JPS6153336B2 - - Google Patents

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JPS6153336B2
JPS6153336B2 JP57212104A JP21210482A JPS6153336B2 JP S6153336 B2 JPS6153336 B2 JP S6153336B2 JP 57212104 A JP57212104 A JP 57212104A JP 21210482 A JP21210482 A JP 21210482A JP S6153336 B2 JPS6153336 B2 JP S6153336B2
Authority
JP
Japan
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purified
extracted
extract
neem bark
antitumor
Prior art date
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Application number
JP57212104A
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Japanese (ja)
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JPS58144322A (en
Inventor
Masaki Shimizu
Takeo Nomura
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Terumo Corp
Original Assignee
Terumo Corp
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Publication date
Application filed by Terumo Corp filed Critical Terumo Corp
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Priority to DE19833305047 priority patent/DE3305047A1/en
Priority to US06/466,553 priority patent/US4536496A/en
Priority to GB08304461A priority patent/GB2120265B/en
Priority to CH937/83A priority patent/CH653349A5/en
Priority to FR8302708A priority patent/FR2522001B1/en
Priority to IT19655/83A priority patent/IT1193678B/en
Publication of JPS58144322A publication Critical patent/JPS58144322A/en
Publication of JPS6153336B2 publication Critical patent/JPS6153336B2/ja
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  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 発明の背景 技術分野 本発明は抗腫瘍性ニーム樹皮抽出精製物および
その製造法に関する。 さらに詳しくは、本発明はニーム樹皮の熱水抽
出物を特定の方法で精製して得られる抗腫瘍性ニ
ーム樹皮抽出精製物およびその製造法に関するも
のである。本発明の抽出精製物は癌の治療薬とし
て有用である。 先行技術 従来ニーム抽出物が種々な薬理作用を有するこ
とは知られている。即ち、ニームの樹皮、葉部、
花部、果実、枝部、根皮または樹脂を水または親
水性溶媒で抽出するかあるいは微粉砕して皮膚化
粧料を得る方法(特公昭52−28853、同52−28854
および同53−10125)、上記ニーム原料を親水性溶
媒および(または)熱水で抽出して抗菌作用、胃
腸・肝臓機能改善作用を有する成分を得る方法
(特公昭53−10124)および上記ニーム原料を疎水
性溶媒で抽出して皮膚疾患およびリユウマチの治
療に有効な成分を得る方法(特公昭53−13689)
が報告されている。 本発明者等は先にニーム樹皮の熱水抽出物が抗
腫瘍作用を有することを見い出したが、さらに研
究を進めた結果、ニーム樹皮熱水抽出物を特定の
方法で処理した抽出精製物が一層強い抗腫瘍作用
を有することを知り本発明を完成した。 発明の目的 従つて本発明の目的は、制癌剤として有用なニ
ーム樹皮抽出精製物を提供することにある。本発
明の抽出精製物は新規な物質であつて後述する如
く、ザルコーマ180腹水型および固形型マウス移
植腫瘍並びにメスA固形型マウス移植腫瘍に対し
て強い抑制活性を示し、特に定着固形腫瘍に対し
て著効を示す。 本発明の目的はさらに上記ニーム樹皮抽出精製
物の製造法を提供することにある。 発明の具体的説明 本発明は第1に、ニーム樹皮を熱水で抽出し、
該抽出物をアルコール沈澱法または透析膜法によ
り精製し、得られた精製物を水に溶解し、該水溶
液を分画分子量約1×103〜1×105乃至1×103
〜2×105の分子篩剤を用いて分子篩処理し、3
つに分れる多糖体画分のうち、最初の画分を採取
して得られる抗腫瘍性ニーム樹皮抽出精製物であ
る。この抽出精製物は下記の物理化学的特性を有
する。 (イ) 色と形状 凍結乾燥品は白色粉末または淡黄褐色粉末で
ある。 (ロ) 赤外線吸収スペクトル 第1図に示す通りである(実施例1における
抽出精製物)。 IRνKBr naxcm-1:3400、1630、1030 (ハ) 紫外線吸収スペクトル 水溶液中の測定で吸収極大を示さず、末端吸
収のみを示す。 (ニ) 溶解性 水に可溶でメタノール、エタノール、アセト
ン、エーテル、クロロホルム、酢酸エチル、ベ
ンゼンおよびヘキサン等の有機溶媒に不溶であ
る。 (ホ) 呈色反応 フエノール硫酸反応、アンスロン硫酸反応に
陽性でヨウ素の添加により青緑色を呈する。 本発明は第2に、ニーム樹皮を熱水で抽出し、
該抽出物をアルコール沈澱法または透析膜法によ
り精製し、得られた精製物を水に溶解し、該水溶
液を分画分子量約1×103〜1×105乃至1×103
〜2×105の分子篩剤を用いて分子篩処理し、3
つに分れる多糖体画分のうち、最初の画分を採取
して得られる上記の物理化学的特性を有する抗腫
瘍性ニーム樹皮抽出精製物の製造法である。 本発明は第3に、上記分子篩処理がゲル過で
あり、上記分子篩剤がゲル過剤である上記ニー
ム樹皮抽出精製物の製造法である。 本発明は第4に、上記ゲル過剤がデキストラ
ンゲル、ポリアクリルアミドゲル、親水性ポリビ
ニル系ゲルまたは多孔性ガラスビーズである上記
ニーム樹皮抽出精製物の製造法である。 本発明方法の原料植物であるニームは学名をメ
リア・アザジラクタ・リンネ(Melia
azadirachta Linn.)またはアザジラクタ イン
デイカ ジヤス(Azadirachta indica Juss)と
いい、熱帯地域に自生する高さ10m以上に達する
木本植物である。本発明の方法においては、ニー
ムの樹皮の熱水抽出液を原料として使用する。ニ
ーム樹皮を熱水で抽出処理する操作は常法に従つ
て行なわれる。即ち、細断したニーム樹皮に熱水
を加えるか、あるいは、ニーム樹皮に水を加え、
その混合物を加熱沸騰させることによつて実施さ
れる。加熱は沸騰水浴中または直火で行うことが
できる。抽出時間は原料の品質等に従つて適宜決
定されるが通常1乃至48時間である。抽出終了
後、抽出混合物を過することにより抽出液が得
られる。かくして得られたニーム樹皮熱水抽出液
には多量の不純物が含まれているので本発明の分
子篩処理工程に供する前に、アルコール沈澱法ま
たは透析膜法により、該抽出液を精製するのが望
ましい。例えば、アルコール沈澱法で精製する場
合には、上記抽出液にメタノール、エタノールの
ようなアルコールを加え、生成した沈澱を常法に
より、例えば遠心分離により採取する。透析膜法
により精製する場合は、該抽出液を透析膜に入
れ、水につけて透析し、透析内液を所望により濃
縮乾固するかまたは凍結乾燥して抽出物を得る。
透析膜としては分画分子量50000以下のもの、例
えばスペクトラ・ポア1〜6(スペクトラム・メ
デイカル・インダストリーズ社製品)、ビスキン
グ・チユーブ(ユニオンカーバイド社製品)が使
用される。アルコール沈澱法または透析膜法で精
製して得られた抽出物を水に溶解して本発明方法
の原料であるニーム樹皮熱水抽出液とする。さら
に、ニーム樹皮の熱水抽出処理に先立つて、ニー
ム樹皮を有機溶媒および(または)常温の水で抽
出前処理することにより、不要成分を予め除去し
ておくことも望ましい。抽出前処理に使用する溶
媒としてはメタノール、エタノール、プロパノー
ル、ピリジン、アセトンのような極性有機溶媒、
ベンゼン、トルエン、キシレン、n−ヘキサン、
クロロホルム、四塩化炭素、酢酸エチルのような
非極性有機溶媒があげられる。本発明の方法にお
ける分子篩処理は望ましくはゲル過剤を用いた
ゲル過によつて行なわれる。ゲル過剤は分画
分子量約1×103〜1×105乃至1×103〜2×105
のものが使用され、デキストランゲル、ポリアク
リルアミドゲル、ポリビニル系のポリマーゲル、
多孔性ガラスビーズ等が好適に使用される。これ
らは例えばセフアデツクスG−100、G−200(フ
アルマシア社製品、スエーデン)、バイオゲルP
−100(バイオラツド社製品、米国)、トヨパール
HW−50(東洋曹達工業社製品、日本)等の製品
名で市販されている。これらのゲル過剤を充填
したカラムに前述したニーム樹皮熱水抽出液を通
し、蒸留水で溶離すると多糖体が3つの画分に分
画される。最初に溶出する画分を集め、蒸留乾固
または凍結乾燥すると目的とする抽出精製物が得
られる。 参考までに、上で得られた抽出精製物をさら
に、分画分子量約1×103〜2×105乃至1×103
〜8×105のゲル過剤(例えばセフアデツクス
G−200、セフアクリルS−300、バイオゲルP−
300、トヨパールHW−60等)を充填したカラム
にかけ蒸留水で溶離すると多糖体がさらに2つの
画分に分画される。最初に溶出する画分を多糖体
A、後に溶出する画分を多糖体Bとする。これら
の多糖体は次の構造および特性を有する。 多糖体A (イ) 構造 α−(1→4)−グルカンの主鎖にアラビノー
スがα−(1→6)結合し、グルコースとアラ
ビノースの構成割合が約5:1の中性多糖体。 (ロ) 色と形状 凍結乾燥品は白色粉末である。 (ハ) 溶解性 水に可溶で、メタノール、エタノール、アセ
トン、エーテル、クロロホルム、酢酸エチル、
ベンゼンおよびヘキサン等の有機溶媒に不溶で
ある。 (ニ) 呈色反応 フエノール硫酸反応、アンスロン硫酸反応に
陽性でヨウ素の添加により青緑色を呈する。 (ホ) 分子量 セフアデツクスG−200カラムゲルクロマト
グラフイで単一のピークを与え、分子量は約
94000である。 (ヘ) 赤外線吸収スペクトル 第2図に示す通りである。 IRνKBr naxcm-1:3400、2930、1620 (ト) 紫外線吸収スペクトル 水溶液中の測定で吸収極大を示さず、末端吸
収のみを示す。 (チ) 13C核磁気共鳴スペクトル 重水中で外部基準にTMS(テトラメチルシ
ラン)を使用して測定した100MHz13C核磁気
共鳴スペクトルは第3図の通りである。 多糖体B (イ) 構造 α−(1→4)−グルカンを主鎖とし、主鎖中
にβ−(1→3)フコースを含み、分枝として
α−(1→6)アラビノースを有し、グルコー
ス、アラビノースおよびフコースの構成割合が
約5:2:1の中性多糖体。 (ロ) 色と形状 凍結乾燥品は白色粉末である。 (ハ) 溶解性 水に可溶で、メタノール、エタノール、アセ
トン、エーテル、クロロホルム、酢酸エチル、
ベンゼンおよびヘキサン等の有機溶媒に不溶で
ある。 (ニ) 呈色反応 フエノール硫酸反応、アンスロン硫酸反応に
陽性でヨウ素の添加により青緑色を呈する。 (ホ) 分子量 セフアデツクスG−200カラムゲルクロマト
グラフイで単一のピークを与え、分子量は約
21000である。 (ヘ) 赤外線吸収スペクトル 第4図に示す通りである。 IRνKBr naxcm-1:3400、2930、1630 (ト) 紫外線吸収スペクトル 水溶液中の測定で吸収極大を示さず、末端吸
収のみを示す。 (チ) 13C核磁気共鳴スペクトル 重水中で外部基準にTMS(テトラメチルシ
ラン)を使用して測定した100MHz13C核磁気
共鳴スペクトルは第5図の通りである。 本発明の抽出精製物は上記多糖体Aおよび多糖
体Bの混合物とみることができ、薬理試験の結
果、ザルコーマ180腹水型および固形型マウス移
植腫瘍並びにメスA固形型マウス移植腫瘍に対し
て顕著な阻止作用を有することが確認された。ま
た上記多糖体AおよびBも同様の薬理活性を示し
た。 従つて制癌剤として使用する場合には、本発明
の抽出精製物をさらに多糖体Aと多糖体Bとに分
離する必要はなく、両者の混合物の状態で、即
ち、本発明の抽出精製物の状態で使用するのが実
際的である。 次に、本発明の抽出精製物の試験例を示す。 試験例 1 ザルコーマ180腹水ガンに対する効果 (試料調製) リン酸緩衝食塩水(ギブコ社製、リン酸9.5m
Mを含む;PBS)に0.5%カルボキシメチルセル
ロース(CMC)を懸濁させた溶液に所定濃度に
なるように試料を溶解させた。 (ザルコーマ180ガン細胞移植) ICRマウス腹腔中で継代培養したザルコーマ
180ガン細胞を腹水とともにとり出し、生理食塩
水で適当に希釈して細胞数が1.0×108個/mlとな
るように調製した。この細胞懸濁液の0.1mlを4
週令雄ICRマウス腹腔へ注射器を用いて移植し
た。従つて1匹あたりの移植細胞数は1.0×107
である。 (試料投与) ザルコーマ180ガン細胞を移植した次の日より
1日1回連続4日間、上に調製した試料を注射器
を用いて腹腔に0.1ml投与した。1試料1濃度に
つき6匹のマウスを使用した。対照は試料の溶剤
として用いた上記CMC入りPBSを同様に投与し
たものとした。投与量の表示はマウス体重1Kgあ
たりのmg数とした。 (効果の判定法) ガン細胞移植後7日目にそれぞれのマウスの体
重を測定した。次に腹腔に貯まつた腹水を全量と
り出した後のマウスの体重を測定した。腹水採取
前後の体重の差を腹水量とする。採取した腹水を
ヘマトクリツト管に吸い込ませ、ヘマトクリツト
測定用ローターを用いて、低温で遠心分離し、血
液のヘマトクリツト値に相当するアサイトクリツ
ト値を得た(腹水中に占めるガン細胞の割合)。
腹水量にこの値を乗ずれば全腹水中の細胞の容量
が得られる。これを全細胞容量(トータル・パツ
クト・セル・ボリユウム;TPCV)とする。対照
では、全腹水量は6〜10ml、TPCVは、1.6〜2.5
mlとなつた。 試料投与マウスのTPCVと対照投与マウスの
TPCVの比(T/C)をとつて100〜66%のもの
をガンに対する効果なし(−)、65〜41%のもの
をやや有効(+)、40〜11%のものを有効(〓)、
10〜0%のものを著効(〓)とする。結果を表1
に示す。
BACKGROUND OF THE INVENTION Technical Field The present invention relates to an antitumor purified neem bark extract and a method for producing the same. More specifically, the present invention relates to an antitumor purified neem bark extract obtained by purifying a hot water extract of neem bark by a specific method, and a method for producing the same. The extracted and purified product of the present invention is useful as a therapeutic agent for cancer. Prior Art It has been known that neem extracts have various pharmacological actions. Namely, neem bark, leaves,
A method for obtaining skin cosmetics by extracting flowers, fruits, branches, root bark, or resin with water or a hydrophilic solvent, or by pulverizing them (Japanese Patent Publications No. 52-28853, No. 52-28854)
and 53-10125), a method for extracting the above neem raw material with a hydrophilic solvent and/or hot water to obtain components having antibacterial effects and gastrointestinal/liver function improving effects (Special Publication No. 53-10124), and the above neem raw material A method for obtaining ingredients effective for the treatment of skin diseases and rheumatoid arthritis by extracting them with a hydrophobic solvent (Special Publication No. 53-13689)
has been reported. The present inventors previously discovered that a hot water extract of neem bark has an antitumor effect, but as a result of further research, a purified product obtained by processing the hot water extract of neem bark using a specific method was found. The present invention was completed after discovering that it has a stronger antitumor effect. OBJECT OF THE INVENTION Accordingly, an object of the present invention is to provide a purified neem bark extract useful as an anticancer agent. The extracted and purified product of the present invention is a novel substance, and as described below, it exhibits strong inhibitory activity against Sarcoma 180 ascites type and solid mouse transplanted tumors and female A solid mouse transplanted tumors, and particularly against established solid tumors. It is shown to be effective. A further object of the present invention is to provide a method for producing the purified neem bark extract. DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention first involves extracting neem bark with hot water;
The extract is purified by alcohol precipitation method or dialysis membrane method, the obtained purified product is dissolved in water, and the aqueous solution has a molecular weight cut-off of about 1×10 3 to 1×10 5 to 1×10 3
Treated with molecular sieve using ~2×10 5 molecular sieve agent,
This is a purified antitumor neem bark extract obtained by collecting the first fraction of the polysaccharide fractions. This extracted and purified product has the following physicochemical properties. (b) Color and shape The freeze-dried product is a white powder or a pale yellowish brown powder. (b) Infrared absorption spectrum As shown in Figure 1 (extracted and purified product in Example 1). IRν KBr nax cm -1 : 3400, 1630, 1030 (c) Ultraviolet absorption spectrum When measured in an aqueous solution, it shows no absorption maximum, but only terminal absorption. (d) Solubility Soluble in water and insoluble in organic solvents such as methanol, ethanol, acetone, ether, chloroform, ethyl acetate, benzene and hexane. (e) Color reaction It is positive for the phenol sulfuric acid reaction and the anthrone sulfuric acid reaction, and exhibits a bluish-green color when iodine is added. Second, the present invention extracts neem bark with hot water,
The extract is purified by alcohol precipitation method or dialysis membrane method, the obtained purified product is dissolved in water, and the aqueous solution has a molecular weight cut-off of about 1×10 3 to 1×10 5 to 1×10 3
Treated with molecular sieve using ~2×10 5 molecular sieve agent,
This is a method for producing a purified antitumor neem bark extract having the above-mentioned physicochemical properties obtained by collecting the first fraction among the polysaccharide fractions. A third aspect of the present invention is the method for producing the purified neem bark extract, wherein the molecular sieving treatment is gel filtration, and the molecular sieving agent is a gel filtration agent. A fourth aspect of the present invention is the method for producing the purified neem bark extract, wherein the gelling agent is dextran gel, polyacrylamide gel, hydrophilic polyvinyl gel, or porous glass beads. The scientific name of neem, which is the raw material plant for the method of the present invention, is Melia azadirachta Linnaeus.
Azadirachta Linn.) or Azadirachta indica Juss is a woody plant that grows over 10 meters in height and grows naturally in tropical regions. In the method of the present invention, a hot water extract of neem bark is used as a raw material. The extraction treatment of neem bark with hot water is carried out according to a conventional method. That is, adding hot water to shredded neem bark or adding water to neem bark;
This is carried out by heating the mixture to boiling. Heating can be carried out in a boiling water bath or over an open fire. The extraction time is appropriately determined depending on the quality of the raw materials, etc., but is usually 1 to 48 hours. After the extraction is completed, the extract mixture is filtered to obtain an extract. Since the neem bark hot water extract thus obtained contains a large amount of impurities, it is desirable to purify the extract by alcohol precipitation or dialysis membrane method before subjecting it to the molecular sieve treatment step of the present invention. . For example, when purifying by alcohol precipitation, an alcohol such as methanol or ethanol is added to the above extract, and the resulting precipitate is collected by a conventional method, for example, by centrifugation. When purifying by a dialysis membrane method, the extract is placed in a dialysis membrane, dialyzed by immersion in water, and the dialyzed solution is concentrated to dryness or freeze-dried as desired to obtain an extract.
As the dialysis membrane, those having a molecular weight cut-off of 50,000 or less are used, such as Spectra Pore 1 to 6 (products of Spectrum Medical Industries) and Visking Tube (products of Union Carbide). The extract obtained by purification by alcohol precipitation method or dialysis membrane method is dissolved in water to obtain a hot water extract of neem bark, which is a raw material for the method of the present invention. Furthermore, prior to the hot water extraction treatment of neem bark, it is also desirable to pre-extract neem bark with an organic solvent and/or water at room temperature to remove unnecessary components in advance. Solvents used for extraction pretreatment include polar organic solvents such as methanol, ethanol, propanol, pyridine, and acetone;
Benzene, toluene, xylene, n-hexane,
Examples include nonpolar organic solvents such as chloroform, carbon tetrachloride, and ethyl acetate. The molecular sieve treatment in the method of the present invention is preferably carried out by gel filtration using a gel filtration agent. The gelling agent has a molecular weight cut-off of approximately 1×10 3 to 1×10 5 to 1×10 3 to 2×10 5
The following are used: dextran gel, polyacrylamide gel, polyvinyl polymer gel,
Porous glass beads and the like are preferably used. These include, for example, Cephadex G-100, G-200 (Pharmacia product, Sweden), Biogel P
-100 (BioRad product, USA), Toyo Pearl
It is commercially available under product names such as HW-50 (manufactured by Toyo Soda Kogyo Co., Ltd., Japan). When the above-described hot water extract of neem bark is passed through a column filled with these gelling agents and eluted with distilled water, the polysaccharide is separated into three fractions. The first eluted fractions are collected and distilled to dryness or freeze-dried to obtain the desired extracted and purified product. For reference, the extracted and purified product obtained above was further analyzed with a molecular weight cut-off of approximately 1×10 3 to 2×10 5 to 1×10 3
~8×10 5 gelling agents (e.g. Cephadex G-200, Cephacryl S-300, Biogel P-
300, Toyopearl HW-60, etc.) and eluted with distilled water, the polysaccharide is further fractionated into two fractions. The fraction eluted first is called polysaccharide A, and the fraction eluted later is called polysaccharide B. These polysaccharides have the following structure and properties. Polysaccharide A (a) Structure A neutral polysaccharide in which arabinose is α-(1→6) linked to the main chain of α-(1→4)-glucan, and the composition ratio of glucose and arabinose is approximately 5:1. (b) Color and shape The freeze-dried product is a white powder. (c) Solubility Soluble in water, methanol, ethanol, acetone, ether, chloroform, ethyl acetate,
Insoluble in organic solvents such as benzene and hexane. (d) Color reaction It is positive for the phenol sulfuric acid reaction and the anthrone sulfuric acid reaction, and exhibits a bluish-green color when iodine is added. (e) Molecular weight It gives a single peak in Sephadex G-200 column gel chromatography, and the molecular weight is approx.
It is 94000. (F) Infrared absorption spectrum As shown in Figure 2. IRν KBr nax cm -1 : 3400, 2930, 1620 (g) Ultraviolet absorption spectrum When measured in an aqueous solution, it shows no absorption maximum, but only terminal absorption. (H) 13 C nuclear magnetic resonance spectrum The 100 MHz 13 C nuclear magnetic resonance spectrum measured in heavy water using TMS (tetramethylsilane) as an external standard is shown in Figure 3. Polysaccharide B (a) Structure The main chain is α-(1→4)-glucan, contains β-(1→3) fucose in the main chain, and has α-(1→6) arabinose as a branch. , a neutral polysaccharide in which the composition ratio of glucose, arabinose and fucose is approximately 5:2:1. (b) Color and shape The freeze-dried product is a white powder. (c) Solubility Soluble in water, methanol, ethanol, acetone, ether, chloroform, ethyl acetate,
Insoluble in organic solvents such as benzene and hexane. (d) Color reaction It is positive for the phenol sulfuric acid reaction and the anthrone sulfuric acid reaction, and exhibits a bluish-green color when iodine is added. (e) Molecular weight It gives a single peak in Sephadex G-200 column gel chromatography, and the molecular weight is approx.
It is 21000. (F) Infrared absorption spectrum As shown in Figure 4. IRν KBr nax cm -1 : 3400, 2930, 1630 (g) Ultraviolet absorption spectrum When measured in an aqueous solution, it does not show an absorption maximum, but shows only terminal absorption. (H) 13 C nuclear magnetic resonance spectrum The 100 MHz 13 C nuclear magnetic resonance spectrum measured in heavy water using TMS (tetramethylsilane) as an external standard is shown in Figure 5. The extracted and purified product of the present invention can be considered to be a mixture of polysaccharide A and polysaccharide B, and as a result of pharmacological tests, it has been shown to be significantly effective against Sarcoma 180 ascites type and solid mouse transplanted tumor and female A solid mouse transplant tumor. It was confirmed that it has a strong inhibitory effect. Moreover, the above-mentioned polysaccharides A and B also showed similar pharmacological activity. Therefore, when used as an anticancer agent, it is not necessary to further separate the purified extracted product of the present invention into polysaccharide A and polysaccharide B, and the purified extracted product of the present invention is used in the state of a mixture of both, that is, in the state of the purified extracted product of the present invention. It is practical to use it in Next, test examples of the extracted and purified product of the present invention will be shown. Test example 1 Effect on Sarcoma 180 ascites cancer (sample preparation) Phosphate buffered saline (manufactured by Gibco, phosphoric acid 9.5m
The sample was dissolved in a solution of 0.5% carboxymethyl cellulose (CMC) suspended in PBS) to a predetermined concentration. (Sarcoma 180 cancer cell transplantation) Sarcoma subcultured in the peritoneal cavity of ICR mice
180 cancer cells were taken out together with ascites fluid and diluted appropriately with physiological saline so that the number of cells was 1.0 x 10 8 cells/ml. 4 0.1 ml of this cell suspension
It was transplanted into the abdominal cavity of a week-old male ICR mouse using a syringe. Therefore, the number of transplanted cells per animal was 1.0×10 7 cells. (Sample Administration) Starting from the next day after transplanting the Sarcoma 180 cancer cells, 0.1 ml of the sample prepared above was administered once a day for 4 consecutive days using a syringe into the abdominal cavity. Six mice were used per sample per concentration. As a control, the above-mentioned PBS containing CMC, which was used as a solvent for the sample, was administered in the same manner. The dosage was expressed as mg per kg of mouse body weight. (Method for determining efficacy) The weight of each mouse was measured on the 7th day after cancer cell transplantation. Next, the weight of the mouse was measured after removing the entire amount of ascites that had accumulated in the abdominal cavity. The difference in body weight before and after ascites collection is considered the amount of ascites. The collected ascitic fluid was sucked into a hematocrit tube and centrifuged at low temperature using a hematocrit measuring rotor to obtain an acytocrit value, which corresponds to the hematocrit value of blood (percentage of cancer cells in ascites).
Multiplying the amount of ascites by this value gives the volume of cells in the total ascites. This is defined as the total cell volume (TPCV). In controls, the total ascitic fluid volume was 6-10 ml, and the TPCV was 1.6-2.5.
It became ml. TPCV of sample-treated mice and control-treated mice
Taking the TPCV ratio (T/C), those with 100-66% are not effective against cancer (-), those with 65-41% are somewhat effective (+), and those with 40-11% are effective (〓) ,
10% to 0% is considered to be markedly effective (〓). Table 1 shows the results.
Shown below.

【表】 試験例 2 ザルコーマ180固型ガンに対する効果 (ザルコーマ180ガン細胞移植) 試験例1と同様にして1.0×108個/mlの細胞懸
濁液を調製した。この懸濁液の0.1mlを4週令、
雄ICRマウス背部皮下に注射器を用いて細胞を移
植した。 (効果判定法) (1) ガン細胞移植後21日目に成長したガン組織を
摘出し、その重量を測定した(1群6匹の平均
値)。この重量と対照のものとの比(T/C)
をとつて効果判定を行つた。対照のガン組織重
量は3.0〜4.5gであつた。比の値が100〜71%
のものを無効(−)、70〜51%のものをやや有
効(+)、50〜21%のものを有効(〓)、20〜0
%のものを著効(〓)とした。結果を表2に示
す。
[Table] Test Example 2 Effect on Sarcoma 180 Solid Cancer (Transplantation of Sarcoma 180 Cancer Cells) A cell suspension of 1.0×10 8 cells/ml was prepared in the same manner as in Test Example 1. 0.1ml of this suspension at 4 weeks of age
Cells were transplanted subcutaneously into the back of male ICR mice using a syringe. (Efficacy evaluation method) (1) Cancer tissue that had grown on the 21st day after cancer cell transplantation was removed, and its weight was measured (average value of 6 animals per group). The ratio of this weight to that of the control (T/C)
The effectiveness was determined based on the results. The control cancer tissue weight was 3.0-4.5 g. Ratio value is 100-71%
Disabled (-), 70-51% somewhat effective (+), 50-21% effective (〓), 20-0
% was marked as a significant effect (〓). The results are shown in Table 2.

【表】 (2) 上記判定法(1)において、ガン細胞移植後21日
目にガン組織を摘出する代りに、35日目にガン
組織を摘出する以外は上記判定法(1)と全く同様
の方法で効果を判定した。結果を表3に示す。
[Table] (2) The above judgment method (1) is exactly the same as the above judgment method (1) except that the cancer tissue is removed on the 35th day after cancer cell transplantation instead of on the 21st day. The effectiveness was determined using the following method. The results are shown in Table 3.

【表】 表1乃至表3から明らかなように、本発明の抽
出精製物は、ザルコーマ180移植ガンに対して強
い抑制効果を有している。 試験例 3 定着固形ガンに対する効果 (1) ザルコーマ180細胞1×107個を雄性ICRマウ
ス(5匹)背部皮下に移植し、飼育した。固形
腫瘍が完全に定着し、1〜2g程の大きさとな
つた10日目から1日1回、5日間マウス腹腔内
に所定量の試料を投与した。移植後21日目に腫
瘍部を切りとりその重量部を対照群と比較し、
試験例2の方法に従つて効果を判定した。結果
を表4に示す。
[Table] As is clear from Tables 1 to 3, the extracted and purified product of the present invention has a strong inhibitory effect on Sarcoma 180 transplanted cancer. Test Example 3 Effect on established solid tumors (1) 1 x 10 7 Sarcoma 180 cells were subcutaneously transplanted into the backs of male ICR mice (5 mice) and raised. A predetermined amount of the sample was intraperitoneally administered to the mouse once a day for 5 days from day 10, when the solid tumor had completely established and reached a size of about 1 to 2 g. On the 21st day after transplantation, the tumor area was cut out and its weight was compared with that of the control group.
Effects were determined according to the method of Test Example 2. The results are shown in Table 4.

【表】 (2) 上記方法において、移植後21日目に腫瘍部を
摘出する代りに35日目に腫瘍部を摘出する以外
は上記方法と全く同様にして定着固形ガンに対
する効果を測定した。結果を表5に示す。
[Table] (2) In the above method, the effect on established solid cancer was measured in exactly the same manner as the above method except that the tumor was removed on the 35th day after transplantation instead of on the 21st day. The results are shown in Table 5.

【表】 試験例 4 経口投与によるザルコーマ180固形型ガンに対
する効果 試験例2および3と同様の条件でザルコーマ
180固形型ガンに対する本発明の抽出精製物の経
口投与による効果を測定した。但し、移植細胞数
は2×106個/マウスとし、判定は32日目の重量
測定により行なつた。また、試料の投与は、所定
濃度の試料を0.1ml/回/マウスずつゾンデを用
いて強制的に胃内に行なつた。結果を表6に示
す。
[Table] Test Example 4 Effect of oral administration on Sarcoma 180 solid cancer Sarcoma 180 under the same conditions as Test Examples 2 and 3
The effect of oral administration of the purified extract of the present invention on 180 solid cancer was measured. However, the number of transplanted cells was 2×10 6 cells/mouse, and the determination was made by weight measurement on the 32nd day. In addition, the sample was forcibly administered into the stomach using a sonde at a rate of 0.1 ml/time/mouse at a predetermined concentration. The results are shown in Table 6.

【表】 表6から、経口投与によつても250mg/Kgで抗腫
瘍効果を有していることが明らかである。 試験例 5 メスA繊維肉腫に対する効果 Balb/Cマウス腹腔中で継代培養したメスA
繊維肉腫(Meth A fibrosarcoma)細胞を腹水
とともにとり出し、生理食塩水で適当に希釈し、
細胞数が1.0×107個/mlとなるように調製した。
この細胞懸濁液の0.1mlを5週令雄Balb/Cマウ
ス背部皮下に注射器を用いて移植した。一匹当り
の移植細胞数は1.0×106個である。試料は、試験
例2および3と同様にして調製し、所定の投与日
に腹腔内に投与した。判定は腫瘍細胞移植21日目
に腫瘍組織を切り出し、その重量を測定すること
によつて行なつた。結果を表7に示す。
[Table] From Table 6, it is clear that oral administration also has an antitumor effect at 250 mg/Kg. Test Example 5 Effect on female A fibrosarcoma Female A subcultured in the peritoneal cavity of Balb/C mice
Fibrosarcoma (Meth A fibrosarcoma) cells were removed together with ascites, diluted appropriately with physiological saline,
The number of cells was adjusted to 1.0×10 7 cells/ml.
0.1 ml of this cell suspension was subcutaneously transplanted into the back of a 5-week-old male Balb/C mouse using a syringe. The number of transplanted cells per animal was 1.0×10 6 cells. Samples were prepared in the same manner as in Test Examples 2 and 3, and administered intraperitoneally on the designated administration day. Judgment was made by cutting out tumor tissue on the 21st day after tumor cell transplantation and measuring its weight. The results are shown in Table 7.

【表】 表7に示すように、同系腫瘍であるメスA繊維
肉腫に対しても、本発明の抽出精製物は25〜100
mg/Kg、8〜10回投与で腫瘍のの増殖を有意に抑
制する。 試験例 6 急性毒性 本発明の抽出精製物を体重20±1gのICR雄性
マウスに投与して急性毒性試験を行なつた結果、
LD50値は、腹腔内投与で600mg/Kg以上、経口投
与では1000mg/Kg以上であつた。 上記の薬理試験の結果からも明らかなように、
本発明の抽出精製物は顕著な抗腫瘍性を有し、毒
性は極めて低いので、制癌剤として優れた性質を
有する。また、定着固形ガンに対して特に強い抑
制効果を有することから本発明の抽出精製物は免
疫賦活型の抗腫瘍作用を有すると考えられる。 本発明の抽出精製物は、各種の癌疾患に対して
有効であり、投与量は、症状、年令、体重などに
よつて異なるが、通常は成人に対して1日100〜
2500mgであり、1〜4回に分けて投与することが
できる。 本発明の抽出精製物は任意所要の製剤用担体ま
たは賦形剤を用いて経口または非経口投与用に製
剤化される。 経口投与用の錠剤、散剤、カプセル剤、顆粒剤
等は慣用の賦形剤例えば炭酸カルシウム、リン酸
カルシウム、とうもろこしでんぷん、馬鈴薯でん
ぷん、砂糖、ラクトース、タルク、ステアリン酸
マグネシウム、アラビアゴム等を含有していても
よい。経口投与用液体製剤は水性または油性懸濁
液、溶液、シロツプ、エリキシル剤その他であつ
てもよい。 注射用製剤は溶液または懸濁液の形態であり、
懸濁化剤、安定剤または分散剤のような処方剤を
含んでいてもよく、滅菌蒸留水、精油たとえばピ
ーナツツ油、とうもろこし油あるいは非水溶媒、
ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコ
ール等を含有していてもよい。 直腸内投与のためには坐剤用組成物の形で提供
され、周知の製剤担体たとえばポリエチレングリ
コール、ラノリン、ココナツト油等を含有してい
てもよい。 次に参考例および実施例を示して本発明をさら
に具体的に説明する。 参考例 ニーム樹皮熱水抽出液の製造 (1) ニーム樹皮乾燥品50gをベンゼン(500ml×
3)およびメタノール(500ml×3)を用いて
室温で24時間抽出前処理し、得られた抽出残渣
を熱水200mlで3回抽出処理した。得られた抽
出液を合し、ロータリーエバポレーターで濃縮
乾固し、1960.5mgの粉末を得た。 (2) 上記(1)で得られた粉末1000mgを水200mlに溶
解し、得られた水溶液に純エタノールを撹拌し
ながら室温で徐々に加え、水溶液中のエタノー
ル濃度が80%になつたときに添加をやめ、生成
した沈澱を遠心分離により採取し、594.5mgの
褐色粉末を得た。 (3) 上記(1)で得られた粉末500mgを水50mlにとか
し、この水溶液をスペクトラ ポア6(分画分
子量50000)に入れ、水に対して透析した。透
析内液をロータリーエバポレーターを用いて濃
縮乾固して褐色の粉末310mgを得た。 実施例 1 上記参考例(2)または(3)で得られたニーム樹皮熱
水抽出物1020mgを20mlの蒸留水に溶解し、セフア
デツクスG−100を充填したカラム(直径7.0cm、
長さ35.0cm)に注ぎ、蒸留水を用いてゲル過を
行つた。フエノール硫酸法で溶出液中の糖含量を
定量しつつゲル過を行うと、多糖体は3つに分
画される。最初に溶出する画分から溶媒を留去
し、目的とするニーム樹皮抽出精製物273mgが得
られた。 参考までに、上記抽出精製物の50mgを5mlの蒸
留水に溶解し、セフアデツクスG−200を充填し
たカラム(直径4.0cm、長さ50.0cm)に注ぎ蒸留
水を用いてゲル過を行つた。フエノール硫酸法
で溶出液中の糖含量を定量しつつゲル過を行う
と多糖体は2つに分画された。最初に溶出する画
分より多糖体Aが18mg、次いで溶出する画分より
多糖体Bが16mg得られた。上記多糖体AおよびB
は、高速液体クロマトおよび電気泳動でそれぞれ
単一の化合物であることを確認した。 上記本発明方法の実施例1において、ゲル過
剤セフアデツクG−100の代りにバイオゲルP−
100を使用しても同様の結果が得られた。 発明の具体的効果 上に詳述した如く、本発明によれば第1に、抗
腫瘍性ニーム樹皮抽出精製物が提供される。本抽
出精製物は文献未載の物質であつて試験例で示し
たように、ザルコーマ180腹水型および固形型マ
ウス移植腫瘍並びにメスA固形型マウス移植腫瘍
等に対して強い抑制活性を示し、毒性は非常に低
いので制癌剤として有用である。 本発明によれば第2に、上記抽出精製物の製造
法が提供される。即ち、該抽出精製物は、ニーム
樹皮を熱水で抽出し、該抽出物をアルコール沈澱
法または透析膜法により精製し、得られた精製物
を水に溶解し、該水溶液を分画分子量約1×103
〜1×105乃至1×103〜2×105の分子篩剤を用
いて分子篩処理し、3つに分れる多糖類の画分の
うち、最初の画分を採取することによつて得られ
る。 本発明によれば第3に、上記抽出精製物の有利
な製造法が提供される。即ち、上記分子篩処理が
ゲル過であり、上記分子篩がゲル過剤である
上記抽出精製物の製造法が提供される。 本発明によれば第4に、上記抽出精製物のさら
に有利な製造法が提供される。即ち、上記ゲル
過剤がデキストランゲル、ポリアクリルアミドゲ
ル、親水性ポリビニル系ゲルまたは多孔性ガラス
ビーズである上記抽出精製物の製造法が提供され
る。
[Table] As shown in Table 7, even for female A fibrosarcoma, which is a syngeneic tumor, the extracted and purified product of the present invention
mg/Kg, 8 to 10 doses significantly inhibit tumor growth. Test Example 6 Acute Toxicity An acute toxicity test was conducted by administering the purified extract of the present invention to ICR male mice weighing 20±1 g.
The LD 50 value was 600 mg/Kg or more for intraperitoneal administration and 1000 mg/Kg or more for oral administration. As is clear from the results of the pharmacological tests mentioned above,
The extracted and purified product of the present invention has remarkable antitumor properties and extremely low toxicity, so it has excellent properties as an anticancer agent. Furthermore, since it has a particularly strong suppressive effect on established solid cancers, the extracted and purified product of the present invention is considered to have an immunostimulatory antitumor effect. The extracted and purified product of the present invention is effective against various cancer diseases, and the dosage varies depending on the symptoms, age, body weight, etc., but is usually 100 to 100 mg per day for adults.
The dose is 2500 mg and can be administered in 1 to 4 doses. The extracted and purified product of the present invention can be formulated for oral or parenteral administration using any necessary pharmaceutical carriers or excipients. Tablets, powders, capsules, granules, etc. for oral administration contain conventional excipients such as calcium carbonate, calcium phosphate, corn starch, potato starch, sugar, lactose, talc, magnesium stearate, gum arabic, etc. Good too. Liquid preparations for oral administration may be aqueous or oily suspensions, solutions, syrups, elixirs, and the like. Injectable preparations are in the form of solutions or suspensions;
It may contain formulation agents such as suspending, stabilizing or dispersing agents, sterile distilled water, essential oils such as peanut oil, corn oil or non-aqueous solvents;
It may contain polyethylene glycol, polypropylene glycol, etc. For rectal administration, they may be provided in the form of suppository compositions and may contain well-known pharmaceutical carriers such as polyethylene glycol, lanolin, coconut oil, and the like. Next, the present invention will be explained in more detail with reference to Reference Examples and Examples. Reference example Production of neem bark hot water extract (1) 50g of dried neem bark was mixed with benzene (500ml x
3) and methanol (500 ml x 3) at room temperature for 24 hours, and the resulting extraction residue was extracted three times with 200 ml of hot water. The obtained extracts were combined and concentrated to dryness using a rotary evaporator to obtain 1960.5 mg of powder. (2) Dissolve 1000 mg of the powder obtained in (1) above in 200 ml of water, gradually add pure ethanol to the resulting aqueous solution at room temperature while stirring, and when the ethanol concentration in the aqueous solution reaches 80%. The addition was stopped, and the formed precipitate was collected by centrifugation to obtain 594.5 mg of brown powder. (3) 500 mg of the powder obtained in (1) above was dissolved in 50 ml of water, and this aqueous solution was poured into Spectra Pore 6 (molecular weight cut off: 50,000) and dialyzed against water. The dialyzed fluid was concentrated to dryness using a rotary evaporator to obtain 310 mg of brown powder. Example 1 1020 mg of the neem bark hot water extract obtained in Reference Example (2) or (3) above was dissolved in 20 ml of distilled water, and a column (diameter 7.0 cm,
(length 35.0 cm) and gel filtration was performed using distilled water. When gel filtration is performed while quantifying the sugar content in the eluate using the phenol-sulfuric acid method, the polysaccharide is fractionated into three parts. The solvent was distilled off from the first eluted fraction to obtain 273 mg of the desired purified neem bark extract. For reference, 50 mg of the above extracted and purified product was dissolved in 5 ml of distilled water, poured into a column (diameter 4.0 cm, length 50.0 cm) packed with Sephadex G-200, and gel filtration was performed using distilled water. When gel filtration was performed while quantifying the sugar content in the eluate using the phenol-sulfuric acid method, the polysaccharide was fractionated into two. 18 mg of polysaccharide A was obtained from the first eluted fraction, and 16 mg of polysaccharide B was obtained from the second eluted fraction. The above polysaccharides A and B
was confirmed to be a single compound by high-performance liquid chromatography and electrophoresis. In Example 1 of the method of the present invention, Biogel P-
Similar results were obtained using 100. Specific Effects of the Invention As detailed above, the present invention provides, firstly, an antitumor purified neem bark extract. This extracted and purified product is a substance that has not been described in any literature, and as shown in the test examples, it exhibits strong inhibitory activity against Sarcoma 180 ascites type and solid mouse transplanted tumors, female A solid mouse transplanted tumors, etc., and is toxic. It is useful as an anticancer agent because it has a very low value. According to the present invention, secondly, a method for producing the above-mentioned extracted and purified product is provided. That is, the extracted and purified product is obtained by extracting neem bark with hot water, purifying the extract by alcohol precipitation method or dialysis membrane method, dissolving the obtained purified product in water, and dissolving the aqueous solution with a molecular weight cut-off of approximately 1×10 3
~1×10 5 to 1×10 3 to 2×10 5 molecular sieve treatment using a molecular sieving agent, and among the three polysaccharide fractions, the first fraction is collected. It will be done. Thirdly, the present invention provides an advantageous method for producing the extracted and purified product. That is, there is provided a method for producing the extracted and purified product, wherein the molecular sieve treatment is gel filtration, and the molecular sieve is a gel filtration agent. Fourthly, the present invention provides a more advantageous method for producing the extracted and purified product. That is, there is provided a method for producing the extracted and purified product, wherein the gelling agent is dextran gel, polyacrylamide gel, hydrophilic polyvinyl gel, or porous glass beads.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of the drawing]

第1図は本発明の抗腫瘍性ニーム樹皮抽出精製
物(実施例1の精製物)の赤外線吸収スペクトル
を示す。第2図は多糖体Aの赤外線吸収スペクト
ルを示し、第3図は同物質の13C核磁気共鳴スペ
クトルを示す。第4図は多糖体Bの赤外線吸収ス
ペクトルを示し、第5図は同物質の13C核磁気共
鳴スペクトルを示す。
FIG. 1 shows the infrared absorption spectrum of the purified antitumor neem bark extract of the present invention (purified product of Example 1). Figure 2 shows the infrared absorption spectrum of polysaccharide A, and Figure 3 shows the 13 C nuclear magnetic resonance spectrum of the same substance. Figure 4 shows the infrared absorption spectrum of polysaccharide B, and Figure 5 shows the 13 C nuclear magnetic resonance spectrum of the same substance.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 ニーム樹皮を熱水で抽出し、該抽出物をアル
コール沈澱法または透析膜法により精製し、得ら
れた精製物を水に溶解し、該水溶液を分画分子量
約1×103〜1×105乃至1×103〜2×105の分子
篩剤を用いて分子篩処理し、3つに分れる多糖体
画分のうち、最初の画分を採取して得られる抗腫
瘍性ニーム樹皮抽出精製物。この抽出精製物は次
の物理化学的特性を有する。 (イ) 色と形状 凍結乾燥品は白色粉末又は淡黄褐色粉末であ
る。 (ロ) 赤外線吸収スペクトル 第1図に示す通りである(実施例1における
抽出精製物)。 IRνKBr naxcm-1:3400、1630、1030 (ハ) 紫外線吸収スペクトル 水溶液中の測定で吸収極大を示さず末端吸収
のみを示す。 (ニ) 溶解性 水に可溶でメタノール、エタノール、アセト
ン、エーテル、クロロホルム、酢酸エチル、ベ
ンゼンおよびヘキサン等の有機溶媒に不溶であ
る。 (ホ) 呈色反応 フエノール硫酸反応、アンスロン硫酸反応に
陽性でヨウ素の添加により青緑色を呈する。 2 ニーム樹皮を熱水で抽出し、該抽出物をアル
コール沈澱法または透析膜法により精製し、得ら
れた精製物を水に溶解し、該水溶液を分画分子量
約1×103〜1×105乃至1×103〜2×105の分子
篩剤を用いて分子篩処理し、3つに分れる多糖体
画分のうち、最初の画分を採取して得られる下記
の物理化学的特性を有する抗腫瘍性ニーム樹皮抽
出精製物の製造法。 (イ) 色と形状 凍結乾燥品は白色粉末または淡黄褐色粉末で
ある。 (ロ) 赤外線吸収スペクトル 第1図に示す通りである(実施例1における
抽出精製物)。 IRνKBr naxcm-1:3400、1630、1030 (ハ) 紫外線吸収スペクトル 水溶液中の測定で吸収極大を示さず、末端吸
収のみを示す。 (ニ) 溶解性 水に可溶でメタノール、エタノール、アセト
ン、エーテル、クロロホルム、酢酸エチル、ベ
ンゼンおよびヘキサン等の有機溶媒に不溶であ
る。 (ホ) 呈色反応 フエノール硫酸反応、アンスロン硫酸反応に
陽性でヨウ素の添加により青緑色を呈する。 3 上記分子篩処理がゲル過であり、上記分子
篩剤がゲル過剤である特許請求の範囲第2項記
載の抗腫瘍性ニーム樹皮抽出精製物の製造法。 4 上記ゲル過剤がデキストランゲル、ポリア
クリルアミドゲル、親水性ポリビニル系ゲルまた
は多孔性ガラスビーズである特許請求の範囲第3
項記載の抗腫瘍性ニーム樹皮抽出精製物の製造
法。
[Claims] 1. Neem bark is extracted with hot water, the extract is purified by alcohol precipitation method or dialysis membrane method, the obtained purified product is dissolved in water, and the aqueous solution has a molecular weight cut-off of about 1. ×10 3 to 1 × 10 5 to 1 × 10 3 to 2 × 10 5 molecular sieve treatment using a molecular sieving agent, and among the three polysaccharide fractions, the first fraction is collected. Antitumor purified neem bark extract. This extracted and purified product has the following physicochemical properties. (b) Color and shape The lyophilized product is a white powder or a pale yellowish brown powder. (b) Infrared absorption spectrum As shown in Figure 1 (extracted and purified product in Example 1). IRν KBr nax cm -1 : 3400, 1630, 1030 (c) Ultraviolet absorption spectrum When measured in an aqueous solution, it shows no absorption maximum but only terminal absorption. (d) Solubility Soluble in water and insoluble in organic solvents such as methanol, ethanol, acetone, ether, chloroform, ethyl acetate, benzene and hexane. (e) Color reaction It is positive for the phenol sulfuric acid reaction and the anthrone sulfuric acid reaction, and exhibits a bluish-green color when iodine is added. 2. Neem bark is extracted with hot water, the extract is purified by alcohol precipitation method or dialysis membrane method, the obtained purified product is dissolved in water, and the aqueous solution has a molecular weight cut-off of about 1×10 3 to 1× 10 5 to 1 x 10 3 to 2 x 10 5 molecular sieve treatment using a molecular sieving agent, and the following physicochemical properties obtained by collecting the first fraction among the three polysaccharide fractions. A method for producing a purified antitumor neem bark extract having antitumor properties. (b) Color and shape The freeze-dried product is a white powder or a pale yellowish brown powder. (b) Infrared absorption spectrum As shown in Figure 1 (extracted and purified product in Example 1). IRν KBr nax cm -1 : 3400, 1630, 1030 (c) Ultraviolet absorption spectrum When measured in an aqueous solution, it shows no absorption maximum, but only terminal absorption. (d) Solubility Soluble in water and insoluble in organic solvents such as methanol, ethanol, acetone, ether, chloroform, ethyl acetate, benzene and hexane. (e) Color reaction It is positive for the phenol sulfuric acid reaction and the anthrone sulfuric acid reaction, and exhibits a bluish-green color when iodine is added. 3. The method for producing an antitumor purified neem bark extract according to claim 2, wherein the molecular sieving treatment is gel filtration, and the molecular sieving agent is a gel filtration agent. 4. Claim 3, wherein the gelling agent is dextran gel, polyacrylamide gel, hydrophilic polyvinyl gel, or porous glass beads.
A method for producing a purified antitumor neem bark extract as described in 2.
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