

粒子状の架橋ゼラチンゲルの平均粒径は、1〜500μmmの範囲内、好ましくは1.5〜200μm、より好ましくは2〜100μmの範囲内が、特に注射器を用いた作業の取り扱いなどのために便利である。なお、ここで平均粒径とは、たとえばレーザー回折式分析装置を用いてレーザー散乱を検出する方法で測定される値である。   The average particle size of the particulate crosslinked gelatin gel is in the range of 1 to 500 μm, preferably 1.5 to 200 μm, more preferably 2 to 100 μm, especially for handling work using a syringe. Convenient. Here, the average particle diameter is a value measured by a method of detecting laser scattering using a laser diffraction analyzer, for example.

架橋ゼラチンゲル粒子が凝集する場合には、例えば、超音波照射(冷却下、1分以内程度が好ましい)等を行ってもよい。   When the crosslinked gelatin gel particles are aggregated, for example, ultrasonic irradiation (within cooling, preferably within about 1 minute) may be performed.

2段階放出性の粒子状の生体内薬剤徐放用担体材料を製造する場合は、通常、水による架橋ゼラチンゲルの洗浄処理を行わない。しかし、薬剤の放出性制御のために、水による洗浄処理を行うことによって、未架橋部分を一定量除いて、未架橋部分の割合を所望の範囲に調整することもできる。   In the case of producing a two-stage release particulate carrier material for sustained release of an in vivo drug, the crosslinked gelatin gel is usually not washed with water. However, in order to control the drug release, it is also possible to adjust the ratio of the uncrosslinked portion to a desired range by removing a certain amount of the uncrosslinked portion by washing with water.

5.未架橋部分の除去
本発明において、実質的に未架橋部分を含まない架橋したヒドロゲルを製造するためには、生体内分解性高分子水溶性物質に不活性気体雰囲気下で電子線などの電離性放射線を照射して架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料を得た後に、この生体内薬剤徐放用担体材料に対して、超純水、蒸留水またはイオン交換水などの水による洗浄処理を行うことによって、未架橋部分を溶出させる方法によればよい(洗浄処理工程)。未架橋部分を溶出させるための水による洗浄処理工程としては、例えば、5〜50℃、好ましくは10〜45℃、より好ましくは15〜42℃の温度の水に、架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料を、10分間〜2日間、好ましくは20分間ないし1日間、より好ましくは30分間〜10時間浸漬させる洗浄操作を、1回〜10回、好ましくは1回〜6回、より好ましくは2回〜4回繰り返して行う方法等が挙げられる。この洗浄操作により、未架橋部分を減じて、実質的に未架橋部分を含まない架橋ゼラチンゲルが得ることができる。
5. Removal of Uncrosslinked Part In the present invention, in order to produce a crosslinked hydrogel substantially free of an uncrosslinked part, the biodegradable polymer water-soluble substance is ionized such as an electron beam in an inert gas atmosphere. After obtaining a carrier material for sustained release of an in vivo drug comprising a crosslinked hydrogel by irradiation with radiation, the carrier material for sustained release of an in vivo drug is subjected to water such as ultrapure water, distilled water or ion exchange water. A method of eluting uncrosslinked portions by performing a cleaning process may be used (cleaning process step). As a washing treatment step with water for eluting the uncrosslinked portion, for example, an in vivo body comprising a hydrogel crosslinked in water at a temperature of 5 to 50 ° C., preferably 10 to 45 ° C., more preferably 15 to 42 ° C. A washing operation for immersing the carrier material for sustained drug release for 10 minutes to 2 days, preferably 20 minutes to 1 day, more preferably 30 minutes to 10 hours, 1 to 10 times, preferably 1 to 6 times, More preferably, the method of repeating 2-4 times etc. is mentioned. By this washing operation, uncrosslinked portions can be reduced, and a crosslinked gelatin gel substantially free of uncrosslinked portions can be obtained.

なお、生体内薬剤徐放用担体材料が多層構造体である場合は、多層構造体を積層する前または後で、未架橋部分を溶出させるための水による洗浄処理工程を行うことができるが、工程を煩雑としないために、すべての層の積層が終わった後に洗浄処理を行うことが好ましい。   When the in vivo drug sustained release carrier material is a multilayer structure, a washing treatment step with water for eluting uncrosslinked portions can be performed before or after laminating the multilayer structure, In order not to make the process complicated, it is preferable to perform the washing treatment after all the layers have been laminated.

D.薬剤の担持
本発明の生体内薬剤徐放用担体材料は、生理活性因子等の薬剤を担持させるためのものである。本発明の生体内薬剤徐放用担体材料に薬剤を担持させる方法は、特に限定されないが、例えば、薬液(薬剤を水溶液等に溶解させたもの)を滴下して、架橋ゼラチンゲルに含浸により薬剤を吸着させて担持させる方法や、架橋ゼラチンゲルを、薬剤の水溶液中に浸漬して、含浸により薬剤を吸着させて担持させる方法などがある。架橋ゼラチンゲルに担持させることができる薬剤の量は、架橋ゼラチンゲルの未架橋部分と架橋部分の割合や含水率等により異なるが、通常、架橋ゼラチンゲル1mg当たり0.1〜500μg、好ましくは1〜450μg、より好ましくは5〜400μgを担持させることができる。
D. Loading of Drug The carrier material for sustained release of an in vivo drug of the present invention is for loading a drug such as a bioactive factor. The method for supporting the drug on the carrier material for sustained release of the in vivo drug of the present invention is not particularly limited. For example, a drug solution (a drug dissolved in an aqueous solution) is dropped and the crosslinked gelatin gel is impregnated to impregnate the drug. There are a method of adsorbing and supporting a drug, a method of immersing a cross-linked gelatin gel in an aqueous solution of the drug, and adsorbing and supporting the drug by impregnation. The amount of the drug that can be supported on the crosslinked gelatin gel varies depending on the ratio of the uncrosslinked portion and the crosslinked portion of the crosslinked gelatin gel and the moisture content, but is usually 0.1 to 500 μg per 1 mg of the crosslinked gelatin gel, preferably 1 ˜450 μg, more preferably 5 to 400 μg can be supported.

得られた架橋ゼラチンゲルは、ヒドロゲルの状態でも薬液を含浸等により吸着させて薬剤を担持することが可能であるが、架橋ゼラチンゲルを減圧乾燥または凍結乾燥(フリーズドライ)することにより、薬液を迅速に含浸させることが可能となる。   The obtained cross-linked gelatin gel can adsorb the drug solution by impregnation or the like even in a hydrogel state to carry the drug. However, the cross-linked gelatin gel can be dried under reduced pressure or freeze-dried (freeze-dried) to remove the drug solution. It is possible to impregnate quickly.

凍結乾燥の一例として、架橋ゼラチンゲルを、液体窒素中で30分間以上保持または−90℃から−80℃の超低温フリーザ中で1時間以上保持する条件で凍結させた後、角型ドライチャンバー(東京理化器械株式会社製DRC−1000)中に−40℃で保存し、次いで、凍結乾燥機(東京理化器械株式会社製FDU−2100)で1Pa以下になるまで減圧し、−10℃で1〜3日間乾燥させ、取り出し時に結露しないように30℃に調温する工程を取って凍結乾燥体とする方法が挙げられる。本発明の架橋ゼラチンゲルは、凍結乾燥体とすることにより、薬液の吸着性とともに保存安定性が向上する。   As an example of lyophilization, a cross-linked gelatin gel is kept in liquid nitrogen for 30 minutes or more or frozen in a cryogenic freezer at −90 ° C. to −80 ° C. for 1 hour or more. Stored at −40 ° C. in DRC-1000 manufactured by Rika Kikai Co., Ltd., then reduced in pressure to 1 Pa or less with a freeze dryer (FDU-2100 manufactured by Tokyo Rika Kikai Co., Ltd.), and 1 to 3 at −10 ° C. The method of making it a freeze-dried body by taking the process adjusted to 30 degreeC so that it may not dry at the time of taking out and dew condensation at the time of taking out is mentioned. By making the crosslinked gelatin gel of the present invention into a lyophilized product, the storage stability is improved as well as the adsorptivity of the chemical solution.

E.薬剤担持後の合体による2段階放出性
2段階放出性を示す生体内薬剤徐放用担体材料を製造する別の方法として、それぞれ薬剤を担持させた架橋部分と未架橋部分とを合体させる方法がある。
E. Two-stage release by combination after drug loading As another method for producing a carrier material for sustained release of an in vivo drug that exhibits two-stage release, there is a method in which a crosslinked portion carrying a drug and an uncrosslinked portion are combined. is there.

すなわち、未架橋部分と架橋部分とを有する架橋ゼラチンゲルを、水で数回洗浄することによって、実質的に未架橋部分がない架橋部分のみから成る生体内薬剤徐放用担体材料と、未架橋部分のみから成る生体内薬剤徐放用担体材料とに分離した後、それぞれを凍結乾燥等を行って粉末状にする。次いで、粉末状の、架橋部分のみから成る生体内薬剤徐放用担体材料と、未架橋部分のみから成る生体内薬剤徐放用担体材料とのそれぞれに薬液を含浸により吸着担持させてから、架橋部分と未架橋部分とを一体化することによって、2段階放出性を示す生体内薬剤徐放用担体材料を得ることができる。粉末状態であるため、架橋部分のみから成る生体内薬剤徐放用担体材料と、未架橋部分のみから成る生体内薬剤徐放用担体材料との重量を容易に計量可能であるため、薬剤の2段階放出性を制御することがより容易になる。   That is, by washing a crosslinked gelatin gel having an uncrosslinked portion and a crosslinked portion with water several times, a carrier material for sustained release of an in vivo drug consisting essentially of the crosslinked portion having substantially no uncrosslinked portion, and uncrosslinked After separating into a carrier material for sustained release of an in vivo drug consisting of only a part, each is lyophilized to form a powder. Next, the powdered in vivo drug sustained release carrier material consisting only of the crosslinked part and the in vivo drug sustained release carrier material consisting only of the uncrosslinked part are each adsorbed and supported by impregnation with a chemical solution, and then crosslinked. By integrating the part and the uncrosslinked part, a carrier material for sustained release of an in vivo drug that exhibits two-stage release properties can be obtained. Since it is in a powder state, it is possible to easily measure the weight of the carrier material for sustained release of an in vivo drug consisting only of a crosslinked portion and the carrier material for sustained release of an in vivo drug consisting of only an uncrosslinked portion. It becomes easier to control the staged release.

以下に実施例及び比較例を挙げて、本発明をより具体的に説明するが、本発明は、これらの実施例のみに限定されるものではない。以下の実施例及び比較例中の部及び%は、特に断りのない限り、それぞれ質量部及び質量%を示す。   Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples and comparative examples. However, the present invention is not limited only to these examples. Unless otherwise indicated, the part and% in a following example and a comparative example show a mass part and mass%, respectively.

A.未架橋部分を利用して2段階放出性の放出プロファイルを示す架橋ゼラチンゲル A. Cross-linked gelatin gel showing a two-stage release profile using uncrosslinked parts

(1)電子線照射によるゼラチンゲルの架橋条件と未架橋部分の存在割合に関する実験 (1) Experiments on the cross-linking conditions of gelatin gel by electron beam irradiation and the ratio of uncrosslinked parts

[参考例1]
鋳型(直径55mm・深さ8mmのガラスシャーレを使用した。)内に、牛骨由来I型コラーゲンのアルカリ処理ゼラチン(新田ゼラチン株式会社製;等電点5.0)水溶液(濃度10質量%)を流延して、厚み3mmの均一な塗工層を形成した。次いで、該塗工層の水分を実質的に乾燥させることなく、該塗工層の上方から、電子線照射システムEPS−800(株式会社NHVコーポレーション製)を用いて、窒素雰囲気下で、電子線を加速電圧800kVで照射線量を5〜100kGyの範囲で表1に記載の条件で照射して、単層のシート状の架橋ゼラチンゲルを形成した。
[Reference Example 1]
In a mold (a glass petri dish having a diameter of 55 mm and a depth of 8 mm was used), an aqueous solution (concentration of 10% by mass) of an alkali-treated gelatin (made by Nitta Gelatin Co., Ltd .; isoelectric point 5.0) of bovine bone-derived type I collagen ) Was cast to form a uniform coating layer having a thickness of 3 mm. Next, without substantially drying the moisture of the coating layer, an electron beam is irradiated from above the coating layer using an electron beam irradiation system EPS-800 (manufactured by NHV Corporation) in a nitrogen atmosphere. Was irradiated under the conditions shown in Table 1 at an accelerating voltage of 800 kV and an irradiation dose in the range of 5 to 100 kGy to form a single-layer sheet-like crosslinked gelatin gel.

シート状の架橋ゼラチンゲルに対して、フリーズドライを行い、初期重量(A)を測定した。次いで、ヤマト科学株式会社製MILLIPORE(使用カラム:SIMPAKKRJ)を用いて得られた40℃の超純水中で1日間静置して、架橋ゼラチンゲル中の未架橋部分を除去した後、50℃で1日間乾燥して未架橋部分除去後の重量(B)を測定した。先の式(1)により、架橋ゼラチンゲル中の未架橋部分の割合を求め、架橋部分の割合を、100−未架橋部分の割合として求めた。架橋部分と未架橋部分との割合(質量%)を求めた結果を表1に示す。   The sheet-like cross-linked gelatin gel was freeze-dried and the initial weight (A) was measured. Subsequently, after leaving still for one day in 40 degreeC ultrapure water obtained using MILIPORE (use column: SIMAKKRJ) by Yamato Scientific Co., Ltd., after removing the uncrosslinked part in a crosslinked gelatin gel, 50 degreeC And dried for 1 day to measure the weight (B) after removal of the uncrosslinked portion. From the previous formula (1), the ratio of the uncrosslinked part in the crosslinked gelatin gel was determined, and the ratio of the crosslinked part was determined as the ratio of 100-uncrosslinked part. Table 1 shows the results of determining the ratio (mass%) between the crosslinked part and the uncrosslinked part.

Figure 2011052089
Figure 2011052089

照射線量が20kGyまでは、照射線量の増加に伴って、架橋部分の割合が高まるが、照射線量が20kGyを超えても、照射線量の増加に伴って、架橋部分の割合が高まっていない。電子線が加速電圧800kVでは、厚さ3mmの均一な塗工層の深部では電子線のエネルギーの減衰が生じていること、及び、照射線量が50kGy以上に多くなると、ゼラチンの分解反応が生じて、40℃の水に可溶性である未架橋部分が増加することが推察される。   Until the irradiation dose reaches 20 kGy, the ratio of the cross-linked portion increases with the increase of the irradiation dose. However, even when the irradiation dose exceeds 20 kGy, the ratio of the cross-linking portion does not increase with the increase of the irradiation dose. When the acceleration voltage of the electron beam is 800 kV, the energy attenuation of the electron beam occurs in the deep part of the uniform coating layer having a thickness of 3 mm, and when the irradiation dose increases to 50 kGy or more, the decomposition reaction of gelatin occurs. It is inferred that the number of uncrosslinked parts that are soluble in water at 40 ° C. increases.

(2)薬剤bFGFを担持した架橋ゼラチンヒドロゲルの徐放性(2段階放出性)
架橋ゼラチンヒドロゲルの製造及び徐放性の評価は、以下の方法により行った。
(2) Sustained release of crosslinked gelatin hydrogel carrying drug bFGF (two-stage release)
Production of the crosslinked gelatin hydrogel and evaluation of the sustained release were performed by the following methods.

[実施例1]
鋳型内に、牛骨由来I型コラーゲンのアルカリ処理ゼラチン(新田ゼラチン株式会社製;等電点5.0)水溶液(濃度10質量%)を流延して、厚み3mmの均一な塗工層を形成した。次いで、該塗工層の水分を実質的に乾燥させることなく、該塗工層の上方から、電子線照射システムEPS−800(株式会社NHVコーポレーション製)を用いて、窒素雰囲気下で、電子線を加速電圧800kVで照射線量が20kGyとなるように照射して、単層のシート状の架橋ゼラチンゲルを形成した。得られた架橋ゼラチンゲルの未架橋部分の割合は、68質量%であり、架橋部分の割合は、32質量%であった。
[Example 1]
A uniform coating layer having a thickness of 3 mm is cast by casting an aqueous solution (concentration: 10% by mass) of beef bone type I collagen with alkali-treated gelatin (Nitta Gelatin Co., Ltd .; isoelectric point 5.0) in a mold. Formed. Next, without substantially drying the moisture of the coating layer, an electron beam is irradiated from above the coating layer using an electron beam irradiation system EPS-800 (manufactured by NHV Corporation) in a nitrogen atmosphere. Was irradiated at an accelerating voltage of 800 kV and an irradiation dose of 20 kGy to form a single-layer sheet-like crosslinked gelatin gel. The proportion of the uncrosslinked portion of the obtained crosslinked gelatin gel was 68% by mass, and the proportion of the crosslinked portion was 32% by mass.

また、bFGF(生化学用、和光純薬工業株式会社から購入)には、蛍光試薬(Alexa Flour 488(invitrogen製))を、タンパク質ラベリングキット(Alexa Flour 488 Protein Labeling Kit(invitrogen製))を用いて付加させた。   In addition, a fluorescent reagent (Alexa Flour 488 (manufactured by Invitrogen)) and a protein labeling kit (Alexa Flour 488 Protein Labeling Kit (manufactured by Invitrogen)) are used for bFGF (for biochemistry, purchased from Wako Pure Chemical Industries, Ltd.). Added.

フリーズドライしたシート状の上記架橋ゼラチンゲル5mgに、1mg/mlのbFGF水溶液100μlを含浸させて、薬剤を架橋ゼラチンゲルに吸着させ担持させた。次いで、薬剤を担持した架橋ゼラチンゲルを、マウス(ddY4週齢メス)背部皮下に埋め込んだ。   100 mg of a 1 mg / ml bFGF aqueous solution was impregnated with 5 mg of the freeze-dried sheet-like crosslinked gelatin gel, and the drug was adsorbed and supported on the crosslinked gelatin gel. Next, a cross-linked gelatin gel carrying a drug was implanted subcutaneously on the back of a mouse (ddY 4-week-old female).

1、3、7、10、及び14日後に、架橋ゼラチンゲルを取り出して、超純水200μl中に0.05%トリプシン(プロテアーゼ、和光純薬一級)で40℃24時間処理して、架橋ゼラチンゲルを溶解し、ルミノメーター(Perkin Elmer社製、ARVOMX1420)にて535nmの蛍光を計測することにより、架橋ゼラチンゲル中の残留bFGF濃度を計測した。初期投入量に比した残留bFGFを残存率として、得られた結果を図1に示す。   After 1, 3, 7, 10 and 14 days, the cross-linked gelatin gel was taken out and treated with 0.05% trypsin (protease, Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) in 200 μl of ultrapure water for 24 hours at 40 ° C. The gel was dissolved, and the residual bFGF concentration in the crosslinked gelatin gel was measured by measuring fluorescence at 535 nm with a luminometer (Perkin Elmer, ARVOMX1420). The obtained results are shown in FIG. 1 with the residual bFGF as a residual rate compared to the initial input amount.

不活性気体雰囲気下で電子線を照射して架橋したヒドロゲルから成る実施例1の架橋ゼラチンゲルは、未架橋部分を68質量%有するとともに、生体内に埋め込んでから1日経過するまでに、担持したbFGFの約69質量%が放出され、その後、担持したbFGFの残部が徐放され、特に3日目以降は、担持したbFGFが、ほぼ定率で14日目まで徐放されているから、2段階放出性を示すものである。   The crosslinked gelatin gel of Example 1 comprising a hydrogel crosslinked by irradiating with an electron beam in an inert gas atmosphere has 68% by mass of an uncrosslinked portion and is supported by 1 day after being embedded in the living body. About 69% by mass of the bFGF thus released is released, and then the rest of the supported bFGF is released gradually. Particularly, after the third day, the supported bFGF is gradually released at a substantially constant rate until the 14th day. It shows staged release.

[比較例1]
架橋前のゼラチン水溶液の塗工層の厚みを1mmとしたこと以外は、実施例1の方法と同様にして、薬剤の残存率を調べた。得られた結果を図1に示す。なお、得られた架橋ゼラチンゲルの未架橋部分の割合は37質量%、架橋部分の割合は63質量%であった。
[Comparative Example 1]
The residual ratio of the drug was examined in the same manner as in Example 1 except that the thickness of the coating layer of the gelatin aqueous solution before cross-linking was 1 mm. The obtained results are shown in FIG. In addition, the ratio of the uncrosslinked part of the obtained crosslinked gelatin gel was 37 mass%, and the ratio of the crosslinked part was 63 mass%.

図1の結果から、電子線架橋したヒドロゲルから成る比較例1の架橋ゼラチンゲルは、未架橋部分を37質量%有するが、生体内に埋め込んでから1日経過するまでには、担持したbFGFの約50質量%が放出されるので、初期バーストを示さない。ただし、2日目以降は、担持したbFGFが、ほぼ定率で14日目まで徐放されている。比較例1の架橋ゼラチンゲルは、2段階放出性を示すものではない。   From the results shown in FIG. 1, the crosslinked gelatin gel of Comparative Example 1 composed of electron beam crosslinked hydrogel has 37% by mass of an uncrosslinked portion, but by 1 day after being embedded in the living body, Since about 50% by weight is released, it does not show an initial burst. However, after the second day, the supported bFGF is gradually released until the 14th day at a substantially constant rate. The crosslinked gelatin gel of Comparative Example 1 does not exhibit a two-stage release property.

[比較例2]
単層のシート状の架橋ゼラチンゲルをMedGEL(化学架橋品、厚み3mm、株式会社メドジェル製)としたこと以外は、実施例1の方法と同様にして、薬剤の残存率を調べた。得られた結果を図1に示す。
[Comparative Example 2]
The residual rate of the drug was examined in the same manner as in Example 1 except that MedGEL (chemically crosslinked product, thickness: 3 mm, manufactured by Medgel Co., Ltd.) was used as the single-layer sheet-like crosslinked gelatin gel. The obtained results are shown in FIG.

図1によれば、化学架橋したヒドロゲルから成る比較例2の架橋ゼラチンゲルは、生体内に埋め込んでから1日を経過するまでには、担持したbFGFの約42質量%が放出され、また、2日を経過するまでには、担持したbFGFの約71質量%が放出されているが、その後は、担持したbFGFが徐放されているかどうかが判然としない。比較例2の架橋ゼラチンゲルは、2段階放出性を示すものではない。   According to FIG. 1, the cross-linked gelatin gel of Comparative Example 2 composed of a chemically cross-linked hydrogel releases about 42% by mass of the supported bFGF until 1 day has passed after being embedded in the living body, By the end of 2 days, about 71% by mass of the supported bFGF has been released, but it is not clear whether the supported bFGF is being released gradually thereafter. The crosslinked gelatin gel of Comparative Example 2 does not exhibit a two-stage release property.

(3)bFGF徐放による血管新生の評価
上記(2)における実施例1、比較例1及び2のbFGFを担持させたシート状の架橋ゼラチンゲル、並びにbFGFの溶液注射(コントロール)について、マウス背部皮下に埋め込んでから、または注射を行ってから、14日目の皮下の状況からマウスにおける血管新生状態を評価した(n=3)。なお、ここで使用したbFGFには蛍光ラベルを施していない。結果を表2に示す。
(3) Evaluation of angiogenesis by sustained release of bFGF Regarding the sheet-like cross-linked gelatin gel carrying bFGF of Example 1, Comparative Examples 1 and 2 in (2) above, and bFGF solution injection (control), the back of the mouse After being implanted subcutaneously or after injection, the angiogenic state in mice was evaluated from the subcutaneous condition on day 14 (n = 3). The bFGF used here is not fluorescently labeled. The results are shown in Table 2.

Figure 2011052089
Figure 2011052089

2段階放出性を示す実施例1の電離性放射線を照射して架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料は、未架橋部分を多く含有し、かつ、初期バーストする生体内埋植初期の薬剤放出が多量で、バースト終了後には持続的かつ定量的な薬剤徐放を行うことが可能な架橋ゼラチンゲルであるが、血管新生効率が優れているといえる。   The carrier material for sustained release of an in vivo drug comprising a hydrogel crosslinked by irradiation with ionizing radiation of Example 1 showing a two-stage release property contains a large amount of uncrosslinked parts and undergoes initial burst in the initial stage of in vivo implantation. This is a cross-linked gelatin gel with a large amount of drug release and capable of sustained and quantitative sustained drug release after the end of bursting, but it can be said to have excellent angiogenic efficiency.

これに対して、同じく電離性放射線を照射して架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料であるが、2段階放出性を示さない比較例1の架橋ゼラチンゲルのシートにおいては、優れた血管新生効率が得られていない。また、比較例2の化学架橋ゼラチンゲルのシートは、血管新生効率が十分とはいえない。   On the other hand, it is a carrier material for sustained release of an in vivo drug consisting of a hydrogel crosslinked by irradiating with ionizing radiation, but it is excellent in the cross-linked gelatin gel sheet of Comparative Example 1 that does not show two-stage release properties. Angiogenesis efficiency has not been obtained. Further, the chemically crosslinked gelatin gel sheet of Comparative Example 2 cannot be said to have sufficient angiogenic efficiency.

すなわち、本発明の2段階放出性の放出プロファイルを示す生体内薬剤徐放用担体材料は、薬剤として、bFGFなどの成長因子を担持する生体内薬剤徐放用担体材料である場合に、有用であることが分かった。   That is, the in vivo drug sustained release carrier material showing a two-stage release profile of the present invention is useful when the in vivo drug sustained release carrier material carrying a growth factor such as bFGF as a drug. I found out.

B.未架橋部分を除去し、リニア放出性の放出プロファイルが得られる架橋ゼラチンゲル B. Cross-linked gelatin gel that removes uncross-linked parts and provides a linear release profile

(4)DNAの吸着性と未架橋部分の溶出除去による放出性の制御に関する実験 (4) Experiments on DNA adsorption and release control by elution removal of uncrosslinked parts

[実施例2]
鋳型内に、20質量%の豚皮由来I型コラーゲンの酸処理ゼラチン(新田ゼラチン株式会社製、等電点9.0)水溶液(以下、「20%PI−9」という。)を流延して、厚み1mmの均一な塗工層を形成した。次いで、該塗工層の水分を実質的に乾燥させることなく、該塗工層の上方から、電子線照射システムEPS−800(株式会社NHVコーポレーション製)を用いて、窒素雰囲気下で、電子線を加速電圧800kVで照射線量が20kGyとなるように照射して、単層のシート状の架橋ゼラチンゲルを形成した。次に、未架橋部分を溶出するための水による洗浄処理の操作として、架橋ゼラチンゲルを40℃の超純水中で4時間静置する工程を2回繰り返した。その後、架橋ゼラチンゲルをフリーズドライして、シート状の架橋ゼラチンゲルの乾燥体を得た。得られた架橋ゼラチンゲルの、40℃の水に溶解する未架橋部分の割合は、未架橋部分と架橋部分との合計に対して、0.1質量%であった。
[Example 2]
20% by mass of pig skin-derived type I collagen acid-treated gelatin (Nitta Gelatin Co., Ltd., isoelectric point 9.0) aqueous solution (hereinafter referred to as “20% PI-9”) is cast into the mold. Thus, a uniform coating layer having a thickness of 1 mm was formed. Next, without substantially drying the moisture of the coating layer, an electron beam is irradiated from above the coating layer using an electron beam irradiation system EPS-800 (manufactured by NHV Corporation) in a nitrogen atmosphere. Was irradiated at an accelerating voltage of 800 kV and an irradiation dose of 20 kGy to form a single-layer sheet-like crosslinked gelatin gel. Next, as a washing treatment operation with water for eluting uncrosslinked portions, the step of allowing the crosslinked gelatin gel to stand in ultrapure water at 40 ° C. for 4 hours was repeated twice. Thereafter, the crosslinked gelatin gel was freeze-dried to obtain a dried sheet-like crosslinked gelatin gel. The ratio of the uncrosslinked portion dissolved in water at 40 ° C. of the obtained crosslinked gelatin gel was 0.1% by mass with respect to the total of the uncrosslinked portion and the crosslinked portion.

[比較例3]
未架橋部分を溶出するための水による洗浄処理の操作を行わなかった以外は、上記実施例2と同様にして、シート状の架橋ゼラチンゲルの乾燥体を得た。得られた架橋ゼラチンゲルの40℃の水に溶解する未架橋部分の割合は、42質量%であり、架橋部分の割合は、58質量%であった。
[Comparative Example 3]
A dry sheet-like crosslinked gelatin gel was obtained in the same manner as in Example 2 except that the operation of washing with water for eluting uncrosslinked portions was not performed. The ratio of the uncrosslinked portion dissolved in water at 40 ° C. of the obtained crosslinked gelatin gel was 42 mass%, and the ratio of the crosslinked portion was 58 mass%.

[比較例4]
実施例2の電子線架橋ゼラチンゲルの乾燥体に代えて、化学架橋による架橋ゼラチン乾燥体(メドジェルPI9、株式会社メドジェル製)を用いた。
[Comparative Example 4]
Instead of the dried electron beam crosslinked gelatin gel of Example 2, a crosslinked gelatin dried body (Medgel PI9, manufactured by Medgel Co., Ltd.) by chemical crosslinking was used.

(サケDNAの吸着性と放出性の評価)
DNAの吸着性と放出性の評価を以下の方法により行った。
(Evaluation of salmon DNA adsorption and release)
DNA adsorption and release were evaluated by the following methods.

実施例2、比較例3及び4の架橋ゼラチンゲルのそれぞれ5mgをマイクロチューブに入れ、PBS溶液(pH7.2〜7.4、日本水産株式会社製)で、5mg/mlに調整したサーモンスパムDNA(サケ精液由来049−17321、和光純薬工業株式会社から購入)溶液50μlを上記マイクロチューブに添加し、37℃のインキュベータで18時間静置して、架橋ゼラチンゲルにDNAを吸着担持させた。次いで、上記PBS溶液を1/10に希釈した溶液1000μlでサーモンスパムDNAの溶出を開始し、0、3、7及び24時間経過後の波長260nmの吸光度を測定した。溶出開始から7時間まで雰囲気を20℃とし、7時間以降は雰囲気を37℃とした。   5 mg of each of the crosslinked gelatin gels of Example 2 and Comparative Examples 3 and 4 was placed in a microtube and adjusted to 5 mg / ml with a PBS solution (pH 7.2 to 7.4, manufactured by Nihon Suisan Co., Ltd.). (Salmon semen-derived 049-17321, purchased from Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) 50 μl of the solution was added to the above microtube and allowed to stand in an incubator at 37 ° C. for 18 hours to adsorb and carry DNA on a crosslinked gelatin gel. Next, elution of salmon spam DNA was started with 1000 μl of the PBS solution diluted to 1/10, and the absorbance at 260 nm after 0, 3, 7 and 24 hours was measured. The atmosphere was 20 ° C. for 7 hours from the start of elution, and the atmosphere was 37 ° C. after 7 hours.

DNAを含有していないそれぞれのフリーズドライゲルの1000μlの1/10PBS溶液をコントロールとし、その差分から架橋ゼラチンゲルから放出されたDNAの量を算出し、吸着率を評価した。実施例2、比較例3及び4の評価結果を図2に示す。   Using 1000 μl of 1/10 PBS solution of each freeze-dried gel not containing DNA as a control, the amount of DNA released from the crosslinked gelatin gel was calculated from the difference, and the adsorption rate was evaluated. The evaluation results of Example 2 and Comparative Examples 3 and 4 are shown in FIG.

図2に示された結果、特に、溶出開始当初(溶出時間0時間)の吸着率からみて、電子線を照射して架橋した架橋ゼラチンゲルを使用する実施例2と比較例3は、化学架橋した架橋ゼラチンゲルを使用する比較例4と比較して、サケDNAの吸着率が高く、薬剤の担持能力に優れていることが分かる。また、実施例2と比較例4との溶出開始初期(溶出時間0時間〜3時間)の傾きの違いから、化学架橋品の方が、吸着率の減少も大きいことが分かる。   As a result of the results shown in FIG. 2, in particular, in view of the adsorption rate at the beginning of elution (elution time 0 hour), Example 2 and Comparative Example 3 using a crosslinked gelatin gel crosslinked by irradiating an electron beam were chemically crosslinked. Compared with Comparative Example 4 using the crosslinked gelatin gel thus obtained, it can be seen that the salmon DNA adsorption rate is high and the drug carrying ability is excellent. In addition, it can be seen from the difference in slope between Example 2 and Comparative Example 4 at the beginning of elution (elution time 0 hours to 3 hours) that the chemically crosslinked product has a larger decrease in adsorption rate.

化学架橋ゼラチンゲルにおいては、DNA担持能を向上させるために、側鎖にカチオン基を導入(カルボキシル基の50倍等量のカチオン基を導入)したカチオン化ゼラチン等を作製することが行われているが、図2の結果によれば、電子線を照射して架橋したゼラチンゲルは、DNAの担持能力が高いので、カチオン基の導入量を低下させても遺伝子担持能力を良好に維持できる可能性も示されたといえる。更に、カチオン基の減少により、主鎖同士の排斥が抑制されるので、電子線架橋の効率も上がることが予測される。   In the chemically cross-linked gelatin gel, in order to improve DNA carrying ability, cationized gelatin or the like in which a cation group is introduced into the side chain (a cation group equivalent to 50 times the carboxyl group) is prepared. However, according to the results shown in FIG. 2, gelatin gel crosslinked by irradiating with an electron beam has high DNA carrying ability, so that it is possible to maintain good gene carrying ability even if the amount of introduced cationic groups is reduced. It can be said that sex was also shown. Further, since the elimination of the main chains is suppressed due to the reduction of the cationic groups, it is expected that the efficiency of electron beam crosslinking is also increased.

なお、電子線を照射して架橋したゼラチンゲルであっても、水による洗浄処理を行わなかった比較例3については、電子線架橋の特徴である初期の吸着DNA量が優れるという初期吸着性は実施例2と同様であったが、その後の吸着率減少が大きい結果となっている。これは、溶出時間24時間を経過するまでは、未架橋部分に吸着していた薬剤が、未架橋部分の分解と同時に放出され続けている(24時間経過時点で、約57%が放出されている。)からである。   Incidentally, even in the gelatin gel crosslinked by irradiating with an electron beam, in Comparative Example 3 in which the washing treatment with water was not performed, the initial adsorptivity that the amount of initial adsorbed DNA that is characteristic of electron beam crosslinking is excellent is Although it was the same as that of Example 2, it was a result that the adsorption rate reduction after that was large. This is because until the elution time of 24 hours elapses, the drug adsorbed on the uncrosslinked portion continues to be released simultaneously with the decomposition of the uncrosslinked portion (about 57% has been released after 24 hours have elapsed). Because.)

このことから電子線架橋した後に、水による洗浄処理を行って得られた実質的に未架橋部分を含まない架橋ゼラチンゲルを用いることで、薬剤吸着性に優れ、且つ初期バーストを抑え、長期間に亘ってほぼ直線的に徐放される薬剤の放出プロファイルを構築することが可能である。   From this, by using a cross-linked gelatin gel substantially free of uncrosslinked parts obtained by performing a washing treatment with water after electron beam cross-linking, it is excellent in drug adsorption and suppresses initial bursts, It is possible to build a release profile of the drug that is released almost linearly over time.

(5)電子線架橋体の未架橋部分の洗浄除去による生体内残存率(定率徐放)の実験 (5) Experiments on in vivo survival rate (constant rate sustained release) by washing and removing uncrosslinked parts of electron beam crosslinked body

[実施例3]
電子線の加速電圧を800kV、照射線量を20kGyとし、流延厚を500μm厚とした以外は実施例2と同様にして、シート状の架橋ゼラチンゲルを得た後、サケDNAを吸着させて担持させた。なお、得られた架橋ゼラチンゲルの、40℃の水に溶解する未架橋部分の割合は、未架橋部分と架橋部分との合計に対して、0.1質量%であった。
[Example 3]
A sheet-like cross-linked gelatin gel was obtained in the same manner as in Example 2 except that the acceleration voltage of the electron beam was 800 kV, the irradiation dose was 20 kGy, the casting thickness was 500 μm, and then the salmon DNA was adsorbed and supported. I let you. In addition, the ratio of the uncrosslinked part which melt | dissolves in 40 degreeC water of the obtained crosslinked gelatin gel was 0.1 mass% with respect to the sum total of an uncrosslinked part and a crosslinked part.

[実施例4]
電子線の加速電圧を800kV、照射線量を50kGyとし、流延厚を500μm厚とした以外は実施例2と同様にして、シート状の架橋ゼラチンゲルを得た後、サケDNAを吸着させて担持させた。なお、得られた架橋ゼラチンゲルの、40℃の水に溶解する未架橋部分の割合は、未架橋部分と架橋部分との合計に対して、0.1質量%であった。
[Example 4]
A sheet-like cross-linked gelatin gel was obtained in the same manner as in Example 2 except that the acceleration voltage of the electron beam was 800 kV, the irradiation dose was 50 kGy, and the casting thickness was 500 μm, and then the salmon DNA was adsorbed and supported. I let you. In addition, the ratio of the uncrosslinked part which melt | dissolves in 40 degreeC water of the obtained crosslinked gelatin gel was 0.1 mass% with respect to the sum total of an uncrosslinked part and a crosslinked part.

[比較例5]
電子線の加速電圧を800kV、照射線量を50kGyとし、未架橋部分を溶出するための水による洗浄処理の操作を実施しなかった以外は実施例2と同様にして、シート状の架橋ゼラチンゲルを得た後、サケDNAを吸着させて担持させた。なお、得られた架橋ゼラチンゲルの、40℃の水に溶解する未架橋部分の割合は、29質量%であり、架橋部分の割合は、71質量%であった。
[Comparative Example 5]
A sheet-like cross-linked gelatin gel was prepared in the same manner as in Example 2 except that the acceleration voltage of the electron beam was 800 kV, the irradiation dose was 50 kGy, and no washing operation with water was used to elute uncrosslinked portions. After obtaining, salmon DNA was adsorbed and supported. In addition, the ratio of the non-crosslinked part which melt | dissolves in 40 degreeC water of the obtained crosslinked gelatin gel was 29 mass%, and the ratio of the crosslinked part was 71 mass%.

[実施例5]
10質量%の牛骨由来I型コラーゲンのアルカリ処理ゼラチン(新田ゼラチン株式会社製;等電点5.0)水溶液(以下、「10%PI−5」という。)を流延して、電子線の加速電圧を800kV、照射線量を10kGyとした以外は、実施例2と同様にして、シート状の架橋ゼラチンゲルを得た後、サケDNAを吸着させて担持させた。なお、得られた架橋ゼラチンゲルの、40℃の水に溶解する未架橋部分の割合は、未架橋部分と架橋部分との合計に対して、0.1質量%であった。
[Example 5]
A 10% by weight bovine bone-derived type I collagen alkali-treated gelatin (Nitta Gelatin Co., Ltd .; isoelectric point 5.0) aqueous solution (hereinafter referred to as “10% PI-5”) was cast to produce electrons. A sheet-like crosslinked gelatin gel was obtained in the same manner as in Example 2 except that the line acceleration voltage was 800 kV and the irradiation dose was 10 kGy, and then salmon DNA was adsorbed and supported. In addition, the ratio of the uncrosslinked part which melt | dissolves in 40 degreeC water of the obtained crosslinked gelatin gel was 0.1 mass% with respect to the sum total of an uncrosslinked part and a crosslinked part.

作成したシート状の架橋ゼラチンゲルを、約5mgに裁断して、初期重量を精密に計測し、これをマウス(ddY4週齢メス)背皮下に埋め込んだ。その後、1〜48日目の架橋ゼラチンゲルをマウスから取り出し、フリーズドライ後の乾燥重量を計測し、初期重量と比して残留率を求めた。結果を図3に示す。   The prepared sheet-like cross-linked gelatin gel was cut into about 5 mg, the initial weight was precisely measured, and this was embedded in the back of the mouse (ddY 4-week-old female). Thereafter, the cross-linked gelatin gel on the 1st to 48th days was taken out from the mouse, the dry weight after freeze-drying was measured, and the residual ratio was determined by comparison with the initial weight. The results are shown in FIG.

回帰直線の傾きから、実施例3では約5質量%/日、実施例4では約2質量%/日、及び実施例5では約10質量%/日の定率の放出プロファイルが示されており、所定の期間にわたる薬剤のリニア放出性が期待される。一方、未架橋部分を溶出するための水による洗浄処理を行わなかった比較例5では、初期(埋め込んでから1日経過時点)に約70質量%と大量の薬剤が放出され、その後、定率徐放約1.2質量%/日が示されており、2段階放出性が示されている。架橋ゼラチンゲルに担持されたDNAが、初期に大量に流出してしまう結果となるため、DNAの放出プロファイルとしては好ましいものではなかった。   The slope of the regression line shows a constant rate release profile for Example 3 at about 5% by weight / day, Example 4 at about 2% by weight / day, and Example 5 at about 10% by weight / day, A linear release of the drug over a predetermined period is expected. On the other hand, in Comparative Example 5 in which the washing treatment with water for eluting the uncrosslinked portion was not performed, a large amount of about 70% by mass of the drug was released at the initial stage (one day after the embedding), and thereafter, the constant rate gradually increased. The release is about 1.2% by mass / day, indicating a two-stage release. Since the DNA carried on the cross-linked gelatin gel flows out in a large amount in the initial stage, the DNA release profile is not preferable.

(6)架橋ゼラチンゲルシートにBMP−2を担持させた場合の骨形成試験 (6) Bone formation test when BMP-2 is supported on a cross-linked gelatin gel sheet

[実施例6]
電子線の加速電圧を800kV、照射線量を50kGyとした以外は、実施例2と同様にして、シート状の架橋ゼラチンゲルを得た。得られた架橋ゼラチンゲルの、40℃の水に溶解する未架橋部分の割合は、未架橋部分と架橋部分との合計に対して、0.1質量%であった。
[Example 6]
A sheet-like crosslinked gelatin gel was obtained in the same manner as in Example 2 except that the acceleration voltage of the electron beam was 800 kV and the irradiation dose was 50 kGy. The ratio of the uncrosslinked portion dissolved in water at 40 ° C. of the obtained crosslinked gelatin gel was 0.1% by mass with respect to the total of the uncrosslinked portion and the crosslinked portion.

[比較例6]
電子線の加速電圧を800kV、照射線量を50kGyとし、未架橋部分を溶出するための水による洗浄処理の操作を実施しなかった以外は、実施例2と同様にして、シート状の架橋ゼラチンゲルを得た。得られた架橋ゼラチンゲルの40℃の水に溶解する未架橋部分の割合は、29質量%であり、架橋部分の割合は、71質量%であった。
[Comparative Example 6]
A sheet-like cross-linked gelatin gel was prepared in the same manner as in Example 2, except that the electron beam acceleration voltage was 800 kV, the irradiation dose was 50 kGy, and no washing treatment with water was performed to elute uncrosslinked portions. Got. The ratio of the non-crosslinked portion dissolved in water at 40 ° C. of the obtained crosslinked gelatin gel was 29 mass%, and the ratio of the crosslinked portion was 71 mass%.

BMP−2の担持と骨形成の評価を以下の方法で行った。   The carrying | support of BMP-2 and evaluation of bone formation were performed with the following method.

骨形成因子である5μgのBMP−2(Bone Morphogenetic Protein-2、生化学用、和光純薬工業株式会社から購入)を含んだ30μlのPBS溶液(pH7.2〜7.4、日本水産株式会社製)に、実施例6として作製した実質的に未架橋部分を含まない架橋ゼラチンゲル、及び、比較例6として作製した未架橋部分と架橋部分が混在した架橋ゼラチンゲルを、それぞれ約5mgに切断したシートを一晩含浸し、BMP−2を吸着して担持させる。これをマウス(ddY5週齢メス)頚部の表皮裁断部位から、マウス背尾部皮下に埋め込んだ後、表皮切断面を縫合する。1、7、及び14日目にマウスを犠牲死させ、ゲルとその周辺の皮下組織(2×2cm)をメスで掻き取り、マイクロチューブに封入する。直ちに液体窒素を用いて瞬間凍結後、フリーズドライを行う。このフリーズドライ体をホモジナイズして、粉末組織を5mg取り出す。これをサンプル緩衝液(0.2%IGEPAL CA−630、10mM Tris−HCl、1mM MgCl、pH7.5)1mlに懸濁、4℃ 12000rpmで15分間遠心分離を行い、上清をサンプル液とする。アルカリフォスファターゼ(ALP)は骨芽細胞に存在しており、骨形成の指標となることから、「アルカリ性フォスファB−テストワコー:和光純薬株式会社製」のキットを用い、その使用方法に基づいてアルカリフォスタファーゼ活性(以下、「ALP」という。)を評価することで骨形成を評価した。30 μl of PBS solution (pH 7.2-7.4, Nippon Suisan Co., Ltd.) containing 5 μg of BMP-2 (Bone Morphogenetic Protein-2, for biochemistry, purchased from Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) Manufactured in Example 6), and the crosslinked gelatin gel prepared as Comparative Example 6 containing both the uncrosslinked portion and the crosslinked portion was cut into about 5 mg each. The sheet thus obtained is impregnated overnight, and BMP-2 is adsorbed and supported thereon. This is embedded into the mouse dorsal tail subcutaneously from the cut surface of the neck of the mouse (ddY 5-week-old female), and then the cut surface of the epidermis is sutured. The mice are sacrificed on days 1, 7, and 14, and the gel and surrounding subcutaneous tissue (2 × 2 cm) are scraped off with a scalpel and enclosed in a microtube. Immediately freeze using liquid nitrogen and freeze dry. The freeze-dried body is homogenized and 5 mg of the powder tissue is taken out. This is suspended in 1 ml of a sample buffer (0.2% IGEPAL CA-630, 10 mM Tris-HCl, 1 mM MgCl 2 , pH 7.5), and centrifuged at 12,000 rpm at 4 ° C. for 15 minutes, and the supernatant is separated from the sample solution. To do. Alkaline phosphatase (ALP) is present in osteoblasts and serves as an index of bone formation. Based on the method of use, a kit of “alkaline phosphatase B-Test Wako: manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.” is used. Bone formation was evaluated by evaluating alkaline fosterase activity (hereinafter referred to as “ALP”).

また、コントロールとして、実施例6の架橋ゼラチンゲルにBMP−2を含まないPBS溶液を含浸させたもの(「健常」という。)と、架橋ゼラチンゲルを用いることなく、BMP−2を含んだPBS溶液をゲル埋植部付近にインジェクション投与したもの(「インジェクション」という。)とを用いて、14日目にマウスを犠牲死させ、アルカリフォスタファーゼ活性を評価した。   In addition, as a control, the crosslinked gelatin gel of Example 6 impregnated with a PBS solution not containing BMP-2 (referred to as “healthy”), and PBS containing BMP-2 without using the crosslinked gelatin gel. The mice were sacrificed on the 14th day using the solution injected into the vicinity of the gel implant (referred to as “injection”), and alkaline fosterase activity was evaluated.

これらの評価結果を図4に示す。   The evaluation results are shown in FIG.

図4から分るように、水による洗浄処理を行って、実質的に未架橋部分を含まないものとした架橋ゼラチンゲルを使用する実施例6においては、生体内に埋め込んでから14日目に、コントロール(健常)と比べ約5倍のALPを示している。実施例6のサンプルの周りには血管が誘発しており、血管の部分のレントゲン写真によると、バイオマテリアル周辺に濃く白い部分が存在していた。この部分に触るとゼラチンゲルにはない硬さがあり、形成された骨であることが分かった。   As can be seen from FIG. 4, in Example 6 using the crosslinked gelatin gel that was washed with water and contained substantially no uncrosslinked portion, on the 14th day after being embedded in the living body. The ALP is about 5 times that of the control (healthy). Blood vessels were induced around the sample of Example 6, and according to the X-ray photograph of the blood vessel portion, a dark white portion was present around the biomaterial. When this part was touched, it was found that the bone was formed because it had a hardness not found in gelatin gel.

これに対して、インジェクション投与の場合、ALPがほとんど変化しておらず、骨形成が認められなかったことから、一度に大量の細胞増殖因子を投与しても、その場に細胞増殖因子を滞留させて徐放させることができなければ、骨形成が行われないことが容易に考察できる。   On the other hand, in the case of injection administration, ALP hardly changed and no bone formation was observed. Therefore, even when a large amount of cell growth factor was administered at a time, the cell growth factor was retained on the spot. If it cannot be sustainedly released, it can be easily considered that bone formation is not performed.

このことから、薬剤として細胞増殖因子を担持させる場合には、細胞増殖因子が体内で一定期間留まり、徐放により薬剤を放出させることが、細胞増殖に良いことが分かり、リニア放出性の有用性が確認された。   From this, when cell growth factor is carried as a drug, it can be seen that cell growth factor stays in the body for a certain period of time and that the drug is released by sustained release is good for cell growth. Was confirmed.

未架橋部分を洗浄除去しなかった架橋ゼラチンゲルを使用する比較例6においても、生体内に埋め込んでから14日目に、コントロール(健常)と比べ約3.5倍のALPが示されている。ただし、未架橋部分が存在する場合、生体内に埋め込んだ直後から薬剤が大量に放出される2段階放出性の薬剤放出プロファイルに従うため、未架橋部分を洗浄除去した実施例6と対比すると、細胞増殖因子の利用効率の点では、やや劣る結果となった。   Also in Comparative Example 6 using the crosslinked gelatin gel in which the uncrosslinked portion was not removed by washing, ALP about 3.5 times that of the control (healthy) was shown on the 14th day after being embedded in the living body. . However, in the case where an uncrosslinked portion exists, in order to follow a two-stage release drug release profile in which a large amount of drug is released immediately after implantation in the living body, in contrast to Example 6 in which the uncrosslinked portion was washed away, The results were somewhat inferior in terms of growth factor utilization efficiency.

すなわち、BMP−2による骨形成を行おうとする場合には、長期間にわたって、ほぼ等量ずつ継続的に薬剤を徐放できるリニア放出性を選択することがより有効である。   That is, when bone formation by BMP-2 is to be performed, it is more effective to select a linear release property capable of gradual release of the drug continuously by approximately equal amounts over a long period of time.

本発明によれば、生体に対する安全性に優れ、生理活性因子等の薬剤の担体として有用な生体内分解性高分子水溶性物質の架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料とその製造方法、具体的には、担持している生理活性因子の薬剤を生体内において、初期バーストを有する2段階放出性、またはリニア放出性の2種類の薬剤放出プロファイルを得ることができる、生体内分解性高分子水溶性物質の架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料とその製造方法が提供される。この結果、生体に対する安全を確保しつつ、未架橋部分を積極的に利用して、薬剤放出性を制御することにより、薬剤の徐放の制御性が高まり、製剤設計を効率的に行うことができるので、医療分野や化粧品分野を含む広範な技術分野において好適に利用することができる。   INDUSTRIAL APPLICABILITY According to the present invention, a carrier material for sustained release of an in vivo drug comprising a cross-linked hydrogel of a biodegradable polymer water-soluble substance that is excellent in safety for a living body and is useful as a carrier for a drug such as a bioactive factor, and its production Method, specifically, biodegradation that can obtain two types of drug release profiles, ie, two-stage release or linear release, having an initial burst in vivo, with a bioactive agent drug carried in vivo A carrier material for sustained release of an in vivo drug comprising a crosslinked hydrogel of a water-soluble polymeric water-soluble substance and a method for producing the same are provided. As a result, it is possible to control the drug release by actively utilizing the uncrosslinked portion while ensuring safety to the living body, thereby increasing the controllability of the sustained release of the drug and efficiently designing the drug product. Therefore, it can be suitably used in a wide range of technical fields including the medical field and cosmetic field.

Claims (14)

生体内分解性高分子水溶性物質に不活性気体雰囲気下に電離性放射線を照射して架橋したヒドロゲルから成る、生体内薬剤徐放用担体材料であって、
該ヒドロゲルが、40℃の水に可溶性である未架橋部分と架橋部分とを、質量比で95:5〜5:95の範囲で有し、かつ、
該担体材料が、薬剤を担持して生体内に埋め込んだ後、1日経過するまでに担持する薬剤の55質量%以上が体内に放出され、担持する薬剤の残部が2日目以降に徐放される、2段階放出性を示すものである、
生体内薬剤徐放用担体材料。
An in vivo biodegradable polymer water-soluble substance comprising a hydrogel crosslinked by irradiating with ionizing radiation in an inert gas atmosphere,
The hydrogel has an uncrosslinked portion and a crosslinked portion that are soluble in water at 40 ° C. in a mass ratio of 95: 5 to 5:95, and
After the carrier material carries the drug and is implanted in the living body, 55% by mass or more of the drug to be carried is released into the body until one day has passed, and the rest of the carried drug is gradually released from the second day onward. Which exhibits a two-stage release property,
In vivo drug sustained release carrier material.
前記ヒドロゲルが、未架橋部分と架橋部分とを、質量比で95:5〜55:45の範囲で有する
請求項1記載の生体内薬剤徐放用担体材料。
The carrier material for sustained release of an in-vivo drug according to claim 1, wherein the hydrogel has an uncrosslinked portion and a crosslinked portion in a mass ratio of 95: 5 to 55:45.
前記生体内分解性高分子水溶性物質が、ゼラチンまたはゼラチン誘導体であり、担持する薬剤が、生理活性因子である、
請求項1または2記載の生体内薬剤徐放用担体材料。
The biodegradable polymer water-soluble substance is gelatin or a gelatin derivative, and the drug to be carried is a physiologically active factor.
The carrier material for sustained release of an in vivo drug according to claim 1 or 2.
前記生体内分解性高分子水溶性物質が、ゼラチンまたはゼラチン誘導体であり、担持する薬剤が、成長因子であるbFGFであり、かつ、
前記担体材料が、bFGFを担持してマウスの生体内に埋め込んだ後、14日目までに血管新生が認められるものである、
請求項1乃至3のいずれか1項に記載の生体内薬剤徐放用担体材料。
The biodegradable polymeric water-soluble substance is gelatin or a gelatin derivative, the drug to be carried is bFGF which is a growth factor, and
Angiogenesis is observed by the 14th day after the carrier material carries bFGF and is implanted in the body of a mouse.
The carrier material for sustained release of an in vivo drug according to any one of claims 1 to 3.
前記の担体材料が、請求項1乃至4のいずれか1項に記載の生体内薬剤徐放用担体材料を、未架橋部分と架橋部分とを分離した状態で、薬剤をそれぞれに担持させた後、該未架橋部分と架橋部分とを合わせて成るものである、
生体内薬剤徐放用担体材料。
The carrier material according to any one of claims 1 to 4, wherein the carrier material for sustained release of an in vivo medicine is loaded with a drug in a state where an uncrosslinked portion and a crosslinked portion are separated from each other. The uncrosslinked portion and the crosslinked portion are combined.
In vivo drug sustained release carrier material.
請求項1乃至4のいずれか1項に記載の生体内薬剤徐放用担体材料に、水によって洗浄処理を行って成る、
実質的に未架橋部分を含まない、架橋したヒドロゲルから成る、リニア放出性を示す生体内薬剤徐放用担体材料。
The carrier material for sustained release of an in vivo drug according to any one of claims 1 to 4, is washed with water.
A carrier material for sustained release of an in-vivo drug that exhibits linear release, comprising a crosslinked hydrogel substantially free of uncrosslinked portions.
前記ヒドロゲルが、40℃の水に溶解する未架橋部分が、未架橋部分と架橋部分との合計に対して5質量%未満である、
請求項6記載の生体内薬剤徐放用担体材料。
In the hydrogel, the uncrosslinked portion in which the hydrogel is dissolved in water at 40 ° C. is less than 5% by mass based on the total of the uncrosslinked portion and the crosslinked portion
The carrier material for sustained release of an in-vivo drug according to claim 6.
前記担体材料が、薬剤を担持して生体内に埋め込んだ後、担持する薬剤の放出プロファイルが、2〜15質量%/日の範囲内で定率の部分を有するものである、
請求項6または7記載の生体内薬剤徐放用担体材料。
After the carrier material carries the drug and is implanted in the living body, the release profile of the drug to be loaded has a constant rate within a range of 2 to 15% by mass / day.
The carrier material for sustained release of an in vivo drug according to claim 6 or 7.
担持する薬剤が、プラスミドDNAである、
請求項6乃至8のいずれか1項に記載の生体内薬剤徐放用担体材料。
The drug to be carried is plasmid DNA.
The carrier material for sustained release of an in vivo drug according to any one of claims 6 to 8.
担持する薬剤が、BMP−2である、
請求項6乃至8のいずれか1項に記載の生体内薬剤徐放用担体材料。
The drug to be carried is BMP-2.
The carrier material for sustained release of an in vivo drug according to any one of claims 6 to 8.
生体内分解性高分子水溶性物質を架橋したヒドロゲルから成る生体内薬剤徐放用担体材料の製造方法であって、
不活性気体雰囲気下に電離性放射線を照射して架橋する電離性放射線照射工程を有するとともに、
該ヒドロゲルが、40℃の水に可溶性である未架橋部分と架橋部分とを、質量比で95:5〜5:95の範囲で有し、かつ、
該担体材料が、薬剤を担持して生体内に埋め込んだ後、1日経過するまでに担持する薬剤の55質量%以上が体内に放出され、担持する薬剤の残部が2日目以降に徐放される、2段階放出性を示すものである、
生体内薬剤徐放用担体材料の製造方法。
A method for producing a carrier material for sustained release of an in vivo drug comprising a hydrogel obtained by crosslinking a biodegradable polymer water-soluble substance,
While having an ionizing radiation irradiation step of crosslinking by irradiating ionizing radiation in an inert gas atmosphere,
The hydrogel has an uncrosslinked portion and a crosslinked portion that are soluble in water at 40 ° C. in a mass ratio of 95: 5 to 5:95, and
After the carrier material carries the drug and is implanted in the living body, 55% by mass or more of the drug to be carried is released into the body until one day has passed, and the rest of the carried drug is gradually released from the second day onward. Which exhibits a two-stage release property,
A method for producing a carrier material for sustained drug release in vivo.
請求項11記載の生体内薬剤徐放用担体材料の製造方法であって、
電離性放射線照射工程の後に、水による洗浄処理工程を更に有する、
実質的に未架橋部分を含まない、架橋したヒドロゲルから成る、リニア放出性を示す生体内薬剤徐放用担体材料の製造方法。
A method for producing a carrier material for sustained release of an in-vivo drug according to claim 11,
After the ionizing radiation irradiation step, further having a washing treatment step with water,
A method for producing a carrier material for sustained release of an in-vivo drug that exhibits linear release, comprising a crosslinked hydrogel substantially free of uncrosslinked portions.
電離性放射線照射工程に先だって、生体内分解性高分子水溶性物質の水溶液を流延して塗工層を形成する塗工層形成工程を更に有する、
請求項11または12記載の生体内薬剤徐放用担体材料の製造方法。
Prior to the ionizing radiation irradiation step, the method further comprises a coating layer forming step of casting an aqueous solution of a biodegradable polymer water-soluble substance to form a coating layer.
A method for producing a carrier material for sustained release of an in vivo drug according to claim 11 or 12.
電離性放射線が、電子線であって、
電子線の照射を、加速電圧100kV〜3MVの範囲内で、不活性気体雰囲気下にて、線量2〜500kGyの範囲内で行う、
請求項11乃至13のいずれか1項に記載の生体内薬剤徐放用担体材料の製造方法。
The ionizing radiation is an electron beam,
Electron beam irradiation is performed within an acceleration voltage range of 100 kV to 3 MV in an inert gas atmosphere within a dose range of 2 to 500 kGy.
A method for producing a carrier material for sustained release of an in vivo drug according to any one of claims 11 to 13.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105214143A (en) 2009-04-28 2016-01-06 苏尔莫迪克斯公司 For sending the apparatus and method of bioactivator
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US10898446B2 (en) 2016-12-20 2021-01-26 Surmodics, Inc. Delivery of hydrophobic active agents from hydrophilic polyether block amide copolymer surfaces
JP7156665B2 (en) * 2017-06-13 2022-10-19 国立研究開発法人量子科学技術研究開発機構 Medicine and its manufacturing method

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2008016163A1 (en) * 2006-08-01 2008-02-07 Nichiban Co., Ltd. Crosslinked gelatin gel multilayered structure, carrier for bioactive factor, preparation for release of bioactive factor, and their production methods
JP2008504912A (en) * 2004-06-30 2008-02-21 コヴァロン テクノロジーズ リミテッド Non-adhesive hydrogel

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE69427908T2 (en) * 1993-05-31 2001-11-22 Kaken Pharma Co Ltd A GEL PREPARATION MADE FROM CROSSLINKED GELATINE, CONTAINING A BASIC GROWTH FACTOR FOR FIBROBLASTS
JPH07330531A (en) * 1994-06-03 1995-12-19 Kanebo Ltd Production of therapeutic material for periodontosis
JP4358621B2 (en) * 2001-08-08 2009-11-04 泰彦 田畑 A material for the regeneration of the kidney consisting of cells and cell growth factors
JP2005220070A (en) * 2004-02-05 2005-08-18 Medgel Corp Bioabsorbable polymer hydrogel preparation for neurotization and neuroprotection

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2008504912A (en) * 2004-06-30 2008-02-21 コヴァロン テクノロジーズ リミテッド Non-adhesive hydrogel
WO2008016163A1 (en) * 2006-08-01 2008-02-07 Nichiban Co., Ltd. Crosslinked gelatin gel multilayered structure, carrier for bioactive factor, preparation for release of bioactive factor, and their production methods

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
第34回医用高分子シンポジウム講演要旨集,2005,P.19-20, JPN6013064548, ISSN: 0002716297 *

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Bastami et al. Addition of Bone‐Marrow Mesenchymal Stem Cells to 3D‐Printed Alginate/Gelatin Hydrogel Containing Freeze‐Dried Bone Nanoparticles Accelerates Regeneration of Critical Size Bone Defects
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