JPS62294082A - Enzyme and its production - Google Patents
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-
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- Y02P20/50—Improvements relating to the production of bulk chemicals
- Y02P20/52—Improvements relating to the production of bulk chemicals using catalysts, e.g. selective catalysts
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。(57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.
Description
【発明の詳細な説明】
3、発明の詳細な説明
本発明は、MjiJ、なL−ソルボソン脱水素N、素お
よびその製造方法に関するものである。Detailed Description of the Invention 3. Detailed Description of the Invention The present invention relates to MjiJ, L-sorbosone dehydrogenated N, and a method for producing the same.
本発明によって提供されるL−ソルボソン脱水素酵素は
、補酵素としてニコチンアミド7デニンジヌクレオチド
(以下、NADと称す)またはニコチンアミドアデニン
ジヌクレオチド燐酸(以下、NADPと称す)の存在下
、L−ソルボソンの2−ケトーL−クロン酸(以下、2
−KGAと称す)への酸化を触媒する。2−KGAは、
ビタミンCの製造に重要な前駆体である。The L-sorbosone dehydrogenase provided by the present invention is produced by L-sorbosone dehydrogenase in the presence of nicotinamide 7-denine dinucleotide (hereinafter referred to as NAD) or nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (hereinafter referred to as NADP) as a coenzyme. Sorboson's 2-keto L-chloric acid (hereinafter referred to as 2
-KGA). 2-KGA is
It is an important precursor for the production of vitamin C.
微生物中において、L−ソルボソンを2−KGAへ変換
させる反応は、知られている。微生物の無細胞抽出物を
使用してのし一ンルボソンから2−KGA・\の産生は
、種々の文献に報告されている。米国特許第3,907
.639号公報には、アセトバクター(A ceLob
acLcr)属、シュードモナス(P scudomo
nas)i、エシェリキア(E 5cherichia
)属、セラチア(S erratia)属、バシラス(
BacilluS)属、スタフイaコツカス(S La
phylococcus)i sアエロバクタ−(Ae
robacLer)属、アルカリゲネス(A Ical
iHenes)fi、ペニシリウム(Penicill
iu口)族、カンジダ(Candida)属およびグル
コノバクタ−(G Iuconobacter)属に属
する全生物は、前記の様な変換を行ないうろことが報告
されている。The reaction that converts L-sorbosone to 2-KGA in microorganisms is known. The production of 2-KGA·\ from noshin rubosone using cell-free extracts of microorganisms has been reported in various publications. U.S. Patent No. 3,907
.. Publication No. 639 describes Acetobacter (AceLob).
acLcr), Pseudomonas (P scudomo
nas)i, Escherichia (E 5cherichia)
) genus, Serratia genus, Bacillus (
Bacillus S), Staphyla coccus (S La
phylococcus) is Aerobacter (Ae
robacLer), Alcaligenes (A Ical)
iHenes) fi, Penicillium
It has been reported that all organisms belonging to the family Iuconobacter, the genus Candida, and the genus Gluconobacter undergo the above-mentioned transformation.
北村等は、グルコ/バクター・72ノデネス(Gluc
onobacter melanogenes) I
F O3293から発見したL−ソルボソン酸化6F
索は、酵素活性の発現のために電子受容体および補酵素
のいずれをも必要としないことを報告した(ヨーロピア
ン・ジャーナル・オプー7プライド・マイクロパイオロ
ノー、2、第1バ、1975年*Europ、 J。Kitamura et al.
onobacter melanogenes) I
L-Sorbosone oxidation 6F discovered from FO3293
reported that neither electron acceptors nor coenzymes are required for the expression of enzymatic activity (European Journal Op. , J.
Appl、 Microbiol、、 2.1.197
5、更に、マフ−バー(Makover)等は、シュー
ドモナス・ピュチダ(Pseudosonas pu
tida)ATCC21812およびグルコ7パクター
メラノデネスIFO3293のある分画中にL−ソルボ
ソン脱水素酵素が存在していることを報告した(バイオ
テクノロジー・アンド・バイオエンノニアリング17、
第1485頁、1975年: B 1otechnol
、 B ioeng。Appl, Microbiol, 2.1.197
5. Furthermore, Makover et al.
reported the presence of L-sorbosone dehydrogenase in certain fractions of Gluco7pacta melanodenes IFO3293 and ATCC21812.
Page 1485, 1975: B 1otechnol
, Bioeng.
17.1485.1975)。前記著書等は、ニコチン
アミド7デニンジヌクレオチドまたはニコチンアミドア
デニンジヌクレオチド燐酸は、その酵素の補酵素として
作用しなかったことをも指摘した。17.1485.1975). The authors also pointed out that nicotinamide 7-denine dinucleotide or nicotinamide adenine dinucleotide phosphate did not act as a coenzyme for the enzyme.
しかし上述した様に、補酵素としてNADまたはNAD
Pの存在下、L−ソルボソンを2−KGAに酸化する活
性を有するvi製された酵素に関する開示は今迄になさ
れていない。However, as mentioned above, NAD or NAD as a coenzyme
To date, there has been no disclosure of a vi-produced enzyme having the activity of oxidizing L-sorbosone to 2-KGA in the presence of P.
本発明は、特定の微生物の細胞の細胞質画分かち単離お
よび精製された酵素がL−ソルボソンの2−KGAへの
酸化を触媒することを見出して完成されたものである。The present invention was completed based on the discovery that an enzyme isolated and purified from the cytoplasmic fraction of cells of a specific microorganism catalyzes the oxidation of L-sorbosone to 2-KGA.
本発明の目的は、補lJ素としてNADまたはN、%r
l D /A 左プr ’r 7 1/ 11−71
7 %/ M 9− V /’! A /。The object of the present invention is to use NAD or N, %r as complement lJ elements.
l D /A left pull r 'r 7 1/ 11-71
7%/M9-V/'! A/.
の酸化を触媒する新規なL−ソルボソン脱水素酵素を提
供することに有る。また、他の目的は、細胞内にfr規
なL−ソルボソン脱水素#素産生能を有し、グルコノバ
クタ−属に属する全生物またはその変異株を#j!!L
、細胞を破壊し、更に破壊した細胞の無細胞抽出物、好
ましくは微生物の細胞質からI、−ンルボンン脱水素I
g素を単離および精製することを特徴とする新規なし一
ンルボソン脱水素酵素の製造方法を提供することに有る
。An object of the present invention is to provide a novel L-sorbosone dehydrogenase that catalyzes the oxidation of L-sorbosone. Another purpose is to identify all organisms belonging to the genus Gluconobacter or their mutant strains that have the ability to produce L-sorbosone dehydrogenation in their cells. ! L
, the cells are disrupted, and a cell-free extract of the disrupted cells, preferably from the cytoplasm of the microorganism, is dehydrogenated.
An object of the present invention is to provide a novel method for producing a single-rubosone dehydrogenase, which is characterized by isolating and purifying G.
後述する実施例で得られた新規な■、−ソルボソン脱水
素酵素の精製試料の物理化学的性質は、以下の通りであ
る。The physicochemical properties of the purified sample of the novel 1,-Sorbosone dehydrogenase obtained in the Examples described below are as follows.
(1)酵素活性
本発明のL−ソルボソン脱水素酵素は、補酵素としてN
ADまたはNADPの存在下にL−ソルボソンを2−K
GAに変換する反応を触媒する反応様式は、次に示す通
りである。(1) Enzyme activity The L-sorbosone dehydrogenase of the present invention has N as a coenzyme.
2-K L-sorbosone in the presence of AD or NADP
The reaction mode for catalyzing the reaction of converting into GA is as shown below.
■、−ソルボソン+NDAまたはN A D I)−1
2−KGA十還元型NADまたはN A D P−酵素
活性の測定−
酵素活性は、340nmにおける還元型N A Dまた
はNADPの吸光度の上昇を測定することにより求めら
れる。反応液は、50a+Mリン酸カリウム41衡溶液
(ρ)17.0’)0.41s+I中に、ll1gのソ
ルボソン、0 、2 mgのNADとを含み、反応は、
酵素の添加によって開始させた。還元型NADまたはN
ADPの生成速度は、スペクトロフォトメーター(エビ
コン810、コントロン社製)により30℃で測定した
。30℃で1分1Ilsす、1μMの還元型NADまた
はNADPを生成するのに要する酵素量を1ユニツトと
した。■, - Sorboson + NDA or NAD I) -1
2-KGA 10 Reduced NAD or NADP - Measurement of Enzyme Activity Enzyme activity is determined by measuring the increase in absorbance of reduced NAD or NADP at 340 nm. The reaction solution contained 11 g of Sorboson, 0.2 mg of NAD in 50a + M potassium phosphate 41 equilibrium solution (ρ) 17.0') 0.41s + I, and the reaction was as follows:
Started by addition of enzyme. Reduced NAD or N
The production rate of ADP was measured at 30° C. using a spectrophotometer (Ebicon 810, manufactured by Kontron). The amount of enzyme required to produce 1 μM of reduced NAD or NADP at 30° C. for 1 minute was defined as 1 unit.
一袖醇索の要求性−
上記した標準測定条件を坩い、本酵素活性発現の為に要
するi酵素の要求性を調べた。fjS1表に示す通り、
NADもNADPら本8素の罰IJ索となり得た。Requirements for the Issode Exploration - The requirements for the i-enzyme required for the expression of the present enzyme activity were investigated under the above-mentioned standard measurement conditions. As shown in table fjS1,
NAD could also serve as a punishment for NADP and others.
乳1遣4
無添加 0
NAD 100
NADP 35 7本 NADに対
する活性を100として表示■) 基質特異性
本酵素の基質特異性は、(1)に記載した活性測定法の
うち、基質であるソルボソンを第2表に示す種々の物質
に置きかえて、反応させた。第2Rの結果に示されるよ
うに、L−ソルボソンは、本酵素に対し、最も高い活性
を示した。グリオキサール、グリコールアルデヒド、グ
ルタルアルデヒド、ピロピオンアルデヒド、メナルグリ
オキサール、アセトアルデヒドならびにローマンノース
に対し、酸化活性を示した。Milk 1 kg 4 No additives 0 NAD 100 NADP 35 7 bottles The activity against NAD is expressed as 100 ■) Substrate specificity The substrate specificity of this enzyme is determined by using the activity measurement method described in (1) for the substrate sorbosone. The reaction was carried out by replacing the various substances shown in Table 2. As shown in the results of 2nd R, L-sorbosone showed the highest activity against this enzyme. It showed oxidizing activity against glyoxal, glycolaldehyde, glutaraldehyde, pyropionaldehyde, menalglyoxal, acetaldehyde, and romannose.
第」」1
L−ソルボソン 100グリオキサ
ール 33,3グリコールアルデヒ
ド 23.3グルタルアルデヒド
16.7プロピオン7ルデヒド
13.3メチルグリオキサール 10.0
7七トアルデヒド 8.OD−マン
ノース 4.9、ベンズアルデヒ
ド OグリオキシtttO
ゲルコール酸 OD−グルコ
ロン OD−フルクトース
OD−グルコース
OL−ソルボース Oノヒド
ロキシアセトン Oヒドロキシピルビン
酸 Oて表示
■ 至適pH
種々のphのリン酸カリウムam溶液と、アンモニフム
緩衝溶液とを用い、精製酵素のL−ソルボソン説水素#
素活性と、その活性に及ぼすpHの影響を調べ、その結
果をtIS3表に示した0本酵素は、pH約9.0で最
も高い活性を示した6LL
8.0 9>Fllh’)7ムtNllrffiH3’
4.76.5 71.4
7.0 100,07・5
163.38.0
269.48、ONH401+
/NH4Cl、tli溶液 93.99.0
326,510.0
、 一本 pH7,0におけ
ろ活性を100として表示(4)pH安定性
精!J/j¥索を、種々のpHのマツキルベーン緩衝溶
液(0,1Mクエン酸および0.2Mリン酸二ナトリウ
ムの混合物)に添加し、4℃で24時間放置した。残存
活性を上記0)に示した探nA測定条件下で測定した。No. 1 L-Sorboson 100 Glyoxal 33,3 Glycolaldehyde 23.3 Glutaraldehyde
16.7 Propion 7 Rudehyde
13.3 Methylglyoxal 10.0
77taldehyde 8. OD-mannose 4.9, benzaldehyde O glyoxytttO gelcolic acid OD-glucorone OD-fructose
OD-glucose
OL-Sorbose O-Hydroxyacetone O-Hydroxypyruvate Displayed as ■ Optimum pH Using potassium phosphate am solutions of various pH and ammonium buffer solution, purified enzyme L-sorbosone theory hydrogen #
The elementary activity and the effect of pH on the activity were investigated, and the results are shown in the tIS3 table.6LL 8.0 9>Fllh') 7 Mumu, which showed the highest activity at a pH of about 9.0, tNllrffiH3'
4.76.5 71.4
7.0 100,07・5
163.38.0
269.48, ONH401+
/NH4Cl, tli solution 93.99.0
326,510.0
, 1 bottle Displayed with activity at pH 7.0 as 100 (4) pH stability quality! J/j cables were added to pine kilvane buffer solutions (mixture of 0.1 M citric acid and 0.2 M disodium phosphate) at various pHs and left at 4° C. for 24 hours. The residual activity was measured under the nA measurement conditions shown in 0) above.
測定結果を第4表に示した。精製酵素は、pH6,0−
8,0で比較的安定であった。The measurement results are shown in Table 4. The purified enzyme has a pH of 6.0-
It was relatively stable at 8.0.
11に
4 61.6
5 76.8
6 88.9
8 94.9
本 pH7における活性を100として表示(5)熱安
定性
N9I酵索を1mMリン酸カリ9ムam溶液中に、種々
の温度で10分間処理した後、直ちに氷水で冷却した。11 to 4 61.6 5 76.8 6 88.9 8 94.9 The activity at pH 7 is expressed as 100. After treatment for 10 minutes, the mixture was immediately cooled with ice water.
残存活性を、上記(1)に示した標準測定条件下で測定
した。測定結果を第5表に示した。Residual activity was measured under the standard measurement conditions shown in (1) above. The measurement results are shown in Table 5.
精製酵素は、50°Cまで安定であり、60℃では、約
80%の活性を失った。The purified enzyme was stable up to 50°C and lost approximately 80% activity at 60°C.
11表
20℃ 10号 100
30 II 96.440
7 92.9
5 Q it 82 、160
II 21.4本 20℃におけ
る活性を100として表示(6) 至適温度
L−ソルボソン脱水素酵素の酵素活性を、Jユ記(1)
に示した標準測定条件下、25℃−60℃の温度で測定
した。得られた結果をMS6表に示した。11 Table 20℃ No. 10 100 30 II 96.440
7 92.9 5 Q it 82 , 160
II 21.4 bottles The activity at 20°C is expressed as 100 (6) The enzyme activity of L-Sorbosone dehydrogenase at the optimum temperature is shown in J. Yuki (1)
The measurement was carried out at a temperature of 25°C to 60°C under the standard measurement conditions shown in . The obtained results are shown in the MS6 table.
本発明の酵素の活性は、60℃まで温度の上昇と共に上
昇した。The activity of the enzyme of the invention increased with increasing temperature up to 60°C.
第」」【
25 62.5京 30℃
における活性を100として表示σ)分子量
#素溶液を、lO+Mリン酸カリウム援衝溶液(pH7
,0で平衡化したTSK−デルG4000SW(東洋ソ
ーブ社製)高速液体クロマトグラフィーにかけ、同一の
緩衝溶液で展開した。190゜000±20.0001
.:[当する画分に酵素活性が見出された。25 62.5 quintillion 30℃
The activity at is expressed as 100 σ) Molecular weight
, 0, and developed with the same buffer solution. 190°000±20.0001
.. : [Enzyme activity was found in the corresponding fraction.
(8) ミカエリス定WL(K16)の測定標準測定
条件下に大過剰のL−ソルボソンの存在下、種々のN
A DまたはNADP濃度に対する酸化速度の測定し、
Km定数を決定した。その結果、NADとNADPに対
するにm定数は、それぞれ4.55 X 10″″SM
および1.60X10−5Mであった。(8) Measurement of Michaelis constant WL (K16) Under standard measurement conditions, various N
Measuring the oxidation rate versus AD or NADP concentration;
The Km constant was determined. As a result, the m constants for NAD and NADP are 4.55 x 10''SM, respectively.
and 1.60×10 −5 M.
(9)金属イオンの影響
先に述べた測定方法を用い、酵素活性に及ぼす種々の金
属イオンの影響を調べた。得られた結果を第7表に示し
た。 Mg2+とFe2+は、酵素活性を促進するが、
Cu”+は阻害した。(9) Effect of metal ions The effects of various metal ions on enzyme activity were investigated using the measurement method described above. The results obtained are shown in Table 7. Mg2+ and Fe2+ promote enzyme activity, but
Cu”+ inhibited.
第どし人−
無添加 100Mg”
10 113F’e”
1 116Mo”
10 96Cu”
0.1 0−* 無添加の場
合の活性を100として表示(10)阻害剤の影響
先に述べた測定方法を用い、#素話性に及ぼす種々の阻
害剤の影響を調べた。得られた結果を第8表に示した。Daidoshijin – Additive-free 100Mg”
10 113F'e"
1 116Mo”
10 96Cu”
0.1 0-* Activity without additive is expressed as 100 (10) Influence of inhibitors Using the measurement method described above, the influence of various inhibitors on # talkability was investigated. The results obtained are shown in Table 8.
N−エチルマレイミドは、強く酵素活性を阻害した。N-ethylmaleimide strongly inhibited enzyme activity.
11炎
N−エチルマレイミド 10
Ha−モノヨード酢酸 5 57.7ナ
トリウムアノド 5 100ヂチオトレイト
ール 5 119.2無添
−100
本 無添加の場合の活性を100として表示(11)精
製方法
■、−ンルボソン脱水素#素は、通常の#素M製の為に
用いられる方法、例えば、インオン交換クロマトグラフ
ィー、液体クロマトグラフィー、デル濾過、ゲル電気泳
動、塩析、透析等の方法およびそれらの組合わせにより
精製することができる。11 Flame N-ethylmaleimide 10 Ha-monoiodoacetic acid 5 57.7 Sodium anode 5 100 Dithiothreitol 5 119.2 No additives
-100 The activity is expressed as 100 when no additives are used. It can be purified by methods such as chromatography, del filtration, gel electrophoresis, salting out, dialysis, and combinations thereof.
本発明により提供されるL−ソルボソン脱水素酵素は、
適当な微生物を培養し、細胞を破壊し、破壊した細胞の
無細胞抽出物、好ましくは微生物の細胞質から分離およ
び精製することにより調製することができる。The L-sorbosone dehydrogenase provided by the present invention is
It can be prepared by culturing a suitable microorganism, disrupting the cells, and separating and purifying a cell-free extract of the disrupted cells, preferably from the cytoplasm of the microorganism.
本発明において使用する微生物は、グルコノバクタ−属
に属する微生物またはその変異株である。The microorganism used in the present invention is a microorganism belonging to the genus Gluconobacter or a mutant strain thereof.
最新の分類に例えば、グルコノバクタ−に属する全ての
菌株は、グルコノバクタ−・オキシダンス種に帰属する
。グルコ/バクター・オキシダンスに属する菌株の形!
@学的および生物学的Vf徴は、パーノイズ・マニュア
ル・オブ・システマチック・バクテリオロジ−(Ber
gey’s Manual ofS ysLema
tic B ncterioloBy)V ol、
I % PIS 275頁−第278頁、19
84年およびエフ・ボッセル(F”、 Gossele
)等、インターナショナル・ジャーナル・オブ・システ
マチック・バクテリオロシー(1nternaLion
al J 、 S ystem+B acterio
l、 Vol、 33、第65頁−第81頁、1983
年に記載されて・する。For example, all strains belonging to the latest classification, Gluconobacter, belong to the species Gluconobacter oxydans. The shape of a strain belonging to Gluco/Bacter oxydans!
The biological and biological Vf signatures are described in the Pernoise Manual of Systematic Bacteriology (Bernois Manual of Systematic Bacteriology).
gey's Manual of SysLema
ticB ncterioloBy)Vol,
I% PIS pages 275-278, 19
1984 and F”, Gossele
), International Journal of Systematic Bacteriology (1nternaLion), etc.
al J, System+B acterio
Vol. 33, pp. 65-81, 1983
It was written in 2013.
本発明において使用するグルコノバクタ−属に属する微
生物は、自然界から単離することがでさ、また寄託機関
から入手可詣である。また、それから誘導された変異株
も本発明において使用することがでさる。The microorganisms belonging to the genus Gluconobacter used in the present invention can be isolated from nature or are available from depositories. Mutant strains derived therefrom can also be used in the present invention.
本発明において使用される変異株は、野性味を紫外線照
射、X線照射もしくはγ線照射するか、または亜硝酸塩
もしくは他の適当な突然変異原と接触させることにより
、または自然的突然変異により生ずるクローンを単離す
ることにより得ることができる。これらの野性味または
その突然変異株の突然変異は、その目的のためにそれ自
体当業者に良く知られたいずれの方法によっても起すこ
とができる。これらの方法の多くは、例えば、出島、吉
日および賀田編、講談社すイエンス社1973年発行の
“化学的変異原”等の種々の出版物に記@されている。The mutant strains used in the present invention are generated by UV, X- or gamma-irradiation of wild plants, or by contacting them with nitrite or other suitable mutagens, or by natural mutation. It can be obtained by isolating a clone. Mutations of these wild flavors or mutant strains thereof can be effected for that purpose by any method familiar per se to the person skilled in the art. Many of these methods are described in various publications, such as "Chemical Mutagen," edited by Dejima, Yoshihichi, and Kata, published by Kodansha Jens, 1973.
本発明における突然変異株は、グルコノバクタ−・オキ
シダンス種に属する菌株の細胞融合および変X4誘発お
よび/または細胞融合との組合せによっても得ることが
できる。The mutant strain of the present invention can also be obtained by cell fusion of a strain belonging to the species Gluconobacter oxydans in combination with mutant X4 induction and/or cell fusion.
本発明において最も好ましい菌株は、グルコツノずフタ
−・オキシダンスUV−10,グルコ/バクター・オキ
シダンスE−1、グルコノバクタ−・オキシダンスH−
2、グルコノバクタ−・オキシダンスl、−8等である
。これらの菌株は、工業技術院微生物工業技術研究所に
それぞれ下記の受託番号のもとに寄託されている。なお
、下記微生物の国内寄託は、昭和62年1月29日付で
ブタベスト条約に基づく国際寄託に移管され、それぞれ
下記の受託番号が付されている。The most preferred strains in the present invention are Gluconobacter oxydans UV-10, Gluco/Bacter oxydans E-1, and Gluconobacter oxydans H-
2, Gluconobacter oxidans l, -8, etc. These strains have been deposited with the Institute of Microbial Technology, Agency of Industrial Science and Technology under the following accession numbers. The domestic deposit of the following microorganisms was transferred to the international deposit based on the Butabest Treaty on January 29, 1988, and each microorganism has the following accession number.
グルコノバクタ−・オキシダンスus−i o:r微工
研菌寄PtrJ8422号J(FERN−PNo、84
22)、
[電工研究条寄ttS1267号J(FERM BP
−1267)
グルコノバクタ−・オキシダンスE−1:「微工研薗寄
第8353号J(F″ERM−PNo、8353)、・
[微工研条寄第1265号J(FERM BPグルコ
ノバクタ−ΦオキシグンスH−2:「徽工研菌、寄第8
354号J(FERM−PNo、8354)、
「機工研条寄第1266号J(FERM−BPグルコノ
バクタ−・オキシダンスL−8「機工げ菌寄第8355
号J(FERM−PNo、8355)、
[徽工研条寄第1268号J(FERMBP微生物は、
好気的条件下、適当な栄養源を補った液体培地中で培養
することができる。培養は、pH4,0−約8.0、好
ましくは、pH4,5−6゜5で行なうことができる培
養時間は、使用する微生物および栄芸培地によって種々
外なるが、好ましくは、約10−100時間である。培
養を行なうのに好適な温度範囲は、約10℃−40℃、
好ましくは、25℃−35℃である。Gluconobacter oxydans us-io:r microtechnical laboratory PtrJ8422J (FERN-PNo. 84
22), [Electrical Engineering Research Article ttS1267 No. J (FERM BP
-1267) Gluconobacter oxidans E-1: FERM BP Gluconobacter Φ Oxyguns H-2: “Hikou Research Institute, 8th
No. 354 J (FERM-P No. 8354), “Kikoken Joyo No. 1266 J (FERM-BP Gluconobacter Oxidans L-8 “Kikou Kenjoyo No. 8355
No. J (FERM-P No. 8355), [FERMBP No. 1268 J (FERM-P No. 8355),
It can be cultured under aerobic conditions in a liquid medium supplemented with suitable nutrient sources. Cultivation can be carried out at pH 4.0 to about 8.0, preferably pH 4.5 to 6.5. Cultivation time varies depending on the microorganism and nutrient medium used, but is preferably about 10 to 6.5. It is 100 hours. The suitable temperature range for culturing is approximately 10°C to 40°C;
Preferably it is 25°C-35°C.
培地は通常、同化し得る炭素源、例えば、グリセリン、
D−マンニトール、D−ソルビトール、エリトリトール
、リビトール、キシリトール、アラビトール、イノシト
ール、とルシトール、D−リボース、D−フルクトース
、D−7コース、D−グルコース、グルコン酸塩、L−
ソルボース、マルトースおよびスクロース、好ましくは
、L−ソルボース、D−ソルビトールまたはグリセリン
;消火可能な窒素源、例えば、ペプトン、酵母抽出物、
大豆粉およびコーンスチープリカー等の有機物質、例え
ば、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウムおよび硝酸カ
リ等の無機物質;ビタミン類および微量元素類等の栄1
!源を含む必要が有る。The medium usually contains an assimilable carbon source, e.g. glycerin,
D-mannitol, D-sorbitol, erythritol, ribitol, xylitol, arabitol, inositol, and lucitol, D-ribose, D-fructose, D-7cose, D-glucose, gluconate, L-
sorbose, maltose and sucrose, preferably L-sorbose, D-sorbitol or glycerin; extinguishable nitrogen sources such as peptone, yeast extract,
Organic substances such as soy flour and corn steep liquor; inorganic substances such as ammonium sulfate, ammonium chloride and potassium nitrate; vitamins and trace elements etc.
! It is necessary to include the source.
培養後、微生物からL−ソルボソン脱水素#素を単離お
よび精製するための一失施態様を、以下簡単に記述する
。An embodiment for isolating and purifying L-sorbosone dehydrogenase from microorganisms after culturing will be briefly described below.
(1) 遠心分離によって、培1!液から細胞を採取
する。(1) Culture 1 by centrifugation! Harvest cells from the fluid.
(2) i留水、生理食塩水または適当なpHを有す
る緩([溶液で採取した細胞を洗浄する。(2) Wash the collected cells with distilled water, physiological saline or a mild solution with an appropriate pH.
■ 洗浄した細胞を緩衝溶液に懸濁させ、ホモジナイザ
ー、履音波処理器またはリゾチーム処理等により破壊し
、細胞の破壊溶液を得る。(2) Suspend the washed cells in a buffer solution and disrupt them using a homogenizer, sonicator, lysozyme treatment, etc. to obtain a cell disruption solution.
(4)破壊した細胞の無細胞抽出物、好ましくは微生物
の細胞質分画からL−ソルボソン脱水素#素を単離およ
び精製する。(4) Isolate and purify L-sorbosone dehydrogenase from a cell-free extract of disrupted cells, preferably a cytosolic fraction of a microorganism.
本発明によって提供されるL−ソルボソン脱水素酵素は
、L・−ソルボソンから2− K G Aを生産するた
めの触媒として有用である1反応は、NAD*たはNA
DPの存在下、リン酸カリウム緩衝溶液、アンモニウム
緩衝溶液等の溶液中、約5゜0−約10.0のp)(値
において行なわせなければならない。反応を行わせるの
に好ましい温度範囲は、約20℃−約70℃である。9
Hおよび温度を、それぞれpH約8.0−9.0お上び
60°Cに設定した場合、反応は最も好ましい結果をも
たらす、溶液中のL−ソルボソンの濃度は、他の反応条
件によって種々外なるが、一般的には、約10−100
g/jtが好ましく、約30−40g/が最も好ましい
。L-Sorbosone dehydrogenase provided by the present invention is useful as a catalyst for producing 2-KGA from L-Sorbosone. One reaction is NAD* or NA
It must be carried out in the presence of DP in a solution such as potassium phosphate buffer, ammonium buffer, etc. at a p) (value of about 5° to about 10.0. The preferred temperature range for carrying out the reaction is , about 20°C to about 70°C.9
The reaction gives the most favorable results when H and temperature are set at about pH 8.0-9.0 and 60 °C, respectively; the concentration of L-sorbosone in solution can be varied depending on other reaction conditions. Generally speaking, about 10-100
g/jt is preferred, and about 30-40 g/jt is most preferred.
反応において、酵素は、適当な担体で固定化した状態で
使用することもでさる。一般に知られでいる#索固定の
いかなる手段も使用することができる0例えば、官能基
を有する樹脂の膜、微粒等に#素を直接結合させてもよ
く、またはゲルタルクアルデヒド等の二官能基を有する
橋状化合物を介してfllfflに結合させてもよい。In the reaction, the enzyme can also be used in a state immobilized on a suitable carrier. Any commonly known means for fixing #wires can be used. For example, #element may be directly bonded to a resin film, fine particles, etc. having a functional group, or a difunctional group such as gel talquardehyde can be used. It may be bonded to fllffl via a bridging compound having the following.
以下、実施例により本発明を説明する。The present invention will be explained below with reference to Examples.
実施例I
L−ソルボソン脱水素酵素の調製
(1) グルコノバクタ−φオキシグンスLJV−1
0(徽工研条寄第1267号)の培養
グルフッバクター・オキシダンスUV−10(徽工研条
寄第1267号)の寒天斜面培養物を、No。Example I Preparation of L-sorbosone dehydrogenase (1) Gluconobacter-φoxyguns LJV-1
An agar slant culture of Glufubacter oxydans UV-10 (Hui Technological Research Institute No. 1267) was cultured at No.
3B培地51を含む試験管に植菌し、27°Cで3日間
、往復振盪機上で培養した。該培地は、L−ソルボース
7.0%、グリセリン0.05%、酵母エキス(オリエ
ント社製)1.5%、M g S O4・7H200,
25%お上りCa COy 1 、0%を含有する。培
養物1偽Iを前記と同一の培地50j1を含む5001
三角フラスコに#C種し、30℃で3日間、回転浸透椴
上(180r、p、m、)で培養した。The cells were inoculated into test tubes containing 3B medium 51 and cultured on a reciprocating shaker at 27°C for 3 days. The medium contained 7.0% L-sorbose, 0.05% glycerin, 1.5% yeast extract (manufactured by Orient), MgSO4.7H200,
Contains 25% Ca COy 1 and 0%. Culture 1 mock I was grown in the same medium 5001 as above containing 50j1.
Seed #C in an Erlenmeyer flask and cultured on a rotary infiltration chamber (180r, p, m,) at 30°C for 3 days.
得られた培養物8001を、No、3B培地20!を含
む301の発酵槽に接種した6発酵槽を、30℃、40
0 r、p、+a、で攪拌し、1 v、v、m、(=空
気の容量/培地の容量7分)で通気した。40時団培*
a、菌体な集めるために培養物を採取した。The obtained culture 8001 was transferred to No. 3B medium 20! 6 fermenters inoculated into 301 fermenters containing
It was stirred at 0 r, p, + a, and aerated at 1 v, v, m (=volume of air/volume of medium 7 min). 40 o'clock party *
a. Cultures were collected to collect bacterial cells.
jH1液を、1 、500 r、p、m、(365Xg
)で10分間遠心し、炭酸カルシウムを除去し、更に、
8゜000 r、p、m、(10,000Xg)で遠心
し、菌体な得た。得られた菌体の固まりを、0.85%
の生理食塩水で1回洗浄した。この様にして、培1!液
201から湿潤菌体374gを得た。jH1 solution, 1,500 r, p, m, (365Xg
) for 10 minutes to remove calcium carbonate, and
The cells were centrifuged at 8°000 r, p, m (10,000×g) to obtain bacterial cells. The obtained bacterial mass was reduced to 0.85%.
Washed once with physiological saline. In this way, cultivation 1! 374 g of wet bacterial cells were obtained from the liquid 201.
(2) 細胞質画分のa製
前記工程(1)で得られたグルコノバクタ−・オキシダ
ンスの面体94gを、生理食塩水で2回洗浄した。洗浄
した菌体を、10+sMリン酸カリウム緩衝溶液470
1に懸濁し、ガラスピーズ(0,1−φ)を入れたグイ
ノミル(ウィリーエイ、パツコ7エン社製>m体破砕機
を用い、2,000r、pom。(2) Production of Cytoplasmic Fraction (a) 94 g of the Gluconobacter oxydans face piece obtained in step (1) above was washed twice with physiological saline. The washed bacterial cells were added to 10+sM potassium phosphate buffer solution 470
1 and glass peas (0,1-φ) using a Guino Mill (Willi A, Patsuko 7 En Co., Ltd. > m-body crusher) at 2,000 r, pom.
で4分間処理し、破砕した。4.000r、p、載(1
゜800 Xg)で10分間遠心し、生菌体を除去した
後、無細胞抽出液を、40.000 r、p、s+、(
80eo o o Xg)で1時間遠心した。得られた
上澄み液を、細胞質画分(470m1)として集めた。for 4 minutes and crushed. 4.000r, p, listed (1
After centrifuging at 800 xg for 10 minutes to remove viable cells, the cell-free extract was centrifuged at 40.000 r, p, s+, (
The mixture was centrifuged at 80 eo o o xg for 1 hour. The resulting supernatant was collected as a cytoplasmic fraction (470ml).
(3) ジエチルアミ/エチルセルロースCl−6B
カラムクロマトグラフイー
全ての操作は、4℃で行なった。グルコノバクタ−・オ
キシダンスuv−ioの細胞質画分4701を、10−
Mリン酸カリウム緩衝溶液(pb7゜0)で15時間透
析した。透析した細胞質画分を、透析時と同様の緩衝溶
液で平衡化したクエチルアミノエチル(以下、DEAE
と称す)セルロースCL−6Bカラムに注いだ。その後
、カラムを前記と同様の緩衝溶液で洗浄し、#素を、緩
衝溶液中の塩化ナトリウム濃度を0から0.2Mまだの
直線濃度勾配溶出法により溶出させた。約0.i Mの
塩化ナトリウムで溶出した@号中に本酵素活性が見い出
された0次に、活性画分をプールし、10+Mリン酸カ
リウム41衝溶液(pH7,0)で5時間透析した。(3) Diethylamide/ethylcellulose Cl-6B
Column chromatography All operations were performed at 4°C. The cytoplasmic fraction 4701 of Gluconobacter oxydans uv-io was
Dialysis was performed for 15 hours against M potassium phosphate buffer solution (pb 7°0). The dialyzed cytoplasmic fraction was equilibrated with quethylaminoethyl (hereinafter referred to as DEAE) in the same buffer solution as used during dialysis.
(referred to as ) onto a cellulose CL-6B column. Thereafter, the column was washed with the same buffer solution as above, and # element was eluted by a linear gradient elution method at a sodium chloride concentration of 0 to 0.2M in the buffer solution. Approximately 0. The enzyme activity was found in the solution eluted with iM sodium chloride. Next, the active fractions were pooled and dialyzed against 10+M potassium phosphate 41 buffer solution (pH 7.0) for 5 hours.
(4)DEAEセファデックスA−40カラムクロマト
グラフイー
透析した溶液を、前記と同様の緩衝W液で平衡化したD
EAEセファデックスA−50カラムクロマトグラフイ
ー(2,5φX13ea+)にかけた。(4) DEAE Sephadex A-40 column chromatography The dialyzed solution was equilibrated with the same buffer W solution as above.
It was subjected to EAE Sephadex A-50 column chromatography (2,5φX13ea+).
カラムを前記と同様のa*Saで洗浄し、酵素溶出液を
、tIL衝溶液溶液中化ナトリウム濃度を0゜2Mまで
の直線濃度勾配溶出により調製した。活性画分を集め、
10+sMリン酸カリウム緩衝溶液(pH7,0)で透
析した。The column was washed with a*Sa as described above, and the enzyme eluate was prepared by linear concentration gradient elution up to a sodium concentration of 0°2M in the tIL buffer solution. Collect the active fraction,
Dialysis was performed against 10+sM potassium phosphate buffer solution (pH 7.0).
6) ブルーセファロースCl−6Bカラムクロマト
、グラフィー
次に、透析した溶液を、ブルーセファロースCL−6B
カラム(1,5φX10cm)にかけた、カラムを前記
と同様の緩衝液でベースラインまで洗浄した後、酵素の
溶出を、塩化ナトリウム濃度を0.6Mまでの直線濃度
勾配溶出法により溶出させた。0.25M塩化ナトリウ
ムの所で、本酵素活性が溶出された。ピーク付近の比活
性は、はは復工程の概要を第9表に示した。6) Blue Sepharose Cl-6B column chromatography, then the dialyzed solution was purified using Blue Sepharose CL-6B column chromatography.
After washing the column (1.5 φ x 10 cm) to the baseline with the same buffer as above, the enzyme was eluted by a linear concentration gradient elution method with a sodium chloride concentration of up to 0.6M. The enzyme activity was eluted at 0.25M sodium chloride. The specific activity near the peak is summarized in Table 9.
1災友
細胞TM6600,0 324.3 49,1
100DEAH−セフ
ァロース
CL−QB 33B、3 239
.7 708,5 73.9ブルーセフ
(6) 精製酵素の純度
精gi#素の純度を調べるために、ポリアクリルアミド
デル電気泳動(分離ゲルニア、5%アクリル7ミド、電
気泳動の条件:20mA、4°C1arvf間)を行な
った。酵素は、単一のバンドを示し、更iこ、L−ソル
ボソン10t)+++g、ニトロブルーテトラゾリウム
5mg%NAD25mgおよび7エナジンメソサル7エ
イト5−gを含む0.05Mリン酸緩衝溶1(pH7、
0)50 a+Iで30分間染色することによって、こ
の蛋白が酵素活性を有することを確認した。1 Disaster Friends Cell TM6600,0 324.3 49,1
100DEAH-Sepharose CL-QB 33B, 3 239
.. 7 708,5 73.9 Blue Ceph (6) Purification of Purified Enzyme In order to check the purity of the purified enzyme, polyacrylamide del electrophoresis (Separated Gernia, 5% acryl 7mide, electrophoresis conditions: 20 mA, 4° C1arvf) was performed. The enzyme showed a single band and was prepared using a 0.05 M phosphate buffer solution 1 (pH 7,
It was confirmed that this protein had enzymatic activity by staining with 0)50 a+I for 30 minutes.
酵素の純度と分子量を調べるために、5DS−ポリアク
リルアミドデル電気泳動(分難デル:12゜5%アクリ
ルアミド、電気泳動の条件:20mA、室温、3時間)
を行なった。In order to check the purity and molecular weight of the enzyme, 5DS-polyacrylamide del electrophoresis (delta: 12° 5% acrylamide, electrophoresis conditions: 20 mA, room temperature, 3 hours)
I did it.
その結果、本酵素はso、ooo±5,000(本文σ
)で与えられる分子量から4個の同一サブユニットから
同化構成されることを示す)の分子量をもつ単一のバン
ドを与えた0分子量の標準試料として、7オス7オリレ
ースB(MW、92,500)、好手血清アルブミン(
MW、6(3,200)、卵アルブミン(MW、45.
000)、カーボニックアンヒドラーゼ(MW、31,
000)、ソイビーントリプンンインヒビダー(MW1
21.500 )およびリゾチーム(MW、14,40
0)を用いた。As a result, this enzyme has so,ooo±5,000 (text σ
As a standard sample of 0 molecular weight, 7 male 7 orylace B (MW, 92,500 ), good serum albumin (
MW, 6 (3,200), egg albumin (MW, 45.
000), carbonic anhydrase (MW, 31,
000), Soy Bean Trypton Inhibitor (MW1
21.500) and lysozyme (MW, 14,40
0) was used.
■ 反応生成物の確認
精32#素0 、2 ml、 0 、5 Mリン酸カ
リウム緩衝溶a(pH7,0)0,1ml、0.5Mソ
ルボソン0゜11.14糟M NADo、4mlを含
有し、蒸留水で全量を1−1にした反応溶液を、30℃
で60分間反応させた0反応生成物を、薄層クロマトグ
ラフィーおよび高速液体クロマトグラフィーにより分析
した。その結果、生成物は、標品と比較して2−KGA
であると同定した。■ Confirmation of reaction product Contains 32# element 0,2 ml, 0,5 M potassium phosphate buffer solution a (pH 7,0) 0,1 ml, 0.5 M Sorboson 0°11.14 M NADo, 4 ml The reaction solution, made up to a total volume of 1-1 with distilled water, was heated at 30°C.
The reaction product reacted for 60 minutes was analyzed by thin layer chromatography and high performance liquid chromatography. As a result, the product has 2-KGA compared to the standard.
It was identified that
実施例2
実施例1に述べたと同様にして、グルコ/バクター・オ
キシダンスE−1(徴工研条寄第1265号)、グルコ
ノバクタ−・オキシダンスH−2(機工研条寄第126
6号)およびグルコノバクタ−・オキシダンスし−8(
機工研条寄第1268号)からL−ソルボソン脱水素酵
素を単離し、物理化学的性質を測定した。その結果、こ
れら菌株から得られた#索は、グルコノバクタ−・オキ
シダンスUV−10(機工研条寄第1267号)から得
られた酵素と同一の性質を示した。Example 2 In the same manner as described in Example 1, Gluconobacter oxydans E-1 (Kikoken Joyori No. 1265) and Gluconobacter oxydans H-2 (Kikoken Joyori No. 126) were prepared.
No. 6) and Gluconobacter oxidans-8 (
L-sorbosone dehydrogenase was isolated from Kikoken Joyori No. 1268) and its physicochemical properties were measured. As a result, the # cords obtained from these strains showed the same properties as the enzyme obtained from Gluconobacter oxydans UV-10 (Kikoken Joyori No. 1267).
実施例3
実施例1の工程(1)一工程(2)に記載した方法によ
って得られたグルフッバクター・オキシダンスUV−1
0(徴工研条寄第1267号)の無細胞抽出物(総酵素
活性:115ユニット)100ml、0.5Mリン酸カ
リウムt1gi溶[(pH7、0)50 ml、10%
L−ソルボソン溶液501m!および水300論lを含
有する反応混合溶液を、ゆるやかに攪拌しながら、30
℃で培養した。その結果、2−ケトーL−クロン酸が、
’700 wag/ hrの速度で生成した。Example 3 Gurhubacter oxydans UV-1 obtained by the method described in step (1) and step (2) of Example 1
100 ml of cell-free extract (total enzyme activity: 115 units) of 0 (Chokoken Joyori No. 1267), 50 ml of 0.5 M potassium phosphate t1gi solution [(pH 7, 0), 10%
L-Sorbosone solution 501m! and 300 liters of water with gentle stirring.
Cultured at ℃. As a result, 2-keto L-chloric acid
It was produced at a rate of '700 wag/hr.
代 理 人 弁理士 小出島 平 吉、°′1手続補正
書(自制
昭和62年9月1日
特許庁長官 小 川 邦 夫 殿
1、事件の表示
昭和62年特許願第137818号
2、発明の名称
酵素およびその製造方法
3、補正をする者
事件との関係 特許出願人
4、代理人 〒107
5、補正命令の日付 なし
6、補正の対象
明細書のr特許請求の範囲」の欄及び
「発明の詳細な説明」の欄
(1)本願特許請求の範囲の記載(明細書第1頁第5行
〜第3頁第5行)を別紙のとおり訂正する。Representative Patent Attorney Hiroyoshi Kodejima, °'1 Procedural Amendment (self-imposed September 1, 1985 Kunio Ogawa, Commissioner of the Patent Office 1, Indication of Case 1988 Patent Application No. 137818 2, Invention Name: Enzyme and its manufacturing method 3. Relationship with the case of the person making the amendment Patent applicant: 4. Agent: 107 5. Date of amendment order: None. "Detailed Description of the Invention" column (1) The statement of the scope of the claims (page 1, line 5 of the specification to page 3, line 5) is corrected as shown in the attached sheet.
(2)明細書第6頁下から第3行にrNDAJとあるを
rNADJと訂正する。(2) In the third line from the bottom of page 6 of the specification, rNDAJ is corrected to rNADJ.
(3)同第7頁第8行に「エビコン810、」とあるを
rエビコン810.1と訂正する。(3) On page 7, line 8, the text "Ebicon 810," is corrected to r Ebicon 810.1.
(4)同第8頁下から第3行に「ピロピオンアルデヒド
、メチルグリオキサール、」とあるをrプロピオンアル
デヒド、メチルグリオキサール、」と訂正する。(4) In the third line from the bottom of page 8, the text ``propionaldehyde, methylglyoxal'' is corrected to ``rpropionaldehyde, methylglyoxal''.
(5)同第8頁下から第2行に[ローマンノースJとあ
るをrD−マンノース1と訂正する。(5) On the second line from the bottom of page 8, [Roman North J is corrected to read rD-Mannose 1.
(6)第14頁第3行に「酸化速度の測定し、」とある
を「酸化速度を測定し、1と訂正する。(6) On page 14, line 3, correct the text ``Measure the oxidation rate,'' to ``Measure the oxidation rate,'' to 1.
(7)同第18頁第12行に「グルコノバクタ−・オキ
シダンスUS−10Jとあるをrグルコノバクタ−・オ
キシダンスUV−10Jと訂正する。(7) On page 18, line 12, "Gluconobacter oxydans US-10J is corrected to r-Gluconobacter oxydans UV-10J."
(8)同第19頁下から第6行に「行なうことができる
培養時間は、」とあるを2行なうことができる。培養時
間は、1と訂正する。(8) On the 6th line from the bottom of page 19, it says ``The culture can be carried out for as long as possible.'' It can be done twice. Correct the culture time to 1.
(9)同第20頁第8行に「消火可能な」とあるをr消
化可能な1と訂正する。(9) On page 20, line 8 of the same document, the phrase "extinguishable" is corrected to read "1" which is extinguishable.
(10)同第21頁下から第3行に「約30−40g/
」とあるをr約30−40g、#Jと訂正する。(10) On page 21, line 3 from the bottom, it says “about 30-40g/
” is corrected to r about 30-40g, #J.
(11)同第22頁下から第4行に「オリエント社製」
とあるをrオリエンタル社製jと訂正する。(11) "Made by Orient" in the 4th line from the bottom of page 22
Correct the statement to read "r" made by Oriental Co., Ltd.
(12)同第24真下から第6行にro、2Mまだの」
とあるをro、2Mまでの1と訂正する。(12) ro from just below No. 24 to row 6, 2M still there.”
Correct the statement as ro, 1 up to 2M.
(13)同第29頁第6行に「培養した。」とあるをr
振とうした。」と訂正する。(13) On page 29, line 6 of the same page, the text “Cultivated.”
I shook it. ” he corrected.
以上
(別紙)
[特許請求の範囲]
r(1)補酵素としてニコチンアミドアデニンジヌクレ
オチドまたはニコチンアミドアデニンジヌクレオチド燐
酸の存在下、L−ソルボムンの2−ケトーL−クロン酸
への酸化を触媒し、かつ以下の物理化学的性質
a)至適PH:約9
b)至適温度:約60℃
C)分子量:190,000±20.000(50,0
00±5 、OOOの分子量を有する4個のサブユニッ
トからなる)
d)阻害HCu”およびN−エチルマレイミドによって
阻害される
を有する新規なL−ソルボソン脱水素酵素。Above (Attachment) [Claims] r(1) Catalyzes the oxidation of L-sorbomun to 2-keto L-chloric acid in the presence of nicotinamide adenine dinucleotide or nicotinamide adenine dinucleotide phosphate as a coenzyme. , and the following physicochemical properties a) Optimum pH: Approximately 9 b) Optimum temperature: Approximately 60°C C) Molecular weight: 190,000 ± 20.000 (50,0
00±5, consisting of four subunits with a molecular weight of OOO) d) A novel L-sorbosone dehydrogenase with inhibition HCu'' and N-ethylmaleimide.
(2)m胞内に新規なL−ソルボソン脱水素酵素産生能
を有し、グルコノバクタ−(Gluconobacte
r)属に属する微生物またはその変異株を培養し、細胞
を破壊し、更に破壊した細胞の無細胞抽出物、好ましく
は微生物の細胞質からL−ソルボソン脱水素酵素を単離
および請製することを特徴とすることを特徴とする新規
なL−ソルボソン脱水素酵素の製造方法。(2) It has a novel ability to produce L-sorbosone dehydrogenase within the m cell, and Gluconobacter
r) Cultivating a microorganism belonging to the genus or a mutant strain thereof, disrupting the cells, and further isolating and contracting L-sorbosone dehydrogenase from a cell-free extract of the disrupted cells, preferably from the cytoplasm of the microorganism. A novel method for producing L-sorbosone dehydrogenase, which is characterized by the following characteristics:
(3)微生物がグルコノバクタ−・オキシダンス(Gl
uconobaetar oxydans)種に属する
微生物である特許請求の範囲第2項に記載の新規なL−
ソルボソン脱水素酵素の製造方法。(3) The microorganism is Gluconobacter oxidans (Gl
The novel L-microorganism according to claim 2, which is a microorganism belonging to the species
Method for producing Sorbosone dehydrogenase.
(4)微生物がグルコノバクタ−・オキシダンスUV−
10(機工研菌寄第8422号:微工研条寄第1267
号)グルコノバクタ−・オキシダンスE−1(機工研菌
寄第8353号:微工研条寄第1265号)、グルコノ
バクタ−・オキシダンスH−2(機工研菌寄第8354
号:微工研条寄第1266号)およびグルコノバクタ−
・オキシダンスL−8(機工研菌寄第8355号:微工
研条寄第1268号)からなる群から選ばれた一種の微
生物である特許請求の範囲第3項に記載の新規なL−ソ
ルボソン脱水素酵素の製造方法。(4) The microorganism is Gluconobacter oxidans UV-
10 (Mechanical Engineering Research Institute No. 8422: Engineering Research Institute No. 1267
No.) Gluconobacter oxydans E-1 (Kikoken Bacteria No. 8353: Fiber Engineering Research Institute No. 1265), Gluconobacter oxydans H-2 (Kikoken Bacteria No. 8354)
No.: Microtechnical Research Institute No. 1266) and Gluconobacter
・The novel L-8 according to claim 3, which is a type of microorganism selected from the group consisting of Oxidans L-8 (Kikoken Bokuyori No. 8355: Kaikoken Joyori No. 1268). Method for producing Sorbosone dehydrogenase.
(5)L−ソルボソンを2−KGAに酸化する方法Gこ
おいて、補酵素としてNADまたはNADPの存在下、
特許請求の範囲第1項に記載のL−ソルボソン脱水素酵
素により酸化を触媒させることを特徴とする方法、j(5) Method G of oxidizing L-sorbosone to 2-KGA, in the presence of NAD or NADP as a coenzyme,
A method characterized in that the oxidation is catalyzed by L-sorbosone dehydrogenase according to claim 1, j
Claims (5)
チドまたはニコチンアミドアデニンジヌクレオチド燐酸
の存在下、L−ソルボリンの2−ケト−L−クロン酸へ
の酸化を触媒し、かつ以下の物理化学的性質 a)至適pH:約9 b)至適温度:約60℃ c)分子量:190,000±20,000(50,0
00±5,000の分子量を有する4個のサブユニット
からなる) d)阻害:Cu^2^+およびN−エチルマレイミドに
よって阻害される を有する新規なL−ソルボソン脱水素酵素。(1) Catalyzes the oxidation of L-sorboline to 2-keto-L-chloric acid in the presence of nicotinamide adenine dinucleotide or nicotinamide adenine dinucleotide phosphate as a coenzyme, and has the following physicochemical properties a) Optimum pH: Approximately 9 b) Optimum temperature: Approximately 60°C c) Molecular weight: 190,000±20,000 (50,0
d) Inhibition: A novel L-sorbosone dehydrogenase with inhibition by Cu^2^+ and N-ethylmaleimide.
を有し、グルコノバクター(Gluconobacte
r)属に属する微生物またはその変異株を培養し、細胞
を破壊し、更に破壊した細胞の無細胞抽出物、好ましく
は微生物の細胞質からL−ソルボソン脱水素酵素を単離
および精製することを特徴とすることを特徴とする新規
なL−ソルボソン脱水素酵素の製造方法。(2) It has a novel ability to produce L-sorbosone dehydrogenase in cells, and Gluconobacter (Gluconobacter)
r) Cultivating a microorganism belonging to the genus or its mutant strain, disrupting the cells, and further isolating and purifying L-sorbosone dehydrogenase from a cell-free extract of the disrupted cells, preferably from the cytoplasm of the microorganism. A novel method for producing L-sorbosone dehydrogenase, characterized by:
uconobacter oxydans)種に属する
微生物である特許請求の範囲第2項に記載の新規なL−
ソルボソン脱水素酵素の製造方法。(3) The microorganism is Gluconobacter oxydans (Gl
The novel L-microorganism according to claim 2, which is a microorganism belonging to the species
Method for producing Sorbosone dehydrogenase.
10(微工研菌寄第8422号:微工研条寄第1267
号)グルコノバクター・オキシダンスE−1(微工研菌
寄第8353号:微工研条寄第1265号)、グルコノ
バクター・オキシダンスH−2(微工研菌寄第3354
号:微工研条寄第1266号)およびグルコノバクター
・オキシダンスL−8(微工研菌寄第8355号:微工
研条寄第1268号)からなる群から選ばれた一種の微
生物である特許請求の範囲第3項に記載の新規なL−ソ
ルボソン脱水素酵素の製造方法。(4) The microorganism is Gluconobacter oxydans UV-
10 (Feikoken Jyoyori No. 8422: Microtechnical Research Institute No. 1267
No.) Gluconobacter oxydans E-1 (Feikoken Bacteria No. 8353: Fiber Science and Technology Research Institute No. 1265), Gluconobacter oxydans H-2 (Fiber Science Laboratories No. 3354)
A type of microorganism selected from the group consisting of Gluconobacter oxydans L-8 (Feikoken Bacteria No. 8355: Fiber Science Institute No. 1268) A novel method for producing L-sorbosone dehydrogenase according to claim 3.
いて、補酵素としてNADまたはNADPの存在下、特
許請求の範囲第1項に記載のL−ソルボソン脱水素酵素
により酸化を触媒させることを特徴とする方法。(5) A method for oxidizing L-sorbosone to 2-KGA, characterized in that the oxidation is catalyzed by L-sorbosone dehydrogenase according to claim 1 in the presence of NAD or NADP as a coenzyme. How to do it.
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB8613429 | 1986-06-03 | ||
GB868613429A GB8613429D0 (en) | 1986-06-03 | 1986-06-03 | Enzyme |
GB8708908 | 1987-04-14 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS62294082A true JPS62294082A (en) | 1987-12-21 |
Family
ID=10598846
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62137818A Pending JPS62294082A (en) | 1986-06-03 | 1987-06-02 | Enzyme and its production |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS62294082A (en) |
GB (1) | GB8613429D0 (en) |
-
1986
- 1986-06-03 GB GB868613429A patent/GB8613429D0/en active Pending
-
1987
- 1987-06-02 JP JP62137818A patent/JPS62294082A/en active Pending
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
EUR.J.APPL.MICRODIOL.=1975 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
GB8613429D0 (en) | 1986-07-09 |
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