JPS6238657B2 - - Google Patents

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JPS6238657B2
JPS6238657B2 JP9616978A JP9616978A JPS6238657B2 JP S6238657 B2 JPS6238657 B2 JP S6238657B2 JP 9616978 A JP9616978 A JP 9616978A JP 9616978 A JP9616978 A JP 9616978A JP S6238657 B2 JPS6238657 B2 JP S6238657B2
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JP
Japan
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creatinine
bilirubin
rate
picrate
biological sample
Prior art date
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Application number
JP9616978A
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Japanese (ja)
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JPS5523445A (en
Inventor
Toshuki Sagusa
Yasushi Nomura
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Hitachi Ltd
Original Assignee
Hitachi Ltd
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Publication date
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Publication of JPS5523445A publication Critical patent/JPS5523445A/en
Publication of JPS6238657B2 publication Critical patent/JPS6238657B2/ja
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  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明は、クレアチニンの反応速度測定方法お
よびクレアチニンの反応速度測定用試薬に係り、
特に臨床生化学検査においてビリルビンの共存に
よる負誤差のない血清中のクレアチニンの反応速
度を測定するのに好適な、正確度の高いクレアチ
ニンの反応速度測定方法に関する。 臨床生化学検査においては、従来殆ど比色分析
が用いられてきたが、近年、より正確度の高い測
定への指向と測定機器の進歩の両面から、反応速
度測定方法(以下「レート法」という。)が重用
されつつある。 このレート法は、いわゆる被検物質の関与する
ある反応の速度を最も適当な時点、即ちできるだ
け、エンドジーナスな誤差が小さくなる時点にお
いて測定するものであるが、大別すると次の3種
類になる。 1 被検物質が酵素であり、その酵素の関与する
適当な酵素反応の速度より被検物質の濃度(活
性値)を求めるもの。各種トランスアミラー
ゼ、フオスフアターゼ、ペプチダーゼなどの測
定に用いられている。 2 被検物質は酵素ではないが、その物質の関与
する適当な酵素反応の速度より被検物質の濃度
を求めるもの。各種脂質類、糖類などの測定に
用いられる。 3 被検物質が酵素でなく、それの関与する適当
な化学反応の速度より被検物質の濃度を求める
もの。 レート法は前記のようにエンドジーナスな誤差
を除くことによつて従来の比色法より正確度の高
いデータを得ることが目的であり、その意味から
特異性の高い酵素反応を用いる1と2の場合が最
も一般的に用いられており、レート法すなわち酵
素分析法とも言える現状である。 しかしながら純然たる化学反応による場合にお
いても、エンドジーナスな誤差を除くため、エン
ドポイント比色法よりもレート法を用いる方が有
利な場合がある。これが3の場合であり、その代
表的な例が血清中のクレアチニンのレート法であ
る。 クレアチニンは筋代謝物質で腎臓から排泄され
血清及び尿中のクレアチニン濃度は腎機能障害と
密接な関連があり、生化学検査の中でも最重要測
定項目の一つである。そのクレアチニンの測定法
としては、従来より次式(1)に示すアルカリ下にお
けるクレアチニンピクラートの形成を利用するヤ
ツフエ法がほとんど唯一的に用いられている。 すなわち、ヤツフエ法はアルカリ下でクレアチ
ニンとピクリン酸より生成するクレアチニンピク
ラートの吸収を500nm前後の波長で比色測定す
ることによつてクレアチニン濃度を求めるもので
ある。 この方法は操作が簡単で安定であるため実用性
が高いが、感度が余り高くないことと、反応が非
特異的であるという大きな難点をもつている。特
に、非特異性については、正常人の血清を測定し
た場合、測定値の約4分の1がクレアチニン以外
の陽性物質によるとさえ言われている。 即ち、蛋白質やアセトン体がクレアチニンと類
似の呈色反応をし、又各種の糖類やアスコルビン
酸などはピクリン酸を還元して紅色のピクラミン
を生成するため、これらはいずれも正誤差を与え
る。 これらの種々の正誤差を除くため、従来より
種々の工夫がなされている。例えば、用手法の場
合は沈殿ろ過法や透析法などによつて蛋白質を除
去した後にクレアチニンを測定する方法が用いら
れてきた。しかしながらこのような除蛋白操作は
煩雑であり、自動装置においては、界面活性剤を
応用することによつて、除蛋白操作を省略する方
法が採用されている。 しかしながら、界面活性剤によつても蛋白質に
よる誤差を完全に除くことはできない。しかも蛋
白以外の妨害物質に対しては何らの改良もなされ
ていないのが現状であり、臨床検査の最重要測定
項目の1つであるにもかかわらず、従来のクレア
チニンの比色測定は正確度の点で多大の問題を含
んでいる。 このような比色法における正誤差を除くため、
近年登場したのが前述のクレアチニンのレート法
である。このレート法では反応開始後、最適時点
においてクレアチニンピクラートの生成速度を
500nm附近の波長における吸光度の変化率より
求めるため、前述の各種妨害物質による誤差を低
減することが可能である。最適時点とは還元剤に
よるピクラミン生成が終了し、蛋白質やアセトン
体などとピクリン酸との反応が進行しない時点を
いう。このような最適時点においては吸光度の変
化は主としてクレアチニンピクラートの生成によ
るものであり、妨害物質による正誤差は従来の比
色法に比較して著しく低減される。 しかしながら、最近クレアチニンのレート法に
おいて、血清中に共存するビリルビンが負誤差を
与えることが判明した。しかも、このビリルビン
による妨害は反応開始後の全領域に表われるた
め、上述のレート測定の開始時点を如何に選んで
も、これによる誤差を除くことはできないことが
わかつた。 最近の実験によれば、クレアチニンのレート測
定におけるビリルビンによる負誤差は極めて大き
く、例えば20mg/dlのビリルビンを含む黄疽血清
を測定した場合、クレアチニンのレート測定値は
真値よりも1.0mg/dlも低いことがわかつた。ク
レアチニンの正常値が0.8〜1.2mg/dlであること
を考慮すれば、この負誤差は著しく大きく生化学
検査の信頼性を著しく損なうものである。 上記問題点を解決するために、本発明の目的は
ビリルビンの共存による負誤差がなく、高い正確
度で測定することのできるクレアチニンの反応速
度測定方法を提供することにある。 上記目的を達成するために本発明は、アルカリ
性下にある生体試料にピクリン酸を添加し、当該
生体試料中のクレアチニンと前記ピクリン酸との
間で形成されるクレアチニンピクラートの反応速
度から前記生体試料中のクレアチニンの濃度を求
めるクレアチニンの反応速度測定方法において、
前記生体試料を、ジクロルイソシアヌル酸、クロ
ラミンB、クロラミンT、及び、次亜塩素酸ナト
リウムからなる群のいずれか1種を含む試液中
で、当該生体試料中に含まれるビリルビンが酸化
されるまでインキユベーシヨンした後クレアチニ
ンピクラートを形成させ、当該クレアチニンピク
ラートの生成速度から前記生体試料中のクレアチ
ニンの濃度を求めることを特徴とするクレアチニ
ンの反応速度測定方法である。 以下本発明の原理を説明する。本発明者は、前
述のようなビリルビンによる負誤差の原因を究明
するため、クレアチニン測定試薬中に高ビリルビ
ンコントロール血清を添加して、ビリルビンのス
ペクトラムの時間的変化を調べた。その結果、こ
のような負誤差はビリルビンとピクリン酸との反
応によるものでなく、アルカリ下におけるビリル
ビンの酸化変性によるものであることがわかつ
た。その結果を第1図に示す。 即ち、第1図のスペクトラム1は10mg/dlのビ
リルビンを含む高ビリルビンコントロール血清を
クレアチニンのレート測定用試薬によつて希釈し
た直後の吸収曲線であり、スペクトラム2は同液
を37℃で20分間放置した後の吸収曲線である。希
釈率はクレアチニンのレート測定の場合と同様の
13倍である。また、スペクトラム3は1mg/dlの
クレアチニンを含むクレアチニン標準液を同液中
において37℃で20分間反応させた場合のクレアチ
ニンピクラートの吸収曲線である。なお、ここで
スペクトラム1〜3は全て試薬ブランク対照であ
る。 即ち、図から明らかな如く、ビリルビンはアル
カリ下で415nmに吸収極大を有するが、この吸
収は時間の経過と共に減少し、逆に600nm前後
に極大を有するブロードな吸収が増大する。この
原因として、次式(2)に示すように、ビリルビンが
アルカリ下で酸化されてビリベルジンに変化する
ためと考えられる。 一方クレアチニンとピクリン酸の結合によるク
レアチニンピクラートは490nmに吸収極大を有
するが、その発色感度は低く、1mg/dlのクレア
チニンを37℃で20分間反応させても、その吸収は
スペクトラム3に示す程度である。 即ち、第1図の3つのスペクトラムは、高濃度
のビリルビンを含む黄疽血清を前述のレート法で
測定すると、クレアチニンピクラートの生成によ
る吸収(500nm前後)の増加がビリルビンの酸
化による吸収の減少によつて相殺されるため、著
しく負誤差を呈することを示している。 この問題の解決の手段としては、次の3つの方
法が考えられる。 1 ビリルビンの酸化を防ぐ方法 2 プレインキユーベーシヨンの時間を長くする
方法 3 ビリルビンの酸化を促進する方法 ビリルビンの酸化を防ぐ方法としては試薬中に
還元剤を共存させる方法、或いはビリルビンと結
合してその安定性を増すような保護剤を共存させ
る方法が考えられる。しかしながら多くの還元剤
は前述のようにそれ自身がピクリン酸と反応し、
ビクラミンを生成するため、逆に正誤差を与える
可能性があり、それらの添加は好ましくないと考
えられる。またビリルビンは元来血清中において
は蛋白質と結合して安定化された状態で存在する
ものであるが、アルカリ水溶液中でさらに強力な
保護剤を見出するのは難しいし、仮にそのような
保護剤があつたとしても、ピクリン酸と反応した
りする可能性が高いと考えられる。 また、アルカリ下におけるプレインキユベーシ
ヨンの時間を十分に長くして、ビリルビンがほと
んど酸化されてからピクリン酸を添加してクレア
チニンを測定する方法は、原則的に正しく、用手
法の場合は有効である。しかしながら、第1図に
示すように、37℃で20分間放置してもビリルビン
の残量は50%程度もあり、全インキユベーシヨン
時間が5〜15分の最近の自動分析装置において、
この方法を用いることは余り効果がない。 そのため本発明においては、自動分析装置の全
インキユベーシヨン時間内で十分な効果が得られ
るように、ビリルビンの酸化を促進する方法を試
みた。この場合、必要な条件はビリルビンをでき
るだけ速やかに酸化するのは当然であるが、クレ
アチニンピクラートの生成を妨害しないことが重
要である。 そのため、種々の酸化剤を添加したクレアチニ
ン測定用試薬中ににおいてビリルビンの酸化速度
とクレアチニンピクラードの生成状況を検討し
た。 その結果、過酸化水素、過マンガン酸塩、重ク
ロム酸塩のように強力な酸化剤中ではビリルビン
は容易に速やかに酸化されることがわかつた。し
かもこの場合、第1図のような長波長領域におけ
る吸収の増大も見られず、ビリルビンはビリベル
ジンよりもさらに酸化された状態になると思われ
る。しかしながら一方、このような強力な酸化剤
の存在下ではクレアチニンピクラートも全く生成
されないことがわかつた。そこで、さらに検討し
た結果、比較的酸化力の弱い酸化剤であるジクロ
ルイソシアヌル酸、クロラミンB、クロラミン
T、次亜塩素酸ナトリウムが上述の目的に対して
最適であることがわかつた。第2図に1%のクロ
ラミンBを添加したクレアチニンのレート測定用
試薬中における高ビリルビンコントロール血清
(10mg/dlのビリルビン含有)の吸収曲線の時間
的変化を示す。希釈率は13倍であり、スペクトラ
ム4は混合直後の吸収曲線であり、スペクトラム
5は同液を37℃で10分間放置した後の吸収曲線で
ある。即ち、1%のクロラミンBを添加したクレ
アチニン測定用試薬中においてビリルビンは10分
以内でほとんど全部酸化されることを示してい
る。 また、第3図は1mg/dlのクレアチニン標準液
を、上述のクロラミンBを添加した試薬と、添加
しない試薬の両方と同一条件(37℃で15分間)で
反応させた場合の吸収曲線である。希釈率は13倍
であり、スペクトラム7はクロラミンBを添加し
た場合、スペクトラム6は添加しない場合を示し
ている。両方のスペクトラムは実験誤差の範囲内
で、一致しており、これは1%のクロラミンBの
共存はクレアチニンビクラートの生成を全く妨害
しないことを示している。クロラミンTとジクロ
ルイソシアヌル酸についても同様な結果が得られ
た。 即ち、第2図、第3図の結果は、クレアチニン
のレート法において、プレインキユベーシヨン時
にアルカリ中に適当な酸化剤を共存させ、ビリル
ビンをほぼ完全に酸化した後にビクリン酸を添加
してクレアチニンを測定すれば、前述の負誤差を
除くことが可能であることを示している。 クレアチニン測定用試薬中の塩素系酸化剤は通
常1〜10%程度の濃度であることが望ましい。1
%より少ないとビリルビンを完全に酸化すること
が難しいからである。又、10%を越えると塩素系
酸化剤が完全に溶けず、したがつてこれ以上の容
量を加えても試薬の浪費となるからである。 以下、自動分析装置に適用した本発明の実施例
を詳細に説明する。本実施例において、最初に試
料血清100μが0.6mlの第1試液と共に反応容器
中に希釈サンプリングされる。この第1試液は従
来のアルカリ緩衝液を使用する。具体的には1
当り5.2gのリン酸2ナトリウム、15.0gの硼酸
ナトリウム、15.0gの水酸ナトリウム、6.0gの
塩化ナトリウムを含むものである。 そして、この第1試薬に10.0g/のクロラミ
ンBを添加する。 前記反応容器は37℃で12分間プレインキユーベ
ーシヨンされる。次いで0.6mlの第2試液が添加
されるが、この第2試液は従来のもの(1当り
3.2gのピクリン酸と1.0gのラウリル硫酸ナトリ
ウムを含む)と同一のものである。第2試液を添
加してから2分後にこの被検液をレート測定用光
度計の恒温槽(37℃)フローセル中に吸入し、
505nmの波長の吸光度を1分間測定して、その
吸光度上昇速度とクレアチニン濃度の関係は濃度
既知の高ビリルビンコントロール血清(20mg/
dl)とクレアチニン標準液(10mg/dl)を3種の
割合で混合して作つた疑似試料を上述の方法と従
来のレート法の両方で測定した結果を示す。
The present invention relates to a method for measuring the reaction rate of creatinine and a reagent for measuring the reaction rate of creatinine.
In particular, the present invention relates to a method for measuring the reaction rate of creatinine with high accuracy, which is suitable for measuring the reaction rate of creatinine in serum without negative errors due to the presence of bilirubin in clinical biochemical tests. Traditionally, colorimetric analysis has been used for most clinical biochemical tests, but in recent years, reaction rate measurement methods (hereinafter referred to as ``rate methods'') have been used, both with the aim of more accurate measurements and advances in measurement equipment. ) are becoming increasingly important. This rate method measures the rate of a certain reaction involving the so-called test substance at the most appropriate point, that is, at the point when the endogenous error is as small as possible, and can be roughly divided into the following three types: . 1 The test substance is an enzyme, and the concentration (activity value) of the test substance is determined from the rate of an appropriate enzymatic reaction involving the enzyme. It is used to measure various transamylases, phosphatases, peptidases, etc. 2. Although the test substance is not an enzyme, the concentration of the test substance is determined from the rate of an appropriate enzymatic reaction involving the substance. Used to measure various lipids, sugars, etc. 3 The test substance is not an enzyme, and the concentration of the test substance is determined from the rate of an appropriate chemical reaction involving it. As mentioned above, the purpose of the rate method is to obtain more accurate data than the conventional colorimetric method by removing endogenous errors, and for this reason, it uses highly specific enzymatic reactions 1 and 2. The most commonly used method is the rate method, or the enzyme analysis method. However, even in the case of pure chemical reactions, it may be more advantageous to use the rate method than the endpoint colorimetric method in order to eliminate endogenous errors. This is case 3, and a typical example is the serum creatinine rate method. Creatinine is a muscle metabolite that is excreted from the kidneys, and the concentration of creatinine in serum and urine is closely related to renal dysfunction, and is one of the most important measurement items in biochemical tests. As a method for measuring creatinine, the Yathue method, which utilizes the formation of creatinine picrate under alkaline conditions as shown in the following formula (1), has been used almost exclusively. That is, the Yatsufue method determines the creatinine concentration by colorimetrically measuring the absorption of creatinine picrate produced from creatinine and picric acid under alkaline conditions at a wavelength of around 500 nm. Although this method is highly practical as it is easy to operate and is stable, it has major drawbacks such as low sensitivity and non-specific reaction. In particular, regarding non-specificity, it is said that when measuring serum from normal people, about one quarter of the measured values are due to positive substances other than creatinine. That is, proteins and acetone bodies have a color reaction similar to that of creatinine, and various sugars and ascorbic acid reduce picric acid to produce red picramine, so both of these give a positive error. In order to eliminate these various positive errors, various devices have been conventionally devised. For example, in the case of manual methods, methods have been used in which creatinine is measured after removing proteins by precipitation filtration or dialysis. However, such a protein removal operation is complicated, and automatic equipment employs a method of omitting the protein removal operation by applying a surfactant. However, even surfactants cannot completely eliminate errors caused by proteins. Moreover, no improvements have been made to prevent interfering substances other than proteins, and although it is one of the most important measurement items in clinical tests, conventional colorimetric measurements of creatinine have poor accuracy. It contains many problems in terms of. In order to eliminate positive errors in such colorimetric methods,
Recently, the creatinine rate method mentioned above has appeared. In this rate method, the production rate of creatinine picrate is determined at the optimum point after the start of the reaction.
Since it is determined from the rate of change in absorbance at a wavelength around 500 nm, it is possible to reduce errors caused by the various interfering substances mentioned above. The optimal point is the point at which the production of picramine by the reducing agent is completed and the reaction between proteins, acetone bodies, etc. and picric acid does not proceed. At such an optimal point, the change in absorbance is primarily due to the formation of creatinine picrate, and the positive error due to interfering substances is significantly reduced compared to conventional colorimetric methods. However, it has recently been found that bilirubin coexisting in serum gives a negative error in the creatinine rate method. Moreover, since this interference caused by bilirubin appears in the entire region after the start of the reaction, it was found that errors caused by this cannot be eliminated no matter how the above-mentioned starting point of rate measurement is selected. Recent experiments have shown that the negative error due to bilirubin in creatinine rate measurements is extremely large; for example, when measuring jaundice serum containing 20 mg/dl of bilirubin, the measured creatinine rate is 1.0 mg/dl lower than the true value. was also found to be low. Considering that the normal value of creatinine is 0.8 to 1.2 mg/dl, this negative error is extremely large and significantly impairs the reliability of the biochemical test. In order to solve the above-mentioned problems, an object of the present invention is to provide a method for measuring the reaction rate of creatinine, which is free from negative errors due to the coexistence of bilirubin and can be measured with high accuracy. In order to achieve the above object, the present invention adds picric acid to a biological sample under alkaline conditions, and calculates the rate of reaction of creatinine picrate formed between creatinine in the biological sample and the picric acid. In the creatinine reaction rate measurement method to determine the concentration of creatinine in a sample,
The biological sample is placed in a reagent solution containing any one of the group consisting of dichloroisocyanuric acid, chloramine B, chloramine T, and sodium hypochlorite until bilirubin contained in the biological sample is oxidized. This is a method for measuring the reaction rate of creatinine, which comprises forming creatinine picrate after incubation, and determining the concentration of creatinine in the biological sample from the rate of production of the creatinine picrate. The principle of the present invention will be explained below. In order to investigate the cause of the negative error due to bilirubin as described above, the present inventor added a high bilirubin control serum to a creatinine measurement reagent and investigated temporal changes in the bilirubin spectrum. As a result, it was found that such negative errors were not due to the reaction between bilirubin and picric acid, but were due to oxidative denaturation of bilirubin under alkaline conditions. The results are shown in FIG. That is, spectrum 1 in Figure 1 is the absorption curve immediately after diluting the high bilirubin control serum containing 10 mg/dl bilirubin with a reagent for measuring the rate of creatinine, and spectrum 2 is the absorption curve after diluting the same solution at 37°C for 20 minutes. This is an absorption curve after being left to stand. The dilution ratio is similar to that for creatinine rate determination.
That's 13 times more. Spectrum 3 is an absorption curve of creatinine picrate obtained by reacting a creatinine standard solution containing 1 mg/dl of creatinine at 37° C. for 20 minutes. Note that all spectra 1 to 3 are reagent blank controls. That is, as is clear from the figure, bilirubin has an absorption maximum at 415 nm under alkaline conditions, but this absorption decreases with the passage of time, and conversely, broad absorption with a maximum around 600 nm increases. The reason for this is thought to be that bilirubin is oxidized in an alkaline environment and converted to biliverdin, as shown in the following formula (2). On the other hand, creatinine picrate, which is a combination of creatinine and picric acid, has an absorption maximum at 490 nm, but its color development sensitivity is low, and even if 1 mg/dl of creatinine is reacted at 37°C for 20 minutes, its absorption is as shown in spectrum 3. It is. In other words, the three spectra in Figure 1 show that when jaundice serum containing a high concentration of bilirubin is measured using the rate method described above, an increase in absorption (around 500 nm) due to the production of creatinine picrate and a decrease in absorption due to oxidation of bilirubin. This shows that the error is significantly negative because the error is canceled out by the There are three possible ways to solve this problem: 1. Method for preventing oxidation of bilirubin 2. Method for prolonging pre-incubation time 3. Method for promoting oxidation of bilirubin As a method for preventing oxidation of bilirubin, there is a method of coexisting a reducing agent in the reagent, or a method of combining with bilirubin. A possible method is to coexist a protective agent that increases the stability. However, as mentioned above, many reducing agents themselves react with picric acid;
Since bicramine is produced, there is a possibility that a positive error may be given, and therefore, their addition is considered undesirable. In addition, bilirubin originally exists in serum in a stabilized state bound to proteins, but it is difficult to find a more powerful protective agent in an alkaline aqueous solution, and even if such a protective agent Even if there is a chemical agent, there is a high possibility that it will react with picric acid. In addition, the method of measuring creatinine by adding picric acid after the pre-incubation time under alkaline conditions is sufficiently long and most of the bilirubin has been oxidized is correct in principle, but is not effective in the case of manual methods. be. However, as shown in Figure 1, even after being left at 37°C for 20 minutes, the amount of bilirubin remaining is about 50%.
Using this method is not very effective. Therefore, in the present invention, a method of promoting the oxidation of bilirubin was attempted so as to obtain a sufficient effect within the total incubation time of the automatic analyzer. In this case, the necessary conditions are of course to oxidize bilirubin as quickly as possible, but it is important not to interfere with the production of creatinine picrate. Therefore, we investigated the oxidation rate of bilirubin and the production status of creatinine piclade in creatinine measurement reagents containing various oxidizing agents. As a result, it was found that bilirubin is easily and rapidly oxidized in strong oxidizing agents such as hydrogen peroxide, permanganate, and dichromate. Furthermore, in this case, no increase in absorption in the long wavelength region as shown in FIG. 1 is observed, and bilirubin is thought to be in a more oxidized state than biliverdin. However, on the other hand, it was found that creatinine picrate was also not produced at all in the presence of such a strong oxidizing agent. As a result of further investigation, it was found that dichloroisocyanuric acid, chloramine B, chloramine T, and sodium hypochlorite, which are oxidizing agents with relatively weak oxidizing power, are optimal for the above purpose. FIG. 2 shows the temporal change in the absorption curve of a high bilirubin control serum (containing 10 mg/dl bilirubin) in a creatinine rate measurement reagent containing 1% chloramine B. The dilution rate was 13 times, Spectrum 4 is the absorption curve immediately after mixing, and Spectrum 5 is the absorption curve after the same solution was left at 37° C. for 10 minutes. That is, it is shown that almost all bilirubin is oxidized within 10 minutes in a reagent for measuring creatinine to which 1% chloramine B is added. In addition, Figure 3 shows the absorption curve when 1 mg/dl creatinine standard solution was reacted with both the above-mentioned reagent with and without chloramine B added under the same conditions (15 minutes at 37°C). . The dilution rate is 13 times, and spectrum 7 shows the case where chloramine B is added, and spectrum 6 shows the case where it is not added. Both spectra agree within experimental error, indicating that the presence of 1% chloramine B does not interfere with the production of creatinine viclate at all. Similar results were obtained for chloramine T and dichloroisocyanuric acid. In other words, the results shown in Figures 2 and 3 show that in the rate method for creatinine, an appropriate oxidizing agent is allowed to coexist in the alkali during pre-incubation, and after bilirubin is almost completely oxidized, bicrinic acid is added to produce creatinine. This shows that it is possible to eliminate the negative error mentioned above by measuring . The concentration of the chlorine-based oxidizing agent in the reagent for measuring creatinine is preferably about 1 to 10%. 1
%, it is difficult to completely oxidize bilirubin. Moreover, if the amount exceeds 10%, the chlorine-based oxidizing agent will not be completely dissolved, and therefore, even if a larger amount is added, the reagent will be wasted. Hereinafter, embodiments of the present invention applied to an automatic analyzer will be described in detail. In this example, 100μ of sample serum is first sampled diluted into a reaction vessel together with 0.6ml of the first reagent. This first test solution uses a conventional alkaline buffer. Specifically 1
Each bottle contains 5.2g of disodium phosphate, 15.0g of sodium borate, 15.0g of sodium hydroxide, and 6.0g of sodium chloride. Then, 10.0 g/chloramine B is added to this first reagent. The reaction vessel is pre-incubated for 12 minutes at 37°C. Next, 0.6 ml of the second test solution is added, but this second test solution is a conventional one (per 1
Contains 3.2g picric acid and 1.0g sodium lauryl sulfate). Two minutes after adding the second test solution, this test solution was sucked into a constant temperature bath (37°C) flow cell of a photometer for rate measurement.
The absorbance at a wavelength of 505 nm was measured for 1 minute, and the relationship between the rate of increase in absorbance and creatinine concentration was determined using a high bilirubin control serum with a known concentration (20 mg/min).
dl) and creatinine standard solution (10 mg/dl) at three different ratios were measured using both the above method and the conventional rate method.

【表】 第1表から明らかなように、従来法ではビリル
ビンの濃度が増大するほどクレアチニンの実測値
が理論値より低くなるが、本発明法による実測値
ではそのような誤差はないことがわかる。 なお前記実施例は、本発明を、臨床生化学検査
における血清中のクレアチニンの反応速度測定に
適用したものであるが、本発明の適用範囲はこれ
に限定されず、尿等他の一般の生体試料中のクレ
アチニンの反応速度測定にも同様に適用できるこ
とは明らかである。 以上説明したとおり、本発明は、生体試料中に
アルカリ下でピクリン酸を添加してクレアチニン
ピクラートの生成速度よりクレアチニン濃度を求
めるクレアチニンの反応速度測定方法及びその測
定用試薬であり、生体試料中のビリルビンの酸化
を促進し、且つ、クレアチニンピクラートの生成
を妨害しない酸化剤を含む試液中で、生体試料を
インキユベーシヨンした後、クレアチニンピクラ
ートの生成速度を測定することができる。従つ
て、従来のレート法の試薬に適当な酸化剤を添加
するのみでクレアチニンのレート測定の正確度を
著しく高めることができ、臨床検査の信頼性が著
しく向上するという優れた効果を有する。
[Table] As is clear from Table 1, with the conventional method, as the concentration of bilirubin increases, the actual value of creatinine becomes lower than the theoretical value, but it can be seen that there is no such error in the actual value with the method of the present invention. . In the above example, the present invention was applied to the measurement of the reaction rate of creatinine in serum in a clinical biochemical test, but the scope of application of the present invention is not limited to this, and it can be applied to other general biological samples such as urine. It is clear that it can be similarly applied to measuring the reaction rate of creatinine in a sample. As explained above, the present invention provides a method for measuring the reaction rate of creatinine in which the concentration of creatinine is determined from the production rate of creatinine picrate by adding picric acid to a biological sample under alkaline conditions, and a reagent for the measurement. After incubating a biological sample in a test solution containing an oxidizing agent that promotes the oxidation of bilirubin and does not interfere with the production of creatinine picrate, the rate of production of creatinine picrate can be measured. Therefore, the accuracy of creatinine rate measurement can be significantly increased simply by adding an appropriate oxidizing agent to the reagent of the conventional rate method, which has the excellent effect of significantly improving the reliability of clinical tests.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of the drawing]

第1図は、アルカリ下におけるビリルビンの酸
化によるスペクトラムの変動を示す線図、第2図
は、酸化剤共存によるビリルビンの酸化の促進状
態を示す線図、第3図は、酸化剤のクレアチニン
ピクラート生成への影響を示す線図である。
Figure 1 is a diagram showing the spectrum variation due to oxidation of bilirubin under alkaline conditions, Figure 2 is a diagram showing the acceleration of bilirubin oxidation due to the coexistence of an oxidizing agent, and Figure 3 is a diagram showing the creatinine peak of the oxidizing agent. FIG. 3 is a diagram showing the influence on rat production.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1 アルカリ性下にある生体試料にピクリン酸を
添加し、当該生体試料中のクレアチニンと前記ピ
クリン酸との間で形成されるクレアチニンピクラ
ートの反応速度から前記生体試料中のクレアチニ
ンの濃度を求めるクレアチニンの反応速度測定方
法において、前記生体試料を、ジクロルイソシア
ヌル酸、クロラミンB、クロラミンT、及び、次
亜塩素酸ナトリウムからなる群のいずれか1種を
含む試液中で、当該生体試料中に含まれるビリル
ビンが酸化されるまでインキユベーシヨンした後
クレアチニンピクラートを形成させ、当該クレア
チニンピクラートの生成速度から前記生体試料中
のクレアチニンの濃度を求めることを特徴とする
クレアチニンの反応速度測定方法。
1 Adding picric acid to a biological sample under alkaline conditions and determining the concentration of creatinine in the biological sample from the reaction rate of creatinine picrate formed between creatinine in the biological sample and the picric acid. In the reaction rate measuring method, the biological sample is placed in a reagent solution containing any one of the group consisting of dichloroisocyanuric acid, chloramine B, chloramine T, and sodium hypochlorite. A method for measuring the reaction rate of creatinine, which comprises incubating until bilirubin is oxidized, then forming creatinine picrate, and determining the concentration of creatinine in the biological sample from the rate of production of the creatinine picrate.
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