JPH11225787A - Production of 3,4-dihydroxybenzoic acid - Google Patents
Production of 3,4-dihydroxybenzoic acidInfo
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- JPH11225787A JPH11225787A JP3620398A JP3620398A JPH11225787A JP H11225787 A JPH11225787 A JP H11225787A JP 3620398 A JP3620398 A JP 3620398A JP 3620398 A JP3620398 A JP 3620398A JP H11225787 A JPH11225787 A JP H11225787A
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Abstract
Description
【0001】[0001]
【発明の属する技術分野】本発明は医薬の中間体として
有用な3,4−ジヒドロキシ安息香酸の製造法に関す
る。The present invention relates to a process for producing 3,4-dihydroxybenzoic acid, which is useful as a pharmaceutical intermediate.
【0002】[0002]
【従来の技術】3,4−ジヒドロキシ安息香酸は、3,
4−ジヒドロキシベンゾイル基を有する種々の化合物、
特に医薬等の中間体として有用である。2. Description of the Related Art 3,4-Dihydroxybenzoic acid is
Various compounds having a 4-dihydroxybenzoyl group,
It is particularly useful as an intermediate for pharmaceuticals and the like.
【0003】この3,4−ジヒドロキシ安息香酸の製造
法としては、化学合成反応によるものと、微生物を用い
た酵素反応によるものとがある。これらのうち、微生物
を用いた方法は、化学合成反応による方法に比べ、反応
が常温常圧の穏和な条件で進行すること、有害な触媒を
使用しないことなど省エネルギーで安全性の高い方法で
ある。微生物を用いた3,4−ジヒドロキシ安息香酸の
製造法としては、グルコースをコリネバクテリウム属の
菌に作用させる方法、イソフタル酸やバニリンをシュー
ドモナス属の菌に作用させる方法等が知られている。As a method for producing this 3,4-dihydroxybenzoic acid, there are a method based on a chemical synthesis reaction and a method based on an enzymatic reaction using a microorganism. Among them, the method using microorganisms is a more energy-saving and safer method, as compared with the method using a chemical synthesis reaction, in that the reaction proceeds under mild conditions of normal temperature and normal pressure, and no harmful catalyst is used. . As a method for producing 3,4-dihydroxybenzoic acid using a microorganism, a method of causing glucose to act on a bacterium of the genus Corynebacterium, a method of causing isophthalic acid or vanillin to act on a bacterium of the genus Pseudomonas, and the like are known.
【0004】[0004]
【発明が解決しようとする課題】しかしながら、これら
の微生物を用いる方法は、3,4−ジヒドロキシ安息香
酸の収率が低く、また原料以外に高価な栄養源を必要と
することから、工業的に利用できるものではなかった。
従って、本発明は、原料からの変換効率が高く、かつ安
価な、微生物を用いた3,4−ジヒドロキシ安息香酸の
製造法を提供することにある。However, the method using these microorganisms has a low yield of 3,4-dihydroxybenzoic acid and requires an expensive nutrient source in addition to the raw material. It was not available.
Accordingly, an object of the present invention is to provide a method for producing 3,4-dihydroxybenzoic acid using microorganisms, which has high conversion efficiency from raw materials and is inexpensive.
【0005】[0005]
【課題を解決するための手段】そこで本発明者らはバニ
リンやバニリン酸を炭素源として利用する微生物を探索
し、その代謝過程を研究してきたところ、バニリン酸の
メチル基脱離反応を触媒する酵素によりバニリン酸から
3,4−ジヒドロキシ安息香酸が生成し、その後3,4
−ジヒドロキシ安息香酸は開裂酵素によりそのベンゼン
環が開裂してしまうことが判明した。そして更に研究を
重ねた結果、スフィンゴモナス属に属し、バニリン酸の
メチル基脱離反応を触媒する酵素活性を有する微生物か
ら、組み換えDNA技術を用いて3,4−ジヒドロキシ
安息香酸の開裂酵素活性を消失せしめることに成功し、
かかる新規微生物を用いればバニリン又はバニリン酸か
ら極めて効率よく3,4−ジヒドロキシ安息香酸が得ら
れることを見出し、本発明を完成するに至った。The present inventors have searched for microorganisms that utilize vanillin or vanillic acid as a carbon source and studied the metabolic processes thereof, and found that they catalyze the methyl group elimination reaction of vanillic acid. Enzyme produces 3,4-dihydroxybenzoic acid from vanillic acid and then 3,4
-Dihydroxybenzoic acid was found to have its benzene ring cleaved by a cleavage enzyme. As a result of further studies, it was found that a microorganism belonging to the genus Sphingomonas, which has an enzymatic activity to catalyze the methyl group elimination reaction of vanillic acid, was able to use a recombinant DNA technique to cleave the enzyme activity of 3,4-dihydroxybenzoic acid. Succeeded in making it disappear,
Using such a novel microorganism, it has been found that 3,4-dihydroxybenzoic acid can be obtained extremely efficiently from vanillin or vanillic acid, and the present invention has been completed.
【0006】すなわち、本発明は、スフィンゴモナス属
に属し、バニリン酸のメチル基脱離反応を触媒する酵素
活性を有し、かつ3,4−ジヒドロキシ安息香酸の開裂
酵素活性を有さない微生物に、バニリン又はバニリン酸
を接触させることを特徴とする3,4−ジヒドロキシ安
息香酸の製造法を提供するものである。That is, the present invention relates to a microorganism belonging to the genus Sphingomonas and having an enzymatic activity for catalyzing a methyl group elimination reaction of vanillic acid and having no 3,4-dihydroxybenzoic acid cleaving enzyme activity. A process for producing 3,4-dihydroxybenzoic acid, comprising contacting vanillin, vanillin or vanillic acid.
【0007】また、本発明は、スフィンゴモナス属に属
し、バニリン酸のメチル基脱離反応を触媒する酵素活性
を有し、かつ3,4−ジヒドロキシ安息香酸の開裂酵素
活性を有さない微生物を提供するものである。Further, the present invention relates to a microorganism belonging to the genus Sphingomonas and having an enzymatic activity for catalyzing a methyl group elimination reaction of vanillic acid and having no enzymatic activity for cleaving 3,4-dihydroxybenzoic acid. To provide.
【0008】[0008]
【発明の実施の形態】本発明に用いられる微生物は、上
記の如くスフィンゴモナス属に属し、バニリン酸のメチ
ル基脱離反応を触媒する酵素活性を有し、3,4−ジヒ
ドロキシ安息香酸の開裂酵素活性を有さない微生物であ
れば、野生株でも突然変異株でも特に制限されないが、
スフィンゴモナス属に属し、バニリン酸のメチル基脱離
反応を触媒する酵素活性を有する微生物から、組み換え
DNA技術により3,4−ジヒドロキシ安息香酸の開裂
酵素活性を消失せしめた組み換え微生物が特に好まし
い。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The microorganism used in the present invention belongs to the genus Sphingomonas as described above, has an enzymatic activity for catalyzing the methyl group elimination reaction of vanillic acid, and cleaves 3,4-dihydroxybenzoic acid. As long as it is a microorganism having no enzyme activity, it is not particularly limited, whether it is a wild strain or a mutant strain,
Among microorganisms belonging to the genus Sphingomonas and having an enzymatic activity of catalyzing a methyl group elimination reaction of vanillic acid, recombinant microorganisms in which 3,4-dihydroxybenzoic acid cleaving enzyme activity has been eliminated by recombinant DNA technology are particularly preferred.
【0009】このような組み換え微生物としては、シリ
ンガアルデヒド又はシリンガ酸を単一炭素源として生育
可能な微生物であることが好ましい。なぜなら、これら
の化合物は、パルプ製造廃液中に存在するので、当該廃
液を含む培地でこの微生物を培養すれば、シリンガアル
デヒドやシリンガ酸をエネルギー源とし、バニリン又は
バニリン酸から3,4−ジヒドロキシ安息香酸が生成す
るからである。[0009] Such a recombinant microorganism is preferably a microorganism that can grow using syringaldehyde or syringic acid as a single carbon source. Because these compounds are present in pulp manufacturing wastewater, if this microorganism is cultured in a medium containing the wastewater, syringaldehyde or syringic acid is used as an energy source, and vanillin or vanillic acid is converted to 3,4-dihydroxy. This is because benzoic acid is generated.
【0010】すなわち、資源の有効利用が求められる
中、未利用のバイオマスの有効利用が切望されている。
その中でもバイオマスとして大量に存在するリグニン
は、パルプ製造工程から様々な芳香族化合物資源を含む
残渣として大量に放出されている。これらパルプ製造廃
液中には使用する樹種・パルプ化法によっても異なる
が、バニリン、バニリン酸、シリンガアルデヒド、シリ
ンガ酸などが多く含まれている。パルプ製造廃液の利用
方法としては、廃液中に含まれる糖類を利用しての酵母
類の培養などが行われているが、芳香族化合物資源は更
に廃液として放出される。この発酵廃液からバニリンの
みを製造する方法も知られているが、大部分が濃縮後焼
却されているにすぎない。パルプ製造廃液中に存在する
バニリン、バニリン酸、シリンガアルデヒド、シリンガ
酸などを原料に有用物質を製造する方法が切望されてい
る。このような観点から、上記の性質を有する微生物が
特に好ましいのである。[0010] That is, while effective utilization of resources is required, effective utilization of unused biomass is strongly desired.
Among them, lignin, which is present in a large amount as biomass, is released in a large amount as a residue containing various aromatic compound resources from a pulp production process. These pulp manufacturing effluents contain a large amount of vanillin, vanillic acid, syringaldehyde, syringic acid, etc., depending on the tree species and pulping method used. As a method of using pulp production waste liquid, culture of yeasts and the like using saccharides contained in the waste liquid is performed, but aromatic compound resources are further released as waste liquid. A method of producing only vanillin from this fermentation waste liquid is also known, but most of the concentrated liquid is simply incinerated after concentration. There is a long-felt need for a method for producing a useful substance using vanillin, vanillic acid, syringaldehyde, syringic acid, etc., which are present in a pulp manufacturing waste liquid. From such a viewpoint, microorganisms having the above properties are particularly preferable.
【0011】このような組み換え微生物を作製するため
の野生株としては、スフィンゴモナス属に属し、バニリ
ンのメチル基脱離反応を触媒する酵素活性を有し、かつ
3,4−ジヒドロキシ安息香酸の開裂酵素活性を有する
微生物であれば、特に制限されないが、更にバニリン、
バニリン酸、シリンガアルデヒド、シリンガ酸を単一炭
素源として生育可能な菌株が好ましい。このような性質
を有する菌株としては、スフィンゴモナス エスピー.
CR−0300100株を例示することができる。当該
CR−0300100株は、例えば土壌中よりバニリ
ン、バニリン酸、シリンガアルデヒド、シリンガ酸を炭
素源として含有する培地で集積培養することで得られ
る。このように土壌より分離したバニリン、バニリン
酸、シリンガアルデヒド、シリンガ酸を単一炭素源とし
て生育できる微生物のうち、3,4−ジヒドロキシ安息
香酸を開裂によって代謝する微生物を選ぶ。このような
微生物は以下のように判定される。A wild strain for producing such a recombinant microorganism belongs to the genus Sphingomonas, has an enzymatic activity for catalyzing the methyl group elimination reaction of vanillin, and cleaves 3,4-dihydroxybenzoic acid. The microorganism is not particularly limited as long as it is a microorganism having an enzymatic activity.
A strain that can grow using vanillic acid, syringaldehyde, or syringic acid as a single carbon source is preferred. Strains having such properties include Sphingomonas sp.
The CR-0300100 strain can be exemplified. The CR-0300100 strain can be obtained by, for example, enrichment culture from soil in a medium containing vanillin, vanillic acid, syringaldehyde, and syringic acid as a carbon source. Among the microorganisms that can grow using vanillin, vanillic acid, syringaldehyde, and syringic acid as a single carbon source isolated from the soil, a microorganism that metabolizes 3,4-dihydroxybenzoic acid by cleavage is selected. Such a microorganism is determined as follows.
【0012】バニリン、バニリン酸、シリンガアルデヒ
ド、シリンガ酸を単一炭素源として生育できる微生物を
適当な培地で培養し、集菌し、菌体を適当な緩衝液に懸
濁し、超音波破砕機などを用いて細胞を破砕する。これ
を遠心して得られた上清を0.01〜10mM、好ましく
は、0.1〜2mMの3,4−ジヒドロキシ安息香酸を含
む緩衝液に添加する。1〜30分間、30℃でインキュ
ベーションした後に、2Mの水酸化ナトリウムを添加
し、黄色の発色の有無を調べる。黄色の発色は、3,4
−ジヒドロキシ安息香酸の開裂物質(特にメタ開裂物
質)の生成を意味する。A microorganism capable of growing using vanillin, vanillic acid, syringaldehyde, or syringic acid as a single carbon source is cultured in a suitable medium, collected, suspended in a suitable buffer, and sonicated. Crush the cells using a method such as The supernatant obtained by centrifugation is added to a buffer containing 0.01 to 10 mM, preferably 0.1 to 2 mM 3,4-dihydroxybenzoic acid. After incubation for 1 to 30 minutes at 30 ° C., 2M sodium hydroxide is added and the presence of yellow color development is examined. The yellow color is 3, 4
-Means the formation of dihydroxybenzoic acid cleaving substances, in particular meta-cleaving substances.
【0013】このような菌株から組み換えDNA技術に
より3,4−ジヒドロキシ安息香酸の開裂酵素活性を消
失した菌株を作製するには、まず、上記菌株からDNA
を抽出し、このDNAの制限酵素断片をプラスミドベク
ターに連結し、大腸菌等の微生物内に形質転換して、
3,4−ジヒドロキシ安息香酸の開裂酵素遺伝子を有す
るプラスミドを選択する。該プラスミドを制限酵素処理
し、再連結させたときに3,4−ジヒドロキシ安息香酸
の開裂活性の消失したプラスミドを選択し、このプラス
ミドをスフィンゴモナス属の微生物に取り込ませること
により行うことができる。より詳細には次の如くして行
うことができる。 (1)まず、例えばCR−0300100株からDNA
を抽出し、適当な制限酵素で切断する。これを、例えば
pUC18、pKT230などのプラスミドベクターに
連結し、大腸菌内に形質転換する。このようにして構築
された組み換え大腸菌は、CR−0300100株のゲ
ノムの様々な断片をプラスミドベクターに持つ集合体と
して得られる。大腸菌の集合体を寒天プレートなどに展
開して、個々のコロニーに分離し、適当な培地を含む9
6穴マイクロプレートなどで培養する。次に培養液にリ
ゾチームなどの細胞壁を穏和に溶解する酵素を添加し、
細胞内容物を菌体外に漏出させる。ここで添加するリゾ
チームなどは細胞壁を溶解する濃度であればいかなる濃
度でもよい。次に、3,4−ジヒドロキシ安息香酸を含
む水溶液を添加し、しばらくインキュベートし、水酸化
ナトリウム水溶液を添加する。ここで、添加する3,4
−ジヒドロキシ安息香酸は、0.01〜10mM、好まし
くは0.1〜2mM程度がよく、インキュベート時間は、
1分〜数時間、好ましくは3分〜30分が適当である。
また、添加する水酸化ナトリウム水溶液は、最終的にpH
が10以上になれば良い。In order to produce a strain from such a strain which has lost the enzyme activity of cleaving 3,4-dihydroxybenzoic acid by recombinant DNA technology, first, a DNA is prepared from the above strain.
Is extracted, the restriction enzyme fragment of this DNA is ligated to a plasmid vector, and transformed into a microorganism such as Escherichia coli,
A plasmid having a 3,4-dihydroxybenzoic acid cleavage enzyme gene is selected. The plasmid can be treated with a restriction enzyme and religated to select a plasmid that has lost the cleavage activity of 3,4-dihydroxybenzoic acid, and the plasmid is incorporated into a microorganism of the genus Sphingomonas. More specifically, it can be performed as follows. (1) First, for example, DNA from CR-03001100 strain
And cut with an appropriate restriction enzyme. This is ligated to a plasmid vector such as pUC18 or pKT230, and transformed into Escherichia coli. The recombinant Escherichia coli thus constructed can be obtained as an aggregate having various fragments of the genome of the CR-03001100 strain in a plasmid vector. The aggregate of Escherichia coli is spread on an agar plate or the like, separated into individual colonies, and containing an appropriate medium.
Culture in a 6-well microplate or the like. Next, an enzyme such as lysozyme that gently dissolves the cell wall is added to the culture solution,
The cell contents leak out of the cells. Lysozyme and the like added here may be of any concentration as long as it dissolves the cell wall. Next, an aqueous solution containing 3,4-dihydroxybenzoic acid is added, incubated for a while, and an aqueous sodium hydroxide solution is added. Here, 3, 4
-Dihydroxybenzoic acid is 0.01 to 10 mM, preferably about 0.1 to 2 mM, and the incubation time is:
One minute to several hours, preferably 3 minutes to 30 minutes is appropriate.
In addition, the aqueous sodium hydroxide solution to be added
Should be 10 or more.
【0014】(2)このように、3,4−ジヒドロキシ
安息香酸を添加し、その後、水酸化ナトリウム水溶液の
添加によってpHが10以上としたとき上記大腸菌の集合
体の中から黄色の発色を示すものが区別される。黄色の
発色は、3,4−ジヒドロキシ安息香酸のメタ開裂物質
の生成を意味する。このようにして区別された大腸菌の
持つプラスミド中には3,4−ジヒドロキシ安息香酸の
メタ開裂酵素遺伝子が含まれている。このようにして得
られたプラスミドとしてpPX150を例示することが
できる。(2) As described above, when 3,4-dihydroxybenzoic acid is added and then the pH is adjusted to 10 or more by adding an aqueous solution of sodium hydroxide, a yellow color is produced from the E. coli aggregate. Things are distinguished. The yellow coloration indicates the formation of a meta-cleavable substance of 3,4-dihydroxybenzoic acid. The plasmid of Escherichia coli thus distinguished contains a meta-cleaving enzyme gene of 3,4-dihydroxybenzoic acid. An example of the plasmid thus obtained is pPX150.
【0015】(3)次にこのようにして得られたプラス
ミドを適当な制限酵素で切断し、再連結させたときに
3,4−ジヒドロキシ安息香酸のメタ開裂酵素活性(黄
色の発色)の消失したプラスミドを作成する。このよう
にして得られたプラスミドとしてpPX151を例示す
ることができる。(3) Next, the plasmid thus obtained is cleaved with an appropriate restriction enzyme and re-ligated, so that the meta-cleaving enzyme activity of 3,4-dihydroxybenzoic acid (yellow color development) disappears. A plasmid is prepared. PPX151 can be exemplified as the plasmid thus obtained.
【0016】(4)次に、CR−0300100株が感
受性であるような抗生物質に対する耐性遺伝子を上記制
限酵素で切断したプラスミドと連結した新たなプラスミ
ドを作成する。pPX151をもとに、抗生物質耐性遺
伝子としてカナマイシン耐性遺伝子として用いて作成し
たプラスミドとして、pPX152を例示することがで
きる。(4) Next, a new plasmid is prepared by ligating an antibiotic-resistant gene to which CR-0300100 strain is susceptible with the above-mentioned restriction enzyme-cleaved plasmid. pPX152 can be exemplified as a plasmid prepared using kanamycin resistance gene as an antibiotic resistance gene based on pPX151.
【0017】(5)次に、上記によって作成したプラス
ミドから適当な制限酵素を用いてベクター部分と挿入部
分を分離する。分離された挿入部分のDNAをCR−0
300100株のコンピテント細胞を混合し、DNAを
細胞内に取り込ませる。このような方法として、エレク
トロポレーション法を挙げることができる。このように
DNAを取り込ませた細胞を適当な培地で数時間培養
し、抗生物質(この場合カナマイシン)を含む寒天プレ
ート上に展開し、カナマイシンに耐性なコロニーを得
る。このようにして得られたカナマイシン耐性株は、
3,4−ジヒドロキシ安息香酸のメタ開裂酵素活性(黄
色の発色)を完全に消失している。(5) Next, the vector part and the inserted part are separated from the plasmid prepared above using an appropriate restriction enzyme. The DNA of the inserted insertion was separated into CR-0
The 300,100 competent cells are mixed and the DNA is incorporated into the cells. An example of such a method is an electroporation method. The cells having the DNA incorporated therein are cultured in an appropriate medium for several hours and spread on an agar plate containing an antibiotic (in this case, kanamycin) to obtain colonies resistant to kanamycin. The kanamycin resistant strain thus obtained is
The meta-cleaving enzyme activity of 3,4-dihydroxybenzoic acid (yellow color development) has completely disappeared.
【0018】CR−0300100株を用いて上記操作
を行って得られた菌株の例としてはCR−031020
1株(FERM P−16624)が挙げられる。この
CR−0310201株は、スフィンゴモナス属に属
し、バニリン酸のメチル基脱離反応を触媒する酵素活性
を有し、3,4−ジヒドロキシ安息香酸のメタ開裂酵素
活性を有さない株であり、かつシリンガアルデヒド又は
シリンガ酸を単一炭素源として生育可能である。An example of a strain obtained by performing the above operation using strain CR-03001100 is CR-031020.
1 strain (FERM P-16624). This CR-0310201 strain belongs to the genus Sphingomonas, has an enzymatic activity of catalyzing a methyl group elimination reaction of vanillic acid, and has no meta-cleaving enzyme activity of 3,4-dihydroxybenzoic acid, And it can grow using syringaldehyde or syringic acid as a single carbon source.
【0019】上記本菌株を用いてバニリン又はバニリン
酸から3,4−ジヒドロキシ安息香酸を製造するには、
本菌株にバニリン又はバニリン酸を接触させればよい
が、好ましくはバニリン又はバニリン酸を含有し、バニ
リン又はバニリン酸に加えて、シリンガアルデヒド又は
シリンガ酸を含有する培地で、本菌株を培養し、該培養
物から3,4−ジヒドロキシ安息香酸を採取することに
より行われる。In order to produce 3,4-dihydroxybenzoic acid from vanillin or vanillic acid using the above strain,
The strain may be brought into contact with vanillin or vanillic acid, but it is preferable that the strain be cultured in a medium containing vanillin or vanillic acid, in addition to vanillin or vanillic acid, containing syringaldehyde or syringic acid. , By collecting 3,4-dihydroxybenzoic acid from the culture.
【0020】培養条件は、本菌株が生育可能な条件であ
れば特に制限されないが、pH5〜8、20〜37℃で2
5〜32時間が好ましい。また、培地には、上記成分の
外、窒素源、ビタミン類等を添加することができる。培
養物から3,4−ジヒドロキシ安息香酸を分離するに
は、例えば有機溶媒による抽出等により行われる。Culture conditions are not particularly limited as long as the strain can grow, but the pH is 5 to 8, and the temperature is 2 to 37 ° C.
5 to 32 hours are preferred. In addition to the above components, a nitrogen source, vitamins, and the like can be added to the medium. In order to separate 3,4-dihydroxybenzoic acid from the culture, for example, extraction with an organic solvent is performed.
【0021】[0021]
【実施例】次に実施例を挙げて本発明をより詳細に説明
するが、本発明はこれにより何ら制限されるものではな
い。The present invention will be described in more detail with reference to the following examples, which should not be construed as limiting the present invention.
【0022】実施例1 (1)21mm試験管に0.2%のシリンガ酸を含む表1
の組成の培地を10ml調製し、土壌サンプルを0.5g
ずつ入れ、30℃で3日間培養した。Example 1 (1) Table 1 containing 0.2% syringic acid in a 21 mm test tube
10 ml of a medium having the composition of
And cultured at 30 ° C. for 3 days.
【0023】[0023]
【表1】 [Table 1]
【0024】(2)次に、上記を約5分間静置し、僅か
に濁った上清0.1mlを(1)と同じ組成の新しい試験
管に植え継ぎ、30℃で3日間培養した。 (3)上記操作を1〜2回繰り返し、最後の上清を滅菌
した蒸留水に適当に希釈し、0.2%のシリンガ酸を含
む表1の組成の寒天培地に展開し、30℃で3日間培養
し、コロニーを形成させた。 (4)上記コロニーを0.2%のバニリン酸を含む表1
の組成の寒天培地に爪楊枝を用いて接種して、生育して
くる菌株を得た。 (5)バニリン酸で生育した菌株を再び、0.2%のシ
リンガ酸を含む表1の組成の培地を10mlに植菌して、
30℃で3日間培養した。培養液を滅菌した蒸留水に適
当に希釈し、LB寒天培地に展開し、30℃で1日間培
養し、コロニーを形成させた。 (6)生じたコロニーを同じコロニーについて、0.2
%のバニリン酸及びシリンガ酸を含む表1の組成の2種
の寒天培地に爪楊枝を用いて接種して、生育してくる菌
株を得た。 (7)バニリン酸及びシリンガ酸を含む2種の寒天培地
でともに生育可能な菌株1株を得た。本菌株をCR−0
300100とし、菌学的性質を調べたところ、以下の
通りであった。(2) Next, the above was allowed to stand for about 5 minutes, and 0.1 ml of the slightly turbid supernatant was transferred to a new test tube having the same composition as (1) and cultured at 30 ° C. for 3 days. (3) The above operation was repeated once or twice, and the final supernatant was appropriately diluted in sterilized distilled water, developed on an agar medium having the composition shown in Table 1 containing 0.2% syringic acid, and heated at 30 ° C. After culturing for 3 days, colonies were formed. (4) Table 1 containing the colonies containing 0.2% vanillic acid
Using a toothpick to inoculate an agar medium having the following composition, a growing strain was obtained. (5) The strain grown with vanillic acid was again inoculated into 10 ml of a medium having the composition shown in Table 1 containing 0.2% syringic acid.
The cells were cultured at 30 ° C. for 3 days. The culture was appropriately diluted in sterile distilled water, spread on an LB agar medium, and cultured at 30 ° C. for 1 day to form a colony. (6) For the same colony, 0.2
% Of vanillic acid and syringic acid were used to inoculate two types of agar medium having the composition shown in Table 1 using a toothpick to obtain a growing strain. (7) One strain capable of growing on both types of agar medium containing vanillic acid and syringic acid was obtained. This strain is CR-0
When the mycological properties were examined based on 300100, the results were as follows.
【0025】 a、形態的特徴 ・細胞の大きさ形 0.5×1.1〜1.3μm 桿菌 ・胞子の有無 なし ・鞭毛 極鞭毛 ・運動性 +A, Morphological characteristics ・ Size of cell 0.5 × 1.1 to 1.3 μm Bacillus ・ Presence or absence of spores None ・ Flagella flagella flagella ・ Motility +
【0026】 b、寒天培地における生育状況 ・表1の培地において 円形のコロニー、光沢があり、黄色B, Growth condition on agar medium ・ In the medium of Table 1, circular colony, glossy, yellow
【0027】 c、生理学的性質 ・グラム染色性 − ・硝酸塩の還元 − ・ゼラチン溶解性 +弱い ・O−Fテスト O;+,F;− ・生育の範囲 pH5.0から7.5、10℃から40℃ ・炭素源の利用性 グルコース + シュークロース + ラクトース − グリセロール − スターチ − バニリン + バニリン酸 + シリンガアルデヒド + シリンガ酸 + ・シトクロームオキシダーゼ + ・カタラーゼ +C, physiological properties-Gram stainability--Reduction of nitrate--Gelatin solubility + weak-OF test O; +, F;--Growth range pH 5.0 to 7.5, 10 ° C To 40 ° C ・ Utilization of carbon source glucose + sucrose + lactose-glycerol-starch-vanillin + vanillic acid + syringaldehyde + syringic acid + • cytochrome oxidase + • catalase +
【0028】 d、化学分類学的性質 ・DNAのG/C含量(モル%) 68 ・キノンタイプ Q−10 ・色素 +(疎水性yellow pigment) ・細胞壁脂質 スフィンゴ脂質 e、その他の特性 ・3,4−ジヒドロキシ安息香酸酸化酵素 メタ開裂D, Chemical taxonomic properties-G / C content of DNA (mol%) 68-Quinone type Q-10-Dye + (hydrophobic yellow pigment)-Cell wall lipid Sphingolipid e, Other properties-3, 4-dihydroxybenzoic acid oxidase meta-cleavage
【0029】上記の性質から、CR−0300100株
はスフィンゴモナス(Sphingomonas)属と同定した。From the above-mentioned properties, the strain CR-03100100 was identified as a genus Sphingomonas .
【0030】実施例2 (1)実施例1で得られたスフィンゴモナス エスピ
ー.CR−0300100を100mlのLB培地(トリ
プトン10g、酵母エキス5g、塩化ナトリウム5g、
グルコース1g/L)を用いて30℃で24時間振とう
培養した。遠心にて菌体集菌後、Marmurの方法
(Marmur,J.1961.J.Mol.Bio
l.3:208−218)で全DNAを抽出し、常法に
より精製した。 (2)(1)で得たスフィンゴモナス エスピー CR
−0300100全DNAを制限酵素XhoI及びSp
hIで完全分解し、制限酵素SalI及びSphIで完
全に消化したベクタープラスミドpUC19と混合しT
4DNAリガーゼで処理して、ハイブリッドプラスミド
を形成させた。 (3)(2)で得たハイブリッドプラスミドを大腸菌H
B101株に形質転換し、100mg/Lのアンピシリン
を含むLB培地に、プレート1枚あたり200〜300
コロニーが出現するように塗布し、37℃で18時間培
養した。 (4)上記で得られたコロニーを100mg/Lのアンピ
シリンを含むLB培地に、プレート1枚あたり96個ず
つ継代し、これをマスタープレートとした。この操作で
合計2000株のコロニーを得た。それぞれを100mg
/Lのアンピシリンを含むLB培地を0.2ml調製した
96穴マイクロプレートに植菌した。37℃でマイクロ
プレートシェーカーを用いて振とう培養した。 (5)18時間培養後、それぞれのウェルに最終濃度が
50μg/mlとなるようにリゾチームを添加して、37
℃で2時間インキュベートした。次に3,4−ジヒドロ
キシ安息香酸の20mM溶液を各ウェルに2μlずつ添加
し、30℃で5分間インキュベートした。 (6)上記の処理を行った各ウェルに2Mの水酸化ナト
リウムを10μlずつ添加したところ、2000株中1
株において黄色の発色が見られた。 (7)黄色の発色のあった株からプラスミドを抽出し、
いくつかの制限酵素について切断パターンを調べたとこ
ろ、図1に示す構造であることがわかった。このプラス
ミドをpPX150と名付けた。Example 2 (1) Sphingomonas sp. CR-0300100 was added to 100 ml of LB medium (10 g of tryptone, 5 g of yeast extract, 5 g of sodium chloride,
(1 g / L of glucose) with shaking at 30 ° C. for 24 hours. After collecting cells by centrifugation, the method of Marmur (Marmur, J. 1961. J. Mol. Bio) is used.
l. 3: 208-218), and total DNA was extracted and purified by a conventional method. (2) Sphingomonas sp. CR obtained in (1)
0300100 Total DNA was digested with restriction enzymes XhoI and Sp
hI, completely digested with the restriction enzymes SalI and SphI, mixed with the vector plasmid pUC19, and
Treated with 4 DNA ligase to form a hybrid plasmid. (3) The hybrid plasmid obtained in (2) was
The B101 strain was transformed into an LB medium containing 100 mg / L ampicillin, and 200 to 300
The cells were spread so that colonies appeared, and cultured at 37 ° C. for 18 hours. (4) 96 colonies per plate were subcultured on an LB medium containing 100 mg / L ampicillin to obtain a master plate. By this operation, a total of 2000 colonies were obtained. 100mg each
A 0.2-ml LB medium containing / L of ampicillin was inoculated into a 96-well microplate. Shaking culture was performed at 37 ° C. using a microplate shaker. (5) After culturing for 18 hours, lysozyme was added to each well so that the final concentration was 50 μg / ml.
Incubated for 2 hours at ° C. Next, 2 μl of a 20 mM solution of 3,4-dihydroxybenzoic acid was added to each well and incubated at 30 ° C. for 5 minutes. (6) When 10 μl of 2 M sodium hydroxide was added to each well subjected to the above treatment, 1 out of 2000 strains was added.
Yellow color development was observed in the strain. (7) extracting the plasmid from the strain that had developed yellow color,
When the cleavage patterns of some restriction enzymes were examined, it was found that they had the structure shown in FIG. This plasmid was named pPX150.
【0031】実施例3 (1)pPX150を制限酵素ApaIで切断し、セル
フライゲーションしたプラスミドpPX151を作成し
た。このプラスミドで形質転換した大腸菌HB101株
及びpPX150で形質転換した大腸菌HB101株を
100mg/Lのアンピシリンを含むLB培地10mlで1
8時間培養し、集菌した。菌体を50mMのリン酸緩衝液
1mlに懸濁し、超音波破砕機を用いて細胞を破砕した。
これを5000gで20分間遠心して得られた上清20
μlを0.2mMの3,4−ジヒドロキシ安息香酸を含む
リン酸緩衝液1mlに添加した。5分間、30℃でインキ
ュベーションした後に、2Mの水酸化ナトリウムを0.
1ml添加したところ、pPX150で形質転換した大腸
菌HB101株では黄色の発色が見られたが、pPX1
51で形質転換した大腸菌HB101株では黄色の発色
が見られなかった。 (2)プラスミドpUC4K(ファルマシア バイオテ
ク社)を制限酵素EcoRIで消化し、bluntin
g kit(宝酒造社)を用いて平滑化し、1%アガロ
ースゲル電気泳動によって分離した。 (3)1.3kbpの断片を上記ゲルから切り出し、フ
ェノール抽出を3度行い、エタノール沈殿によりDNA
を精製した。 (4)pPX151を制限酵素ApaIで切断し、bl
unting kit(宝酒造社)を用いて平滑化し
た。これと上記(3)で得られたDNAを混合してli
gation kit(宝酒造社)を用いて連結反応を
行い、大腸菌HB101株に形質転換した。形質転換し
た大腸菌HB101株は、カナマイシンとアンピシリン
に対して耐性な菌株を選抜し、その株の保有するプラス
ミドとしてpPX152を得た(図1)。Example 3 (1) pPX150 was cut with a restriction enzyme ApaI to prepare a self-ligated plasmid pPX151. Escherichia coli HB101 strain transformed with this plasmid and Escherichia coli HB101 strain transformed with pPX150 were cultured in 10 ml of LB medium containing 100 mg / L ampicillin.
The cells were cultured for 8 hours and collected. The cells were suspended in 1 ml of a 50 mM phosphate buffer, and the cells were disrupted using an ultrasonic disrupter.
This was centrifuged at 5000 g for 20 minutes and the supernatant 20 obtained.
μl was added to 1 ml of phosphate buffer containing 0.2 mM 3,4-dihydroxybenzoic acid. After 5 minutes incubation at 30 ° C., 2 M sodium hydroxide was added to 0.1 ml.
When 1 ml was added, yellow color was observed in the E. coli HB101 strain transformed with pPX150.
No yellow color was observed in the E. coli HB101 strain transformed in No. 51. (2) Plasmid pUC4K (Pharmacia Biotech) was digested with restriction enzyme EcoRI and bluntin was digested.
The resultant was blunted using g kit (Takara Shuzo) and separated by 1% agarose gel electrophoresis. (3) A 1.3 kbp fragment was excised from the gel, phenol extracted three times, and DNA was precipitated by ethanol precipitation.
Was purified. (4) pPX151 is cut with a restriction enzyme ApaI and bl
Smoothing was performed using unting kit (Takara Shuzo). This is mixed with the DNA obtained in the above (3) and mixed.
A ligation reaction was carried out using Gation kit (Takara Shuzo) to transform Escherichia coli strain HB101. From the transformed Escherichia coli HB101 strain, a strain resistant to kanamycin and ampicillin was selected, and pPX152 was obtained as a plasmid carried by the strain (FIG. 1).
【0032】実施例4 (1)前実験で得られたプラスミドpPX152を制限
酵素XbaIで消化し、1%アガロース電気泳動にて分
離し、2.3kbpの断片を切り出した。次に凍結融解
法によりDNAを抽出し、十分にフェノール抽出を行い
エタノール沈殿により精製した。 (2)スフィンゴモナス エスピー CR−03001
00株をLB液体培地(ナリジキシン酸25mg/Lを含
む)500mlで28℃、23時間培養し氷中で15分冷
却した。 (3)4℃、10分、10000rpm で遠心集菌し、5
00mlの0℃蒸留水で穏和に洗浄後再び、遠心集菌し
た。続いて250mlの0℃蒸留水で穏和に洗浄後、遠心
集菌した。更に、125mlの0℃蒸留水で穏和に洗浄
後、遠心集菌した。 (4)上記の菌体を10%グリセロールを含む蒸留水に
懸濁し0℃にて保持した。 (5)(1)のDNA約0.05μgを含む蒸留水4μ
lを0.2cmのキュベットに入れ、(4)のコンピテン
トセル40μlを加え、(25μF、2500V、12
msec)の条件でエレクトロポレーションにかけた。 (6)上記処理した細胞全量を10mlのLB液体培地に
接種し、30℃で6時間培養した。培養後、遠心によっ
て菌体を集め25mg/Lのカナマイシンを含むLB平板
に展開し、30℃で48時間培養した。 (7)上記の条件で非常に強いカナマイシン耐性株、1
株を得た。本菌株をスフィンゴモナス エスピー CR
−0310201株と名付けた。 (8)スフィンゴモナス エスピー CR−03102
01株及びCR−0300100株をLB培地10mlで
24時間培養し、集菌した。菌体を50mMのリン酸緩衝
液1mlに懸濁し、超音波破砕機を用いて細胞を破砕し
た。これを5000gで20分間遠心して得られた上清
100μlを0.2mMの3,4−ジヒドロキシ安息香酸
を含むリン酸緩衝液1mlに添加した。5分間、30℃で
インキュベーションした後に、2Mの水酸化ナトリウム
を0.1ml添加したところ、CR−0300100株で
は黄色の発色が見られたが、CR−0310201株で
は黄色の発色が全く見られなかった。CR−03102
01株は上述の性質及びカナマイシンに耐性であること
を除きCR−0300100株と全く同一の菌学的性質
を示した。本菌株は、工業技術院生命工学工業研究所に
FERM P−16624として寄託した。Example 4 (1) Plasmid pPX152 obtained in the previous experiment was digested with restriction enzyme XbaI, separated by 1% agarose electrophoresis, and a 2.3 kbp fragment was cut out. Next, DNA was extracted by freeze-thaw method, phenol was sufficiently extracted, and purified by ethanol precipitation. (2) Sphingomonas sp. CR-03001
The 00 strain was cultured in 500 ml of LB liquid medium (containing 25 mg / L of nalidixic acid) at 28 ° C. for 23 hours and cooled in ice for 15 minutes. (3) Collect cells by centrifugation at 10,000 rpm at 4 ° C for 10 minutes.
After gentle washing with 00 ml of 0 ° C. distilled water, the cells were collected by centrifugation again. Subsequently, the cells were gently washed with 250 ml of 0 ° C. distilled water and centrifuged. Further, after gently washing with 125 ml of 0 ° C. distilled water, the cells were collected by centrifugation. (4) The cells were suspended in distilled water containing 10% glycerol and kept at 0 ° C. (5) 4 μm of distilled water containing about 0.05 μg of the DNA of (1)
in a 0.2 cm cuvette, and add 40 μl of the competent cell of (4), and add (25 μF, 2500 V, 12 V).
(msec). (6) All the cells treated above were inoculated into 10 ml of LB liquid medium and cultured at 30 ° C. for 6 hours. After the culture, the cells were collected by centrifugation, spread on an LB plate containing 25 mg / L kanamycin, and cultured at 30 ° C. for 48 hours. (7) Very strong kanamycin resistant strain under the above conditions, 1
Got the strain. This strain is transformed into Sphingomonas sp.
-0310201 strain. (8) Sphingomonas sp. CR-03102
The 01 strain and the CR-0300100 strain were cultured in 10 ml of LB medium for 24 hours and collected. The cells were suspended in 1 ml of a 50 mM phosphate buffer, and the cells were disrupted using an ultrasonic disrupter. This was centrifuged at 5000 g for 20 minutes, and 100 µl of the supernatant obtained was added to 1 ml of a phosphate buffer containing 0.2 mM 3,4-dihydroxybenzoic acid. After incubating for 5 minutes at 30 ° C., 0.1 ml of 2M sodium hydroxide was added, and yellow color was observed in CR-0300100 strain, but no yellow color was observed in CR-0310201 strain. Was. CR-03102
The 01 strain exhibited exactly the same mycological properties as the CR-03100100 strain except for the above-mentioned properties and the resistance to kanamycin. This strain was deposited as FERM P-16624 with the National Institute of Bioscience and Biotechnology, Institute of Industrial Science and Technology.
【0033】実施例5 (1)CR−0310201株をカナマイシンを25mg
/L含むLB培地で前培養し、2g/Lのシリンガ酸
(SA)を含む表1の組成の培地に6%植菌した。 (2)30℃、24時間培養後、シリンガ酸、バニリン
酸をそれぞれ、2g/Lとなるように添加し、更に24
時間培養を続けた。培養液中のシリンガ酸、バニリン
酸、3,4−ジヒドロキシ安息香酸の消長をHPLC分
析(column:BONDASPHERE 5μ C18 3.9×150
mm,MILLIPORE;mobile phase:2% aceticacid and
10% methanol;flow rate:0.7ml/min;detecti
on 295nm)により調べた。菌体増殖量を660nmの
光学密度(OD660)によって調べた。 (3)図2に示したように、CR−0310201株は
シリンガ酸、バニリン酸の減少に伴い、バニリン酸に対
して3,4−ジヒドロキシ安息香酸を定量的に生成し、
変換収率は90%であった。Example 5 (1) 25 mg of kanamycin was added to the CR-0310201 strain.
/ L of LB medium, and 6% inoculated into a medium having a composition of Table 1 containing 2 g / L of syringic acid (SA). (2) After culturing at 30 ° C. for 24 hours, syringic acid and vanillic acid were added at a concentration of 2 g / L each, and further added for 24 hours.
Culture was continued for hours. HPLC analysis of syringic acid, vanillic acid, and 3,4-dihydroxybenzoic acid in the culture solution (column: BONDASPHERE 5 μC 18 3.9 × 150)
mm, MILLIPORE; mobile phase: 2% aceticacid and
10% methanol; flow rate: 0.7 ml / min; detecti
on 295 nm). The bacterial growth was determined by optical density at 660 nm (OD 660 ). (3) As shown in FIG. 2, the CR-0310201 strain quantitatively produced 3,4-dihydroxybenzoic acid with respect to vanillic acid with a decrease in syringic acid and vanillic acid,
The conversion yield was 90%.
【0034】実施例6 (1)CR−0310201株をカナマイシンを25mg
/L含むLB培地で前培養し、1g/Lのシリンガ酸
(SA)を含む表1の組成の培地に6%植菌した。 (2)30℃、24時間培養後、シリンガアルデヒド、
バニリンをそれぞれ、1g/Lとなるように添加し、更
に24時間培養を続けた。培養液中のシリンガアルデヒ
ド、バニリン、3,4−ジヒドロキシ安息香酸の消長を
HPLC分析(column:BONDASPHERE 5μ C18 3.
9×150mm,MILLIPORE;mobile phase:2% acetic
acid and 10% methanol;flow rate:0.7ml/mi
n;detection 295nm)により調べた。菌体増殖量を
660nmの光学密度(OD660)によって調べた。 (3)図3に示したように、CR−0310201株は
シリンガアルデヒド、バニリンの減少に伴い、バニリン
に対して3,4−ジヒドロキシ安息香酸を定量的に生成
し、変換収率は90%であった。Example 6 (1) Kanamycin (25 mg) was used for the CR-0310201 strain.
And LB medium containing 1 g / L of syringic acid (SA). (2) After culturing for 24 hours at 30 ° C., syringaldehyde,
Vanillin was added to each at a concentration of 1 g / L, and the culture was further continued for 24 hours. HPLC analysis of syringaldehyde, vanillin, and 3,4-dihydroxybenzoic acid in the culture solution (column: BONDASPHERE 5 μC 18 3.
9 × 150mm, MILLIPORE; mobile phase: 2% acetic acid
acid and 10% methanol; flow rate: 0.7ml / mi
n; detection 295 nm). The bacterial growth was determined by optical density at 660 nm (OD 660 ). (3) As shown in FIG. 3, the CR-0310201 strain quantitatively produced 3,4-dihydroxybenzoic acid with respect to vanillin with a decrease in syringaldehyde and vanillin, and the conversion yield was 90%. Met.
【0035】[0035]
【発明の効果】本発明によれば、バニリン又はバニリン
酸から極めて効率良く3,4−ジヒドロキシ安息香酸が
製造できる。According to the present invention, 3,4-dihydroxybenzoic acid can be produced very efficiently from vanillin or vanillic acid.
【図1】プラスミドpPX150からプラスミドpPX
152への作製ストラテジー及びこれらのプラスミドの
制限酵素地図を示す。FIG. 1. Plasmid pPX150 to plasmid pPX
152 shows the construction strategy to 152 and the restriction maps of these plasmids.
【図2】培地中のバニリン酸、シリンガ酸及び3,4−
ジヒドロキシ安息香酸の濃度の経時変化を示す。FIG. 2: Vanillic acid, syringic acid and 3,4-
3 shows the change over time in the concentration of dihydroxybenzoic acid.
【図3】培地中のバニリン、シリンガアルデヒド及び
3,4−ジヒドロキシ安息香酸の濃度の経時変化を示
す。FIG. 3 shows changes over time in the concentrations of vanillin, syringaldehyde, and 3,4-dihydroxybenzoic acid in a medium.
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 FI C12R 1:01) (72)発明者 堀田 康司 埼玉県幸手市権現堂1134−2 株式会社コ スモ総合研究所研究開発センター内──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code FI C12R 1:01) (72) Inventor Koji Hotta 1134-2 Gongendo, Satte City, Saitama Prefecture Cosmo Research Institute R & D Center Co., Ltd.
Claims (4)
のメチル基脱離反応を触媒する酵素活性を有し、かつ
3,4−ジヒドロキシ安息香酸の開裂酵素活性を有さな
い微生物に、バニリン又はバニリン酸を接触させること
を特徴とする3,4−ジヒドロキシ安息香酸の製造法。1. A microorganism belonging to the genus Sphingomonas and having an enzymatic activity for catalyzing a methyl group elimination reaction of vanillic acid and having no enzymatic activity for cleaving 3,4-dihydroxybenzoic acid, comprising vanillin or vanillin. A process for producing 3,4-dihydroxybenzoic acid, which comprises contacting an acid.
シリンガ酸を単一炭素源として生育可能な微生物である
請求項1記載の製造法。2. The method according to claim 1, wherein the microorganism is a microorganism that can grow using syringaldehyde or syringic acid as a single carbon source.
のメチル基脱離反応を触媒する酵素活性を有し、かつ
3,4−ジヒドロキシ安息香酸の開裂酵素活性を有さな
い微生物。3. A microorganism belonging to the genus Sphingomonas, having an enzymatic activity for catalyzing a methyl group elimination reaction of vanillic acid, and having no 3,4-dihydroxybenzoic acid cleaving enzyme activity.
310201(FERM P−16624)である請求
項3記載の微生物。4. Sphingomonas sp. CR-0
The microorganism according to claim 3, which is 310201 (FERM P-16624).
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