JPS6296083A - Culture of antimal cell - Google Patents

Culture of antimal cell

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JPS6296083A
JPS6296083A JP60234871A JP23487185A JPS6296083A JP S6296083 A JPS6296083 A JP S6296083A JP 60234871 A JP60234871 A JP 60234871A JP 23487185 A JP23487185 A JP 23487185A JP S6296083 A JPS6296083 A JP S6296083A
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JP
Japan
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culture
cells
interferon
medium
liquid
Prior art date
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Pending
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JP60234871A
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Japanese (ja)
Inventor
Michiharu Shioda
塩田 道治
Toru Yamazaki
徹 山崎
Akiyoshi Nojiri
野尻 昭義
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Toray Industries Inc
Original Assignee
Toray Industries Inc
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  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

PURPOSE:To keep the pH of a culture liquid at a prescribed level with simple procedure and to enable the mass culture of animal cell in high efficiency, by using a culture liquid containing NaHCO3 at a concentration above a specific level and blasting CO2 gas into the medium to control the pH at a prescribed level. CONSTITUTION:An animal cell is cultured in a culture liquid containing >3.0g/L of NaHCO3 while blasting CO2 gas in the liquid to control the pH of the liquid to 7.0-7.5. The pH of the culture liquid can be controlled to the above level suitable for the culture of animal cell simply by blasting CO2 gas into the liquid. An interferon having high titer can be produced by applying the above process to the cell for producing interferon.

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、動物細胞の培養方法に関するものである。[Detailed description of the invention] [Industrial application field] The present invention relates to a method for culturing animal cells.

〔従来の技術〕[Conventional technology]

動物細胞培養は、細胞が生体内で作り出す有用物、例え
ばワクチン、ウロキナーゼ、インターフェロン等を人工
的に生産するための手段として注口されている。
Animal cell culture is used as a means for artificially producing useful substances that cells produce in vivo, such as vaccines, urokinase, and interferon.

動物細胞培養法としては、係留依存性細胞の場合、ルー
瓶もしくはローラ瓶を用いる培養方法が知られているが
、この方法により大量の係留依存性細胞を培養すること
はかなり困難と考えられている。
As an animal cell culture method, in the case of tether-dependent cells, a culture method using a Lou bottle or a roller bottle is known, but it is considered to be quite difficult to culture a large amount of tether-dependent cells using this method. There is.

すなわちこの方法においては、細胞はルー瓶の底面もし
くはローラ瓶の内側面に単層に増殖するだけであるため
大量培養にあたっては極め 。
In other words, in this method, the cells only grow in a single layer on the bottom of the roux bottle or the inner surface of the roller bottle, making it extremely difficult to culture in large quantities.

て多数のルー瓶もしくはローラ瓶を扱う必要があり、取
り扱いが極めて煩雑となり、またpHや培地中溶存酸素
濃度等の培養条件を一定に制御することはほとんど不可
能と考えられるためである。
This is because it is necessary to handle a large number of roux bottles or roller bottles, making handling extremely complicated, and it is considered almost impossible to control culture conditions such as pH and dissolved oxygen concentration in the medium at a constant level.

一方、株化細胞のようなサスペンション培養が可能な細
胞については、タンク培養が多く行われている。
On the other hand, cells that can be cultured in suspension, such as established cell lines, are often cultured in tanks.

しかし、最近係留依存性細胞の大量培養に適したミクロ
キャリアー培養法と称される培養法が開発された。この
培養法は正に荷電した化学的残基を有するミクロキャリ
アー、コラーゲンをコートしたミクロキャリアー、その
他細胞を接着させることができるミクロキャリアーを懸
濁させた培地中に種細胞を接種し、′!:4.濁状態で
培養する方法である。接種された細胞はミクロキャリア
ー表面に付着し、そこで増殖する。
However, recently a culture method called microcarrier culture method suitable for mass culture of tether-dependent cells has been developed. This culture method involves inoculating seed cells into a medium suspended in microcarriers with positively charged chemical residues, collagen-coated microcarriers, or other microcarriers capable of adhering cells. :4. This is a method of culturing in a turbid state. The inoculated cells attach to the microcarrier surface and proliferate there.

動物細胞の培養方法としてタンクを用いたサスペンショ
ン培養は、その取り扱いが容易でありかつ、培養条件を
最適値で制御することも容易であり、従って工業生産規
模にスケールアンプするのに適した培養法といえる。
Suspension culture using a tank as a culture method for animal cells is easy to handle, and it is also easy to control the culture conditions to the optimum value, so it is a culture method suitable for scaling up to industrial production scale. It can be said.

〔発明が解決しようとする問題点〕[Problem that the invention seeks to solve]

動物細胞培養においては、前述のいずれの方法にしても
制御すべき培養条件のうち重要なものの一つとして、培
養液のpHが挙げられる。
In animal cell culture, one of the important culture conditions to be controlled in any of the above methods is the pH of the culture solution.

動物細胞培養に適した培養液のpHは、だいたい7.0
〜7.5であり、多くの細胞は、pH7,8以上または
pH6,8以下では傷害を受ける。
The pH of the culture solution suitable for animal cell culture is approximately 7.0.
~7.5, and many cells are damaged at pH 7.8 or higher or pH 6.8 or lower.

培養液のpHを制御する一般的な方法としては、重炭酸
ソーダを緩衝剤として炭酸ガスの吹きこみによりpHを
調節する方決が多く用いられている。しかし、この方法
により大量培養を行う場合、培養後半、細胞数が多くな
るに従って培養液のpHが低下し、ついにはpH7,0
〜7.5の範囲に保つことが不可能となる問題点があっ
た。このように炭酸ガスの吹き込みだけで、pHを制御
することが不可能な場合、pHの低下を防ぎpHを一定
に保つために、カセイソーダ水溶液のようなアルカリを
併せて添加する方法も行われるが、装置が複雑となり滅
菌操作が煩雑となること、また制御方法が複雑となるこ
となどの問題点がある。
A commonly used method for controlling the pH of a culture solution is to adjust the pH by blowing in carbon dioxide gas using sodium bicarbonate as a buffer. However, when performing large-scale culture using this method, the pH of the culture solution decreases as the number of cells increases in the latter half of the culture, and finally reaches a pH of 7.0.
There was a problem in that it was impossible to maintain the value within the range of ~7.5. If it is not possible to control the pH by just blowing in carbon dioxide gas, an alkali such as a caustic soda aqueous solution may also be added in order to prevent the pH from dropping and keep the pH constant. However, there are problems in that the device is complicated, the sterilization operation is complicated, and the control method is complicated.

本発明の目的は、かかる問題を解消し、炭酸ガスを吹き
込むだけの制御方法で、培養液のpHを動物細胞培養に
適したpH7,0〜7.5の範囲で一定に保つ動物細胞
培養方法を提供することにある。
The purpose of the present invention is to solve this problem, and to maintain the pH of the culture solution at a constant pH of 7.0 to 7.5, which is suitable for animal cell culture, by simply blowing carbon dioxide into the animal cell culture method. Our goal is to provide the following.

特に、インターフェロン産生を目的とした動物細胞の培
養に適した方法を提供するものである。
In particular, it provides a method suitable for culturing animal cells for the purpose of interferon production.

培養細胞にインターフェロンを産生させる技術としては
、スーパーインダクション法と呼ばれる、インターフェ
ロン誘発剤を用いて細胞を刺激した後、シクロへキシミ
ド、アクチノマイシンDなどの代謝阻害剤で細胞を処理
することによりインターフェロン産生を一層増強せしめ
る方法等が知られている。
The technique for producing interferon in cultured cells is called the superinduction method, in which cells are stimulated with an interferon inducer and then treated with metabolic inhibitors such as cycloheximide and actinomycin D to induce interferon production. There are known methods for further enhancing the

本発明者等は、二倍体細胞等の培養細胞由来のインター
フェロンを大量に産生させる方法として重炭酸ソーダを
緩衝剤とした培地を用いて、上記のミクロキャリアー培
養法ならびにスーパーインダクション法に注目し、かつ
培養中ならびにインターフェロン産生過程の培地中溶存
酸素濃度、温度を最適値に制御し、かつ気相部もしくは
液相部に通気するガス中に炭酸ガスを混入し、pHを7
.0〜7.5の範囲で一定に制御してインターフェロン
を産生させることを試みてきた。しかし、IOL程度以
上の培養槽を用いて、培養を行うに際し重炭酸ソーダを
緩衝剤とし、炭酸ガスの吹き込みによりpHを調整する
培養液を用いる場合、規定量の重炭酸ソーダ(イーグル
MEM培地1.25〜2.2g/I5、ダルベツコ変法
イーグル培地1.0〜1.8g/L、199培地1.3
〜2.2g/L、ハムF12培地1.2〜2.0g/L
、RPM11640培地1.0〜3.0g/L、フィッ
シャー培地1.2〜2.Og/L−−ニソスイ製薬のカ
タログよりm−)の添加では、細胞が増殖するにしたが
って、培養液のpHが低下し、ついには炭酸ガスの吹き
込みをなくしてもpHが低下し動物細胞培養に適したp
H7,0〜7.5が保てなく、そのため高単位のインタ
ーフェロンを産生ずることができず、産生インターフェ
ロン力価に限界があった。
The present inventors have focused on the above-mentioned microcarrier culture method and superinduction method using a medium buffered with sodium bicarbonate as a method for producing large quantities of interferon derived from cultured cells such as diploid cells, and The dissolved oxygen concentration and temperature in the medium during culture and interferon production process are controlled to optimal values, and carbon dioxide gas is mixed into the gas vented to the gas phase or liquid phase to lower the pH to 7.
.. Attempts have been made to produce interferon under constant control within the range of 0 to 7.5. However, when using a culture tank of IOL size or larger and using a culture solution in which sodium bicarbonate is used as a buffer and the pH is adjusted by blowing carbon dioxide gas, it is necessary to use a specified amount of sodium bicarbonate (Eagle MEM medium 1.25 to 2 .2g/I5, Dulbecco's modified Eagle medium 1.0-1.8g/L, 199 medium 1.3
~2.2g/L, Ham F12 medium 1.2-2.0g/L
, RPM11640 medium 1.0-3.0g/L, Fisher medium 1.2-2. With the addition of Og/L (m-) from Nisosui Pharmaceutical's catalogue, as the cells proliferate, the pH of the culture solution decreases, and eventually the pH decreases even if carbon dioxide gas is no longer blown into the animal cell culture. suitable p
H7.0-7.5 could not be maintained, and therefore a high unit of interferon could not be produced, and there was a limit to the titer of interferon produced.

また、pHの低下を防ぎ、pHを一定に保つために、カ
セイソーダ水溶液のようなアルカリを併せて添加する方
法も行われるが、前述のように装置が複雑となり滅菌操
作が煩雑となること、制御方法が複雑となる問題点があ
った。
In addition, in order to prevent a drop in pH and keep the pH constant, a method of adding an alkali such as aqueous caustic soda solution is also used, but as mentioned above, the equipment is complicated and the sterilization operation is complicated, and the control There was a problem that the method was complicated.

本発明の目的は、かかる問題を解消し、炭酸ガスを吹き
込むだけの制御方法で培養液のpHを動物細胞培養に適
したpH7,0〜7.5の範囲で一定に保ち、目的産生
物であるインターフェロンをより高単位で安定して産生
させる効果の顕著な動物細胞培養方法を提供することに
ある。
The purpose of the present invention is to solve this problem, to keep the pH of the culture solution constant in the pH range of 7.0 to 7.5, which is suitable for animal cell culture, by simply blowing carbon dioxide gas, and to produce the desired product. The object of the present invention is to provide an animal cell culture method that is highly effective in stably producing a certain interferon in higher units.

〔問題点を解決するための手段〕[Means for solving problems]

上記本発明の目的は、培養液に3.0g/Lを超える重
炭酸ソーダを添加して、炭酸ガスを吹き込むことにより
達成される。ミクロキャリアー培養法におけるインター
フェロン産生に際しては、ミクロキャリアーによる細胞
培養工程ならびに、産生工程を通してpHを7.0〜7
.5の範囲で一定に保つために培養液に対し重炭酸ソー
ダを3.0g/Lを超える量を添加して、炭酸ガスを吹
き込むことにより達成される。
The above object of the present invention is achieved by adding more than 3.0 g/L of sodium bicarbonate to the culture solution and blowing carbon dioxide gas into it. When producing interferon using the microcarrier culture method, the pH is maintained at 7.0 to 7 throughout the cell culture process using microcarriers and the production process.
.. This is achieved by adding more than 3.0 g/L of sodium bicarbonate to the culture solution and blowing carbon dioxide gas into the culture solution to maintain a constant value within the range of 5.5 g/L.

通常は、3.0g/L〜6.0g/Lの重炭酸ソーダの
添加量で目的は達成される。
Typically, an amount of sodium bicarbonate added of 3.0 g/L to 6.0 g/L will accomplish the purpose.

吹き込む炭酸ガスの量は、重炭酸ソーダの含有量により
異なるが、通常炭酸ガス濃度が20%以下のガスを培養
中に吹き込み、pHを一定範囲にコントロールする。
The amount of carbon dioxide gas blown into the culture varies depending on the content of sodium bicarbonate, but usually gas with a carbon dioxide concentration of 20% or less is blown into the culture to control the pH within a certain range.

次に本発明の具体例である係留依存性細胞の培養および
インターフェロン産生方法について説明する。
Next, a method for culturing tether-dependent cells and producing interferon, which is a specific example of the present invention, will be described.

ミクロキャリアーを培地中に)懸濁し、その中に種細胞
を接種し、ゆるやかに攪拌しながら、培地を適当な溶存
酸素濃度、温度に制御し培養を行う。
Microcarriers (in a medium) are suspended, seed cells are inoculated into the suspension, and the medium is cultured with gentle stirring while controlling the medium to an appropriate dissolved oxygen concentration and temperature.

ミクロキャリアーとしては、多糖類、たとえば、デキス
トラン、デキストリン、澱粉、セルロース、およびこれ
らの置換基誘導体等あるいは、ある種の合成重合体、た
とえば、ポリビニルアルコール、ヒドロキシ置換アクリ
レート又は、メタクリレート、ポリスチレン等よりなる
微小粒状体に適当量のアミン残基を結合させたものなど
が用いられる。
Microcarriers include polysaccharides such as dextran, dextrin, starch, cellulose, and substituent derivatives thereof, or certain synthetic polymers such as polyvinyl alcohol, hydroxy-substituted acrylates or methacrylates, polystyrene, etc. Microparticles to which an appropriate amount of amine residues are bonded are used.

ミクロキャリアー濃度は、ミクロキャリアー材質、培養
すべき細胞の種類により異なるが、培地1mlあたりの
ミクロキャリアー表面積がおよそ10CI+!−100
CII!となるような濃度範囲が好ましい。
The microcarrier concentration varies depending on the microcarrier material and the type of cells to be cultured, but the microcarrier surface area per ml of medium is approximately 10CI+! -100
CII! Preferably, the concentration range is as follows.

培地組成、血清濃度等は、培養すべき細胞の種類、細胞
濃度等に応じて適当に選ばれる。培養中適宜培地交換を
実施し、数日間〜10日間培養を行い、ミクロキャリア
ー表面を細胞がほぼ完全に蓋いつくすまで続ける。
The medium composition, serum concentration, etc. are appropriately selected depending on the type of cells to be cultured, cell concentration, etc. During the culture, the culture medium is changed as appropriate, and the culture is continued for several to 10 days until the surface of the microcarrier is almost completely covered with cells.

増殖した細胞はインターフェロン誘発剤で処理されるに
先たち低単位のインターフェロンと、負に荷電した水溶
性高分子を添加して数時間から1日インキュベートする
ことが好ましい。
Before the proliferated cells are treated with an interferon-inducing agent, it is preferred that a low unit of interferon and a negatively charged water-soluble polymer be added and incubated for several hours to one day.

培養細胞をインターフェロン誘発剤で処理しインターフ
ェロンを産生させる技術としては、天然型もしくは合成
RNA等のインターフェロン誘発剤を用いて細胞を刺激
し、インターフェロンを産生させる方法、カルシウム法
と呼ばれるインターフェロン誘発剤を用いる際もしくは
その10数時間前から培地中に適量のカルシウムを加え
てインターフェロン産生を一層増強せしめる方法、スー
パーインダクション法と呼ばれる二重鎖RNA等のイン
ターフェロン誘発剤を用いて細胞を刺激した後、シクロ
へキシミド、アクチノマイシンDなどの代謝阻害剤で細
胞を処理することによりインターフェロン産生を一層増
強せしめる方法(米国特許第3,773゜924号)、
UV法と呼ばれるインターフェロン誘発剤を用いて細胞
を刺激する前後数時間の間に細胞に紫外線を照射してイ
ンターフェロン産生を一層増強せしめる方法等が知られ
ている。
Techniques for treating cultured cells with an interferon inducer to produce interferon include a method in which cells are stimulated to produce interferon using an interferon inducer such as natural or synthetic RNA, and an interferon inducer called the calcium method is used. After stimulating the cells with an interferon inducer such as double-stranded RNA called the super induction method, which is a method in which an appropriate amount of calcium is added to the culture medium at or about 10 hours beforehand to further enhance interferon production, the cells are stimulated with an interferon inducer such as double-stranded RNA, and then transferred to cyclo. A method for further enhancing interferon production by treating cells with metabolic inhibitors such as Ximide and actinomycin D (US Pat. No. 3,773°924);
A method called the UV method is known in which cells are irradiated with ultraviolet rays for several hours before and after stimulation of cells using an interferon-inducing agent to further enhance interferon production.

本発明は上記具体例においては、インターフェロン誘発
処理中においておよび、細胞の培養中も含めて、重炭酸
ソーダを3.0g/Lを超える量、通常は3.0g/L
〜6.0g/Lの量を添加した培養液を用い、炭酸ガス
を吹き込むことにより、培養液中のpHを7.0〜7゜
5の範囲で一定に制御することを本質とする。
In the above embodiments, the present invention provides that during the interferon induction treatment and also during the culture of the cells, sodium bicarbonate is added in an amount exceeding 3.0 g/L, typically 3.0 g/L.
The essence is to use a culture solution to which an amount of ~6.0 g/L has been added and to control the pH in the culture solution to a constant value within the range of 7.0 to 7.5 by blowing carbon dioxide gas.

本発明で用いる培養液としては、イーグルMEM培地、
ダルベツコMEM培地等が好ましく使用される。
The culture solution used in the present invention includes Eagle MEM medium,
Dulbecco's MEM medium and the like are preferably used.

以下実施例を挙げて本発明を具体的に説明する。The present invention will be specifically explained below with reference to Examples.

(実施例1〜2および比較例1〜2) 150L攪拌機つきステンレス製培養槽に新生仔牛血清
5 v / v%、ジエチルアミノエチル基を有する架
橋デキストランミクロキャリアー3.3g/Lを含むイ
ーグルMEM100Lにヒト二倍体細胞を約1.2X1
0’個/mlの割合で接種し、ゆるく攪拌しながら37
℃、溶存酸素濃度を空気に対する飽和溶解度の10%〜
50%で6日間培養を行うことを4回実施した。
(Examples 1-2 and Comparative Examples 1-2) A 150L stainless steel culture tank with a stirrer was charged with human incubation in Eagle MEM 100L containing 5 v/v% newborn calf serum and 3.3 g/L of cross-linked dextran microcarriers having diethylaminoethyl groups. Approximately 1.2X1 diploid cells
Inoculate at a rate of 0' cells/ml and inoculate with gentle stirring.
°C, the dissolved oxygen concentration is 10% of the saturated solubility in air
Cultivation was performed four times for 6 days at 50%.

培地中に添加した重炭酸ソーダの量は、実施例1〜2つ
いては、5.0g/L、比較例1〜2については、2.
2g/Lである。培養中のpHは7.0〜7.5の値で
保つように吹き込む炭酸ガスの流量を調節し培養した。
The amount of sodium bicarbonate added to the medium was 5.0 g/L for Examples 1 and 2, and 2.0 g/L for Comparative Examples 1 and 2.
It is 2g/L. The flow rate of carbon dioxide gas was regulated so that the pH during the culture was maintained at a value of 7.0 to 7.5.

途中、1日目、3日目、5日目、に土音地交taを行っ
た。
Along the way, we conducted Doonjikota on the 1st, 3rd, and 5th days.

次に、インターフェロン100国際単位/m11カルボ
キシルメチルセルロースを含む、イーグルMEM培地と
交換し、37℃、溶存酸素濃度を空気に対する飽和溶解
度の10%〜50%で約20時間インキュベートした。
Next, the medium was replaced with Eagle's MEM medium containing 100 international units of interferon/ml of carboxyl methyl cellulose, and incubated at 37° C. for about 20 hours at a dissolved oxygen concentration of 10% to 50% of the saturated solubility in air.

次に10μg / m 1のシクロへキシミドおよび5
0μg/mlのpoly (I):poly(C)を加
え37℃で4時間インキュベートし、更に4μg / 
m 1のアクチノマイシンDを加え、37℃で1時間イ
ンキュベートする。その後0.5g/Lのメチルセルロ
ースを加えたイーグルMEM培地で2回培地交換し、3
7℃で約2日間インキュベートした。
Then 10 μg/m 1 cycloheximide and 5
Add 0 μg/ml poly(I):poly(C), incubate at 37°C for 4 hours, and further add 4 μg/ml.
Add ml actinomycin D and incubate for 1 hour at 37°C. After that, the medium was exchanged twice with Eagle MEM medium supplemented with 0.5 g/L methylcellulose, and
It was incubated at 7°C for about 2 days.

培養中の細胞数、pH,炭酸ガス流量の変化を表−1に
示す。2.2g/Lの重炭酸ソーダを添加したMEM培
地で培養すると、培養4日目頃から炭酸ガス流量がゼロ
にもかかわらず、pHが低下しついには7.0以下にま
で低下する。一方5.0g/Lの重炭酸ソーダを添加し
たMEM培地で培養すると培養終了まで細胞培養に適し
たpH7,0〜7.5を保持することが可能であった。
Table 1 shows changes in cell number, pH, and carbon dioxide flow rate during culture. When cultured in MEM medium supplemented with 2.2 g/L of sodium bicarbonate, the pH decreases from around the fourth day of culture, even though the flow rate of carbon dioxide gas is zero, and finally drops to below 7.0. On the other hand, when cultured in MEM medium supplemented with 5.0 g/L of sodium bicarbonate, it was possible to maintain pH 7.0 to 7.5, which is suitable for cell culture, until the end of culture.

最終的に用いた培地中に産生されたインターフェロンの
量をFL細胞およびヴエスキュラー・ストマティティス
・ウィルスを用いたCPE  1nhibition法
で測定し国際単位に換算した。
The amount of interferon finally produced in the medium used was measured by the CPE inhibition method using FL cells and V. stomatitis virus, and converted to international units.

この結果から、培養の最後まで培養液のpHを7.0〜
7.5の範囲で一定に制御した実施例では、培養後期に
pHが7.0以下まで低下した比較例に比較して高単位
のインターフェロン産生が得られていることがわかる。
From this result, the pH of the culture solution was kept at 7.0 to 7.0 until the end of the culture.
It can be seen that in the example where the pH was controlled to be constant within the range of 7.5, a higher unit of interferon production was obtained compared to the comparative example where the pH decreased to 7.0 or less in the late stage of culture.

〔発明の効果〕〔Effect of the invention〕

本発明方法は、動物細胞の大量培養に際し、炭酸ガスを
吹き込むだけの制御方法で、培養液のpHを動物細胞培
養に適したpH7,0〜7.5の範囲で一定に保つこと
ができる。特にインターフェロン産生用の細胞の場合は
、本発明方法を利用することにより高力価のインターフ
ェロンを産生ずることができる。
In the method of the present invention, the pH of the culture solution can be kept constant in the pH range of 7.0 to 7.5, which is suitable for animal cell culture, by simply blowing carbon dioxide gas during mass culture of animal cells. In particular, in the case of interferon-producing cells, high titer interferon can be produced by using the method of the present invention.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 3.0g/Lを超える重炭酸ソーダを含有する培養液を
使用し、炭酸ガスを吹き込むことにより培養液のpHを
一定値に制御することを特徴とする動物細胞の培養方法
A method for culturing animal cells, comprising using a culture solution containing more than 3.0 g/L of sodium bicarbonate, and controlling the pH of the culture solution to a constant value by blowing carbon dioxide gas.
JP60234871A 1985-10-21 1985-10-21 Culture of antimal cell Pending JPS6296083A (en)

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JP (1) JPS6296083A (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH01281095A (en) * 1988-03-04 1989-11-13 Egyt Gyogyszervegyeszeti Gyar Mass production of cytokin

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH01281095A (en) * 1988-03-04 1989-11-13 Egyt Gyogyszervegyeszeti Gyar Mass production of cytokin

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