JPS5971682A - Cultivation of euglena - Google Patents
Cultivation of euglenaInfo
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- JPS5971682A JPS5971682A JP18336982A JP18336982A JPS5971682A JP S5971682 A JPS5971682 A JP S5971682A JP 18336982 A JP18336982 A JP 18336982A JP 18336982 A JP18336982 A JP 18336982A JP S5971682 A JPS5971682 A JP S5971682A
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- Japan
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- euglena
- fructose
- medium
- carbon source
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Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はユーグレナを培養する方法に関する・ユーグレ
ナは光合成を営む原生wJ物であって、その細胞膜がタ
ンパク性であるため高等動物VLよって消化されや丁ぐ
、また、細胞タンパク質は高い栄養価紮有することが本
発明者によって報告されている〔日本農芸化学会誌、第
51巻、第8号(昭和52年〕〕。この生物は。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a method for culturing Euglena. Euglena is a protozoan that engages in photosynthesis, and its cell membrane is proteinaceous, so it is difficult to be digested by higher animal VL. The present inventor has reported that proteins have high nutritional value [Journal of the Japanese Society of Agricultural Chemistry, Vol. 51, No. 8 (1978)].
また、多くの生理活性物質を含む可能性がちり。Dust may also contain many biologically active substances.
生物座業上の新しい素材として多様な利用を期待しりる
ものであ◇。We expect it to be used in a variety of ways as a new material for biological work.
ユーグレナを独立栄養的に培養することもできるが、細
胞収量や照明および二酸化炭素の費用の点から、工業的
な大振培養VLは適当でない。Although Euglena can be cultured autotrophically, industrial large-shake culture VL is not suitable in terms of cell yield and cost of lighting and carbon dioxide.
ユーグレナを従属栄養的に生育せしめるためにこれまで
多ぐの研究があり、炭素源としては。A lot of research has been done to grow Euglena heterotrophically, and it is used as a carbon source.
エタノール、=xe、yルコース、グルタミン酸などが
用いられてきたが、これらはいずれも高価である。した
がって、ユークレナを工業的に利用するためには安価な
炭素源を用いて収率よ〈大鑑培養できる方法の確立か必
要となる〇本発明は、フルクトースを含む糖資源1%に
廃穂密などの精糖工場から副生ずる安価な楯資源を有効
に利用丁0ことのできるユーグレナの培養法を提供する
ことを目的とする・
すなわち1本発明のユーグレナの培養法は。Ethanol, =xe,ylucose, glutamic acid, etc. have been used, but all of these are expensive. Therefore, in order to use Euklena industrially, it is necessary to establish a method that can achieve high yield and culture using an inexpensive carbon source. An object of the present invention is to provide a method for cultivating Euglena that can effectively utilize inexpensive shield resources produced as a by-product from sugar refineries.
糖類の中でフルクトースk itZもよく資化するユー
グレナを、フルクトース含有楯資源を炭素源として培養
することを特徴と丁’S。Ding'S is characterized by culturing Euglena, which assimilates fructose among sugars, using fructose-containing shield resources as a carbon source.
本発明者の研究によれば、ユーグレナは、インベルター
ゼを含め、多糖、少14 e細胞外で加水分解して取込
む酵素系を欠除しており2これら糖類2資化すQことが
できない。また、単糖類の中でも、グルコースに比べと
ぐにフルクトースを良く資化するユーグレナ株のあるこ
とを見出した。したがって、この株を分離、馴致すれば
フルクトースを炭素源として効果的にユーグレナを培養
することができ、この結果、フノトクトースを含む糖質
源を有効に利用してユーグレナの大量培養が可能となる
。According to the research of the present inventors, Euglena lacks an enzyme system that hydrolyzes and takes up polysaccharides, including invertase, outside the cells, and is unable to assimilate these saccharides. We also discovered that among monosaccharides, there are some Euglena strains that assimilate fructose better than glucose. Therefore, if this strain is isolated and adapted, Euglena can be effectively cultured using fructose as a carbon source, and as a result, Euglena can be cultivated in large quantities by effectively utilizing a carbohydrate source containing funotoctose.
本発明で用いるユーグレナの株は、フルクトースを主た
る炭素源とする培地でユーグレナ株會培養して細胞数を
計測し、一方、クルコースを主たる炭素源とする他は同
様にして上記と同じユーグレナ株を培養して細胞数を計
測し1両者を比較してフルクトース?主たる炭素源でよ
り生育するユーグレナ株を選択することにより得ること
かできる。勿論、この培養に先立って。The Euglena strain used in the present invention was obtained by culturing the Euglena strain in a medium containing fructose as the main carbon source and counting the number of cells. Cultivate, count the number of cells, compare the two, and find out whether it contains fructose? It can be obtained by selecting Euglena strains that grow better on the main carbon source. Of course, prior to this cultivation.
ユーグナレ葡フルクトースを主たる炭素源とする培地で
培養して馴化することもできる。さらIQ、選択したフ
ルクトース資化能にすぐれたユーグレナを、さらにフル
クトースを主体とする培地で培養音線り返すことにより
馴化して、フルクトース資化能?増太芒せることができ
る。It can also be acclimatized by culturing in a medium containing Eugnale grape fructose as the main carbon source. Furthermore, IQ, the selected Euglena with excellent fructose assimilation ability was further acclimatized by repeating culture in a medium mainly containing fructose, and the fructose assimilation ability was determined. It can be increased in size.
次にこの具体側を示す。Next, the concrete side will be shown.
本発明者の保存株および野外よりの採取味。Stocks preserved by the present inventor and tastes collected from the field.
合計46株を、フルクトースを主たる炭素源とする次の
培地■で5〜10回培養し2て馴致した・培地■
フルクトース 12り/ノグルタε
ンθ 4り/ノ了ルギニン酸塩酸
塩 o37/ノアスパラギン酸
0.397ノグリシン 0.
39/ノヒスチジン塩・−水化物 O,OSノ/i
リンゴ酸 6.597ノクエン
酸三カリ塩 0.5jJ/ノコハク酸ナト
リウム六水化物 0.197ノ硫酸アンモ
ニウム 0.25971厘炭酸アンモニウ
ム 0.259/ノリン酸−カリウム
1.25jE/ノ炭酸マグネシウム
0.6ノ/ノ炭酸カルシウム 0
.129/i亜硫酸丁ンモニウムO六水化物501j+
9/i硫酸マンガン 18η/i硫酸
亜鉛・上水化物 251nFI/Itモリブ
デン厳アンモニワム・四水化物 41n9/ノ硫
酸銅 1.2 nf!/ノパ
ナジウム酸アンモニウム 0.5 m9/ Jl硫
酸コバル1會七水化物 0.5m9/iホウ酸
0.61ng/ノ硫酸ニツク
ル・大水化物 I)、 5 mfl /ノビタミ
ンB、 @塩酸塩 1myiiヒタS 7
B12 0.005m9/ノついで
、この株を培地工と、フルクトースの代t)にグリコ−
スケ用いた他は培地工と+it−の培地I′とで、それ
ぞれ、初発pH3,3,培養温度27℃で暗所で振盪培
養し2定常期に達せしめたのち細胞数を計測した。A total of 46 strains were cultured 5 to 10 times in the following medium ■ containing fructose as the main carbon source and acclimatized.Medium ■Fructose 12ri/Nogluta ε
O37/Noaspartic acid
0.397 Noglycine 0.
39/Nohistidine salt - hydrate O, OS/i
Malic acid 6.597 tripotassium citric acid 0.5jJ/sodium nosuccinate hexahydrate 0.197 ammonium sulfate 0.25971 ammonium carbonate 0.259/potassium nolinic acid
1.25jE/magnesium carbonate
0.6/no calcium carbonate 0
.. 129/i Chinmonium sulfite O hexahydrate 501j+
9/i Manganese sulfate 18η/i Zinc sulfate/superhydrate 251nFI/It Molybdenum ammonium/tetrahydrate 41n9/Copper sulfate 1.2 nf! / ammonium nopanadate 0.5 m9 / Jl cobal sulfate heptahydrate 0.5 m9 / i boric acid
0.61ng/nickel sulfate/large hydrate I), 5 mfl/novitamin B, @hydrochloride 1myiii Hita S 7
B12 0.005 m9/no This strain was then treated with a culture medium and glycosylated with fructose (t).
The cells were cultured with shaking in the dark at an initial pH of 3 and 3 and a culture temperature of 27° C., respectively, and the number of cells was counted after reaching the second stationary phase using the same medium and the +it- medium I'.
試験した46株のうち、グルコースよりもフルクトース
をよく資化する株は次の6株であった口
第 1 表
FK−21108
ZK−0811(I
ZK−14]2(+
AM702 106So−3
3108
HB−10105
ZK−14株はとぐニ、グルコースよりもフルクトース
に対して資化能奮示しく良く生育し)。Among the 46 strains tested, the following 6 strains assimilated fructose better than glucose.
The 3108 HB-10105 ZK-14 strain has a stronger ability to assimilate fructose than glucose and grows better).
この株をフルクト−スケ単−炭素蒜とする培地■で20
ケ月に亘って継代培養したどころ、同条件でグルコース
を単一炭素源とした培地での生育度(細胞数)に比べ、
1.24培の生頁朋を示した。This strain was grown in a medium containing fructoskeletal carbon ginseng for 20 hours.
After being subcultured for several months, the growth rate (cell number) was compared to the growth rate (cell number) in a medium with glucose as the sole carbon source under the same conditions.
The raw page size of 1.24 medium was shown.
培地■
フルクトース 12り/iミリン
了ンモニウム 59/ノ硫赦マグネシウ
ム・上水化物 0.5グ/ノ亜硫酸ア
ンモニウム・大水化物 50m97ノ硫
酸マンカン 18■/It硫酸亜鉛
・上水化物 2511Ig/ノモリブデン
酢アンモニウム・四水化物 4m97ノ硫酸
銅 1.2MFl/iバナ
ジウム酸アンモニウム 0.5π9/Jl
硫蔽コバルト・上水化物 0.5 mfl/ノ
ホウ酸 0.6mkl/ノ
硫酸ニッケルの大水化物 0.5m9/ノビタ
ミンB1番塩酸塩 1M9/iビタi
y B、2 0.005’R9/12
ZK−14株はユーグレナ・グラシリス(Eu、5ri
ena 、Fracl)isJ 2株の近縁株で形態
的には通常の2株と顕微鏡下で差異は認められない。Medium ■ Fructose 12 / i Milinmonium 59 / Magnesium sulfate, superhydride 0.5 g / Ammonium sulfite, large hydrate 50m97 Mancan sulfate 18 ■ / It Zinc sulfate, superhydride 2511 Ig / Nomolybdenum Ammonium acetate tetrahydrate 4m97 Copper sulfate 1.2MFl/i Ammonium vanadate 0.5π9/Jl
Cobalt sulfate superhydride 0.5 mfl/noboric acid 0.6 mkl/nickel nosulfate macrohydrate 0.5 m9/novitamin B1 hydrochloride 1M9/i vita i
y B, 2 0.005'R9/12
ZK-14 strain is Euglena gracilis (Eu, 5ri
It is a closely related strain of the two strains (ena, Fracl)isJ, and no difference in morphology from the two normal strains is observed under a microscope.
本発明では、グルコースを炭素源とした場合よりもフル
クトースを炭素源とした場合に良く育つユーグレナ、言
い換えれば5グルコースよりもフルクトースに対して資
化能を有する株が用いられる。そして、ZK−14株以
外の亮1表に示した株、あるいは第1表に示さなかった
株の多くも長期間に亘。馴致によりフルクトースに対す
る親和性が増大し、その資化能を増大させることができ
Q(Iしたかつて、これらの株も必要に応じて本発明に
用いることができる。′また、ZK−14株などのユー
グレナはストレプトマイシン処理。In the present invention, a Euglena strain that grows better when fructose is used as a carbon source than when glucose is used as a carbon source, in other words, a strain that has the ability to assimilate fructose rather than 5-glucose is used. In addition, many of the strains shown in Table 1 other than the ZK-14 strain, or those not shown in Table 1, have also been used for a long period of time. Acclimation increases the affinity for fructose and increases its assimilation ability, and these strains can also be used in the present invention if necessary. Euglena is treated with streptomycin.
紫外線照射、高熱処理などの公知の方法によって葉緑体
欠損株r与えるが、これらの株もZK−14株と同様に
、フルクトースを主たる炭素源とすQ培地で能率よく大
板培養によってユーグレナ虻与える。Chloroplast-deficient strains r are given by known methods such as ultraviolet irradiation and high heat treatment, but like the ZK-14 strain, these strains can also be efficiently cultured on large plates in Q medium with fructose as the main carbon source. give.
培地としてはフルクトースを主たる炭素源として含むも
のが用いられ、さらに、窒素源、無機成分を含み、ビタ
ミンB8.ビタミンB+2に含むことが好ましく、この
代表例として培地■が挙げられる。The medium used contains fructose as the main carbon source, and also contains a nitrogen source, inorganic components, and vitamin B8. It is preferably included in vitamin B+2, and a representative example of this is medium ①.
培地■(水として水道水を便用フ
フルクトース 12y/ノリン酸ア
ンモニウム 5y/〕硫酸マグネシウム・
上水化物 0.59/i炭酸カルシウム
0.1.り/ノ硫酸第−鉄・上水−化′@1m
9/I。Medium ■ (Use tap water as water; fufructose 12y/ammonium nophosphate 5y/) Magnesium sulfate.
Hydrate 0.59/i calcium carbonate
0.1. Ferrous sulfate/water treatment'@1m
9/I.
ビタミンBl−@酸塩 2.5T
JIg/iビタミンBI2 5μ
y/ノ本発明では他の糖も含むフルクトース含有糊資源
も用いることができるが、ユーグレナは。Vitamin Bl-@acid acid 2.5T
JIg/i vitamin BI2 5μ
Although fructose-containing glue resources containing other sugars can also be used in the present invention, Euglena.
インベルターゼなどのカルボヒドラーゼヲ含有しないの
で、ショ糖などの三糖類および他の少糖類、多糖類はそ
のままでは利用できない。そこで、予め鹸または適当な
酵素を用いてこレラの配糖体結合を切断し、遊離フルク
トース斌ヲ増加せしめることが望ましい。廃糖蜜などの
シヨ糖含有糊資源では、たとえば加熱滅菌に際して培地
1pH1,0〜3.5程度の酸性にし、滅菌後に培養に
適したpH値に再調節することにより、簡便にほぼ目的
を達成しうる。さらに丁寧に加水分解を行なうには希酸
を用い、30〜80℃の温度″T:30分〜12分間1
2時間すればよい。また、それぞれの少糖および多糖に
特異性ケもつ酵素を用い、それぞれの酵素作用に適した
反応条件を与え2緩和に処理することもできQhたとえ
ば、シヨ糖含有糊資源については、酵母よV得られたイ
ンベルターゼを用い。Since it does not contain carbohydrases such as invertase, trisaccharides such as sucrose and other oligosaccharides and polysaccharides cannot be used as they are. Therefore, it is desirable to increase the amount of free fructose by cleaving the glycoside bonds of Cholera in advance using soap or a suitable enzyme. With sucrose-containing glue resources such as blackstrap molasses, for example, during heat sterilization, the medium 1 pH is made acidic to about 1.0 to 3.5, and after sterilization, the pH value is readjusted to a value suitable for culture, thereby easily achieving most of the objectives. sell. For more careful hydrolysis, use dilute acid at a temperature of 30 to 80°C for 30 to 12 minutes.
It only takes 2 hours. In addition, by using enzymes with specificity for each oligosaccharide and polysaccharide, it is possible to provide reaction conditions suitable for the action of each enzyme and perform a mild treatment. Using the obtained invertase.
酢酸緩@液中、pH5,4,温度30℃で、あるいはN
eurospora crassa 、J: ’f)
のインベルターゼを用い、酢酸緩衝液中、pH7,5,
温度38℃で2遊離フルクトース量が最大ILL fr
’rwまで酵素反応を行なえばよい。また、イヌリン
のようなフルクタンを糖質源として用いるときは、イヌ
リナーゼによればよく、たとえば、酢酸緩衝液中、pH
5,0,温度25゛″Cで処理する。In acetic acid solution at pH 5.4 and temperature 30°C, or in N
eurospora crassa, J: 'f)
invertase in acetate buffer at pH 7.5,
At a temperature of 38℃, the amount of free fructose reaches its maximum ILL fr
It is sufficient to carry out the enzymatic reaction until 'rw. Furthermore, when fructans such as inulin are used as a carbohydrate source, inulinase may be used, for example, in an acetate buffer, pH
5.0, treated at a temperature of 25''C.
糖類は主たる炭素源として用いられQものであり、遊離
フルクトースおよび共存す0クルコースの義嵐かユーグ
レナの生育に最適にfXQように培地中VL@解または
鴇釈することが望筐しぐ、この濃度が1.0〜3.Ow
t係になるように希釈丁0ことが好ましい、希釈は微泣
金編の補給も考慮してX適7Kまたは井戸Xヶ用いるこ
とが適当である。Sugars are used as the main carbon source, and it is expected that free fructose and coexisting zero glucose will be dissolved or dissolved in the medium to make it optimal for the growth of Euglena. The concentration is 1.0 to 3. Ow
It is preferable to dilute it to 0 so that the amount is 100%.For dilution, it is appropriate to use 7K or wells of 7K, taking into account the replenishment of small amounts of gold.
炭素源以外の培地成分中、窒素源としてはアンモニウム
塩まkはグルタミン酸などのアミノ酸またはコーンステ
ープリカーを加える。アンモニウム塩としては、硫帳塩
2 リン醒塩、塩酸塩などいずれもが用いうるが、窒素
分消費後のアニオン残分が問題になる場合は、炭酸塩ケ
用いるか、またにアン七ニア水r用すると良好な結果が
得られ。。ユーグレナは硝酸、亜硝酸。Among the medium components other than the carbon source, ammonium salts, amino acids such as glutamic acid, or corn staple liquor are added as nitrogen sources. As ammonium salts, sulfur salts, 2-phosphate salts, hydrochlorides, etc. can all be used, but if the anion residue after nitrogen consumption is a problem, carbonate salts or ammonium salts can be used. Good results were obtained when using r. . Euglena is nitrate and nitrite.
尿素?利用できないので、これらを有効窒素源として加
えても効果がない、廃糖蜜などの糖質源を用いる場合で
この糖質源中に含まれる有効蟹素成分が不足するときは
、C/N比がユーグレナの生育条件の合致するように前
記の窒素源を加えQ。urea? If a carbohydrate source such as blackstrap molasses is used and the effective crab component contained in this carbohydrate source is insufficient, the C/N ratio will be Add the above nitrogen source to match the growth conditions of Euglena.
窒素分以外の無機質については、転化糖、フルクタン加
水分解物などを用いのときは前出のフルクトース培地に
準じて培地を調製すればよい。廃密糖の場合は、成分が
原料糖質、原産地。Regarding inorganic substances other than nitrogen, when using invert sugar, fructan hydrolyzate, etc., a medium may be prepared according to the above-mentioned fructose medium. In the case of waste secret sugar, the ingredients are the raw sugar and the country of origin.
製造方法などによって太きく異なるが、一般にはユーグ
レナ培養のために必要な無機成分は概ね含有されており
、特に添加の必要のない場合が多い。しかし、マグネシ
ウム塩、リン酸は不足する場合も多く、この場合は補充
する。また。Although it varies greatly depending on the manufacturing method, etc., it generally contains most of the inorganic components necessary for culturing Euglena, and there is often no need to add them. However, magnesium salt and phosphoric acid are often in short supply, and in this case they must be replenished. Also.
他の成分についても不足する場合は補給する。Replenish other ingredients if they are insufficient.
ビタξン類はいずれの場合も補給することが好ましぐ、
上記のようにビタミンB1とビタミンB1□を添加する
。In any case, it is preferable to supplement vitamins.
Add vitamin B1 and vitamin B1□ as above.
廃密糖をはじめ複雑な組成ヶもつ糖質源ではユーグレナ
の生育阻害物質葡含む可能性があるが1本発明者がこれ
まで試験した範囲ではこのような弊害はみられず、普通
の製品では安心して利用しうるものと思われ。。Carbohydrate sources with complex compositions, such as waste sugar, may contain substances that inhibit the growth of Euglena, but no such adverse effects have been observed in the range of tests conducted by the present inventors, and ordinary products do not. It seems safe to use. .
以上のように本発明では培地における炭素源として釉々
の糖資弁を利用しり/l)が1本発明のユーグレナはフ
ルクトースの資化能fL特に優れており、フルクトース
に富んだ糖質源、たとえば、フルクトース、廃糖蜜、廃
糖密加水分解物フルクタン加水分解物などが特に好まし
め。As described above, in the present invention, glaucoma sugars are used as a carbon source in the culture medium. The Euglena of the present invention has a particularly excellent ability to assimilate fructose, and is a carbohydrate source rich in fructose. For example, fructose, blackstrap molasses, waste molasses hydrolyzate, fructan hydrolyzate, and the like are particularly preferred.
培地はpH2,5〜8.0で行なうのが適当であり、典
型的にはp)13.3〜3.5である。培養温度は10
〜3(1’cρI適当であり、典型的には27℃程度、
fcとえば26〜28℃である。The pH of the culture medium is suitably 2.5 to 8.0, typically 13.3 to 3.5. The culture temperature is 10
~3 (1'cρI is suitable, typically around 27℃,
fc is, for example, 26 to 28°C.
培養中における照明は0〜io、oooルックスの範囲
で用い0のが一般的である。照明の程度によって得らf
LO細胞の生理活性物質の含量に差か生じQので、ユー
グレナ細胞の利用目的に応じて照明ケ適宜調節すること
か望せしい。The illumination during culturing is in the range of 0 to io, ooo lux, and is generally 0. Obtained by the degree of illumination f
Since there may be differences in the content of physiologically active substances in LO cells, it is desirable to adjust the illumination as appropriate depending on the intended use of Euglena cells.
ユーグレナをたん白泥として利用する場合は照明を特に
必要としないが、ビタミンC,Eなどのビタミン知、不
飽和脂質1葉緑素、カロチノイドなどの生理活性物質の
生aを望む場合は。When using Euglena as a protein slurry, lighting is not particularly required, but if you want to produce bioactive substances such as vitamins C and E, unsaturated lipids, chlorophyll, and carotenoids.
500〜20.000ルツクスの光、一般的tlLは、
白色光を照射す0必賃がある。また、生成物を特定のも
のに枚って培養するときは、青色光るるいは赤色光を照
射す0方が効果的なこともある。500-20,000 lux light, typical tll
There is a light that emits white light. Also, when culturing the product on a specific plate, it may be more effective to irradiate it with blue light or red light.
培養に際しては通気盆石なうのが適当であり。When culturing, it is appropriate to use an aerated basin stone.
たとえば、io)培地であれば毎分2〜5ノの空気を通
気する。培地のスケールが犬きぐなれば2これに準じて
迎気址ヲ増加さぜる。グリコール酸なとの特定の生成物
を得る目的VLは酸素ガスを通気することが望ましい。For example, io) aerate 2 to 5 air per minute for a culture medium. If the scale of the culture medium reaches a certain level, the capacity of the medium will increase accordingly. For certain products such as glycolic acid, it is desirable to vent oxygen gas through the VL.
攪拌は、攪拌器またはスターラーにより毎分30〜25
0回転程度施すのが好ましい。これは培養中のa胞が沈
降せぬ程度であり・激しい攪拌ir、細胞の破壊を招き
好ましくない。Stirring is performed at 30 to 25 minutes per minute using an agitator or stirrer.
It is preferable to perform the rotation approximately 0 times. This is not preferable to the extent that the a-cells in culture do not settle, and violent agitation causes destruction of the cells.
培養は通常2〜6日で細胞分裂が足常期に達し、細胞数
が最大になった時点で完了丁Q0ユーグレナ細胞は遠心
分離によって収集し、凍結乾燥、噴霧乾燥、熱風乾燥な
どの方法て゛乾燥して粉末状の製品を得Qことかできる
。製品は培地組成と照明の再熱によって8調が異なり、
帯黄色、黄褐色2緑褐色、淡褐色などt示す。細胞収ル
、は、弔地組成が適切′″′r:をノリ培養条件を選べ
ば、培養液j!当すlO〜25ノであり、対糖収量は0
.8〜2%[及ぶ。Culture usually takes 2 to 6 days when cell division reaches the foot stage and the number of cells reaches its maximum. Q0 Euglena cells are collected by centrifugation and then dried by freeze drying, spray drying, hot air drying, etc. It can be dried to obtain a powdered product. The product has 8 different tones depending on the medium composition and reheating of the lighting.
Indicates yellowish, yellowish brown, greenish brown, pale brown, etc. For cell harvesting, if the culture conditions are selected so that the composition of the burial site is appropriate, the culture solution will be 1O~25, and the sugar yield will be 0.
.. 8-2% [range.
得られるユーグレナーの化学成分は培地組成と培養条件
によって若干異な。か、暗黒下および照射下で、転化糖
を炭素源2 リン酸アンモニウムヲ鴛素源として培養し
た場合について、代表例として第2表に示す。The chemical composition of the obtained Euglenar varies slightly depending on the medium composition and culture conditions. Table 2 shows representative examples of cases in which invert sugar was used as the carbon source, ammonium phosphate, and chloride source in the dark and under irradiation.
第 2 表 (乾9勿中の係)
成 分 暗黒下 照明下
粗タンノぞり質 48.4 55.0粗脂肪
12.0 15.2
パラミロン 30.6 17.6灰
分 2.5 4.2その
他 6.5 8.9
実Mifill
廃糖蜜(フィリツビン産せ蔗糖密) 250
ノリン酸アンモニウム 50y硫酸マグ
ネシウム 2ノビタミンB、
0.25EビタばンB12
、 50μyX 道 X
10ノにするからなる培地を硫酸でp
H2,2に調節シ11通常通りにオートクレーブによる
滅菌2行なった。Table 2 (Dry 9, Medium) Ingredients Under darkness Under illumination Crude tannosilicate 48.4 55.0 Crude fat 12.0 15.2 Paramylon 30.6 17.6 Ash
Minutes 2.5 4.2 Others 6.5 8.9 Mifill Blackstrap molasses (filitubin-produced cane molasses) 250
Ammonium nophosphate 50y magnesium sulfate 2vitamin B,
0.25E Bitaban B12
, 50μyX way
A medium consisting of 10 ml of sulfuric acid
At H2.2, sterilization by autoclaving was carried out as usual.
冷却後、水酸化ナトIJウムを用いてpH13,5に調
節し、毎分100回転の攪拌器′?I:備えた15ノの
培養槽中28℃で、ZK−14株の培養を行なった。通
気は空気を用いて毎分2ノとし、とぐVC照明?与えす
7内視窓よりのわずかな明0さで、はは暗黒に近い状態
で3日間培養上行なったところpiは3.5に没化し、
細胞和はl尻l当たり] 07となった。After cooling, the pH was adjusted to 13.5 using sodium hydroxide and stirred at 100 revolutions per minute. I: ZK-14 strain was cultured at 28° C. in a 15-cell culture tank. Ventilation is done using air at a rate of 2 air per minute and VC lighting. When cultured for 3 days in near-dark conditions with only a little brightness from the endoscopic window, the pi dropped to 3.5.
The cell sum was 07 per liter.
培養を止め、 1,000 rprnで細胞を遠心分
離して集め、凍結乾燥した。細胞は卵黄色粉末として得
られ、乾燥物中の含量は次の通りであったO
粗タンパク質 50%
パラεロン 30%
粗脂肪 12%
灰 分 6 係ビタ
ミンCO,05係
ビタミンE 0.05係また。タンパク
質中の必須アミノ酸含量は次の通りであった(窒累16
グラム当りのグラム数 ) 。Culture was stopped, cells were collected by centrifugation at 1,000 rprn, and lyophilized. The cells were obtained as an egg yolk powder, and the contents in the dry matter were as follows: O Crude protein 50% Paraepsilon 30% Crude fat 12% Ash 6 parts Vitamin CO, 05 parts Vitamin E 0.05 parts Also. The essential amino acid content in the protein was as follows (nitrogen 16
grams per gram).
イソロイシン 3,3
0イシン 6.5
リジン 5.8
含量アミノ酸 4.4
芳香族アはノ級 7.2
トレオニン 4・4
トリプトファン 1.0
パ リ ン 5.
3実施例2
廃糖蜜(北海道産甜菜糖密) 2209
グルタミン酸 30f−炭酸アンモ
ニウム 201リン酸マグネシウム
105E炭師カルシウム
5yビタミンB10.1y
ビタミンB、□ 50μノ水 道
水 8iにするからなる培地
を一夜硫酸でpH2,0にし、40℃にて一夜放置し、
ついで1本酸化す) IJウム水溶液でpH3,3に調
節したのち2通常通り滅菌した0
ZK−14株のユーグレナを予めストレプトマイシン菌
で処理して得たZ K −14株の葉緑体欠損変異株を
、上記の培地ヶ用いて、10iのカラス製ジャーを使用
し、外表面で8000ルツクスになるように螢光灯に、
1:0照射を与え。Isoleucine 3,30 Isine 6.5 Lysine 5.8 Amino acid content 4.4 Aromatic 7.2 Threonine 4,4 Tryptophan 1.0 Palin 5.
3 Example 2 Blackstrap molasses (hokkaido sugar beet molasses) 2209
Glutamic acid 30f-Ammonium carbonate 201 Magnesium phosphate
105E Sumishi Calcium
5y Vitamin B10.1y Vitamin B, □ 50 μm tap water A medium consisting of 8i was adjusted to pH 2.0 with sulfuric acid overnight and left overnight at 40°C.
After adjusting the pH to 3.3 with an aqueous IJ solution and sterilizing it as usual, a chloroplast-deficient mutant of the ZK-14 strain obtained by pre-treating ZK-14 strain Euglena with streptomycin bacteria. The strains were exposed to a fluorescent light using the above medium in a 10i glass jar at 8000 lux on the outer surface.
Give 1:0 irradiation.
29℃で培養した。60時間の培養ののち細胞を集め、
熱風乾燥法により乾燥した。細胞収址は200yであっ
た。製品は淡黄褐緑色であり。Cultured at 29°C. After 60 hours of culture, cells were collected,
It was dried by hot air drying method. Cell convergence was 200y. The product is light yellow-brown green in color.
乾燥物中の含量は以下の通!l)であった。The content in the dry matter is as follows! l).
粗タンパク質 52%
パラミロン 28係
粗脂肪 11%
灰 分 5%ビタミ
ンCO,14係
ビタミンE O13%
タンパク質中の必須アミノ酸組成は実施例1と大差がな
かった。Crude protein 52% Paramylon 28 Crude fat 11% Ash 5% Vitamin CO, 14 Vitamin E O 13% The essential amino acid composition in the protein was not significantly different from Example 1.
実施例3
転化糖(乾物として全糖獅り 120ノリ
ン酸アンモニウム 50り硫酸マグネシウ
ム・7水化物 5り炭酸カルシウム
1y硫酸第1鉄・7X化物 0.0
19ビタεンBl@塩酸塩 0.025yビタ
ミンBI2 50μノ水 道 水
10ノにするからなる培地を用
いた。なお、この培地成分のうち、リン酸アンモニウム
は最初に培地中に20!含有せしめ、培養の進行に伴な
って細胞の消費に合わせて追加施与し2合計50yとし
たものである。この培地’1pH3,5に調整し。Example 3 Invert sugar (all sugar as dry matter) 120 Ammonium phosphate 50 Magnesium sulfate heptahydrate 5 Calcium carbonate
1y Ferrous sulfate 7X compound 0.0
A medium consisting of 19 vitamin Bl@hydrochloride, 0.025y vitamin BI2, 50 μm tap water and 10 μm was used. Among the components of this medium, ammonium phosphate is initially added to the medium at 20! As the culture progresses, additional doses are applied as the cells are consumed for a total of 50 y. This medium '1 was adjusted to pH 3.5.
とぐに予め加水分解操作を施すことなく加熱滅菌し、ユ
ーグレナZK−14株を接種し、薄明中、28℃で3日
間培養した。乾燥細胞収量は160yであった。製品は
黄已粉末であった。Immediately, the cells were heat sterilized without prior hydrolysis, inoculated with Euglena ZK-14 strain, and cultured at 28° C. for 3 days in twilight. Dry cell yield was 160y. The product was Huangyan powder.
粗タンパク質 53%
パラミロン 26係
粗 脂 肪 14%灰
分 2qbビタミンCO,07
係
ビタばンE O,13%この製品?唯一
のタンパク質素とする次のような組成の飼料を作り、3
透口のSD系雄白ネメミ葡用い飼育試験葡行なった・
乾燥ユーグレナ細胞 67%
ビタミン混合物 1%
塩類混合物 4係
粉末繊維素 3%
コリン埴酸塩 0.3係太豆油
5%
コーンスターチ 19.7係また。比較例と
して乾燥ユーグレナ細胞の代りにカゼインを用いて同様
に飼有試験を行なった0
飼育試験は4週間行なったが、ユーグレナ全タンパク源
とした場合と、カゼインケタンパク源とした場合では生
育に差異は認められず、また内臓の検査でも差異はなか
った。Crude protein 53% Paramylon 26 Crude fat 14% ash
min 2qb vitamin CO,07
Participant Vitaban E O, 13% Is this product? Make a feed with the following composition that uses protein as the only source, and feed 3
Breeding test was carried out using open-mouthed SD male white Nememi grapes. Dried Euglena cells 67% Vitamin mixture 1% Salt mixture 4th grade powdered cellulose 3% Choline paulate 0.3 thick soybean oil
5% Cornstarch Section 19.7 Again. As a comparative example, a similar feeding test was conducted using casein instead of dried Euglena cells.The feeding test was conducted for 4 weeks, and the growth was different when using Euglena as a whole protein source and when using Casein as a protein source. No difference was observed, nor was there any difference in examination of internal organs.
Claims (1)
グレナt、フルクトース含有糖資源を炭素源として培養
することを特徴とするユーグレナの培養法。A method for culturing Euglena, which is characterized by culturing Euglena t, which assimilates fructose best among sugars, and a fructose-containing sugar resource as a carbon source.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP18336982A JPS5971682A (en) | 1982-10-18 | 1982-10-18 | Cultivation of euglena |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP18336982A JPS5971682A (en) | 1982-10-18 | 1982-10-18 | Cultivation of euglena |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS5971682A true JPS5971682A (en) | 1984-04-23 |
Family
ID=16134557
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP18336982A Pending JPS5971682A (en) | 1982-10-18 | 1982-10-18 | Cultivation of euglena |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS5971682A (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6140785A (en) * | 1984-07-31 | 1986-02-27 | Osaka Gas Co Ltd | Method for cultivating cell of genus euglena |
JPH0223862A (en) * | 1988-07-12 | 1990-01-26 | Hirotomo Ochi | Euglena cell containing large amount of small quantity nutrient and production thereof |
-
1982
- 1982-10-18 JP JP18336982A patent/JPS5971682A/en active Pending
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6140785A (en) * | 1984-07-31 | 1986-02-27 | Osaka Gas Co Ltd | Method for cultivating cell of genus euglena |
JPH0223862A (en) * | 1988-07-12 | 1990-01-26 | Hirotomo Ochi | Euglena cell containing large amount of small quantity nutrient and production thereof |
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