JPS58170476A - Preparation of amylase g 4, 5 - Google Patents

Preparation of amylase g 4, 5

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JPS58170476A
JPS58170476A JP3753482A JP3753482A JPS58170476A JP S58170476 A JPS58170476 A JP S58170476A JP 3753482 A JP3753482 A JP 3753482A JP 3753482 A JP3753482 A JP 3753482A JP S58170476 A JPS58170476 A JP S58170476A
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JP
Japan
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amylase
starch
enzyme
culture
maltopentaose
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JP3753482A
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JPS6036278B2 (en
Inventor
Yoshiyuki Takasaki
高崎 義幸
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National Institute of Advanced Industrial Science and Technology AIST
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Agency of Industrial Science and Technology
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Publication date
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Abstract

PURPOSE:To prepare a conjugated enzyme consisting of amylase G 4, 5 or amylase G 4, 5 and pullulanase, by cultivating a bacterium belonging to the genus Bacillus. CONSTITUTION:A bacterium such as Bacillus circulans G 4, 5 (FERM-P 6237) belonging to the genus Bacillus, capable of producing amylase G 4, 5 is cultivated with aeration in 6-9pH at 25-55 deg.C, and amylase G 4, 5 is collected from the culture solution.

Description

【発明の詳細な説明】 本発明はでん粉をマル>i>フォースと!ルトベンタオ
ースを主成分とする糖化物に分解する了ミラー(Q輌I
Ii法に−するものである。
[Detailed Description of the Invention] The present invention combines starch with Mar>i>Force! Ryomirror (Q vehicle I) that decomposes lutobentaose into glycated products as its main component
This method corresponds to the Ii method.

従来・アミラーゼとしては、−一7ミラーイ、できた。As conventional amylase, -17 Mirai was made.

そして、最近は、より分子量の大龜−1例えは、マルト
トリオース(GJ)、マルトトリオース(Gel)、!
ルトペンタオース(Gj)、マルトトリオース(Gぷ)
などのオリゴ糖製造技雨の開発が要望されている。これ
らの糖は食品の甘味≠+、増産剤、賦形剤、包接剤とし
て食品、蘭品及び櫓々の工業品に広く利用できると考え
られているが、末だ一法は碌立されていなψ。
Recently, more molecular weight products such as maltotriose (GJ) and maltotriose (Gel) have been introduced.
Lutopentaose (Gj), maltotriose (Gp)
There is a demand for the development of oligosaccharide manufacturing techniques such as It is believed that these sugars can be widely used in foods, industrial products, and other industrial products as sweeteners, production enhancers, excipients, and clathrating agents, but no method has yet been established. Tina ψ.

本発明名は、これらオリゴ糖生産能の強い微生物を求め
て、広く土壌中より微生物の検索を行ってきた結朱、バ
シルスーの微生物が、でん粉を!ルトテトフォース(G
参)とマルトペンタオース(Gりを主成分とする軸化物
に分解するアセラー(を菌体外に着量に生産することを
細めた。
The name of this invention is based on the microorganisms of Yushu and Bacillus, which have been widely searched for in soil in search of microorganisms with strong oligosaccharide-producing ability. Lutotetoforce (G
We have focused on producing large amounts of acera (which decomposes into axons whose main components are G) and maltopentaose (G) outside the bacterial cells.

!ルシテトラオースを生成する酵素としては、Ps@m
domenms 5ttli@ri  O生産するアミ
ラー4が、アミリースやアミuペタチンの非還元性末端
からマルトテトラオースを生成することが知られて−る
(Arekive @f B1**に@m1atry 
s+adB1*phys1cm第i+zia、101〜
//41屓(197/ ))が、この酵素はマルトペン
タオースを生成しない。
! The enzyme that produces lucitetraose is Ps@m
It is known that amyl 4 produced by domenms 5ttli@ri O generates maltotetraose from the non-reducing end of amylyse and amiupetatin (Arekive @f B1** and @m1try
s+adB1*phys1cm i+zia, 101~
//41屓(197/)) However, this enzyme does not produce maltopentaose.

一方、マルトペンタオースを生成するアミラーゼとして
は、Bacillus l亀*に@mlf@rmls 
O生産する耐熱性−一アミラー(がでん粉からGjt主
威分とする糖化物を生産することが報告されて−るがζ
O#素のマル)テ)ラオースO生成能はマルトペンタオ
ースの生成能に比べ着しく少なく局程度である。また、
この#素はG/−G/Jの各成分も同職に生成するr#
素である(Ar@h1マ・・fBiochemistr
y and Blophys1gs第1よ5巻、λ9O
−291(1971)I。この他、8a@1−11ua
 mubtlli@の嗜−アミラーゼもでん粉からマル
トテトラオースやマルトペンタオースを含んだ梶々の糖
混合物を生成するが、マルトテトラオースやマルトペン
タオースを主成分をなすものではないために、これら軸
の一造には適して−な−。
On the other hand, amylase that produces maltopentaose is found in Bacillus l.
It has been reported that O produces heat-resistant mono-amylase (ζ
The ability of the O# element to generate mal)te)laose O is much smaller than that of maltopentaose, and is on the order of a small amount. Also,
This # element also generates each component of G/-G/J in the same position r#
It is elementary (Ar@h1ma... fBiochemistr
y and Blophys1gs Volumes 1 to 5, λ9O
-291 (1971) I. In addition, 8a @ 1-11ua
mubtlli@'s taste - Amylase also produces a mixture of sugars containing maltotetraose and maltopentaose from starch, but since maltotetraose and maltopentaose are not the main components, these axes are Not suitable for Ichizo.

しかるに、本発明のアミラー(により生産されるでん粉
分解物の糖組成は、使用するでん粉のDEや糖化時の反
応条件によっても員なる(でん粉濃度、反応時のpH%
#葉量によっても少し装動し、また、マルトペンタオー
スは反応時間が長くなると、次第にマルトースと!ルト
トリオースに分解する)が、通常、マル)テシラオース
が1jNJjlそしてマルトペンタオースが/jN70
憾を占めており、これら軸の会計はJO−40%に追す
る。
However, the sugar composition of the starch decomposition product produced by the amylase of the present invention also depends on the DE of the starch used and the reaction conditions during saccharification (starch concentration, pH% during reaction,
# It is slightly activated depending on the amount of leaves, and as the reaction time becomes longer, maltopentaose gradually becomes maltose! decomposes into lutotriose), but usually mal)tesilaose is 1jNJjl and maltopentaose is /jN70
Accounting for these axes will be added to JO-40%.

すなわち、本発明の生産するアミラーゼはアミロース、
ア噸ロペクチン、でん粉などから!ルシテトラオースと
マルトペンタオースの単位で分険し、マルトテトラオー
スとマルトペンタオースを主成分とする糖化物を生成、
するアミラー(てあり、このような特徴のある鯉菖は−
ま−で知られておらず、全く新規な酵素である。本発明
者はこの醇嵩をアミラーゼGダ、lと命名した。以下に
本酵素の酵素的性漬を記載する・ 本酔嵩り#素的性質は下記に示す−りである。
That is, the amylase produced by the present invention is amylose,
From apropectin, starch, and more! It is divided into units of lucitetraose and maltopentaose to produce a glycated product whose main components are maltotetraose and maltopentaose.
Carp irises with such characteristics are
It is a completely new enzyme that has not been previously known. The inventor named this bulk amylase Gda.1. The enzymatic fermentation of this enzyme is described below. The basic properties of this enzyme are as shown below.

(11作川用でん粉、アミロース、アt−ペタチン、デ
キスFリン亀どのダルカンを!ルシデシラオースとマル
トペンタオースの単位で分解し、これら砧を主成分とす
る糖化物を生成する。
(11) Starch for Sakugawa, amylose, at-petatine, dexF-phosphoric acid, and other dalkanes are decomposed into units of lucidesilaose and maltopentaose to produce saccharified products containing these minuta as the main components.

(2]作用温gt範囲及び最適作用温度;約70℃まで
作用し、I11融作用温度は!0.!!!”C(1%で
ん粉濃度、IIk−作用pHで30分間反応、第1図(
−))。
(2) Action temperature gt range and optimum action temperature; works up to about 70°C, I11 melting temperature is !0.!!!”C (1% starch concentration, reaction at IIk-action pH for 30 minutes, Fig. 1 (
−)).

(31最jlk p HIl、囲及び最適作用p)IS
p)i4A3〜//の叔ノ囲に作用し、最−作用pHは
6j〜7j((弔/図(b))。
(31 maximum jlk p HIl, enclosure and optimal action p) IS
p) It acts on i4A3~//, and the most effective pH is 6j~7j ((Soul/Figure (b)).

(剣熱安定性IQOjMトリス緩西液(p )I 7.
0 )放Wi後、内存活性を測定した。その結果pH約
6〜約ioの範曲で安定であった(第7図(d))。
(Kenthermal stability IQOjM Tris mild solution (p) I 7.
0) Intrinsic activity was measured after release. As a result, it was stable in the pH range of about 6 to about io (Fig. 7(d)).

(6)安定化1カルシウムイオンの存・在により熱安定
性の増加が認められた。
(6) Stabilization 1 An increase in thermal stability was observed due to the presence/absence of calcium ions.

(7)lll’1m g 本酵素4! j X / 0
−” MOHgC15%ZIllSOaCu804 、
FmBO4t Cyclm 、ムgNOsなどにょ秒t
jS憾以上失活した。
(7) lll'1m g This enzyme 4! j X / 0
-”MOHgC15%ZIllSOaCu804,
FmBO4t Cyclm, MugNOs etc.
jS is more than disappointed.

(8)稍智方法及び分子h1本酵素は液体jIIIli
物0−液から、硫安分画、DEAIA−セファp−スヵ
ツムタ費マトダツフイー(WC1dコ〜Q4 Mでグラ
ジエン)溶出)、セファデックスGJo。
(8) The method and molecule h1 enzyme is liquid jIIIli
From the 0-liquid, ammonium sulfate fraction, DEAIA-Sephap-Skatsumta-Ko-Matodatsufi (gradient elution with WC1d-Q4M), Sephadex GJo.

カラムタロ!トゲラフイー七−に7アデイツタス010
0カテムりaマトダラフイーなどにより、クー!F的に
単一までm諷される。セ7アデッタスGコOOカラムク
臂マトダラフイーにより分子蓋が約sbh約11 万0
コク0アイソ!−分離されるが、迩鬼、分子蓋の小さψ
成分が主成分を占めてφる。そして、両者の酵素的性質
には大金な差は−められ1に≠。
Karamtalo! Togelafie 7-ni 7 Aditutus 010
By 0 katemuri a matodarahui etc., coo! It is often used up to a single word. The molecular lid is about sbh about 110,000 by Se7 Adettas G CoOO Karamuku Tomato Darahui
Rich 0 iso! −Separated, but small ψ of the molecular lid
component occupies the principal component and φ. And, there is a huge difference in the enzymatic properties of the two.

(9)力価−走法101Mリン酸緩衝液に溶解させたl
襲可溶性でん粉液(pH7,0)Qj−に適緻の酵素を
加え、水で全m/−とし、参〇℃で反応させる。この条
件でl#問にl■のグルコースに相当する趙元力を生成
する酵素量をl単位とした。
(9) Titer - Traction method 1 dissolved in 101M phosphate buffer
Add an appropriate amount of enzyme to a soluble starch solution (pH 7.0) Qj-, make the total m/- with water, and react at 0°C. Under these conditions, the amount of enzyme that would produce Zhao Yuanli, which corresponds to 1 of glucose per 1#, was defined as the unit of 1.

字的性懺は下記の纏りであり、杢#i株は徽工研−寄#
46237号として工業技肯院徽生物工業技鍮仙りtF
tIに寄吐されて−る。
The literal characteristics are as follows, and the heather #i strain is Huikoken-Yori #
As No. 46237, Industrial Technology Center Hui Biological Industry Technology Center tF
It is discharged by tI.

(幻杉応;桿−1大きさ、巾07〜0tμ×長さ2j〜
5μ、2〜31i!連なったものが多い。非連動性、ダ
ラム陰性。
(Gensugi O; Rod-1 size, width 07~0tμ x length 2j~
5μ, 2~31i! Many things are connected. Uncoupled, Durham negative.

(Z+ fid千H胞子自細胞はふくらみ、棒形〜楕円
形の胞子を形成する・ (slゼテチン募液化する。
(Z+ fid 1,000 H spores Self-cells swell and form rod-shaped to oval spores. (sl zetetin recruitment.

(4)肉汁寒天番生育良好、黄味がかった薄褐色(6)
ダルコース肉汁寒天1生冑不良、淡黄色(6)ダルコー
ス硝酸塩寒天蓚わずかに生育、半虐明())肉汁蟇わず
かにtI!、鋤、自涜、沈降する(8)食堝肉汁$/N
10憾食壌濃度ても生育、l〜j%で生育促進 (9)Rルタ募分解力強くな−が、III固、その後ペ
プシン化する、リドマス還元 (至)ボデ)l生育普通、色素の生成なし0υチリシン
寒天墨生育か′&り良好、淡黄色、チロシナーゼ陰性 (ロ)グルコース−アスパラギン寒天l殆んど生育しな
い (至)インドール暮生成しな− (2)アセチルメチルカルビノール1生成しないに)硫
化水嵩番−いが生成する (埒&sI!lI塩の僧元寡陽性 Cノウレアーゼ畜生成しない 94カタラーゼ;陽性 tillでん粉の加水分解番陽性 v4炭水化物の利用蕃グルコース、7ラクトース、iン
ノース、ガラクトース、D−キシロース、L−7ラビノ
ース、シュークロース、マルトース、し−ンルボース、
マンニトール、でん粉ヲセ」用、生成するが、ガスの発
生なし。ラクトース、ラフィノース、ソルビット、イヌ
リンから生酔は弱いか、殆んどなし ■メチレンブルー1k1元する 一りエン酸I利用しない 一生肯瀉度;鰻適生育漉度は約JO”C1最高生育温度
はjONj7℃ −死滅1度1100℃で10分間加熱しても死滅しない 一最遍生育pH寥7.5−4j 以上の菌学的性質につ−て、B@rg@y’s Mam
nualof D@t@rminatlv* Baet
@riology C1第7版及び第1版(ThIwi
lliams & Wllklms C@mpany/
qj7年及び/97参年)を参照し、本優生物はバシル
ス 賃−キュランス(Ba@1llus eireu−
1aam )に近−の微生物であると同定した。
(4) Good growth on meat juice agar, pale yellowish brown (6)
Dulcose gravy agar 1 Poor growth, pale yellow (6) Dulcose nitrate agar slightly growing, semi-violent ()) Gravy agar slightly tI! , plow, self-deprecation, sedimentation (8) food pot gravy $/N
10Grows even at low nutrient concentrations, promotes growth at 1-j% (9) R-ruta recruitment decomposition is strong, is solidified, then becomes pepsinized, lidomas reduction (toward body) l growth normal, pigment production None 0υTyrisin agar Growth is good, light yellow, tyrosinase negative (b) Glucose-asparagine agar almost no growth (total) No indole production (2) Acetyl methyl carbinol 1 no production ) sulfide water bulking - produced (埒 & sI!lI salt), low positive C nourease, no 94 catalase; positive till starch hydrolysis, positive V4 carbohydrate utilization, glucose, 7 lactose, inose, Galactose, D-xylose, L-7 rabinose, sucrose, maltose, Shinrubose,
Mannitol and starch are produced, but no gas is produced. Lactose, raffinose, sorbitol, and inulin cause weak or almost no raw intoxication ■Methylene blue 1k1 enoic acid I Lifetime stability without use; Suitable growth temperature for eel is approximately JO'C1 Maximum growth temperature is JONj7 ℃ - death 1 degree It does not die even if heated at 1100℃ for 10 minutes.The most uniform growth pH is 7.5-4j.For the above mycological properties, B@rg@y's Mam
nualof D@t@rminatlv* Baet
@riology C1 7th edition and 1st edition (ThIwi
lliams & Wllklms C@mpany/
qj7 and /97), this eubiotic is Bacillus eireu (Ba@1llus eireu).
It was identified as a microorganism closely related to 1aam).

本―株はプルラナーゼをN時に生産する能力がありこの
酵素がアミロペタチンの分岐結合である一−l≦−ダル
コシド結合を分解するため、でん粉やアミロペタチンな
ど分岐結合Oある基質に対し、アミラー’l G l 
t 1と共同して作用して!ルトテトラオースと!ルト
ペンタオースを収量よく生産するのに重要な役割をして
−る。
This strain has the ability to produce pullulanase at N time, and this enzyme breaks down the branched bond of amylopetatin, 1-l≦-darcoside bond. l
Act in conjunction with t1! With lutotetraose! It plays an important role in producing lutopentaose in good yield.

本−の生産するプルラナーゼの酵素的性質は下記に示す
通りである。
The enzymatic properties of the pullulanase produced by this method are as shown below.

(υ作用番プルランに存在する一−lz−グルコシド結
合を分触し、マルトトリオースを生成する。
(υ action number splits the 1-lz-glucoside bond present in pullulan to produce maltotriose.

また、でん粉、71mペクチン、グリコーゲン又はその
派生物の一−/、、4−グルコシド結合を分解する。
It also breaks down the 1-/4-glucosidic bonds of starch, 71m pectin, glycogen or its derivatives.

(2〕作用IIA度範囲及び最適作用温度;約70℃ま
で作用し、厳棋作用涛度はso Nss℃(1襲プルラ
ン、GOjM)リス緩衝液のもとて30分間反1心)。
(2) Action IIA degree range and optimum action temperature: It works up to about 70°C, and the maximum action is so Nss°C (1 stroke pullulan, GOjM) in Liss buffer for 30 minutes).

(3)作用pH幹聞及び最適作用pH+pH#Ij〜約
9の範囲に作用し、最適作用pHはγ付近にある(1%
プルラン、(103;Mトリス緩衝液の下でダO″Cで
反応)。
(3) Acts in the range of main and optimal action pH + pH #Ij to approximately 9, and the optimal action pH is around γ (1%
Pullulan, (103; reacted with DaO″C under M Tris buffer).

(4)熱安爺性募(10jM)リス緩衝*(pH70)
のもとで、各湿度で10分間加熱後、残存活性を1定し
た。その結果、10”C,10分間の加熱で約73%失
活し、!1”C110分間の加熱で約デフ襲失活した。
(4) Thermoplastic recruitment (10jM) Squirrel buffer* (pH 70)
After heating for 10 minutes at each humidity, the residual activity was determined as 1. As a result, heating at 10"C for 10 minutes resulted in approximately 73% inactivation, and heating at !1"C for 110 minutes resulted in approximately 73% inactivation.

(5)pH安定性1pH約4〜約9で安定((17M酢
酸緩6m又はリンlI綴倫液O下て、堅溢(コj°C)
で放置後、残存活性を測定)。
(5) pH stability 1 Stable at pH about 4 to about 9
Measure the residual activity after leaving it for a while).

(6)阻害剤1本酵素ハcs”、zl”、h 、+、H
/ +、k’s”などにより強く阻害される。
(6) One inhibitor enzyme cs", zl", h, +, H
/ +, k's'' etc.

(7)安定化寡カルシウムイオンは本酵素の熱安定性を
増加する。
(7) Stabilizing oligocalcium ions increase the thermostability of this enzyme.

(8)精製方法蟇本#素は培IF液から硫安分−1DE
AE−七ファ四−スカラムタロ!トダラフイ−(KQI
02〜Q!Mでダテジエント溶出する仁とにより、アセ
ラー40#jと分離で歯、その後、七7アデツタスG−
コOOカラムターマドグラフィーによりクロマト的に均
一まで精製できる。
(8) Purification method: The #element is ammonium sulfate-1DE from the culture IF solution.
AE-Seventh Fa-Four-Scaramtaro! Todarafui (KQI)
02~Q! Due to the kernels eluting with dateient in M, the teeth were separated from Acera 40#j, and then 77 Adetsutus G-
It can be purified to chromatographic homogeneity by co-OO column termadography.

(幻分子kk+セファデックスG−コOoゲ/INF扇
法による分子量は約7万であった。
(The molecular weight by the phantom molecule kk+Sephadex G-KoOoge/INF fan method was about 70,000.

01力価劇定法+Q/Mリン酸緩衝液に溶解させた1%
プルラン1lf(pH7,o)azgLtに適量の酵素
を加え、水で全量l−々し、ダO℃で反応させる。この
条件で1時間にl■のマルトトリオースに相当する還元
力を生成する#嵩量をl単位とした。
01 titer method + 1% dissolved in Q/M phosphate buffer
An appropriate amount of enzyme is added to Pullulan 1lf (pH 7, o) azgLt, the total volume is diluted with water, and the mixture is reacted at 0°C. Under these conditions, the # bulk amount that produces a reducing power equivalent to 1⁻ maltotriose in 1 hour was defined as the unit of ℓ.

不発明による酵素生麹のための培養は、通常、用いられ
る肉体培地または液体培地が使用され、液体培振のため
の培地の菫1g源としては、ペプFン、肉エキス、酵母
エキス、カゼイン、コーンステイープ リカーなど%ま
た炭素源としては。
For the cultivation of enzyme raw koji according to the invention, a commonly used body medium or a liquid medium is used, and sources for 1 g of the medium for liquid culture include PepFun, meat extract, yeast extract, casein. % and as a carbon source, such as corn staple liquor.

でん鉛、デキストリン、!ルトース、ダルコースシュー
タロースなどが使用され、そして、これに補足する栄養
源として、無機窒素源、リン伽塩、マグネシウム塩、金
属塩を含む培地が使用される。
Starch, dextrin,! Lutose, dulcose-shootalose, etc. are used, and a medium containing an inorganic nitrogen source, phosphorus salt, magnesium salt, and metal salt is used as a supplementary nutrient source.

@餐はpH4〜9、温度コ!〜rs”cで、通気培、養
により行われる。
@ Dinner should be at pH 4-9 and temperature! ~rs''c by aerated culture and cultivation.

アミラーゼG#ji!一体外に生産されるill嵩であ
るので、培養終了後、FA又は遠心分離して除動し、上
直液を回収する。そして、必譬に応じ、濃縮し、硫安、
硫酸ナトリウムなどによる塩析によるか、又は、ア七ト
ン、エタノール、メタノール1イソプロパツールなどO
有I11溶剤を加えて、酵紮を沈−物として収得、乾燥
、保存する。
Amylase G#ji! Since the bulk of the ill is produced externally, after the cultivation is completed, it is evacuated by FA or centrifugation, and the supernatant liquid is collected. Then, as required, concentrate, ammonium sulfate,
By salting out with sodium sulfate, etc., or by salting out with sodium sulfate, etc., or
A 111 solvent is added to obtain the fermented ligation as a precipitate, which is then dried and stored.

本#素によるでん粉の糖化は、趨常SN参〇≦の液化で
ん粉に添加しs pH4−9,自If参o −60″C
で行われる。
The saccharification of starch using this # element is carried out by adding it to liquefied starch at pH 4-9, if it is -60″C.
It will be held in

次に実施例により本発明の詳細な説明する。Next, the present invention will be explained in detail with reference to Examples.

実施例/ 200−容三角7?スコに、Ks HPO4Q J弧、
Mg5Oa l7)bo Q / %、=y−>  7
.fイー1 9接檀し、30℃で2日間mm培養した。
Example / 200-Yong triangle 7? To Sco, Ks HPO4Q J arc,
Mg5Oa l7)bo Q/%, =y->7
.. fE19 was inoculated and cultured at 30°C for 2 days.

培養後、神心分#機で除菌し、得られた上澄液について
生1743れたアミラーゼGダjを測定した結果、培地
−当りlQj単位であった。培養Pf&に硫安をl0%
飽和になるように添加して酵素全沈澱させ、これを遠心
分R11機で集め、転触保存した。
After culturing, the culture was sterilized using a Shinshinbun #machine, and the resulting supernatant was measured for live amylase Gd in units of 1Qj per medium. Add 10% ammonium sulfate to culture Pf&
The enzyme was added to saturation to precipitate the entire enzyme, which was collected in a centrifugal R11 machine and stored by transfer.

該M−巣剤20単位(プルラナーゼ76単位)をDE≠
3の液化でん粉#液(内形分lり)に加え塩化カルシウ
ムをj X / O−” M量添加し、全量lO−にし
、sooCで反応させた。得られた糖化物〇一部をペー
パータaW)グラフ法で展開後、各糖区分を切抜溶出し
、フェノール−硫酸法で定置した結果、グルコース1.
/%、!ルトースlj。
DE≠ 20 units of the M-nesting agent (76 units of pullulanase)
In addition to the liquefied starch liquid #3 (inner size), calcium chloride was added in an amount of J X / O-''M to make the total volume lO-, and the reaction was carried out at sooC. A portion of the obtained saccharified product was printed on paper After development using the graph method, each sugar segment was cut out, eluted, and fixed using the phenol-sulfuric acid method. As a result, glucose 1.
/%,! Lutose lj.

≦、!ルトトリオース/JJ≦、マルシテトラオース3
62≦、マルトヘキサオースコ07%、マルトヘキサオ
ース/1%、そo@1ausであったO 実施例コ 実施例1において、培地として、ポリペプトンS(大豆
−)り囁、K3HPO4Q 7%、Mg5On ・7)
b。
≦、! Lutotriose/JJ≦, Marsitetraose 3
62≦, maltohexaose 07%, maltohexaose/1%, so@1aus O Example In Example 1, the culture medium was polypeptone S (soybean), K3HPO4Q 7%, Mg5On.・7)
b.

Q/IG、可濱性でん粉1%、ik#にアン千ニウムQ
/%と塩化コバk ) 1 j X / 0−’ Mk
@’b114地を使用した。そvIh果、生麺されたア
建う−−klGIjは培j111−当りコダコ単位であ
った。又、同時に生産されたプルラナ−4は@m/−当
りaj早位であった。
Q/IG, 1% malleable starch, 1000 nium Q to ik#
/% and Coba chloride k) 1 j X / 0-' Mk
@'b114 ground was used. When the fruit was cooked raw, the amount of klGI was 100 ml per 111 ml of culture. In addition, Pullulana-4, which was produced at the same time, was aj earlier than @m/-.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of drawings]

第7図(a)、(b)、(c)、と(d)はそれぞれア
ミラーヤa41sによるでん粉分飾反応の最適ii度、
最適pH1熱安定性とpH安定性を示している。
FIG. 7(a), (b), (c), and (d) are the optimum degrees of starch fractionation reaction by Amylaya a41s, respectively;
Optimal pH 1 thermal stability and pH stability are shown.

Claims (2)

【特許請求の範囲】[Claims] (1)パシルスに属しアミラーゼG4、5を生産する微
生物を培養し、培養物から7肴ラー−11!G、参jを
採取することを特徴とするパシルス輿アミラーゼG4、
5の製造法。
(1) Cultivate a microorganism that produces amylase G4 and G5 belonging to Pasillus, and make 7 dishes from the culture. G. Pasyrus amylase G4, which is characterized by collecting ginseng.
5 manufacturing method.
(2)パルシスに属しアミラーゼG4、5を生産する微
生物を培養し、培養物か らア々ラーゼGダ、jとプルラナーゼからなる複合酵素
を採取することを特徴とするバシルス槁によるア之う−
ゼGダ、SとプルテナーJkl−b−らなる複合酵素の
II!fke
(2) A novel method based on Bacillus sp. that is characterized by culturing microorganisms that produce amylase G4 and G5 belonging to Parsis, and collecting a complex enzyme consisting of amylase G, j and pullulanase from the culture.
II of a complex enzyme consisting of ZeGda, S and Pultenar Jkl-b-! fke
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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JPS60227676A (en) * 1985-04-05 1985-11-12 Agency Of Ind Science & Technol Preparation of conjugated enzyme

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