JPH11511847A - Cancer detection and treatment - Google Patents

Cancer detection and treatment

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JPH11511847A
JPH11511847A JP8510734A JP51073496A JPH11511847A JP H11511847 A JPH11511847 A JP H11511847A JP 8510734 A JP8510734 A JP 8510734A JP 51073496 A JP51073496 A JP 51073496A JP H11511847 A JPH11511847 A JP H11511847A
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Abstract

(57)【要約】 患者の体内の癌を検出する方法である。その方法は、標識抗体又は標識AFPを患者の生体サンプルに導入するステップを含んでおり、標識抗体又は標識AFPが生体サンプル内でAFPレセプターの結合部位と反応するようにしたものである。次に、生体サンプル内で、標識抗体又は標識AFPと反応するAFPレセプターの結合部位を同定することによって癌が存在するかどうかを調べるステップがある。導入ステップの前に、患者の体から生体サンプルを得るステップを有することが望ましい。患者の体内にある癌細胞を処理する方法である。その方法は、AFPレセプター抗体を患者の癌細胞に導入するステップを含んでいる。次に、AFPレセプター抗体を癌細胞のAFPレセプターと反応させるステップがありて、癌細胞の成長を阻止したり、癌細胞を殺す。患者を監視する方法である。その方法は、患者の癌を処理するステップを含んでいる。次に、処理を施した後、患者のAFPレセプター部位のレベルを所定の間隔で検査するステップがある。患者を処理する方法である。その方法は、患者のAFPレセプターを検査するステップを含んでいる。検査の結果、患者の体内にAFPレセプターが存在することがわかると、次に、AFPレセプター抗体又はAFPを患者の体内に導入して、患者の癌細胞と反応させるステップがある。患者の体内の癌細胞を処理する方法である。その方法は、変性AFPを患者の体内の癌細胞に導入するステップを含んでいる。次に、変性AFPを癌細胞のAFPレセプターと反応させるステップがあり、癌細胞の成長を阻止したり、癌細胞を殺す。 (57) [Summary] This is a method for detecting cancer in the body of a patient. The method includes introducing a labeled antibody or labeled AFP into a biological sample of a patient, such that the labeled antibody or labeled AFP reacts with a binding site of an AFP receptor in the biological sample. Next, there is the step of determining whether cancer is present in the biological sample by identifying the binding site of the AFP receptor that reacts with the labeled antibody or labeled AFP. It is desirable to have a step of obtaining a biological sample from the patient's body before the introducing step. It is a method of treating cancer cells in the body of a patient. The method comprises the step of introducing an AFP receptor antibody into the cancer cells of the patient. Next, there is the step of reacting the AFP receptor antibody with the AFP receptor of the cancer cells to block the growth of the cancer cells or kill the cancer cells. It is a method of monitoring patients. The method includes the step of treating the patient's cancer. Next, after performing the processing, there is a step of examining the level of the AFP receptor site of the patient at predetermined intervals. How to treat a patient. The method includes examining the patient's AFP receptor. If the test shows that the AFP receptor is present in the patient's body, then there is the step of introducing an AFP receptor antibody or AFP into the patient's body and reacting with the patient's cancer cells. This is a method for treating cancer cells in the body of a patient. The method includes introducing the modified AFP into cancer cells in a patient's body. Next, there is the step of reacting the denatured AFP with the AFP receptor of the cancer cell, thereby inhibiting the growth of the cancer cell or killing the cancer cell.

Description

【発明の詳細な説明】 癌の検出及び処理発明の分野 本発明は、癌の検出及び/又は処理に関するものである。より具体的には、本 発明の原理はAFPレセプターの存在を利用するもので、患者の体内で癌を発見 し、又は癌を封じ込めたり排除したりするものである。発明の背景 20年前に、Abelev等が初めて癌胎児(oncofetal)の抗原であるアルファフェ トプロテイン(AFP)について報告した[Abelev,G.I.,Perova,S.D.,Khra mkova,N.I.,Postnikova,Z.A.and Irlin,I.S.,Transplantation 1,174(19 63)]。これは胎児期の主な循環蛋白質であるが、この蛋白質は出生後はほとん ど消失し、正常な大人が持当該つ蛋白質の血清濃度は50ng/ml未満である[Ruo slahti,E.and Seppals,M.,Int.J.Cancer 8,374(1971)]。しかし、肝臓 癌や奇形癌などの悪性腫瘍の病気において、血漿のレベルは1000倍も高くな ることがある[Ruoslahti,E.and Seppals,M.Adv.Cancer Res.29,275(197 9)]。この知見については、悪性腫瘍を発見し、癌患者を監視するための新規な 手段の到来を予想していた臨床医学者だけでなく、胎児期に於け るその蛋白質の生理機能を調べている研究者も注目した。 研究された最初のパラメーターの1つは、胎児内のAFP分布であった。免疫 ペルオキシダーゼ法を用いて、BennoとWilliamsは発育中のラットの脳に於ける AFPの分布を記載した[Benno,R.H.and Williams,T.H.,Brain Res.142, 1982(1978)]。その後まもなく、一連の論文の報告は、鳥、ヒトなどいくつかの 種において発育中の神経細胞内の血漿蛋白質に集中した。[Trojan,J. and Ur iel,J.,J.Oncodevelop.Biol.Med.1,107(1980);Uriel,J.Trojan,J., Dubouch,P.and Pieiro,A.,Path.Biol.30,79(1982);Moro,R.and Uriel ,J.,J.Oncodevelop.Biol.Med.2,391(1981);Dziegielewska,K.M.,Evan s,C.A.N.,Lorscheider,E.L.,Malinowska,D.H.,Mollgard,K.,Reynolds, M.L.and Saunders,N.R.,J.Physiol.318,239(1981);Mollgard,K.Jaco bsen,M.,Krag-Jacobsen,G.,Praetorius-Claussen,P.and Saunders,N.R. and Neurosci.Lett.14,and 85(1979)]。特定の組織又は器官の場合、AFP 及びSAの染色法(staining)における運動力学は、種が異なっても、そのパター ンはかなり一定している[Urierl,J.,Trojan,J.,Moro,R.and Pieiro,A. ,Ann.N.Y.Acad.Sci.417,321(1983)]。神経構造が全く未発達の段階では、 細胞内AFPも細胞内SAも検出されない。その後突然、そして種によっては ある決まった時期に、両蛋白質が同一細胞内で同時に観察される[Torand-Aller and,C.D.,Nature 286,733(1980)]。続いて、染色の強度が弱まり、まずAF Pに対する陽性細胞が少なくなり、次いでSAに対する陽性細胞が少なくなる。 発達した構造はどちらの蛋白質に対しても陰性である。IgGや鶏の胎芽内のオ ボアルブミン等のその他の血清成分は、脳脊髄液に存在していても胎児期の神経 細胞内では全く発見されない。[Fielitz,W.Esteves,A.and Moro,R.,Dev. Brain Res.13,111(1984)]。胚細胞によるAFPの取込み これらの初期観察からの疑問として、AFP及びSAは細胞外の源から取り込 まれたのか、それとも細胞内で合成されたのかという問題があった。神経細胞が 血漿蛋白質を合成できるかどうかは未だ明らかではないが[Ali,M.Raul,H.a nd Sahib,M.,Dev.Brain Res.1,618(1981);Ali,M.,Mujoo,K.and Sahib ,M.,Dev.Brain Res.6,47(1983);Schachuter,B.S.and Toran-Allerand, C.D.,Dev.Brain Res.5,95(1982);Pieiro,A.Calvo,M.,Iguaz,F.,Lamp reave,F.and Naval,J.Int.J.Biochem.14,817(1982)]、インビトロでも [Uriel,J.Faivre-Bauman,A.,Trojan,J.and Foiret,D.Neurosci.Lett .27,171(1981);Haj eri-Germond,M.Trojan,Uriel,J.and Hauw,J.J.Dev.Neurosci.6,111(1 984)]、インビボでも[Villacampa,M.J.,Lampreave,F.Calvo,M.Pieiro, A.and Uriel,J.Dev.Brain Res.12,77(1984);Moro,R.,Fielitz,W.,Gr unberg,J.and Uriel,J.,Int.J.Dev.Neurosci.2,143(1984)]、神経母 細胞はAFP及び血清アルブミンを細胞外の源から容易に取り入れられることが 示されている。インビボ実験は、相同蛋白質及び異種蛋白質を用いて行われた。 最初の実験では[Villacampa,M.J.,Lampreave,F.,Calvo,M.,Pieiro,A.a nd Uriel,J.Dev.Brain Res.12,77(1984)]、妊娠中のラットに注入すると 、125I−AFPは、胎児の消化器官、皮膚、舌などの器官、また、以前に先 天性細胞内AFP(native intracellular AFP)の存在が報告された器官だけでな く、胎児の脳の中にも局部的に存在することが示された[Trojan,J.and Uriel ,J.,Oncodev.Biol.Med.3,13(1982)]。第2の実験では[Moro,R.,Fieli tz,W.,Grunberg,J.and Uriel,J.,Int.J.Dev.Neurosci.2,143(1984) ]、生まれたばかりのラットの血清を鶏の胎芽の中脳腔に注入すると、ラットの AFPとSAは、それらが本来あった部分に対応する場所で検知されることが示 された。これはまた、ある種から得たAFPとSAは、他の種の細胞により取り 込まれ、進化を通じて保存された構造とメカニズ ムであることを示している。このことはまた、生物学の基本原則が関わっている ことを示唆している。 高濃度のラットのIgGを注入したにも拘わらず、この蛋白質に対する染色は 陰性を示した。これは、高分子量(150,000)の結果として受動的拡散が妨げられ たのではない。その理由は、通常の2倍のモル濃度のAFPを胎児の脳脊髄液中 に注入した時でさえ、オボアルブミン(MW=43,000)は検出されなかったからであ る[Fielitz,W.,Esteves,A.and Moro,R.,Dev.Brain Res.13,111(1984) ]。この選択性によって、ある特定のレセプターを媒介とする細胞内取込み作用 (endocytosis)のメカニズムの仮説が裏付けられた[Moro,R.and Uriel,J.,J .Oncodevelop.Biol.Med.2,391(1981);Moro,R.,Fielitz,W.,Grunberg ,J.and Uriel,J.,Int.J.Dev.Neurosci.2,143(1984)]。AFP摂取の細胞分化への依存性 しかしこの時点では、AFPとSAの取込みが細胞に依存した現象なのか、そ れとも、胎児期の終わりに脳血障壁が閉鎖されたり、循環AFPの濃度が低くな ることにより外部細胞の蛋白質の利用度が低くなる結果として、染色が消失した ものなのかは依然として明らかでなかった。まず鶏で[Moro,R.,Neurosci.Le tt.41,253(1983)]、次にヒトの胎児で[Jacobsen,M.Lassen,L.C.and Moll gard,K.,Tumor Biol.5,55(1984)]、脊髄 神経節の神経細胞は、AFPが血清中で最高ピークに達する前に、陰性−陽性− 陰性の完全な染色サイクルを行なうことが示された。更に、AFPが検出されな くなると、SAはしばらくの間存在し続ける。この結果から、これらの血清蛋白 質が神経節の神経細胞にまで達していることを示している。未成熟細胞におけるAFPレセプター 細胞がAFPを摂取することは、その発現(expression)が細胞分化の程度によ って調整される特定のレセプターの存在を示唆している[Uriel,J.,Trojan,J. ,Moro,R.and Pieiro,A.,Ann.N.Y.Acad.Sci.417,321(1983);Moro,R. ,Neurosci.Lett.41,253(1983)]。以前の報告によれば、[Uriel,J.,Bouill on,D.Russel,C.and Dupiers,M.,Proc.Nat.Acad.Sci.U.S.A.73,1452( 1976)]、未成熟ラットの子宮の細胞質ゾル内に、超遠心分離された4sと8sの 2種類のフラクションの中にAFPが含まれることが示されている。4sフラク ションはAFPに完全に一致しており、8sフラクションでは0.4MのKCI で処理した後にだけAFPを免疫学的に検出できた。この処理は8sフラクショ ンを4sフラクションへ転換した。当時はAFPレセプターという概念がまだな かったけれども、レセプター・AFPの複合体(complex)に相当する8sフラク ションが高濃度のKC1で分離されたものと予想されていた。このよ うに、AFP・レセプターの複合体がKC1で分離されることは、SmalleyとSar cioneによっても観察された[Smalley,J.R.and Sarcione,E.J.Bioch.Biohys .Res.Comm.94,1429(1980)]。彼らはまた、AFP分子は未成熟ラットの子宮 細胞により合成されるという事実を提供した。癌細胞におけるAFPレセプターの発現 癌細胞は胎児の細胞と数多くの生物学的及び抗原的に共通する多くの特徴を有 しているので[Uriel,J.,Adv.Cancer Res.29,127(1979)]、胎児期にAF Pを取り込んだ組織から得られた悪性腫瘍細胞は、対応するレセプターを再び発 現し、AFPを再び取り入れる可能性がある。この仮説を立証するものとして、 Sarcione等[Sarcione,E.J.,Zloty,M.,Delluomo,D.S.,Mizejewski,G.and Jacobson,H.,Cancer Res.43,3739(1983)]は、ヒトの乳癌から得られた8s 複合体の中にAFPを発見した。その乳癌は、未成熟ラットの細胞質ゾルを用い た実験と同様の方法で、KC1処理により分離されたものである。もっと最近に なって、これらの著者は、AFPがMCF−7のヒト乳癌の細胞株(cell line) により複合体として合成されること、そして、AFPを免疫学的に検出できるよ うにするためには、その複合体を分離する必要があることを示した[Sarcione,E .J.and Hart,D.,Int.J.Cancer 35,315(1985)]。一方この細胞株 [Uriel,J.,Failly-Crepin,C.,Villacampa,M.J.,Pieiro,A.,and Guesken s,M.,Tumor Biol.5,41(1984)]及びニッケルに誘発されたラットの横紋筋肉 腫[Uriel,J.,Poupon,M.F.and Geuskens,M.,Br.J.Cancer 48,263(1983) ]はAFPを取り入れることが、インビトロで示された。これらの間接的な結果 は、AFPの表面レセプター(surface receptor)がMCF−7の細胞株で検出さ れたことによって確認された[Villacampa,M.J.,Moro,R.Naval,J.,Failly- Cripin,Ch.,Lampreave,F.and Uriel,J.,Bioch.Biophys.Res.Commun.12 2,1322(1984)]。結合パラメーターは、2箇所で正の協働作用(positive cooper ation)を示すレセプターのモデルを示している。親和性の強い部位でのKdは、 1.5×10-9Mであり、正の協働作用が行われている。親和性の強い部位でのKdは 1.5×10-9Mであり、n-2,000/細胞を持つ。親和性の弱い部位では、320,000/細胞 が存在し、Kdは2.2×10-7Mである。後の研究によって、マウスのYACTリン パ腫細胞の表面上に類似のレセプター系の存在することが示された。その系は、 成長した正常なマウスのT細胞には存在しない[Naval,J.,Villacampa,M.J., Goguel,A.F.and Uriel,J.Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.82,3301(1985)] 。 これらの諸研究はインビトロ実験と平行して行われ、その実験では、自然発生 した乳癌を有するマウスに、放 射性ヨウ素標識AFPが注入された。放射能の組織分布は、腫瘍/正常組織(肝 臓)の比が3.6であった[Uriel,J.,Villacampa,M.J.,Moro,R.,Naval,J .and Failly-Crpin,CH.C.R.Acad.Sci.(Paris)297,589(1983);Uriel,J .Villacampa,M.J.,Moro,R.,Naval,J.and Failly-Crpin,C.,Cancer Res .44,5314(1984)]。これらの動物における腫瘍部について放射線写真を見ると 、悪性腫瘍細胞の核膜の周りに銀色の粒子が大量に蓄積されていたが、それらの 粒子は正常な細胞には蓄積されていなかった[Uriel,J.,Villacampa,M.J.,Mo ro,R.,Naval,J.and Failly-Crpin,C.,Cancer Res.44,5314(1984)]。131I−AFPを用いたシンチグラム法によるマウスの腫瘍の撮像 131I−AFPを用いたシンチグラム法によりマウスの乳癌を撮影し、3〜4m mほどの小さい乳癌のポジ像が得られた[Uriel,J.,Villacampa,M.J.Moro,R. ,Naval,J.and Failly-Crpin,C.Cancer Res.44,5314(1984);Moro,R.,H euguerot,C.,Vercelli-Retta,J.,Fielitz,W.,Lpez,J.J.and Roca,R., Nuclear Med.Comm.5,5(1984)]。実際には、そのような12の腫瘍のうち11 はコンピュータに接続した標準的な癌マカメラでも検出できた。マウスのもう1 つの腫瘍である神経芽細胞腫もまた、同様な方法でスキャンすることができ た[Hajeri-Germond,M.,Naval,J.,Trojan,J.and Uriel,J.,Br.J.Cance r 51,791(1985)]。 AFP取込みの発現、つまりAFPレセプターの存在を示す直接的証拠は、い くつかの異なるタイプの腫瘍において示されてきた。その腫瘍として、マウスの 横紋筋肉腫[Uriel,J.,Poupon,M.F.and Geuskens,M.,Br.J.Cancer 48,2 63(1983)]、マウスの神経芽細胞腫[Hajeri-jGermond,M.,Naval,J.,Trojan, J.and Uriel,J.,Br.J.Cancer 51,791(1985)]、マウス及びヒトの乳癌[Vil lacampa,M.J.,Moro,R.,Naval,J.,Failly-Crpin,Ch.,Lampreave,F.and Uriel,J.,Bioch.Biophys.Res.Commun.122,1322(1984);Naval,J.,Vil lacampa,M.J.,Goguel,A.F.and Uriel,J.Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A. 82,3301(1985);Uriel,J.Villacampa,M.J.,Moro,R.,Naval,J.and Fail ly-Crpin,CH.C.R.Acad.Sci.(Paris)297,589(1983);Uriel,J.,Villac ampa,M.J.,Moro,R.,Naval,J.and Failly-Crpin,C.,Cancer Res.44,53 14(1984);Moro,R.,Heuguerot,C.,Vercelli-Retta,J.,Fielitz,W.,Lpez ,J.J.and Roca,R.,Nuclear Med.Comm.5,5(1984);Biddle,W.and Sarci one,E.J.,Breast Cancer Res.Treat.10,281(1987)]、マウスのTリンパ腫[ Naval,J.,Villacampa,M.J,Goguel,A.F.and Uriel,J.Proc.Natl.Acad .Sci.U.S.A. 82,3301(1985)]、ヒトのT細胞リンパ種及びB細胞リンパ腫[Laborda,J.,Nav al,J.,Allouche,M.,Calvo,M.,Georgoulias,V.,Mishal,Z.and Uriel,J .Int J.Cancer 40,314(1987);Calvo,M.,Laborda,J.,Naval,J.,Georgo ulias,V.and Uriel,J.,ISOBMの第8回会議にて発表(Paris 1985);Torres, J.M.,Anel,A.,and Uriel,J.,J.Cell Physiol.150,458(1992);Torres ,J.M.,Gueskens,M.and Uriel,J.,Int.J.Cancer 47,112(1991)]、フィ トヘムアグルチニンにより活性化されるヒトのTリンパ球[Torres,J.M.,Labor da,J.,Naval,J.,Darracq,N.,Calvo,M.,Mishal,Z.and Uriel,J.Mol .Immunology 26,851(1989)]、ヒトの悪性腫瘍単核細胞株U937[Suzuki,Y. ,Zeng,C.Q.,Alpert,E.J.Clinic.Invent.90,1530(1992)]及びHT29ヒ トの結腸癌細胞群[Esteban,C.,Gueskens,M.and Uriel,J.,Int.J.Cancer 49,425(1991)]等を挙げることができる。 これらの発見により、AFPレセプターは、腫瘍の種類よりもむしろ悪性腫瘍 の状態と関係づけられ、胎児腫瘍の抗原として広く採用されている。AFPレセプターに対する単クローン抗体 標識AFP(FITC、放射性トレーサー)は、パラフィン組織片の腫瘍細胞 とは結合しない。その理由はおそらく、レセプターの結合部位が結合時に部分的 に性質 が変わるためであり、また、その部位でのレセプターに対する親和性が低いため であろう。このため、免疫原としてプールされたヒトの乳癌を用いて、AFPレ セプターの単クローン抗体(Mabs)が作られた[Moro,R.,Tamaoki,T.,Wegmann ,T.G.,Longenecker,B.M.,and Laderoute,M.P.Tumour Biol.14,116(1993 )、引用により記載加入される]。 IgMを生成する2つのMabは、非還元(non-reducing)状況下でPAGEゲ ルで67KDの二重帯(doubleband)を認識する。67KDの帯は125I−AFP に対して反応性でもある。これらのMabは、AFPレセプターの結合部位に反 応する。その理由は、MabはAFPが腫瘍細胞と結合するのを妨げるが、これ とは反対に、多量のAFPが過剰に存在するところでは、腫瘍細胞との結合が妨 げられるからである。MabはAFPには反応しない。Mabは胎児の細胞及び 組織片の乳癌を認識するが、乳腺腫(mammary adenomas)や、成長した組織のその 他正常部分を殆ど認識しない。 過去何十年もの間、科学者は悪性腫瘍に関係づけられた抗原を特徴づける試み を行なってきた。AFPレセプターは、胎児腫瘍の抗原と考えられ、臨床的に有 用な腫瘍マーカーとしての多くの要件を満たしていた。更に、このように広く癌 と関連づけられた抗原に対して、単クローン抗体を使うことにより、それら抗体 の臨床的有用 性を決定したり、AFPレセプターの生理学上の役割を研究することが可能にな るであろう。発明の要旨 本発明は、患者の体内で癌を検出する方法に関する。その方法は、標識抗体又 は標識AFPを患者の生体サンプルに導入するステップを含んでおり、標識抗体 又は標識AFPが生体サンプル内でAFPレセプターの結合部位と反応させるよ うにしたものである。次に、生体サンプル内で、標識抗体又は標識AFPと反応 するAFPレセプターの結合部位を同定し、癌の存在を調べるステップがある。 導入ステップの前に、患者の体から生体サンプルを得るステップのあることが望 ましい。 本発明は、患者の体内にある癌細胞を処理する方法に関する。その方法は、A FPレセプター抗体を患者の癌細胞に導入するステップを含んでいる。次に、A FPレセプター抗体を癌細胞のAFPレセプターと反応させるステップがあり、 これによって癌細胞の成長を阻止したり、癌細胞を殺す。 本発明は、患者を監視する方法に関する。その方法は、患者の癌を処理するス テップを含んでいる。次に、処理を施した後、患者のAFPレセプター部位のレ ベルを所定の間隔で検査するステップがある。 本発明は、患者を処理する方法に関する。その方法は、患者のAFPレセプタ ーを検査するステップを含んでい る。検査の結果、患者の体内にAFPレセプターが存在することがわかると、次 に、AFPレセプター抗体又はAFPを患者の体内に導入して、患者の癌細胞と 反応させるステップがある。 本発明は、患者の体内の癌細胞を処理する方法に関する。その方法は、AFP の変種を患者の体内の癌細胞に導入するステップを含んでいる。次に、変性され た(modified)AFPを癌細胞のAFPレセプターと反応させるステップがあり、 癌細胞の成長を阻止したり、癌細胞を殺すステップがある。 本発明の目的は、体液及び人体の組織の中のアルファフェトプロテインレセプ ター(AFPレセプター)を検出することにより、癌の疾患及び妊娠を診断した り経過観察することである。検出の原理と方法は、溶液(体液)中のAFPレセ プターの検出の場合や、固体のマトリックス(組織片)に付着したAFPレセプ ターの検出の場合と同様であるが、理解を容易にするために、これらは別々に説 明する。図面の簡単な説明 添付の図面には、本発明の望ましい実施例及び本発明を実施する望ましい方法 が記載されている。 図1は、癌疾患及び非悪性腫瘍疾患のチャート図である。 図2は、乳癌の写真であり、細胞の明るい部分が癌に かかっている。 図3は、乳癌の写真であり、細胞の濃い茶色の部分が癌にかかっている。 図4は、良性の乳腺腫である。 図5は、肺癌の写真であり、細胞の茶色の部分が癌細胞である。 図6は、胃癌の写真であり、細胞の濃い茶色の部分が癌細胞である。 図7は、腸癌の写真である。 図8は、AFPr−1によるP−388の成長阻止を示すグラフである。 図9は、上に示すものが3匹の対照動物、そして下に示すものが5日間注入後 の4匹の処理動物の写真である。 図10は、別の実験の動物の写真であり、その実験では処理を施した3匹の動 物には病気がなく、2匹には大きな腫瘍がある。望ましい実施例の記載 本発明は、患者の体内で癌を検出する方法に関する。その方法は、標識抗体又 は標識AFPを患者の生体サンプルに導入するステップを含んでおり、標識抗体 又は標識AFPが生体サンプル内でAFPレセプターの結合部位と反応するよう にしたものである。生体サンプルは、血液、唾液、組織、血清、粘膜、痰(sputu m)、尿、涙または癌細胞を含む物質であってよい。生体サンプルは組 織片でもよい。組織片は、固定組織(fixed tissue)、新鮮組織(fresh tissue)又 は凍結組織(frozen tissue)でもよい。抗体は、単クローン抗体でもよい。抗体 は、多クローン抗体でもよい。次に、生体サンプル内で、標識付抗体又は標識A FPと反応するAFPレセプターの結合部位を確認することによって癌が存在す るかどうかを調べるステップがある。導入ステップの前に、患者の体から生体サ ンプルを得るステップを行なうことが望ましい。 導入ステップは、放射性物質(ラジオアイソトープ)で標識された(labeled) 抗体又は放射性物質で標識されたAFPを患者の生体サンプルに導入するステッ プを含んでおり、標識抗体又は標識AFPは生体サンプル内でAFPレセプター と反応させられる。次の同定(identification)ステップは、生体サンプル内に放 射能が存在することを確認するステップを含んでいる。より具体的には、同定ス テップは、生体サンプルの放射能量を測定するステップを含むことができる。ま た、同定ステップは、生体サンプルに写真乳剤をコーティングし、その写真乳剤 を現像し、コーティングされた生体サンプルを観察するステップを含むことがで きる。或はまた、生体サンプル患者自身でもよく、導入ステップは患者に放射性 物質で標識された抗体又は放射性物質で標識されたAFPを注入するステップを 含む。 他の実施例において、導入ステップは酵素漂白抗体又 は酵素漂白AFPを生体サンプルに導入するステップを含んでおり、標識抗体又 は標識AFPは生体サンプル内でAFPレセプターの結合部位と反応するだろう 。酵素標識抗体又は酵素標識AFPは、生体試料を変色させ、同定ステップでは 、生体試料の色と既知の色を比較して、癌が存在するかを調べるステップを含む ことができる。酵素は、ペルオキシダーゼを用いることができ、導入ステップで は、ペルオキシダーゼで標識された抗体を患者の組織に導入するステップを含む ことができる。或は、導入ステップは、一滴の生体サンプルをニトロセルロース 又はナイロンの上に入れて、ペルオキシダーゼ標識抗体をその滴下位置に添加す るステップを含むことができる。次の同定ステップは、ニトロセルロース又はナ イロン上のサンプル滴下位置が変色したかどうかを調べるステップを含んでいる 。 他の実施例において、酵素標識抗体又は酵素標識AFPはイオンを放出し、そ のイオンは生体サンプルが入れられている液体の導電率(electric conductance) を変化させる。次の同定ステップは、液体の導電率を測定し、生体サンプル内に 癌が存在するかを調べるステップを含んでいる。 更に他の実施例において、導入ステップは蛍光色素で標識された抗体又は蛍光 色素で標識されたAFPを患者の生体サンプルに導入するステップを含んでおり 、標識 抗体又は標識AFPを生体サンプル内のAFPレセプターと反応させる。次の同 定ステップは、生体サンプルにUV光線を照射し、照射された生体サンプルから 放出される光子を測定するステップを含んでいる。もう一つの例として、生体サ ンプルはスライド上に癌細胞を含む生体物質のスミア(smear)でもよく、同定ス テップはそのスミアを顕微鏡又はフルオロシトメトリー(fluorocytometory)で検 査するステップを含んでいる。 本発明は、患者の体内にある癌細胞を処理する方法に関する。その方法は、A FPレセプター抗体を患者の癌細胞に導入するステップを含んでいる。抗体は、 単クローン抗体でも多クローン抗体でもよく、患者と異なる種からの抗体でもよ く、体外で患者と同じ種のリンパ球から作られた抗体でもよい。次に、AFPレ セプター抗体を癌細胞のAFPレセプターと反応させるステップがあり、癌細胞 の成長を阻止したり、癌細胞を殺す。 導入ステップは、AFPレセプター抗体を患者に注入するステップを含むこと ができる。注入ステップは、患者の血流にAFPレセプター抗体を静脈注射する ステップを含むことができる。或はまた、注入ステップでは、AFPレセプター 抗体を患者の体内で、癌細胞に近い部位に注入するステップを含むことができる 。 或はまた、導入ステップでは、癌細胞に対するワクチンを患者に接種するステ ップを含むことができる。ワク チンを接種するステップは、患者と異なる種のAFPレセプターを患者の体内に 注入するステップを含んでおり、注入されたAFPレセプターに抗して、患者自 身がAFPレセプター抗体を生成する。患者自身によって生成されたAFPレセ プター抗体は、患者の体内のAFPレセプター又は癌細胞と交差反応を起こす。 反応ステップは、患者の体内の癌細胞のAFPレセプターをAFPレセプター 抗体と反応させるステップを含んでおり、癌細胞のAFPレセプターをブロック したり、その機能を弱める。或は、AFPレセプター抗体は、補体(complement) を結合するAFPレセプター抗体でもよい。次の反応ステップは、AFPレセプ ター抗体を反応させて補体を癌細胞に結合させるステップを含んでおり、補体の 連鎖反応が起こる時、癌細胞の膜に穴が明けられ、癌細胞を殺す。 或はまた、AFPレセプター抗体は、薬物又は毒物と共役(conjugated)されて もよい。次の反応ステップは、薬物又は毒物と共役作用するAFPレセプター抗 体を癌細胞と反応させるステップを含んでおり、癌細胞が薬物又は毒物を取り込 み、癌細胞の酵素が薬物又は毒物を抗体から切り離して自由にし、これによって 細胞は不可逆的に破壊され、殺される。 更に他の実施例では、AFPレセプター抗体は放射性物質で標識されてもよい 。次の反応ステップは、AFP レセプターの標識抗体を患者の癌細胞と反応させるステップを含んでおり、癌細 胞のDNA近傍でAFPレセプター標識抗体から出る放射線がDNAを破壊し、 癌細胞の死を誘発する。 本発明は、患者を監視する方法に関する。その方法は、患者の癌を処理するス テップを含んでいる。次に、処理を施した後、患者のAFPレセプターのレベル を所定の間隔で検査するステップがある。 本発明は、患者を処理する方法に関する。その方法は、患者のAFPレセプタ ーを検査するステップを含んでいる。検査の結果、患者の体内にAFPレセプタ ーが存在することがわかると、次に、AFPレセプター抗体又はAFPを患者の 体内に導入して、患者の癌細胞と反応させるステップがある。 本発明は、患者の体内の癌細胞を処理する方法に関する。その方法は、変性A FPを患者の体内の癌細胞に導入するステップを含んでいる。変性AFPは、合 成されたものか、又はAFPの一部分である。次に、その変性AFPを癌細胞の AFPレセプターと反応させて、癌細胞の成長を阻止したり、癌細胞を殺すステ ップがある。 導入ステップは、変性AFPを患者に注入するステップを含むことができる。 注入ステップは、患者の血流に変性AFPを静脈注射するステップを含むことが できる。或は、注入ステップでは、変性AFPを患者の体内で、 癌細胞に近い部位に注入するステップを含むことができる。 反応ステップは、患者の癌細胞のAFPレセプターを変性AFPと反応させる ステップを含むことができ、このステップにより癌細胞のAFPレセプター部位 がブロックされたり、その機能が弱められる。 一般的に、AFPレセプター、変性AFP又は変性レセプターと反応する抗体 の適用又は使用を除いて、上述した技術は当業者にとって一般に知られている技 術である。発明の使用例 体液中で: 分泌によるか又は細胞が死んでからの受動拡散(passive diffusion)により、 癌組織又は胎児/胎組織からのAFPレセプターは、血流に放出され、そこから 尿、涙、唾液等のその他多くの体液中に放出される。そのとき、体液(血清を含 む)中のAFPレセプターの濃度は、健康な人と、癌患者又は妊娠患者とでは著 しく異なるであろう。次に、この違いを診断目的に用いることができるであろう 。また、これらの体液中のAFPレセプターの濃度の変化は、経過観察の目的に 利用することもできる。例えば、ある患者が乳腺癌と診断されたとき、AFPレ セプターの血清の濃度は高い。その患者は手術を受け、腫瘍は除去される。その 後、AFPレセプターの血清の 濃度は、手術の直後は急激な減少を示し、次いでプラトー領域に入る。しかし、 6ケ月後、AFPレセプターの血清の濃度は再び増加し始める。これは癌が再発 又は転移したことを示し、それは、おそらく従来の臨床又はその他の診断方法よ り前に起こる。これまでの安価なテストで注意を喚起され(alerted)、医者は、 より精度の高い、高価な方法で、必要に応じて生体へ進入する方法により、悪性 腫瘍を探す。 組織サンプル中で: AFPレセプターは、殆どの癌細胞に存在する。従って、AFPレセプターは 、免疫組織学的手段又は適当な標識AFPと培養することによって検出可能であ る(後者はパラフィン片に使用してもうまくいかなかったが、凍結片には効果が ある)。これを基に悪性腫瘍の診断をすることは可能である。その上、フルオレ スセインを標識として用いることにより、組織片で斑点となる(spotted)陽性細 胞(positive cells)は極めて少ない。これにより、古典的な病理学分析での誤差 の範囲が狭められる。古典的な病理学的分析では、他の点では正常な組織の内部 にある少数の癌細胞は見過ごされる可能性があった。また、AFPレセプターの 発現は、解剖学的変化でなく、分化及び生化学的変化をもたらすように条件づけ られているので、他の点では正常に見えるが実際には腫瘍化の初期段階にある細 胞は、AFPレセプター検出テストで は陽性を示すであろう。 再度述べるが、その原理には全く相違がなく、利用される技術がわずかに相違 するだけであるが、理解を容易にするために、体液中及び組織片中でのAFPレ セプターの検出について、別々に説明することにする。 体液中で: [例1] 一例として、癌なしの患者の血清サンプル22個と、癌患者の血清サンプル1 7個について、AFPレセプターの濃度を酵素免疫測定法(EIA)で調べた。 ここで用いられた技術を以下に記載する:EIA96の凹み付きプレート(well plates)は、リン酸塩緩衝食塩水(PBS)中で1/16384に希釈(0.05 M PO4,0.15M NaCl、pH7.5)された前記グループの血清サン プルを用いて1時間乃至一晩、コーティングされた。いくつかの凹みには、同様 の方法で、乳癌が肺へ転移した患者の胸水を1/256に希釈したものをコーテ ィングした。P89というコード番号が付されたこの物質は、大量に入手が可能 であるという理由から、基準(standard)として用いられた。このため、すべての 例において、すべてのサンプルを他のサンプルと互いに比較するときの同一基準 としてP89を用いることが可能になった。PBSで3回洗浄した後、非特異性 結合部位はPBS中で1%濃度のオボアルブミンまたはゼラチンによ って1時間ブロックされた。3回洗浄した後、マウスの体内で生成され、AFP レセプターに抗する単クローン抗体(Mab)の腹水をPBS中で1%のオボア ルブミン中で1/200に希釈した液100ul[Moro,R.,Tamaoki,T.,Wegm ann,T.G.Longenecker,B.M.and Laderoute,M.P.Tumour Biol.14,116(199 3)、これは引用を以て本願への記載加入とする]に記載されたMab167H.4 )を、各凹みの中で3時間培養した。次に、凹みをPBSで3回洗浄し、市販の 抗マウス用ペルオキシダーゼ(peroxidase-anti-mouse)のIgM共役結合体(conj ugate)を製造業者の推奨する濃度で添加した(Sigma Chemicals,S.Louis)。1 時間後、プレートをPBSで3回洗浄し、ペルオキシダーゼ用の色基質(color s ubstrate)(ABTS)を製造業者の推奨する濃度で添加した(Sigma)。すべての 培養は、室温で行われた。30分後、標準的なタイターテック(Titertek)のプレ ート読取り器を用いて、405nmにおける各凹みの光学的密度(optical densi ty)(O.D.)を読み取った。この実験結果を表1及び図1に示している。 表は、患者、腫瘍の種類及びサンプルとP89の比を示している。P89は、 研究を通じて基準として使われている。その結果、陽性と陰性の閾値をP89の 54%のに設定した時、1人を除く全ての癌患者は陽性を示した。同じ閾値を用 いた時、1人を除いて癌でない全ての患者は陰性を示した。独立したT−テスト では、以下の 値が報告された(Excel(商標名))のデータ分析結果を使用): t−テスト:不均一分散量と仮定したときの2個のサ ンプル 両側検定の分析結果は、p=0.00000054となり、これはサンプル数 が少ないことを考慮しても極端に大きい数字であった。 陰性の対照グループに入っていた患者(表中にはない)は陽性を示した。得ら れたデータ結果の重要性に注意を喚起され、担当医は、患者をCATでスキャン し、悪性の腎癌となっている腫瘍を発見した。この悪性腫瘍は、このテストで最 初に発見され、それから臨床的に確 認された。 図1は、同じ結果をグラフで示したものである。図において、X軸は、2つの 部分に分かれ(悪性腫瘍及び非悪性腫瘍、単位は無関係)、Y軸は各患者のP8 9の割合を示す。水平線は、54%+/−の閾値を示す。 [例2] もう一つの実施例では、適当なプラスチック又はガラスの基板(EIAプレー ト又は試験管)に、AFPレセプターに抗する適当な濃度の単クローン抗体(M ab)でコーティングを施した。過剰のMabを洗浄した後、基板は、無関係な 蛋白質又はアミノ酸の混合物で被覆され、非特異性結合を防止し、患者の体液( 血清、唾液、尿等)を適当に希釈したサンプルを、コーティングした基板を用い て適当な期間培養する。結合されなかったサンプル物質を除去するために洗浄を 行なった後、多クローン型の第2抗体を添加する(多クローン抗体は、動物に免 疫性を与え、その血清をMab反応する抗体源として用いることによって生成さ れる。これに対し、Mabは、培養により又は適当な宿主に移植された不死の(i mmortalized)脾臓細胞の個々のクローンから生成される)。この抗体を適当なマ ーカー又は酵素と共役させて、色で認識できるようにするか又はその他の検出可 能な反応を起こさせてもよいし、あるいはその前に、前記標識又は酵素が付され た第2抗体を加えることにより分析を行な ってもよい。この反応にこの第3の抗体が関与する場合、第2抗体は第1抗体と は異なる種で生成されるはずであり、第1抗体と第3の抗体の間では、交差反応 は検出されないはずである。そこで、起こった反応の種類に応じて適当な検出手 段(色、伝導性、化学ルミネセンス等)によりその反応が分析される。 [例3] 例2では、第1及び第2の抗体に単クローン抗体を用いたのに対し、例3では 2種類の異なる多クローン抗体を用いた点以外は、例2と同じである。 [例4] 例2と同じように、基板はニトロセルロース又はナイロンの膜である。反応は 、器具で測定することはできないが、基板の上では色付き斑点として見える。反 応は、肉眼観察にて陽性又は陰性を判別できる。 [例5] 例3と同じように、基板はニトロセルロース又はナイロンの膜である。反応は 、器具で測定することはできないが、基板の上で色付き斑点として見える。反応 は、肉眼観察にて陽性又は陰性を判別できる。 [例6] 例2から例5の抗体のうち1つを、レセプターに結合する相同AFP又は異種 AFPと置き換えられる。 [例7] KCIは、KC1の濃度が0.4M以上のとき、AFPレセプター複合体を解 離する。これによって、追加の量のAFPレセプターが放出される。この追加の 量のAFPレセプターは、検出されないおそれがあるためであり、その理由は、 前述の例で説明したように、循環するAFPレセプター複合体の中に内因性のA FPが存在するかもしれず、それゆえ、リガンド(Mab、多クローン又はAF P)の1つによる認識力が弱まるかもしれないことによる。AFPレセプターの 量が増加すると、結果的にテストの感度(sensitivity)が高くなってしまう。こ の場合、サンプルを固相で培養する前又は培養中にKC1で処理してもよい。 [例8] 上記の全ての例において、標識は放射性化合物(放射性免疫測定及び関連技術 に使用される)である。 [例9] 上記の全ての例において、測定の読取りは化学ルミネセンス又は蛍光によって 行われる。 [例10] 上記のすべての例において、導電率の読取りが行われた。 組織サンプル中で: 組織サンプルは、いくつかの方法で入手及び処理することができる。入手 : (a)外科的処理で切除した器官のサンプルから。 (b)分泌物もしくはその他の体液からのスミア又は接触によるスミア(PAP スミア)。 (c)針生検AFPレセプターの染色前組織の処理 組織のサンプルは、必要に応じて、様々な方法で固定され、切断される。 a)凍結片: 組織は切断前に凍結された固体である。これら凍結片に対して固 定剤を用いてもよいし、用いなくてもよい。 b)パラフィン片: ここでは、サンプル切断前にパラフィン体の中にサンプル を埋め込めむために、組織には通常の処理が施される。 c)アクリル酸その他の処理: 主として電子顕微鏡検査のためである。 [例11] この例では、病院の病理学部門から入手した通常のパラフィン片が用いられた 。組織は4〜8um厚さに切断された。再水化(rehydration)した後、AFPレ セプターに抗する単クローン抗体(Mab)の腹水を2000倍に希釈した溶液 を用いて培養した。45分後、スライドを洗浄し、抗マウスIgG+IgG過酸 化水素又はローダミン標識共役結合体を用いて培養した。45分後、組 織片を再び洗浄し、適当な光源を具える顕微鏡で観察するか、又は色が観察され るまで、過酸化水素基板DABを用いて培養した。次に、スライドを所定の方法 で取り付け、見やすい光の下で観察した。図2乃至図7は、乳癌にローダミンで 染色されたAFPレセプター(図2及び図3)、良性の乳腺腫(図4)、肺癌( 図5)、胃癌(図6)、腸癌(図7)の写真である。図示のように、癌細胞又は 癌細胞の索(cord)又は縞(strip)は明瞭に染色されているが、その隣にある非悪 性腫瘍の組織は染色されていない。このことは、良性の乳腺腫を示す図4を見れ ば明らかである。細胞は陰性であり、腺腫細胞とその周りの正常組織との間で、 染色の違いはない。癌の管理 癌細胞の表面に癌マーカーが発現すれば、治療目的のターゲットとなる癌細胞 への利用可能性が生じてくる。 細胞表面の抗原を標的とする手段により細胞の死を促進させる方法が数多くあ る。たとえば、補体を結合する抗体を用いる方法がある。補体の連鎖反応が起こ る時、細胞膜に穴があけられ、その結果、細胞は死に至る。もう1つの可能性と して、薬物又は毒物と共役する抗腫瘍抗原抗体を用いる方法である。一旦、細胞 表面に付着すると、共役結合体は細胞質に取り込まれ、そこで癌細胞の酵素が薬 物又は毒物を抗体から切り離す。一旦解放されると、薬物又は毒物は細胞を不可 逆的に破壊し、細胞 を死に到らしめる。他の状況では、放射性物質の標識抗体を用いることもできる 。抗体が一旦細胞に付着すると、抗体からの放射物が細胞のDNAの近傍で後者 に損傷を与え、次の再生(replication)時に細胞を死へ導く。 上記のすべての過程において重要な要素は、悪性腫瘍の細胞を特異的に認識す る抗体である。(AFPレセプター)を癌のマーカーとして用いるとき、AFP レセプターの抗体が標的分子として用いられるだけでなく、アルファフェトプロ テイン(AFP)自身がAFPレセプターを特異的に認識する。このように、細 胞を死に至らしめるために、AFPは様々な細胞溶解剤で標識されることができ る。 後者は、癌細胞を破壊するだけでなく、次の実施例に示されるように、癌細胞 の増殖を阻止する役割を果たすことができる。 [例12] AFPレセプターを発現しているP−388マウスの細胞を、AFPレセプタ ーの単クローン抗体を異なる希釈液で培養した。前もって補体結合テストを行な ったところ、補体結合による細胞破壊は認められなかった。2〜6時間培養した 後、P−388細胞に3H−チミジンを律動的に供給し、洗浄し、測定した。図 9は、AFPr−1(AFPレセプターに対する単クローン抗体)又は正常なマ ウスの血清と同じ濃度で処理された細胞の放射 性チミジンの放射線量を示す。説明したように、P388の増殖はMabにより 大きく減少した。興味深いことに、細胞をMabで数時間培養し、洗浄の後再び 培養すると、その細胞の再生率は、無関係な抗体(正常なマウスの血清)で処理 した対照細胞の再生率と非常に近い。このことは、Mabは細胞を殺すのではな く、その増殖を阻止することを示している。生体外での増殖阻止は、ヒトのLo Vo消化管の癌細胞株でも観察された(結果は省略する)。 細胞の増殖が阻止される理由は明らかではないが、AFPは、胎児の時期に脂 肪酸を胎児の細胞に運び込むものと考えられている。これらの脂肪酸は、細胞が 膜を合成するのに必要であり、この活動は、器官形成中に非常に盛んである。A FPの細胞外での濃度は、時間と共に変動し、組織によっても異なるので、細胞 を取り巻くAFPの濃度が不適当な時、再生活動を行なうことは細胞にとっては 自殺行為である。この概念は、AFPレセプターが細胞膜と細胞核の間のメッセ ンジャーの役割を果たしているかもしれないという考えを支持するものである。 このP388を用いた実験で説明したAFPレセプターの抗体は、細胞核へのメ ッセージを「不動化して送らないようにする(jam)」と考えられ、このため細胞 は分化しない。これは重要である。なぜなら、Mab以外の物質を用いてAFP レセプター系を「不動化する」ため に他の方法があるからであり、これについては後で説明する。 この例や他の例で考慮すべき重要な点は、ヒトのAFPレセプターに対して生 成されたマウスの抗AFPレセプターの単クローン抗体は、マウスの癌細胞も認 識するということである。ある種のAFPを培養し、別の種の細胞と結合させた とき、種と種の間で同じような交差反応が観察されており、このことは、異なる 種のAFPレセプターの間で構造上の類似性があることを示唆している。 [例13] 複数のC57ブラックマウスの腹部に、2×106個のEL−4細胞を同時に 皮下注射し、100ulの抗AFPレセプターの腹水又は正常なマウスの血清を 対照として、尾の静脈に注入した。わずかな組織不適合のため、動物に300ra dsの放射線を照射した。これはEL−4細胞が腫瘍を取り入れ、生成するのを助 けた。動物を21日間観察し、殺して写真撮影した。図10及び図11は、その ような2つの実験の結果を示す。図10で上に示すものが、3匹の対照動物(正 常なマウスの血清を注入した)であり、4匹の動物(正常なマウスの血清を注入 した)は注入してから5日後の写真である。対照グループ(そのうちの幾つかは 、よりわかり易くするために赤いフェルトで染色してある)の腫瘍は、直径約5 mmで あった。処理された動物には病気がなかった(注入部位に僅かな傷が観察された だけである)。図11は、別の実験で使われた数匹の動物を示しており、その実 験では、5匹の処理動物全てに病気がなく(そのうちの3匹を示す)、2匹が大 きな腫瘍をもっていた(動物は、注入してから15日後に殺された)。 別の実験では、処理動物は、病気や異常の何の兆候もなく8か月間生き続けた 。サンプルと体液 AFPレセプターは、細胞膜上だけでなく細胞質内にも存在する。実際、放射 性AFPが癌細胞と共に培養されると、その約2/3が細胞質で発見され、その 多くはAFPレセプターと結合する。(文献32.Naval,J.,Villacampa,M.J. ,Goguel,A.F.and Uriel,J.,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.82,3301(1985 )の序章を参照)。ヒトの腱(cord)の血清から得たAFPレセプターの不純物を 取り除く方法が開発されている[Moro,R.,Tamaoki,T.,Wegmann,T.G.,Long enecker,B.M.,and Laderoute,M.P.Tumour Biol.14,116(1993)、引用を以 て本願への記載加入とする」。この方法が用いられるのは、循環AFPレセプタ ーが、死につつある細胞から離生されるか又は活発に分泌されると考えられてい るためである。実際、AFPレセプターは新生児の血液中に存在する可溶性蛋白 質であることは、予想がつくであろ う。 腫瘍を持つ人にも同じことが起こる。ただ、AFPレセプターはもともと胎児 の細胞ではなく悪性腫瘍の細胞であり、胎児の細胞内では腫瘍は生理的に発現さ れる。このように、AFPレセプターは腫瘍の細胞外液中にある。このことは重 要である。何故なら、体液や分泌物の中には細胞外液から直接取り入れられるも のがあるからである。たとえば、腹膜の癌腫症(元の癌細胞は、腹膜に転移し、 腹腔の全体に広がる)は、通常は、腹水を生成する。これはテスト済みであり、 AFPレセプターの中に豊富にある(マウスの体内で、単クローン抗体の源とし て誘発された腹水とその生理病理学的メカニズムが同じでも両者を混同しないこ と:腹腔内の癌細胞(この場合は、単クローン抗体を生成するハイブリドーマ) は、炎症反応を起こし、腹水を発生させ、ハイブリドーマ細胞は、その腹水中に 単クローン抗体を放出する)。 酵素免疫検査法で参考基準として用いたP−89は、乳癌が肺へ転移した患者 の胸膜浸出液である。この段階では、乳癌の細胞が肺へ転移し、肺を覆う膜であ る胸膜で成長し始めた。胸膜は、腹膜と同じ様に癌細胞に対して反応するが、そ の液体は腹水ではなく、胸水又は胸膜浸出液(pleural effusion)と呼ばれる。こ れらの場合(腹水と胸水)において、液体と直接接触する(又は液体中に浮いて いる)癌細胞は、AFPレセプターを液体 中に直接解放する。 腹水と胸水を集めるのに、針で刺して孔をあける方法がある。分泌物は、体か ら自然に出てくる場合もある。例えば、膀胱癌の場合は、AFPレセプターが尿 として放出されるので、その尿を監視することができる。気管支癌の場合、患者 に無理に咳をさせて、痰としてAFPレセプターを集めることができる。 白血病やある種のリンパ腫のように、悪性腫瘍の細胞が血液と密接に接触して いる場合には、AFPレセプターの濃度は血清中で最も高くなる。 上記の全ては実際の状況を記載したものであって、最も起こり易いということ ではない。最も一般的な癌は、胃癌、乳癌、子宮癌、結腸癌、肺癌等であり、そ れらの癌は、AFPレセプターを血流へ放出する。この体液は、分析で使われる 液体中で、最高濃度のマーカーを示すであろう。しかし、異なる免疫化学技術の 感度が増すにつれて、AFPレセプターを他の液体で検出することも可能であろ う。たとえば、殆どの血清蛋白質は、その少量が唾液中に現われる。唾液のサン プルを採取するのは血液のサンプルを採取するよりも実用的であることは明らか である。そして、十分な量のAFPレセプターがあり、使用した反応の感度も十 分であれば、唾液を診断や経過観察の目的で血液の代わりに用いることができる であろう。他の体液についても同様のことがいえる。 要約すると、腹水、関節液(関節の骨癌等)、胸水、痰、脳脊髄液、尿、大便 等の体液を用いるのが便利な場合がある。血液や血清を選択するのが最もよい場 合もある。最後に、AFPレセプターは血清中により多く存在するにも拘わらず 、実用的理由又は法的理由からその他の体液、たとえば唾液や尿を用いる方が便 利な場合もある。体液は、自然な分泌物から又は適当に針を刺して集められる。免疫化学的方法: これらの方法は、2つのグループに分けることができる。一方は、試験管やプ レートの凹みの中で行われる方法であり、固相は、反応が「固定化される(stuck )」もので、この固相は人工的な特性があるのに対し、他の方法では、固相は、 例えば組織片又は血液細胞のスミアのように宿主自身の一部である。前者は通常 、免疫化学的アッセイ、後者は免疫組織化学的アッセイ(組織片の場合)又は免 疫細胞化学的アッセイ(細胞がスミアのように遊離しているとき)と呼ばれる。 両者の原理は同じであるが、初期物質が異なっている。免疫化学的アッセイでは 、検出又は測定すべき分子は溶液の中に存在しなければならないのに対し、免疫 組織化学的アッセイ又は免疫細胞化学的アッセイでは、監視されるべき分子は、 反応が行われる細胞の一部である。 これらの反応の一般的原理は簡単なものである。抗体 (単クローン又は血清からのもの又は免疫が与えられた動物からのもの)は、反 応する構造の認識において非常に特異的である。動物が人のアルブミンなどの高 純度のフラクションで免疫されると、サンプルが、アルブミン以外に何百種類も の高濃度の蛋白質を含んでいたとしても、その血清はサンプルに存在するアルブ ミンだけを認識する。また抗体は、抗体を生成する物質(抗原という)に対して 非常に大きな親和性を持つ。従って、非常に少量の抗原しか検出できない。 免疫化学的反応又は免疫組織化学的反応(免疫細胞化学的反応は、後者に含ま れる。その理由は、両者の唯一の違いは、免疫組織化学的反応の場合、細胞は組 織構造の一部が切断されてスライド上に置かれているのに対し、免疫細胞化学的 反応の場合は、細胞はスライド上に広げられていることにあるからである。)を 起こす方法は同じである。検出すべき物質(抗原。ここではAFPレセプター) は、その抗原に特異的な抗体と反応する。2つ(抗体又は抗原)のうち1つを、 何らかの方法で標識が付される(labeled or tagged)。2つを共に培養した後、 過剰な試薬を洗い流し、標識は多数の方法で確認される。標識がラジオアイソト ープの場合、放射線量を適当な検出器で測定する(これらの技術には、通常は12 5 1が用いガンマ線の放出量を測定する。これらの技術は、放射線免疫アッセイ (RIA)のグループに含まれる)。組織 片は、放射性物質の標識と共に培養される場合、3Hを用いるのが望ましく、3H はスライドに写真乳剤をコーティングした後、スライドの上に現れる。放射能が あるところには銀色の粒子(黒色)が現れる。これらの粒子は、顕微鏡で観察す ることができる。 もう1つの非常に一般的な技術は、酵素を標識として用いる方法である。酵素 は触媒であるので、基体(substrate)を新たな生成物に変換することができる。 ここでの興味深い特徴は、1つの酵素分子(ハツカダイコンのペルオキシダーゼ やアルカリホスファスターゼ等)は、10,000以上の基体分子を処理できる ことである。それゆえ、因子は10,000倍となるので、感度は飛躍的に高ま る。これらの反応は酵素免疫法(EIA)又は酵素結合免疫吸収法(ELISA )と呼ばれる。これらの酵素は通常、基体の色を変化させる。可溶性検査(solub le assays)(免疫化学反応)では、試験管やプレートの凹みの中の溶液は変色す るため、(光比色計又は分光偏光計を用いて)変化を測定することにより、反応 を定量化することができる。或はまた、酵素は非イオン性溶液からイオンを放出 させて、溶液の導電率が変化するので、溶液を電気的に測定することができる。 これらの技術の変形例では、ビオチンを標識に用いており、この標識は、酵素と 共役接合されたアビジンによって検出される。このアビジン−ビオチン反応は、 検出法全体の感度を高め る。 最近になって、別のタイプの標識が導入された。これらの標識は蛍光色素であ り、UV光線に当てられると可視スペクトル中に光子を放出する。この反応は、 小脈(light pulse)を刺激する高強度のUVに曝された直後に、光電池で測定す る。この技術は免疫化学ルミネセンス(immunochemiluminesence)として知られて いる。 分子の標識方法又は反応の測定方法の如何に拘わらず、反応は以下に記載する 幾つかのシーケンスにより行われる。 競争アッセイ: この場合、自由抗原(ここではAFPレセプター)を比較的大量に、且つ高純 度の形で得る必要がある。抗体(Ab)は固相(試験管又はプラスチック製プレ ートの凹み又は適当な膜などであるが、後でさらに記載する)に付着させられる 。抗原(Ag)を含むサンプルは、既知量の純粋な標識抗原と混合される。混合 物は固相の上で抗体と共に培養される。元のサンプル中での抗原が多いほど、固 相上で所定量の抗原に付着される標識抗原は少なくなる(抗原は、抗体の量と比 較して飽和状態にある)。反応は、既知量の非標識抗原を含む溶液に外挿(extra polation)することによって定量化される。この技術は、可溶性抗原を用いたと きにだけ有効であり、組織サンプルに対しては有効でない。競争アッセイの主な 利点は、必 要な抗体が1つだけということである。サンドイッチ技術: 多くの変形例がある。従来のサンドイッチELISAは、1つの抗体を化学的 方法により固相に付着させる過程により構成される。次に、測定すべき抗原を含 むサンプルが加えられる。希釈液の反応は、過剰の抗体の中で進行するようにな っている。数分乃至数時間培養した後、過剰の試薬を洗い流し、第2の抗体が加 えられる。第2の抗体は、第1の抗体が認識する抗原分子とは異なる抗原分子の 部位を認識しなければならない。さもなければ、その部位は第1の抗体が占める ことになり、反応は全く起こらないからである(抗原は、第2の抗体が認識する のと同じ結合部位を2以上持たないと反応は起こらないし、これは極めて稀だか らである)。第2の抗体も過剰に存在するので、全ての抗原が認識される。この 第2の抗体は標識されている。再び洗浄した後、反応を測定する。サンドイッチ 技術の利点の1つは、純粋な抗原を必要としないことである。欠点は、反応にか かる時間がより長く(最低2回の培養が必要である)、2つの異なる抗体を必要 とすることである。 この例で用いられたものは「一つの切片」のサンドイッチであり、組織に対す る多くの免疫組織化学的反応の中で用いられている。ここでは、抗原は固相の上 に固定され、標識抗体(抗体は1つのみ)は次にその上で培養 される。試験管を固相として用いるときの欠点は、抗原の試験管への付着が反応 の強さに影響を与えるかもしれないことである。そして、「付着性(stickiness) 」は、サンプルの他の要素に依存しており、患者の血清の違いによって異なる。 (これは、試験管やプレートの凹みのガラス又はプラスチックに対して蛋白質を 結合させる力が静電気であり、それは本質的に弱いためである。これは、抗原を その抗体と結合させる反応が強いことと対照的である)。これを避けるには、第 1の過剰の抗体に上記の二重サンドイッチを用いることが有効である。次に、固 相に付着する第1の抗体が多少とも無関係である場合は、いつも多くあり、サン プルが違っても変わりはない。というのは、固相への非特異性結合は、アッセイ (第1の抗体の調製)で用いたのと同じ生成物を用いるからである。実験におい て、癌患者と非癌患者の違いは非常に大きかったため、使用したプラスチックプ レートのコーティングの違いでは説明できない。 固相について: これは、顕微鏡スライドの上又は適当な表面上にある組織でもよく、その上に 分子が通常は静電気によって付着する(通常は、試験管内で数時間培養し、それ から洗浄することによって調製する。蛋白質は、ガラス又はプラスチックに付着 したままである)。しかし、固相は、通常はナイロン又はニトロセルロースから なる膜であっ てもよい。これらの膜は、白色である。膜を抗原又は抗体で一旦コーテイングす ると、顕微鏡の組織片で行なったのと同様のアッセイが行なわれ、基体を用いて 色が現れるようにする。なお、基体は変色するのではなく、有色沈殿物を生成し 、プロセスの終わりに、有色スポットは反応が陽性か否かを示す。有色なら反応 があったことを意味し、無色なら反応は陰性であったことを意味する。これが前 述した反応が「二者択一(all or nothing)」型の例である。この方法には、反応 を解明するための道具を必要としないという大きな利点がある。肉眼観察で十分 である。主な欠点は、あまり正確でないということである。抗体の人体への導入 患者の癌細胞を抗AFPレセプター抗体へ接触させるのにいくつかの方法があ る。1つの方法は、マウスの清浄化された単クローン抗体(Mab)を患者に注 入することである。悪性腫瘍の細胞が血液と直接接触する場合には(例:白血病 )、静脈注射の方法が選択される。腫瘍に接触できるのが唯一血液の場合も同様 である。しかし他の方法の方がよい場合もある。上述のように、腫瘍の中には胸 膜腔や腹腔などのように限られた空間で成長するものがある。このような場合は 、抗体を血流よりも腔へ直接注入するほうがよい。抗体をAFPレセプターまで 到達させるもう一つの方法は、抗体を宿主の中に入 れることである。異なる種のAFP受容体を用いて癌患者に免疫を与えることが できる。ヒトと他の種との間でレセプターの適合性のわずかな違いは、その患者 の体内で、抗体を生成することを可能にするかもしれない。抗体は、マウスや牛 などのAFPレセプターに対するものであっても、ヒトの自己由来のAFPレセ プターと交差反応する。こうして患者は、自分自身の腫瘍に対して「ワクチン接 種」を受ける。抗体は、レセプターを癌細胞の表面へ付着(jam)させる唯一の方 法でないことに言及しておく価値がある。変性したAFPでも同じ目的を達成す ることができるであろう。合成されたAFP片でさえ同じ結果を得ることができ るので、それは腫瘍の成長を阻止するのに有用である。 変性AFPレセプターを得るにはいくつかの異なる方法があり、自然発生する AFPの一部でもよいし、DNAの分子工学により合成されたものでもよい。重 要な点は、AFPがAFPレセプターと反応する部分は生存できるが、AFPの 残りの部分は生存しないか、又はその機能を発揮できなくなるほど変えられ若し くは破壊されるということである。これらの方法は全て、当該分野の専門家にと ってよく知られた技術である。AFPはこれらのどの方法にも簡単に適用される 。たとえば、ベックマン・インストルメンツ(Beckman Instruments)製のポリペ プチド合成器を用いて、AFPレセプターと反応する AFPの合成片(synthetic part)を生成することができる。AFPレセプターと 反応するAFP合成片に対応するアミノ酸配列は、ポリペプチド合成器の中へ入 れられ、合成器が作動する。その結果、合成されたポリペプチドができる。また 、所望のDNA配列を、当該分野で周知の適当なベクターを介して、宿主系の中 に導入することにより、AFP片を作ることもできる。次に、宿主系はAFPを 発現し、集められ、所望により清浄化される。また、遺伝子合成法を利用して、 所望のDNA配列を、牛の受精卵等の中へ入れることも可能である。所望のAF Pは、当該分野の専門家であれば周知にように、出生後の動物から得ることもで きる。これについては、例えば、Maniatis et al.(1982)を参照することができ る。所望のAFP片を得る更にもう一つの方法として、自然に発生するAFPを 切断する方法を挙げらることができる。AFPは、臭化シアンイミドのような連 鎖試薬を付着させて、清浄化した後、所望のAFP片を得ることができる。 実施例を挙げて本発明を詳しく説明してきたが、その説明は、あくまでも例示 の目的で行なったものであり、添付の請求の範囲の記載を除いて、当業者が本発 明の精神と範囲から逸脱することなく詳細な説明の部分に様々な変更を行うこと は可能であることは理解されるべきである。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION                             Cancer detection and treatmentField of the invention   The present invention relates to the detection and / or treatment of cancer. More specifically, the book The principle of the invention utilizes the presence of the AFP receptor to detect cancer in the patient's body Or contain or eliminate cancer.Background of the Invention   Twenty years ago, Abelev et al. Were the first to express oncofetal antigen Reported on top protein (AFP) [Abelev, G.I., Perova, S.D., Khra mkova, N.I., Postnikova, Z.A. and Irlin, I.S., Transplantation 1, 174 (19 63)]. It is the main circulating protein during fetal life, but this protein is mostly The serum concentration of the relevant protein is less than 50 ng / ml in normal adults [Ruo slahti, E. and Seppals, M., Int. J. Cancer 8, 374 (1971)]. But the liver In malignant diseases such as cancer and teratocarcinoma, plasma levels can be 1000 times higher. [Ruoslahti, E .; and Seppals, M.S. Adv. Cancer Res. 29, 275 (197 9)]. This finding provides a novel way to detect malignancies and monitor cancer patients. Not only in clinicians who anticipated the arrival of the means, but also in fetal life Researchers examining the physiological function of the protein also noticed.   One of the first parameters studied was the distribution of AFP in the fetus. Immunity Using the peroxidase method, Benno and Williams were found in developing rat brain The distribution of AFP was described [Benno, R.H. and Williams, T.H., Brain Res. 142, 1982 (1978)]. Shortly afterwards, a series of papers reported on several birds, humans, etc. The species concentrated on plasma proteins in developing neurons. [Trojan, J .; and Ur iel, J., J. Oncodevelop. Biol. Med. 1, 107 (1980); Uriel, J .; Trojan, J., Dubouch, P.C. and Pieiro, A., Path. Biol. 30, 79 (1982); Moro, R .; and Uriel J., J .; Oncodevelop. Biol. Med. 2, 391 (1981); Dziegielewska, K.M., Evan s, C.A.N., Lorscheider, E.L., Malinowska, D.H., Mollgard, K., Reynolds, M.L. and Saunders, N.R., J. Physiol. 318, 239 (1981); Mollgard, K .; Jaco bsen, M., Krag-Jacobsen, G., Praetorius-Claussen, P.S. and Saunders, N.R. and Neurosci. Lett. 14, and 85 (1979)]. AFP for specific tissues or organs And the kinematics in the staining of SA, even if the species is different, Are fairly constant [Urierl, J., Trojan, J., Moro, R .; and Pieiro, A. , Ann. N.Y. Acad. Sci. 417, 321 (1983)]. At a stage where the neural structure is completely underdeveloped, Neither intracellular AFP nor intracellular SA is detected. Then suddenly, and depending on the species At a certain time, both proteins are observed simultaneously in the same cell [Torand-Aller and, C.D., Nature 286, 733 (1980)]. Subsequently, the intensity of the staining was weakened, Fewer cells are positive for P and then less for SA. The developed structure is negative for both proteins. IgG and chicken embryos Other serum components, such as albumin, may be present in the cerebrospinal fluid but not in fetal Not found at all in cells. [Fielitz, W .; Esteves, A. and Moro, R., Dev. Brain Res. 13, 111 (1984)].Uptake of AFP by embryonic cells   A question from these early observations is that AFP and SA are taken up from extracellular sources. The problem was whether it was synthesized or synthesized in cells. Nerve cells It is not yet clear whether plasma proteins can be synthesized [Ali, M .; Raul, H .; a nd Sahib, M., Dev. Brain Res. 1, 618 (1981); Ali, M., Mujoo, K .; and Sahib , M., Dev. Brain Res. 6, 47 (1983); Schachuter, B.S. and Toran-Allerand, C.D., Dev. Brain Res. 5, 95 (1982); Pieiro, A .; Calvo, M., Iguaz, F., Lamp reave, F. and Naval, J .; Int. J. Biochem. 14,817 (1982)], even in vitro [Uriel, J .; Faivre-Bauman, A., Trojan, J. and Foiret, D.S. Neurosci. Lett . 27, 171 (1981); Haj eri-Germond, M .; Trojan, Uriel, J.S. and Hauw, J.J. Dev. Neurosci. 6, 111 (1 984)] and in vivo [Villacampa, M.J., Lampreave, F. et al. Calvo, M .; Pieiro, A. and Uriel, J.M. Dev. Brain Res. 12, 77 (1984); Moro, R., Fielitz, W., Gr unberg, J .; and Uriel, J., Int. J. Dev. Neurosci. 2, 143 (1984)], neuromother Cells can easily take up AFP and serum albumin from extracellular sources It is shown. In vivo experiments were performed with homologous and heterologous proteins. In the first experiment [Villacampa, M.J., Lampreave, F., Calvo, M., Pieiro, A. et al. a nd Uriel, J.M. Dev. Brain Res. 12, 77 (1984)], when injected into pregnant rats. , 125I-AFP is used in organs such as the fetal digestive tract, skin, and tongue, Only in organs where the presence of native intracellular AFP has been reported. It has also been shown to be localized in the fetal brain [Trojan, J. et al. and Uriel J. Oncodev. Biol. Med. 3, 13 (1982)]. In the second experiment, [Moro, R., Fieli tz, W., Grunberg, J .; and Uriel, J., Int. J. Dev. Neurosci. 2,143 (1984) Injecting the serum of a newborn rat into the mesencephalic cavity of a chicken embryo, AFP and SA indicate that they are detected where they originally corresponded Was done. This also means that AFP and SA from one species can be taken up by cells of another species. Structures and mechanics that are embedded and preserved through evolution It is shown that it is. This also involves the basic principles of biology Suggest that.   Despite injecting high concentrations of rat IgG, staining for this protein Showed negative. This prevents passive diffusion as a result of the high molecular weight (150,000) Not. The reason is that twice the normal molar concentration of AFP is used in fetal cerebrospinal fluid. Ovalbumin (MW = 43,000) was not detected even when [Fielitz, W., Esteves, A .; and Moro, R., Dev. Brain Res. 13, 111 (1984) ]. This selectivity allows for a specific receptor-mediated cellular uptake (endocytosis) [Moro, R .; and Uriel, J., J . Oncodevelop. Biol. Med. 2, 391 (1981); Moro, R., Fielitz, W., Grunberg. , J. et al. and Uriel, J., Int. J. Dev. Neurosci. 2, 143 (1984)].Dependence of AFP uptake on cell differentiation   However, at this point, is AFP and SA uptake a cell-dependent phenomenon? In both cases, the cerebral blood barrier is closed at the end of fetal life, and the concentration of circulating AFP decreases. Loss of staining as a result of reduced utilization of extracellular protein It was still unclear what it was. First, chicken [Moro, R., Neurosci. Le tt. 41, 253 (1983)] and then in human fetuses [Jacobsen, M .; Lassen, L.C. and Moll gard, K., Tumor Biol. 5, 55 (1984)], spinal cord Nerve cells in the ganglia are negative-positive- before AFP peaks in serum. A negative complete staining cycle was shown. Furthermore, no AFP is detected. Then, the SA will continue to exist for a while. These results indicate that these serum proteins This indicates that the quality reaches the nerve cells of the ganglion.AFP receptor in immature cells   The ingestion of AFP by a cell depends on its expression depending on the degree of cell differentiation. [Uriel, J., Trojan, J. et al. Moro, R .; and Pieiro, A., Ann. N.Y. Acad. Sci. 417, 321 (1983); Moro, R. Neurosci. Lett. 41, 253 (1983)]. According to previous reports, [Uriel, J., Bouill on, D. Russel, C .; and Dupiers, M., Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A.73, 1452 ( 1976)], in the cytosol of the immature rat uterus, ultracentrifuged 4s and 8s It is shown that AFP is included in the two fractions. 4s fract Is completely consistent with the AFP, with 0.4M KCI in the 8s fraction AFP could be detected immunologically only after treatment with. This process is an 8s fraction Was converted to the 4s fraction. At that time, the concept of AFP receptor was not yet established However, the 8s fraction corresponding to the receptor-AFP complex Was expected to have been separated by high concentrations of KC1. This Thus, the separation of the AFP-receptor complex by KC1 was confirmed by Smalley and Sar cione [Smalley, J.R. and Sarcione, E.J. Bioch. Biohys . Res. Comm. 94, 1429 (1980)]. They also found that the AFP molecule was in the immature rat uterus. Provided the fact that it is synthesized by cells.AFP receptor expression in cancer cells   Cancer cells share many biological and antigenic features with fetal cells. [Uriel, J., Adv. Cancer Res. 29, 127 (1979)], AF during fetal life Malignant tumor cells from tissues that have taken up P re-launch the corresponding receptor Indeed, there is a possibility that AFP will be reintroduced. To prove this hypothesis, Sarcione et al. [Sarcione, E.J., Zloty, M., Delluomo, D.S., Mizejewski, G. et al. and  Jacobson, H., Cancer Res. 43, 3739 (1983)] describes an 8s sample obtained from human breast cancer. AFP was found in the complex. The breast cancer uses the cytosol of immature rats In the same manner as in the above experiment. More recently In turn, these authors report that AFP is a human breast cancer cell line with MCF-7. And AFP can be detected immunologically. It was shown that the complex had to be separated in order to be able to remove it [Sarcione, E .J. and Hart, D., Int. J. Cancer 35, 315 (1985)]. Meanwhile this cell line [Uriel, J., Failure-Crepin, C., Villacampa, M.J., Pieiro, A., and Guesken s, M., Tumor Biol. 5, 41 (1984)] and nickel-induced rat striated muscle Tumor [Uriel, J., Poupon, M.F. and Geuskens, M., Br. J. Cancer 48, 263 (1983) ] Has been shown in vitro to incorporate AFP. These indirect consequences Indicates that the AFP surface receptor was detected in the MCF-7 cell line. [Villacampa, M.J., Moro, R .; Naval, J., Failure- Cripin, Ch., Lampreave, F. and Uriel, J., Bioch. Biophys. Res. Commun.12 2, 1322 (1984)]. The binding parameter is positive cooperating in two places (positive cooper 3 shows a model of a receptor showing ation). Kd at the site of strong affinity is 1.5 × 10-9M, with positive synergy. Kd at the site of strong affinity is 1.5 × 10-9M and has n-2,000 / cell. 320,000 / cell at low affinity sites Exists, and Kd is 2.2 × 10-7M. Later studies showed that mouse YACT phosphorus It was shown that a similar receptor system was present on the surface of papilloma cells. The system is It is absent from T cells of mature normal mice [Naval, J., Villacampa, M.J., Goguel, A.F. and Uriel, J.M. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 82, 3301 (1985)] .   These studies were performed in parallel with in vitro experiments, which included naturally occurring Mice with breast cancer Radioactive iodine-labeled AFP was injected. The tissue distribution of radioactivity is in tumor / normal tissue (liver Ratio) was 3.6 [Uriel, J., Villacampa, M.J., Moro, R., Naval, J. . and Failly-Crpin, CH. C.R. Acad. Sci. (Paris) 297, 589 (1983); Uriel, J . Villacampa, M.J., Moro, R., Naval, J. et al. and Failly-Crpin, C., Cancer Res . 44, 5314 (1984)]. Looking at the radiographs of the tumors in these animals A large amount of silver particles accumulated around the nuclear membrane of malignant tumor cells. Particles were not accumulated in normal cells [Uriel, J., Villacampa, M.J., Mo ro, R., Naval, J .; and Failly-Crpin, C., Cancer Res. 44, 5314 (1984)].Imaging of mouse tumor by scintigram method using 131I-AFP   131Breast cancer of mice was photographed by scintigram method using I-AFP, and 3 to 4 m m positive images of breast cancer were obtained [Uriel, J., Villacampa, M.J. Moro, R. , Naval, J .; and Failly-Crpin, C.E. Cancer Res. 44, 5314 (1984); Moro, R., H euguerot, C., Vercelli-Retta, J., Fielitz, W., Lpez, J.J. and Roca, R., Nuclear Med. Comm. 5, 5 (1984)]. In fact, 11 out of 12 such tumors Could also be detected with a standard cancer camera connected to a computer. Another mouse One tumor, neuroblastoma, can also be scanned in a similar manner. [Hajeri-Germond, M., Naval, J., Trojan, J .; and Uriel, J., Br. J. Cance r 51, 791 (1985)].   There is no direct evidence for the expression of AFP uptake, the presence of the AFP receptor. It has been demonstrated in several different types of tumors. As a tumor, Rhabdomyosarcoma [Uriel, J., Poupon, M.F. and Geuskens, M., Br. J. Cancer 48, 2 63 (1983)], mouse neuroblastoma [Hajeri-j Germond, M., Naval, J., Trojan, J. and Uriel, J., Br. J. Cancer 51, 791 (1985)], mouse and human breast cancer [Vil lacampa, M.J., Moro, R., Naval, J., Failure-Crpin, Ch., Lampreave, F. and  Uriel, J., Bioch. Biophys. Res. Commun. 122, 1322 (1984); Naval, J., Vil lacampa, M.J., Goguel, A.F. and Uriel, J.M. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 82, 3301 (1985); Uriel, J. et al. Villacampa, M.J., Moro, R., Naval, J. et al. and Fail ly-Crpin, CH. C.R. Acad. Sci. (Paris) 297, 589 (1983); Uriel, J., Villac. ampa, M.J., Moro, R., Naval, J. and Failly-Crpin, C., Cancer Res. 44,53 14 (1984); Moro, R., Heuguerot, C., Vercelli-Retta, J., Fielitz, W., Lpez , J.J. and Roca, R., Nuclear Med. Comm. 5, 5 (1984); Biddle, W .; and Sarci one, E.J., Breast Cancer Res. Treat. 10, 281 (1987)], T lymphoma in mice [ Naval, J., Villacampa, M.J, Goguel, A.F. and Uriel, J.M. Proc. Natl. Acad . Sci. U.S.A. 82, 3301 (1985)], human T-cell lymphoma and B-cell lymphoma [Laborda, J., Nav. al, J., Allouche, M., Calvo, M., Georgoulias, V., Mishal, Z. and Uriel, J . Int J. Cancer 40, 314 (1987); Calvo, M., Laborda, J., Naval, J., George ulias, V. and Uriel, J., presented at the 8th meeting of ISOBM (Paris 1985); Torres, J.M., Anel, A., and Uriel, J., J. Cell Physiol. 150, 458 (1992); Torres J.M., Gueskens, M.S. and Uriel, J., Int. J. Cancer 47, 112 (1991)] Human T lymphocytes activated by tohemagglutinin [Torres, J.M., Labor da, J., Naval, J., Darracq, N., Calvo, M., Mishal, Z. and Uriel, J.M. Mol . Immunology 26, 851 (1989)], human malignant tumor mononuclear cell line U937 [Suzuki, Y. , Zeng, C.Q., Alpert, E.J. Clinic. Invent. 90, 1530 (1992)] and HT29 Colon cancer cells [Esteban, C., Gueskens, M .; and Uriel, J., Int. J. Cancer  49, 425 (1991)].   These findings indicate that the AFP receptor is not a type of tumor, but rather a malignant tumor. It is widely used as an antigen for fetal tumors.Monoclonal antibody against AFP receptor   Labeled AFP (FITC, radioactive tracer) was used for tumor cells in paraffin tissue sections. Does not combine with The reason is probably that the receptor binding site is partially Nature And the affinity for the receptor at that site is low. Will. Therefore, using pooled human breast cancer as an immunogen, Scepter monoclonal antibodies (Mabs) have been produced [Moro, R., Tamaoki, T., Wegmann , T.G., Longenecker, B.M., and Laderoute, M.P. Tumour Biol. 14, 116 (1993 ), Quoted].   The two Mabs that produce IgM can be used in non-reducing situations in PAGE Recognizes a double band of 67KD. The 67KD belt125I-AFP It is also reactive to These Mabs reverse the binding site of the AFP receptor. Respond. The reason is that Mab prevents AFP from binding to tumor cells, Conversely, where large amounts of AFP are present in excess, binding to tumor cells is impeded. Because it can be done. Mab does not react to AFP. Mabs are fetal cells and Recognizes breast cancer in a piece of tissue but recognizes mammary adenomas and It hardly recognizes other normal parts.   Over the past decades, scientists have attempted to characterize antigens associated with malignancies Has been done. AFP receptors are considered antigens for fetal tumors and are Fulfilled many requirements as a useful tumor marker. Furthermore, cancer is so widely spread By using monoclonal antibodies against the antigens associated with Clinical usefulness Sex and study the physiological role of the AFP receptor. Will be.Summary of the Invention   The present invention relates to a method for detecting cancer in a patient. The method is to use a labeled antibody or Introducing a labeled AFP into a biological sample of a patient, comprising the steps of: Alternatively, the labeled AFP reacts with the binding site of the AFP receptor in the biological sample. It is something that has been done. Next, react with the labeled antibody or labeled AFP in the biological sample. Identifying the binding site of the AFP receptor and examining the presence of cancer. It is desirable to have a biological sample from the patient's body before the introduction step. Good.   The present invention relates to a method of treating cancer cells in a patient. The method is A Introducing the FP receptor antibody into the cancer cells of the patient. Next, A Reacting the FP receptor antibody with the AFP receptor of the cancer cell, This stops cancer cells from growing or kills them.   The present invention relates to a method for monitoring a patient. The method is a tool for treating a patient's cancer. Contains Tep. Next, after the treatment, the level of the AFP receptor site of the patient is examined. There is the step of checking the bell at predetermined intervals.   The present invention relates to a method for treating a patient. The method depends on the patient's AFP receptor. Includes the step of checking You. If the test results show that the AFP receptor is present in the patient, Then, an AFP receptor antibody or AFP is introduced into the patient's body, There is a step to react.   The present invention relates to a method of treating cancer cells in a patient. The method is AFP Introducing the variant into cancer cells in the patient's body. Then, denatured Reacting the (modified) AFP with the AFP receptor of the cancer cell, There are steps to stop cancer cells from growing or kill them.   It is an object of the present invention to provide alpha-fetoprotein receptors in body fluids and tissues of the human body. Cancer (AFP receptor) was detected to diagnose cancer disease and pregnancy Is to follow up. The principle and method of detection are as follows: AFP receptor in solution (body fluid) AFP receptor attached to solid matrix (a piece of tissue) Similar to detector detection, but for ease of understanding these are discussed separately. I will tell.BRIEF DESCRIPTION OF THE FIGURES   The accompanying drawings illustrate preferred embodiments of the present invention and preferred ways of practicing the present invention. Is described.   FIG. 1 is a chart showing cancer diseases and non-malignant tumor diseases.   Figure 2 is a photograph of breast cancer, where bright cells show cancer. It depends.   FIG. 3 is a photograph of breast cancer, in which the dark brown parts of the cells have cancer.   FIG. 4 is a benign mammary tumor.   FIG. 5 is a photograph of lung cancer, in which the brown portions of the cells are cancer cells.   FIG. 6 is a photograph of gastric cancer, where the dark brown portions of the cells are cancer cells.   FIG. 7 is a photograph of bowel cancer.   FIG. 8 is a graph showing the inhibition of P-388 growth by AFPr-1.   FIG. 9 shows three control animals, shown above, and five days after infusion, below 3 is a photograph of four treated animals.   FIG. 10 is a photograph of an animal from another experiment in which three treated animals were treated. The objects are sick and two have large tumors.Description of the preferred embodiment   The present invention relates to a method for detecting cancer in a patient. The method is to use a labeled antibody or Introducing a labeled AFP into a biological sample of a patient, comprising the steps of: Alternatively, the labeled AFP reacts with the binding site of the AFP receptor in the biological sample. It was made. Biological samples include blood, saliva, tissues, serum, mucous membranes, sputum m), urine, tears or substances containing cancer cells. Biological samples are in pairs It may be a woven piece. Tissue pieces can be fixed tissue, fresh tissue or May be a frozen tissue. The antibody may be a monoclonal antibody. antibody May be a polyclonal antibody. Next, in the biological sample, labeled antibody or labeled A Cancer exists by confirming the binding site of AFP receptor that reacts with FP There is a step to find out if Before the introduction step, the patient's body It is desirable to perform a step of obtaining a sample.   The introduction step is labeled with a radioactive substance (radioisotope) Step for introducing AFP labeled with an antibody or a radioactive substance into a biological sample of a patient. Labeled antibody or labeled AFP can Is reacted. The next identification step is released into the biological sample. Includes the step of confirming that the projectile is present. More specifically, identification The step can include measuring the amount of radioactivity in the biological sample. Ma The identifying step comprises coating the biological sample with a photographic emulsion, Developing and observing the coated biological sample. Wear. Alternatively, the biological sample may be the patient himself, and the introduction step may involve radioactive Injecting an antibody labeled with a substance or AFP labeled with a radioactive substance. Including.   In another embodiment, the introducing step is an enzyme-bleached antibody or Comprises the step of introducing an enzyme-bleached AFP into the biological sample, wherein the labeled antibody or Labeled AFP will react with the binding site of the AFP receptor in biological samples . The enzyme-labeled antibody or enzyme-labeled AFP discolors the biological sample, Comparing the color of the biological sample with a known color to determine if cancer is present be able to. As the enzyme, peroxidase can be used, and in the introduction step, Comprises introducing a peroxidase-labeled antibody into the patient's tissue be able to. Alternatively, the introducing step involves adding a drop of the biological sample to nitrocellulose. Or put on nylon and add peroxidase-labeled antibody to the dropping position. May be included. The next identification step is nitrocellulose or Includes a step to check if the sample drop position on the iron has changed color .   In other embodiments, the enzyme-labeled antibody or enzyme-labeled AFP releases ions and the Are the electrical conductance of the liquid in which the biological sample is placed To change. The next identification step involves measuring the conductivity of the liquid and placing it in a biological sample. Including determining if cancer is present.   In yet another embodiment, the introducing step comprises an antibody labeled with a fluorescent dye or a fluorescent dye. Introducing the dye-labeled AFP into the patient's biological sample. , Signs The antibody or labeled AFP is reacted with an AFP receptor in a biological sample. Next The constant step is to irradiate the biological sample with UV light, and from the irradiated biological sample. Measuring the emitted photons. As another example, biological The sample may be a smear of biological material containing cancer cells on the slide, Tep examines the smear under a microscope or fluorocytometory. Checking step.   The present invention relates to a method of treating cancer cells in a patient. The method is A Introducing the FP receptor antibody into the cancer cells of the patient. Antibodies are It may be a monoclonal antibody, a polyclonal antibody, or an antibody from a different species than the patient. Alternatively, an antibody produced outside the body from lymphocytes of the same species as the patient may be used. Next, AFP Reacting the receptor antibody with the AFP receptor of the cancer cell; Blocks the growth or kills cancer cells.   The introducing step includes injecting the AFP receptor antibody into the patient. Can be. The infusion step injects the AFP receptor antibody intravenously into the patient's bloodstream. Steps may be included. Alternatively, in the injection step, the AFP receptor Injecting the antibody into the body of the patient at a site close to the cancer cells. .   Alternatively, the introduction step involves vaccinating the patient with a vaccine against cancer cells. May be included. Waku The step of inoculating the tin involves introducing an AFP receptor of a different species from the patient into the patient's body. And injecting the patient into the patient against the injected AFP receptor. The body produces AFP receptor antibodies. AFP receptor generated by the patient himself The putter antibody cross-reacts with AFP receptors or cancer cells in the patient's body.   The reaction step involves converting the AFP receptor of the cancer cells in the patient's body to the AFP receptor. Reacting with antibodies to block AFP receptors on cancer cells Or weaken its function. Alternatively, the AFP receptor antibody is a complement May be an AFP receptor antibody. The next reaction step is the AFP receptor Reacting the complement antibody to bind the complement to the cancer cells. When the chain reaction occurs, a hole is made in the cancer cell membrane, killing the cancer cell.   Alternatively, the AFP receptor antibody is conjugated to a drug or toxicant. Is also good. The next reaction step involves the action of an AFP receptor antagonist that couples with the drug or toxicant. Reacting the body with the cancer cells, where the cancer cells take up the drug or toxicant. The enzyme in the cancer cells separates the drug or toxicant from the antibody and frees it, Cells are irreversibly destroyed and killed.   In yet another embodiment, the AFP receptor antibody may be labeled with a radioactive substance. . The next reaction step is AFP Reacting the labeled antibody of the receptor with cancer cells of the patient. Radiation from the AFP receptor-labeled antibody near the DNA of the vesicles destroys the DNA, Induces cancer cell death.   The present invention relates to a method for monitoring a patient. The method is a tool for treating a patient's cancer. Contains Tep. Next, after treatment, the level of AFP receptor in the patient At predetermined intervals.   The present invention relates to a method for treating a patient. The method depends on the patient's AFP receptor. The step of examining the key. As a result of the test, the AFP receptor Once the AFP receptor antibody or AFP is There is the step of introducing it into the body and reacting with the patient's cancer cells.   The present invention relates to a method of treating cancer cells in a patient. The method is modified A Introducing the FP into cancer cells in the patient's body. Modified AFP Or part of an AFP. Next, the modified AFP is used to It reacts with the AFP receptor to stop the growth of cancer cells or kill cancer cells. There is a tip.   The introducing step can include injecting the modified AFP into the patient. The infusion step may include the step of intravenously injecting the modified AFP into the patient's bloodstream. it can. Alternatively, in the infusion step, the modified AFP is Injecting into a site close to the cancer cells can be included.   The reacting step comprises reacting the AFP receptor of the patient's cancer cells with the modified AFP. A step can be included which results in an AFP receptor site on the cancer cell Is blocked or its function is weakened.   Generally, an antibody that reacts with an AFP receptor, a modified AFP or a modified receptor Except for the application or use of any of the above, the techniques described above are techniques generally known to those skilled in the art. It is art.Example of use of the invention   In body fluids:   Either by secretion or by passive diffusion after the cell dies, AFP receptors from cancerous tissue or fetal / fetal tissue are released into the bloodstream from which It is released into many other bodily fluids such as urine, tears and saliva. At that time, body fluids (including serum) A), the concentration of AFP receptor is significantly different between healthy people and cancer patients or pregnant patients. Will be very different. Second, this difference could be used for diagnostic purposes . In addition, changes in the concentration of AFP receptor in these body fluids can be monitored for follow-up purposes. Can also be used. For example, when a patient is diagnosed with breast cancer, The serum concentration of the scepter is high. The patient undergoes surgery and the tumor is removed. That Later, the serum of AFP receptor Concentrations show a sharp decrease immediately after surgery and then enter the plateau region. But, After six months, the serum concentration of the AFP receptor begins to increase again. This is cancer recurrence Or metastasis, which is probably less than traditional clinical or other diagnostic methods. Happen before. Alerted by previous inexpensive tests, the doctor said, A more accurate and expensive method, and if necessary, Look for tumors.   In tissue samples:   AFP receptors are present on most cancer cells. Therefore, the AFP receptor Can be detected by immunohistological means or by culturing with an appropriately labeled AFP. (The latter did not work well when used on paraffin pieces, but was not effective on frozen pieces. is there). Based on this, it is possible to diagnose a malignant tumor. Plus, fluore By using sucein as a label, positive cells spotted on tissue pieces Very few positive cells. This allows for errors in classical pathology analysis Is narrowed. In classical pathological analysis, the interior of otherwise normal tissue A small number of cancer cells in could have been overlooked. In addition, the AFP receptor Expression is conditioned to result in differentiation and biochemical changes, not anatomical changes That appear normal in other respects, but are actually in the early stages of tumorigenesis Vesicles were tested for AFP receptor detection Will show positive.   Again, there is no difference in the principle, and the technology used is slightly different. However, for ease of understanding, AFP levels in body fluids and Scepter detection will be described separately.   In body fluids: [Example 1]   As an example, 22 serum samples from a cancer-free patient and 1 serum sample from a cancer patient The concentration of the AFP receptor was determined by enzyme immunoassay (EIA) for seven of them. The technique used here is described below: EIA96 recessed plate (well plates) were diluted 1/16384 in phosphate buffered saline (PBS) (0.05 MPO4, 0.15 M NaCl, pH 7.5) Coated with pull for 1 hour to overnight. Some dents as well The pleural effusion of a patient whose breast cancer metastasized to the lung was diluted by a factor of 256 I did it. This substance with the code number P89 is available in large quantities It was used as a standard because it was Because of this, all In the example, the same criteria when comparing all samples with each other It became possible to use P89. Non-specific after washing 3 times with PBS The binding sites were made with 1% ovalbumin or gelatin in PBS. I was blocked for one hour. After three washes, produced in the body of the mouse, AFP Ascites of a monoclonal antibody (Mab) against the receptor was added to 1% ovoa in PBS. 100 ul of a solution diluted 1/200 in albumin [Moro, R., Tamaoki, T., Wegm ann, T.G. Longenecker, B.M. and Laderoute, M.P. Tumour Biol. 14, 116 (199 3), which is incorporated by reference into the present application]. ) Was cultured in each well for 3 hours. Next, the dents were washed three times with PBS and commercially available. IgM conjugate of peroxidase-anti-mouse for mouse (conj ugate) was added at the concentration recommended by the manufacturer (Sigma Chemicals, S. Louis). 1 After time, the plates are washed three times with PBS and the color substrate for peroxidase (color s ubstrate) (ABTS) was added at the manufacturer recommended concentration (Sigma). All Culture was performed at room temperature. After 30 minutes, a standard Titertek pre-press The optical density of each pit at 405 nm was measured using a light reader. ty) (O.D.). The results of this experiment are shown in Table 1 and FIG.   The table shows the patient, tumor type and sample to P89 ratio. P89 is Used as a reference throughout research. As a result, the positive and negative thresholds When set at 54%, all but one cancer patient was positive. Use the same threshold All patients without cancer, except one, were negative. Independent T-test Then, Values were reported (using the data analysis results of Excel (TM)):   t-test: two samples assuming non-uniform dispersion               Simple   The analysis result of the two-tailed test is p = 0.0000054, which is the number of samples. It was an extremely large number even considering that the number was small.   Patients in the negative control group (not in the table) were positive. Get Attention was drawn to the importance of the data results, and the attending physician scanned the patient on a CAT And found a tumor that had become a malignant kidney cancer. This malignancy is the best in this test. First discovered, then clinically It has been certified.   FIG. 1 shows the same result graphically. In the figure, the X axis is Divided into parts (malignant and non-malignant tumors, irrespective of unit), Y axis is P8 of each patient 9 is shown. The horizontal line indicates a threshold of 54% +/-. [Example 2]   In another embodiment, a suitable plastic or glass substrate (EIA Or a test tube) with an appropriate concentration of monoclonal antibody (M ab). After washing the excess Mab, the substrate is irrelevant Coated with a mixture of proteins or amino acids to prevent non-specific binding, Serum, saliva, urine, etc.) were diluted appropriately using a coated substrate. And culture for an appropriate period. Wash to remove unbound sample material After this, a polyclonal second antibody is added (polyclonal antibodies are not available to animals). Conferring epidemiology and produced by using the serum as a source of Mab-reactive antibodies. It is. In contrast, Mabs are immortalized (i) transplanted by culture or into a suitable host. mmortalized) generated from individual clones of spleen cells). Apply this antibody to a suitable Marker or enzyme to allow color recognition or other detectable Reaction or may be preceded by the label or enzyme. The analysis is performed by adding a second antibody. You may. If this third antibody is involved in this reaction, the second antibody will Must be produced in different species and there is no cross-reactivity between the first and third antibodies. Should not be detected. Therefore, an appropriate detection method is used according to the type of reaction that occurred. The steps (color, conductivity, chemiluminescence, etc.) analyze the reaction. [Example 3]   In Example 2, monoclonal antibodies were used for the first and second antibodies, whereas in Example 3, Same as Example 2 except that two different polyclonal antibodies were used. [Example 4]   As in Example 2, the substrate is a nitrocellulose or nylon membrane. The reaction is , Cannot be measured with an instrument, but appears as colored spots on the substrate. Anti In response, positive or negative can be determined by visual observation. [Example 5]   As in Example 3, the substrate is a nitrocellulose or nylon membrane. The reaction is , Cannot be measured with the instrument, but appears as colored spots on the substrate. reaction Can be distinguished positive or negative by visual observation. [Example 6]   One of the antibodies of Examples 2 to 5 can be used to bind a receptor to a homologous AFP or a heterologous AFP. Replaced by AFP. [Example 7]   KCI dissociates the AFP receptor complex when the concentration of KC1 is 0.4M or more. Let go. This releases additional amounts of the AFP receptor. This additional Because the amount of AFP receptor may not be detected, As explained in the previous example, circulating AFP receptor complex contains endogenous A FP may be present and therefore the ligand (Mab, polyclonal or AF P), because the cognitive power of one of them may be weakened. AFP receptor Increasing the amount results in a higher sensitivity of the test. This In this case, the sample may be treated with KC1 before or during the culturing on the solid phase. [Example 8]   In all of the above examples, the label is a radioactive compound (radioimmunoassay and related techniques). Is used for). [Example 9]   In all of the above examples, the reading of the measurement was made by chemiluminescence or fluorescence. Done. [Example 10]   In all of the above examples, conductivity readings were taken.   In tissue samples:   Tissue samples can be obtained and processed in several ways.obtain : (A) From a sample of a surgically resected organ. (B) smear from secretions or other body fluids or smear from contact (PAP Smear). (C) Needle biopsyTreatment of tissue before staining for AFP receptor   Tissue samples may be fixed and cut in various ways as needed. a)Frozen pieces:  Tissue is a solid that has been frozen before cutting. For these frozen pieces, A stabilizer may or may not be used. b)Paraffin pieces:  Here, the sample is placed in paraffin before cutting. Normal treatment is applied to the tissue in order to embed it. c)Acrylic acid and other treatments:  Mainly for electron microscopy. [Example 11]   In this example, normal paraffin pieces obtained from the hospital's pathology department were used . The tissue was cut to 4-8 um thickness. After rehydration, the AFP A 2000-fold diluted solution of monoclonal antibody (Mab) against the scepter Was used for culturing. After 45 minutes, slides were washed and anti-mouse IgG + IgG peracid Culture was performed using hydride or rhodamine-labeled conjugate. 45 minutes later, the pair Wash the strip again and observe under a microscope equipped with a suitable light source, or Until culturing, using a hydrogen peroxide substrate DAB. Then slide the slides in the prescribed way And observed under easy-to-see light. Figures 2 to 7 show rhodamine for breast cancer. AFP receptor stained (FIGS. 2 and 3), benign mammary tumor (FIG. 4), lung cancer ( FIG. 5 is a photograph of gastric cancer (FIG. 6) and intestinal cancer (FIG. 7). As shown, cancer cells or The cords or strips of the cancer cells are clearly stained, but the adjacent non-bad The tissue of the sexual tumor is not stained. This can be seen in FIG. 4, which shows a benign mammary tumor. It is obvious. The cells are negative, between the adenoma cells and the surrounding normal tissue, There is no difference in staining.Cancer management   If a cancer marker is expressed on the surface of a cancer cell, the cancer cell can be a therapeutic target The possibility of using it arises.   There are a number of ways to promote cell death by targeting cell surface antigens. You. For example, there is a method using an antibody that binds complement. The complement chain reaction occurs When the cell membrane is punctured, the cell dies. Another possibility and And a method using an anti-tumor antigen antibody conjugated with a drug or a toxicant. Once, cells Once attached to the surface, the conjugate is taken up in the cytoplasm, where cancer cell enzymes are converted to drugs. Separate the object or poison from the antibody. Once released, drugs or poisons can block cells Reversely destroy cells To death. In other situations, radiolabeled antibodies can be used . Once the antibody attaches to the cell, the emission from the antibody is detected in the vicinity of the cell's DNA. To damage and lead to cell death at the next replication.   An important factor in all of the above processes is the specific recognition of malignant tumor cells. Antibody. When (AFP receptor) is used as a cancer marker, AFP Not only is the receptor antibody used as a target molecule, Thein (AFP) itself specifically recognizes the AFP receptor. In this way, AFP can be labeled with various cell lysing agents to cause vesicle death. You.   The latter not only destroys cancer cells, but also, as shown in the following examples, Can play a role in inhibiting the growth of. [Example 12]   P-388 mouse cells expressing the AFP receptor were transferred to the AFP receptor. Were cultured in different dilutions. Perform a complement fixation test in advance. However, no cell destruction due to complement fixation was observed. Cultured for 2-6 hours Later, to P-388 cellsThreeH-thymidine was pulsed, washed and measured. Figure 9 is AFPr-1 (a monoclonal antibody against the AFP receptor) or normal Radiation of cells treated at the same concentration as mouse serum 3 shows the radiation dose of sex thymidine. As described, the growth of P388 was Greatly reduced. Interestingly, the cells were cultured on the Mab for several hours and after washing again When cultured, the rate of cell regeneration is treated with an irrelevant antibody (normal mouse serum) Very similar to the rate of regeneration of control cells. This means that Mab does not kill cells. It shows that it inhibits its growth. Inhibition of growth in vitro is due to human Lo It was also observed in Vo gastrointestinal tract cancer cell lines (results omitted).   It is not clear why cell growth is arrested, but AFP is It is thought to carry fatty acids into fetal cells. These fatty acids are Necessary for synthesizing the membrane, this activity is very active during organogenesis. A The extracellular concentration of FP varies with time and varies from tissue to tissue. When the concentration of AFP surrounding is inappropriate, performing regenerative activities is Suicide. The concept is that the AFP receptor is a message between the cell membrane and the cell nucleus. It supports the idea that it may play the role of a anger. The antibody of the AFP receptor described in the experiment using P388 is capable of infecting the cell nucleus. It is thought that the message is `` immobilized and not sent (jam) '', so the cell Does not differentiate. This is important. This is because AFP using a substance other than Mab To "immobilize" the receptor system There are other methods, which will be described later.   An important consideration in this and other examples is the production of human AFP receptors. The resulting mouse anti-AFP receptor monoclonal antibody also recognizes mouse cancer cells. Is to understand. Culturing one type of AFP and binding it to another type of cells Sometimes similar cross-reactivity has been observed between species, which is different This suggests structural similarities between species of AFP receptors. [Example 13]   2x10 on the abdomen of multiple C57 black mice6EL-4 cells simultaneously Subcutaneous injection, 100 ul of anti-AFP receptor ascites fluid or normal mouse serum As a control, it was injected into the tail vein. 300ra in animals due to slight tissue incompatibility ds radiation. This helps EL-4 cells take up and produce tumors. I did. Animals were observed for 21 days, killed and photographed. FIG. 10 and FIG. The results of two such experiments are shown. The upper part of FIG. 10 shows three control animals (positive animals). Normal mouse serum was injected) and 4 animals (normal mouse serum injected) Is a photograph 5 days after injection. Control groups (some of which are Tumors, stained with red felt for clarity) have a diameter of approximately 5 in mm there were. Treated animals were not ill (small scars were observed at the injection site Only). FIG. 11 shows several animals used in another experiment. In the study, all five treated animals were disease free (three of them are shown) and two were large. Had a tumor (animals were killed 15 days after injection).   In another experiment, treated animals survived for eight months without any signs of illness or abnormalities .Samples and body fluids   The AFP receptor is present not only on the cell membrane but also in the cytoplasm. In fact, radiation When sex AFP is cultured with cancer cells, about 2/3 of it is found in the cytoplasm, Many bind to the AFP receptor. (Reference 32. Naval, J., Villacampa, M.J. Goguel, A.F. and Uriel, J., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 82, 3301 (1985 )). AFP receptor impurities from serum of human tendon (cord) Methods have been developed for removal [Moro, R., Tamaoki, T., Wegmann, T.G., Long. enecker, B.M., and Laderoute, M.P. Tumour Biol. 14, 116 (1993). And will be described in this application. " This method is used for circulating AFP receptors Is thought to be excreted or actively secreted from dying cells. That's because. In fact, AFP receptors are soluble proteins present in the blood of newborns. Quality is something you can expect U.   The same happens to people with tumors. However, the AFP receptor was originally a fetus Cells of the malignant tumor, not cells of the tumor, and the tumor is physiologically expressed in the cells of the fetus. It is. Thus, the AFP receptor is in the extracellular fluid of the tumor. This is heavy It is important. Because some body fluids and secretions can be taken directly from extracellular fluids Because there is. For example, peritoneal carcinomatosis (the original cancer cells have spread to the peritoneum, Spreading throughout the abdominal cavity) usually produces ascites. This has been tested, Abundant in the AFP receptor (a source of monoclonal antibodies in the body of mice) Should not be confused even if the ascites induced by the ascites and its physiopathological mechanism are the same. And: cancer cells in the peritoneal cavity (in this case, hybridomas producing monoclonal antibodies) Causes an inflammatory response and produces ascites, and the hybridoma cells Releases monoclonal antibodies).   P-89 used as a reference standard in enzyme immunoassay was for patients with breast cancer metastasized to lung Pleural exudate. At this stage, the breast cancer cells have spread to the lungs and are Began to grow in the pleura. The pleura responds to cancer cells in the same way as the peritoneum, but This fluid is not ascites but is called pleural effusion or pleural effusion. This In these cases (ascites and pleural effusion), they come into direct contact with (or float in) A) Cancer cells use the AFP receptor as a liquid Release directly inside.   To collect ascites and pleural effusion, there is a method of piercing with a needle. Secretions are in the body May come out naturally. For example, in the case of bladder cancer, the AFP receptor As it is released, the urine can be monitored. Patients with bronchial cancer A forceful cough can collect AFP receptors as sputum.   Like leukemia and some lymphomas, cells of a malignant tumor come into close contact with the blood If present, the concentration of the AFP receptor is highest in serum.   All of the above are descriptions of actual situations and are most likely to occur is not. The most common cancers are stomach, breast, uterus, colon, lung, etc. These cancers release AFP receptors into the bloodstream. This body fluid is used in the analysis It will show the highest concentration of marker in the liquid. However, different immunochemical techniques As sensitivity increases, it may be possible to detect AFP receptors in other liquids U. For example, most serum proteins appear in saliva in small amounts. Saliva sun Obtaining a pull is obviously more practical than taking a blood sample It is. And there is a sufficient amount of AFP receptor and the sensitivity of the reaction used is sufficient. Minutes, saliva can be used in place of blood for diagnostic and follow-up purposes Will. The same can be said for other body fluids.   In summary, ascites, synovial fluid (bone cancer in joints, etc.), pleural effusion, sputum, cerebrospinal fluid, urine, stool It may be convenient to use body fluids such as The best place to choose blood and serum In some cases. Finally, despite the fact that the AFP receptor is more abundant in serum, For practical or legal reasons, it is more convenient to use other body fluids, such as saliva or urine. In some cases it may be useful. Fluid may be collected from natural secretions or by appropriate needle sticks.Immunochemical methods:   These methods can be divided into two groups. One is a test tube or In this method, the reaction is performed in a `` stuck '' (stuck) state. This solid phase has artificial properties, whereas in other methods the solid phase is It is part of the host itself, for example a smear of tissue pieces or blood cells. The former is usually , Immunochemical assay, the latter being an immunohistochemical assay (for tissue sections) or It is called an epidemic cytochemical assay (when the cells are free like smears). Both have the same principle, but differ in the initial material. In immunochemical assays The molecule to be detected or measured must be in solution, In a histochemical or immunocytochemical assay, the molecule to be monitored is The part of the cell where the reaction takes place.   The general principle of these reactions is simple. antibody (From monoclonal or serum or from immunized animals) Very specific in recognizing the corresponding structure. If the animal is as high as human albumin When immunized with a pure fraction, the sample will contain hundreds of Serum, even if it contains high concentrations of Recognize only Min. Antibodies react with substances that produce antibodies (called antigens). Has a very large affinity. Therefore, only very small amounts of antigen can be detected.   Immunochemical reaction or immunohistochemical reaction (immunocytochemical reaction is included in the latter It is. The only difference is that in the case of immunohistochemical reactions, cells A part of the woven structure is cut and placed on the slide, while the immunocytochemical This is because in the case of the reaction, the cells are spread on the slide. ) The way to wake is the same. Substance to be detected (antigen, here AFP receptor) Reacts with an antibody specific for that antigen. One of the two (antibody or antigen) It is labeled or tagged in some way. After culturing the two together, Excess reagent is washed away and the label is confirmed in a number of ways. Sign is radio isoto In the case of loops, the radiation dose is measured with a suitable detector (these techniques usually include12 Five 1 measures the amount of gamma radiation emitted. These techniques are used in radioimmunoassays. (RIA) group). Organization When the pieces are cultured with radioactive labels,ThreeIt is desirable to use H,ThreeH Appears on the slide after the slide is coated with a photographic emulsion. Radioactivity In some places silver particles (black) appear. These particles are observed under a microscope. Can be   Another very common technique is to use enzymes as labels. enzyme Since is a catalyst, the substrate can be converted to a new product. An interesting feature here is that one enzyme molecule (radish peroxidase) And alkaline phosphatase) can treat more than 10,000 substrate molecules That is. Therefore, the sensitivity is dramatically improved because the factor is 10,000 times. You. These reactions were performed by enzyme immunoassay (EIA) or enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). ). These enzymes usually change the color of the substrate. Solubility test (solub In le assays), the solution in the test tube or plate recess will change color. Therefore, by measuring the change (using a colorimeter or spectropolarimeter), Can be quantified. Alternatively, enzymes release ions from nonionic solutions Then, the conductivity of the solution changes, so that the solution can be measured electrically. In a variation of these techniques, biotin is used for labeling, and this label is Detected by conjugated avidin. This avidin-biotin reaction is Increase the sensitivity of the entire detection method You.   Recently, another type of label has been introduced. These labels are fluorescent dyes. And emit photons in the visible spectrum when exposed to UV light. This reaction is Measure with a photovoltaic cell immediately after exposure to high-intensity UV that stimulates light pulses. You. This technique is known as immunochemiluminescence. I have.   Regardless of the method of labeling the molecule or measuring the reaction, the reactions are described below. This is done in several sequences.   Competition assay:   In this case, a relatively large amount of free antigen (here, AFP receptor) and high purity Need to get in the form of degrees. Antibody (Ab) is applied to solid phase (test tube or plastic plate) Such as a recess in the sheet or a suitable film, but will be described further below) . A sample containing the antigen (Ag) is mixed with a known amount of pure labeled antigen. mixture The object is incubated with the antibody on a solid phase. The more antigen in the original sample, the more The amount of labeled antigen attached to a given amount of antigen on the phase is reduced (the amount of antigen is Compared to saturation). The reaction is extrapolated to a solution containing a known amount of unlabeled antigen (extra polation). This technology uses a soluble antigen It is only valid for tissue samples and not for tissue samples. Key Competition Assays The benefits are Only one antibody is needed.Sandwich technology:   There are many variations. Conventional sandwich ELISAs use a single antibody It is constituted by a process of attaching to a solid phase by a method. Next, include the antigen to be measured. Sample is added. The diluent reaction will proceed in excess antibody. ing. After culturing for several minutes to several hours, the excess reagent is washed away and the second antibody is added. available. The second antibody has an antigen molecule different from the antigen molecule recognized by the first antibody. The part must be recognized. Otherwise, the site is occupied by the first antibody This is because no reaction occurs (the antigen is recognized by the second antibody). The reaction does not take place unless it has two or more of the same binding sites, and is this extremely rare Et al.) Since the second antibody is also present in excess, all antigens are recognized. this The second antibody is labeled. After washing again, the reaction is measured. sandwich One of the advantages of the technology is that it does not require a pure antigen. The downside is the reaction Longer run time (requires at least 2 cultures), requires 2 different antibodies It is to be.   The one-piece sandwich used in this example was It has been used in many immunohistochemical reactions. Here, the antigen is on the solid phase The labeled antibody (only one antibody) is then cultured on it Is done. The disadvantage of using a test tube as a solid phase is that the antigen adheres to the test tube That may affect the strength of the And "stickiness" Is dependent on other factors in the sample and will vary with the patient's serum. (This applies protein to the glass or plastic in the recess of the test tube or plate. The coupling force is static, because it is inherently weak. This allows the antigen This is in contrast to the strong reaction with the antibody). To avoid this, It is advantageous to use the double sandwich described above with one excess of antibody. Next, There are always many cases where the first antibody attached to the phase is more or less irrelevant, There is no change even if the pull is different. Because non-specific binding to the solid phase This is because the same product as used in (Preparation of first antibody) is used. Experiment smell The difference between cancer patients and non-cancer patients was so large that the plastic The difference in rate coating cannot be explained.   About the solid phase:   This may be tissue on a microscope slide or on a suitable surface, on which Molecules attach, usually by static electricity (usually cultured in test tubes for several hours, Prepared by washing from Protein adheres to glass or plastic Still do). However, the solid phase is usually made from nylon or nitrocellulose. A film that becomes You may. These films are white. Coating the membrane with antigen or antibody once Then, the same assay as performed on the tissue section of the microscope is performed, using the substrate. Make the colors appear. Note that the substrate does not change color but forms a colored precipitate. At the end of the process, a colored spot indicates whether the reaction is positive. Reaction if colored And colorless means that the reaction was negative. This is before The described reaction is an example of the "all or nothing" type. This method involves a reaction There is a great advantage that no tools are required to solve the problem. Visual observation is enough It is. The main disadvantage is that it is not very accurate.Introduction of antibodies into the human body   There are several methods for contacting a patient's cancer cells with an anti-AFP receptor antibody. You. One method is to inject a patient with purified mouse monoclonal antibody (Mab). It is to enter. When malignant cells come into direct contact with blood (eg, leukemia) ), Intravenous injection method is selected. The same is true when the only blood that can contact the tumor is the blood It is. However, other methods may be better. As mentioned above, some tumors Some grow in a limited space such as the membrane cavity or abdominal cavity. In this case It is better to inject antibodies directly into the cavity rather than into the bloodstream. Antibody to AFP receptor Another way to achieve this is to enter the antibody into the host. It is to be. Immunizing cancer patients with different types of AFP receptors it can. The slight difference in receptor compatibility between humans and other species is May be able to produce antibodies in the body of the animal. Antibodies are available from mice and cows AFP receptor derived from human autologous AFP receptor Cross reacts with Puter. In this way, patients receive a vaccine against their own tumor. Seeds ”. Antibodies are the only way to attach receptors to the surface of cancer cells (jam) It is worth mentioning that it is not law. The same purpose can be achieved with denatured AFP Will be able to Even the synthesized AFP pieces can achieve the same result As such, it is useful in stopping tumor growth.   There are several different ways to obtain a modified AFP receptor, which occur naturally It may be a part of AFP or may be synthesized by molecular engineering of DNA. Heavy The important point is that although the part where AFP reacts with the AFP receptor can survive, The rest does not survive or has been altered to such an extent that it cannot perform its function. Is to be destroyed. All of these methods require specialists in the field. This is a well-known technique. AFP easily applies to any of these methods . For example, the Beckman Instruments Reacts with AFP receptor using peptide synthesizer A synthetic part of the AFP can be generated. With AFP receptor The amino acid sequence corresponding to the reacting AFP synthesis fragment is entered into the polypeptide synthesizer. And the synthesizer is activated. The result is a synthesized polypeptide. Also The desired DNA sequence is transferred into a host system via a suitable vector well known in the art. AFP pieces can also be produced by introducing the AFP. Next, the host system Express, collect and optionally clean. Also, using the gene synthesis method, It is also possible to put the desired DNA sequence into fertilized bovine eggs and the like. Desired AF P can also be obtained from postnatal animals, as is well known to those skilled in the art. Wear. This is described, for example, in Maniatis et al. (1982) You. Yet another way to obtain the desired AFP piece is to use a naturally occurring AFP A cutting method can be given. AFP is a chain such as cyanogen bromide. After attaching and cleaning the chain reagent, the desired AFP piece can be obtained.   Although the present invention has been described in detail with reference to examples, the description is merely an example. Except for the description in the appended claims. Make various changes to the detailed description without departing from the spirit and scope of the description; It is understood that is possible.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 FI A61K 51/00 G01N 33/53 Y G01N 33/53 33/577 B 33/577 A61K 43/00 【要約の続き】 でいる。検査の結果、患者の体内にAFPレセプターが 存在することがわかると、次に、AFPレセプター抗体 又はAFPを患者の体内に導入して、患者の癌細胞と反 応させるステップがある。患者の体内の癌細胞を処理す る方法である。その方法は、変性AFPを患者の体内の 癌細胞に導入するステップを含んでいる。次に、変性A FPを癌細胞のAFPレセプターと反応させるステップ があり、癌細胞の成長を阻止したり、癌細胞を殺す。────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of front page (51) Int.Cl. 6 Identification code FI A61K 51/00 G01N 33/53 Y G01N 33/53 33/577 B 33/577 A61K 43/00 [Continuation of abstract] If the test shows that the AFP receptor is present in the patient's body, then there is the step of introducing an AFP receptor antibody or AFP into the patient's body and reacting with the patient's cancer cells. This is a method for treating cancer cells in the body of a patient. The method includes introducing the modified AFP into cancer cells in a patient's body. Next, there is the step of reacting the denatured AFP with the AFP receptor of the cancer cell, thereby inhibiting the growth of the cancer cell or killing the cancer cell.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1.患者の体内の癌を検出する方法であって、 標識抗体又は標識AFPを患者の生体サンプルに導入し、標識抗体又は標識 AFPが、患者の生体サンプル内でAFPレセプターまたAFPレセプターの結 合部位と反応させるステップ; 生体サンプル内で標識抗体又は標識AFPと反応したAFPレセプター又は AFPレセプターの結合部位を同定することにより、癌の存在を調べるステップ 、 を有している患者の体内の癌検出方法。 2.導入ステップの前に、患者の体から生体サンプルを得るステップがある請求 項1に記載の方法。 3.導入ステップは、ラジオアイソトープで標識された抗体又はラジオアイソト ープで標識されたAFPを患者の生体サンプルに導入することにより、標識抗体 又は標識AFPを生体サンプル内でAFPレセプター結合部位と反応させるステ ップを含んでいる請求項1に記載の方法。 4.導入ステップは、酵素で標識された抗体又は酵素で標識されたAFPレセプ ターを患者の生体サンプルに導入することにより、標識抗体又は標識AFPを生 体サンプル内でAFPレセプターの結合部位と反応させるステップを含んでいる 請求項1に記載の方法。 5.導入ステップは、蛍光色素で標識された抗体又は蛍光色素で標識されたAF Pレセプターを患者の生体サンプルに導入することにより、標識抗体又は標識A FPを生体サンプル内でAFPレセプターの結合部位と反応させるステップを含 んでいる請求項1に記載の方法。 6.同定ステップは、生体サンプル内に存在する放射能を同定するステップを含 んでいる請求項3に記載の方法。 7.同定ステップは、生体サンプルの放射能の量を測定するステップを含んでい る請求項3に記載の方法。 8.同定ステップは、生体サンプルに写真乳剤をコーティングし、その写真乳剤 を現像し、コーティングされた生体サンプルを観察するステップを含んでいる請 求項6に記載の方法。 9.生体サンプルは患者自身であり、導入ステップは患者にラジオアイソトープ で標識された抗体又はラジオアイソトープで標識されたAFPを注入するステッ プを含んでいる請求項6に記載の方法。 10.酵素で標識された抗体又は酵素で標識されたAFPは、生体サンプルの色 を変化させるものであり、同定ステップは、生体サンプルの色と既知の色を比較 して、癌の存在を調べるステップを含んでいる請求項4に記載の方法。 11.酵素はペルオキシダーゼであり、導入ステップは、ペルオキシダーゼで標 識された抗体を患者の組織に導入するステップを含んでいる請求項10に記載の 方法。 12.導入ステップは、一滴の生体サンプルをニトロセルロース又はナイロン上 の位置に載せて、ペルオキシダーゼで標識された抗体をその位置へ添加するステ ップを含んでおり、同定ステップは、ニトロセルロース又はナイロン上の前記位 置が変色したかどうかを調べるステップを含んでいる請求項10に記載の方法。 13.酵素で標識された抗体又は酵素で標識されたAFPは、生体サンプルが入 っている溶液の導電率を変化させるイオンを放出し、同定ステップは、溶液の導 電率を測定して、生体サンプル内に癌が存在するかどうかを調べるステップを含 んでいる請求項4に記載の方法。 14.同定ステップは、生体サンプルにUV光線を照射し、照射された生体サン プルから発せられる光子を測定するステップを含んでいる請求項5に記載の方法 。 15.抗体は単クローン抗体である請求項1に記載の方法。 16.抗体は多クローン抗体である請求項1に記載の方法。 17.生体サンプルは血液、唾液、組織、血清、粘膜、痰、尿、涙又は癌細胞を 含む物質である請求項1に記 載の方法。 18.生体サンプルは組織片である請求項1に記載の方法。 19.生体サンプルは、スライドの上に癌細胞を含む生体物質のスミアであり、 同定ステップは顕微鏡又はフルオロシメトリー用いてスミアを検査するステップ を含んでいる請求項1に記載の方法。 20.組織片は、固定組織、新鮮組織又は凍結組織のいづれから得られる請求項 18に記載の方法。 21.患者の体内にある癌細胞を処理する方法であって: AFPレセプター抗体を患者の癌細胞に導入するステップ;及び AFPレセプター抗体を癌細胞のAFPレセプターと反応させて、癌細胞の 成長を阻止したり、癌細胞を殺すステップ、 を有している患者の体内の癌細胞を処理する方法。 22.導入ステップはAFPレセプター抗体を患者に注入するステップを含んで いる請求項21に記載の方法。 23.注入ステップは、患者の血流にAFPレセプター抗体を静脈注射するステ ップを含んでいる請求項22に記載の方法。 24.注入ステップは、AFPレセプター抗体を、患者の体内の癌細胞に近い部 位に注入するステップを含ん でいる請求項22に記載の方法。 25.導入ステップは、患者に抗癌細胞ワクチンを接種するステップを含んでい る請求項21に記載の方法。 26.ワクチン接種ステップは、患者と異なる種のAFPレセプターを患者の体 内に注入することにより、注入されたAFPレセプターに抗するAFPレセプタ ー抗体を患者自身によって生成させるステップを含んでおり、患者自身によって 生成されたAFPレセプター抗体は、患者の体内の癌細胞のAFPレセプターと 交差反応を起こさせる請求項25に記載の方法。 27.反応ステップは、患者の癌細胞のAFPレセプターをAFPレセプター抗 体と反応させるステップを含んでおり、癌細胞のAFPレセプターはブロックさ れるか、またはその機能が弱められる請求項21に記載の方法。 28.AFPレセプター抗体は、補体を結合させるAFPレセプター抗体であり 、反応ステップは、補体を結合させるAFPレセプター抗体と癌細胞を反応させ るステップを含んでおり、補体の連鎖反応が起こる時、癌細胞の膜に穴があけら れ、癌細胞が殺される請求項21に記載の方法。 29.AFPレセプター抗体は、薬物又は毒物と共役させられ、反応ステップは 、薬物又は毒物と共役させられたAFPレセプター抗体を癌細胞と反応させるス テ ップを含んでおり、癌細胞が薬物又は毒物を取り込み、そこで癌細胞の酵素が薬 物又は毒物を抗体から切り離し、これによって細胞が不可逆的に破壊され、殺さ れるようにしている請求項21に記載の方法。 30.AFPレセプター抗体は放射性物質で標識され、反応ステップは、標識A FPレセプター抗体を患者の癌細胞と反応させるステップを含んでおり、癌細胞 のDNA近傍位置で、標識AFPレセプター抗体から出る放射能がDNAを破壊 し、癌細胞を死に導くようにしている請求項21に記載の方法。 31.抗体は、単クローン抗体、多クローン抗体、患者と異なる種からの抗体、 又は患者と同じ種のリンパ球から生体外で作られた抗体である請求項21に記載 の方法。 32.患者を監視する方法であって: 患者の癌を処理するステップ; 処理を施した後、患者のAFPレセプター部位のレベルを所定間隔で検査す るステップ、 を有している患者の監視方法。 33.患者を処理する方法であって: 患者のAFPレセプターを検査するステップ; 検査の結果、患者の体内にAFPレセプターが存在することがわかると、A FPレセプター抗体又はAFPを患者の体内に導入して、患者の癌細胞と反応さ せ るステップ、 を有している患者の処理方法。 34.患者の体内の癌細胞を処理する方法であって: 変性AFPを患者の癌細胞に導入するステップ;及び その変性AFPを癌細胞のAFPレセプターと反応させて、癌細胞の成長を 阻止したり、癌細胞を殺すステップ、 を有している患者の癌細胞の処理方法。 35.導入ステップは、変性AFPを患者に注入するステップを含んでいる請求 項34に記載の方法。 36.注入ステップは、変性AFPを患者の血流に静脈注射するステップを含ん でいる請求項35に記載の方法。 37.注入ステップは、患者の癌細胞に近い部位に、変性AFPを注入するステ ップを含んでいる請求項35に記載の方法。 38.反応ステップは、患者の癌細胞のAFPレセプターを変性AFPと反応さ せるステップを含んでおり、癌細胞のAFPレセプター部位がブロックされるか 、又はその機能が弱められるようにしている請求項34に記載の方法。 39.変性AFPは、合成によって作られるか、又はAFPの一部である請求項 34に記載の方法。[Claims] 1. A method for detecting cancer in a patient's body,     A labeled antibody or labeled AFP is introduced into a patient's biological sample, and the labeled antibody or labeled AFP binds AFP receptor or AFP receptor in a patient's biological sample. Reacting with the combined site;     AFP receptor reacted with labeled antibody or labeled AFP in a biological sample or Examining the presence of cancer by identifying the binding site of the AFP receptor ,   A method for detecting cancer in a patient's body, comprising: 2. Claiming that there is a step of obtaining a biological sample from the patient's body before the introducing step Item 1. The method according to Item 1. 3. The introduction step is performed using an antibody or radioisotope labeled with a radioisotope. Introducing AFP labeled with a loop into a patient's biological sample allows the Alternatively, a step of reacting labeled AFP with an AFP receptor binding site in a biological sample. The method of claim 1, comprising a tip. 4. The introducing step may be an enzyme-labeled antibody or an enzyme-labeled AFP receptor. The labeled antibody or labeled AFP is produced by introducing the Reacting with the binding site of the AFP receptor in a body sample The method of claim 1. 5. The introduction step includes an antibody labeled with a fluorescent dye or an AF labeled with a fluorescent dye. By introducing a P receptor into a patient biological sample, the labeled antibody or labeled A Reacting the FP with the binding site of the AFP receptor in the biological sample. The method of claim 1, wherein 6. The identifying step includes identifying radioactivity present in the biological sample. 4. The method according to claim 3, wherein the method comprises: 7. The identifying step includes measuring the amount of radioactivity in the biological sample. 4. The method according to claim 3, wherein 8. The identification step involves coating the biological sample with a photographic emulsion, And a step of developing the sample and observing the coated biological sample. The method of claim 6. 9. The biological sample is the patient himself, and the introduction step involves giving the patient a radioisotope Step for injecting an antibody labeled with an antibody or an AFP labeled with a radioisotope 7. The method of claim 6, comprising a step. 10. Enzyme-labeled antibody or enzyme-labeled AFP can be used to detect the color of a biological sample. The identification step compares the color of the biological sample with a known color. 5. The method of claim 4, comprising determining the presence of cancer. 11. The enzyme is peroxidase and the introduction step is labeled with peroxidase. 11. The method of claim 10, comprising introducing the identified antibody into the patient's tissue. Method. 12. The introduction step involves transferring a drop of biological sample onto nitrocellulose or nylon. And adding a peroxidase-labeled antibody to that position. Wherein the identifying step includes the step of locating the position on nitrocellulose or nylon. 11. The method of claim 10, including the step of determining whether the location has changed color. 13. An enzyme-labeled antibody or an enzyme-labeled AFP contains a biological sample. Releasing ions that change the conductivity of the solution in solution, and Measuring the electrical power to determine if cancer is present in the biological sample. 5. The method of claim 4, wherein the method comprises: 14. The identification step includes irradiating the biological sample with UV light and irradiating the irradiated biological sample. 6. The method according to claim 5, including the step of measuring photons emitted from the pull. . 15. The method according to claim 1, wherein the antibody is a monoclonal antibody. 16. The method according to claim 1, wherein the antibody is a polyclonal antibody. 17. Biological samples include blood, saliva, tissue, serum, mucous membranes, sputum, urine, tears or cancer cells. Claim 1 which is a substance containing The method described. 18. The method according to claim 1, wherein the biological sample is a tissue piece. 19. The biological sample is a smear of biological material containing cancer cells on a slide, The identification step is a step of examining smear using a microscope or fluorosymmetry. The method of claim 1 comprising: 20. Claims wherein the tissue piece is obtained from any of fixed tissue, fresh tissue or frozen tissue. 19. The method according to 18. 21. A method of treating cancer cells in a patient's body, comprising:     Introducing an AFP receptor antibody into the cancer cells of the patient; and     AFP receptor antibody reacts with AFP receptor of cancer cells to Stopping growth or killing cancer cells,   A method for treating cancer cells in the body of a patient having 22. The introducing step includes injecting the AFP receptor antibody into the patient. 22. The method of claim 21, wherein 23. The infusion step involves intravenously injecting the AFP receptor antibody into the patient's bloodstream. 23. The method of claim 22, comprising a tip. 24. In the injecting step, the AFP receptor antibody is injected into a portion of the patient's body close to cancer cells. Including the step of injecting 23. The method of claim 22, wherein 25. The introduction step includes vaccinating the patient with an anti-cancer cell vaccine. 22. The method according to claim 21. 26. The vaccination step involves the use of a different species of AFP receptor from the patient's body. AFP receptor against injected AFP receptor by injecting into it -Generating antibodies by the patient himself, The generated AFP receptor antibody interacts with the AFP receptor of cancer cells in the patient's body. 26. The method of claim 25, wherein cross-reaction occurs. 27. The reaction step comprises the step of reacting the AFP receptor of the patient's cancer cells with the AFP receptor. Reacting with the body, wherein the AFP receptor of the cancer cells is blocked. 22. The method of claim 21, wherein the function is reduced or the function is reduced. 28. AFP receptor antibody is an AFP receptor antibody that binds complement The reaction step comprises reacting the cancer cells with an AFP receptor antibody that binds complement. Punctures the cancer cell membrane when the complement chain reaction occurs. 22. The method of claim 21, wherein the cancer cells are killed. 29. The AFP receptor antibody is conjugated to a drug or toxicant and the reaction step is For reacting an AFP receptor antibody conjugated to a drug or toxicant with cancer cells Te Cancer cells take up drugs or toxins, where cancer cell enzymes Separate the object or poison from the antibody, which irreversibly destroys and kills cells 22. The method of claim 21, wherein the method is adapted to 30. The AFP receptor antibody is labeled with a radioactive substance and the reaction step is labeled A Reacting the FP receptor antibody with a cancer cell of the patient, wherein the cancer cell Radioactivity from labeled AFP receptor antibody destroys DNA near the DNA 22. The method according to claim 21, wherein the cancer cells are caused to die. 31. Antibodies include monoclonal antibodies, polyclonal antibodies, antibodies from different species than patients, 22. An antibody produced in vitro from lymphocytes of the same species as the patient. the method of. 32. How to monitor a patient,     Treating the patient's cancer;     After the treatment, the level of the AFP receptor site of the patient is examined at predetermined intervals. Steps,   A method for monitoring a patient having 33. A method of treating the patient:     Testing the patient's AFP receptor;     As a result of the test, it is found that the AFP receptor is present in the patient's body. FP receptor antibody or AFP is introduced into the patient's body and reacts with the patient's cancer cells. Let Steps,   A method for treating a patient having the following. 34. A method of treating cancer cells in a patient's body, comprising:     Introducing the modified AFP into cancer cells of the patient; and     The denatured AFP reacts with the AFP receptor of the cancer cell to increase the growth of the cancer cell. Blocking or killing cancer cells,   A method for treating cancer cells of a patient having 35. Claims wherein the introducing step comprises injecting the modified AFP into the patient. Item 34. The method according to Item 34. 36. The injecting step includes injecting the modified AFP intravenously into the patient's bloodstream. 36. The method of claim 35, wherein 37. The injecting step involves injecting the modified AFP into a site near the patient's cancer cells. 36. The method of claim 35, comprising a tip. 38. The reaction step involves reacting the AFP receptor of the patient's cancer cells with the modified AFP. Whether the AFP receptor site of the cancer cell is blocked 35. The method of claim 34, wherein the function is reduced. 39. The modified AFP is made synthetically or is part of an AFP. 35. The method of claim 34.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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JP2017513902A (en) * 2014-04-25 2017-06-01 ザ ブリガム アンド ウィメンズ ホスピタル インコーポレイテッドThe Brigham and Women’s Hospital, Inc. Method for manipulating alpha-fetoprotein (AFP)

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JP2017513902A (en) * 2014-04-25 2017-06-01 ザ ブリガム アンド ウィメンズ ホスピタル インコーポレイテッドThe Brigham and Women’s Hospital, Inc. Method for manipulating alpha-fetoprotein (AFP)

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