JPS63202377A - Novel cell strain - Google Patents

Novel cell strain

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JPS63202377A
JPS63202377A JP62033364A JP3336487A JPS63202377A JP S63202377 A JPS63202377 A JP S63202377A JP 62033364 A JP62033364 A JP 62033364A JP 3336487 A JP3336487 A JP 3336487A JP S63202377 A JPS63202377 A JP S63202377A
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medium
glutamine
cells
glutamic acid
strain
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Shinji Hosoi
細井 伸二
Seiji Sato
佐藤 征二
Norio Fujiyoshi
藤吉 宣男
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National Institute of Advanced Industrial Science and Technology AIST
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Agency of Industrial Science and Technology
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Abstract

PURPOSE:To obtain a human lymphoblast cell which can be proliferated in a serumfree medium free from glutamine, by acclimatizing a specific human lymphoblast cell in a medium containing glutamic acid or glutamic acid and acetyglutamine. CONSTITUTION:A human lymphoblast cell which can be proliferated in a medium free from glutamine and containing glutamic acid and/or acetylglutamine is prepared from a human lymphoblast cell which cannot be proliferated in a glutamine-free medium by acclimatizing the human lymphoblast cell in a medium containing glutamic acid or glutamic acid and acetylglutamine. Preferable example of a parent strain for the growth of glutamine-nonrequiring strain is Burkitt lymphoma, Namalwa cell strain ATCC, etc., which are kinds of human lymphoblast cell. The acclimatization can be carried out e.g. by subculturing the cells at a cell density of about 0.5X10<5>-8X10<5> cells/ml in a medium free from glutamine and containing glutamic acid and/or acetylglutamine for 3 weeks - 1.5 month or longer.

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、グルタミンを含有しない培地では増殖しない
ヒ) リンパ芽球細胞を馴化して、グルタミンを含まず
、グルタミンの代わりにグルタミン酸および/またはア
セチルグルタミンを含んだ無血清培地で増殖できるよう
にした新規ヒトリンパ芽球細胞およびその調製法に関す
る。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention provides a method for acclimating human lymphoblastoid cells, which do not proliferate in a glutamine-free medium, to a serum-free medium that does not contain glutamine and contains glutamic acid and/or acetylglutamine instead of glutamine. This invention relates to a novel human lymphoblastoid cell that can be grown in a medium and a method for preparing the same.

産業上の利用分野 本発明は、新規ヒトリンパ芽球細胞およびその調製法に
関する。本発明の細胞はグルタミンを含まない無血清培
地により増殖させることができ、この細胞株を生産する
インターフェロン、細胞増殖因子、細胞増殖阻害因子な
どのリンホカイン類の生産を有利ならしめることができ
る。従って、これらの物質を用いる医薬品、化学品、食
品などに応用できる。
INDUSTRIAL APPLICATION FIELD The present invention relates to a novel human lymphoblastoid cell and a method for its preparation. The cells of the present invention can be grown in a serum-free medium that does not contain glutamine, making this cell line advantageous for producing lymphokines such as interferon, cell growth factors, and cell growth inhibitory factors. Therefore, it can be applied to medicines, chemicals, foods, etc. that use these substances.

従来の技術 従来、動物細胞の培養には、牛や馬の血清を0.5〜2
0%加えた培地が用いられ、その他にも、グルタミン、
抗生物質などが添加されてきた。最近になって、血清の
ロフト差や価格の問題から無血清培地の検討が試みられ
ている。また、一部では、無血清培地生育細胞の育成も
試みられている(特開昭6O−6190)。
Conventional technology Conventionally, when culturing animal cells, cow or horse serum was added at a concentration of 0.5 to 2
A medium with 0% added is used, and in addition, glutamine,
Antibiotics have been added. Recently, attempts have been made to consider serum-free media due to loft differences in serum and cost issues. In addition, some attempts have been made to cultivate cells grown in serum-free medium (Japanese Patent Application Laid-Open No. 60-6190).

本発明が解決しようとする問題点 動物細胞は、一般的に、牛や馬の血清を0.5〜20%
含有した培地を用いて体外で培養することができる。癌
細胞など樹立された細胞は、工業的規模にまで大量培養
が可能になっている。細胞培養によってインターフェロ
ン、インターロイキン、プラスミノーゲンアクチベータ
ーなどの有用物質が生産されている。
Problems to be Solved by the Invention Animal cells are generally prepared using 0.5 to 20% bovine or horse serum.
It can be cultured in vitro using the containing medium. Established cells such as cancer cells can now be cultured in large quantities on an industrial scale. Cell culture produces useful substances such as interferon, interleukin, and plasminogen activator.

細胞培養に用いる培地には、グルタミンが通常添加され
ている。グルタミンは、熱に不安定で蒸煮滅菌すると9
5%以上が5−オキソプロリンに分解してしまうため通
常は、濾過滅菌して用いられる。グルタミンは細胞増殖
と共に代謝され培地中にアンモニアを放出する。このア
ンモニアは細胞増殖阻害を引き起こすことが知られてお
り、チャイニーズハムスターのCHO−KlやウシのB
HK細胞では4mM程度の含有量でも50%の生育阻害
が起こると報告されている。ナマルバ細胞でも潅流培養
法を用いた場合、2X10’個/mlの細胞密度で3m
Mのアンモニア濃度となることが知られている。したが
って、さらに高密度の細胞を増殖、維持させるためには
、アンモニアの発生源であるグルタミン添加量を減少さ
せる必要がある。
Glutamine is usually added to the medium used for cell culture. Glutamine is unstable to heat and becomes 9 when sterilized by steaming.
Since 5% or more of it decomposes into 5-oxoproline, it is usually used after filtration sterilization. Glutamine is metabolized with cell growth and releases ammonia into the medium. This ammonia is known to cause inhibition of cell growth, including CHO-Kl in Chinese hamsters and B-B in cows.
It has been reported that 50% growth inhibition occurs in HK cells even at a concentration of about 4mM. When using the perfusion culture method for Namalva cells, 3 m
It is known that the ammonia concentration is M. Therefore, in order to proliferate and maintain cells at even higher density, it is necessary to reduce the amount of glutamine added, which is a source of ammonia.

問題点を解決するだめの手段 本発明者らは、既にヒトリンパ芽球細胞を馴化法によっ
て無血清培地に馴化し、無血清培地生育細胞を育成でき
ることを示した。(特開昭6O−本発明者らは、馴化法
によって無血清培地に生育可能なヒトリンパ芽球細胞株
であるバーキットリンパ腫、ナマルバ細胞のグルタミン
非要求株を取得すべく研究を行った。
Means to Solve the Problem The present inventors have already shown that it is possible to acclimate human lymphoblastoid cells to a serum-free medium by a conditioning method and to grow cells grown in a serum-free medium. (Japanese Patent Application Laid-Open No. 1986-1999--The present inventors conducted research to obtain a glutamine-independent strain of Burkitt's lymphoma Namalva cells, which are human lymphoblastoid cell lines that can grow in a serum-free medium by an acclimation method.

まず、グルタミンの代わりに蒸煮滅菌可能なアセチルグ
ルタミンの利用を試みたところ、アセチルグルタミンは
ヒトリンパ芽球細胞に資化されず、しだいに死滅し生存
率の低下が観察され、やがて細胞数は30%以下まで低
下した。
First, when we tried to use acetylglutamine, which can be sterilized by steaming, instead of glutamine, we found that acetylglutamine was not assimilated by human lymphoblastoid cells, and they gradually died, decreasing the survival rate, and eventually the cell number decreased to 30%. It decreased to below.

新鮮培地への継代を続けると、細胞の増殖は見られない
が生存率の上昇が見られるようになり、さらに長期の細
胞継代を続けると細胞の増殖が観察されるようになり、
出発細胞株の生育に近づいた。このようにしてグルタミ
ン非要求性株を取得するに至った。
If you continue to passage to fresh medium, you will not see cell proliferation, but you will see an increase in survival rate, and if you continue to passage the cells for an even longer period of time, you will start to see cell proliferation.
The starting cell line is close to growth. In this way, we were able to obtain a strain that does not require glutamine.

このグルタミン非要求株が得られた原因として、培地中
に存在するグルタミン酸の存在が考えられる。用いた基
礎培地は、RPMI−1640培地(日永製薬社製)で
あり、Q、2mMのグルタミン酸が含有されている。グ
ルタミン酸、アンモニアとATPが存在すれば細胞のグ
ルタミンシンセターゼの働きによってグルタミンが生合
成される。この生合成反応はグルタミナーゼとの平衡関
係にあると思われ過剰のグルタミン酸によってグルタミ
ン合成に平衡がずれると考えられる。
The presence of glutamic acid in the medium is considered to be the reason why this strain that does not require glutamine was obtained. The basal medium used was RPMI-1640 medium (manufactured by Hinaga Pharmaceutical Co., Ltd.) containing Q, 2mM glutamic acid. If glutamic acid, ammonia and ATP are present, glutamine is biosynthesized by the action of cellular glutamine synthetase. This biosynthetic reaction is thought to be in an equilibrium relationship with glutaminase, and excess glutamic acid is thought to shift the equilibrium in glutamine synthesis.

以上のような理由から、過剰のグルタミン酸の添加が細
胞馴化のために効果的と考えられるので、アセチルグル
タミンに替えて4mMのグルタミン酸を添加した培地を
用いて馴化を試みたところ、この方法によっても同様に
グルタミン非要求性株が得られた。
For the above reasons, addition of excess glutamic acid is thought to be effective for cell conditioning, so we attempted conditioning using a medium supplemented with 4mM glutamic acid instead of acetylglutamine, and found that this method also resulted in cell conditioning. Similarly, a glutamine non-auxotrophic strain was obtained.

以下、発明の内容を詳細に説明する。The content of the invention will be explained in detail below.

本発明はグルタミンを含まず、グルタミン酸および/ま
たはアセチルグルタミンを含む無血清培地に増殖できる
新規ヒトリンパ芽球細胞を提供する。本発明は、また、
グルタミン酸を含有しない培地では増殖しないヒトリン
パ芽球細胞とグルタミン酸またはグルタミン酸とアセチ
ルグルタミンとを含む培地に馴化させることによりグル
タミンを含まず、グルタミン酸および/またはアセチル
グルタミンを含む無血清培地に増殖できるヒトリンパ芽
球細胞を調製する方法を提供する。
The present invention provides novel human lymphoblastoid cells that are free of glutamine and can be grown in serum-free media containing glutamic acid and/or acetylglutamine. The present invention also includes:
Human lymphoblast cells that do not proliferate in a medium that does not contain glutamic acid, and human lymphoblasts that do not contain glutamine and can proliferate in a serum-free medium that contains glutamic acid and/or acetylglutamine by acclimatizing them to a medium that contains glutamic acid or glutamic acid and acetylglutamine. A method of preparing cells is provided.

グルタミン非要求性株育成の親株としては、ヒトリンパ
芽球細胞でグルタミン要求性細胞であればいずれの細胞
でも用いることができる。好適な例としては、ヒトリン
パ芽球細胞であるバーキットリンパ腫、ナマルバ細胞株
ATCCCRL−1432が挙げられる。しかも、馴化
法によって無血清培地中で生育でき、インターフェロン
生産能を保持しているKJM−1株(特開昭60−61
90に開示したKT−1株の同体異名)のように無血清
培地馴化株であればさらに、種々の解析が容易である。
As a parent strain for cultivating a glutamine-nonrequiring strain, any human lymphoblastoid cell that requires glutamine can be used. Suitable examples include Burkitt's lymphoma, which is a human lymphoblastoid cell, and the Namalva cell line ATCCCRL-1432. Furthermore, the KJM-1 strain (Japanese Patent Application Laid-open No. 60-61
If the strain is adapted to a serum-free medium, such as the homologous synonym of the KT-1 strain disclosed in 1990, various analyzes are easier.

馴化の方法としては、0.5X10’〜8X105個/
m1程度の細胞をグルタミンを含まず、グルタミン酸お
よび/またはアセチルグルタミンを含有する培地で3週
間から1.5力月以上継代を行う方法が用いられる。培
地のpHが6.5以下にならないように培地を交換し継
代することが必要である。
As a method of acclimatization, 0.5X10' to 8X105 pieces/
A method is used in which cells of approximately ml are subcultured in a medium that does not contain glutamine but contains glutamic acid and/or acetylglutamine for 3 weeks to 1.5 months or more. It is necessary to replace the medium and subculture so that the pH of the medium does not fall below 6.5.

継代初期に細胞密度が著しく低下する場合があるので、
遠心分離や上清除去によって濃縮し細胞密度を上記の範
囲に合わせる。ナマルバ細胞の無血清培地馴化株KJM
−1株を例に、馴化の方法を具体的に説明する。
Since cell density may decrease significantly at the early stage of passage,
Concentrate by centrifugation or removing the supernatant and adjust the cell density to the above range. Namalva cell strain KJM adapted to serum-free medium
The acclimatization method will be specifically explained using the -1 strain as an example.

KJM−1株を種細胞とし、無血清培地よりグルタミン
を除き0.4〜40mMのアセチルグルタミ7 (AG
)または、0.4〜40mMのグルタミン酸(GA)を
更に添加した培地に10’〜1×106個/m Iの細
胞密度で接種する。これを36〜37℃以下で1〜5日
間培養した後、1.50Orpm。
Using KJM-1 strain as seed cells, remove glutamine from serum-free medium and add 0.4 to 40mM acetylglutamine 7 (AG
) or inoculated at a cell density of 10' to 1 x 10 cells/ml in a medium further supplemented with 0.4 to 40 mM glutamic acid (GA). After culturing this at 36-37°C or lower for 1-5 days, the temperature was 1.50 Orpm.

5分間遠心分離し、そのまま新鮮な培地と交換する。こ
のような操作を生育が安定し細胞増殖が親株に近づくま
で1.5力月以上、繰り返し続ける。
Centrifuge for 5 minutes and replace with fresh medium. These operations are repeated for 1.5 months or more until growth is stable and cell proliferation approaches that of the parent strain.

細胞は、かならずしも生育するとはかぎらないため4〜
5連で行うか、細胞が死滅した場合、また始めから同じ
操作を繰り返す必要がある。無血清培地の基礎培地とし
ては、RPMI−1640(田水製薬社製) 、MIE
M(田水製薬社製)、ダルベツコMEM(田水製薬社製
)、ハムF10、ハムF12(フローラボ社製) 、D
M160.DM170(極東製薬社製)などが用いられ
る。
Cells do not necessarily grow, so 4-
It is necessary to repeat the procedure 5 times in a row, or if the cells die, it is necessary to repeat the same procedure from the beginning. As the basal medium of serum-free medium, RPMI-1640 (manufactured by Tamizu Pharmaceutical Co., Ltd.), MIE
M (manufactured by Tadami Pharmaceutical), Dulbetsco MEM (manufactured by Tadami Pharmaceutical), Ham F10, Ham F12 (manufactured by Flow Lab), D
M160. DM170 (manufactured by Kyokuto Pharmaceutical Co., Ltd.) or the like is used.

無血清培地中の添加物としては、ペニシリン5〜100
 u/ml、 xトレプトマイシン5〜100■/ml
、ヘペス緩衡液10〜300mMがあげられる。血清代
替物としてトランスフェリン0.1〜100 g/ml
好ましくは1〜l Ox/ml、インスリン0.3〜1
00 g/ml好ましくは1〜10 u/ml、亜セレ
ン酸ソーダ0.1〜100 X 10−”M好ましくは
1〜10 X 10−’M、ピルビン酸ソーダ0.1〜
100mM、ガラクトース0.01〜100mg/ml
好ましくは0.1〜10 mg/ml、ペポールB−1
88(東邦千葉化学工業社製)0.001〜10%好ま
しくは0.01〜1%、ジメチル−α−またはβ−シク
ロデキストリン(東進ケミカル社製)1鴻〜lQmg/
m+、低分子ゼラチン(MW、 約10.000)にツ
タゼラチン社製) 0.01〜100mg/ml好まし
くは0.5〜30mg/m1などを用いる。
As an additive in serum-free medium, penicillin 5-100
u/ml, x Treptomycin 5-100 ■/ml
, Hepes buffer 10-300mM. Transferrin 0.1-100 g/ml as serum replacement
Preferably 1-1 Ox/ml, insulin 0.3-1
00 g/ml preferably 1-10 u/ml, sodium selenite 0.1-100 X 10-'M preferably 1-10 X 10-'M, sodium pyruvate 0.1-
100mM, galactose 0.01-100mg/ml
Preferably 0.1 to 10 mg/ml, Pepol B-1
88 (manufactured by Toho Chiba Chemical Co., Ltd.) 0.001 to 10%, preferably 0.01 to 1%, dimethyl-α- or β-cyclodextrin (manufactured by Toshin Chemical Co., Ltd.) 1 kg to 1 Q mg/
m+, low molecular weight gelatin (MW, about 10,000) manufactured by Tsuta Gelatin Co., Ltd.) 0.01 to 100 mg/ml, preferably 0.5 to 30 mg/ml, etc. are used.

細胞増殖が親株と同程度に回復した時点で培地中に代謝
されるアンモニア濃度を測定し親株と比較する。測定法
として、グルタメートデヒドロゲナーゼ(GLDH)に
よるアンモニアとα−ケトゲルタール酸からのグルタミ
ン酸の生成をNADPH2の吸光度の差により求める。
When cell growth has recovered to the same level as the parent strain, the concentration of ammonia metabolized in the medium is measured and compared with the parent strain. As a measurement method, the production of glutamic acid from ammonia and α-ketogeltaric acid by glutamate dehydrogenase (GLDH) is determined by the difference in absorbance of NADPH2.

試薬は、アンモニア定量試薬デタミナーNHs  (協
和メデックス社製)を使用する。さらに、細胞を集め超
音波処理した後、細胞内のグルタミンシンセターゼの活
性を測定する。活性測定は、グルタミンとヒドロキシア
ミンからグルタミンシンセターゼによりγ−グルタミル
ヒドロキサム酸の生成を測定する系を用いる。
As a reagent, an ammonia quantitative reagent Determiner NHs (manufactured by Kyowa Medex Co., Ltd.) is used. Furthermore, after collecting the cells and subjecting them to sonication, the activity of intracellular glutamine synthetase is measured. The activity measurement uses a system that measures the production of γ-glutamyl hydroxamic acid from glutamine and hydroxyamine by glutamine synthetase.

馴化細胞の培養に用いる培地にはグルタミンが含まれて
いない。培養後の培養液にグルタミンが含まれていれば
グルタミンの合成が証明される。
The medium used to culture conditioned cells does not contain glutamine. If glutamine is contained in the culture solution after culturing, glutamine synthesis is proven.

培養液のグルタミン分析は日本電子社製アミノ酸自動分
析機JLC−200Aにより行う。
Glutamine analysis of the culture solution is performed using an automatic amino acid analyzer JLC-200A manufactured by JEOL Ltd.

以下本発明の実施例を示す。Examples of the present invention will be shown below.

実施例1 ヒトリンパ芽球細胞、ナマルバ細胞の無血清培地馴化株
であるKJM−1株を用いてグルタミン非要求性細胞の
育成を行った。
Example 1 Glutamine-nonrequiring cells were grown using the KJM-1 strain, which is a serum-free medium-accumulated strain of human lymphoblastoid Namalva cells.

培地としてRPMI−1640を基礎培地とし、3g/
n+1インスリン、5g/ml)ランスフェリン、5m
Mピルビン酸ソーダ、1.25 X I O−”M亜セ
レン酸ソーダ、1mg/mlガラクトース、4mMグル
タミン、10mMヘペス緩衝液、25u/mlペニシリ
ンG、25g/mlストレプトマイシンおよび0゜1%
重曹を加えた無血清培地(本培地をITPSG培地と称
する)を用いグルタミン要求性細胞KJM−1株を継代
培養してきた細胞5X10’個/mlとなるように上記
ITPSG培地にグルタミンの代わりに4mMのアセチ
ルグルタミンを加えた培地に接種し培養した。培養は、
25cdの培養フラスコで、37℃、2〜4日間行った
後、培養物を1、50 Orpmで5分間遠心分離し、
得られた細胞を新鮮な培地に再度、浮遊させることによ
る継代によった。細胞は継代するに従い生存率が悪化し
、細胞数が減少してくる。最初の培養から7日後、細胞
数は、27%まで低下し、その後は、この細胞数を維持
することができた。
RPMI-1640 was used as the basal medium, and 3 g/
n+1 insulin, 5g/ml) Lanceferrin, 5m
M Sodium Pyruvate, 1.25 X I O-''M Sodium Selenite, 1 mg/ml Galactose, 4mM Glutamine, 10mM Hepes Buffer, 25u/ml Penicillin G, 25g/ml Streptomycin and 0°1%
The glutamine-requiring cell KJM-1 strain was subcultured using a serum-free medium supplemented with baking soda (this medium is referred to as ITPSG medium). The cells were inoculated into a medium containing 4mM acetylglutamine and cultured. The culture is
After 2-4 days at 37°C in 25 cd culture flasks, the cultures were centrifuged at 1,50 Orpm for 5 min.
The resulting cells were passaged by resuspending them in fresh medium. As cells are passaged, their survival rate deteriorates and the number of cells decreases. Seven days after the initial culture, the cell number decreased to 27% and was able to maintain this cell number thereafter.

1.5力月後、細胞数は接種時の90%以上に回復し、
細胞数もI X 10@個/mlまで増殖できるように
なった。以後、細胞継代を続け24力月以上、安定した
増殖を示している。0.9 X I O’1III/m
lで接種した細胞は55後4.4X105個/m lま
で増殖しその増殖率は、グルタミン添加培地で培養した
親株KJM−1の3.5X105個/mlとほぼ同じで
あった。そのときの培地中に代謝さたアンモニアは親株
の41%に低下していた。
After 1.5 months, the cell number recovered to more than 90% of the time of inoculation,
The number of cells could now be increased to I x 10 cells/ml. Since then, the cells have continued to be passaged and have shown stable proliferation for over 24 months. 0.9 X I O'1III/m
After 55 days, the cells inoculated with 100 ml of cells proliferated to 4.4×10 5 cells/ml, and the proliferation rate was almost the same as the 3.5×10 5 cells/ml of the parent strain KJM-1 cultured in glutamine-supplemented medium. At that time, the amount of ammonia metabolized in the medium was reduced to 41% of that of the parent strain.

実施例2 ヒ) IJンパ芽球細胞であるナマルバ細胞の無血清培
地馴化株であるKJM−1株を用いてグルタミン非要求
性細胞の育成を行った。培地とじてITPSG培地を用
いグルタミン要求性綿111KJM−1株で継代培養し
てきた細胞を5X10’個/mlとなるように上記IT
PSG培地にグルタミンの代わりに4mMのグルタミン
酸を加えた培地に接種し培養した。培養は、25cdの
培養フラスコで、37℃、2〜4日間行った後、培養物
を150Orpmで5分間遠心分離し、得られた細胞を
新鮮な培地に再度、浮遊させることによる継代培養によ
った。
Example 2 Human) Glutamine-nonrequiring cells were grown using the KJM-1 strain, which is a serum-free medium-accumulated strain of Namalva cells, which are IJ lymphoblast cells. Using ITPSG medium as a medium, cells subcultured with glutamine-requiring cotton 111KJM-1 strain were transferred to the above IT to a concentration of 5 x 10' cells/ml.
The cells were inoculated into a PSG medium to which 4mM glutamic acid was added instead of glutamine, and cultured. Culture was carried out in a 25 cd culture flask at 37°C for 2 to 4 days, and then the culture was centrifuged at 150 rpm for 5 minutes, and the resulting cells were resuspended in fresh medium for subculture. Yes.

グルタミン酸添加培地では細胞数の減少はあまりないが
細胞数の増加も見られなかった。3週間後から細胞が増
殖を開始し3力月後に親株の生育に近づいた。その後1
4カ月間、安定した生育を示している。細胞を0.9X
10’個/m 1で接種し5日後の細胞数を親株と比較
した。馴化株と親株はともに3.5X10’個/mlを
示した。その時のアンモニア濃度は、親株の75%であ
った。
In the medium supplemented with glutamate, there was not much of a decrease in cell number, but no increase in cell number was observed either. After 3 weeks, the cells started to proliferate, and after 3 months, they approached the growth of the parent strain. then 1
It has shown stable growth for 4 months. cells 0.9X
The number of cells after 5 days of inoculation at 10' cells/m1 was compared with that of the parent strain. Both the adapted strain and the parent strain showed 3.5×10' cells/ml. The ammonia concentration at that time was 75% of the parent strain.

実施例3 グルタミンシンセターゼの活性とグルタミンの生成を調
べた。親株、グルタミン不合アセチルグルタミンおよび
/またはグルタミン酸添加培地生育株を培養しそれぞれ
5 X 10’N/…1の細胞懸濁液を2ml取り遠心
分離して細胞と上滑を集めた。
Example 3 The activity of glutamine synthetase and the production of glutamine were investigated. The parent strain, the glutamine-incompatible acetylglutamine and/or glutamic acid supplemented strain were cultured, and 2 ml of each cell suspension (5 x 10'N/...1) was taken and centrifuged to collect the cells and supernatant.

細胞をPBS (食塩含有リン酸緩衝液)2mlに懸濁
し、tlL−TRASONICDISRllPTORM
odel LIR−200P(トミー精工製)を用い水
冷下140Wで2分間の超音波で細胞を破壊後、150
0rpmで10分間遠心分離して上清を集めた。この上
清100μsを500mMイミダゾール−HCJ、4m
M ADP。
Cells were suspended in 2 ml of PBS (phosphate buffer containing saline) and tlL-TRASONICDISRllPTORM
After destroying the cells with ultrasonic waves for 2 minutes at 140 W under water cooling using odel LIR-200P (manufactured by Tomy Seiko), 150
The supernatant was collected by centrifugation at 0 rpm for 10 minutes. 100 μs of this supernatant was added to 500 mM imidazole-HCJ for 4 m
M ADP.

200mMグルタミン、200mMヒドロキシルアミン
、200mM砒酸ナトリウム、3mMM n CR2を
それぞれ90IjIlと蒸留水360ρとを加えた反応
液に添加し、37℃、24時間反応させた。反応後、2
mM塩化鉄試薬(10%FeCR*  6H20,6N
  HCI、24%トリクロロ酢酸(TCA)=1 :
 1 : 1)を加え、反応によって生ずるγ−グルタ
ミルヒドロキサム酸の量を540nmにおける吸収度(
島津分光光度計UV−240)で測定した。
200mM glutamine, 200mM hydroxylamine, 200mM sodium arsenate, and 3mM n CR2 were each added to a reaction solution containing 90IjIl and 360ρ of distilled water, and reacted at 37°C for 24 hours. After reaction, 2
mM iron chloride reagent (10%FeCR* 6H20,6N
HCI, 24% trichloroacetic acid (TCA) = 1:
1:1) was added, and the amount of γ-glutamylhydroxamic acid produced by the reaction was determined by the absorbance at 540 nm (
It was measured using a Shimadzu spectrophotometer UV-240).

540nmでの吸収値とT−グルタミルヒドロキサム酸
の検量線は第1表の通りである。
The absorption value at 540 nm and the calibration curve of T-glutamylhydroxamic acid are shown in Table 1.

第   1   表 T−グルタミルヒドロキサム酸の量をグルタミン合成酵
素量とし、各細胞株が生産するグルタミン合成酵素濃度
を第2表に示す。
Table 1 The amount of T-glutamylhydroxamic acid is defined as the amount of glutamine synthetase, and Table 2 shows the concentration of glutamine synthetase produced by each cell line.

第    2    表 親株  −4mM  O,2mM  O,013−また
、培養7日後の培地中のグルタミンの変化は、親株63
3JLg/mlが109 g/mlに減少しているのに
反しアセチルグルタミン馴化株では0から8■/m l
と増加し、グルタミン酸馴化株では0から21■/m 
lと増加していた。
Table 2 Parent strain -4mM O, 2mM O,013-Also, the change in glutamine in the medium after 7 days of culture was
3 JLg/ml decreased to 109 g/ml, whereas the acetylglutamine-acclimated strain decreased from 0 to 8 JLg/ml.
and increased from 0 to 21 μ/m in glutamate-acclimated strains.
It was increasing to l.

実施例4 親株であるKJM−1株とグルタミン非要求株の代謝、
生合成経路について培養後の培養上清のアミノ酸分析を
行って比較した。
Example 4 Metabolism of parent strain KJM-1 strain and glutamine non-requiring strain,
The biosynthetic pathway was compared by amino acid analysis of the culture supernatant after culturing.

培養培地として親株には、実施例1の培地、馴化株には
それぞれ、グルタミンの代わりにアセチルグルタミンお
よびグルタミン酸を添加した培地を用いた。
As culture media, the medium of Example 1 was used for the parent strain, and the medium to which acetylglutamine and glutamic acid were added instead of glutamine was used for the conditioned strain, respectively.

その結果、グルタミンおよびグルタミン酸以外に、KJ
M−1株ではアルギニンは、あまり消費されずオルニチ
ン、シトルリンの生産はないが、グルタミン不含アセチ
ルグルタミンおよびグルタミン酸添加培地生育株では、
いずれもアルギニンを消費し、オルニチン、シトルリン
を合成する能力が付与されていた。生成するアルギニン
、オルニチン、シトルリンの量を第3表に示す。
As a result, in addition to glutamine and glutamic acid, KJ
In the M-1 strain, arginine is not consumed much and there is no production of ornithine or citrulline, but in the strain grown in a medium containing glutamine-free acetylglutamine and glutamic acid,
Both were endowed with the ability to consume arginine and synthesize ornithine and citrulline. Table 3 shows the amounts of arginine, ornithine, and citrulline produced.

第   3   表 親株  223  0   0 グルタミン酸   0     92      51
馴化株 アセチルグル  21     75     65タ
ミン馴化株 (培養7日後の培地中のアミノ酸) 発明の効果 本発明によれば、グルタミンを含まない無血清培地にお
いて増猜できる新規ヒトリンパ芽球細胞が供給される。
Table 3 Parent strain 223 0 0 Glutamic acid 0 92 51
Acclimated Strain Acetylglu 21 75 65 Tamine-adapted Strain (Amino acids in medium after 7 days of culture) Effects of the Invention According to the present invention, novel human lymphoblastoid cells that can be expanded in a serum-free medium that does not contain glutamine are provided.

特許出願人 (114)工業技術院長 板  塚  幸  三Patent applicant (114) Director of the Agency of Industrial Science and Technology Sachi Itadzuka

Claims (4)

【特許請求の範囲】[Claims] (1)グルタミンを含まず、グルタミン酸および/また
はアセチルグルタミンを含む無血清培地に増殖できる新
規ヒトリンパ芽球細胞。
(1) Novel human lymphoblastoid cells that do not contain glutamine and can grow in a serum-free medium containing glutamic acid and/or acetylglutamine.
(2)無血清培地がRPMI−1640、イーグルME
M、ダルベッコウMEM、ハムF10、ハムF12、D
M160、およびDM170から選ばれる基礎培地に、
インスリン、トランスフェリン、亜セレン酸、ピルビン
酸、ヘペス緩衝液、ペニシリン、ストレプトマイシン、
ガラクトース、ペポールB−188、ジメチル−α−ま
たはβ−シクロデキストリンおよび低分子ゼラチン(M
W、約10,000)から選ばれた1種類以上を添加し
た培地であることを特徴とする特許請求の範囲第1項記
載の細胞。
(2) Serum-free medium is RPMI-1640, Eagle ME
M, Dulbecco MEM, Ham F10, Ham F12, D
A basal medium selected from M160 and DM170,
Insulin, transferrin, selenite, pyruvate, hepes buffer, penicillin, streptomycin,
Galactose, Pepol B-188, dimethyl-α- or β-cyclodextrin and low molecular weight gelatin (M
10. The cell according to claim 1, characterized in that the medium is supplemented with one or more types selected from the group consisting of: W, about 10,000).
(3)グルタミンを含有しない培地では増殖しないヒト
リンパ芽球細胞をグルタミン酸またはグルタミン酸とア
セチルグルタミンとを含む培地に馴化させることにより
グルタミンを含まず、グルタミン酸および/またはアセ
チルグルタミンを含む無血清培地に増殖できるヒトリン
パ芽球細胞を調製する方法。
(3) By acclimatizing human lymphoblastoid cells, which do not proliferate in a medium containing glutamine, to a medium containing glutamic acid or glutamic acid and acetylglutamine, they can proliferate in a serum-free medium that does not contain glutamine but contains glutamic acid and/or acetylglutamine. Method of preparing human lymphoblastoid cells.
(4)無血清培地がRPMI−1640、イーグルME
M、ダルベッコウMEM、ハムF10、ハムF12、D
M160、およびDM170から選ばれる基礎培地に、
インスリン、トランスフェリン、亜セレン酸、ピルビン
酸、ヘペス緩衝液、ペニシリン、ストレプトマイシン、
ガラクトース、ペポールB−188、ジメチル−α−ま
たはβ−シクロデキストリンおよび、低分子ゼラチン(
MW、約10,000)から選ばれた1種類以上を添加
した培地であることを特徴とする特許請求の範囲第3項
記載の方法。
(4) Serum-free medium is RPMI-1640, Eagle ME
M, Dulbecco MEM, Ham F10, Ham F12, D
A basal medium selected from M160 and DM170,
Insulin, transferrin, selenite, pyruvate, hepes buffer, penicillin, streptomycin,
Galactose, Pepol B-188, dimethyl-α- or β-cyclodextrin, and low-molecular-weight gelatin (
4. The method according to claim 3, wherein the medium is supplemented with one or more types selected from the following: MW of about 10,000).
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