JPS6216426A - Antitumor component spf-10 and production thereof - Google Patents

Antitumor component spf-10 and production thereof

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JPS6216426A
JPS6216426A JP60152326A JP15232685A JPS6216426A JP S6216426 A JPS6216426 A JP S6216426A JP 60152326 A JP60152326 A JP 60152326A JP 15232685 A JP15232685 A JP 15232685A JP S6216426 A JPS6216426 A JP S6216426A
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antitumor
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Abstract

NEW MATERIAL:An antitumor consitutent component SPF-10. Elementary analysis value (%); C; 45.6-46.1; H, 6.5-5.6; N, 14.8-15.4; O, 29.8-32.2. Ash, 0.9-2.1. Decomposition point; Browns at 165 deg.C and decomposes black at 240 deg.C. [alpha]D<20>=-65.0--85.0 (C=1.00). Molecular weight (measured by the gel filtration method); About 1,000-500,000. Color reaction; Positive to the anthrone-sulfuric acid reaction, Lowry reaction, etc. Solubility; Soluble in water and insoluble and slightly soluble in methanol, acetone, etc. USE:An antitumor agent capable of inhibiting the growth of cancerated cultivated leukocyte cells L1210. PREPARATION:A microorganism of the genus Streptococcus and capable of producing SPF-10, e.g. Streptococcus pyogenes, is anaerobically cultivated at 35-37 deg.C by the spinner culture method, and a penicillin is added thereto 5-10hr after the logarithmic growth phase to accumulate a large amount of SPF-10, which is then separated and purified by salting out with ammonium sulfate and column chromatography to afford the aimed SPF-10.

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、・新規な抗腫瘍性成分SPF−10及びその
製法に関するものである。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a novel antitumor component SPF-10 and a method for producing the same.

従来、溶血性連鎖状球菌(以下溶連菌という)の生菌体
を弱毒化して製剤化したものは、すてに制癌剤として使
用されている。
Conventionally, preparations prepared by attenuating viable cells of hemolytic streptococcus (hereinafter referred to as hemolytic streptococci) have been used as anticancer agents.

また、溶連菌の菌体を破砕抜水または塩類溶液で有効成
分を抽出し、有機溶媒を加えて、抗腫瘍性成分を沈澱と
して、回収する方法(特公昭38−1647) 、溶連
菌を溶菌酵素リゾチーム、セルラーゼまたは蛋白質分解
酵素により、溶菌し、活性画分を水溶性区分として分画
する方法(英国特許1163865号)、溶連菌の菌体
を破砕抜水不溶性物質を採取し、核酸分解酵素および蛋
白分解酵素で処理する方法(特開昭55−7014)な
どが知られている。
In addition, there is a method in which the active ingredients of hemolytic streptococcus are extracted by crushing and draining the cells or using a saline solution, and an organic solvent is added to collect the antitumor ingredients as a precipitate (Japanese Patent Publication No. 38-1647). , a method in which cells are lysed using cellulase or proteolytic enzymes, and the active fraction is fractionated as a water-soluble fraction (British Patent No. 1163865); the cells of hemolytic streptococcus are crushed, water-insoluble substances are collected, and nucleolytic enzymes and proteases are used to decompose the cells. A method of treating with an enzyme (Japanese Unexamined Patent Publication No. 55-7014) is known.

このように、ストレプトコッカス属細菌そのものもしく
はその菌体成分に抗腫瘍活性があることは広く知られて
いるのであるが、従来知られたものは、菌体もしくは水
溶性もしくは水不溶性高分子細胞構成物質であるに過ぎ
なかった。菌体もしくは菌体内から有効成分を単離しよ
うとすれば、菌体を溶菌したり、機械的に破砕したりし
て全体を分画しなければならなかった。
As described above, it is widely known that Streptococcus bacteria themselves or their bacterial cell components have antitumor activity, but what was previously known was that Streptococcus bacteria themselves or their cell components have antitumor activity. It was just that. In order to isolate the active ingredient from the bacterial cells or inside the bacterial cells, the entire bacterial cell had to be fractionated by lysis or mechanical crushing.

このような処理では、精製は複雑となり、有効成分の単
離はきわめて困難であった。実際に分離し、有効成分と
して測定された例では分子量200.000の蛋白質(
特公昭48−43841、特開昭5l−44617)及
び分子量150,000の糖蛋白質(特開昭58−22
026)が知られている程度である。
Such treatments complicate purification and isolation of active ingredients is extremely difficult. In an example that was actually separated and measured as an active ingredient, a protein with a molecular weight of 200,000 (
Japanese Patent Publication No. 48-43841, Japanese Patent Publication No. 51-44617) and a glycoprotein with a molecular weight of 150,000 (Japanese Patent Publication No. 58-22
026) is known.

本発明者らは、先に、溶連菌の培養液中に抗腫瘍性成分
を溶出させる方法を求めて研究したところ、培養中にペ
ニシリン又はその関連物質を添加することによって抗腫
瘍性成分が培養液中に溶出することを見出しく特開昭6
0−92218号)、培養液中から生理活性物質SPF
−1を分離するに至ったのである。(特開昭60−30
689号)本発明者らは、更に、溶連菌の培養濾液中か
らより有効な成分を分離する目的で鋭意研究したところ
1本発明において、癌化白血球培養細胞L1210 (
以下培養細胞L 1210という)の生育を阻止し、か
つ、アンスロン硫酸法による呈色反応陽性の両分である
ことにより特徴づけられる抗腫瘍性成分SPF−10を
分離するに至った。
The present inventors previously conducted research to find a method for eluting antitumor components into the culture solution of hemolytic streptococcus, and found that by adding penicillin or related substances during culture, the antitumor component was released into the culture solution. Unexamined Japanese Patent Publication No. 6, which discovered that elution occurs in
0-92218), physiologically active substance SPF from the culture solution
-1 was isolated. (Unexamined Japanese Patent Publication No. 60-30
No. 689) The present inventors further conducted intensive research with the aim of isolating more effective components from the culture filtrate of hemolytic streptococcus. In the present invention, the cancerous white blood cell culture cell L1210 (
We have now isolated an antitumor component SPF-10, which is characterized by inhibiting the growth of cultured cells (hereinafter referred to as L 1210) and exhibiting a positive color reaction by the Anthrone sulfuric acid method.

本発明の抗腫瘍性成分SPF−10は、元素分折、呈色
反応等から糖を含むペプチド様物質と考えられるが、紫
外線吸収スペクトルから、既知の抗腫瘍性物質とは、相
異する新規な物質と認められるものである。
The antitumor component SPF-10 of the present invention is considered to be a peptide-like substance containing sugar based on elemental analysis, color reaction, etc., but the ultraviolet absorption spectrum shows that it is a novel substance that is different from known antitumor substances. It is recognized as a substance.

本発明は、ストレプトコッカス属に属する抗腫瘍性成分
SPF−10生産菌を培養し、培養物から抗腫瘍性成分
SPF−10を採取することを特徴とする抗腫瘍性成分
SPF−10の製造法を包含するものである。
The present invention provides a method for producing antitumor component SPF-10, which comprises culturing antitumor component SPF-10-producing bacteria belonging to the genus Streptococcus and collecting antitumor component SPF-10 from the culture. It is inclusive.

本発明においては、ストレプトコッカス属に属する抗腫
瘍性成分SPF−10生産菌が広く使用できる。次に抗
腫瘍性成分SPF−10生産菌を記載する。
In the present invention, bacteria that produce the antitumor component SPF-10 belonging to the genus Streptococcus can be widely used. Next, bacteria producing the antitumor component SPF-10 will be described.

(Streptococcus pyogenes)ス
トレプトコッカス・ピオゲネス     ATCC21
546ストレプトコッカス・ピオゲネス     AT
CC21547ストレプトコッカス・ピオゲネス   
  ATCC21548培養液は、肉エキス培地、酵母
エキス培地、プレイン・ハート・インフニージミン培地
(BHI培地)等の天然培地がよく用いられるが、スト
レプトコッカス属細菌の生育に適した培地であれば任意
の培地を使用できる。
(Streptococcus pyogenes) Streptococcus pyogenes ATCC21
546 Streptococcus pyogenes AT
CC21547 Streptococcus pyogenes
Natural media such as meat extract medium, yeast extract medium, plain heart infunizimin medium (BHI medium) are often used as the ATCC21548 culture solution, but any medium suitable for the growth of Streptococcus bacteria may be used. can be used.

培養は、pH5,0〜8.0、好ましくは6.1〜7.
2であり、培養温度は、30〜40℃、好ましくは、3
5〜37℃であり、嫌気的に静置培養または、攪拌培養
を行なうことができる。
The culture is carried out at a pH of 5.0 to 8.0, preferably 6.1 to 7.0.
2, and the culture temperature is 30 to 40°C, preferably 3
The temperature is 5 to 37°C, and static culture or stirring culture can be performed anaerobically.

本発明においては、培養中に適当な時期に、ペニシリン
または、その関連物質を添加することが、抗腫瘍性成分
SPF−10の採取に重要な役割をはだすことになる。
In the present invention, adding penicillin or its related substances at an appropriate time during culture plays an important role in collecting the antitumor component SPF-10.

ペニシリンまたは、その関連物質の添加時間は35〜3
7℃の培養で、対数増殖期にかかって後、3〜20時間
の間、特に5〜10時間が好ましい。その後1〜20時
間、好ましくは3〜15時間培養を継続することにより
、培養中に抗腫瘍性成分SPF−10を多量蓄積させる
ことができる。
The addition time of penicillin or related substances is 35-3
Cultivation at 7° C. is preferably carried out for 3 to 20 hours, particularly 5 to 10 hours after the logarithmic growth phase has taken place. By continuing the culture for 1 to 20 hours, preferably 3 to 15 hours, a large amount of the antitumor component SPF-10 can be accumulated during the culture.

ペニシリンまたはその関連物質としては、すでに知られ
たペニシリンと類似の作用をもつ関連物質であればいか
なるものでもよいが、ペニシリンGが普通用いられる。
Penicillin or its related substances may be any known related substances that have similar effects to penicillin, but penicillin G is commonly used.

添加量は、ペニシリンGで100〜7000単位/rd
、好ましくは、 300〜5000単位/IIIQ培養
液程度で十分である。
The amount added is 100 to 7000 units/rd of penicillin G.
Preferably, about 300 to 5000 units/IIIQ culture solution is sufficient.

ストレプトコッカス属細菌のペニシリンまたは、その関
連物質の添加培養によって得られた培養液は遠心分離に
よって菌体を除去し、濾液に硫安を添加し、50〜90
%飽和度の両分を分取する。得られた抗腫瘍性成分SP
F−10を含む硫安塩析物は、凍結状態で保存すること
もできる。
The culture solution obtained by culturing Streptococcus bacteria with the addition of penicillin or its related substances is centrifuged to remove bacterial cells, and ammonium sulfate is added to the filtrate.
Collect both fractions of % saturation. Obtained antitumor component SP
The ammonium sulfate precipitate containing F-10 can also be stored in a frozen state.

この硫安塩析物から抗腫瘍性成分SPF−10を抽出す
るには、塩析物を緩衝液に溶解し、この水溶液をDEA
Eセルロースカラムに吸着させ、燐酸緩衝液を用いて段
階的に溶出させ、培養細胞L 1210の生育を阻害す
る活性画分を分取し、この活性画分をDEAEセファデ
ックスA−25カラムに吸着させ、これを燐酸緩衝液中
の塩化ナトリウム濃度を直線的に上昇させて溶出を行い
、その緩衝液非吸着部分及び塩化ナトリウム低濃度部分
を分取し、これを脱塩し、凍結乾燥することによって得
ることができるゆ 次に、実施例1で得られた抗腫瘍性成分SPF−10の
凍結乾燥標品は1次のような理化学的性質を示す。
To extract the antitumor component SPF-10 from this ammonium sulfate salt precipitate, the salt precipitate is dissolved in a buffer solution, and this aqueous solution is mixed with DEA.
Adsorb onto a DEAE cellulose column, elute stepwise using phosphate buffer, collect the active fraction that inhibits the growth of cultured cells L 1210, and adsorb this active fraction onto a DEAE Sephadex A-25 column. This is then eluted by linearly increasing the sodium chloride concentration in the phosphate buffer, and the buffer-unadsorbed portion and the low sodium chloride concentration portion are fractionated, desalted, and freeze-dried. The freeze-dried specimen of the antitumor component SPF-10 obtained in Example 1 exhibits the following physical and chemical properties.

1、元素分折’  C45,6〜46.1%H6,5〜
6.6% N  14.8〜15.4% 0 29.8〜32.2% Ash  0.9〜 2.1% 2、分解点 本物質は165℃で褐変し、240℃にな
ると黒色となり分解する。
1. Elemental analysis' C45,6~46.1%H6,5~
6.6% N 14.8-15.4% 0 29.8-32.2% Ash 0.9-2.1% 2. Decomposition point This substance turns brown at 165°C and turns black at 240°C. Disassemble.

3、比旋光度 〔α)fi”=−65,0〜−85,0
(C=1.0O) 4、紫外線吸収スペクトル 本物質0.1%の水溶液の
紫外線吸収スペクトルは第1図に示される。
3. Specific optical rotation [α) fi”=-65,0 to -85,0
(C=1.0O) 4. Ultraviolet absorption spectrum The ultraviolet absorption spectrum of a 0.1% aqueous solution of this substance is shown in FIG.

5、赤外線吸収スペクトル 第2図に示される。5. Infrared absorption spectrum shown in Figure 2.

6、塩基性、酸性、中性の区別 本物質1.0%の水溶
液のpHは6.5である。
6. Distinction between basic, acidic, and neutral The pH of a 1.0% aqueous solution of this substance is 6.5.

7、物質の色 淡褐色 8、呈色反応 ローリ−反応     十 ビューレット反応   十 ニンヒドリン反応   十 アンスロン硫酸反応  十 モーリッシュ反応   十 システィン硫酸反応  十 オルシン塩酸反応   − 9、分子量 ゲル濾過法による測定では分子量約1 、
000〜500,000である。
7. Color of the substance Light brown 8. Color reaction Lowry reaction 10-Buret reaction 10-ninhydrin reaction 10-anthrone sulfuric acid reaction 10-Morisch reaction 10-cystine sulfuric acid reaction 10-orcine hydrochloric acid reaction - 9. Molecular weight When measured by gel filtration method, the molecular weight is approx. 1,
000 to 500,000.

10、溶剤に対する溶解性 水に可溶であるが、メタノ
ール、エタノール、n−プロパノール、アセトン、エチ
ルエーテル、n−ヘキサン、クロロホルム、酢酸エチル
等の溶剤には、難溶又は不溶である。
10. Solubility in solvents It is soluble in water, but poorly soluble or insoluble in solvents such as methanol, ethanol, n-propanol, acetone, ethyl ether, n-hexane, chloroform, and ethyl acetate.

次にin vitroにおける培養細胞L 1210に
対する抗腫瘍性活性の測定方法及びアンスロン硫酸法に
よる呈色反応の方法を示す。
Next, a method for measuring antitumor activity against cultured cell L 1210 in vitro and a color reaction method using the anthrone sulfate method will be described.

抗腫瘍活性の測定方法 抗腫瘍活性の測定は、培養細胞L 1210の生育阻止
率(IR%)の測定により行った。
Method for Measuring Antitumor Activity Antitumor activity was measured by measuring the growth inhibition rate (IR%) of cultured cells L1210.

L 1210細胞を10%FBS添加RPMI 164
0培地(5mg/nカナマイシン含有)に懸濁した。こ
の培養液0.5mgをファルコン2058チューブに注
加し、細胞数がl X 10’cell+/ tube
になるようにした0次いでこの培養液に所定量の標品(
抗腫瘍性成分SPF−10)を目的濃度になるように培
養液に溶解した0、5mgを注加して、37℃で5%C
O□存在下に培養した。標品を添加して48時間後にト
リパンブルーによる染色をおこない、次式によりIR(
%)を算出した。
L 1210 cells in RPMI 164 with 10% FBS
0 medium (containing 5 mg/n kanamycin). Pour 0.5 mg of this culture solution into a Falcon 2058 tube, and adjust the number of cells to 1 x 10'cell+/tube.
Next, a predetermined amount of the preparation (
Add 0.5 mg of the antitumor component SPF-10) dissolved in the culture medium to the desired concentration, and incubate at 37°C with 5% C.
Cultured in the presence of O□. 48 hours after adding the standard, staining with trypan blue was performed, and IR (
%) was calculated.

ここで(A)とは対照群の生細胞数を示す。Here, (A) indicates the number of viable cells in the control group.

対照は標品を含まない培養液0.5mQを用い同時に行
った。
A control was performed at the same time using 0.5 mQ of culture solution containing no standard.

アンスロン硫酸法による呈色反応 脱イオン水に溶解し目的濃度にした標品1mflに2+
nQのアンスロン試薬(0,20grのアンスロンをL
oom Qの濃硫酸に溶解したもの)を注加し、混合3
0分後、標品1mQに代えて脱イオン水1mfiに2m
Qのアンスロン試薬を注加した液を対照として620n
mで吸収を測定する。定量値はグルコースを用いて同様
に測定して得た検量式より求める。
Color reaction by Anthrone sulfuric acid method 2+
nQ Anthrone reagent (0.20gr Anthrone
oom Q dissolved in concentrated sulfuric acid) and mix 3.
After 0 minutes, replace 1 mQ of the standard with 1 mfi of deionized water for 2 m
620n using the solution injected with Q's Anthrone reagent as a control.
Measure the absorption at m. The quantitative value is obtained from a calibration formula obtained by measuring in the same manner using glucose.

次に本発明の実施例を示す。Next, examples of the present invention will be shown.

実施例1 ストレプトコッカス・ピオゲネス (Streptococcus pyogenes) 
ATCC21060をBHI培地100+nQに接種し
て37°C,8時間静置培養をおこなって得た種培養液
を第1表に示す培地AIQに接種し、種培養と同一条件
で嫌気的に前培養を行った。
Example 1 Streptococcus pyogenes
The seed culture solution obtained by inoculating ATCC21060 into BHI medium 100+nQ and static culture at 37°C for 8 hours was inoculated into the medium AIQ shown in Table 1, and pre-cultured anaerobically under the same conditions as the seed culture. went.

第1表 培地A マルトース        0.25%肉エキス   
      1.0% ポリペプトン       1.0% 酵母エキス        0.25%酸性第一燐酸カ
リウム   0.1% 硫酸マグネシウム     0.05%pH=6.8 1OQジャーファーメンタ−に培地A8Qを投入して1
20℃、10分間加熱殺菌後、37℃まで冷却して、前
培養液IQを接種し、37℃、15.5時間、pH6,
8,300回転/分で攪拌しながら窒素置換し、嫌気的
に培養する。次いでペニシリン01000単位/rrr
Q培養液になるように添加して、培養を更に5時間継続
した。得られた培養液を遠心分離にかけて菌体を除去し
た。
Table 1 Medium A Maltose 0.25% Meat Extract
1.0% Polypeptone 1.0% Yeast extract 0.25% Acidic monobasic potassium phosphate 0.1% Magnesium sulfate 0.05% pH = 6.8 Pour medium A8Q into a 10Q jar fermentor and add 1
After heat sterilization at 20°C for 10 minutes, cooled to 37°C, inoculated with preculture solution IQ, incubated at 37°C for 15.5 hours, pH 6,
While stirring at 8,300 revolutions/min, the culture is replaced with nitrogen and cultured anaerobically. Then penicillin 01000 units/rrr
Q culture solution was added, and the culture was continued for an additional 5 hours. The resulting culture solution was centrifuged to remove bacterial cells.

培養濾液には硫酸アンモニウムを添加し、50〜90%
飽和度で沈澱する両分を分取した。この硫安塩析標品を
I Xl0−2M、 pH7,0の燐酸緩衝液(KHz
PO4−Na、HPO4) 300m+2に溶解し、こ
の水溶液をDEAEセルロースカラム(5X 70cm
)に吸着させた後。
Ammonium sulfate was added to the culture filtrate to give a concentration of 50 to 90%.
Both fractions which precipitated at saturation were separated. This ammonium sulfate salting out sample was mixed with IXl0-2M, pH 7.0 phosphate buffer (KHz
PO4-Na, HPO4) was dissolved in 300m+2, and this aqueous solution was applied to a DEAE cellulose column (5X 70cm
) after adsorption.

0.3M塩化ナトリウムを含む上記燐酸緩衝液を用いて
、段階的に溶出させ、アンスロン硫酸法による呈色反応
陽性でかつ培養細胞L 1210の生育を阻害する活性
画分を分取した。
Stepwise elution was performed using the above phosphate buffer containing 0.3 M sodium chloride, and an active fraction that showed a positive color reaction by the Anthrone sulfuric acid method and inhibited the growth of cultured cells L 1210 was collected.

この活性画分を、DEAEセファデックスA−25カラ
ム(2,6x 70cm)に吸着させ、次いで上記燐酸
緩衝液中の塩化ナトリウム濃度を直線的に上昇させて溶
出を行い、アンスロン硫酸法による呈色反応陽性でかつ
培養細胞L 1210の生育を阻害する活性画分を分取
した。
This active fraction was adsorbed on a DEAE Sephadex A-25 column (2.6 x 70 cm), then eluted by linearly increasing the sodium chloride concentration in the phosphate buffer, and colored using the Anthrone sulfuric acid method. An active fraction that showed a positive reaction and inhibited the growth of cultured cells L1210 was collected.

この溶出曲線は第3図に示される。第3図において点線
部分は緩衝液の非吸着部分で、実線部分は塩化ナトリウ
ム濃度を直線的に上昇させて溶出する部分である。Aは
培養細胞L 1210生育阻害活性画分であり、Bは高
分子透過性大腸菌変異株MP−2(特開昭60−306
89)生育阻害活性画分である。
This elution curve is shown in FIG. In FIG. 3, the dotted line part is the part where the buffer solution is not adsorbed, and the solid line part is the part eluted by linearly increasing the sodium chloride concentration. A is a fraction with growth inhibition activity of cultured cell L 1210, and B is a fraction with polymer-permeable E. coli mutant strain MP-2 (Japanese Patent Application Laid-Open No. 60-306
89) Growth inhibiting activity fraction.

Aの活性画分の溶出液は、硫酸アンモニウムを90%飽
和度まで添加し沈澱画分として、上記燐酸緩衝液に溶解
し、透析膜を用いて脱塩後凍結乾燥して、S P F 
−106,5grを得た。
The eluate of the active fraction A was obtained by adding ammonium sulfate to 90% saturation, dissolving the precipitated fraction in the above phosphate buffer, desalting it using a dialysis membrane, and freeze-drying it to obtain S P F
-106.5 gr was obtained.

この抗腫瘍性成分SPF−10を標品とした抗腫瘍活性
試験は実兼例1および2に示される。
Antitumor activity tests using this antitumor component SPF-10 as a standard are shown in Examples 1 and 2.

実施例2 ストレプトコッカス・ピオゲネスATCC21060を
第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様に培養し
た。この場合、ペニシリンGは300単位/IIIQ培
養液となるように添加し、更に培養を10時間継続した
。この培養濾液を実施例1と同様に精製して抗腫瘍性成
分S P F −104,1grを得た。
Example 2 Streptococcus pyogenes ATCC21060 was cultured in the same manner as in Example 1 using medium A shown in Table 1. In this case, penicillin G was added at 300 units/IIIQ culture solution, and the culture was continued for an additional 10 hours. This culture filtrate was purified in the same manner as in Example 1 to obtain the antitumor component S PF-104, 1gr.

実施例3 ストレプトコッカス・ピオゲネスATCC21060を
第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様に培養し
た。この場合ペニシリンGは3000単位/IIN培養
液となるように添加し、更に培養を3時間継続した。こ
の培養濾液を実施例1と同様に精製して抗腫瘍性成分S
 P F −106,8grを得た。実施例4 ストレプトコッカス・ピオゲネスATCC21060を
第2表に示す培地Bを用いて実施例1と同様に培養した
。この場合ペニシリンGは1000単位/mQ培養液と
なるように添加し、更に培養を5時間継続した。この培
養濾液を実施例1と同様に精製して抗腫瘍性成分SPF
−105,6grを得た。
Example 3 Streptococcus pyogenes ATCC21060 was cultured in the same manner as in Example 1 using medium A shown in Table 1. In this case, penicillin G was added at a concentration of 3000 units/IIN culture solution, and the culture was continued for an additional 3 hours. This culture filtrate was purified in the same manner as in Example 1 to obtain antitumor component S.
PF-106.8 gr was obtained. Example 4 Streptococcus pyogenes ATCC21060 was cultured in the same manner as in Example 1 using medium B shown in Table 2. In this case, penicillin G was added at a concentration of 1000 units/mQ culture solution, and the culture was continued for an additional 5 hours. This culture filtrate was purified in the same manner as in Example 1 to obtain the antitumor component SPF.
-105.6 gr was obtained.

第2表 培地B マルトース        0.1% 肉エキス         0.5% ポリペプトン      1・0% 酵母エキス       0.25% 塩化ナトリウム     0.1% PH=7.2 実施例5 ストレプトコッカス・ピオゲネスATCC21060を
第3表に示す培地Cを用いて、実施例1と同様に35℃
で培養した。この場合、ペニシリンGはtoo。
Table 2 Medium B Maltose 0.1% Meat extract 0.5% Polypeptone 1.0% Yeast extract 0.25% Sodium chloride 0.1% PH=7.2 Example 5 Streptococcus pyogenes ATCC21060 in Table 3 Using medium C as shown, 35°C in the same manner as in Example 1.
It was cultured in In this case, penicillin G is too.

単位/mQ培養液となるように添加し、更に培養を5時
間継続した。この培養濾液を実施例1と同様に精製して
抗腫瘍性成分SPF−105,5grを得た。
Unit/mQ culture solution was added, and the culture was continued for further 5 hours. This culture filtrate was purified in the same manner as in Example 1 to obtain the antitumor component SPF-105.5gr.

第3表 培地C マルトース        0.1% 肉エキス         0.5% ポリペプトン       0.5% カザミノ酸        0.3% 酵母エキス        0.5% 酸性第一燐酸カリウム   0.1% 硫酸マグネシウム     0.05%pH=6.5 実施例6 ストレプトコッカス・ピオゲネスATCC21060を
第4表に示す培地りを用いて実施例1と同様に培養した
。この場合ペニシリンGは1000単位7mn培養液と
なるように添加し、更に培養を5時間継続した。この培
養濾液を実施例1と同様に精製して抗腫瘍性成分SPF
−105,9grを得た。
Table 3 Medium C Maltose 0.1% Meat extract 0.5% Polypeptone 0.5% Casamino acids 0.3% Yeast extract 0.5% Acidic potassium monophosphate 0.1% Magnesium sulfate 0.05% pH= 6.5 Example 6 Streptococcus pyogenes ATCC21060 was cultured in the same manner as in Example 1 using the culture medium shown in Table 4. In this case, penicillin G was added in an amount of 1,000 units per 7 mL of culture solution, and the culture was further continued for 5 hours. This culture filtrate was purified in the same manner as in Example 1 to obtain the antitumor component SPF.
-105.9 gr was obtained.

第4表 培地D マルトース        0.25%カザミノ酸  
      0.3% 酵母エキス        1.0% 酸性第一燐酸カリウム   0.1% 硫酸マグネシウム     0.05%pH=6.9 実施例7 ストレプトコッカス・エスピーATCC21597を第
1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様に培養した
。この場合ペニシリンGは1000単位/mQ培養液と
なるように添加し、更に培養を5時間継続した。この培
養濾液を実施例1と同様に精製して抗腫瘍性成分SPF
−103Jgrを得た。
Table 4 Medium D Maltose 0.25% Casamino Acid
0.3% Yeast extract 1.0% Acidic potassium monophosphate 0.1% Magnesium sulfate 0.05% pH=6.9 Example 7 Streptococcus sp. ATCC 21597 was tested using medium A shown in Table 1. Culture was carried out in the same manner as in Example 1. In this case, penicillin G was added at a concentration of 1000 units/mQ culture solution, and the culture was continued for an additional 5 hours. This culture filtrate was purified in the same manner as in Example 1 to obtain the antitumor component SPF.
-103Jgr was obtained.

実施例8 ストレプトコッカス・ピオゲネスATCC21546を
第1表に示す培地Aを用いて実施例1と同様に培養した
。この場合、ペニシリンGは1000単位/laQ培養
液となるように添加し、更に培養を5時間継続した。こ
の培養濾液を実施例1と同様に精製して抗腫瘍性成分S
PF−103,8grを得た。
Example 8 Streptococcus pyogenes ATCC21546 was cultured in the same manner as in Example 1 using medium A shown in Table 1. In this case, penicillin G was added at a concentration of 1000 units/laQ culture solution, and the culture was further continued for 5 hours. This culture filtrate was purified in the same manner as in Example 1 to obtain antitumor component S.
PF-103.8gr was obtained.

実施例9 ストレプトコッカス・ピオゲネスATCC21547を
第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様に培養し
た。この場合、ペニシリンGは1000単位/mQ培養
液となるように添加し、更に培養を5時間継続した。こ
の培養濾液を実施例1と同様に精製して抗腫瘍性成分S
PF−104,6grを得た。
Example 9 Streptococcus pyogenes ATCC21547 was cultured in the same manner as in Example 1 using medium A shown in Table 1. In this case, penicillin G was added at a concentration of 1000 units/mQ culture solution, and the culture was continued for an additional 5 hours. This culture filtrate was purified in the same manner as in Example 1 to obtain antitumor component S.
PF-104.6gr was obtained.

実施例1゜ ストレプトコッカス・ピオゲネスATCC21548を
第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様に培養し
た。この場合、ペニシリンGは1000単位/mQ培養
液となるように添加し、更に培養を5時間継続した。こ
の培養濾液を実施例1と同様に精製して抗腫瘍性成分S
PF −102,3grを得た。
Example 1 Streptococcus pyogenes ATCC 21548 was cultured in the same manner as in Example 1 using medium A shown in Table 1. In this case, penicillin G was added at a concentration of 1000 units/mQ culture solution, and the culture was continued for an additional 5 hours. This culture filtrate was purified in the same manner as in Example 1 to obtain antitumor component S.
PF-102.3gr was obtained.

実施例11 ストレプトコッカス・ピオゲネスATCC21060を
第1表に示した培地Aを用いて実施例1と同様に培養し
た。この場合、セファロスポリンCは600μg/mQ
培養液となるように添加し、更に培養を5時間継続した
。この培養濾液を実施例1と同様に精製して抗腫瘍性成
分SPF−102,4grを得た。
Example 11 Streptococcus pyogenes ATCC21060 was cultured in the same manner as in Example 1 using medium A shown in Table 1. In this case, cephalosporin C is 600μg/mQ
The mixture was added to form a culture solution, and the culture was continued for an additional 5 hours. This culture filtrate was purified in the same manner as in Example 1 to obtain the antitumor component SPF-102.4gr.

実験例1 実施例1で得られた抗腫瘍性成分SPF−10のインビ
トロ(in vitro)における抗腫瘍活性試験は、
本文中に記載した抗腫瘍活性の測定方法により行い、そ
の結果を表−5に示す。
Experimental Example 1 The in vitro antitumor activity test of the antitumor component SPF-10 obtained in Example 1 was as follows:
The antitumor activity was measured using the method described in the text, and the results are shown in Table 5.

表−53PF−10の抗腫瘍活性の結果SPF−10(
mg/ m12)       IR%2・0    
     100 1.0         98 0.5         89 実験例2 実施例1で得られた抗腫瘍性成分SPF−10のインビ
;f、  (in VIVO)における抗腫瘍活性試験
はCRJ−CD−1(I CR系、雌性7週齢)マウス
を使用して実施した。
Table 53 Results of antitumor activity of PF-10 SPF-10 (
mg/m12) IR%2・0
100 1.0 98 0.5 89 Experimental Example 2 The in vitro antitumor activity test of the antitumor component SPF-10 obtained in Example 1 was conducted using CRJ-CD-1 (ICR system). The experiment was carried out using female mice (7 weeks old).

腫瘍細胞としてはサルコーマ−180腹水癌細胞を用い
、これを生理食塩水に浮遊させ、マウスの腹腔内に5 
X 10’cells/マウス接種した。
Sarcoma-180 ascites cancer cells were used as the tumor cells, suspended in physiological saline, and intraperitoneally injected into the mouse.
X 10' cells/mouse were inoculated.

癌細胞接種24時間後から1日1回5日間連続してSP
F−10を腹腔内に投与してその生存数をgt察し、そ
の結果を表−6に示す。
SP once a day for 5 consecutive days starting 24 hours after cancer cell inoculation
F-10 was administered intraperitoneally and the number of survivors was counted, and the results are shown in Table 6.

表−63PFの抗腫瘍活性−マウスの生存数日数   
        0   10   15   20 
  25   30対照        7/7 2/
7 0/7 0/7 0/7 0/7SPF−10(5
■/マウス)  7/7 7/7 7/7 4/7 4
/7 3/7
Table - Antitumor activity of 63PF - Days of survival of mice
0 10 15 20
25 30 control 7/7 2/
7 0/7 0/7 0/7 0/7SPF-10(5
■/Mouse) 7/7 7/7 7/7 4/7 4
/7 3/7

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of drawings]

第1rMは抗腫瘍性成分SPF−10の紫外線吸収スペ
クトルを示し、第2図は同じく赤外線吸収スペクトルを
示す。第3図は実施例1における活性画分のDEAEセ
ファデックスA−25カラムの溶出曲線を示す図である
。 代理人 弁理士 戸 1)親 男 第  1  図 0m 第  3  図 →F
1rM shows the ultraviolet absorption spectrum of the antitumor component SPF-10, and FIG. 2 also shows the infrared absorption spectrum. FIG. 3 is a diagram showing the elution curve of the active fraction in Example 1 on a DEAE Sephadex A-25 column. Agent Patent attorney Door 1) Parent Male No. 1 Diagram 0m Diagram 3 → F

Claims (3)

【特許請求の範囲】[Claims] (1)下記の理化学的性質を有する抗腫瘍性成分SPF
−10。 1、元素分折C 45.6〜46.1% H 6.5〜6.6% N 14.8〜15.4% O 29.8〜32.2% Ash 0.9〜2.1% 2、分解点 本物質は165℃で褐変し、240℃にな
ると黒色となり分解する。 3、比旋光度〔α〕^2^0_D=−65.0〜−85
.0(C=1.00) 4、紫外線吸収 スペクトル本物質0.1%の水溶液の
紫外線吸収スペクトルは第1図に示される。 5、赤外線吸収スペクトル 第2図に示される。 6、塩基性、酸性、中性の区別 本物質1.0%の水溶
液のpHは6.5である。 7、物質の色 淡褐色 8、呈色反応 ローリー反応 + ビューレット反応 + ニンヒドリン反応 + アンスロン硫酸反応 + モーリッシュ反応 + システイン硫酸反応 + オルシン塩酸反応 − 9、分子量 ゲル濾過法による測定では分子量約1,0
00〜500,000である。 10、溶剤に対する溶解性 水に可溶であるが、メタノ
ール、エタノール、n−プロパノール、アセトン、エチ
ルエーテル、n−ヘキサン、クロロホルム、酢酸エチル
等の溶剤には、難溶又は不溶である。
(1) Antitumor component SPF with the following physical and chemical properties
-10. 1. Elemental analysis C 45.6-46.1% H 6.5-6.6% N 14.8-15.4% O 29.8-32.2% Ash 0.9-2.1% 2. Decomposition point This substance turns brown at 165°C and turns black at 240°C and decomposes. 3. Specific rotation [α] ^2^0_D = -65.0 to -85
.. 0 (C=1.00) 4. Ultraviolet absorption spectrum The ultraviolet absorption spectrum of a 0.1% aqueous solution of this substance is shown in FIG. 5. Infrared absorption spectrum shown in Figure 2. 6. Distinction between basic, acidic, and neutral The pH of a 1.0% aqueous solution of this substance is 6.5. 7. Color of substance Light brown 8. Color reaction Lowry reaction + Biuret reaction + Ninhydrin reaction + Anthrone sulfuric acid reaction + Molish reaction + Cysteine sulfuric acid reaction + Orsine hydrochloric acid reaction - 9. Molecular weight Molecular weight approximately 1 when measured by gel filtration method ,0
00 to 500,000. 10. Solubility in solvents It is soluble in water, but poorly soluble or insoluble in solvents such as methanol, ethanol, n-propanol, acetone, ethyl ether, n-hexane, chloroform, and ethyl acetate.
(2)ストレプトコッカス属に属する抗腫瘍性成分SP
F−10生産菌を培養し、培養物から抗腫瘍性成分SP
F−10を採取することを特徴とする抗腫瘍性成分SP
F−10の製法。
(2) Antitumor component SP belonging to the genus Streptococcus
Cultivate F-10 producing bacteria and extract antitumor component SP from the culture.
Antitumor component SP characterized by collecting F-10
Manufacturing method of F-10.
(3)ストレプトコッカス属に属する抗腫瘍性成分SP
F−10生産菌を培養するに際し、培養中の適当な時間
にペニシリン又はその関連物質を添加して培養すること
を特徴とする特許請求の範囲第2項に記載の抗腫瘍性成
分SPF−10の製法。
(3) Antitumor component SP belonging to the genus Streptococcus
The antitumor component SPF-10 according to claim 2, characterized in that when culturing the F-10 producing bacteria, penicillin or a related substance is added at an appropriate time during the culturing. manufacturing method.
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