JPS63188699A - Cell growth promoting substance extracted from bovine mamma, extraction thereof and inactivation treatment of virus - Google Patents

Cell growth promoting substance extracted from bovine mamma, extraction thereof and inactivation treatment of virus

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JPS63188699A
JPS63188699A JP62019085A JP1908587A JPS63188699A JP S63188699 A JPS63188699 A JP S63188699A JP 62019085 A JP62019085 A JP 62019085A JP 1908587 A JP1908587 A JP 1908587A JP S63188699 A JPS63188699 A JP S63188699A
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Japan
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cell growth
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ammonium sulfate
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JP62019085A
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Japanese (ja)
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Yoshitaka Ando
安藤 義隆
Yutaka Ando
裕 安藤
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Ichimaru Pharcos Co Ltd
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Ichimaru Pharcos Co Ltd
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Abstract

NEW MATERIAL:A cell growth promoting substance which is a water-soluble protein, extracted from a bovine mamma and having 55,000 and 9,900 estimated molecular weights as well as about 6.0-6.5 and 7.0-7.5 isoelectric points thereof for the former and latter. USE:A hepatotonic agent, drug for gastric and duodenal ulcer, damage reparative agent and culture medium additive. PREPARATION:For example, a bovine mamma is finely cut and homogenized at a low temperature. Water or sodium chloride solution, etc., is added to allow the homogenate to stand for 6hr-a whole day and night. The homogenate is then centrifuged to separate and collect the obtained supernatant liquid. Ammonium sulfate is subsequently added to the supernatant liquid so as to provide 40% saturated concentration and centrifugation is carried out to separate and collect the resultant supernatant liquid. Ammonium sulfate is then added to the supernatant liquid so as to provide 60% saturated concentration. Formed precipitates are then purified by gel filtration and ion exchange chromatography is combination and heat-treated at 60 deg.C for 10hr to carry out inactivation of viruses and afford the aimed cell growth promoting substance.

Description

【発明の詳細な説明】 〔イ〕 発明の目的 本発明は、牛の乳房から抽出きれた、新規な水溶性蛋白
質ζ及びその抽出法、並びにウィルス不活化処理法に関
する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [A] Object of the Invention The present invention relates to a novel water-soluble protein ζ extracted from cow udder, a method for its extraction, and a virus inactivation treatment method.

(産業上の利用分野) 本発明による新規な水溶性蛋白質は、分子量が55.0
00と9,900にあり、細胞代謝活性化作用が顕著で
ある。すなわち、本発明による水溶性蛋白質は、!I維
芽細胞の増殖と伸展を促進する。よって、本発明による
新規な水溶性蛋白質は、例えば、人又は動物用医薬品と
して、強肝剤、胃、十二指腸潰瘍剤、喝傷修復剤等に直
接又は配合剤として利用できる。又、外用剤として、あ
るいは化粧品などにも、直接、又は配合して用いること
が出来る。又、組織培養に於ける培地添加剤としても有
用である。
(Field of Industrial Application) The novel water-soluble protein according to the present invention has a molecular weight of 55.0.
00 and 9,900, and the effect of activating cell metabolism is remarkable. That is, the water-soluble protein according to the present invention is! I Promotes proliferation and expansion of fibroblasts. Therefore, the novel water-soluble protein according to the present invention can be used directly or as a combination agent, for example, as a human or veterinary drug, such as a liver tonic, a gastric or duodenal ulcer agent, or a wound repair agent. It can also be used directly or in combination as an external preparation or in cosmetics. It is also useful as a medium additive in tissue culture.

(従来の技術) 各種基原(動物種yA)の臓器を出発原料となし、これ
により各種の抽出法を採用して得られるそのエキス、又
はその有効成分を分離して、動物の医薬品や、化粧品に
用いることは古くから知られている。
(Prior art) Organs of various primitive species (animal species) are used as starting materials, and their extracts obtained by employing various extraction methods or their active ingredients are separated to produce animal medicines, It has been known for a long time to be used in cosmetics.

しかし、乳房からの細胞増殖促進作用物質について、そ
の応用や抽出法については、他に例が見当らない、そこ
で、さらに調査してみると、例えば、ミルク由来の成長
因子について、K、 lagsbrunは、ヒト母乳中
の、分子量14.000〜18,000、等電点4,4
〜4.7のペプチドを報告している( K、 lags
brun、 M:Proc、 Natl、 Ac1d、
 sci、 75.5057〜5061.1978) 
、又、Carpenterは、母乳中の主な細胞成長因
子は分子量6.000.等電点4.5のEGFであると
報告している( Carpentar、 G。
However, there are no other examples of the application or extraction method for cell proliferation-promoting substances from the breast.Therefore, upon further investigation, K. lagsbrun found that, for example, regarding milk-derived growth factors, Molecular weight 14,000-18,000, isoelectric point 4,4 in human breast milk
reported ~4.7 peptides (K, lags
brun, M:Proc, Natl, Ac1d,
sci, 75.5057-5061.1978)
, Carpenter also states that the main cell growth factor in breast milk has a molecular weight of 6.000. reported that EGF has an isoelectric point of 4.5 (Carpentar, G.

5cience、210.198=199,1980)
−一方、近年、ウシの脳やウシの脳下垂体より、線維芽
細胞成長因子(分子量13.300±1.200、等電
点9,6)がGospdarowie Z(Natur
e+249、123−127.1974 )によって分
l1mきれている。
5science, 210.198=199,1980)
-On the other hand, in recent years, fibroblast growth factor (molecular weight 13.300±1.200, isoelectric point 9.6) has been found in the bovine brain and bovine pituitary gland.
e+249, 123-127.1974).

(発明が解決しようとする問題点) 本発明者らは、乳汁(ミルク)抽出物に関する前記の組
織代謝賦活作用、又は組織再生修復能に注目すると共に
、それらが動物の医薬品、又は化粧品に用いられること
を考慮し、株化された細胞でない、初代培養細胞に対す
る作用を指標として、推定分子量がs s、o o o
と9,900で、等電点が前者は6.0〜6.5、後者
は7.0〜7.5付近である蛋白を分離することに成功
した。
(Problems to be Solved by the Invention) The present inventors have focused on the above-mentioned tissue metabolism activation effect or tissue regeneration and repair ability of milk extracts, and have discovered that they can be used in animal medicines or cosmetics. In consideration of the fact that
and 9,900, and succeeded in separating proteins whose isoelectric points are around 6.0 to 6.5 for the former and 7.0 to 7.5 for the latter.

(細胞増殖促進作用の測定等に関する注解)細胞増殖促
進作用を表現する方法は、今日一般に知られている成長
因子でも、的確に効力を表現する方法はなかった。
(Comments regarding measurement of cell proliferation-promoting effect, etc.) There was no method to accurately express cell proliferation-promoting effect, even for growth factors that are generally known today.

本発明者らは、対照の細胞増殖率をゼロに制御すること
により、目的物質の細胞増殖促進作用を定量的に表現す
る方法を開発した。これは、添加する牛胎児血清(FB
S)の量を調節することにより達成した。
The present inventors have developed a method for quantitatively expressing the cell proliferation-promoting effect of a target substance by controlling the cell proliferation rate of a control to zero. This is the fetal bovine serum (FB) to be added.
This was achieved by adjusting the amount of S).

一方、本発明者らは、作用物質の細胞増殖促進作用を、
さまざtの株細胞で検討してきたが、それらは、形態、
機能、及び遺伝子的にも正常細胞とは異なると移れてい
る。
On the other hand, the present inventors have determined that the cell proliferation promoting effect of the active substance is
We have investigated various T cell lines, but they have different morphology,
They are functionally and genetically different from normal cells.

そこで、ここでは、正常皮膚から分離した、初代細胞で
検討することとした。以下にその方法を述べる。
Therefore, here we decided to conduct an investigation using primary cells isolated from normal skin. The method is described below.

皮膚の主な細胞には、表皮細胞(ケラチノサイト)、1
11維芽細胞があるが、例えば、モルモット(ハートレ
ー系)から採取した線維芽細胞は、5%FBSを添加し
たイーグルのMEM培地中で、盛んに分裂増殖し、その
倍数増殖時間は第1図に示すごとく、約48時間である
The main cells of the skin include epidermal cells (keratinocytes), 1
For example, fibroblasts collected from guinea pigs (Hartley strain) actively divide and proliferate in Eagle's MEM medium supplemented with 5% FBS, and their multiple proliferation time is shown in Figure 1. As shown in , it takes about 48 hours.

細胞増殖率の測定法は、まず、直径3.5cmのベトリ
ディッシュ(フーニング社製)に、1−当り4〜s x
 1o’を個の細胞を植え、低濃度のFBSを添加した
、イーグルのMEM培地を2〜3日目ごとに交換する。
To measure the cell proliferation rate, first, add 4 to s
Cells are seeded at 1o' and the Eagle's MEM medium supplemented with low concentration of FBS is changed every 2-3 days.

細胞数は、2〜3日目ごとにビュルケルチュルクの血球
計算盤を用いて測定する。
Cell counts are determined every 2-3 days using a Bürkertürk hemocytometer.

目的物質は蛋白量にてm整し、培地当り10分の1の量
を、培地交換のつど添加し、対照(コントロール)には
、同量の生理食塩水のみを添加する。
The target substance was adjusted in terms of protein content, and one-tenth the amount per medium was added each time the medium was replaced, and as a control, only the same amount of physiological saline was added.

〔口〕 発明の構成 本発明は、牛の乳房から抽出した水溶性蛋白質の分子量
が、55.000と9,900である、細胞増殖促進物
質と、その抽出法、さらにその抽出操作の過程で、硫酸
アンモニウムの80%飽和濃度で沈殿する沈殿物を60
’C,10時間加熱処理することを特徴とする、水溶性
蛋白質のウィルス不活化処理法にある。
[Mouth] Structure of the Invention The present invention provides a cell growth promoting substance, which is a water-soluble protein extracted from a cow's udder and has a molecular weight of 55,000 and 9,900, an extraction method thereof, and a process of the extraction operation. , 60% precipitate precipitates at 80% saturation concentration of ammonium sulfate.
'C. A method for virus inactivation of water-soluble proteins, which is characterized by heat treatment for 10 hours.

(問題点を解決するための手段) 本発明の要旨は、前記したごとくであるが、より具体的
に示すために、以下に実施例及び作用について述べる。
(Means for Solving the Problems) The gist of the present invention is as described above, but in order to show it more specifically, examples and effects will be described below.

尚、実施例を示すに当り、本発明による基本的な要点を
示すと次のごとくである。
Incidentally, in presenting the embodiments, the basic points according to the present invention are as follows.

(イ  〕 抽出法における出発原料は、牛の乳5を用いる。又、必
要によっては、豚などの畜産動物類の乳房を用いること
も出来るが、それは、用いる対象となる動物種の、治療
又は医薬的な用途、化粧料等々の用途に応じて選択すれ
ば良い。
(B) The starting material for the extraction method is cow's milk5.Also, if necessary, the udder of livestock animals such as pigs can be used, but this is not suitable for the treatment or treatment of the target animal species. It may be selected depending on the use such as pharmaceutical use, cosmetics, etc.

(ロ) 実施例では、特定した抽出条件下で、最も簡易な方法を
示すも、その抽出工程における操作のポイントは、熱を
加えないこと、有機溶媒による抽出操作は避けること0
強酸、強アルカリ分解、各種の蛋白分解酵素を用いない
ことが必要である。
(b) In the examples, the simplest method is shown under the specified extraction conditions, but the key points in the extraction process are not to apply heat and to avoid extraction operations using organic solvents.
It is necessary not to use strong acids, strong alkaline decomposition, or various proteolytic enzymes.

すなわち、これらの処理操作は、目的物質の活性を失活
きせるからである。これにしたがえば、遠心分離法、塩
析分画法、ゲル濾過法、凍結乾燥法などの、従来の生体
成分を抽出する、さまざまの組み合わせの方法によって
得ることが出来る。
That is, these processing operations deactivate the activity of the target substance. According to this, it can be obtained by various combinations of conventional methods for extracting biological components, such as centrifugation, salting-out fractionation, gel filtration, and freeze-drying.

[実施例−1] 牛の乳房を洗浄の前処理なしに細切し、低温下にてホモ
ジナイザー等でホモジナイズする。これに対して、水又
は塩化ナトリウム溶液、又は、第1表に示すごとくの公
知な緩衝液を添加して攪拌し、6時間〜一昼夜放置した
後、遠心分離して上清液を得る0次に、この上清液に対
して40%飽和の濃度になるように、硫酸アンモニウム
を添加後、遠心分離して、その上清液を採取し、次に、
この゛上清液に対して、80%飽和の濃度になるように
、再び硫酸アンモニウムを添加し、遠心分離して沈殿物
を回収する。    ゛ 沈殿物は、少量の水、又は生理食塩水等に溶解した後、
脱塩操作を行う。
[Example-1] Cow's udder is cut into small pieces without pretreatment of washing, and homogenized using a homogenizer or the like at low temperature. To this, water, sodium chloride solution, or a known buffer solution as shown in Table 1 is added, stirred, left for 6 hours to overnight, and then centrifuged to obtain a supernatant. After adding ammonium sulfate to the supernatant to a concentration of 40% saturation, centrifugation was performed to collect the supernatant, and then,
To this supernatant, ammonium sulfate is added again to a concentration of 80% saturation, and the precipitate is recovered by centrifugation.゛After dissolving the precipitate in a small amount of water or physiological saline,
Perform desalting operation.

脱塩操作には、ゲル濾過、限外濾過、透析などの方法が
あるが、そのいづれの方法を採用しても良い、ここでは
、例えば透析チューブに入れて、充分量の生理食塩水等
に、一昼夜以上透析する方法により、牛の乳房を出発原
料とする、55.000と9,900の分子量を有する
、水溶性蛋白質を含む液体を得た。
Desalination operations include gel filtration, ultrafiltration, and dialysis, and any of these methods may be used. A liquid containing water-soluble protein having a molecular weight of 55,000 and 9,900, which was made from cow udder as a starting material, was obtained by dialysis for more than one day and one night.

〔実施例−2] 実施例−1で得られた上述の抽出物は、その用途を考慮
するとき、ウィルスの不活化について、充分な配慮が必
要である0例えば、肝炎ウィルスを不活化するには、6
0℃、10時間の加熱処理が有効とされている。実施例
−1で得られた液体を、60℃、10時間の加熱処理を
行ったところ、細胞増殖促進作用が、100%失活する
ことがわかった。
[Example-2] When considering the use of the above-mentioned extract obtained in Example-1, sufficient consideration must be given to the inactivation of viruses. For example, in order to inactivate hepatitis viruses, 6
Heat treatment at 0° C. for 10 hours is said to be effective. When the liquid obtained in Example 1 was heat-treated at 60° C. for 10 hours, it was found that the cell proliferation promoting effect was 100% inactivated.

そこで本発明者らは、本物質の有する、細胞増殖促進作
用が持続し、ウィルスのみ不活化するための手段として
、長時間の高熱処理に対する、安定化法について検討し
た。
Therefore, the present inventors investigated a stabilization method against long-term high heat treatment as a means to maintain the cell growth promoting effect of this substance and to inactivate only the virus.

その手段として、例えばグルコース、マンノース等の単
糖類、ショ糖、マルトース等の2W類などを添加して加
熱処理を行い、検討を加えたが、同様に失活することが
わかった1本発明者らは、溶解した状態では、目的物質
である蛋白の、高次構造に不可逆的な変性をきたし、こ
れによって失活したと考えると共に、これに対する手段
として、次に高濃度塩類溶液中等で、沈殿させた状態−
c’m熱することによって、変性を抑制することが可能
ではないかとの発想のもとに、実施例−3で示すごとく
の新規な加熱処理方法を完成した。
As a means for this purpose, for example, monosaccharides such as glucose and mannose, 2Ws such as sucrose and maltose, etc. were added and heat treatment was performed, and studies were conducted, but it was found that they were similarly inactivated. They believe that in a dissolved state, the target substance, the protein, undergoes irreversible denaturation of its higher-order structure, resulting in its inactivation. state-
Based on the idea that it is possible to suppress denaturation by heating for 30 minutes, a novel heat treatment method as shown in Example 3 was completed.

[実施例−3] 実施例−1の工程中で、80%飽和の濃度になるように
、再び硫酸アンモニウムを添加し、遠心分離して回収し
たところの沈殿物か、実施例−1で得られた液体を凍結
乾燥し、これを80%硫酸アンモニウム飽和溶液に懸濁
したもの、又はその沈殿物を分取し、60℃、10時間
の加熱処理を施した。
[Example-3] During the process of Example-1, ammonium sulfate was added again to a concentration of 80% saturation, and the precipitate was collected by centrifugation or the precipitate obtained in Example-1. The resulting liquid was freeze-dried, suspended in an 80% ammonium sulfate saturated solution, or its precipitate was collected and heat-treated at 60° C. for 10 hours.

この方法によれば、ウィルスの不活化がなると共に、細
胞に対する増殖促進作用が、80〜90%残存すること
がわかった。
According to this method, it was found that the virus was inactivated and 80 to 90% of the growth promoting effect on cells remained.

尚、実施例−3によれば、60℃、10時間を前提に行
ったときのものであるが、この温度と時間の関係につい
ては、特にこだわることはなく、例えば、目的とするウ
ィルスにより、処理時間を変えたり、温度は、さらに高
くすることにより、処理時間を短縮することも出来る。
In addition, according to Example 3, the test was conducted under the assumption that the temperature was 60°C for 10 hours, but there is no particular concern about the relationship between this temperature and time, and for example, depending on the target virus, The processing time can also be shortened by changing the processing time or increasing the temperature.

[実施例−4] ここで前記実施例−1又は3で得られた蛋白質は、本発
明が目的とする、細胞に対して直接代謝活性化作用を有
する抽出物であり、そのまま、従来から知られている、
各種の動物由来の抽出エキスの利用分野に用いることが
出来る。しかし、きらに必要によっては、ゲル濾過、イ
オンクロマト等を組み合わせ、分画することによって精
製する。
[Example 4] Here, the protein obtained in Example 1 or 3 is an extract that has a direct metabolic activation effect on cells, which is the object of the present invention, and as it is, it can be used as is. being given,
It can be used in the field of application of extracts derived from various animals. However, if necessary, it may be purified by fractionation using a combination of gel filtration, ion chromatography, etc.

ゲル濾過に用いられる担体としては、セファデックス、
アガロース、セファクリル等があげられるが、例えばセ
ファクリルを例にして示せば、次のごとくの処理操作に
よって、牛の乳房から得られた、水溶性蛋白質について
分画することが出来る。
Carriers used for gel filtration include Sephadex,
Agarose, Sephacryl, etc. can be mentioned, and using Sephacryl as an example, water-soluble proteins obtained from cow udder can be fractionated by the following processing operations.

〔1〕櫃脂:セファクリル S−200スーパーフアイ
ン カラムサイズ:26X9561111 溶媒: O,1M−0,05N )リス塩酸バッファー
PH8,0 流速: 3 、3 m / an ”/ h上記〔1〕
によって得られた活性フラクションを、さらにイオン交
換樹脂によって分画する。イオン交換に用いられる担体
としては、セファデックス、セファロース、セファクリ
ル等の陽、陰イオン交換体等があげられるが、例えばD
EAE−セファロースCL−6Bを例にして分画する。
[1] Oil: Sephacryl S-200 Super Fine Column size: 26X9561111 Solvent: O, 1M-0,05N) Lith-hydrochloric acid buffer PH 8,0 Flow rate: 3,3 m/an''/h Above [1]
The active fraction obtained is further fractionated using an ion exchange resin. Examples of carriers used for ion exchange include cationic and anionic exchangers such as Sephadex, Sepharose, and Sephacryl.
Fractionation is carried out using EAE-Sepharose CL-6B as an example.

〔2〕櫃脂: DEAE−セファロースCL−6B溶媒
: O,1M−0,05N トリス塩酸バッファーPH
8,0 溶出条件:NaC1濃度 0−0.3M上記〔2〕によ
って得られた2つの活性フラクションを、さらにセファ
クリルS−200でゲル濾過し、これによって得られる
活性フラクシヨンを分取して、分子量55.000及び
9,900の水溶性蛋白質を得る。又、き′らにこの精
製化法においては、実施例1によって得られるものでは
、肝炎ウィルスは不活化されていないので、ここで得ら
れた分子量s s、o o oと9,900の水溶性蛋
白質に対しては、80%硫酸アンモニウム飽和溶液中に
入れて沈殿させ、この沈殿物を加熱処理することによっ
て、ウィルスは不活化出来ると共に、目的となす、細胞
代謝活性化作用は、安定に保持される。
[2] Fat: DEAE-Sepharose CL-6B Solvent: O,1M-0,05N Tris-HCl buffer PH
8,0 Elution conditions: NaCl concentration 0-0.3M The two active fractions obtained in [2] above were further gel-filtered with Sephacryl S-200, the active fractions obtained thereby were fractionated, and the molecular weight 55,000 and 9,900 soluble proteins are obtained. Furthermore, in this purification method, the hepatitis virus was not inactivated in the one obtained in Example 1, so the molecular weight s s, o o o obtained here and the aqueous solubility of 9,900 Viruses can be inactivated and the desired cellular metabolic activation effect can be stably maintained by precipitating the biological proteins in an 80% ammonium sulfate saturated solution and heating the precipitate. be done.

r第1表、 実施例1で用いることの出来る主な緩衝液
と、精製化(実施例4)で用いるイオン交換体の使用関
係〔ハ〕 発明の効果 本発明は、牛の乳房から得られた、新規な水溶性の蛋白
質にある。そして、この蛋白質は、直接に細胞の代謝活
性化作用が高いことにある。
Table 1: Relationship between main buffers that can be used in Example 1 and ion exchangers used in purification (Example 4) In addition, it is a new water-soluble protein. This protein has a high direct metabolic activation effect on cells.

従来の公知な抽出エキス、又は抽出物質は、その工程中
で、有機溶媒、強酸、強アルカリ、蛋白分解酵素が用い
られてきたが、その結果は、これらの薬剤によって、用
いた出発原料である臓器中に含まれる、細胞増殖作用物
質は、失活されてしまい、活性を示きないエキス、ある
いは抽出物となっていたわけである。もちろん、加熱処
理によっても、失活されてしまっていた。
Conventionally known extraction extracts or extracted substances have used organic solvents, strong acids, strong alkalis, and proteolytic enzymes in the process, but the results have been determined by these agents and the starting materials used. The cell growth-active substances contained in the organ were deactivated and turned into inactive extracts. Of course, it was also deactivated by heat treatment.

【図面の簡単な説明】 第1図は、本発明において用いた細胞の5%FBS濃度
における増殖曲線を示したものである。 第2図は、本発明に係る牛の乳房から抽出された、分子
量が55,000の水溶性蛋白の細胞増殖促進作用を示
したものである。 第3図は、本発明に係る牛の乳房から抽出された、分子
量が9,900の水溶性蛋白の細胞増殖促進作用を示し
たものである。 第2〜3図中、イは添加量1μs / mjlにおける
増殖曲線、口は添加量0.1μg/−における増殖曲線
、ハは対照群の増殖曲線である。 第4図は、DEAE−セファロースCL−6Bによる溶
出曲線である。 第5図は、ブルーデキストラン:図中A1及び牛血清ア
ルブミン(分子量67.000 ’) :図中B1α−
キモトリプシノーゲンA(分子量25゜000):図中
Cをマーカー蛋白質として、セファクリルS−200ス
ーパーフアインヲ用いて、ゲル濾過した溶出曲線。 第6図は、第5図に示した溶出曲線に対応する蛋白の、
分子量とKav値による標準曲線を示したものである。 第7.8図は、牛の乳房から抽出きれた水溶性蛋白質の
、DEAE−セファロースCL−6Bで分画された2つ
の活性フラクションの、セファクリルS−200スーパ
ーフアインを用いた、ゲル濾過による、溶出曲線である
BRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS FIG. 1 shows the growth curve of cells used in the present invention at a concentration of 5% FBS. FIG. 2 shows the cell proliferation promoting effect of the water-soluble protein with a molecular weight of 55,000 extracted from cow udder according to the present invention. FIG. 3 shows the cell proliferation promoting effect of the water-soluble protein with a molecular weight of 9,900 extracted from cow udder according to the present invention. In Figures 2 and 3, A is the growth curve at an addition amount of 1 μs/mjl, A is a growth curve at an addition amount of 0.1 μg/−, and C is a growth curve of the control group. FIG. 4 is an elution curve with DEAE-Sepharose CL-6B. Figure 5 shows blue dextran: A1 in the figure and bovine serum albumin (molecular weight 67.000'): B1α- in the figure.
Chymotrypsinogen A (molecular weight 25°000): Elution curve obtained by gel filtration using Sephacryl S-200 Super Fine with C in the figure as a marker protein. Figure 6 shows the elution curve of the protein corresponding to the elution curve shown in Figure 5.
This shows a standard curve based on molecular weight and Kav value. Figure 7.8 shows gel filtration of two active fractions of water-soluble proteins extracted from cow udders, fractionated with DEAE-Sepharose CL-6B, using Sephacryl S-200 superfine. , is the elution curve.

Claims (3)

【特許請求の範囲】[Claims] (1) 牛の乳房から抽出された水溶性蛋白質の、推定分子量が
55,000と9,900にあり、その等電点が前者は
6.0〜6.5、後者は7.0〜7.5付近であること
を特徴とする、細胞増殖促進物質。
(1) The estimated molecular weights of water-soluble proteins extracted from cow udders are 55,000 and 9,900, and their isoelectric points are 6.0-6.5 for the former and 7.0-7 for the latter. A cell growth-promoting substance characterized by having a value around .5.
(2) 出発原料は牛の乳房を用い、これを細切し、低温下でホ
モジネートした後、水又は塩化ナトリウム溶液又は、各
種公知な緩衝液を添加して、6時間〜一昼夜放置した後
、遠心分離して得られる上清液を分取し、次に上清液に
対して40%飽和の濃度になるように、硫酸アンモニウ
ムを添加し、遠心分離して得られる上清液を分取し、さ
らに上清液に対して、80%飽和の濃度になるように、
硫酸アンモニウムを添加し、これによって沈殿する沈殿
物を、ゲル濾過、イオン交換クロマトを組み合わせるこ
とによって精製された水溶性蛋白質の推定分子量が、5
5,000と9,900であり、等電点が前者は6.0
〜6.5を後者は7.0〜7.5付近にあることを特徴
とする、特許請求の範囲第1項に記載の、細胞増殖促進
物質の製造法。
(2) The starting material is cow's udder, which is cut into small pieces, homogenized at low temperature, water, sodium chloride solution, or various known buffers are added, and the mixture is left for 6 hours to overnight. Collect the supernatant obtained by centrifugation, then add ammonium sulfate to a concentration of 40% saturation with respect to the supernatant, and collect the supernatant obtained by centrifugation. , further to the supernatant solution to a concentration of 80% saturation,
The estimated molecular weight of the water-soluble protein purified by adding ammonium sulfate and precipitating the precipitate by combining gel filtration and ion exchange chromatography was 5.
5,000 and 9,900, and the isoelectric point of the former is 6.0.
6.5, and the latter is around 7.0 to 7.5, the method for producing a cell growth promoting substance according to claim 1.
(3) 出発原料は牛の乳房を用い、これを細切し、低温下でホ
モジネートした後、水又は塩化ナトリウム溶液又は、各
種公知な緩衝液を添加して、6時間〜一昼夜放置した後
、遠心分離して得られる上清液を分取し、次に上清液に
対して40%飽和の濃度になるように、硫酸アンモニウ
ムを添加し、遠心分離して得られる上清液を分取し、さ
らに上清液に対して、80%飽和の濃度になるように、
硫酸アンモニウムを添加し、これによって沈殿する沈殿
物を、60℃、10時間加熱処理するか、又は沈殿物を
さらにゲル濾過、イオン交換クロマトを組み合わせるこ
とによって精製されたところの水溶性蛋白質を、硫酸ア
ンモニウムの80%飽和の濃度にした溶液中に加えて沈
殿させ、この沈殿物を60℃、10時間加熱処理するこ
とにを特徴とする、特許請求の範囲第1項記載の、細胞
増殖促進物質の活性が安定な、ウィルス不活化処理法。
(3) The starting material is cow's udder, which is cut into small pieces, homogenized at low temperature, water, sodium chloride solution, or various known buffers are added, and the mixture is left for 6 hours to overnight. Collect the supernatant obtained by centrifugation, then add ammonium sulfate to a concentration of 40% saturation with respect to the supernatant, and collect the supernatant obtained by centrifugation. , further to the supernatant solution to a concentration of 80% saturation,
Ammonium sulfate is added and the resulting precipitate is heated at 60°C for 10 hours, or the precipitate is further purified by a combination of gel filtration and ion exchange chromatography. The activity of the cell growth promoting substance according to claim 1, characterized in that it is added to a solution at a concentration of 80% saturation to precipitate it, and the precipitate is heat-treated at 60° C. for 10 hours. A stable virus inactivation treatment method.
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2001503386A (en) * 1996-07-30 2001-03-13 ディーシーヴィー インコーポレイテッド How to treat gastrointestinal damage

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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2001503386A (en) * 1996-07-30 2001-03-13 ディーシーヴィー インコーポレイテッド How to treat gastrointestinal damage

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