JPS6119635A - Cytotoxic substance and protein complex - Google Patents

Cytotoxic substance and protein complex

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Publication number
JPS6119635A
JPS6119635A JP14015884A JP14015884A JPS6119635A JP S6119635 A JPS6119635 A JP S6119635A JP 14015884 A JP14015884 A JP 14015884A JP 14015884 A JP14015884 A JP 14015884A JP S6119635 A JPS6119635 A JP S6119635A
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JP
Japan
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group
polysuccinimide
protein
physiologically active
active protein
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Application number
JP14015884A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Yoshiaki Murakami
村上 喜昭
Kunio Shiba
斯波 久二雄
Fumiaki Shono
庄野 文章
Akira Yoshitake
吉武 彬
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Sumitomo Chemical Co Ltd
Original Assignee
Sumitomo Chemical Co Ltd
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Publication date
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Publication of JPS6119635A publication Critical patent/JPS6119635A/en
Pending legal-status Critical Current

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Abstract

PURPOSE:The titled complex useful as a target-directing carcino-static agent, prepared by binding a physiologically active protein with a specified polysuccinimide derivative through mercapto groups. CONSTITUTION:A cytotoxic substance/physiologically active protein complex is obtained by binding the mercapto groups of a physiologically active protein (e.g., urokinase) with the mercapto groups of a polysuccinimide derivative of an average MW of 2,000-1,000,000 comprising the structural units of formulas I -VI [wherein X is a reaction residue of a cytotoxic substance having an amino or imino group in the molecule, Y is a water-soluble aliphatic primary amine residue, Z is H or a group of the formula: Z' (when Z is H, one -SH group represented by -SZ, together with another -SH group can form an intramolecular or intermolecular -S-S- bond in equilibrium, these are represented inclusively by -SH), and Z' is a group which, together with an adjacent S, can form a reactive disulfide], wherein the numbers of said structural units of formulas I -VI are m, l, r, p, and q which are each 0 or a natural number and satisfy the relationships of formulas VII and VIII.

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は細胞毒性物質と生理活性蛋白質との複合体及び
それらの製造方法に関する。更に詳しくは本発明は腫瘍
細胞等の標的物に結合能を有する抗腫瘍抗体等の生理活
性蛋白質と細胞毒物とを結合して標的指向型制ガン剤等
として有用な細胞毒性物質と生理活性蛋白質との複合体
及びその製造法に関するものである。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to complexes of cytotoxic substances and physiologically active proteins and methods for their production. More specifically, the present invention is directed to a combination of a cytotoxic substance and a physiologically active protein that is useful as a target-directed anticancer agent by binding a cytotoxic substance to a physiologically active protein such as an antitumor antibody that has the ability to bind to a target substance such as a tumor cell. This invention relates to a composite and its manufacturing method.

従来抗腫瘍抗体iこ細胞毒物を結合して抗腫瘍剤を製造
する事は公知である。抗腫瘍抗体と細胞毒墓の結合にあ
た゛・て抗腫瘍抗体の標的結合能を低下させずに多数の
細胞毒性物質を結合せしめるためポリマー担体が用いら
れている。
It has been known to produce an antitumor agent by binding an antitumor antibody to a cytotoxic substance. Polymer carriers are used to bind a large number of cytotoxic substances without reducing the target binding ability of the antitumor antibody.

ポリマー担体として用いられている代表的ポリマーはデ
キストラン、ポリグルタミン酸である。
Typical polymers used as polymer carriers are dextran and polyglutamic acid.

デキストランの場合は主として過ヨウ素酸等で酸化して
アルデヒド誘導体にして用いるが、細胞毒性物質と抗腫
瘍抗体を同一官能基にて反応させるため再現性良く結合
体を得るのが困難であり、かつ必要以上に抗腫瘍抗体が
結合し高分子量体を生成して腫瘍細胞等との結合能力を
低下させやすい。又ポリグルタミン酸は上記欠点を有す
る他電荷を有するため抗体の結合能を低下せしめると同
時−と体内の特定臓器に集まるので標的指向型制ガン剤
として望ましくない。
In the case of dextran, it is mainly used as an aldehyde derivative by oxidation with periodic acid, etc., but it is difficult to obtain a conjugate with good reproducibility because the cytotoxic substance and antitumor antibody are reacted with the same functional group. Anti-tumor antibodies bind more than necessary and produce high molecular weight substances, which tends to reduce the ability to bind to tumor cells and the like. Moreover, polyglutamic acid has the above-mentioned drawbacks and has other charges, which lowers the binding ability of antibodies and at the same time collects in specific organs in the body, making it undesirable as a target-directed anticancer agent.

本発明者らはかかる欠点を解決すべく鋭意検討を行なっ
た結果、細胞毒性物質を結合した、電荷を有しないポリ
マー担体を合成し、生理活性蛋白をその活性を低下させ
ずに該ポリマー担体と結合し、細胞毒性物質と抗腫瘍抗
体等の住理活性蛋白との複合体を得ることを見いだし本
発明にいたった。
The present inventors conducted intensive studies to solve these drawbacks, and as a result, they synthesized an uncharged polymer carrier to which a cytotoxic substance was bound. It was discovered that a complex of a cytotoxic substance and a bioactive protein such as an antitumor antibody can be obtained by binding to the cytotoxic substance, leading to the present invention.

本発明は標的指向型治療剤を製造するために使用できる
細胞毒性物質を結合した反応性高分子と標的能を有する
抗腫瘍抗体等の住理活性蛋白質との複合体を提供するも
のである。
The present invention provides a complex between a reactive polymer bound to a cytotoxic substance and a bioactive protein such as an antitumor antibody having targeting ability, which can be used to produce a target-directed therapeutic agent.

即ち、本発明は細胞毒性物質を結合した下記の一般式〔
1〕〜〔6〕 (3]          (4) 〔上記式〔1〕〜〔6〕において、x、y、wおよび2
は各々次の意味を示す。
That is, the present invention provides the following general formula [
1] to [6] (3) (4) [In the above formulas [1] to [6], x, y, w and 2
have the following meanings.

X:分子中にアミノ基もしくはイミノ基を有する細胞毒
性物質の反応残基 Y:水溶性脂肪族第一アミン残基 W:低級アルキレン基 2:水素原子または一般式Z′で示される基(但し、2
が水素原子である場合、−SZで表わされるーSH基は
分子内または分子間で他の一5H基と平衡的に一5S−
結合を形成し得るが、これらを含んで 一8Hと表現するものとする。) Z′:隣の硫黄原子と共に活性ジスルフィド結合を形成
しうる基〕 で表わされる構成単位から成り、かつ1分子中における
各構成単位(1) 、 (2] 、 (3) ’、 (
4) 、 (5)および〔6〕の 数が各々n 、 m
 、 l!、 r 、 pおよび9であってこれらの数
はOlたは自然数であり、これらの関係は n−4−m≧2 0.001≦(p+q)/(n+m+r+r+p+q)
=o、s。
X: Reactive residue of a cytotoxic substance having an amino group or imino group in the molecule Y: Water-soluble aliphatic primary amine residue W: Lower alkylene group 2: Hydrogen atom or group represented by the general formula Z' (however, ,2
is a hydrogen atom, the -SH group represented by -SZ is in equilibrium with other 15H groups within or between molecules.
Although bonds may be formed, these are included in the expression -8H. ) Z′: a group capable of forming an active disulfide bond with the adjacent sulfur atom] and each of the structural units in one molecule (1), (2], (3)', (
4) The numbers of (5) and [6] are n and m, respectively.
, l! , r, p and 9, these numbers are Ol or natural numbers, and the relationship between them is n-4-m≧2 0.001≦(p+q)/(n+m+r+r+p+q)
= o, s.

であり、平均分子量が2,000〜i 、ooo、oo
oであるポリサクシンイミド誘導体(1)と生理活性蛋
白とを結合せしめた蛋白質−ボリサクシンイミド複合体
である。
and the average molecular weight is 2,000~i, ooo, oo
This is a protein-vorosuccinimide complex in which the polysuccinimide derivative (1), which is o, is bound to a physiologically active protein.

ここで、隣ケの硫黄原子と共に活性ジスルフィド結合を
形成しつる基(2′)としては、例えジルチオ基(イl
)“s−)、5−カルボキシ−などの置換もしくは無置
換ピリジルチオ基またはそのN−オキシド、および3−
カルボキシ−4−ニトロフェニルチオ基 ルチオ基類、さらに 及びN−フェニルアミノ−N′−フェニルイミノWは低
級アルキレン基であり、例えば炭素数1〜4の直鎖状ま
たは分枝鎖状のアルキレン基を挙げることができる。
Here, as the chain group (2') that forms an active disulfide bond with the adjacent sulfur atom, for example, a dilthio group (il
)"s-), a substituted or unsubstituted pyridylthio group such as 5-carboxy- or its N-oxide, and 3-
Carboxy-4-nitrophenylthio groups, and N-phenylamino-N'-phenylimino W are lower alkylene groups, such as linear or branched alkylene groups having 1 to 4 carbon atoms. can be mentioned.

式〔1〕および〔2〕のXは分子中にアミノ基もしくは
イミノ基を含む細胞毒性物質の反応残基又はヒドロキシ
ル基を表わす。
In formulas [1] and [2], X represents a reactive residue of a cytotoxic substance containing an amino group or an imino group in the molecule or a hydroxyl group.

本発明における細胞毒性物質とは、そのままの状態で細
胞に毒性を発揮する物質、あるいはそのままでは毒性を
発揮しないが、生体内で細胞に毒性を発揮し得る物質に
転mし得る物質をいう。ξれらの例としては次のような
ものを挙げることができる。
A cytotoxic substance in the present invention refers to a substance that exhibits toxicity to cells as it is, or a substance that does not exhibit toxicity as it is but can be converted into a substance capable of exhibiting toxicity to cells in vivo. Examples of these include:

p −(N 、 N−ビス(2−クロロエチル)〕フェ
ニレンジアミン p−(ビス(2−クロロエチル)アミノ〕−L−フェニ
ルアラニン(メル)1ラン)2−アミノ−N−(p−ビ
ス(2−クロロエチル)アミノコフェニル−3−ヒドロ
キシプロピオンアミド 1−(5’−(2−アミノエチルホスホリル)−β−D
−アラビノフラノシル〕長トシトシン2ミノ−N −[
p−ビス(2−クロロエチル)アミノ〕フェニルー3−
ヒドロキシ−2−ヒドロキシメチルプロピオンアtF メトトレキセート アクチノマイシンD マイトマイシンC XとH,ダウノマイシン X、OH,アドリアマイシン 式〔3〕および〔4〕のYは水溶性の脂肪族第一アミン
の反応残基である。本発明の目的には必ずしも用いる必
要はない(J+r−0)が反応性重合体(ポリサクシン
イミド誘導体〔I〕)の水溶性を向上する目的で導入す
る。用いられる水溶性の脂肪族第一アミンとしては例え
ばエタノールアミン、3−アミノ−1,2−プロパンジ
オール等の水酸基を有する脂肪族第一アミン、(J(3
(CH2)gM(2(g −i〜4の整数)の脂肪族ア
ミン等である。特に水酸基を有するエタノ−ルア、ミン
、3−アミノ−1,・2−プロパンジオール等のアミン
が好ましい。
p-(N, N-bis(2-chloroethyl)]phenylenediamine p-(bis(2-chloroethyl)amino)-L-phenylalanine (mel) 1 run) 2-amino-N-(p-bis(2- chloroethyl)aminocophenyl-3-hydroxypropionamide 1-(5'-(2-aminoethylphosphoryl)-β-D
-arabinofuranosyl] long tocytosine 2mino-N -[
p-bis(2-chloroethyl)amino]phenyl-3-
Hydroxy-2-hydroxymethylpropionate tF Methotrexate actinomycin D Mitomycin C X and H, daunomycin . (J+r-0) is not necessarily used for the purpose of the present invention, but is introduced for the purpose of improving the water solubility of the reactive polymer (polysuccinimide derivative [I]). Examples of water-soluble aliphatic primary amines used include ethanolamine, aliphatic primary amines having a hydroxyl group such as 3-amino-1,2-propanediol, (J(3
(CH2)gM (2 (an integer of g-i to 4)) aliphatic amine, etc. Especially preferred are amines having a hydroxyl group such as ethanol, amine, and 3-amino-1,.2-propanediol.

酸単位の数を表わし、p+qは2が結合した構成単位の
数をあられす。
It represents the number of acid units, and p+q represents the number of constituent units to which 2 is bonded.

(n+m)/(n+m−1+r+p+q)はモノマーユ
ニットであるサクシンイミド基1モルに対してXの縮合
モル数をあられす。
(n+m)/(n+m-1+r+p+q) represents the number of condensed moles of X per mole of succinimide group, which is a monomer unit.

<p+q>/<n+m+t+r+p+q)はモノマーユ
ニットであるサクシンイミド基1モルに対して一般式 
−Nu−WS−Z  で示される基の縮合モル数を表わ
す。
<p+q>/<n+m+t+r+p+q) is the general formula for 1 mole of succinimide group, which is a monomer unit.
-Nu-WS-Z represents the number of condensed moles of the group.

分子量は末端のアミノ基の定量で得られた値で表示した
The molecular weight was expressed as the value obtained by quantifying the terminal amino group.

構成単位の重合体中での配列状態は任意である。たとえ
ばランダム共重合体を含みこれ1こ限定されるものでな
い。
The arrangement of the structural units in the polymer is arbitrary. Examples include random copolymers, but are not limited thereto.

分子量は2,000〜a、ooo、ooo好ましくは2
.000〜3,000,000であり、n十mは2以上
、(n+m)/(n+rn+l+r+p+q)が1未満
であり: (p+q)/(n十m+/十r+p+q)が
0゜001以上、0.50以下好ましくは0.3以下で
ある。
Molecular weight is 2,000 to a, ooo, ooo preferably 2
.. 000 to 3,000,000, n0m is 2 or more, (n+m)/(n+rn+l+r+p+q) is less than 1: (p+q)/(n0m+/10r+p+q) is 0°001 or more, 0. It is 50 or less, preferably 0.3 or less.

分子量がこれ以下であると反応性重合体1分子に結合し
ている細胞毒性物質の数が少なくなって抗腫瘍抗体等に
結合できる細胞毒性物質の量が少なくなるので好ましく
ない。又分子量が大きすぎると抗腫瘍抗体の会合体が生
じゃすくなり不溶化分、大分子量が生成しゃすくなるの
で好ましくない。
If the molecular weight is less than this, the number of cytotoxic substances bound to one molecule of the reactive polymer decreases, and the amount of cytotoxic substances that can bind to anti-tumor antibodies etc. decreases, which is not preferable. Furthermore, if the molecular weight is too large, the anti-tumor antibody aggregate becomes less viable, making it difficult to produce insolubilized components and large molecular weight, which is not preferable.

(p十q)/(n+m+/+r+p+q)は0.001
以上であり、これ未満であると抗腫瘍抗体等との結合比
率が低くなるので好ましくない。又0゜5以下好ましく
はO63以下であって多過ぎると抗腫瘍抗体等の会合体
が生じゃすくなり不溶化分、大分子量分が増加するので
好ましくない。
(p1q)/(n+m+/+r+p+q) is 0.001
If it is less than this, the binding ratio with anti-tumor antibodies etc. will be low, which is not preferable. Further, it is less than 0°5, preferably less than O63, and if it is too large, the aggregates such as anti-tumor antibodies become less viable and the insolubilized content and large molecular weight content increase, which is not preferable.

本発明におけるポリサクシンイミド誘導体〔I〕の製造
法は特願昭59−25665号明細書に示されている。
The method for producing the polysuccinimide derivative [I] in the present invention is shown in Japanese Patent Application No. 59-25665.

すなわち下記一般式(II)の構成単位を主成分とする
ポリサクシンイミド(ポリサクシンイミド1:]I))
より容易に誘導され得る。
That is, polysuccinimide (polysuccinimide 1:]I) whose main component is a structural unit of the following general formula (II)
can be more easily induced.

す 、〔式中、kは自然数を示す。〕 ポリサクシンイミドは別名アンヒドロポリアスパラチッ
クアシッドとも呼ばれる重合体であって、主としてアス
パラギン酸の熱縮合にょっ −て得ることができる。(
J 、Kovacs et al 、 J 。
[In the formula, k represents a natural number. ] Polysuccinimide is a polymer also known as anhydropyasparatic acid, and can be obtained mainly by thermal condensation of aspartic acid. (
J., Kovacs et al., J.

Org、Chem、 261084(1961) ; 
P、Neri et al 、 。
Org, Chem, 261084 (1961);
P., Neri et al.

J、Med、Chem、 16 893(1973))
具体的製造法の例としては、アスパラギン酸(光学活性
体又はDL体であっても良い)を常圧又は減圧下、16
0’C以上240℃以下で脱水重合することによって得
ることができる。
J. Med. Chem. 16 893 (1973))
As an example of a specific production method, aspartic acid (which may be an optically active form or a DL form) is mixed with 16 ml of aspartic acid under normal pressure or reduced pressure.
It can be obtained by dehydration polymerization at 0'C or more and 240C or less.

重合後反応生成物をDMF又はDMSO#こ溶解して水
にて再沈を行ない未反応アスパラギン酸及び低分子縮合
体を除去してガラスフィルターで沖過後乾燥を行なう。
After polymerization, the reaction product is dissolved in DMF or DMSO# and reprecipitated in water to remove unreacted aspartic acid and low-molecular condensate, filtered through a glass filter, and then dried.

必要とあればこの操作を繰返す。Repeat this operation if necessary.

かくして得られた重合体が一般式[II)で表わされる
ものである事がIR,NMRから示唆されているが、部
分的にこれ以外の構成単位を含んでいたとしても実質的
に一般式(II]の構成単位が主成分である事は一般に
認められているところである。
Although IR and NMR suggest that the polymer thus obtained is represented by the general formula [II], it is substantially the same as the general formula (II) even if it partially contains other constituent units. It is generally accepted that the structural unit of [II] is the main component.

本発明におけるポリザクシンイミド誘導体〔I〕を得る
方法としては2つの方法がある。
There are two methods for obtaining the polysuccinimide derivative [I] in the present invention.

第一の方法は、ポリザクシンイミドを下記一般式(II
[)で示される誘導体にして、さらに分子中にアミノ基
又はイミノ基を含む細胞毒性物質を結合させ、必要とあ
れば水溶性脂肪族第一アミンと反応させる方法である。
The first method involves converting polysuccinimide to the following general formula (II
This is a method in which the derivative represented by [) is further bonded with a cytotoxic substance containing an amino group or an imino group in the molecule, and if necessary, reacted with a water-soluble aliphatic primary amine.

第二の方法はアミノ基を有する細胞毒性物質を結合する
のに有効な方法で、細胞毒性物質、抗腫瘍抗体等との結
合能を有する官能基供与化合物(NH,−W−S −Z
 )  及び水溶性脂肪族第一アミンをいずれもそれら
が有するアミノ基を用いて直接ザクシンイミド基 ミド誘導体〔I)にする方法である。
The second method is an effective method for binding cytotoxic substances having an amino group, and is a method that uses a functional group-donating compound (NH, -WS -Z
) and water-soluble aliphatic primary amines are both directly converted into succinimide group mido derivatives [I) using their amino groups.

第一の方法としては、以下(1)〜(3)の方法がある
As the first method, there are methods (1) to (3) below.

(11(a)ポリザクシンイミド〔■〕と(イ)一般式
 □H2N W−8−Z (W トZ ハ前記ト同じ)
で表わされる化合物、(ロ)必要とあれば水溶性脂肪族
第一アミンと反応した後、アルカリ水溶液で処理して一
般式(11[)の中間体を得る。
(11(a) Polysuccinimide [■] and (a) General formula □H2N W-8-Z (W tZ C same as above)
A compound represented by (b) is reacted with a water-soluble aliphatic primary amine if necessary, and then treated with an aqueous alkaline solution to obtain an intermediate of general formula (11).

(b)その後(ハ)アミノ基又はイミノ基を含む細胞毒
性物質、に)必要とあれば水溶性脂肪族第一アミンと反
応せしめる方法 (2)  ポリザクシンイミドと(a) ((J一般式
H2N−W−5−5−及〔Wは前記と同じ。又はアルキ
ル基(例えば炭素数1〜5の低級アルキル基)アラルキ
ル基(例えば無置換または置換フェニルアルキル基)ま
たはアリール基(例えば無置換また゛は置換フェニル基
)等の炭化水素基を示す。〕、(0口必要とあれば水溶
性脂肪族−アミンと反応させた後、アルカリ水溶液で処
理し一般式(m) (z = −8−R)の中間体を得
る。
(b) Then (c) a method of reacting a cytotoxic substance containing an amino group or an imino group with a water-soluble aliphatic primary amine if necessary (2) polysuccinimide and (a) ((J General Formula H2N-W-5-5- and [W is the same as above. Or an alkyl group (e.g. lower alkyl group having 1 to 5 carbon atoms), an aralkyl group (e.g. unsubstituted or substituted phenylalkyl group) or an aryl group (e.g. unsubstituted or substituted phenylalkyl group) Substituted or ゛represents a hydrocarbon group such as a substituted phenyl group)], (0) If necessary, after reacting with a water-soluble aliphatic amine, it is treated with an aqueous alkaline solution to form the general formula (m) (z = - 8-R) intermediate is obtained.

(b)その後(ハ)アミノ基又はイミノ基を含む細胞毒
性物質、に)必要とあれば水溶性脂肪族第一アミンを反
応させる。
(b) Thereafter, (c) the cytotoxic substance containing an amino group or an imino group is reacted with a water-soluble aliphatic primary amine, if necessary.

生 (alまたは(b)の反応後、必要とあれば反応←酸物
のジスルフィド基をチオール化合物あるいは水素化ホウ
素化合物等で反応させて還元的に切断することによって
2=水素原子であるポリザクシンイミp誘導体〔I)を
得る。
After the reaction of raw (al or (b)), if necessary, the disulfide group of the acid is reacted with a thiol compound or a borohydride compound, etc., and reductively cleaved to form a polysuccinimide p in which 2=hydrogen atom. Derivative [I] is obtained.

(3)上記いずれかの方法で得られたチオール型反応性
重合体(Z−水素原子であるポリザクシンイミド誘導体
〔I)に活性ジスルフィド化合物を反応させることによ
って得る方法がある。この時はz lle z/である
ポリザクシンイミド誘導体〔I〕が得られる。
(3) There is a method in which the thiol-type reactive polymer (Z-hydrogen atom polysuccinimide derivative [I) obtained by any of the above methods is reacted with an active disulfide compound. At this time, a polysuccinimide derivative [I] having z lle z/ is obtained.

さらに上記(1)および(2)の方法として上述の(a
)にお”ける(イ)、(ロ)および(b)におけるel
)、に)の反応は任意の順番で逐次行なう逐次反応法、
二成分の反応を同時番こ行なう同時反応法がある。
Furthermore, as methods (1) and (2) above, (a)
el in (a), (b) and (b) in ")"
), to) are carried out sequentially in any order, a sequential reaction method,
There is a simultaneous reaction method in which two components are reacted simultaneously.

反応溶媒として(イ)、(ロ)の反応はポリサクシンイ
ミドの良溶媒であるDMF又はDMSOを用いる。
As a reaction solvent, DMF or DMSO, which is a good solvent for polysuccinimide, is used in the reactions (a) and (b).

ポリザクシンイミド(n)をDMF又はDMSO中に1
〜30(W/W)  %番どなるよう溶解し、げ)、(
ロ)の−ないし二成分(ポリザクシンイミド(IF)の
モノマーユニットであるザクシンイミド基1モルに対し
て一成分につき0.001〜10モル)と、−40〜8
0℃において1分〜2日間攪拌下反応せしめるのが適当
である。未反応の成分は透析又はゲル沖過により除去す
ることができる。一般式(III)で表わされる中間体
を得るには、前記(11、+21における(a)のアル
カリ水溶液処理前の反応中間体に未反応ザクシンイミド
基がある事が望ましい。未反応ザクシンイミド基が加水
分解を受けて−COOH基を形成するからである。
Polysuccinimide (n) in DMF or DMSO at 1
~30(W/W)% how much it dissolves, (
(b) - to two components (0.001 to 10 mol per component per 1 mol of succinimide group, which is a monomer unit of polysuccinimide (IF)), and -40 to 8
It is appropriate to carry out the reaction under stirring at 0°C for 1 minute to 2 days. Unreacted components can be removed by dialysis or gel filtration. In order to obtain the intermediate represented by the general formula (III), it is desirable that the reaction intermediate in (11, +21) before the alkali aqueous solution treatment has an unreacted succinimide group. This is because it undergoes decomposition to form a -COOH group.

かくして得られたポリザクシンイミド誘導体をアルカリ
条件にする事により容易にカルボキシル基を導入する事
ができる。アルカリ水溶液との反応はDMF 、DMS
O溶液中にアルカリ水溶液を滴下するか、又はアルカリ
水溶液中にポリザクシンイミド誘導体を加える事により
行う事ができる。アルカリ水溶液としては、P)I8以
上で良いが0゜OIN〜2NNIOH水溶液が適当であ
る。
Carboxyl groups can be easily introduced into the thus obtained polysuccinimide derivative by subjecting it to alkaline conditions. Reaction with alkaline aqueous solution is DMF, DMS
This can be carried out by dropping an alkaline aqueous solution into the O solution or by adding a polysuccinimide derivative to the alkaline aqueous solution. The alkaline aqueous solution may have a P)I of 8 or more, but a 0° OIN to 2N NIOH aqueous solution is suitable.

かくして得られた一般式(II)で表わされる中間体と
方法(1)、(2)におけるrXI、に)との反応は任
意の順番で行なう逐次反応法、即時におこなう同時反応
法がある。本発明の目的では(ハ)を多く導入する事が
好ましいので(ハ)を反応後にに)を反応するのが好ま
しい。
The reaction of the thus obtained intermediate represented by general formula (II) with rXI in methods (1) and (2) can be carried out in a sequential reaction method in any order, or in a simultaneous reaction method in which it is carried out immediately. For the purpose of the present invention, it is preferable to introduce a large amount of (c), so it is preferable to react (c) after reacting (c).

反応溶媒としては通常水又はDMF、DMSO等の有機
溶剤を反応溶液とする均一反応系でおこなわれる。
The reaction is usually carried out in a homogeneous reaction system using water or an organic solvent such as DMF or DMSO as the reaction solution.

反応に際しては、例えば1−エチル−3−(3−ジメチ
ルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩やジシクロへ
キシルカルボジイミド存在下でカルボキシル基を有する
ポリザクシンイミド誘導体とアミノ基又はイミノ基を有
する細胞毒性物質を共存せしめる方法、ポの形で活性化
しておいてアミノ基又はイミノ基を有する細胞毒性物質
を反応せしめる方法等がある。反応温度は一り0℃〜I
00’C1反応時間は10分〜10日間が適当である。
In the reaction, for example, a polysuccinimide derivative having a carboxyl group and a cytotoxic substance having an amino group or an imino group are reacted in the presence of 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide hydrochloride or dicyclohexylcarbodiimide. There are methods such as allowing them to coexist, and methods in which they are activated in the form of a polymer and reacted with a cytotoxic substance having an amino group or an imino group. The reaction temperature is 0℃~I
The appropriate reaction time for 00'C1 is 10 minutes to 10 days.

用いる中間体とぐSlとの割合は中間体の10〜200
 ’16特ニ100〜2ooIsが望ましい。piとの
反応においてカルボキシル基が未反応で残存している時
はに)との反応においてカルボキシル基をなくする。
The ratio of the intermediate to be used is 10 to 200% of the intermediate.
'16 special D 100-2ooIs is desirable. If a carboxyl group remains unreacted in the reaction with pi, the carboxyl group is eliminated in the reaction with ni).

アミノ基を含む細胞毒性物質を用いる時はより簡単な第
二の方法で製造が可能である。
When using a cytotoxic substance containing an amino group, it can be produced by the second, simpler method.

アミノ基を含む細胞毒性物質とは細胞毒性を有すると共
に、分子中のアミノ基がポリザクシンイミドのザクシン
イミド基 有する化合物を言う。
A cytotoxic substance containing an amino group refers to a compound that is cytotoxic and has an amino group in the molecule containing a succinimide group of polysuccinimide.

換言すればザクシンイミド基と反応してアミド結合を形
成するアミノ基を有していなければならない。
In other words, it must have an amino group that reacts with a succinimide group to form an amide bond.

これらの例としては、ダウノマイシン、アドリアマイシ
ン、P−アミノ−N−[p−ビス(’2−10ロエチル
)アミノコフェニル−3−ヒドロキシアミド、2−アミ
ノ−N−〔P−ビス(2−クロロエチル)アミノコフェ
ニル−3−ヒドロキシ−2−ヒドロキシメチルプロピオ
ンアミド、p−(ビス(2−り。
Examples of these include daunomycin, adriamycin, P-amino-N-[p-bis('2-10loethyl)aminocophenyl-3-hydroxyamide, 2-amino-N-[P-bis(2-chloroethyl) ) Aminocophenyl-3-hydroxy-2-hydroxymethylpropionamide, p-(bis(2-ri).

ロエチル)アミノ〕−L−フェニルアラニン等脂肪族ア
ミ7基を有するものが挙げられる。
Examples include those having 7 aliphatic amine groups such as loethyl)amino]-L-phenylalanine.

第2の方法としては以下の(41〜(6ンの方法がある
As the second method, there are the following methods (41 to (6).

(41ポリザクシンイミド(ff)と(イ)アミノ基を
有する細胞毒性物質(ロ)一般式H2N W 5−Z(
W、Zは前記と同じ)で表わされる化合物およびe1必
要とあれば水溶性脂肪族第一アミンとの反応によって得
る方法。
(41 polysuccinimide (ff) and (a) cytotoxic substance having an amino group (b) general formula H2N W 5-Z (
A method for obtaining a compound represented by (W, Z are the same as above) and e1 by reaction with a water-soluble aliphatic primary amine if necessary.

(5)  ポリザクシンイミド(II)と(イ)アミノ
基を有する細胞毒性物質(ロ)一般式H2N−WS −
5−R(W、Rは前記と同じ。)で表わされる化合物お
よびe→必要とあれば水溶性脂肪族第一アミンと反応さ
せ、ジスルフィド型の重合体を得る方法又は必要とあれ
ばその後反応生成物のジスルフィド基をチオール化合物
あるいは水素化ホウ素゛化合物と反応させて還元的に切
断することによってチオール型重合体を得る方法。
(5) Polysuccinimide (II) and (a) Cytotoxic substance having an amino group (b) General formula H2N-WS −
A method of obtaining a disulfide type polymer by reacting a compound represented by 5-R (W, R are the same as above) and e → with a water-soluble aliphatic primary amine if necessary, or a subsequent reaction if necessary. A method of obtaining a thiol-type polymer by reacting the disulfide group of the product with a thiol compound or a borohydride compound and reductively cleaving it.

(6)  上記いずれかの方法で得られたチオール型反
応性重合体(z、L水素原子であるポリザクシンイミド
誘導体〔I〕)に活性ジスルフィド化合物を反応させる
ことによって得る方法がある。これによりz 、、、 
z’であるポリザクシンイミド誘導体〔I)が得られる
(6) There is a method in which the thiol-type reactive polymer (polysuccinimide derivative [I] having z and L hydrogen atoms) obtained by any of the above methods is reacted with an active disulfide compound. As a result, z...
A polysuccinimide derivative [I] which is z' is obtained.

さらに上記(4)および(5)の方法としては上述のヒ
)、(ロ)および必要によりe→の各成分との反応を任
意の順番で逐次行なう逐次反応法、多成分との反応を同
時に行なう同時反応法がある。また(ハ)の成分との反
応が必要なときは任意の一成分との反応を単独で、残り
二成分との反応を同時に行なう二段階法が可能である。
Furthermore, methods for (4) and (5) above include a sequential reaction method in which the reactions with each of the components (i), (b), and (e) described above are performed sequentially in any order, and reactions with multiple components are performed simultaneously. There is a simultaneous reaction method. Furthermore, when a reaction with component (c) is required, a two-step method is possible in which the reaction with one arbitrary component is carried out alone and the reactions with the remaining two components are carried out simultaneously.

反応溶媒としては、逐次反応又は二段階反応における第
一番目の反応および同時反応は、ポリザクシンイミドの
良溶媒であるDMF又はDMSOを用いる。逐次反応又
は二段階反応の第二番目以後は、DMF又はDMSOあ
るいは第一番目又は第二番目の反応で得られたポリザク
シンイミド誘導体が水溶性となった時は水溶媒中で行な
う事ができる。
As a reaction solvent, DMF or DMSO, which is a good solvent for polysuccinimide, is used in the first reaction and simultaneous reaction in the sequential reaction or two-step reaction. The second and subsequent reactions in a sequential reaction or two-step reaction can be carried out in an aqueous solvent when DMF or DMSO or the polysuccinimide derivative obtained in the first or second reaction becomes water-soluble. can.

上記(4)及び(5)の反応方法において(イ)、(ロ
)、り埼の成分を反応させる1こは、以下の操作により
実施される。
In the reaction methods (4) and (5) above, the steps (a), (b), and reacting the Risaki components are carried out by the following operations.

ポリザクシンイミド(I[]又は第一もしくは第二反応
後の未反応のサクシンイミド基 誘導体ヲ、DMF、DMSO又は水jコl 〜30(W
/W)%となるよう溶解し、反応させるべき成分((l
、(0)、e号の1ないしそれ以上(ポリザクシンイミ
ド(IF)のモノマーユニットであるザクシンイミド基
1モルに対して一成分につき、0.001〜10モル)
と、−40〜80℃において10分〜20日間攪拌下反
応せしめる。未反応の成分は透析又はゲル沖過により除
去することができる。
Polysuccinimide (I[] or the unreacted succinimide group derivative after the first or second reaction, DMF, DMSO or water ~30 (W)
/W)% of the components to be dissolved and reacted ((l
, (0), one or more of No. e (0.001 to 10 moles per component per mole of succinimide group, which is a monomer unit of polysuccinimide (IF))
The mixture is reacted with stirring at -40 to 80°C for 10 minutes to 20 days. Unreacted components can be removed by dialysis or gel filtration.

目的とするポリザクシンイミド誘導体〔I〕は、溶媒の
減圧留去又は凍結乾燥によって得られる。
The desired polysuccinimide derivative [I] can be obtained by distilling off the solvent under reduced pressure or by freeze-drying.

分子量の制御は、ポリザクシンイミド〔I)を得る縮合
条件の選択により行なわれ、さらに目的とする分子量を
有する重合体の分離はポリザクシンイミド(II)のD
MF溶液でのデルr過に□    よる分子量分画及び
ポリザクシンイミド誘導体〔I〕を得てからの水溶媒中
でのゲルr過による分子量分画の方法による。
The molecular weight is controlled by selecting the condensation conditions to obtain polysuccinimide (I), and the separation of the polymer having the desired molecular weight is carried out by adjusting the D of polysuccinimide (II).
Molecular weight fractionation by gel filtration in an MF solution and molecular weight fractionation by gel filtration in an aqueous solvent after obtaining the polysuccinimide derivative [I].

(4)の方法において望ましい2は水素原子である。In the method (4), 2 is preferably a hydrogen atom.

目的とする分子量分画の収率向上のためポリザクシンイ
ミド(n)を得る縮合条件の選択、ポリザクシンイミド
のDMF溶液でのゲルr過による分子量分画をあらかじ
め行なう。
In order to improve the yield of the desired molecular weight fraction, the condensation conditions for obtaining polysuccinimide (n) are selected and the molecular weight fractionation is performed in advance by gel filtration with a DMF solution of polysuccinimide.

前記(3)及び(6)の方法であるチオール型反応性重
合体(2−水素原子であるポリザクシンイミド〔工〕)
に活性ジスルフィド化合物を反応させて活性ジスルフィ
ド基を有する反応性重合体(z * z’であるポリザ
クシンイミド〔■〕)を得る方法において用いられる活
性ジスルフィド化合物とは、前述の、隣の硫黄原子と共
番〔活性ジスルフィド結合を形成しうる基(2′)のジ
スルフィド体であり、そのような活性ジスルフィド化合
物の具体例としては2′として例示した前述の基のジス
ルフィド体、例えば2−ピリジルジスチオ基のジスルフ
ィド体である4−ピリジルジシk −4−:、、トロフ
ェニルチオ基のジスルフィド体である5、5′−ジチオ
ビス(2−ニトロ安る。
Thiol-type reactive polymer (polysuccinimide having 2-hydrogen atoms) according to methods (3) and (6) above
The active disulfide compound used in the method for obtaining a reactive polymer having an active disulfide group (z * z' polysuccinimide [■]) by reacting an active disulfide compound with an active disulfide compound is It is a disulfide of a group (2') covalent with the atom [which can form an active disulfide bond, and specific examples of such active disulfide compounds include disulfides of the aforementioned groups exemplified as 2', such as 2-pyridyldisthio 4-pyridyldisulfide, which is a disulfide of the group, 5,5'-dithiobis(2-nitro), which is a disulfide of a trophenylthio group.

チオール型反応性重合体と活性ジスルフィド化合物との
反応は、通常水又はDMFやDMSO等の有機溶媒を反
応溶媒とする均一反応系で行なわれる。あるいはまた、
重合体の水溶液に活性ジスルフィド化合物又はそのアセ
トン溶液又はジオキサン溶液等を添加混合した反応系で
行なうこともできる。反応温度は一5〜70℃、反応時
間は1分〜24時間が適当である。
The reaction between the thiol-type reactive polymer and the active disulfide compound is usually carried out in a homogeneous reaction system using water or an organic solvent such as DMF or DMSO as a reaction solvent. Or again,
The reaction can also be carried out using a reaction system in which an active disulfide compound or its acetone solution, dioxane solution, etc. are added and mixed to an aqueous solution of the polymer. Suitable reaction temperature is -5 to 70°C and reaction time is 1 minute to 24 hours.

本発明の目的である細胞毒性物質と生理活性蛋白質複合
体において、生理活性蛋白とは、腫亀部位と特異的結合
能力を有する生理活性蛋白のみならず、そのような生理
活性蛋白の部分的分解物すなわちフラグメントをも意味
する。
In the complex of a cytotoxic substance and a bioactive protein that is the object of the present invention, the bioactive protein refers not only to a bioactive protein that has the ability to specifically bind to a tumor site, but also to a bioactive protein that has the ability to specifically bind to a tumor site. It also means a thing, a fragment.

本発明における望ましい生理活性蛋白とじては、例えば
、血栓部位に特異的に結合することが知られているフィ
ブリノーゲンやウロキナーゼ、および腫瘍細胞等の特定
の抗原と特異的に結合しうる免疫グロブリン、特定の糖
の構造に特異的に結合するレクチンなどを挙げることが
できる。
Desirable physiologically active proteins in the present invention include, for example, fibrinogen and urokinase, which are known to specifically bind to thrombus sites, and immunoglobulin, which can specifically bind to specific antigens such as tumor cells, and specific Examples include lectins that specifically bind to the sugar structure of

フィブリノーゲンやウロキナーゼは、腫瘍細胞の周辺に
血栓部位が多いことがら′腫瘍部位での集積性が知られ
ている。また、フィブリノーゲンにトロンビンおよびC
,2+を作用させて強固なフィブリン・クロット(cl
ot )を作り、さらにプラスミンで処理することによ
って得られるフラグメントEも、血栓部位と特異的結合
能力を有することが知られている。
Fibrinogen and urokinase are known to accumulate at tumor sites because there are many thrombotic sites around tumor cells. In addition, fibrinogen contains thrombin and C.
, 2+ to form a strong fibrin clot (cl
Fragment E, which is obtained by producing ot ) and further treating with plasmin, is also known to have the ability to specifically bind to thrombus sites.

望ましい生理活性蛋白は腫瘍細胞等の特定の抗原と特異
的に結合しうる免疫グロブリンである。
Desirable bioactive proteins are immunoglobulins that can specifically bind to specific antigens such as tumor cells.

免疫グロブリンとしてはAFP、CEA。AFP and CEA are immunoglobulins.

HCG、)ランスフェリンリセブターの様な特定の蛋白
質または腫瘍細胞もしくは特定のリンパ球等の標的細胞
、またはそれらを含む組織を抗原として得られた、特定
の抗原と特異的に結合しうる免疫グロブリンを挙げるこ
とができる。
HCG,) Immunoglobulin that can specifically bind to a specific protein, such as transferrin receptor, or target cells such as tumor cells or specific lymphocytes, or tissues containing them, obtained as an antigen. can be mentioned.

免疫グロブリンを得るには、抗原で免疫されたヒト、サ
ル、ウマ、ウシ、ヤギ、ヒツジ、ウサギ、モルモット、
ハムスター、ラット、マウス等の動物から分離された抗
血清より、エタノール分画、硫安分画、イオン交換ある
いは分子法、あるいは抗原で免疫された動物より採取さ
れた抗体産生細胞を、発癌性のある物質で癌化させたり
、ミエローマ細胞と融合させてハイブリドーマを得、こ
れらの産生するモノクローナル抗体を取得する方法を実
施し得る。
To obtain immunoglobulin, humans, monkeys, horses, cows, goats, sheep, rabbits, guinea pigs,
Using antiserum isolated from animals such as hamsters, rats, and mice, we use ethanol fractionation, ammonium sulfate fractionation, ion exchange, or molecular methods, or antibody-producing cells collected from animals immunized with antigens. Methods can be implemented in which hybridomas are obtained by making them cancerous with a substance or fused with myeloma cells, and monoclonal antibodies produced by these hybridomas are obtained.

免疫グロブリンは、そ、のFc部分を除去しても抗原と
の特異的結合能力を有している。一般に免疫グロブリン
をパパイン、トリプシン、キモトリプシン、プラスミン
等の蛋白分解酵素で分解すると抗原結合部位を1一つも
ついわゆるFabフラグメントが得られ、またペプシン
分解、トリプシン分解を特定の条件で行えば抗原結合部
位を2つもついわゆるF (a b’)2フラグメント
が得られる。
Immunoglobulins have the ability to specifically bind to antigens even if their Fc portions are removed. In general, when immunoglobulin is digested with proteolytic enzymes such as papain, trypsin, chymotrypsin, and plasmin, so-called Fab fragments with one antigen-binding site are obtained, and if pepsin and trypsin digestions are performed under specific conditions, antigen-binding sites are obtained. A so-called F (a b')2 fragment having two is obtained.

免疫グロブリンをジチオスレイトール、メルカプトエタ
ール等で還元処理するとメルカプト基を有する一量体が
得られる。F (a b’)2 を同様に還元処理する
とメルカプト基を有するFab’を得ることができる。
When immunoglobulin is reduced with dithiothreitol, mercaptoethal, etc., a monomer having a mercapto group is obtained. When F (ab')2 is similarly reduced, Fab' having a mercapto group can be obtained.

ポリザクシンイミド誘導体〔I)と生理活性蛋白質との
結合は、例えば以下に述べるような公知のいずれの方法
でも良い。
The polysuccinimide derivative [I) and the physiologically active protein may be bound to each other by any of the known methods, such as those described below.

第一の方法はメルカプト基を有する生理活性蛋白質(た
とえば免疫グロブリンもしくはそのフラグメントである
F (a b’)z をジチオスレイトール、メルカプ
トエタノール等で還元処理したー量体又はFab’)の
メルカプト基を利用するか、または生理活性蛋白質のア
ミノ基に架橋基を介してメルカプト基を導入し、導入さ
れたメルカプト基を利用して、ポリサクシンイミド誘導
体〔I)においてz−2′である反応性重合体と反応せ
しめる方法である。
The first method is to use a mercapto group in a physiologically active protein having a mercapto group (for example, an immunoglobulin or its fragment F (ab')z which is reduced with dithiothreitol, mercaptoethanol, etc. or Fab'). or by introducing a mercapto group into the amino group of a physiologically active protein via a crosslinking group, and using the introduced mercapto group, the reactivity of z-2' in the polysuccinimide derivative [I) can be achieved. This method involves reacting with a polymer.

生理活性蛋白のアミノ基に、架橋基を介してメルカプト
基を導入する際の架橋剤としてすでに多くの架橋剤が知
られている。本発明で用いる架橋剤は、そのような公知
の架橋剤のいずれでもよいが、例えば一般式〔■1〕 H H5”z−CQl     (I[a](ここで、L□
は2価の有機基、Q工はイミドエステルのアルコール残
基をあらオ)す)であられされる化合物まんはその塩(
例えばHCl塩、HBr塩など)を用いることができる
Many crosslinking agents are already known as crosslinking agents for introducing mercapto groups into amino groups of physiologically active proteins via crosslinking groups. The crosslinking agent used in the present invention may be any of such known crosslinking agents, but for example, the general formula [■1] H H5"z-CQl (I[a] (where L□
is a divalent organic group, and Q is the alcohol residue of imidoester.
For example, HCl salt, HBr salt, etc.) can be used.

上記二股式〔■3〕において、Lよで示される有機基と
しては、例え、ばエチレン、トリメチレンなどの炭素数
2〜6の直鎖状または分枝鎖状のアルキレン基を;Qユ
 で示されるアルコール残基としては、例えばメトキシ
、エトキシなどの炭素数1〜3のアルコキシ基を例示す
ることができる。より具体的には、上記架橋剤〔■1〕
  として、例えばメチル−3−メルカプトプロピルN
HφHC1! イ57’−) (H5(I(2−CH,C0CJ(3)
、メチル−4−メルカプトブチルイミデート れる。
In the above bifurcated formula [■3], the organic group represented by L is, for example, a linear or branched alkylene group having 2 to 6 carbon atoms such as ethylene or trimethylene; Examples of alcohol residues include alkoxy groups having 1 to 3 carbon atoms such as methoxy and ethoxy. More specifically, the above crosslinking agent [■1]
For example, methyl-3-mercaptopropyl N
HφHC1! I57'-) (H5(I(2-CH,C0CJ(3)
, methyl-4-mercaptobutyrimidate.

N−アセチルホモシスティンチオラクトンともできる。It can also be N-acetylhomocystine thiolactone.

さらに、一般式[IIb) Z’ S−5−LニーC−Q2〔I[b]〔式中、Z′
  およびり、は前記のとおりである。Q2は活性エス
テルのアルコール残基をあられす。〕 であられされる化合物、一般式[1[[、]%式%) 〔式中、Z’、L工およびQ、は前記のとおりである。
Furthermore, general formula [IIb) Z' S-5-Lnee C-Q2[I[b]
and are as described above. Q2 represents the alcohol residue of the active ester. ] A compound represented by the general formula [1[[, ]% formula%] [wherein Z', L and Q are as described above.

〕 であられされる化合物またはその塩(例えばH〔I!塩
、HBr塩など)、一般式(I[d)一←5−Ll−C
−Q□)2[:]na)〔式中、L、およびQ□は前記
のとおりである。〕 であられされる化合物またはその塩(例えばHCl塩、
HBr塩など)、一般式Cme)”’−5−Ll−CQ
2)、l   (II[e)〔式中、L、およびQ2は
前記のとおりである。〕 であられされる化合物またはその塩(例えばH〔I!塩
、HBr塩など)、およびS−アセチルメルカプトコハ
ク酸無水物 などを架橋剤として用いることができる。この場合には
、生理活性蛋白のアミノ基と架橋剤とを反応せしめ、次
いでジチオスレイトール、メルカプトエタノールのよう
な還元剤を用いて還元するか又はアルカリで処理するこ
とにより、生理活性蛋白に架橋基を介してメルカプト基
を導入することができる。   − 上記一般式(Ilrb)であられされる架橋剤としては
、例えばN−ザクシンイミジル−3−(2−ピリジルチ
オ)プロピオネ−ト リ などを;一般式(Illc )であられされる架橋剤と
しては、例えば3−(4’−ジチオピリジル)メルカプ
トプロピオイミデート 一般式(md)であられされる架橋剤としては、例えば
ジメチル−3,3′−ジチオビスプロピオ洲、H〔I! ンイミデート 〔÷S CH2CH,C0CR3)、 
)などを一般式[1[[e〕であられされる架橋剤とし
ては例えばジチオビス(ザクシンイミジルプロジザクシ
ンイミジル(N、N’−ジ/アセチルホなどを例示する
ことができる。
] A compound or a salt thereof (e.g. H[I! salt, HBr salt, etc.), general formula (I[d)-←5-Ll-C
-Q□)2[:]na) [wherein L and Q□ are as described above. ] or a salt thereof (e.g. HCl salt,
HBr salt, etc.), general formula Cme)''-5-Ll-CQ
2), l (II[e) [wherein L and Q2 are as described above]. ] A compound or a salt thereof (for example, H[I! salt, HBr salt, etc.), S-acetylmercaptosuccinic anhydride, etc. can be used as a crosslinking agent. In this case, the amino groups of the physiologically active protein are reacted with a crosslinking agent, and then reduced using a reducing agent such as dithiothreitol or mercaptoethanol, or treated with an alkali to crosslink the physiologically active protein. A mercapto group can be introduced via the group. - Examples of the crosslinking agent represented by the above general formula (Ilrb) include N-succinimidyl-3-(2-pyridylthio)propionate; examples of the crosslinking agent represented by the general formula (Illc) include, for example, 3 Examples of the crosslinking agent represented by the general formula (md) of -(4'-dithiopyridyl)mercaptopropioimidate include dimethyl-3,3'-dithiobispropiodine, H[I! Inimidate [÷S CH2CH, C0CR3),
Examples of the crosslinking agent represented by the general formula [1[e] include dithiobis(succinimidylprodizuccinimidyl (N,N'-di/acetylpho), etc.).

第2の方法は、まずメルカプト基を有する生理活性蛋白
のメルカプト基に2′基を導入してsz’ 基とするか
、または生理活性蛋白のアミノ基に架橋基を介して−S
Z′基を導入し、次いでこの一SZ′基を2=水素原子
であるポリザクシンイミド(1)と反応せしめる方法で
ある。
The second method is to first introduce a 2' group into the mercapto group of a physiologically active protein having a mercapto group to form an sz' group, or to introduce -S to the amino group of the physiologically active protein via a crosslinking group.
This is a method of introducing a Z' group and then reacting this one SZ' group with polysuccinimide (1) in which 2 = hydrogen atoms.

生理活性蛋白に−sz’基を導入する方法は、メルカプ
ト基を有する生理活性蛋白を活性ジスルフィド化合物と
反応せしめるか、またはアミノ基に架橋基を介してメル
カプト基を導入した生理活性蛋白(前記第1の方法参照
)を活性ジスルフィド化合物と反応せしめる方法と;生
理活性蛋白のアミノ基に、前記一般式(Ib)または〔
I[c )で表わされるような架橋剤を反応せしめるこ
とにより、架橋基を介して直接−8z′基を導入する方
法がある。
A method for introducing a -sz' group into a physiologically active protein is to react a physiologically active protein having a mercapto group with an active disulfide compound, or to introduce a physiologically active protein into which a mercapto group is introduced into an amino group via a crosslinking group (the above-mentioned method). (see method 1) with an active disulfide compound;
There is a method of directly introducing a -8z' group via a crosslinking group by reacting with a crosslinking agent such as I[c).

第3の方法は、メルカプト基を有する生理活性蛋白のメ
ルカプト基を利用するか、または生理活性蛋白のアミノ
基に架橋基を介してメルカプト基を導入し、このメルカ
プト基を利用して、該生理活性蛋白またはメルカプト基
を導入した生理活性蛋白と2−水素原子であるポリザク
シンイミド誘導体〔!〕とを、架橋剤で結合せしめる方
法である。架橋剤としては、メルカプト基と反応し得る
二官能性架橋剤を用いる。
The third method utilizes a mercapto group of a physiologically active protein having a mercapto group, or introduces a mercapto group into the amino group of a physiologically active protein via a crosslinking group, and utilizes this mercapto group to Active proteins or bioactive proteins with mercapto groups introduced and polysuccinimide derivatives which are 2-hydrogen atoms [! ] and are bonded together using a crosslinking agent. As the crosslinking agent, a bifunctional crosslinking agent capable of reacting with a mercapto group is used.

この目的のために好適なメルカプト基と反応し得る二官
能性架橋剤としては例えば一般式(IV)で表わされる
シマレイミド化合物、又はベンゾキノンなどを挙げるこ
とができる。
Examples of suitable bifunctional crosslinking agents capable of reacting with mercapto groups for this purpose include simaleimide compounds represented by general formula (IV), benzoquinone, and the like.

[L、は2価の有機基を表わす。] LIA であられされる2−価の有機基としては、例え
ばフェニレン基、アゾベンゼンジイル基、および例えば
一般式−((I(、)、 −0(CH2)a−λ   
       2 〔式中、為よ および12は1〜3の整数をあられす。
[L represents a divalent organic group. ] Examples of the divalent organic group represented by LIA include a phenylene group, an azobenzenediyl group, and a group having the general formula -((I(,), -0(CH2)a-λ
2 [In the formula, tameyo and 12 are integers from 1 to 3.

〕 であられされる酸素原子を介するアルキレン基などが挙
げられる。
] Examples include an alkylene group via an oxygen atom, which is formed by the following.

さらに具体的なシマレイミド化合物の例としては、N、
N’−(1,2−フェニレン)ジマレーフェニレン)シ
マレイミド イルアミノ)アゾベンゼン ビス(N−マレイミドメチル)エーテルなどを例示する
ことができる。
More specific examples of simalimide compounds include N,
Examples include N'-(1,2-phenylene) dimalephenylene) simaleimidoylamino) azobenzene bis(N-maleimidomethyl) ether.

水弟3の方法により生理活性蛋白とザクシンイミド誘導
体〔I)とを結合するには、■メルカプト基を有する生
理活性蛋白またはメルカプト基を導入した生理活性蛋白
 ■Z−水素原子であるポリザクシンイミド誘導体(I
’)の一方を、それが有するメルカプト基に対して過剰
の架橋剤と反応させた後、他方と反応せしめろ。
In order to bond a physiologically active protein and a succinimide derivative [I] by the method of Suihiro 3, ■ A biologically active protein having a mercapto group or a biologically active protein into which a mercapto group has been introduced ■ Polysuccinimide which is a Z-hydrogen atom Derivative (I
') with an excess of crosslinking agent relative to the mercapto groups it has, and then react with the other.

第4の方法は、生理活性蛋白のアミノ基を利用して、メ
ルカプト基と反応し得る官能基を架橋基を介して生理活
性蛋白に導入し、次いでZ−水素原子であるポリザクシ
ンイミド誘導体〔I〕と反応せしめる方法である。
The fourth method utilizes the amino group of a physiologically active protein to introduce a functional group capable of reacting with a mercapto group into the physiologically active protein via a crosslinking group, and then introduces a polysuccinimide derivative, which is a Z-hydrogen atom. This is a method of reacting with [I].

メルカプト基と反応し得る官能基としては、例えば式 で表わされるマレイミド基、一般式 CHL 〔式中、Lはハロゲン原子である。〕 で表わされるハロゲン化メチル基などを挙げることがで
きる。上記ハロゲン原子としては、例えば塩素、臭素、
ヨウ素原子などをあげることができるが、ヨウ素原子が
好ましい。
Examples of the functional group capable of reacting with a mercapto group include a maleimide group represented by the formula, and the general formula CHL [wherein L is a halogen atom]. ] Examples include a halogenated methyl group represented by the following. Examples of the halogen atoms include chlorine, bromine,
Examples include an iodine atom, but an iodine atom is preferred.

生理活性蛋白のアミノ基ξζ、架橋基を介して官能基を
導入する架橋剤はすでに知られているが、それらの中で
好ましい架橋剤としては、例えば一般式(VJ 〔式中、L3は2価の有機基であり、Q2 は前記のと
おりである。〕 であられされる化合物をあげることができる。
Crosslinking agents that introduce functional groups through the amino group ξζ of physiologically active proteins and crosslinking groups are already known, but among them, preferred crosslinking agents include those of the general formula (VJ [wherein L3 is 2 and Q2 is as described above.]

こξで、2価の有機基としては、例えばフェニレン基、
一般式 %式% 〔式中、Aはフェニレン基または炭素数5〜7のシクロ
アルカンジイルを、bは1〜3の整数をあられす。〕 であられされる基、炭素数2〜6のアルキレン基などが
挙げられる。
In this ξ, the divalent organic group is, for example, a phenylene group,
General Formula % Formula % [In the formula, A is a phenylene group or a cycloalkanediyl having 5 to 7 carbon atoms, and b is an integer of 1 to 3. ] Examples include a group represented by the following formula, an alkylene group having 2 to 6 carbon atoms, and the like.

上記一般式(V)で表わされる架橋剤の具体的な例とし
ては、例えばm−マレイミドベンゾイックアシッドのN
−ハイドロキシザクシンイミドエステル ボキシシクロヘキシルメチル)マレイミドのN−へイド
ロキシザクシンイミドエステルカルボキシフェニルメチ
ル)マレイミドのN−ハイドロキシサクシンイミドエス
テル マレイミドカブロキシ)サクシンイミドエステンイミド
エステル 上記第1.2.3および4の方法において、生理活性蛋
白のアミノ基と架橋剤との反応は、次のようにして実施
することができる。
As a specific example of the crosslinking agent represented by the above general formula (V), for example, m-maleimidobenzoic acid N
- N-hydroxysuccinimide ester of hydroxysuccinimide ester (boxycyclohexylmethyl)maleimide N-hydroxysuccinimide ester of carboxyphenylmethyl)maleimide maleimide cabroxy)succinimide ester imide ester above in Section 1.2.3 In method 4 and 4, the reaction between the amino group of the physiologically active protein and the crosslinking agent can be carried out as follows.

生理活性蛋白を濃度が0.5〜100η/rnl(好ま
しくは1〜20■/−)になるように溶解し調整したP
H5〜9の緩衝液に、生理活性蛋白1モルに対して架橋
剤を1〜100モル加えて、0〜50℃で攪拌しながら
反応させる。
P prepared by dissolving physiologically active proteins to a concentration of 0.5 to 100 η/rnl (preferably 1 to 20 η/rnl)
1 to 100 mol of a crosslinking agent per 1 mol of physiologically active protein is added to a buffer solution of H5 to 9, and the mixture is reacted at 0 to 50°C with stirring.

反応時間は反応スケール、反応条件にもよるが、通常は
2日以内である。架橋剤は水溶液として用いるか、また
は架橋剤が水に溶けない場合には少量の有機溶媒(例え
ばDMF、DMSo。
The reaction time depends on the reaction scale and reaction conditions, but is usually within 2 days. The crosslinking agent is used as an aqueous solution or, if the crosslinking agent is not soluble in water, a small amount of an organic solvent (eg DMF, DMSo).

1.2−ジメトキシエタン、1,4−ジオキサン、メタ
ノール、エタノール、アセトン等)に溶かした溶液とし
て用いる。
It is used as a solution dissolved in 1,2-dimethoxyethane, 1,4-dioxane, methanol, ethanol, acetone, etc.).

反応終了後は、透析またはゲル沖過などの通常の手段に
より低分子物質を除去し精製することができる。
After completion of the reaction, low molecular weight substances can be removed and purified by conventional means such as dialysis or gel filtration.

前記第3の方法におけるメルカプト基を有するか、また
は導入された生理活性蛋白とチオール型ボリザクシンイ
ミド誘導体とを、二官能性架橋剤を用いて結合する反応
も上記と同様にして行うことができる。
The reaction in which the physiologically active protein having a mercapto group or introduced therein and the thiol-type vorizaxinimide derivative in the third method are bonded using a bifunctional crosslinking agent can also be carried out in the same manner as above. can.

前記の第1〜4の方法において、細胞毒性物質と生理活
性蛋白複合体を得る最後の反応は、生理活性蛋白もしく
は架橋基を介してメルカプト基を導入した生理活性蛋白
またはそれらの修飾体(以下、これらを総称して反応性
生理活性蛋白という。)と、前記ポリザクシンイミド誘
導体〔I)とを、前記第1〜4の方法で説明したように
適当な組合せで次のようにして反応せしめる。
In methods 1 to 4 above, the final reaction to obtain a complex of a cytotoxic substance and a physiologically active protein is performed using a physiologically active protein, a physiologically active protein into which a mercapto group has been introduced via a cross-linking group, or a modified product thereof (hereinafter referred to as , these are collectively referred to as reactive physiologically active proteins) and the polysuccinimide derivative [I) in an appropriate combination as explained in Methods 1 to 4 above, and are reacted in the following manner. urge

反応性生理活性蛋白をpH5〜9の緩衝液に、その濃度
が0.5〜100 ’f/m/ (好ましくは1〜20
〜/−)になるように溶解し調整した溶液と、該反応性
生理活性蛋白と結合させるべきポリザクシンイミド誘導
体〔I)の水溶液または上記と同一の緩衝液溶液を混合
し、0〜50℃で放置するかまたはゆるやかに攪拌する
ことによって反応せしめる。ポリザクシンイミド誘導体
(1)は、生理活性蛋白1モルに対して、0.1〜70
モル用いる。反応時間は、通常は3日以内である。
The reactive physiologically active protein is added to a buffer solution with a pH of 5 to 9 at a concentration of 0.5 to 100' f/m/ (preferably 1 to 20
~/-) and an aqueous solution of the polysuccinimide derivative [I) to be bound to the reactive physiologically active protein or the same buffer solution as above, and mix the solution to give a concentration of 0 to 50 Allow to react by standing at ℃ or stirring gently. The polysuccinimide derivative (1) is 0.1 to 70% per mole of physiologically active protein.
Use moles. The reaction time is usually within 3 days.

反応混合物からの目的とする複合体の分離、精製は、ゲ
ル沖過、アフィニティークロマトグラフィー、透析、、
沈澱などの一般的手法を用いてL−アスパラギン酸66
.5Fに85%リン酸20.6−を加えロータリーエバ
ポレーターで190℃に加熱しつつ、5.5時間10m
Httの減圧上重合を行なった。          
   ;重合後DMFIこ溶解して水にて再沈を行なっ
た。再沈後ガラスフィルターで沖過し80℃にて3日間
真空乾燥を行なうことによりポリザクシンイミドを得た
Separation and purification of the target complex from the reaction mixture can be carried out by gel filtration, affinity chromatography, dialysis, etc.
L-aspartic acid 66 using common techniques such as precipitation
.. 85% phosphoric acid 20.6- was added to 5F and heated to 190℃ using a rotary evaporator while heating at 10m for 5.5 hours.
Polymerization was carried out under reduced pressure of Htt.
After polymerization, DMFI was dissolved and reprecipitated with water. After reprecipitation, it was filtered through a glass filter and vacuum-dried at 80° C. for 3 days to obtain polysuccinimide.

得られた重合体をKBr錠剤法にて赤外吸収の測定を行
なったところ1800 、1720 。
The obtained polymer was measured for infrared absorption using the KBr tablet method, and the results were 1800 and 1720.

1660 as  にザクシンイミド基特有の吸収が認
められた。
At 1660 as, absorption peculiar to the succinimide group was observed.

分子量測定はGPC測定により行なった。Molecular weight measurement was performed by GPC measurement.

DMF用GPCカラA(AD−80M/S−昭和電工)
を用い、得られたポリザクシンイミドをDMF +0.
Q 1MI4 Br溶媒に0.2チの濃度になる様溶解
し、該溶液250μlを注入し同一溶媒を溶出溶媒とし
て示差屈折針で測定を行なった。介種分子量のポリエチ
レングリコールを用いて検量線を作成した。得られたポ
リザクシンイミドはポリエチレングリコール換算で重量
平均分子量8゜9X10’、数平均分子量1゜5X10
’であった。
GPC collar A for DMF (AD-80M/S-Showa Denko)
The obtained polysuccinimide was diluted with DMF +0.
It was dissolved in a Q1MI4Br solvent to a concentration of 0.2H, 250 μl of the solution was injected, and the same solvent was used as an elution solvent for measurement with a differential refraction needle. A calibration curve was created using polyethylene glycol with a different molecular weight. The obtained polysuccinimide had a weight average molecular weight of 8°9X10' and a number average molecular weight of 1°5X10 in terms of polyethylene glycol.
'Met.

参考例2 参考例1で得られたポリザクシンイミド1.5611(
ザクシンイミド基15 mmolに相当)を90−のD
MFに溶解した。
Reference Example 2 Polysuccinimide 1.5611 (obtained in Reference Example 1)
(corresponding to 15 mmol of succinimide group) to 90-
Dissolved in MF.

この溶液にシステアミン34.7■(0,45mmol
 )、エタノールアミン6531”P (10,7mm
ol )をDMF I Q−に混合した溶液を加えて、
4℃24時間反応を行なった。反応後反応液に1NNa
OH溶液約50−を攪拌下1時間にわたって滴下した。
This solution contains 34.7 μ (0.45 mmol) of cysteamine.
), ethanolamine 6531”P (10,7mm
Add a solution of ol) mixed with DMF IQ-,
The reaction was carried out at 4°C for 24 hours. After the reaction, add 1N Na to the reaction solution.
Approximately 50 ml of OH solution was added dropwise over 1 hour with stirring.

この後pH4の水溶液で透析を行なった。ダイヤフロー
メンブラン■(アミコン社製分子量1万カツト)でX4
0aaのカラムでゲルr過を行ない低分子成分を除去し
た。凍結乾燥を行ない、一般式(II[)で2−水素原
子である中間体を得た。
After that, dialysis was performed with an aqueous solution having a pH of 4. X4 with Diaflow membrane ■ (manufactured by Amicon, molecular weight 10,000 cut)
Gel filtration was performed using a 0aa column to remove low molecular components. Freeze-drying was performed to obtain an intermediate having the general formula (II[) and having a 2-hydrogen atom.

中間体中のチオール基の定量を後に記す参考例4で示す
方法で測定したところ、中間体1・f中に1゜5X10
’モルのチオール基が存在していた。カルボキシル基の
定量は常法に従い酸−塩基滴定法番こより行なった。こ
の結果中間体lf中に2゜8X10−8モルのカルボキ
シル基が存在していた。IR及び13 C−NMRの測
定から未反応のザクシンイミド基は認められなかった。
When the thiol group in the intermediate was determined by the method shown in Reference Example 4 described later, it was found that 1°5×10
'moles of thiol groups were present. The amount of carboxyl group was determined by acid-base titration according to a conventional method. As a result, 2°8×10 −8 moles of carboxyl groups were present in intermediate lf. No unreacted succinimide group was observed from IR and 13 C-NMR measurements.

上記測定結果よりザクシンイミド基1モルあたりのシス
テアミンの導入量(Xモル)、力。
From the above measurement results, the amount of cysteamine introduced per mole of succinimide group (X mole) and power.

ルボキシル基の導入量(7モル)を下記の連立方程式か
ら求めた。
The amount of introduced carboxyl group (7 moles) was determined from the following simultaneous equations.

ここでa、b、c、t、sは下記の如くである。Here, a, b, c, t, and s are as follows.

ザクシンイミド基がエタノールアミンと反応したモノマ
ーユニットの分子1ta−158サクシンイミド基がシ
ステアミンと反応したモノマーユニットの分子it  
b=174サクシンイミド基が加水分解されたモノマー
ユニットの分子量 C= 115 中11t1体(III31 f中のシステアミンの導入
量を冨1.42X10  モル 中間体(nI) 1 f/中のカルボキシル基の導入量
S冨2゜8X10 モル 計算の結果X −0,02モル、yP=o、aモルであ
った。
Molecule of the monomer unit in which the succinimide group reacted with ethanolamine 1ta-158 Molecule of the monomer unit in which the succinimide group reacted with cysteamine it
b = 174 Molecular weight of monomer unit with hydrolyzed succinimide group C = 115 11t1 body (III31 The amount of cysteamine introduced in f is 1.42 x 10 molar intermediate (nI) 1 The amount of carboxyl group introduced in f/ The result of the molar calculation of S depth 2°8X10 was X -0.02 mole, yP=o, a mole.

分子量は末端のアミンの測定により行なった。上記中間
体5wvを0゜IMホウ酸ナナトリウム溶液1に溶解し
、次に2.4.6−)リニトロベンゼンスルホン酸(P
t下TNBS と略す)32■を10−の0゜IMホウ
酸ナナトリウム溶液溶解した溶液0.1 mZを加え、
25℃で45分反応を行なった後、さらに0゜1Mホウ
酸ナナトリウム溶液1.9−加え4200mの吸収の測
定を行なった。既知量のアスパラギン酸を用いた検量線
より、分子吸光係数11.100の値が得られ、この分
子吸光係数を用いて末端アミンの値を算出した。この結
果中間体lf中に5X10’モルのアミノ基が存在して
いた。この結果より平均分子量は約20.000となる
The molecular weight was determined by measuring the terminal amine. 5 wv of the above intermediate was dissolved in 0° IM sodium borate solution 1 and then 2.4.6-)linitrobenzenesulfonic acid (P
Add 0.1 mZ of a solution of TNBS (abbreviated as TNBS) dissolved in 10-0° IM sodium borate solution,
After the reaction was carried out at 25°C for 45 minutes, 0°C of 1M sodium borate solution was further added and the absorption at 4200 m was measured. A molecular extinction coefficient of 11.100 was obtained from a calibration curve using a known amount of aspartic acid, and the value of the terminal amine was calculated using this molecular extinction coefficient. As a result, 5×10′ moles of amino groups were present in intermediate lf. From this result, the average molecular weight is approximately 20.000.

”t7の値から平均モノマーユニットの分子量は145
.4となり、分子量より重合度n′十m+/’+ r’
+ P’+(1’(7)平均値ハ138゜”eVよりn
’ −1−m’の平均値は41.r’+r’の平均値は
94.P+9’の平均値は3となる。
``From the value of t7, the molecular weight of the average monomer unit is 145.
.. 4, and the degree of polymerization is n'0m+/'+r' from the molecular weight.
+P'+(1'(7) Average value c138゜"eV n
The average value of '-1-m' is 41. The average value of r'+r' is 94. The average value of P+9' is 3.

参考例3 参考例2で得られた中間体20■を5−の水に溶解し、
これに1−エチル−(3−ジメチルアミノプロピル)カ
ルボジイミド塩酸塩6811vを加え、I N HC/
 テpH5,0に調整した。この液にダウノマイシン塩
酸塩20ηを31nlの水に溶解したものを滴下する。
Reference Example 3 20 μ of the intermediate obtained in Reference Example 2 was dissolved in 5-water,
To this was added 6811v of 1-ethyl-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide hydrochloride, and I N HC/
The pH was adjusted to 5.0. A solution of 20 η of daunomycin hydrochloride dissolved in 31 nl of water is added dropwise to this solution.

1時間室温で反応を行なった後lNNaOHでpH9゜
5に調整した。その後0゜15NNacI!水溶液で平
衡化した5ephadex■G−25スーパーフ;イン
(ファルマシャ社製) 3.9 aag X7゜0a1
1のカラムでゲル沖過を行ない低分子成分を除去した後
8%NaCl!水溶液で透析、を行ない透析後エタノー
ルアミン塩酸塩100F。
After reacting for 1 hour at room temperature, the pH was adjusted to 9.5 with IN NaOH. Then 0°15NNacI! 5ephadex G-25 Superfine (manufactured by Pharmacia) equilibrated with aqueous solution 3.9 aag X7°0a1
After gel filtration was performed using column 1 to remove low molecular components, 8% NaCl! After dialysis with an aqueous solution, ethanolamine hydrochloride 100F was obtained.

1−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カル
ボジイミド塩酸塩200■を加えてlNHCl!でpH
5,0とし1時間室温で反応を行なった。その後0.β
%NaCl!水溶液で透析を行なった後凍結乾燥を行な
った。
Add 200 μl of 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide hydrochloride and add 1NHCl! pH at
5.0 and the reaction was carried out at room temperature for 1 hour. Then 0. β
%NaCl! After dialysis with an aqueous solution, freeze-drying was performed.

収量18η 得られたポリザクシンイミド誘導体中のダウノマイシン
の導入量は七〒忰Q、I Mリン酸ナトリウム−〇。1
5M食塩緩衝液CP117.4)の溶液中の485 n
mの吸収より求めた。ポリサクシソイミド誘導体1g中
に49X10  ’モルのダウノマイシンが導入されて
いた。
Yield: 18η The amount of daunomycin introduced into the obtained polysuccinimide derivative was 7〒忰Q, IM sodium phosphate-〇. 1
485 n in a solution of 5M saline buffer CP117.4)
It was determined from the absorption of m. 49×10′ moles of daunomycin were incorporated into 1 g of polysuccinimide derivative.

チオール基の定量は次に記す参考例4の方法で行なった
。ポリサクシンイミド誘導体lf中に9.8X10〜5
モルのチオール基があった。
The thiol group was quantified by the method of Reference Example 4 described below. 9.8X10~5 in polysuccinimide derivative lf
There were moles of thiol groups.

iR及び C−NMRより未反応のカルボキシル基は検
出されなかった。
No unreacted carboxyl group was detected by iR and C-NMR.

上記の結果、ザクシンイミド基1モルあたりのチオール
基は0002モル、ダウノマイシンは0.1モル結合し
ている。
As a result of the above, 0,002 moles of thiol group and 0.1 mole of daunomycin are bound per mole of succinimide group.

末端アミノ基の定量は参考例2と同様の方法で行なった
。ポリサクシンイミド誘導体lf中に3゜53X10’
  モルのアミノ基が存在し、平均分子量は28,00
0となる。
Quantification of terminal amino groups was carried out in the same manner as in Reference Example 2. 3゜53X10' in polysuccinimide derivative lf
moles of amino groups are present and the average molecular weight is 28,00
It becomes 0.

これらの値より、重合度n+m+/+r+p+qの平均
値13B、n十mO)平均値14゜/+rの平均値12
1.p十qの平均値3である、X−ダウノマイシン、2
−水素原子であるポリサクシンイミド誘゛導体〔I)が
得られたことがわかった。
From these values, the average value of the degree of polymerization n+m+/+r+p+q is 13B, the average value of n0mO) is 14°/the average value of +r is 12
1. X-daunomycin, 2 with an average value of p1q of 3
- It was found that a polysuccinimide derivative [I] containing hydrogen atoms was obtained.

参考例4 本実施例はチオール型の中間体(1)(Z=水素原子)
を、z 、 z’の中間体〔I〕にする方法を示すと共
1こ、千オ〜ル型中間体〔I〕中のチオール基の定量方
法をも示すものである。
Reference Example 4 This example uses thiol type intermediate (1) (Z=hydrogen atom)
The present invention shows a method for converting 1 to an intermediate [I] between z and z', and also shows a method for quantifying the thiol group in the 1,000-ol type intermediate [I].

参考例2で得られた中間体(III) 2 Q 119
を3−の0.1Mリン酸ナトリウム−1mM EDTA
(PH7,0)  の緩衝液に溶解し、ジチオスレイト
ール10w9を加えて30℃1時間還元反応を行なった
。反応後前記緩衝液で平衡化した5eph*dex■G
−2’57.−パー7、イ、ン(フフルマシャ社製) 
2.0anXX 15cm テゲル濾過し、低分子成分
を除去した後回−緩衝液で20倍に希釈した。この反応
液500 ulに5 mM 4−ピリジルジスルフィド
のメタノール溶液20ttlを加え30 ℃15分間反
応させ、この反応液と0.1 Mリン酸緩衝液pH7゜
0テ平衡化した5ephadex■G−25スーパーフ
アイン(フフルマシャ社製) 2.0 alOXl、5
〔IIでゲル済遇し高分子成分と低分子成分にわけた。
Intermediate (III) 2 Q 119 obtained in Reference Example 2
3-0.1M sodium phosphate-1mM EDTA
(PH7.0), dithiothreitol 10w9 was added, and a reduction reaction was carried out at 30°C for 1 hour. 5eph*dex■G equilibrated with the above buffer solution after reaction
-2'57. - Par 7, I, N (manufactured by Ffurumasha)
2.0anXX 15cm Tegel filtration was performed to remove low molecular weight components, and then diluted 20 times with buffer. To 500 ul of this reaction solution was added 20 ttl of a methanol solution of 5 mM 4-pyridyl disulfide and allowed to react for 15 minutes at 30°C. Huain (manufactured by Fufurumasha) 2.0 alOXl, 5
[In II, the gel was treated and separated into a high molecular component and a low molecular component.

低分子成分中化合まれる4−チオピリドンを324 n
mで測定した。4−チオピリドンの分子吸光係数1.9
8 X 10’  を用いて中間体〔I〕 (Z−水素
原子)のチオール基量を計算したところ中間体lf中に
1゜4×10  モルのチオール基が存在していた。
4-thiopyridone compounded in the low molecular component is 324 n
Measured in m. Molecular extinction coefficient of 4-thiopyridone: 1.9
When the amount of thiol groups in intermediate [I] (Z-hydrogen atom) was calculated using 8 x 10', it was found that 1°4 x 10 mol of thiol groups were present in intermediate lf.

参考例5 参考例1で得られたポリザクシンイミド86■(ザクシ
ンイミド基0.89 mmot−当)を2−のDMFに
溶解した。
Reference Example 5 86 mm of polysuccinimide obtained in Reference Example 1 (0.89 mmot of succinimide groups) was dissolved in 2 mm of DMF.

仁の液番ζダウノマイシン塩酸塩20v9(35μmo
l )を加えたのちトリエチルアミン12μI!(86
μmol)を加えて室温で1o日間反応させた。その後
システアミン6゜7岬、エタノールアミン0.13v 
DMF 1−を混合した溶液を加え4℃で4時間反応さ
せた。
Jin's liquid number zeta daunomycin hydrochloride 20v9 (35μmo
l ) and then 12μI of triethylamine! (86
μmol) was added and allowed to react at room temperature for 10 days. Then cysteamine 6°7 cape, ethanolamine 0.13v
A mixed solution of DMF 1- was added and reacted at 4°C for 4 hours.

この反応溶液を水番こ対して2日間透析後孔径0.45
μmの膜(ミリポアフィルタ−)で不溶化部分を除去し
r液を5ephadex■G−25スーパーフアイン(
)1ルマシャ社1l)2.6〔IIJ2’X403のカ
ラムで、溶出液として蒸留水を用いてゲル濾過し低分子
成分を除去した。
After dialysis of this reaction solution for 2 days against a water bottle, the pore size was 0.45.
Remove the insolubilized portion with a μm membrane (Millipore filter) and remove the R solution with 5ephadex G-25 Super Fine (
)1 Lumasha Co., Ltd. 1l) 2.6 [Low molecular components were removed by gel filtration using a column of IIJ2'X403 using distilled water as an eluent.

この後凍゛結乾燥を行いポリザクシンイミド誘導体を得
た。 収量401IP0 IR,13cmNMRの測定より未反応ザクシンイミド
基は検出されなかった。
Thereafter, freeze-drying was performed to obtain a polysuccinimide derivative. Yield: 401IP0 IR, 13cm NMR measurements showed that no unreacted succinimide group was detected.

得られたポリザクシンイミド誘導体中のザクシンイミド
基1molあたりのダウノマイシンの導入量は参考例3
と同様の方法で求めた。
The amount of daunomycin introduced per mol of succinimide group in the obtained polysuccinimide derivative is as shown in Reference Example 3.
was calculated using the same method.

ポリサクシンイミド誘導体lf中に1.2× ・10−
4モルのダウノマイシンが結合していた。
1.2×・10− in polysuccinimide derivative lf
4 moles of daunomycin were bound.

結合したシステアミンの量は参考例4の方法で行なった
。ポリサクシンイミド誘導体lf中に2.5X10’モ
ルのシステアミンが存在していた。
The amount of bound cysteamine was determined by the method of Reference Example 4. There were 2.5×10′ moles of cysteamine in the polysuccinimide derivative lf.

IR及び CNMRの測定から未反応ザクシンイミド基
は検出されなかった。
No unreacted succinimide group was detected from IR and CNMR measurements.

上記の値よりサクシンイミド基1モル馨こダウノマイシ
ンが0.02 モル、システアミンが0.005モル結
合している。
From the above values, 1 mole of succinimide group is combined with 0.02 mole of daunomycin and 0.005 mole of cysteamine.

参考例2と同様の方法で末端アミノ基の定量を行なった
ところポリザクシンイミド誘導体1f中に1゜25X1
0″ モルのアミノ基が存在していた。平均分子量はs
o、oooとなる。
When the terminal amino group was quantified in the same manner as in Reference Example 2, 1°25×1
0'' moles of amino groups were present.The average molecular weight was s
o, ooo.

以上の結果より重合度n十m+/+r十p+9の平均値
は478となり、n十mの平均値は10、/+rの平均
値は466、p十qの平均値が2である、X社ダウノマ
イシン、ZI=水素原子であるポリザクシンイミド誘導
体〔I〕が得られたことがわかった。
From the above results, the average value of the degree of polymerization n0m+/+r0p+9 is 478, the average value of n0m is 10, the average value of /+r is 466, and the average value of p1q is 2. It was found that a polysuccinimide derivative [I] in which daunomycin, ZI = hydrogen atom, was obtained.

参考例6 免疫グロブリンの製法 ヒト トランスフェリン・芯セブターに対するモノクロ
ーナル抗体の製法は 計gg ’Omary6M、B、 et al、、 Natur
e 2864j−Ml 1980゜に記載されている。
Reference Example 6 Production method of immunoglobulin The production method of monoclonal antibody against human transferrin/core setter is as follows.
e 2864j-Ml 1980°.

ヒト慢性骨髄性白血病患者から得られたに562株で免
疫したBALB/C系マウスの肺臓リンパ球と免疫グロ
ブリン非産生骨髄腫細胞であ;4519415XXO,
BU、1株とを常法に従って細胞融合し、トランスフェ
リンリセブターに対する抗体を産生ずる融合細胞を選択
した。
Lung lymphocytes and non-immunoglobulin-producing myeloma cells of BALB/C mice immunized with strain 562 obtained from a human chronic myeloid leukemia patient; 4519415XXO,
BU, 1 strain was fused according to a conventional method, and fused cells producing antibodies against transferrin receptor were selected.

上記融合細胞をブリスタンを前投与したBALB/C系
マウスに注射し約2週間後に腹水を採集した。
The above-mentioned fused cells were injected into BALB/C mice pre-administered with Blistane, and ascites fluid was collected about 2 weeks later.

腹水より免疫グロブリンを精製した。腹水を50%飽和
硫安水溶液番ごて沈澱させリン酸ナトリウム緩衝液に溶
解し透析後DEAE−イオン交換カラムを用いてIgG
  分画を得て更にアミコン膜(アミコンa[−PM−
3)で濃縮して5η/−の蛋白濃度の液を得た。
Immunoglobulin was purified from ascites. Ascitic fluid was precipitated using a 50% saturated ammonium sulfate aqueous solution, dissolved in sodium phosphate buffer, and dialyzed.
After obtaining the fraction, further Amicon membrane (Amicon a[-PM-
It was concentrated in step 3) to obtain a solution with a protein concentration of 5η/-.

実施例1 フィブリノーゲンーミドリ(ミドリ十字より購入)10
55”P(フィブリノーゲン量330wf)を蒸留水1
0mHm加え、室温で30分間攪拌し溶解した。この液
にジメチル−3−3′−ジチオビスプロピオンイミデー
ト(ピアス社より購入) 121119とジチオスレイ
トール60119を6艷の蒸留水に溶解し23℃40分
反応せしめた。0゜OIMリン酸緩衝生理食塩水(PB
S)pH8,0で平衡化した 5ephadex■G−2’5スーパー7)pイン、(
7yルマシャ社製)の2゜6alOX40cmのカラム
を用いてゲル濾過を行ない低分子成分を除去した。この
分取液に参考例3で得られたチオール型反応性重合体に
参考例4と同様の方法を施して得られた活性ジスルフィ
ド基を有する反応性重合体32■を加え4℃18時間反
応を行なった。反応後回−緩衝液で平衡化した5eph
arose■CL −6−3−(ファルマシャ社製)の
2.6 csX X 1(jOamのカラムでゲル濾過
を行ないフィブリノーゲン分画を分取した。
Example 1 Fibrinogen-Midori (purchased from Midori Juji) 10
55”P (fibrinogen amount 330 wf) in distilled water 1
0 mHm was added, and the mixture was stirred at room temperature for 30 minutes to dissolve. In this solution, dimethyl-3-3'-dithiobispropionimidate (purchased from Pierce) 121119 and dithiothreitol 60119 were dissolved in six bottles of distilled water and reacted at 23°C for 40 minutes. 0°OIM phosphate buffered saline (PB
S) 5ephadex G-2'5 super 7) p-in, (
Gel filtration was performed using a 2°6alOX 40cm column (manufactured by Lumasha, Inc.) to remove low molecular components. To this aliquot, 32cm of a reactive polymer having active disulfide groups obtained by subjecting the thiol-type reactive polymer obtained in Reference Example 3 to the same method as in Reference Example 4 was added and reacted at 4°C for 18 hours. I did it. Post-reaction stage - 5eph equilibrated with buffer
Gel filtration was performed using a 2.6 csX X 1 (jOam) column of arose CL-6-3- (manufactured by Pharmacia) to separate the fibrinogen fraction.

蛋白回収率20チ。Protein recovery rate is 20%.

得られた複合体においてフィブリノーゲンの凝固能が変
化していない事を確認するため「A 套rch、Biochem、  Biophyg−−ジ
2  (1951)317−324に記載されている方
法で凝固能を」 測定した。複合体中のフィブリノーゲン0.56岬/−
になる様に水溶液を調整し、この溶液4.54にスロン
ビ7 (Thrombin)  、5 Q unit/
−の同一緩衝液を0.54加えて室温に1時間放置後生
じたクロット(CLet )を除去して280 amの
吸光の測定より残液のフィブリノーゲン濃度を測定しフ
ィブリノーゲンの凝固率を計算した。凝固率は85%で
あった。
In order to confirm that the coagulation ability of fibrinogen had not changed in the obtained complex, the coagulation ability was measured by the method described in A. did. Fibrinogen in the complex 0.56 cape/-
Adjust the aqueous solution so that
0.54 of the same buffer solution was added, and after leaving at room temperature for 1 hour, the resulting clot (CLet) was removed, and the fibrinogen concentration of the remaining solution was measured by measuring the absorbance at 280 am, and the coagulation rate of fibrinogen was calculated. The coagulation rate was 85%.

なお用いたフィブリノーゲンの凝固率は86’%であり
複合体になってもフィブリノーゲンの凝固能が低下して
いない事が確認された。  280 nmの吸収及び4
85 nm  の吸収よりフィブリノーゲン1−分子あ
たり結合したダウノマイシンの数を計算したところフィ
ブリノーゲン1分子に40個のダウノマイシンが結合し
ていた。
The coagulation rate of the fibrinogen used was 86'%, and it was confirmed that the coagulation ability of fibrinogen did not decrease even when it was formed into a composite. Absorption at 280 nm and 4
The number of daunomycins bound per fibrinogen molecule was calculated from the absorption at 85 nm, and 40 daunomycins were bound to one fibrinogen molecule.

i4例6で得られπ児役クロフリン31テで平衡化した
5ephadex■G−25(7,ルマシャ社製)カラ
ムにかけて緩衝液の交換を行ないアミコン膜(アミコン
社製−PM−IQ)で5vV/−に1n縮した液6−に
N−(4−カルボキシシクロヘキシルメチル)マレイミ
ドのN−ハイドロキレサクシンイミドエステルメ 4 Q mMのジオキサン溶液30−を加えて30℃1
時間反応を行なった。反応後間−緩衝液を用イテ8ep
hadex■c −252−パーファイン()1ルマシ
ャ社製)の2.Ocrnlf X20αのカラムでゲル
を過を行ない低分子成分を除去した。
The buffer solution was exchanged on a 5ephadex G-25 (7, manufactured by Lumasha) column obtained in Example 6 and equilibrated with cloflin 31%, and the buffer was exchanged at 5vV/ -To the solution 6- condensed by 1n to 6-, add 30- of N-hydrochelesuccinimide ester me4Q mM dioxane solution of N-(4-carboxycyclohexylmethyl)maleimide to 30°C.
A time reaction was performed. After reaction - use buffer solution 8ep
hadex■c-252-perfine (2) (manufactured by Lumasha) 2. The gel was filtered with an Ocrnlf X20α column to remove low molecular weight components.

参考例3で得られた反応性重合体30■を緩衝液A3−
に溶解し、この溶液にジチオスレイトール13キを加え
て30℃2時間反応後、上記と同様の方法でゲル濾過を
行ない低分子成分を除去した。
30cm of the reactive polymer obtained in Reference Example 3 was added to buffer solution A3-
13 kg of dithiothreitol was added to this solution and reacted for 2 hours at 30°C, followed by gel filtration in the same manner as above to remove low molecular components.

両者のゲル濾過後の分取液を混合して4℃18時間放置
し、反応した。未反応の反応性重合体を除去する目的で
反応液をProtein八〇(ファルへシャ社製)30
−を0.1Mリン酸緩衝液(pH8,20)で平衡化し
たカラムにかけ、非吸着成分を平衡化緩衝液で十分除去
した後0゜1Mリン酸緩衝生理食塩水(pH5,8)で
Protein A[F]カラム吸着成分を溶出した。
Both fractions after gel filtration were mixed and allowed to stand at 4°C for 18 hours to react. In order to remove unreacted reactive polymers, the reaction solution was treated with Protein 80 (manufactured by Farhesha) 30.
- applied to a column equilibrated with 0.1M phosphate buffer (pH 8,20), and after thoroughly removing non-adsorbed components with equilibration buffer, protein was added to 0.1M phosphate buffered saline (pH 5,8). The components adsorbed on the A[F] column were eluted.

溶出液を0.1Mリン酸緩衝液(PH8,0>II!に
対して透析を行なった。透析、後、透析1液をアミコン
膜(アミコン社製 PM−10)で濃縮を行ない蛋白濃
度1.13”F/−の液6−を得た。得られた複合体の
280 nmの吸収と485nmの吸収より免疫グロブ
リン1分子あたりに結合しているダウノマイシンの数を
計算したところ免疫グロブリン1分子に40個のダウノ
マイシンが結合していた。
The eluate was dialyzed against 0.1M phosphate buffer (PH8, 0>II!). After dialysis, the dialysis solution was concentrated with an Amicon membrane (PM-10, manufactured by Amicon) to a protein concentration of 1. A solution 6- of .13"F/- was obtained. The number of daunomycin bound per immunoglobulin molecule was calculated from the absorption of the obtained complex at 280 nm and 485 nm. 40 daunomycins were bound to it.

複合体の免疫グロブリンが抗体としての抗原との結合能
を保持している事を確認するた免役グロブリンにクロラ
ミン寸法によりヨード標識を行なった。
To confirm that the immunoglobulin complex retains the antigen-binding ability as an antibody, the immunoglobulin was iodine-labeled using chloramine.

プラスチックチューブに0゜5Mリン酸ナトリウム緩衝
液pH7,5(以下緩衝液Bとする。)を5μl、Na
126IをQ、3mC1を入れて攪拌し次いで200μ
f/mlのクロラミン−Tの緩衝液B溶液20μlを加
えて20秒攪拌後0.5キ/−の免疫グロブリンの緩衝
液B溶液20μlを加えて15秒攪拌下反応を行なった
In a plastic tube, add 5 μl of 0°5M sodium phosphate buffer pH 7.5 (hereinafter referred to as buffer B), Na
Add 126I to Q and 3mC1, stir, and then add 200μ
After adding 20 .mu.l of a buffer B solution of chloramine-T of f/ml and stirring for 20 seconds, 20 .mu.l of a 0.5 k/ml immunoglobulin buffer B solution was added and a reaction was carried out with stirring for 15 seconds.

反応後14pfl/mlのNa2S20. (F)緩衝
液B溶液400μl、20η/−のKl  の緩衝液B
溶液25μl、5チBSAの緩衝液B溶液25μlを加
えた。この後5ephadex■G−25(7)カラム
で緩衝液Bを溶出液としてゲル濾過を行ない蛋白溶出分
を分取して低分子を除去した。
After the reaction, 14 pfl/ml of Na2S20. (F) Buffer B solution 400μl, Kl of 20η/- Buffer B
25 μl of the solution and 25 μl of a 5% BSA buffer B solution were added. Thereafter, gel filtration was performed using a 5 ephadex G-25 (7) column using buffer B as an eluent, and the protein eluate was fractionated to remove low molecules.

かくして得られた1261−標識免疫グロブリンの比放
射能を求めるため、280nmの吸光から蛋白濃度を求
め総放射能の測定を行なった結果から4.3mC1/■
の比放射能であった。上記126エー標識免疫グロブリ
ンの放射能量2X105cpm となる量をi、ntの
1′0%FC8−RPM÷−1640 メディウム(半
井化学より購入)に加え、この溶液0.1艷に上記複合
体を1.0〜0.1’f/−となるように溶解ラム溶液
0.4−を加え、この液にヒトトランスフェリンリセブ
ターを有する事が知られているCCRF−C1M細胞(
Di X 10’ cells/−の10チFC5−R
PM+−154Qメディウム溶液0.5−を加え4℃1
時間インキュベーションを行なった。この後2.00O
rpmで5分間遠心分離を行ない上清をすて沈渣をQ 
、5 %  B S A −Hank’s緩衝液を加え
た後2.000 rPmで5分間遠心分離を行なって上
溝をすて沈渣の放射能を測定した。
In order to determine the specific radioactivity of the 1261-labeled immunoglobulin thus obtained, the protein concentration was determined from the absorption at 280 nm, and the total radioactivity was measured, and the result was 4.3 mC1/■.
The specific radioactivity was . Add an amount of radioactivity of the above 126A-labeled immunoglobulin (2 x 105 cpm) to 1'0% FC8-RPM ÷ -1640 medium (purchased from Hani Chemical), and add 1 volume of the above complex to 0.1 volume of this solution. Add 0.4 - of lysed Ram's solution to give a concentration of .0 to 0.1'f/-, and add CCRF-C1M cells (which are known to have human transferrin receptors) to this solution.
Di X 10' cells/- 10chi FC5-R
Add PM+-154Q medium solution 0.5- and heat at 4°C.
Incubation was carried out for hours. After this 2.00O
Centrifuge at rpm for 5 minutes, discard the supernatant, and collect the precipitate.
After adding 5% BSA-Hank's buffer, centrifugation was performed at 2.000 rPm for 5 minutes, the upper groove was discarded, and the radioactivity of the precipitate was measured.

比較の、ため複合体の代りに免疫グロブリンを同一濃度
となるように加えて実験を行なったところ、複合体と免
疫グロブリンのCCRM−CEM細胞1こ対する126
■−標識免疫グロブリンの結合を阻害する効果は同じで
あり、複合体の免疫グロブリンがもとの免疫グロブリン
と同じ結合能力を有している事が示された。
For comparison, an experiment was conducted in which immunoglobulin was added at the same concentration instead of the complex, and it was found that the complex and immunoglobulin were 126% per CCRM-CEM cell.
■ The effect of inhibiting the binding of the labeled immunoglobulin was the same, indicating that the immunoglobulin complex had the same binding ability as the original immunoglobulin.

実施例3 2゛ 参考例6で得られた免疫グロブリンを実施例2と同様1
mMEDTAを含む0゜IMリン酸MN液(M街液A)
に交換し551ny/′−とした液6rnlに2Q m
MN−ザクシンイミジルー3−(2−ピリジルチオ)プ
ロピオネートのエタノール溶液30μlを加えて23℃
30分間インキュベートした。反応後反応停止剤として
グリシン5キおよび還元剤ジチオスレイトール5■を加
えて23℃30分間インキュベートした。その後緩衝液
Aで平衡化した5ephadex @c、 −25(7
7/l/ v シャ社製)の2゜0〔IOX20口のカ
ラムでゲル濾過を行ない低分子成分を除去して蛋白質画
分7−を分取した。この分取液に参考例3で得られたチ
オール型反応性重合体に参考例4と同様の方法を施して
得られた活性ジスルフィド結合を有する反応性重合体1
0〜を加え、4℃で18時間インキエベートした。その
後未反応の反応性重合体を除去する目的で実施例2と同
様Protein A■カラムで分離後濃縮を行ない蛋
白濃度1.12 ”?/−の成約64を得た。
Example 3 2゛The immunoglobulin obtained in Reference Example 6 was prepared in the same manner as in Example 2.
0°IM phosphoric acid MN solution containing mMEDTA (M street solution A)
2Q m to 6rnl of the solution made 551ny/'-
Add 30 μl of ethanol solution of MN-succinimidyl-3-(2-pyridylthio)propionate and incubate at 23°C.
Incubated for 30 minutes. After the reaction, 5 kg of glycine as a reaction terminator and 5 kg of dithiothreitol as a reducing agent were added and incubated at 23°C for 30 minutes. 5ephadex@c, -25(7
Gel filtration was performed using a 2°0 [IOX 20-port column (manufactured by Sha Co., Ltd.) to remove low molecular weight components, and protein fraction 7- was fractionated. Reactive polymer 1 having active disulfide bonds obtained by applying the same method as in Reference example 4 to the thiol-type reactive polymer obtained in Reference example 3 to this fractionated liquid
0~ was added and incubated at 4°C for 18 hours. Thereafter, in order to remove unreacted reactive polymers, the mixture was separated and concentrated using a Protein A column in the same manner as in Example 2, and a protein concentration of 1.12''/- was obtained.

得られた複合体の2800mの吸収と485 nmの吸
収より免疫グロブリン1分子あたりに結合しているダウ
ノマイシンの数を計算したところ免疫グロブリン1分子
に40個のダウノマイシンが結合していた。
The number of daunomycins bound per immunoglobulin molecule was calculated from the absorption at 2800 m and 485 nm of the obtained complex, and it was found that 40 daunomycins were bound to one molecule of immunoglobulin.

複合体中の免疫グロブリンが抗体としての抗原との結合
能を保持しているかどうかの確認は実施例2と同様12
61−標識免疫グロブリンの抗原との結合の阻害能力を
もとの免疫グロブリンと比較する方法で行なったところ
結合能が低下していない事が確認された。
Confirmation of whether the immunoglobulin in the complex retains the ability to bind to the antigen as an antibody is carried out in the same manner as in Example 212
When the ability of the 61-labeled immunoglobulin to inhibit binding with the antigen was compared with that of the original immunoglobulin, it was confirmed that the binding ability was not decreased.

実施例4 免疫グロブリン1.2fを0゜1M酢酸緩衝液(PH4
,5)40−に溶解し、24■のペプシンを添加して3
7℃で約18時間分解した後、分解生成物を生理食塩水
中で5ephadex■c−200(フフルマシャ社製
)の3゜53y×140個のカラムにかけて、分子量約
10万のところに流出する蛋白を取り出し、F (a 
b’)aを得た。
Example 4 Immunoglobulin 1.2f was dissolved in 0°1M acetate buffer (PH4
, 5) Dissolve in 40- and add 24 μ of pepsin to 3
After decomposition at 7°C for about 18 hours, the decomposition products were applied to a 3°53y x 140 column of 5ephadex c-200 (manufactured by Fufurumasha) in physiological saline to remove proteins that had a molecular weight of about 100,000. Take out, F (a
b') a was obtained.

F (ab’)210 myを含むl Q mMリン酸
M街荷液pH6,5) 1.141nl にN−ヒドロ
キシザクシンイミジル−m−マレイミド安息香酸0.4
2岬を含むN、N−ジメチルホルムアミド0.05−を
添加し、室温で40分反応させた。反応後は0.14 
M塩化ナトリウム、l m M −EDTAを含む5m
M酢酸R衝液PH5,5に透析して過剰の試薬を除きm
−マレイミドベンゾイルF (a b’)2を得た。
1.141 nl of F (ab') 210 myQ mM phosphate M solution pH 6.5) with 0.4 N-hydroxysuccinimidyl-m-maleimidobenzoic acid
0.05- of N,N-dimethylformamide containing 2 capes was added and reacted at room temperature for 40 minutes. 0.14 after reaction
5 m containing M sodium chloride, l m M-EDTA
Dialyze against M acetic acid R buffer pH 5.5 to remove excess reagent.
-maleimidobenzoyl F (ab')2 was obtained.

参考例3で得られた反応性重合体41■を0゜1Mリン
酸ナトリウム−1mMEDTA緩衝液(PH7,0)3
−に溶解し、この溶液にジチオスレイトール13キを加
えて30℃2時間反応後0.14M塩化ナトリウムおよ
び1mM−EDTAを含む5mM酢酸緩衝液pI(5,
5で平衡化した5ephadex■G25 スーハーフ
ァイン(ファルマシャ社製)の2.0cm0X13、.
5cmのカラムでゲル濾過を行ない低分子成分を除去し
た。
The reactive polymer 41 obtained in Reference Example 3 was dissolved in 0° 1M sodium phosphate-1mM EDTA buffer (PH 7,0) 3
-, add 13 kg of dithiothreitol to this solution, react for 2 hours at 30°C, and then add 5 mM acetate buffer pI (5,
2.0 cm 0 x 13 of 5ephadex G25 Suha Fine (manufactured by Pharmasha) equilibrated with 5.
Gel filtration was performed using a 5 cm column to remove low molecular components.

m−マレイミドベンゾイルF (ab’) 230■相
当のM荷液と反応性重合体15η相当の緩衝液を混合し
更に0.5Mリン酸緩衝液(pH6,5) 0.3 r
nlを加え4℃で16時間反応した。
M-maleimidobenzoyl F (ab') 230μ equivalent M loading solution and reactive polymer equivalent 15η buffer solution were mixed, and then 0.5M phosphate buffer (pH 6,5) 0.3 r
nl was added and reacted at 4°C for 16 hours.

反応後生理食塩水で 5ephadex@ G −20
0()1ルマシャ社製)の3.5 cm g X 14
0 cmのカラムを用いて分子量10〜15万の分画を
分取した。
5ephadex@G-20 with physiological saline after reaction
0()1 manufactured by Lumasha) 3.5 cm g X 14
A fraction with a molecular weight of 100,000 to 150,000 was collected using a 0 cm column.

得られた複合体の280 nmの吸収と485 nmの
吸収よりF (a b’)21分子あたりに結合したダ
ウノマイシンの数を計算したところF (a b’)2
1分子中に40個のダウノマイシンが結合していた。複
合体中のF (a b’)2が抗原との結合能を保持し
ているかどうかの確認は比較としてF (a b’)2
 を用いて実施例2と同様125 l−標識免疫グロブ
リンが抗原と結合するのを阻害する能力をもとのF(a
b’)2 と比較する方法で行なったところ(Fab’
)2は複合体となっても結合能が低下していない事が確
認された。
The number of daunomycin bound per molecule of F (a b')2 was calculated from the absorption at 280 nm and 485 nm of the obtained complex.
Forty daunomycins were bound in one molecule. To confirm whether F (a b')2 in the complex retains the ability to bind to the antigen, use F (a b')2 as a comparison.
As in Example 2, the ability to inhibit the binding of 125 l-labeled immunoglobulin to the antigen was determined using the same method as in Example 2.
b') When compared with 2, (Fab'
) It was confirmed that the binding ability of 2 did not decrease even when it was formed into a complex.

実施例5 実施例4と同様にして免疫グロブリンをペフシンテ分解
L/ 1” (F ab’)2 ヲ得た。F(ab’)
240岬を含む0.1Mリン酸ナトリウム−1mMED
TA(pH6,0)緩衝液(以下緩衝液Cとする。)8
.488!、  0.1M2−1ルカプトエチルアミン
の緩衝液C溶液を1 gl加えて87℃で90分間還元
した。反応後、その溶液を緩衝液Cで平衡化した8ep
hadex■G−25(7アルマシヤ社製)のゲル濾過
により低分子量を除去した。蛋白分画を分取後、N、N
’−Q−フェニレンジマレイミドの0.1M6M−1m
 M E D Tム緩衝液pH5,0に対する飽和溶液
25、7 glを加え攪拌下80 ’020分間反応し
た。反応後0.02M酢酸緩衝液PH5,0で平衡化し
た8sphadex■G−25で低分子成分を除去し、
その後濃縮を行ない、マレイミド基が導入されたFab
’ 2.51F/slの濃度の溶液を得参考例5で得ら
れた反応性重合体41ηを0、1 Mリン酸ナトリウム
−1m M E D T人緩衝液(puy、o ) 8
 mlに溶解し、この溶液にジチオスレイトール18p
Iを加えて80°C2時間反応後0.14 M塩化ナト
リウム−1mM−EDTAを含む5mM酢酸緩衝液pH
5,5テ平衡化した8ephadex■G−25スーパ
ーフアインでゲル濾過を行ない低分子成分を除去した。
Example 5 Immunoglobulin was digested with Pefcinte in the same manner as in Example 4. L/1'' (F ab')2 was obtained.F(ab')
0.1M Sodium Phosphate with 240 Capes - 1mMED
TA (pH 6,0) buffer (hereinafter referred to as buffer C) 8
.. 488! , 1 g of 0.1 M 2-1 captoethylamine in buffer C was added and the mixture was reduced at 87° C. for 90 minutes. After the reaction, the solution was equilibrated with buffer C for 8ep.
Low molecular weight components were removed by gel filtration using Hadex G-25 (manufactured by 7 Almasya). After separating the protein fraction, N, N
'-Q-phenylene dimaleimide 0.1M6M-1m
25.7 g of a saturated solution of MEDTM buffer pH 5.0 was added and reacted for 80 minutes with stirring. After the reaction, low molecular components were removed with 8sphadex G-25 equilibrated with 0.02M acetate buffer pH 5.0,
After that, the Fab into which the maleimide group was introduced was concentrated.
' To obtain a solution with a concentration of 2.51 F/sl, the reactive polymer 41η obtained in Reference Example 5 was mixed with 0.1 M sodium phosphate-1 m MED buffer (puy, o) 8
ml and add dithiothreitol 18p to this solution.
Add I and react at 80°C for 2 hours, then add 5mM acetate buffer containing 0.14M sodium chloride-1mM-EDTA pH
Gel filtration was performed using 8ephadex G-25 superfine equilibrated for 5.5 times to remove low molecular components.

 ′マレイミド基を導入したFab’15q相当の緩衝
液と反応性重合体15ダ相当の緩衝液を混合し、更に0
.5Mリン酸緩衝液(PH6,5)068耐を加え4℃
で16時間反応した。反応後生理食塩水テ8ephad
ex■G−200()1ルマシャ社gs)の8.5 a
nφX140anのカラムを用いて球状蛋白質の20万
以上に相当する両分を分取した。
'Mix a buffer solution equivalent to Fab'15q into which a maleimide group has been introduced and a buffer solution equivalent to 15 da reactive polymer, and then
.. Add 5M phosphate buffer (PH6,5) 068 resistant at 4°C.
The reaction was carried out for 16 hours. After reaction, saline solution 8ephad
ex G-200 () 1 Lumasha GS) 8.5 a
Both fractions, equivalent to more than 200,000 globular proteins, were fractionated using an nφX140an column.

得られた複合体の485nmの吸収と280nmの吸収
よりFab’ 1分子あたりの結合ダウノマイシン量を
計算したとどろFab’1分子あたり10個のダウノマ
イシンが結合していた。
The amount of bound daunomycin per Fab' molecule was calculated from the absorption at 485 nm and 280 nm of the resulting complex, and it was found that 10 daunomycins were bound per Fab' molecule.

Fab’の抗原との結合性を確認するため実施例2と同
様 ニー標識免疫グロブリンの抗原への結合阻害能力を
測定したところ明らかに結合阻害能力が認められた。
In order to confirm the binding ability of Fab' to the antigen, the binding inhibition ability of the knee-labeled immunoglobulin to the antigen was measured in the same manner as in Example 2, and the binding inhibition ability was clearly observed.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 (1)下記の一般式〔1〕〜〔6〕 ▲数式、化学式、表等があります▼〔1〕▲数式、化学
式、表等があります▼〔2〕 ▲数式、化学式、表等があります▼〔3〕▲数式、化学
式、表等があります▼〔4〕 ▲数式、化学式、表等があります▼〔5〕▲数式、化学
式、表等があります▼〔6〕 〔上記式〔1〕〜〔6〕において、X、Y、WおよびZ
は各々次の意味を示す。 X:分子中にアミノ基又はイミノ基を有す る細胞毒性物質の反応残基 Y:水溶性脂肪族第一アミン残基 W:低級アルキレン基 Z:水素原子または一般式Z′で示される基(但し、Z
が水素原子である場合、 −SZで表わされる−SH基は分子内ま たは分子間で他の−SH基と平衡的に −S−S−結合を形成し得るが、これら を含んで−SHと表現するものとする。) Z′:隣の硫黄原子と共に活性ジスルフィド結合を形成
しうる基〕 で表わされる構成単位から成り、かつ1分子中における
各構成単位〔1〕、〔2〕、〔3〕、〔4〕、〔5〕お
よび〔6〕の数が各々n、m、l、r、pおよびqであ
ってこれらの数は0または自然数であり、これらの関係
は n+m≧2 0.001≦(p+q)/(n+m+l+r+p+q)
≦0.50であり、平均分子量が2,000〜1,00
0,000であるポリサクシンイミド誘導体〔 I 〕と
生理活性蛋白とを結合せしめた蛋白質−ポリサクシンイ
ミド複合体。 (2)ポリサクシンイミド誘導体〔 I 〕と生理活性蛋
白との結合が、ポリサクシンイミド誘導体〔 I 〕の−
SZ基とメルカプト基を有する生理活性蛋白のメルカプ
ト基とを利用して結合せしめたジスルフィド結合である
特許請求の範囲第1項記載の蛋白質−ポリサクシンイミ
ド複合体。 (3)ポリサクシンイミド誘導体〔 I 〕と生理活性蛋
白との結合が、ポリサクシンイミド誘導体〔 I 〕の−
SZ基と生理活性蛋白のアミノ基を利用し、それらの間
に架橋基を介する結合である特許請求の範囲第1項記載
の蛋白質−ポリサクシンイミド複合体。 (4)ポリサクシンイミド誘導体〔 I 〕と生理活性蛋
白との結合が、ポリサクシンイミド誘導体〔 I 〕の−
SZ基とメルカプト基を有する生理活性蛋白のメルカプ
ト基とを利用して、それらの間に架橋基を介する結合で
ある特許請求の範囲第1項記載の蛋白質−ポリサクシン
イミド複合体。 (5)生理活性蛋白がフィブリノーゲン、ウロキナーゼ
または免疫グロブリンである特許請求の範囲第1項記載
の蛋白質−ポリサクシンイミド複合体。 (6)下記の一般式〔1〕〜〔6〕 ▲数式、化学式、表等があります▼〔1〕▲数式、化学
式、表等があります▼〔2〕 ▲数式、化学式、表等があります▼〔3〕▲数式、化学
式、表等があります▼〔4〕 ▲数式、化学式、表等があります▼〔5〕▲数式、化学
式、表等があります▼〔6〕 〔上記式〔1〕〜〔6〕において、X、Y、WおよびZ
は各々次の意味を示す。 X:分子中にアミノ基又はイミノ基を有す る細胞毒性物質の反応残基 Y:水溶性脂肪族第一アミン残基 W:低級アルキレン基 Z:水素原子または一般式Z′で示される基(但し、Z
が水素原子である場合、−SZ で表わされる−SH基は分子内または 分子間で他の−SH基と平衡的に−S −S−結合を形成し得るが、これらを含 んで−SHと表現するものとする。) Z′:隣の硫黄原子と共に活性ジスルフィド結合を形成
しうる基〕 で表わされる構成単位から成り、かつ1分子中における
各構成単位〔1〕、〔2〕、〔3〕、〔4〕、〔5〕お
よび〔6〕の数が各々n、m、l、r、pおよびqであ
ってこれらの数は0または自然数であり、これらの関係
は n+m≧2 0.001≦(p+q)/(n+m+l+r+p+q)
≦0.50であり、平均分子量が2,000〜1,00
0,000であるポリサクシンイミド誘導体〔 I 〕と
生理活性蛋白とを結合せしめた蛋白質−ポリサクシンイ
ミド複合体を製造するにあたり、生理活性蛋白のメルカ
プト基もしくは生理活性蛋白に新たに導入したメルカプ
ト基と、ポリサクシンイミド誘導体〔 I 〕のメルカプ
ト基を利用してポリサクシンイミド誘導体〔 I 〕と生
理活性蛋白とを結合せしめることを特徴とする前記蛋白
質−ポリサクシンイミド複合体の製法。 (7)生理活性蛋白およびポリサクシンイミド誘導体〔
I 〕のメルカプト基を利用して結合する方法がメルカ
プト基を有する生理活性蛋白、またはアミノ基に架橋基
を介してメルカプト基を導入した生理活性蛋白と、Z=
Z′であるポリサクシンイミド誘導体〔 I 〕とを反応
させる方法である特許請求の範囲第6項記載の蛋白質−
ポリサクシンイミド複合体の製法。 (8)生理活性蛋白およびポリサクシンイミド誘導体〔
I 〕のメルカプト基を利用して結合する方法がメルカ
プト基を有する生理活性蛋白のメルカプト基にZ′基を
導入して−SZ′基とするか、または生理活性蛋白のア
ミノ基に架橋基を介して−SZ′基を導入し、次いでこ
のようにして得られた−SZ′基を有するかまたは架橋
基を介して−SZ′基を導入された生理活性蛋白と、Z
=水素原子であるポリサクシンイミド誘導体〔 I 〕と
を反応させる方法である特許請求の範囲第6項記載の蛋
白質−ポリサクシンイミド複合体の製法。 (9)生理活性蛋白およびポリサクシンイミド誘導体〔
I 〕のメルカプト基を利用して結合する方法が、メル
カプト基を有する生理活性蛋白またはアミノ基に架橋基
を介してメルカプト基を導入した生理活性蛋白と、メル
カプト基を有する(Z=水素原子である)ポリサクシン
イミド誘導体とのいずれか一方を、それが有するメルカ
プト基に対して、過剰の架橋剤と反応せしめ、次いで他
方と反応させる方法である特許請求の範囲第6項記載の
蛋白質−ポリサクシンイミド複合体の製法。 (10)生理活性蛋白およびポリサクシンイミド誘導体
〔 I 〕のメルカプト基を利用して結合する方法が、ア
ミノ基に、メルカプト基と反応し得る官能基を架橋基を
介して導入した生理活性蛋白と、Z=水素原子であるポ
リサクシンイミド誘導体を反応させる方法である特許請
求の範囲第6項記載の蛋白質−ポリサクシンイミド複合
体の製法。
[Claims] (1) The following general formulas [1] to [6] ▲ There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ [1] ▲ There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ [2] ▲ Mathematical formulas, chemical formulas , tables, etc. ▼ [3] ▲ There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ [4] ▲ There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ [5] ▲ There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ [6] [Above In formulas [1] to [6], X, Y, W and Z
have the following meanings. X: Reactive residue of a cytotoxic substance having an amino group or imino group in the molecule Y: Water-soluble aliphatic primary amine residue W: Lower alkylene group Z: Hydrogen atom or a group represented by the general formula Z' (however, ,Z
When is a hydrogen atom, the -SH group represented by -SZ can form an -S-S- bond in equilibrium with other -SH groups within or between molecules; shall be expressed. ) Z′: a group capable of forming an active disulfide bond with an adjacent sulfur atom] Consisting of the structural units represented by [1], [2], [3], [4], and each structural unit in one molecule. The numbers [5] and [6] are n, m, l, r, p and q, respectively, and these numbers are 0 or natural numbers, and the relationship between them is n+m≧2 0.001≦(p+q)/ (n+m+l+r+p+q)
≦0.50, and the average molecular weight is 2,000 to 1,00
A protein-polysuccinimide complex comprising a polysuccinimide derivative [I] having a molecular weight of 0,000 and a physiologically active protein. (2) The binding between the polysuccinimide derivative [I] and the physiologically active protein is
The protein-polysuccinimide complex according to claim 1, which is a disulfide bond formed by using an SZ group and a mercapto group of a physiologically active protein having a mercapto group. (3) The binding between the polysuccinimide derivative [I] and the physiologically active protein is
2. The protein-polysuccinimide complex according to claim 1, which utilizes an SZ group and an amino group of a physiologically active protein, and is bonded through a crosslinking group between them. (4) The binding between the polysuccinimide derivative [I] and the physiologically active protein is
2. The protein-polysuccinimide complex according to claim 1, wherein the SZ group and the mercapto group of a physiologically active protein having a mercapto group are bonded via a crosslinking group therebetween. (5) The protein-polysuccinimide complex according to claim 1, wherein the physiologically active protein is fibrinogen, urokinase, or immunoglobulin. (6) The following general formulas [1] to [6] ▲ There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ [1] ▲ There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ [2] ▲ There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ [3] ▲ There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ [4] ▲ There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ [5] ▲ There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ [6] [Above formulas [1] ~ [ 6], X, Y, W and Z
have the following meanings. X: Reactive residue of a cytotoxic substance having an amino group or imino group in the molecule Y: Water-soluble aliphatic primary amine residue W: Lower alkylene group Z: Hydrogen atom or a group represented by the general formula Z' (however, ,Z
When is a hydrogen atom, the -SH group represented by -SZ can form an -S-S- bond in equilibrium with other -SH groups within or intermolecularly; shall be expressed. ) Z′: a group capable of forming an active disulfide bond with an adjacent sulfur atom] Consisting of the structural units represented by [1], [2], [3], [4], and each structural unit in one molecule. The numbers [5] and [6] are n, m, l, r, p and q, respectively, and these numbers are 0 or natural numbers, and the relationship between them is n+m≧2 0.001≦(p+q)/ (n+m+l+r+p+q)
≦0.50, and the average molecular weight is 2,000 to 1,00
In producing a protein-polysuccinimide complex in which a polysuccinimide derivative [I] having a molecular weight of 0,000 and a physiologically active protein is combined, a mercapto group of the physiologically active protein or a mercapto group newly introduced into the physiologically active protein is used. and a method for producing the protein-polysuccinimide complex, characterized in that the polysuccinimide derivative [I] is bound to a physiologically active protein using the mercapto group of the polysuccinimide derivative [I]. (7) Physiologically active proteins and polysuccinimide derivatives [
The method of bonding using the mercapto group of [I] is used to connect bioactive proteins with mercapto groups, or bioactive proteins in which a mercapto group is introduced into the amino group via a crosslinking group, and Z=
The protein according to claim 6, which is a method of reacting the polysuccinimide derivative [I] which is Z'.
Method for producing polysuccinimide complexes. (8) Physiologically active proteins and polysuccinimide derivatives [
The method of bonding using the mercapto group of [I] involves introducing a Z' group into the mercapto group of a physiologically active protein having a mercapto group to form a -SZ' group, or introducing a crosslinking group into the amino group of the physiologically active protein. -SZ' group is introduced through Z
7. The method for producing a protein-polysuccinimide complex according to claim 6, which is a method of reacting with a polysuccinimide derivative [I] in which = hydrogen atom. (9) Physiologically active proteins and polysuccinimide derivatives [
I] is a method of bonding using a mercapto group between a biologically active protein having a mercapto group or a biologically active protein in which a mercapto group is introduced into an amino group via a crosslinking group, and a biologically active protein having a mercapto group (Z = hydrogen atom). The protein-polysuccinimide derivative according to claim 6, which is a method of reacting one of the polysuccinimide derivatives with an excess of a crosslinking agent with respect to the mercapto group thereof, and then reacting with the other polysuccinimide derivative. Method for producing succinimide complex. (10) A method of bonding using the mercapto group of a physiologically active protein and a polysuccinimide derivative [I] produces a biologically active protein in which a functional group capable of reacting with the mercapto group is introduced into the amino group via a crosslinking group. 7. The method for producing a protein-polysuccinimide complex according to claim 6, which is a method of reacting polysuccinimide derivatives in which Z=hydrogen atom.
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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US7967032B2 (en) 2005-11-30 2011-06-28 Denso Corporation Entrance/exit piping structure for intercooler and intercooler

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